KR101551660B1 - 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법 - Google Patents

마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법 Download PDF

Info

Publication number
KR101551660B1
KR101551660B1 KR1020150036087A KR20150036087A KR101551660B1 KR 101551660 B1 KR101551660 B1 KR 101551660B1 KR 1020150036087 A KR1020150036087 A KR 1020150036087A KR 20150036087 A KR20150036087 A KR 20150036087A KR 101551660 B1 KR101551660 B1 KR 101551660B1
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
array plate
cells
cell
sample
microsphere
Prior art date
Application number
KR1020150036087A
Other languages
English (en)
Other versions
KR20150035957A (ko
Inventor
오현직
노다윤
이상훈
Original Assignee
(주) 마이크로핏
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by (주) 마이크로핏 filed Critical (주) 마이크로핏
Priority to KR1020150036087A priority Critical patent/KR101551660B1/ko
Publication of KR20150035957A publication Critical patent/KR20150035957A/ko
Application granted granted Critical
Publication of KR101551660B1 publication Critical patent/KR101551660B1/ko

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M3/00Tissue, human, animal or plant cell, or virus culture apparatus
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L9/00Supporting devices; Holding devices
    • B01L9/52Supports specially adapted for flat sample carriers, e.g. for plates, slides, chips
    • B01L9/527Supports specially adapted for flat sample carriers, e.g. for plates, slides, chips for microfluidic devices, e.g. used for lab-on-a-chip
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M1/00Apparatus for enzymology or microbiology
    • C12M1/16Apparatus for enzymology or microbiology containing, or adapted to contain, solid media
    • C12M1/18Multiple fields or compartments

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

본 발명은 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법에 관한 것이다.
본 발명에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법을 이용하여 세포를 3차원적으로 배양하게 되면 상태가 우수한 세포 집합체의 형성이 가능하다. 특히 인체 내의 환경에 보다 유사한 조건으로 세포를 배양하기 때문에 기존에 존재하던 세포 배양 방법들보다 우수한 상태로 세포 집합체를 형성하는 것이 가능하다.
이러한 본 발명을 통해 배양된 세포 집합체는 세포 치료에 직접적으로 쓰일 수 있으며, 인공적으로는 수득하기 어려운 세포를 배양하여 얻는 것이 가능하다. 또한 인체와 유사한 조건을 제공하여 배양하기 때문에 3차원적으로는 뭉쳐지기 어려운 세포의 세포 집합체 형성이 가능하다. 또한 두 가지 이상의 세포를 공동 배양하는 것이 가능하고, 이때에도 인체와 유사한 조건으로 배양하기 때문에 우수한 품질의 세포 집합체 형성이 가능하다. 결구 이러한 본 발명을 통해 약물 스크리닝이나 세포 독성, 그리고 각종의 테스트에 획기적 발전을 달성 할 수 있다.

Description

마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법{Preparation method of micro hemisphere array plate, microfluidics chip comprising micro hemisphere array plate and culture method of cell spheroid using the same}
본 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법에 관한 것이다.
인체 내에 있는 세포들은 주변에 있는 세포 및 세포 외 기질과의 상호작용을 통해 3차원 모양으로 집합체를 형성하고 있다. 이러한 3차원 모양은 생화학적으로, 기계적으로 세포 생리에 매우 중요한 역할을 담당하고 있다. 특히 3차원 모양으로 형성된 세포의 집합체(cell aggregation)는 일반적인 조직을 구성하는 세포나 장기를 이루는 세포, 암세포 및 줄기세포에 대한 연구에서 임상적으로 신약개발을 위해서 또는 줄기세포를 이용한 분화에 대한 연구에서 매우 중요한 역할을 담당하고 있다.
그러나 일반적으로 세포를 3차원 모양으로 배양하는 것은 매우 어렵고, 특히 human primary cell을 3차원적으로 배양한다는 것은 더욱 어렵다는 문제점이 있다. 이러한 문제로 인해 일반적으로는 2차원(2D)적으로 배양하여 약물 스크리닝이나 각종 실험에 사용하고 있다. 그러나 2차원적 배양을 할 경우 실제 생체 내에서와는 매우 다른 환경에 처해지기 때문에, 실험에 쓰일 세포가 가지고 있는 세포 자체의 특성이나 세포의 조직 특이성을 잃어버리고, 결과적으로는 원하는 실험 결과를 제대로 얻기가 매우 어렵다는 문제점이 있다.
그러므로 in vitro 상에서 세포를 3차원(3D) 모양으로 배양하는 것이 매우 중요하고 이에 대한 많은 연구들이 현재 진행 중에 있다. 이러한 3차원 배양방법으로 haning-drop culture, nonadhesive surface, spinner flask, fotary system 등이 있으나, 이들은 배양하는 방법이 간단하지 않고 대량 생산이 어려우며, 세포의 모양이나 크기 또는 개수를 적절하게 조절하기 어렵다는 문제점이 있다.
이러한 문제점을 개선하기 위한 선행기술문헌으로 표면장력을 이용한 반구형 마이크로웰의 제조 및 이를 이용한 세포 집합체의 형성에 관한 대한민국 공개특허 제10-2013-0013537호(특허문헌 1)가 개시되어 있다. 하지만 이러한 특허문헌 1에서는 마이크로 반구체를 정교하게 제작하는 방법이 아니어서 완벽한 반구형을 이룰 수가 없기 때문에 세포 집합체가 형성되어도 수집하는 과정에서 마이크로웰에서의 분리가 완벽하지 못할 뿐만 아니라 약간의 충격에도 세포들이 마이크로웰 밖으로 분리된다는 점, 그리고 세포 및 세포 집합체의 모양이 파괴된 채로 수집된다는 문제점이 있었다. 또한 인체 내의 유체 흐름과 비슷한 환경을 조성하지 못한 채 배양하기 때문에 형성되는 세포 집합체의 상태가 우수하지 못하다는 문제점이 있다.
특허문헌 1. 대한민국 공개특허 제10-2013-0013537호
본 발명은 상술한 문제점을 해결하기 위해 안출된 것으로서, 본 발명의 목적은 세포 집합체가 보다 좋은 상태로 집합체를 형성할 수 있게 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트 및 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자를 제공하는 것이다. 특히 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자의 경우 일정한 유량의 흐름이 있어 인체 내의 환경과 유사한 환경을 조성하고, 이를 통해 세포를 배양함으로써 보다 우수한 세포 집합체를 형성하고 뿐만 아니라 기존에 세포의 집합체를 형성하기 어려운 초대세포들의 집합체 형성을 제공하는 것이다.
위와 같은 과제를 해결하기 위한 본 발명의 한 특징에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법은
1) 실리콘 기판 위에 감광성 포토레지스트를 부착하는 단계;
2) 스핀 코팅을 통해 상기 감광성 포토레지스트의 높이를 조절하는 단계;
3) 오버 큐어링을 통해 상기 포토레지스트를 반구형으로 식각하는 단계;
4) 상기 3)단계 이후 식각된 표면에 1차 금속층을 증착하는 단계;
5) 상기 1차 금속층의 증착 후 그 위에 2차 금속층을 층착하는 단계;
6) 상기 2차 금속층 위에 금형코어층을 형성하는 단계;
7) 상기 6)단계 이후 상기 금형코어층의 상면을 평탄화 시키는 단계;
8) 상기 7)단계 이후 상기 금형코어층을 분리하는 단계;
9) 상기 분리된 금형코어층을 주형으로 하여 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 사출성형하는 단계; 및
10) 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 표면에 친수성 또는 소수성을 부여하는 단계;
를 포함한다.
본 발명의 또 다른 특징에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자는
단일 또는 복수의 세포, 세포 배양액을 포함하는 시료가 주입되며, 상기 시료의 주입은 단일 또는 복수개의 채널을 통해 주입되는 시료주입부;
상기 시료주입부와 연결되고 시료가 이동하면서 혼합되는 부위로서, 상기 시료의 이동은 단일 또는 복수개의 채널을 통해 이루어지고, 상기 단일 또는 복수개의 채널은 지그재그 형태이며, 상기 단일 또는 복수개의 채널은 피라미드 형태로 복수개의 단계를 통해 반복적으로 이루어지고, 상기 복수개의 단계는 하위 단계로 갈수록 상위 단계 보다 하나 이상의 채널을 더 포함하며, 상기 복수개의 단계를 연결하는 유동채널을 포함하는 시료혼합부; 및
상기 시료혼합부와 연결되면서 상기 복수개의 단계 중 최하위 단계를 구성하는 채널과 연결되며, 상기 혼합된 시료 중 단일 또는 혼합된 복수의 세포가 3차원으로 배양되어 세포 집합체를 형성하는 복수의 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 세포 집합체 형성부;
로 이루어지는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법을 이용하여 세포를 3차원적으로 배양하게 되면 상태가 우수한 세포 집합체의 형성이 가능하다. 특히 인체 내의 환경에 보다 유사한 조건으로 세포를 배양하기 때문에 기존에 존재하던 세포 배양 방법들보다 우수한 상태로 세포 집합체를 형성하는 것이 가능하다. 이러한 본 발명을 통해 배양된 세포 집합체는 세포 치료에 직접적으로 쓰일 수 있으며, 인공적으로는 수득하기 어려운 세포를 배양하여 얻는 것이 가능하다. 또한 인체와 유사한 조건을 제공하여 배양하기 때문에 3차원적으로는 뭉쳐지기 어려운 세포의 세포 집합체 형성이 가능하다. 또한 두 가지 이상의 세포를 공동 배양하는 것이 가능하고, 이때에도 인체와 유사한 조건으로 배양하기 때문에 우수한 품질의 세포 집합체 형성이 가능하다. 결국 이러한 본 발명을 통해 약물 스크리닝이나 세포 독성, 그리고 각종의 테스트에 획기적 발전을 달성 할 수 있다.
도 1은 실시예 1에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조과정을 도식화한 그림이다.
도 2는 실시예 1에 따라 제작된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 나타내는 사진이다.
도 3은 실시예 1에 따라 제작된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 hADSC를 배양하는 과정을 나타낸 모식도이다.
도 4는 실시예 1에 따라 제작된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 3차원 공동배양을 나타내는 모식도이다.
도 5는 실시예 2에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함한 미세유체소자의 단면도이다.
도 6은 실시예 2에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함한 미세유체소자의 사진이다.
도 7은 실시예 1에 따라 제작된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 세포 집합체를 형성하는 인간 세포의 3차원 배양을 보여주는 사진이다.
도 8은 비교예 1과 실시예 1의 경우 세포 집합체 형성을 비교한 사진이다.
도 9는 비교예 2와 실시예 1의 경우를 종합적으로 비교한 사진이다.
도 10은 실시예 2와 같은 유체의 흐름이 있는 경우와 없는 경우 인간 간세포를 이용한 세포 집합체 형성을 비교한 사진이다.
도 11은 실시예 2와 같은 유체의 흐름이 있는 경우와 없는 경우 human primary hepatocytes를 배양한 결과를 비교한 사진이다.
도 12는 비교예 2와 실시예 2의 경우를 종합적으로 비교한 사진이다.
도 13은 실시예 1에 따라 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 인간 간 세포와 hADSC를 3차원 공동배양한 결과를 나타낸 사진이다.
도 14는 실시예 1에 따라 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 인간 간 세포와 hADSC를 3차원 공동 배양한 경우 기능성 측정 검사 결과를 나타낸 그래프 및 사진이다.
도 15는 실시예 1에 따라 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 3차원 공동 배양된 세포 집합체의 내부를 찍었을 때의 TEM 사진이다.
도 16은 실시예 1에 따라 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통해 3차원 공동 배양된 세포 집합체를 반구로부터 꺼내었을 때 우수한 상태를 나타냄을 보여주는 사진이다.
도 17은 human primary hepatocytes와 hADSC를 2D 상에서 공동 배양한 결과를 나타낸 사진이다.
도 18은 human primary hepatocytes와 hADSC를 2D 상에서 공동 배양한 후 염색한 결과를 나타낸 사진이다.
도 19는 human primary hepatocytes와 hADSC를 본 실시예 1의 3D 상에서 공동 배양한 경우 알부민의 분비가 활발함을 보여주는 사진이다.
도 20은 human primary hepatocytes와 hADSC를 2D 및 3D 상에서 공동 배양한 경우를 종합적으로 비교한 사진이다.
이에 본 발명자들은 보다 좋은 상태로 세포 집합체를 형성할 수 있으면서 인체와 유사한 환경으로 배양 조건을 제공할 수 있는 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법 및 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함한 미세유체소자를 개발하기 위하여 예의 연구 노력한 결과, 본 발명에 따른 마이크로 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법을 발견하여 본 발명을 완성하였다.
구체적으로 본 발명에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법은
1) 실리콘 기판 위에 감광성 포토레지스트를 부착하는 단계;
2) 스핀 코팅을 통해 상기 감광성 포토레지스트의 높이를 조절하는 단계;
3) 오버 큐어링을 통해 상기 포토레지스트를 반구형으로 식각하는 단계;
4) 상기 3)단계 이후 식각된 표면에 1차 금속층을 증착하는 단계;
5) 상기 1차 금속층의 증착 후 그 위에 2차 금속층을 층착하는 단계;
6) 상기 2차 금속층 위에 금형코어층을 형성하는 단계;
7) 상기 6)단계 이후 상기 금형코어층의 상면을 평탄화 시키는 단계;
8) 상기 7)단계 이후 상기 금형코어층을 분리하는 단계;
9) 상기 분리된 금형코어층을 주형으로 하여 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 사출성형하는 단계; 및
10) 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 표면에 친수성 또는 소수성을 부여하는 단계;
를 포함한다.
상기 1)단계에서 실리콘 기판은 상기 감광성 포토 레지스트를 부착시키기 용이하다.
상기 감광성 포토레지스트는 일반적으로 자외선(UV, 350-400 nm)을 노광하면 빛을 받는 부위가 Cross-linked 되어 남는 것은 Negative 계열이고 빛을 받는 부위가 현상되는 것을 positive 계열이라고 지칭하는 것으로서, 식각 후 반구체를 형성하는데 용이하며, Negative와 Positive 두 가지 종류가 모두 포함될 수 있다.
상기 1)단계에서 부착되는 감광성 포토레지스트는그 길이가 100-1,000 ㎛인 것이 바람직하다. 상기 감광성 포토레지스트의 길이가 100 ㎛ 미만인 경우에는 지름과 깊이가 너무 작아 식각 후 반구체를 형성하기 어려워 바람직하지 않으며, 상기 감광성 포토레지스트의 길이가 1,000 ㎛를 초과하는 경우에는 식각 후의 반구체가 너무 커져 배양되는 세포가 집합체를 형성 및 세포의 본래의 기질을 극대화하기 힘들어 바람직하지 않다. 또한 감광성 포토레지스트의 길이가 상기 범위에 해당하여야 세포 집합체가 최적의 조건으로 우수하게 형성되게 하여 바람직하다. 또한 상기 길이 범위 이내에서 상기 감광성 포토레지스트의 코팅 높이, 온도 조건을 조절하여 반구의 깊이를 조절하는 것이 가능하다.
또한 상기 2)단계와 같이 스핀 코팅을 실시하게 되면 감광성 포토레지스트의 높이를 조절하는 것이 가능하다.
상기 감광성 포토레지스트는 상기 3)단계와 같이 오버 큐어링을 통해 감광성 포토레지스트를 식각하여 반구체를 형성할 수 있다. 이때 시행하는 상기 오버 큐어링은 감광성 포토레지스트에 적합한 온도조건 이상을 가열하게 되면 엣지 부분의 모서리가 라운드 형태로 변하면서 곡면을 이루는 현상이 나타난다. 이렇게 오버 큐어링을 통해 반구체를 형성하게 되면 기존 반구형 마이크로웰 제조방법에 비해 보다 정교한 반구의 형성이 가능하여 세포 집합체를 우수하게 형성할 수 있으며, 배양 후에도 집합체의 상태를 훼손함이 없이 세포 집합체를 마이크로 반구체 어레이 플레이트로부터 분리할 수 있다.
상기 4)단계에서는 식각된 감광성 포토레지스트의 표면에 1차 금속층을 증착하게 되는데, 상기 증착의 방법은 특별한 제한이 있는 것은 아니지만, 바람직하게는 화학기상증착, 물리기상증착 등의 방법을 사용하여 증착할 수 있다. 상기 증착되는 1차 금속층은 금형코어층을 보다 용이하게 분리하기 위한 것으로서 그 재질은 Cr, Ti, Au, Ni, Cu, Al 및 Fe 으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것이 바람직하다. 상기 1차 금속층을 증착하는 높이는 100-500 Å인 것이 바람직한데, 상기 1차 금속층의 높이가 100 Å 미만인 경우 2차 금속층의 박막 접착도를 약하게 하여 2차 금속층을 높게 올리는데 바람직하지 않으며, 상기 1차 금속층의 높이가 500 Å를 초과하는 경우 시드 금속층이 일어나는 필링 현상이 발생하여 바람직하지 않다.
상기 5)단계와 같이 1차 금속층의 증착 후 그 위에 2차 금속층을 증착하는 것이 바람직한데, 상기 2차 금속층은 금형코어의 전주도금을 용이하게 하기 위한 위한 것으로서 금형코어와 같은 재질이거나 전기전도성이 우수한 Au, Ag, Pt, Ni 및 Cu로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것이 바람직하다. 상기 1차 금속층과 상기 2차 금속층을 따로 증착하는 이유는 2차 금속층 자체 만으로는 박막 접착도가 떨어지기 때문에 전주도금 과정에서 원하는 높이까지 금형코어를 올리기 어렵기 때문이다. 상기 2차 금속층의 증착 방법은 특별한 제한이 있는 것은 아니지만, 바람직하게는 화학기상증착, 물리기상증착 등의 방법을 사용하여 증착할 수 있다. 상기 2차 금속층의 증착 높이는 1,000-2,000 Å인 것이 바람직한데, 상기 2차 금속층의 증착 높이가 1,000 Å 미만인 경우에는 박막 자체의 응력이 약해서 도금을 하기에 바람직하지 않으며, 상기 2차 금속층의 높이가 2,000 Å를 초과하는 경우에는 표면의 거칠기(RMS) 값이 높아져서 6)단계에서 금형코어층을 형성하는 데 있어 균일도에 영향을 미칠 수 있으므로 바람직하지 않다.
상기 6)단계에서는 상기 2차 금속층 위에 금형코어층을 형성하게 되는데, 이때 상기 금형코어층을 형성하는 바람직한 방법은 전주도금(Electro-plating)의 방법이 금속층을 높게 올릴 수 있으므로 바람직하다. 상기 금형코어층의 재질은 바람직하게는 니켈, 티타늄 및 알루미늄으로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상인 것이 바람직한데, 이들은 금형코어로 사용할 정도의 강도를 가지고 있어 바람직하다.
상기 7)단계에서는 상기 6)단계에 의해 형성된 상기 금형코어층의 상면을 평탄화시킨다. 상기 금형코어층을 평탄화시킴으로써 상기 9)단계에 의해 사출되는 마이크로 반구체 어레이 플레이트가 금형에 평탄하게 장착할 수 있으며, 나아가 제조되는 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 사출성형도를 높일 수 있어 바람직하다. 상기 평탄화는 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 수평을 달성할 수 있게 상기 금형코어층을 평탄화시키는 방법이라면 제한 없이 사용될 수 있으나, 바람직하게는 CMP(Chemical Mechanical Planarization), 광택 침지(Bright dipping), 바렐 연마(Tumbling barreling), 버프 연마(Buffing), 벨트 연마법(Belt sanding), 산세법(Picking) 등으로 평탄화시키는 것이 바람직하다.
상기 8)단계에서는 상기 금형코어층을 분리하게 되는데, 상기 금형코어층을 분리하는 방법은 특별한 제한이 있는 것은 아니지만 바람직하게는 KOH, TMAH 등으로 실리콘 기판을 녹여 제거하고, 나머지 남아있는 1차 금속층을 에칭용액으로 제거하여 분리하는 것이 바람직하다. 또한 이 과정에서 특별히 제한된 것은 아니지만 2차 금속층이 금형코어와 다를 경우 상기 2차 금속층도 같이 분리될 수 있다.
상기 9)단계에서는 상기 금형코어층을 주형으로 하여 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 사출성형하게 된다. 상기 사출성형의 방법은 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 사출성형하는데 적합한 것이라면 특별한 제한 없이 사용될 수 있다.
상기 사출성형의 소재는 사출성형이 가능한 소재라면 특별한 제한 없이 모두 사용될 수 있지만, 바람직하게는 P.C(Polycarbonate), PMMA(Polymethylmethacrylate), P.S(Polystyrene) 및 COC(Cyclic olefin copolymer)로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상일 수 있다.
상기 10)단계에서는 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 표면에 친수성 또는 소수성을 부여할 수 있으며, 이러한 친수성 또는 소수성을 부여하는 방법에는 특별한 제한이 있는 것은 아니지만 바람직하게는 플라즈마 방식 또는 화학적 표면 처리를 통해서 표면의 친수성과 소수성의 정도를 조절하게 된다. 또한 이러한 표면 개질을 통하여 최종 제조되는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 통한 세포 집합체 배양시 반구 내에서 공기 방울이 생기는 현상을 최소화하여 세포의 3차원적인 집합체의 형성을 극대화할 수 있어 바람직하다.
상기 제조방법에 의해 제조되는 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구는 직경이 100-1000 um 것이 바람직한데, 상기 범위에 해당하는 경우에 보다 우수하게 3차원적인 세포 집합체의 형성을 가능하게 하여 바람직하다.
본 발명에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법은 기존 반구형 마이크로 웰 제작방법에 비해 보다 정교하게 반구체 그리고 반구체 어레이 모양을 형성하게 된다. 그러므로 보다 3차원에 가깝게 세포 집합체를 형성하게 된다.
또한 본 발명에 따른 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법에 의해 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 이용하여 세포 집합체를 배양하게 되면 기존 방법에 비해 세포 집합체의 형성이 보다 우수하다. 또한 형성된 세포 집합체를 마이크로 반구체 어레이 플레이트로부터 분리하는 과정에서도 세포 집합체의 손상 없이 분리할 수 있다. 이는 기존에 2차원적으로 배양하던 방법에 비해 세포 집합체의 형성 상태가 월등히 우수한 것에 해당한다.
본 발명의 또 다른 특징에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자는
단일 또는 복수의 세포, 세포 배양액을 포함하는 시료가 주입되며, 상기 시료의 주입은 단일 또는 복수개의 채널(4)을 통해 주입되는 시료주입부(1);
상기 시료주입부와 연결되고 시료가 이동하면서 혼합되는 부위로서, 상기 시료의 이동은 단일 또는 복수개의 채널을 통해 이루어지고, 상기 단일 또는 복수개의 채널은 지그재그 형태이며, 상기 단일 또는 복수개의 채널은 피라미드 형태로 복수개의 단계를 통해 반복적으로 이루어지고, 상기 복수개의 단계는 하위 단계로 갈수록 상위 단계 보다 하나 이상의 채널을 더 포함하며, 상기 복수개의 단계를 연결하는 유동채널(5)을 포함하는 시료혼합부(2); 및
상기 시료혼합부와 연결되면서 상기 복수개의 단계 중 최하위 단계를 구성하는 채널과 연결되며, 상기 혼합된 시료 중 단일 또는 혼합된 복수의 세포가 3차원으로 배양되어 세포 집합체를 형성하는 복수의 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 세포 집합체 형성부(3);
로 이루어지는 것을 특징으로 한다.
본 발명에 따른 미세유체소자는 단일 또는 복수의 세포가 3차원적으로 세포 집합체를 형성할 수 있게 하며, 상기 세포 집합체의 형성시 인체내 환경과 유사한 조건으로 유체를 통과시켜 세포 집합체를 형성하게 된다. 인체를 구성하는 가장 주요한 물질로서 성인의 경우 평균적으로 약 60 %는 물이기 때문에 인체 내에서 세포는 혈류 등 액체의 유동적 운동이 존재하는 상태에서 집합체를 형성하게 된다. 그러므로 본 발명은 이러한 인체 내의 환경과 유사한 조건을 제공하여 보다 우수한 품질의 세포 집합체를 형성하게 된다.
상기 시료주입부에는 세포 및 세포 배양액을 주입할 수 있다. 상기 세포는 단일 또는 복수의 세포일 수 있으며, 주입된 세포는 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트 내에서 세포 집합체를 형성하게 된다. 상기 세포 및 세포 배양액을 포함한 시료를 상기 시료주입부에 주입할 때 유속은 10 nL/min - 10 uL/min 의 범위에서 주입하는 것이 바람직한데, 상기와 같은 범위의 유속으로 시료를 주입하는 것이 인체 내 환경과 유사하며, 특히 10 nL/min 미만으로 주입하는 경우에는 인체와 유사한 조건에서 크게 벗어남과 동시에 반구 주위의 불필요한 세포 제거를 달성하기 어려워 바람직하지 않으며, 10 uL/min을 초과하는 경우에는 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구에 세포가 가라앉기 어려워 바람직하지 않다. 상기 시료주입부에 주입되는 세포 배양액은 세포를 배양할 수 있으면서 유체로서 흐를 수 있는 물질이라면 특별한 제한 없이 사용될 수 있다. 또한 상기 시료주입부에서 시료가 주입되는 입구는 단일 또는 복수개의 채널일 수 있으며, 이를 통해 시료는 단일 또는 복수의 경로로 주입될 수 있다.
한편 상기 시료혼합부는 상기 시료가 이동하면서 혼합되는 부위이다. 이때 상기 시료의 이동은 단일 또는 복수개의 채널을 통해 이루어지는 것이 시료를 보다 용이하게 혼합할 수 있어 바람직하다. 상기 채널의 직경은 500 um - 2.0 mm인 것이 바람직한데, 상기 채널의 직경이 500 um 미만이면 마이크로 반구체 어레이의 개수가 적어지고 채널의 유체압력이 높아져서 바람직하지 않으며, 상기 채널의 직경이 2.0 mm를 초과하면 인체와 비슷한 조건으로 시료를 이동시키기 어렵고, 마이크로 반구체 어레이를 제어하기가 쉽지 않기 때문에 바람직하지 않다. 또한 상기 시료의 혼합을 보다 활발하게 달성하기 위해 상기 단일 또는 복수개의 채널은 지그재그 형태인 것이 바람직하다. 이렇게 지그재그 형태인 단일 또는 복수개의 채널은 피라미드 형태로 복수개의 단계를 통해 반복적으로 놓여지게 된다. 이렇게 복수개의 단계를 피라미드 형태로 반복하게 되면 시료의 혼합과 챔버에 따른 농도 구배가 활발하게 이루어질 수 있다. 또한 피라미드 형태를 구현하기 위해 상기 복수개의 단계는 하위 단계로 갈수록 상위 단계보다 하나 이상의 채널을 더 포함하는 것이 바람직하다. 또한 상기 복수개의 단계는 이들을 연결하는 유동채널에 의해 모두 연결된다. 이러한 시료혼합부는 상기와 같은 구성을 통해 시료를 혼합(Mixed)하는 효과를 우수하게 달성하게 된다.
한편 상기 세포 집합체 형성부는 상기 시료혼합부와 연결되면서 상기 복수개의 단계 중 최하위 단계와 연결되어 있다. 또한 상기 혼합된 시료 중 단일 또는 혼합된 복수의 세포가 복수의 마이크로 반구체 어레이 플레이트에서 3차원으로 배양되어 세포 집합체를 형성하게 된다. 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트는 복수개인 것이 단일의 마이크로 반구체 어레이 플레이트인 경우에 비해 배양액의 유속을 저하시키지 않으면서 인체 내의 환경과 보다 유사한 환경을 제공하여 우수한 세포 집합체를 형성할 수 있으므로 바람직하다. 또한 특별히 제한되는 것은 아니지만 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 개수는 바람직하게는 상기 복수개의 단계 중 최하위 단계에 포함된 채널의 개수와 같은 것이 바람직하다. 이는 상기 최하위 단계를 구성하는 각각의 채널에 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트가 곧바로 연결되어 세포 집합체를 형성하는 것이 이전 단계까지의 시료 이동을 방해하지 않으면서 인체와 보다 유사한 환경에서 우수한 품질의 세포 집합체를 형성할 수 있기 때문이다.
상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트는 특별한 제한이 있는 것은 아니지만, 본 발명의 또 다른 특징에 따른 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법에 의해 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트인 것이 보다 우수한 품질의 세포 집합체를 형성할 수 있으며, 기존 방법에 비해 반구체 형성의 재현상이 매우 높게 나타난다. 또한 형성된 세포 집합체를 마이크로 반구체 어레이 플레이트로부터 분리하는 과정에서도 세포 집합체의 손상 없이 분리할 수 있다. 이는 기존에 2차원적으로 배양하던 방법에 비해 세포 집합체의 형성 상태가 월등히 우수한 것에 해당한다.
한편 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구 내에는 단일 또는 혼합된 복수의 세포가 가라앉아 세포 집합체를 형성하게 되며, 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구 주위에 존재하는 불순물 및 불필요한 세포는 반구 위를 흐르는 나머지 시료의 유속에 의해 제거되게 된다. 이러한 과정을 수차례 반복하여 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구 내에서 세포 집합체가 형성 및 배양되게 된다.
이렇게 본 발명에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자는 주요한 기능으로서 세 가지가 존재하는데, 첫째로는 세포 및 세포 배양액 등을 포함하는 시료를 함께 넣어서 농도별로 각각의 세포 집합체 형성부까지 흐르게 할 수 있는 농도 구배 기능이 존재하며, 둘째로 기능성 배양액 등을 포함하여 둘 이상의 시료를 함께 주입할 수 있으면서 동시에 이들을 혼합(Mixed)하는 기능이 우수하다. 셋째로 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구체 내에서 단일 또는 혼합된 복수의 세포가 세포 집합체를 형성하면서 배양되어 다양한 세포를 인체 내의 환경과 유사한 조건 아래 3차원 구형으로 만들 수 있다.
이하 본 발명을 바람직한 실시예를 참고로 하여 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 실시할 수 있도록 상세히 설명한다. 그러나 본 발명은 여러 가지 상이한 형태로 구현될 수 있으며 여기에서 설명하는 실시예에 한정되는 것은 아니다.
실시예
실시예 1: 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제작 및 세포 집합체의 배양
<마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제작>
500 um 크기의 마이크로 반구체 패턴을 구현하기 위해서 감광성 포토레지스트를 사용하였으며, 이때 사용한 감광성 포토레지스트는 Negative와 Positive 두 가지 종류를 다 사용할 수 있지만 Negative 형태를 사용하였다.
마이크로 반구체의 높이는 300um 영역에서 감광성 포토레지스를 스핀코팅하여 조절할 수 있으며, 코팅된 포토레지스는 150℃ 온도에서 Over curing을 통해 마이크로 반구체로 형상화 할 수 있다.
실리콘 기판 위에 형상된 마이크로 반구체 어레이 패턴 위에 1차 시드(seed) 금속층을 박막 증착 장비로 올리는데 이 때 사용하는 시드 금속은 티타니움(Titanium)을 사용하였으며, 그 높이는 300 Å 를 올렸다. 2차 금속층은 Nickel을 사용하게 되며 높이는 1,500 Å 를 올렸다. 1차와 2차 금속박막증착에 사용되는 장비는 E-beam evaporator 와 D.C magnetic sputter를 각각 사용하였다.
2차 금속박막층 위에 전주도금(Electro-plating) 방법을 사용하여 니켈층을 높게 올리게 되는데 이 때 올리는 니켈 금속 층의 높이는 0.8 mm 이었으며, 전주도금이 완료된 이후 후면을 CMP(Chemical Mechanical Planarization) 공정을 진행하여 균일한 편평도가 나올 수 있도록 연마하였다.
연마가 완료된 2차 금속박막층을 포함한 니켈층을 분리하여 금형코어로 사용하였으며, 사출성형(Injection molding)을 할 수 있도록 이를 금형에 장착하여 성형을 진행하였다.
사출성형에 사용되는 플라스틱 소재는 P.S.(Polystyrene)을 이용하여 사출성형을 진행하였다.
완료된 마이크로 반구체 플레이트는 산소 플라즈마 처리 및 화학적 표면 처리를 통해서 표면의 친수성과 소수성 정도를 조절하였으며, 이러한 표면 개질을 통해서 마이크로 반구체 어레이 플레이트 및 마이크로 반구체 어레이 미세유체소자 내에 공기방울이 생기는 현상을 최소화하며 세포의 3차원 반구체 형성을 극대화 하였다.
하기 도 1은 이러한 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조과정을 나타내는 모식도이고, 하기 도 2a는 이렇게 제조된 마이크로 반구체 어레이를 나타내는 사진이며, 하기 도 2b는 최종 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 나타낸 사진이다.
<마이크로 반구체 어레이 플레이트를 이용한 세포 집합체의 배양>
1) hADSC의 분리
성형수술이나 지방 흡입술을 시행한 환자로부터 제거된 지방조직으로부터 hADSC를 분리해낸다. hADSC의 분리는 우선, 분리된 지방 조직으로부터 blood fraction을 제거한다. 깨끗한 PBS 용액을 이용해, blood fraction이 투명해질 때까지 반복해서 세포를 씻어낸다. 그 후 Type1 collagenase를 PBS에 0.2 %로 녹여 씻어낸 세포와 섞어줌으로써 세포간 결합을 끊고 조직을 세포 단위로 분리해낸다. 만들어진 collagenase 용액을 씻어낸 지방조직과 섞어 한 시간 동안 흔들면서 incubation한다. 유화된 조직을 모아서, 600 g 10 min centrifugation을 한 뒤, pellet만 모아 100μm strainer에 걸러낸다. 걸러낸 세포는 배지에 넣고 여러 번 씻어낸 뒤에, T-75 플라스크에 배양하였고, passage 3-4 가 되었을 때, 3차원 배양을 위해 떼어내어 사용하였다.
2) hADSC 배양
3차원 배양을 위해, 배지에 hADSC 세포를 풀고, 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트에 세포용액을 seeding 하였다. 세포가 반구 안에 가라앉은 뒤 표면에 남아있는 세포들은 배지를 이용한 washing 과정으로 제거 되었고, 새로운 배지를 다시 넣어 인큐베이터에서 3차원 배양을 하였다. 하기 도 3은 이러한 배양 과정을 나타내는 모식도이다.
3) 3차원 공동배양
하기 도 4에서는 복수개의 세포를 공동배양하여 3차원 세포 집합체를 형성하는 모습을 나타낸 모식도이다. 즉 두 종류의 세포를 원하는 비율로 섞은 뒤 앞에서의 과정과 마찬가지로 세포를 반구체 안에서 배양한다. 배양한지 하루가 지나면 두 세포가 밀접하게 연결되어 하나의 구 모양으로 합쳐지고, 이로 인해 완벽하게 직접 결합된 3차원 공동배양 모델이 만들어진다.
실시예 2: 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세 유체소자를 이용한 세포 집합체의 배양
<마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자의 개발>
상기 실시예 1의 방법으로 제조된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자를 제작하였다. 이러한 미세유체소자는 시료주입부, 시료혼합부 및 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 세포 집합체 형성부로 나뉘어질 수 있다. 하기 도 5는 이의 단면도이다. 또한 하기 도 6는 이렇게 제작된 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자의 사진이다.
1) 인간유래 간세포의 분리
인간 간세포는 간 부분절제술을 받은 환자에게서 제거된 간 조직으로부터 기존의 collagenase-two-step 방법을 이용하여 분리되었다. 간략히 설명하면, 분리된 간 조직은 먼저 EGTA perfusion을 통해, 혈액 등을 제거 하였고, 그 다음 type2 collagenase 용액을 perfusion함으로써, 조직 구석구석에 collagenase가 들어가 간 조직을 유화시켰다. 그 후, 두 번의 washing 과정을 통해 간세포가 조직으로부터 분리되었고 분리된 간세포는 분리된 직후 바로 사용되었다.
2) 마이크로 반구체 어레이 플레이트 미세유체소자에서의 세포배양
간세포를 배지와 섞어, 미세유체소자 내에서 유속(flow rate)을 1uL/min 에서 초대세포와 배지가 chip을 천천히 지나가게 함으로써 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구 내에 세포가 가라앉게 하였고, 이 유속을 이용해 마이크로 반구체 어레이 주변의 세포들도 효과적으로 제거하였다. 이 과정을 수 차례 반복하여 미세유체소자 내에서 세포가 3차원 구형으로 자랄 수 있도록 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자에서 인간유래 초대세포를 배양하였다.
3) 3차원 공동배양
앞서 설명한 방법과 똑같은 방법으로, 세포를 loading 하되, 두 가지 혹은 그 이상의 세포를 원하는 비율로 섞어서 배지와 함께 넣으면 된다. 이 방법으로 유속이 있는 미세유체소자 내에서의 3차원 공동 배양을 할 수 있다.
한편 이러한 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자의 주요한 기능은 아래의 3가지이다.
첫 번째 세포를 배양할 수 있는 배양액과 세포분화유도 및 세포의 특성 변형이나 기능 극대화를 할 수 있는 시료를 함께 넣어서 농도 별로 각각의 챔버에 흐르게 할 수 있는 농도구배기능과,
두 번째 배양액과 기능성 시료를 함께 넣어줘야 하기 때문에 두 개 또는 그 이상의 용액을 일정하게 섞어줄 수 있는 마이크로 믹서 기능과,
세 번째는 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구 내에 집적화하여 다양한 세포를 3차원 구형 (cell spheroid)으로 만들 수 있는 기능이다.
그리하여 마이크로 채널 내에서 10nL/min ~ 10uL/min 영역의 유체를 자유롭게 변경하여 3차원 세포배양의 최적화 미세유체환경을 제공할 수 있다.
비교예
비교예 1
기존에 존재하는 방법으로 제작된 반구형 마이크로웰에서 세포를 배양한 것을 제외하고는 상기 실시예 1과 동일한 방법을 사용하여 세포를 배양하였다.
비교예 2
시료의 주입 및 이동 없이 기존에 존재하는 방법을 통해 이차원적(2D)으로 세포 집합체를 배양한 것을 본 비교예 2로 하였다.
실험예
실험예 1: 마이크로 반구체 어레이 플레이트에서 배양된 세포 집합체의 관찰
상기 실시예 1의 마이크로 반구체 어레이 플레이트에서 배양된 세포 집합체및 비교예 1에 의해 배양된 세포 집합체를 관찰하였다. 이의 결과는 하기 도 7 및 도 8에서 확인할 수 있다.
하기 도 7의 A에서 상기 실시예 1에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트에 hADSC를 넣은지 하루 만에 동그랗게 뭉쳐진 세포 구가 잘 만들어졌음을 확인 할 수 있다. 또한 도 7의 B에서 만들어진 세포 구를 9일간 키운 뒤 Live/Dead assay로 viability를 보았을 때, 대부분의 세포가 건강하게 살아있음을 확인 할 수 있었다. 또한 도 7의 C에서 만들어진 세포구를 9 일 째에 모아 SEM 사진을 통해 미세구조를 확인해 보았더니 hADSC의 특징인 microvilli가 잘 나타나는 것을 확인 할 수 있었고, 여러 개의 세포가 모여 완벽히 하나의 구 모양을 형성했음을 확인할 수 있었다. 이러한 마이크로 반구체 어레이 플레이트는 원하는 개수대로, 대면적으로도 만들 수 있으므로, 대량생산에 용이하고, 방법 또한 매우 쉬우므로 건강한 상태의 hADSC세포구를 빠르고 쉽게 대량생산하기에 매우 적합함을 확인하였다.
한편 하기 도 8의 A에서 비교예 1로 hADSC 를 키울 경우, 세포구가 생성 된지 10일이 넘어가면 hADSC가 표면에 달라붙는 adherent cell이 되므로, 그 영향으로 만들어진 세포구가 마이크로 구멍에서 튀어나와, 바닥에 퍼져 붙어버리게 됨을 확인하였다. 그러나 실시예 1의 경우 도 8의 B에서 확인할 수 있는 바와 같이 실시예 1의 경우에는 깊이 조절이 가능하기 때문에 좀 더 깊게 제작한 칩에서는 세포 구가 시간이 지나도 그 자리에 그대로 머물러 있으며 안정된 상태로 long-term 보관이 가능함을 보여준다. 이는 aggregation하는 특성을 가지지 않은 세포라 할지라도, 세포가 잘 뭉치게 할 수 있고, 깊이 조절을 통해 세포를 구상태로 오랫동안 키울 수 있음을 보여준다.
한편 도 9는 상기 hADSC를 배양하는 경우 비교예 2와 같은 2D(도 9 A, B)와 실시예1과 같은 3D(도 9 C, D), Optical(도 9 A, C)과 GFP(도 9 B, D) 및 SEM(도 9 E)을 나타내는 것이다.
실험예 2: 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함한 미세유체소자에서 배양된 세포 집합체의 관찰
인간 간(humam liver) 세포 및 시료를 실시예 2의 미세유체소자를 통해 주입하여 유체의 흐름이 있는 상태로 세포 집합체(도 10 B)와 유체의 흐름 없이 상태로 마이크로 반구체 어레이 플레이트에서 배양된 세포 집합체(도 10 A)를 관찰하는 실험을 진행하였다.
human liver의 경우, partial hepatectomy로부터 세포를 얻으면 세포의 상태가 매우 좋지 않기 때문에, 어떤 방식으로 키워도 aggregation이 잘 되지 않는다.
하기 도 10의 A에서 확인할 수 있는 바와 같이 인체와 비슷한 조건의 유속이 존재하지 않는 상태에서 인간 간 세포 집합체를 형성하는 경우에는 aggregation이거의 일어나지 않음을 확인할 수 있었다.
반면에 도 10의 B에서 확인할 수 있는 바와 같이 실시예 2의 미세유체소자를 통해 유체의 흐름을 이용할 경우 상태가 좋지 않은 세포도 aggregation 시킬 수 있다. 따라서, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자에서는 좋은 상태로 얻기 어려운 human primary 세포를 효과적으로 3차원으로 배양할 수 있고, 꼭 상태가 좋지 않은 세포뿐만 아니라 일반 세포의 경우에도 지속적인 흐름과 shear stress를 줌으로써 좋은 영향을 줄 수 있다. 이는 인체 내와 비슷한 환경을 만들어줌으로써, 세포의 정상 기능을 극대화 할 뿐만 아니라, 지속적인 유체의 흐름으로 계속해서 신선한 배지를 공급해줄 수 있기 때문이기도 하다. 그리고 미세유체소자의 세 가지 특성을 활용하면 세포 분화유도 및 기능분석을 위한 약물을 흘려 보내 지속적인 약물 스크리닝 등에도 이용할 수 있다.
또한 도 11은 이러한 세포 배양을 3일 유지한 후 염색하여 활성을 나타내는 인간 간세포를 확인하는 실험을 측정한 결과를 나타내는 사진이다. 도 11의 A에서 볼 수 있다시피, 유체의 흐름이 없는 비교예 2에서 상태가 좋지 않은 human primary hepatocytes를 배양하면, Live/Dead assay를 통해 볼 수 있듯이 반이 넘는 세포가 죽어있고, 잘 뭉쳐있지도 않으며 염색자체도 잘 되지 않는 결과를 볼 수 있다. 반면 유체의 흐름이 있는 실시예 2(도 11 B) 에서는 세포 viability가 flow가 없는 비교예 2에서의 결과와 고무적으로 다른 것을 확인 할 수 있다. 처음 human liver 세포를 분리해냈을 때의 viability가 40-60 % 정도 였던 것을 감안하면, flow가 있는 실시예 2에서 오히려 시간이 지날 수록 viability가 좋아지는 것을 확인 함으로써, 살아있는 세포들이 남아 더 단단히 뭉치고 전체적 생활력을 높이는 것을 확인 할 수 있다. 이를 통해, 상태가 좋지 않은 세포를 flow가 있는 실시예 2에서 배양하였을 때, 상태가 좋아지는 것을 증명했고 이는 상태가 좋지 않으나 가장 얻기 쉬운 세포원천인 human primary 세포를 실험에 이용할 수 있게 해주는 가능성을 보여준다.
한편 도 12는 인간 간 세포를 배양하는 경우 비교예 2와 같은 2D(도 12 A, B)와 실시예 2와 같은 3D(도 12 C, D), Optical(도 12 A, C)과 ALB(도 12 B, D), Live/Dead(도 12 E) 및 SEM(도 12F)을 나타내는 것이다.
실험예 3: 복수개의 인간 세포를 직접적으로 결합시킨 3차원 공동배양( Co - culture )
인간 간 세포와 hADSC를 섞어 실시예 1에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트에 넣고 키웠을 때, 이들 세포가 직접적으로 결합하여 3차원 공동배양이 가능함을 확인하는 실험을 진행하였다. 이의 결과는 하기 도 13에서 확인할 수 있었다. 하기 도 13의 A에서는 두 종류의 세포가 하나가 되어 뭉쳐있음을 보여준다. 또한 도 13의 B에서는 초록색으로 나타내어지는 생활력도 매우 높아 두 세포로 이루어진 하나의 구가 매우 건강한 상태로 반구 안에서 배양되고 있음을 보여준다. 또한 도 13의 C에서는 배양한 지 3 일째에 찍은 SEM 사진으로서 두 세포가 딱히 경계나 구분 없이 완벽하게 하나로 뭉쳐 있음을 확인할 수 있었다. 또한 도 13의 D에서는 배양한 지 9 일째의 사진으로서 3 일 째 보다도 더 단단하게 하나로 뭉쳤으며 겉으로 보이는 경계가 완전히 없어졌음을 확인할 수 있다. 이는 두 가지 세포가 직접적으로 결합하여 완전한 하나의 단위체를 이루었음을 보여주고 있고, 기존에는 없었던 새로운 직접적 결합에 의한 3차원 공동배양 모델이라고 할 수 있다.
또한 도 14는 이러한 직접적 결합에 의한 3차원 공동 배양 모델을 가지고 기능 검사를 시행한 결과를 나타낸 것이다. 하기 도 14의 A 및 B에서는 일반 간세포만 가지고 한 것과 마찬가지로 활성화된 알부민(도 14 A)과 Urea(도 14 B) 분비를 보임으로써, 뭉쳐진 세포가 섞인 상태에서도 자기기능을 잘하고 있음을 확인할 수 있다. 또한 도 14의 C 및 D에서 빨간색으로 나타내어지는 Cytochrome P450 reductase 염색에서도 높은 레벨을 보였고, 도 14의 E에서 나타난 CYP3A4 activity를 정량화한 그래프에서도 지속적으로 높은 레벨의 결과를 보여 이 세포구가 간 특유의 metabolism 관련 기능까지도 잘 해내고 있음을 확인 할 수 있었다. 이렇게 뭉쳐진 새로운 단위체의 세포가 기능적으로도 제 역할을 할 수 있음을 보임으로써, 실제 장기에서의 여러 가지 세포 간의 결합과 유사한 상태를 구현했으며 이 단위체를 in vitro, in vivo 상에서 유용하게 사용할 수 있음을 보여주고 있다.
또한 하기 도 15에서 확인할 수 있는 바와 같이 TEM으로 공동배양 된 세포구의 내부를 찍어보았을 때, 도 15에서 볼 수 있다시피 여러가지 활성화된 세포의 특성을 나타내고 있음을 확인할 수 있다. 많은 미토콘드리아와 건강한 핵상, 간세포 특유의 tight junction이나 bile canaliculi등도 관찰이 되고, glycogen과 ECM인 Collagen도 관찰할 수 있다. Peroxisome, rough ER도 확인이 되었고 endocytosis를 하고 있는 모습도 보여짐으로써, 세포가 형태적, 기능적으로 매우 건강한 상태임을 확인하였다.
또한 도 16에서 상태가 좋지 않은 간세포 구(도 16 A)와 직접적 결합에 의해 3차원 공동 배양된 세포구(도 16 B)를 꺼내어 Live/Dead assay를 하여, 세포의 viability를 본 사진이다. 도 16에서 알 수 있듯이 대부분의 세포가 살아있고 죽은 세포의 개수는 매우 적은데, 이를 통해, 실시예 1에 따른 마이크로 반구체 어레이 플레이트에서 세포를 꺼내는 과정이 세포에게 손상을 입히지 않는 다는 사실을 알 수 있고, 이는 곧 세포를 단지 반구체 안에서 3차원으로 배양하는 것을 넘어서 그것을 꺼내어 원하는 다른 곳에 다른 방법으로 사용할 수 있음을 알려준다.
또한 도 17에서 human primary hepatocyte(도 17 A)와 Hadsc(도 17 B), 그 두 세포를 2D 상에서 공동 배양한 것(도 17 C)이다. 직접적인 결합이 있는 상태이긴 하지만 두 세포가 하나의 단위체가 되거나 하는 등의 효과는 볼 수 없고 그저 두 세포가 한 공간에 붙어 있는 정도 수준으로만 공동배양이 되고 있음을 알 수 있다. 이렇게 2차원으로 공동 배양된 모델을 가지고 알부민이 분비되는 부분을 염색해 봄으로써 세포의 활성을 확인해 보면(도 18), 빨간색으로 나타내어지는 거의 활성이 없는 상태를 보임을 확인할 수 있었다.
반면에 실시예 1에 의해 제작된 마이크로 반구체 어레이 플레이트에서 공동 배양된 경우(도 19) 초록색으로 나타내어지는 알부민의 분비가 매우 활발하고 세포의 활성이 훨씬 더 좋은 상태임을 알 수 있다. 한편 도 20은 2D 환경인 경우(도 20 A, B), 본 발명의 실시예와 같은 3D인 경우(도 20 C, D, E, F)를 종합적으로 보여주는 사진이다.
상기에서는 본 발명의 바람직한 실시예에 대하여 설명하였지만, 본 발명은 이에 한정되는 것은 아니고, 본 발명의 기술 사상 범위 내에서 여러 가지로 변형하여 실시하는 것이 가능하고, 이 또한 첨부된 특허 청구 범위에 속하는 것은 당연하다.
1. 시료주입부
2. 시료혼합부
3. 세포 집합체 형성부
4. 채널
5. 유동채널

Claims (13)

  1. 단일 또는 복수의 세포, 세포 배양액을 포함하는 시료가 주입되며, 상기 시료의 주입은 단일 또는 복수개의 채널을 통해 주입되는 시료주입부;
    상기 시료주입부와 연결되고 시료가 이동하면서 혼합되는 부위로서, 상기 시료의 이동은 단일 또는 복수개의 채널을 통해 이루어지고, 상기 단일 또는 복수개의 채널은 지그재그 형태이며, 상기 단일 또는 복수개의 채널은 피라미드 형태로 복수개의 단계를 통해 반복적으로 이루어지고, 상기 복수개의 단계는 하위 단계로 갈수록 상위 단계 보다 하나 이상의 채널을 더 포함하며, 상기 복수개의 단계를 연결하는 유동채널을 포함하는 시료혼합부; 및
    상기 시료혼합부와 연결되면서 상기 복수개의 단계 중 최하위 단계를 구성하는 채널과 연결되며, 상기 혼합된 시료 중 단일 또는 혼합된 복수의 세포가 3차원으로 배양되어 세포 집합체를 형성하는 복수의 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 세포 집합체 형성부;
    로 이루어지는 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  2. 제 1항에 있어서,
    상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트는
    1) 실리콘 기판 위에 감광성 포토레지스트를 부착하는 단계;
    2) 스핀 코팅을 통해 상기 감광성 포토레지스트의 높이를 조절하는 단계;
    3) 오버 큐어링을 통해 상기 포토레지스트를 반구형으로 식각하는 단계;
    4) 상기 3)단계 이후 식각된 표면에 1차 금속층을 증착하는 단계;
    5) 상기 1차 금속층의 증착 후 그 위에 2차 금속층을 층착하는 단계;
    6) 상기 2차 금속층 위에 금형코어층을 형성하는 단계;
    7) 상기 6)단계 이후 상기 금형코어층의 상면을 평탄화 시키는 단계;
    8) 상기 7)단계 이후 상기 금형코어층을 분리하는 단계;
    9) 상기 분리된 금형코어층을 주형으로 하여 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 사출성형하는 단계; 및
    10) 상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 표면에 친수성 또는 소수성을 부여하는 단계;
    를 포함하는 제조방법에 의해 제조되어 이루어진 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  3. 제 2항에 있어서,
    상기 감광성 포토레지스트는 그 길이가 100-1,000 ㎛로 이루어지는 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  4. 제 2항에 있어서,
    상기 1차 금속층의 재질은 Cr, Ti, Au, Ni, Cu, Al 및 Fe로 이루어지는 군으로부터 선택된 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  5. 제 2항에 있어서,
    상기 2차 금속층의 재질은 Au, Ag, Pt, Ni 및 Cu로 이루어지는 군으로부터 선택된 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  6. 제 2항에 있어서,
    상기 금형코어층의 재질은 니켈, 티타늄 및 알루미늄로 이루어지는 군으로부터 선택된 어느 하나 이상인 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  7. 제 2항에 있어서,
    상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 사출성형은 P.C(Polycarbonate), PMMA(Polymethylmethacrylate), P.S(Polystyrene) 및 COC(Cyclic olefin copolymer)로 이루어지는 군으로부터 선택되는 어느 하나 이상을 사용하여 이루어지는 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  8. 제 2항에 있어서,
    상기 제조방법에 의해 제조되는 마이크로 반구체 어레이의 반구는 직경이 100-1000 ㎛인 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  9. 제 1항에 있어서,
    상기 시료주입부에 주입되는 시료의 유속은 10 nL/min - 10 uL/min 로 주입되는 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  10. 제 1항에 있어서,
    상기 채널의 직경은 500 ㎛ - 2.0 mm로 이루어지는 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  11. 제 1항에 있어서,
    상기 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 반구는 직경이 100-1000 ㎛인 것을 특징으로 하는 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자.
  12. 삭제
  13. 제 1항에 따른 미세 유체소자에 의해 세포 집합체를 배양하는 세포 집합체의 배양방법.

KR1020150036087A 2015-03-16 2015-03-16 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법 KR101551660B1 (ko)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020150036087A KR101551660B1 (ko) 2015-03-16 2015-03-16 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020150036087A KR101551660B1 (ko) 2015-03-16 2015-03-16 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법

Related Parent Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020130091065A Division KR101544391B1 (ko) 2013-07-31 2013-07-31 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20150035957A KR20150035957A (ko) 2015-04-07
KR101551660B1 true KR101551660B1 (ko) 2015-09-18

Family

ID=53032919

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR1020150036087A KR101551660B1 (ko) 2015-03-16 2015-03-16 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법

Country Status (1)

Country Link
KR (1) KR101551660B1 (ko)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20190060414A (ko) 2017-11-24 2019-06-03 (주) 마이크로핏 나노패턴시트와 3차원 세포공배양분화용기를 이용한 연골세포 펠렛의 제조방법

Families Citing this family (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102019602B1 (ko) * 2018-06-01 2019-09-06 주종일 3 차원 세포 배양용 미세유체칩 및 이를 이용한 3 차원 세포 배양방법
KR102155868B1 (ko) * 2018-11-06 2020-09-15 건국대학교 글로컬산학협력단 3차원 세포 형성용 미세유체칩 이용 방법
CN110270388A (zh) * 2019-06-28 2019-09-24 华东理工大学 一种微流芯片及其应用
KR20230142083A (ko) 2022-03-31 2023-10-11 단국대학교 천안캠퍼스 산학협력단 세포 배양용 몰드, 상기 몰드를 이용한 세포 배양용 플레이트, 및 이의 제조방법

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2005507492A (ja) 2001-05-07 2005-03-17 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー マイクロウェル・アレイ内の物質のスクリーリングの方法
JP2013138629A (ja) 2011-12-28 2013-07-18 Dainippon Printing Co Ltd 表面親水性基材の製造方法

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2005507492A (ja) 2001-05-07 2005-03-17 マサチューセッツ インスティテュート オブ テクノロジー マイクロウェル・アレイ内の物質のスクリーリングの方法
JP2013138629A (ja) 2011-12-28 2013-07-18 Dainippon Printing Co Ltd 表面親水性基材の製造方法

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20190060414A (ko) 2017-11-24 2019-06-03 (주) 마이크로핏 나노패턴시트와 3차원 세포공배양분화용기를 이용한 연골세포 펠렛의 제조방법

Also Published As

Publication number Publication date
KR20150035957A (ko) 2015-04-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101544391B1 (ko) 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법
KR101551660B1 (ko) 마이크로 반구체 어레이 플레이트의 제조방법, 마이크로 반구체 어레이 플레이트를 포함하는 미세유체소자 및 이를 이용한 세포 집합체의 배양방법
Alessandri et al. A 3D printed microfluidic device for production of functionalized hydrogel microcapsules for culture and differentiation of human Neuronal Stem Cells (hNSC)
Velasco et al. Microtechnology-based methods for organoid models
Lin et al. Microfluidic cell trap array for controlled positioning of single cells on adhesive micropatterns
US5792653A (en) Substrate for cell structures
KR101282926B1 (ko) 표면장력을 이용한 반구형 마이크로웰의 제조 및 이를 이용한 세포 집합체의 형성
JP5578779B2 (ja) スフェロイド培養方法及びスフェロイド培養容器
CN106459925B (zh) 培养方法和细胞团
US20140093953A1 (en) Non-adherent cell support and manufacturing method
KR101201939B1 (ko) 마이크로유체 어레이 플랫폼 및 이의 제조방법
KR20190039283A (ko) 세포 조직의 제조 방법, 및 다공 필름
US20170198245A1 (en) Method for manufacturing micro-hemisphere array plate, microfluidic device comprising micro-hemisphere array plate, and method for culturing cell aggregate using same
US20200095526A1 (en) Production of cellular spheroids
TW202128977A (zh) 細胞層片製造裝置及細胞層片
JP6382938B2 (ja) 細胞培養治具およびこの細胞培養治具を用いた細胞培養方法
He et al. Fabrication of micro-cages and caged tumor spheroids for microfluidic chip-based assays
Zaidi et al. Microstencil-based spatial immobilization of individual cells for single cell analysis
CN112326952A (zh) 筛选细胞的方法、试剂盒及其用途
TWI588256B (zh) 單細胞擷取與培養之裝置與方法
Lee et al. Constrained spheroids/organoids in perfusion culture
Yang et al. A microfluidic chip for growth and characterization of adult rat hippocampal progenitor cell neurospheroids
CN104513798B (zh) 一种用于微量细胞培养的微流控芯片
KR101847303B1 (ko) 마이크로웰 서브스트레이트 및 이의 제작 방법
KR102137166B1 (ko) 세포배양 기판

Legal Events

Date Code Title Description
A107 Divisional application of patent
A201 Request for examination
E902 Notification of reason for refusal
E701 Decision to grant or registration of patent right
GRNT Written decision to grant
FPAY Annual fee payment

Payment date: 20180730

Year of fee payment: 4

FPAY Annual fee payment

Payment date: 20190930

Year of fee payment: 5