KR101051986B1

KR101051986B1 - 인간로타바이러스 및 이를 이용한 백신 조성물

Info

Publication number: KR101051986B1
Application number: KR1020060094867A
Authority: KR
Inventors: 김원용; 임인석; 레반판; 남선우; 윤정훈
Original assignee: 중앙대학교 산학협력단
Priority date: 2006-09-28
Filing date: 2006-09-28
Publication date: 2011-07-26
Also published as: WO2008039022A1; US7959932B2; KR20080029176A; US20100047278A1

Abstract

본 발명은 인간로타바이러스 및 이를 이용한 백신 조성물에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 서열번호 1 또는 서열번호 2로 기재되는 VP7 유전자와 서열번호 3 또는 서열번호 4로 기재되는 VP4 유전자를 갖는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스 및 이를 이용한 백신 조성물에 관한 것이다. 본 발명의 인간로타바이러스는 G12 혈청형, P[6] 유전자형 및 NSP4[B] 유전자형을 갖는다. 따라서, 본 발명의 로타바이러스에 특이적 항체는 G12 혈청형 인간로타바이러스의 진단에 유용하게 사용될 수 있으며, 본 발명에 따른 로타바이러스 백신 조성물은 G12형 인간로타바이러스에 의한 질병을 예방하는데 유용하게 사용될 수 있다.

인간로타바이러스, 백신, 항체, G12 혈청형

Description

인간로타바이러스 및 이를 이용한 백신 조성물{Human rotavirus and vaccine composition using the same}

도 1은 본 발명 로타바이러스의 P 유전자형을 결정하기 위하여, Gouvea 등에 기재된 세미네스티드 멀티플렉스 PCR 분석법(seminested multiplex PCR)으로 V4 유전자를 타이핑한 결과이다.

도 2는 본 발명 로타바이러스의 G 혈청형을 결정하기 위하여, Gouvea 등에 기재된 세미네스티드 멀티플렉스 PCR 분석법(seminested multiplex PCR)으로 V7 유전자를 타이핑한 결과이다.

도 3은 본 발명 로타바이러스의 VP7 유전자, VP4 유전자 및 NSP4 유전자를 RT-PCR로 증폭한 산물을 전기영동한 사진이다.

도 4는 본 발명 로타바이러스의 VP7 유전자를 여러 종류의 G 혈청형(G1 혈청형인 WA주, G2 혈청형인 DS-1주, G3 혈청형인 SA11주, G4 혈청형인 Cr117주, G5 혈청형인 OSU주, G6 혈청형인 IND주, G7 혈청형인 PO13주, G8 혈청형인 B37주, G9 혈청형인 USA주, G10 혈청형인 Mc35주, G11 혈청형인 YM주, G12 혈청형인 L26주 및 G13 혈청형인 L13주를 갖는 로타바이러스들의 VP7 유전자와 비교한 계통수상도(phylogenetic tree)이다.

도 5는 본 발명의 분변샘플에서 분리한 로타바이러스의 세포병변효과를 확인한 사진으로, A는 감염되지 않은 MA104 세포를 관찰한 것이고, B는 로타바이러스 감염 후 24시간 지난 다음 MA104 세포를 관찰한 것이다.

도 6은 본 발명 인간로타바이러스인 CAU 195/G12 및 CAU 214/G12와 G12 혈청형을 갖는 인간로타바이러스로서, L26(Taniguchi et al., J. Virol. 64:5640-5644.1990), 미국주인 Se585(Griffin et al., Virology 294:256-269, 2002), 태국주인 T152(Pongsuwanna et al, J Clin Microbiol. 40: 1390-1394, 2003), 일본주인 CP727 및 CP1030(Shinozaki et al., J Med Virol., 73: 612-616, 2004), 브라질주인 HC91 (Volotao et al., J Med Virol, 78:263-272), 돼지로타바이러스 G12인 인도주 RU172 (Ghosh et al., Arch Virol., 151:1329-1344, 2006)의 V7 유전자간의 유전적 상관관계를 행렬식 유사도로 나타낸 결과이다.

도 7은 도 6의 행렬식 유사도를 바탕으로 계통수상도를 나타낸 결과이다.

도 8은 본 발명 인간로타바이러스인 CAU 195/G12 및 CAU 214/G12와 외국의 로타바이러스들(WA주, DS-1주, SA11주, ST3주, OSU주, UK주, AU32주, B223주, YM주, L26주, H-2주, BAP-2주, CU-1주, FRV64주, AU1주, EW주, EHP주, Se585주, RU172주 및 ADRV주)의 NSP4 유전자간의 유전적 상관관계를 행렬식 유사도로 나타낸 결과이다.

도 9는 도 8의 행렬식 유사도를 바탕으로 계통수상도를 나타낸 결과이다.

본 발명은 인간로타바이러스 및 이를 이용한 백신 조성물에 관한 것으로서, 보다 상세하게는 서열번호 1 또는 서열번호 2로 기재되는 VP7 유전자와 서열번호 3 또는 서열번호 4로 기재되는 VP4 유전자를 갖는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스 및 이를 이용한 백신 조성물에 관한 것이다.

로타바이러스(Rotavirus)는 영유아에서 설사를 유발하는 주요 바이러스로서 전 세계적으로 매년 발생하는 약 1억2천5백명의 설사환자의 약 40%의 원인체이다 (World Health Organization: WHO WER 74:33-38, 1999). 미국 질병관리본부(CDC: Center for Disease Control and Prevention)의 보고에 따르면 세계적으로 매년 1억1천1백만 명이 감염되어 2천5백만 명이 병원에 내원하며 5세 이하 영유아의 44만 명이 사망한다고 하였으며, 미국에서 소요되는 의료비만도 1년에 1천만 달러에 이른다고 한다(Bresee J et al., Emerg Infect Dis 10:988-995, 2004). 따라서 세계보건기구(World Health Organization; WHO)는 개발도상국에서는 로타바이러스 발생을 감소시키고 선진국에서는 의료비의 절감을 목표로 로타바이러스에 대한 백신개발을 최우선 연구과제로 삼고 있다(Glass RI et al., Science 265:1389-1391, 1994). 국내에서도 로타바이러스는 영유아 설사증의 가장 흔한 원인체로 보고되었으며, 1990년에 급성장염으로 종합병원에 입원하는 영·유아 환자의 70%를 차지함이 보고된 이래(Kim KH et al., J Clin Microbiol 28: 2279-2284, 1990), 2000년에 47%, 2001년에 89%, 2002년에 90%, 2003년에 74%를 차지하여 그 중요성이 증가하고 있다(CDMR. Viral Agents of Gastroenteritis in 2003. http://dis. mohw.go.kr/cdmr/cdmr_view.asp, 2004).

레오비리디(Reoviridae)과에 속하는 로타바이러스는 피막이 없으며, 직경 75 nm의 정이십면체 형태로 3겹의 캡시드 단백, 즉 외피, 내피 및 핵심으로 되어 있다(Estes MK & Cohen J: Microbiol Rev 53: 410-449, 1989). 게놈은 11개 분절의 dsRNA로서 구성되며 각각의 분절에는 6개의 구조단백 (VP1, VP2, VP3, VP4, VP6, VP7)과 5개의 비구조단백 (NSP1～5)의 유전정보가 존재한다(Estes MK, J Infect Dis 174 (Suppl. 1):S37-S46, 1996). 로타바이러스의 외피는 VP4와 VP7로 구성되며 바이러스의 병원성, 면역원성 및 바이러스의 세포 부착과 침습에 관여한다. 내피의 VP6는 바이러스를 구성하는 주요 구조 단백으로 핵심을 둘러싸고 있으며 바이러스 공통 항원이므로 현재 진단에 이용되고 있다(Kohli E et al., Virology 194:110-116, 1993).

로타바이러스는 VP6 단백질의 항원성에 따라 A군부터 G군까지 7개 군으로 분류되며, 전 세계적으로 가장 흔한 A군은 다시 면역원성 단백질인 VP7에 의한 G형(Glycoprotein type)과 VP4에 의한 P형(Protease-sensitive type)으로 재분류된다(Gentsch JR et al., J Infect Dis 174(suppl. 1: S30-S36, 1996). 현재까지 15종의 G 혈청형과 26종의 P 유전자형이 규명되었으며, 사람에서는 G1～G4, G6, G8～G10과 G12 등 9개 혈청형과 P[3], P[4], P[6], P[8]～P[11]과 P[14] 등 8개 유전자 형이 감염을 일으킨다(Rahman M et al., J Clin Virol 33:1-6, 2005; Santos N & Hoshino Y: Rev Med Virol 15: 29-56, 2004). 전 세계적으로 사람에서는 G1P[8], G2P[4], G3P[8] 및 G4P[8] 조합형이 가장 높은 빈도로 나타난다.

로타바이러스는 각 혈청형에 따라 서로 교차방어가 되지 않는 특징으로 인하여 현재까지 규명된 모든 혈청형에 대한 감염을 효과적으로 방어하기 위한 백신 개발은 매우 어려운 실정이다(Glass RI et al., J Infect Dis 192 Suppl 1:S160-166, 2005). 현재까지 개발된 경구용 약독화 생백신(소, UK, WC3; 원숭이, SA11, MMU18006; 사람, M37)과 동물-사람 재조합 백신은 아직까지 다른 혈청형의 감염에 대하여 충분한 방어능을 보여주지 못하고 있다(Anderson EL et al., J Infect Dis 153:823-831, 1986; Bernstein DI et al., JAMA 273:1191-1196, 1995; Clark HF et al., Am J Dis Child 140:350-356, 1986; Conner ME et al., Curr Top Microbiol Immunol 105:253, 1994; De Mol P. et al., Lancet II 108. 1986; Flores J, et al., J Clin Microbiol 27: 512-518, 1988; Kapikian AZ et al., Adv Exp Med Biol 257:67, 1990; Rennels MB et al., Pediatrics 97:7-13, 1996; Vesikari T, Vaccine 11:255-261, 1993). 최근에 미국 와이어스-아이어스트(Wyeth-Ayerst)사에서 개발한 Rotashield® 은 세계적으로 가장 높은 발생률을 보이고 있는 G 혈청형 (G1～G4)을 혼합한 4가 약독화 생백신으로 1998년 미국 FDA의 승인을 받아 2, 4, 6개월에 사용하는 기본 접종에 포함되었으나 15례의 장 중첩 환자가 발생하여 사용이 중단된 상태이다(Murphy TV et al., N Engl J Med 344:564-572, 2001). 또한 최 근 세계적으로 사람에서 흔하지 않은 비정형 혈청형의 발생도 눈에 띄게 발생이 증가하고 있어 G12 혈청형이 태국(Pongsuwanna Y et al., J Clin Microbiol 40:1390-1394. 2002), 미국(Griffin DD et al., Virology 294:256-269, 2002), 인도 (Das S et al., J Clin Microbiol 41:2760-2762, 2003), 일본(Shinozaki K et al., J Med Virol 73:612-616, 2004), 아르헨티나 및 한국(Santos N & Hoshino Y, Rev Med Virol 15:29-56, 2004)에서 보고되었다. 그러나 이들 대부분은 분변으로부터 RT-PCR에 의해 G12 유전자만을 검출한 것으로서, 현재까지 분리된 G12 바이러스로서 사람으로부터 분리된 것은 1990년에 일본에서 분리된 G12의 L26, 2002년에 미국에서 분리된 G12P2A[6]의 Se585, 2003년에 태국에서 분리된 G12P[9]의 T152, 2004년 일본에서 분리된 G12P[9]의 CP727와 CP1030 및 2006년 브라질에서 분리된 G12P[9]의 HC91이 있고, 돼지로부터 분리된 것은 2006년 인도에서 분리된 G12P[7]의 RU172 가 유일하며, 우리나라에서 분리된 G12형 인간로타바이러스는 전무한 실정이다.

이상에서 살펴본 바와 같이, 로타바이러스에 의한 질병은 우리나라에서도 많이 발생되며, 비정형 혈청형의 발생도 증가함에 따라 우리나라 실정에 맞는 백신주에 대한 항원개발이 요구되고 있다. 이에 본 발명자들은 로타바이러스 백신 개발에 이용할 목적으로 인간로타바이러스 CAU 195/G12주와 CAU 214/G12주를 분리하였으며, 이를 이용하여 로타바이러스 백신 조성물을 제조함으로써 본 발명을 완성하였다.

따라서, 본 발명의 목적은 서열번호 1 또는 서열번호 2로 기재되는 VP7 유전자와 서열번호 3 또는 서열번호 4로 기재되는 VP4 유전자를 갖는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스를 분리하여 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 인간로타바이러스에 특이적인 항체 및 이를 포함하는 인간로타바이러스에 의한 질병의 진단용 조성물을 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 인간로타바이러스에 대한 백신 조성물 및 그 제조방법을 제공하는 것이다.

상기와 같은 목적을 달성하기 위하여,

본 발명은 서열번호 1 또는 서열번호 2로 기재되는 VP7 유전자와 서열번호 3 또는 서열번호 4로 기재되는 VP4 유전자를 갖는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스를 분리하여 제공한다.

본 발명의 또한, 상기 인간로타바이러스에 특이적인 항체 및 이를 포함하는 인간로타바이러스에 의한 질병의 진단용 조성물을 제공한다.

본 발명은 또한, 상기 인간로타바이러스에 대한 백신 조성물 및 그 제조방법을 제공한다.

이하, 본 발명을 상세히 설명한다.

본 발명은 서열번호 1 또는 서열번호 2로 기재되는 VP7 유전자와 서열번호 3 또는 서열번호 4로 기재되는 VP4 유전자를 갖는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스를 제공한다.

로타바이러스의 VP7 유전자와 VP4 유전자는 로타바이러스의 외피를 구성하는 유전자로써, 바이러스의 병원성, 면역원성 및 바이러스의 세포 부착와 침습에 관여한다. VP7 유전자에 의해 로타바이러스의 G 혈청형을 분류할 수 있고, VP4 유전자에 의해 P 유전자형을 분류할 수 있다.

본 발명의 일실시예에서는 로타바이러스 감염증세를 나타내는 환아들의 분변을 시료로 사용하여 세미네스티드 멀티플렉스 PCR(seminested multiplex PCR)에 의해 로타바이러스들의 VP4 유전자를 분석한 결과, 본 발명의 로타바이러스의 P 유전자형이 P[6]임을 알 수 있었으며, 로타바이러스들의 V7 유전자의 염기서열을 분석하여 G 혈청형은 G12형임을 알 수 있었다. 본 발명에 따른 인간로타바이러스들의 VP7 유전자의 염기서열을 서열번호 1 내지 서열번호 2로 기재하였으며, VP4 유전자의 염기서열을 서열번호 3 내지 서열번호 4로 기재하였다.

또한 본 발명에 있어서, 상기 인간로타바이러스는 서열번호 5 또는 서열번호 6으로 기재되는 NSP4 유전자를 가짐을 그 특징으로 한다.

상기 NSP4 유전자는 세균의 장관독소처럼 장관 내에 존재하는 특이 수용체와 결합하여 cAMP 또는 cGMP를 증가시키고 사이클릭 뉴클레오티드(cyclic nucleotide) 신호 전달경로를 활성화하여 Cl-의 분비를 증가시키는 반면 Na+와 물의 흡수는 감소시키는 기전으로 설사를 일으켜 로타바이러스의 병원성에 중요한 역할을 한다. 따라서 로타바이러스의 병원성을 판별하기 위해서는 NSP4 유전자의 특성을 규명하여야 한다. 현재, NSP 4 유전자는 그 유전자 서열에 의해 NPS4[A], NPS4[B], NPS4[C] 및 NPS4[D]의 유전자형으로 분류할 수 있다.

본 발명의 일실시예에서는 인간로타바이러스들의 NSP4 유전자의 염기서열을 분석하였으며, 그 결과, 본 발명의 로타바이러스들의 NSP4 유전자형이 NSP4[B]임을 알 수 있었다. 본 발명에 따른 인간로타바이러스의 NSP4 유전자의 염기서열번호 5 내지 6으로 기재하였다.

본 발명자는 상기와 같은 특성을 가지는 인간로타바이러스를 분리,동정하였으며, 이를 CAU 195와 CAU 214로 명명하고, 기탁기관에 CAU 195/G12(KCTC 10988 BP), CAU 214/G12(KCTC 10989BP)로 기탁하였다.

본 발명은 또한, 인간로타바이러스에 대해 특이적인 다클로날 항체를 제공한다.

본 발명의 다클로날 항체를 제조하기 위해 상기에서 얻어진 로타바이러스인 CAU 195 또는 CAU 214를 항원으로 하여 동물을 면역화시킨다. 상기 항원은 통상의 면역방법에 따라 복강 내, 근육 내, 안내 또는 피하 주사하여 투여한다. 필요한 경우, 여러 기술을 사용하여 단백질에 의해 발생되는 결과적인 면역 반응을 증가시키 고, 보다 큰 항체 반응성을 전개시킬 수 있다. 예를 들어, 본 발명의 항원 단백질에 프로인트(Freund)의 완전 보조제 또는 불완전 보조제를 사용하여 그 면역성을 증가시킬 수 있다.

본 발명의 다클로날 항체는 혈청형이 G12인 인간로타바이러스에 대해 특이적이므로, 혈청형이 G12 인간로타바이러스를 진단 및 검출하는데 유용하게 사용될 수 있다.

나아가, 본 발명은 본 발명의 다클로날 항체를 포함하는 인간로타바이러스에 의한 질병의 진단용 조성물을 제공한다.

본 발명에 따른 상기 진단용 조성물은 본 발명의 다클로날 항체 및 면역학적 분석에 사용되는 시약이 포함될 수 있다. 면역학적 분석에 사용되는 시약으로는 항원-항체 결합을 원리로 하는 공지의 모든 정량분석방법에 사용되는 적합한 담체, 검출 가능한 신호를 생성할 수 있는 표지, 용해제, 세정제가 포함된다. 상기 정량분석방법의 예로는 이에 한정되지는 않으나, 면역블롯팅, 면역침전법, 효소면역분석법, 단백질 칩, 래피트 어세이 및 마이크로 어레이 방법 등이 있다.

상기에서 적합한 담체로는 이에 한정되지는 않으나 가용성 담체, 예컨대 당 분야에 공지된 생리학적으로 허용되는 완충액들 중 어느 한 가지(예를 들어, PBS) 또는 불용성 담체, 예컨대 폴리스틸렌, 폴리에틸렌, 폴리프로필렌, 폴리에스테르, 폴리아크릴로니트릴, 불소수지, 가교덱스트란, 폴리사카라이드, 유리, 금속, 아가로스 및 이들의 조합일 수 있다.

검출 가능한 신호를 생성할 수 있는 표지로는 효소, 형광물질, 발광물질 및 방사성 물질 등을 사용할 수 있다. 효소로는 과산화효소(peroxidase), 알카라인 포스파타제(alkaline phosphatase), β-D-갈락토시다아제, 글루코스 옥시다아제, 말레이트 디하이드로게나아제, 글루코스-6-인산디하이드로게나아제, 인버타아제 등을 사용할 수 있으며, 형광물질로는 플루오르신 이소티옥시아네이트(fluorescein isothiocyanate), 피코빌린(phycobilin) 단백질, 로다민(rhodamine), 피코에리트린(phycoerythrin), 피코시아닌(phycocyanin) 및 오르토프탈릭 알데히드(orthophthalic aldehyde)등을 사용할 수 있다. 발광물질로는 이소루미놀(isolumino), 루시게닌(lucigenin) 등을 사용할 수 있으며, 방사성 물질로는 131I, 14C, 3H 등을 사용할 수 있다. 그러나, 상기 예시된 것들 외에 면역학적 분석법에 사용할 수 있는 것이라면 어느 것이라도 사용할 수 있다.

본 발명은 또한, 혈청형 G12의 인간로타바이러스에 대한 중화 항체의 형성을 자극할 수 있는 능력을 가지는 것을 특징으로 하는 백신 조성물을 제공한다. 보다 구체적으로, 약독화된 본 발명의 인간로타바이러스 생균주 또는 비활화된 본 발명의 인간로타바이러스 사균주를 포함하고, 약학적으로 허용된 담체를 포함하며, 혈청형 G12의 인간로타바이러스에 대한 중화 항체의 형성을 자극할 수 있는 능력을 가지는 것을 특징으로 하는 백신 조성물을 제공한다.

보다 구체적으로, 본 발명의 바이러스는 로타바이러스에 의한 질병을 예방하기 위한 백신 조성물로 제조될 수 있다. 예를 들어, 본 발명의 바이러스, 이와 특 성이 실질적으로 동일 또는 유사한 바이러스, 또는 이의 변이주(variant)를 비활화시킨 다음 정제하여 사균 백신(killed vaccine)으로 제조할 수도 있으며, 상기 바이러스 또는 변이주를 세포나 동물에 계대 배양시켜 약독화된 생균 백신(live attenuated vaccine)으로 유도하여 제조할 수 있고, 상기 바이러스 또는 변이주의 항원 단백질을 코딩하는 바이러스 유전자를 공지된 유전자 재조합법에 따라 조작하여 항원 단백질을 대량생산하여 백신으로 제조할 수 있으며, 재조합된 유전자 자체를 백신(재조합 DNA 백신)으로 사용할 수도 있다. 또한 상기 바이러스 또는 바이러스의 변이주 항원 단백질을 아미노산 서열 분석 결과를 토대로 화학적으로 합성하거나 특정 모티프(motif)만을 합성하여 합성 백신(synthetic vaccine)으로 사용할 수도 있다. 한편, 약독화시키거나 비활성화된 균주 형태로 투여할 경우, 백신은 경구 또는 비강내로 투여할 수 있는데, 약독화시킨 생균주의 경우 경구 또는 비강 경로에 의해 투여하는 것이 바람직하며, 비활성화 균주의 경우 근육내 주사와 같은 비경구적 주입 방법으로 투여하는 것이 바람직하다. 상기 백신 조성물은 옥배유, 올리브유, 대두유, 홍화유,면실유, 땅콩유, 호마유, 해바라기유 등의 식용유; 미네랄 오일; 스쿠알렌; 스쿠알란; 대구 간유; 모노-, 디- 및 트리-글리세라이드 및 이들의 혼합물 등의 주사제 용액에 분산시켜 주사 투여할 수 있다. 또한 필요에 따라 주사제 용액에는 분산제나 방부제를 추가로 포함할 수 있다.

본 발명의 백신 조성물의 총 유효량은 단일 투여량(single dose)으로 투여될 수 있으며, 다중 투여량(multiple dose)이 장기간 투여되는 분할 치료 방법(fractionated treatment protocol)에 의해 투여될 수 있다. 또한, 질병의 정도에 따라 유효성분의 함량을 달리할 수 있으나, 통상적으로 1회 투여시 (1x10²) pfu 내지 (1x10⁴)pfu 유효 용량으로 하루에 수차례 반복 투여될 수 있다. 그러나, 상기 백신 조성물의 농도는 약의 투여 경로 및 치료 횟수뿐만 아니라 환자의 연령, 체중, 건강 상태, 성별, 질병의 중증도, 식이 및 배설율 등 다양한 요인들을 고려하여 환자에 대한 유효 투여량이 결정되는 것이므로, 이러한 점을 고려할 때 당분야의 통상적인 지식을 가진 자라면 상기 백신 조성물의 로타바이러스에 의한 질병의 치료 또는 예방제로서의 특정한 용도에 따른 적절한 유효 투여량을 결정할 수 있을 것이다. 본 발명에 따른 백신 조성물은 본 발명에 의한 효과를 보이는 한 그 제형, 투여 경로 및 투여 방법에 특별히 제한되지 아니한다.

본 발명은 또한, 인간로타바이러스 백신 제조방법을 제공한다.

보다 구체적으로,

a) 서열번호 1 또는 서열번호 2로 기재되는 VP7 유전자와 서열번호 3 또는 서열번호 4로 기재되는 VP4 유전자를 갖는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스를 숙주세포에서 증식시키는 단계;

b) 상기 a)단계에서 증식된 인간로타바이러스를 약독화시키거나 비활화 시키는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스 백신 제조방법을 제공한다.

본 발명의 백신 제조방법은, 로타바이러스를 숙주세포에서 증식시킨 다음 원 심분리로 수득한 배양 상층액에 포르말린(formalin)을 처리한 후 포르말린을 제거하고, 농축하여 열처리하는 것이 바람직하다. 상기 포르말린 처리는 백신제조과정 중 로타바이러스의 환경오염위험을 방지하기 위하여 실시하는 것으로 바이러스 방출을 제한한 P3 조건에서는 실시하지 않아도 무방하다. 따라서 본 발명의 비활화 방법은 열처리가 가장 바람직하다.

이하, 실시예를 통하여 본 발명을 더욱 상세히 설명하기로 한다. 이들 실시예는 단지 본 발명을 예시하기 위한 것이므로, 본 발명의 범위가 이들 실시예에 의해 제한되는 것으로 해석되지는 않는다.

< 실시예 1>

인간로타바이러스의 동정

<1-1> 로타바이러스 감염 분변시료에서 로타바이러스의 P 유전자형 규명

2003년 12월부터 2005년 12월까지 중앙대학교 용산병원에 로타바이러스 감염증으로 내원한 환아들로부터 총 452개의 분변을 수집하여 Gouvea 등에 기재된 세미네스티트 멀티플레스 PCR 분석법(seminested multiplex PCR)으로 로타바이러스의 P 유전자형과 G 혈청형을 규명하였다(Gouvea et al., J Clin Microbiol, 28:276-282, 1990; Gouvea et al., J Clin Microbiol, 32:1338-1340, 1994). 상기 Gouvea 등에 기재된 방법은 G형으로는 G1, G2, G3, G4, G8, G9을 검출할 수 있고, P형으로는 P[4], P[6], P[8], P[9] 만이 검출가능한 것으로 알려져 있다.

상기 세미네스티트 멀티플레스 PCR 분석법에 VP4 유전자를 분석한 결과, 도 1에 나타난 바와 같이 로타바이러스의 P 유전자형이 P[6]로 결정되었으며, VP7 유전자를 분석한 결과, 도 2에 나타난 바와 같이 G 혈청형은 결정되지 않은 바이러스 2종류가 검출되었다.

<1-2> G7 유전자의 염기서열 분석에 의한 로타바이러스 G 혈청형 규명

상기 <1-1>에서 G 혈청형이 결정되지 않은 2종류의 바이러스의 G 혈청형을 결정하기 위하여, VP7 유전자를 RT-PCR로 증폭한 후 염기서열을 분석하였다. 한편, 바이러스의 특성을 규명하기 위하여 VP4 유전자, NSP4 유전자도 RT-PCR로 증폭한 다음 염기서열을 분석하였다.

먼저, 분변시료로부터 TRI Reagent (Molecular Research Center, Cincinnati, USA)를 사용하여 추출한 RNA 20 ng에 7% DMSO를 가하고 100℃에서 5분간 가열하여 변성화한 후 RT-PCR 반응액 (10 x Taq buffer, 0.2 mM dNTPs, 1.5 mM MgCl2, 1 μM 정방향 프라이머, 1 μM 역방향 프라이머, 4 U AMV 역전사효소)과 2.5 U Taq 폴리머라제(Roches, Indianapolis, USA) 11 μM를 가하고 42℃에서 30분간 반응하여 VP7, VP4 및 NSP 4 유전자의 cDNA를 합성한 다음 DNA thermal cycler (Model 480, Perkin-Elmer, Norwalk, USA)에서 94℃ 1분, 42℃ 2분, 72℃ 1분간의 반응을 25회 반복하고 마지막으로 72℃에서 7분간 반응하였다. 증폭된 VP7, VP4 및 NSP 4 유전자는 1.5% SeaKem LE 아가로즈 겔(FMC Bioproducts, Rockland, USA)에서 0.5 x TAE 버퍼 (40 mM Tris-acetate, 2 mM EDTA, pH 8.0)를 이용하여 100 V로 1시 간 전기영동하였다(도 3). 각 프라이머의 종류와 염기서열은 하기 표 1과 같다.

한편, 염기서열의 분석을 위하여 상기 증폭한 각각의 VP 7, VP 4 및 NSP 4 DNA 50 ng을 BigDye terminatior cycle sequencing kit (Applied Biosystems, Norwalk, USA)를 사용하여 반응시킨 후 ABI PRISM 310 Genetic Analyzer (Perkin-Elmer, Norwalk, USA)에서 반응된 DNA를 전개하였다. VP7 유전자의 염기서열은 ABI PRISM DNA Sequencing analysis (version 3.3) software (Perkin-Elmer, Norwalk, USA)로 분석하였다.

증폭부위		프라이머 서열	위치	서열번호
VP7	정방향	GGCTTTAAAGAGAGAATTTCCGTCTGG	1-28	7
VP7	역방향	GGTCACATCATACAATTCTAATCTAAG	1062-1036	8
VP4	정방향	TGGCTTCGCCATTTTATAGACA	11-32	9
VP4	역방향	ATTTCGGACCATTTATAACC	887-868	10
NSP4	정방향	TGGCTTCGCCATTTTATAGACA	11-32	11
NSP4	역방향	GGTCACACTAAGACCATTCC	750-730	12

상기에서 분석된 2종류의 인간로타바이러스들의 VP 7 유전자 염기서열을 여러 종류의 G 혈청형(G1 혈청형인 WA주, G2 혈청형인 DS-1주, G3 혈청형인 SA11주, G4 혈청형인 Cr117주, G5 혈청형인 OSU주, G6 혈청형인 IND주, G7 혈청형인 PO13주, G8 혈청형인 B37주, G9 혈청형인 USA주, G10 혈청형인 Mc35주, G11 혈청형인 YM주, G12 혈청형인 L26주 및 G13 혈청형인 L13주)을 갖는 인간로타바이러스들과 비교해 본 결과 본 발명의 로타바이러스들의 G 혈청형은 G12로 판명되었다(도 4).

한편, 상기 분석된 2종류 바이러스의 VP 7 유전자 염기서열을 서열번호 1 내지 서열번호 2로, VP 4 유전자를 서열번호 3 내지 서열번호 4로, NSP 4 유전자의 염기서열을 서열번호 5 내지 6으로 표시하였다.

< 실시예 2>

G12 혈청형 인간로타바이러스 분리

상기에서 G12 혈청형 및 P[6] 유전자형을 갖는 것으로 나타난 2 종류의 로타바이러스를 각각 분리, 정제하였다. 바이러스의 분리 및 정제는 Nakagomi 등의 방법(Nakagomi et al., J. Arch. Virol. 127:365-371, 1992)에 따라 분변재료를 5배의 PBS에 현탁하고 0.22 μm 필터를 사용하여 여과한 다음, 0.5% 판크레아틴이 첨가된 MA104 세포(미국 오하이오주립대 Linda J Saif 교수로부터 입수)에 감염시키고 5% CO2 배양기에서 세포병변효과가 나타날 때까지 회전 배양하였다. 증식된 바이러스는 2-3회 계대한 다음 RT-PCR로 확인하였다. 도 5는 본 발명의 분변에서 분리한 로타바이러스의 세포병변효과를 확인한 사진이다.

상기의 방법으로 분리된 인간로타바이러스를 CAU 195와 CAU 214로 명명하였으며, 상기 로타바이러스는 기탁기관에 CAU 195/G12(KCTC 10988BP)와 CAU 214/G12(KCTC 10989BP)로 기탁하였다.

< 실시예 3>

인간로타바이러스들간의 유전적 상관관계조사

<3-1> G12 형 인간로타바이러스들의 VP7 유전자간 유전적 상관관계조사

상기 실시예 2에서 분리한 CAU 195와 CAU 214의 아그룹 결정을 위하여, 상기 실시예<1-2>에서 분석한 VP7 유전자의 염기서열을 Clustal W (1.7) software (Thompson et al ., Nucleic Acids Res 22: 4673-4680, 1994)을 이용하여 미국 NCBI Genbank에 보고된 외국의 G12형 로타바이러스로서 일본 분리주 L26, CP727 및 CP1030, 미국 분리주 Se585, 태국 분리주 T152, 브라질 분리주 HC91 및 인도 분리주 RU172의 VP7 유전자와 다중정렬하고 행렬식 유사도를 구하였다. 행렬식 유사도로부터 계통수상도(phylogenetic trees)의 작성은 neighbor-joining method(Saitou and Nei, Mol Biol Evo 4: 406-425, 1987)를 이용하였다.

본 발명의 G12 혈청형을 갖는 로타바이러스 CAU 195 및 CAU 214와 외국 G12 로타바이러스들 간의 유전적 상관관계를 조사한 결과, 도 7에 나타난 바와 같이, 미국 분리주인 Se585 (USA)와 유전적으로 가장 밀접함을 보였으며, 오히려 한국과 근접한 일본에서 분리된 L26 (M58290)과 가장 유전적인 상관성이 떨어지는 것으로 나타났다. 또한, 각 바이러스주간의 유사행렬도를 분석한 결과 도 6에 나타난 바와 같이, CAU 195와 CAU 214는 서로 99.5%의 매우 높은 상동성을 보였다. 외국의 다른 G12 바이러스들과 비교할 때 모두 90% 이상의 상동성을 보였으며 특히, 미국 분리주인 Se585 (AJ31174)와 98.6%와 99.2%의 가장 높은 상동성을 나타내었다. 그러나 일본 분리주인 L26 (M58290)과는 89.5%와 90.3%의 가장 낮은 상동성을 보였다.

<3-2> 인간로타바이러스들의 NSP4 유전자간 유전적 상관관계조사

상기 실시예 <3-1>과 동일한 방법으로 본 발명의 G12 혈청형을 갖는 로타바이러스 CAU 195 및 CAU 214와 외국 로타바이러스들의 NSP4 유전자간의 유전적 상관관계를 조사하였다.

그 결과, 도 8 및 도 9에 나타난 바와 같이, CAU 195 및 CAU 214의 NSP4 유전자는 NSP4[B] 유전자형으로 판별되었다. 이는 VP7 유전자의 염기서열 분석에서 가장 높은 상동성을 나타내었던 미국 분리주 Se585의 NSP4 유전자가 NSP4[A] 유전자형 갖는 것과 구분되는 결과이다.

< 실시예 4>

G12 혈청형 로타바이러스 백신제조

MA104 세포를 T-175 플라스크에 계대배양하였다. 또한 로타바이러스 CAU 214에 감염된 세포를 감염되지 않은 세포와 1;5의 비율로 혼합하여 배양하고, 세포의 변성이 70 내지 80 % 발생할 때 배양상층액을 취하여 5,000 rpm에서 1시간 원심분리하였다. 원심상층액에 포르말린을 0.01 부피%로 첨가한 다음 37 ℃인 항온수조에서 10시간 반응시켜 비활화하였다. 상기 용액은 분자량(MW)100,000의 농축기에 농축하여 포르말린을 제거하였다. 40 ml 원심튜브의 아랫부분에 30 %의 슈크로즈(Sucrose) 20 ml을 넣고, 원심튜브의 윗부분에 농축액을 넣은 다음 100,000 G로 10시간 원심하여 슈크로즈를 통과한 침전물만을 수득하였다. 침전물에 pH 7.0의 인산완충용액을 첨가하여 항원 성분을 용출시키고, 단백질함량을 표준 알부민 단백질을 이용하여 결정하였으며, 인산완충용액으로 단백질함량을 50 ug/ml으로 조절하였다. 그 후 60 ℃에서 10시간 반응시켰다. 열처리가 완료된 용액을 0.22 um 여과지로 제균여과한 용액을 원액으로 하였다. 원액을 최종 단백농도 10 ug/ml 되도록 인산완충용액으로 희석하여 최종백신을 제조하였다. 상기 백신의 pH 는 7.05이였다.

< 실시예 5>

백신효과실험

실시예 4의 백신 0.5 ml을 4-5주령의 마우스에 4단계 희석 접종하고, 접종 1 주일 후에 백신 0.5 ml을 2차 접종하였다. 2차 접종 1주일 후에 마우스의 혈청으로부터 중화항체가를 측정하였다. 마우스의 심장에서 채혈한 혈액을 상온에서 1시간 반응시킨 다음 냉장고에서 24시간 둔 후 용출액만을 취하여 3000 rpm에서 10분 원심분리하였고, 그 상층액을 검체로 사용하였다. 미리 준비한 100 pfu의 로타바이러스와 검체를 반응시킨 후 MA104 세포에 접종하여 바이러스가 중화되었는지 여부를 바이러스만 접종한 대조세포와 비교, 관찰하였다. 항체가는 G12 로타바이러스에 대해 16배(ED 50 : 0.06), G4가 12배(ED 50 : 0.08)로 나타나 실시예 4의 백신이 효과적으로 로타바이러스에 대한 중화항체를 형성함을 알 수 있었다.

< 실시예 6>

인간로타바이러스에 대해 특이적인 다클로날 항체의 제조

MA104세포에서 배양한 로타바이러스 CAU 214를 15, 30 및 60% 슈크로즈(Sucrose) 밀도구배에서 35,000 rpm으로 2시간 동안 초원심하여 정제한 후 1 ml (100 pfu)을 프로인트(Freund)의 완전 보조제와 동량 혼합하여 4주령의 토끼 대퇴부 근육에 0.5 ml 근육주사 하였다. 2주일 후 1 ml (100 pfu)의 바이러스와 동량의 프로인트(Freund)의 불완전 보조제 혼합하여 추가접종하고 다시 2주일 후 동일한 방법으로 3차 접종하였다. 3차 접종 2주일 후에 토끼의 혈청으로부터 항체가를 측정하였다.

이상 살펴본 바와 같이, 본 발명에서는 VP7 혈청형이 G12이며, VP4 유전자형이 P[6]이고, NSP4 유전자형이 NSP4[B]인 인간로타바이러스를 분리하였으며, 이를 이용하여 로타바이러스 백신 및 이에 특이적 항체를 제조하였다. 본 발명의 로타바이러스에 특이적 항체는 로타바이러스의 진단에 유용하게 사용될 수 있으며, 로타바이러스 백신 조성물은 로타바이러스에 의한 질병의 예방제로 유용하게 사용될 수 있다.

<110> Chung-Ang University Industry-Academy Cooperation Foundation <120> Human rotavirus and vaccine composition using the same <160> 12 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 977 <212> DNA <213> human rotavirus <220> <221> gene <222> (1)..(977) <223> VP7 gene of human rotavirus CAU 195 strain <400> 1 atggtattga atataccaca attctaacct ttttgatatc aattattcta ttaaattata 60 tattaaaatc aataactaat ataatggact ttatcatata tcggttttta ctaatagttg 120 tcgtcatact gccatttatt aaagctcaaa attatggaat aaatcttcca ataacaggtt 180 ctatggatac cgcatatgca aactctacac aacaagagaa ttttatgact tccactttat 240 gcttatatta tccaagttca gtcacgactg aaataactga ccctgattgg acgagcacac 300 tgtcacaact tttcttgact aaaggatggc cgacaaattc cgtctacttc aagagttatg 360 ctgatatatc gtccttctct gtagatccgc agttatattg tgattacaat attgtattaa 420 tacagtacca aaattcatta gcgttagatg tctcagaact tgctgattta attttaaatg 480 aatggttatg taatccgatg gacgtaacgt tgtactatta tcaacaaaca gatgaagcga 540 ataaatggat atcaatggga gaatcatgta cagttaaagt atgtccctta aatacacaaa 600 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agttgaattg 420 cttaaacgta tacatgacaa tttaataact agaccagctg atattgtaga tatgacgaag 480 gaatttaatc agaagaatat aaaaacgctg gatgagtggg agagcggaaa aaatccatat 540 gaaccgatag aagtgactgc atctatgtga gaggttgagt tgccgtcgtc tgtcttcgga 600 agcggcggaa ctctttaccg caagccccat tggacctgat gattgactga gaagccacag 660 tcaatcatat cgcgtgtggc tcagccttaa tcccgtttga ccaatccagc gaatgttgga 720 cgttaatgga aggaatggtc taa 743 <210> 6 <211> 732 <212> DNA <213> human rotavirus <220> <221> gene <222> (1)..(732) <223> NSP 4 gene of human rotavirus CAU 214 strain <400> 6 tttaaaaagt ctgttccgag agagcgcgtg cggaaagatg gataagcttg ccgacctcaa 60 ctacacattg agtgtaatca ctttaatgaa tgacacattg cagtctataa ttcaggaccc 120 tggaatggcg tattttccat atattgcatc tgttctaaca gttttgttca cattacataa 180 agcttcaatt ccaacaatga aaatagcatt aaaaacgtca aaatgttcat acaaagtgat 240 caagtattgt atagtcacaa ttattaatac tcttttaaaa ttggcaggat ataaagaaca 300 agttactact aaagacgaaa ttgagcgaca gatggataga attgtaaaag agatgagacg 360 tcagctggaa atgattgata aattaactac tcgtgaaatt gaacaagttg aattgcttaa 420 acgtatacat gacaatttaa taactagacc agctgatatt gtagatatga cgaaggaatt 480 taatcagaag aatataaaaa cgctggatga gtgggagagc ggaaaaaatc catatgaacc 540 gatagaagtg actgcatcta tgtgagaggt tgagttgccg tcgtctgtct tcggaagcgg 600 ctggctctct ttaccgcaag ccccattgga cctgatgatt gactgagaag ccacagtcaa 660 tcatatcgcg tgtggctcag ccttaatccc gtttgaccaa tccagcgaat gttggacgtt 720 aatggaagga at 732 <210> 7 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward primer for VP7 gene <400> 7 ggctttaaag agagaatttc cgtctgg 27 <210> 8 <211> 27 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse primer for VP7 gene <400> 8 ggtcacatca tacaattcta atctaag 27 <210> 9 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward primer for VP4 gene <400> 9 tggcttcgcc attttataga ca 22 <210> 10 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse primer for VP4 gene <400> 10 atttcggacc atttataacc 20 <210> 11 <211> 22 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Forward primer for NSP4 gene <400> 11 tggcttcgcc attttataga ca 22 <210> 12 <211> 20 <212> DNA <213> Artificial Sequence <220> <223> Reverse primer for NSP 4 gene <400> 12 ggtcacacta agaccattcc 20

Claims

서열번호 1의 VP7 유전자 및 서열번호 3의 VP4 유전자를 갖고, KCTC 10988BP의 기탁번호를 가지는 인간로타바이러스 CAU 195.
삭제
서열번호 2의 VP7 유전자 및 서열번호 4의 VP4 유전자를 갖고, KCTC 10989BP의 기탁번호를 가지는 인간로타바이러스 CAU 214.
제1항 또는 제3항의 인간로타바이러스에 대해 특이적인 다클로날 항체.
제4항의 다클로날 항체를 포함하는 인간로타바이러스에 의한 질병의 진단용 조성물.
약독화된 제1항 또는 제3항의 인간로타바이러스 생균주 또는 비활화된 제1항 또는 제3항의 인간로타바이러스 사균주를 포함하고, 약학적으로 허용된 담체를 포함하며, 혈청형 G12의 인간로타바이러스에 대한 중화 항체의 형성을 자극할 수 있는 능력을 가지는 것을 특징으로 하는 백신 조성물.
a) 제1항 또는 제3항의 인간로타바이러스를 숙주세포에서 증식시키는 단계;

b) 상기 a)단계에서 증식된 인간로타바이러스를 약독화시키거나 비활화 시키는 단계를 포함하는 것을 특징으로 하는 인간로타바이러스 백신 제조방법.