KR100454064B1 - 인간 원암 유전자 및 이에 의해 코드되는 단백질 - Google Patents

Abstract

본 발명은 신규 원암 유전자 및 이에 의해 코드되는 단백질에 관한 것으로, 본 발명의 원암 유전자는 기존의 보고된 원암 유전자와는 전혀 상동성을 나타내지 않는 신규 유전자로서 백혈병, 림프종, 자궁암, 피부암, 폐암 및 대장암 등을 비롯한 암의 진단, 형질전환 동물의 제조 및 안티-센스(anti-sense) 유전자치료 등에 효과적으로 이용될 수 있다.

Description

인간 원암 유전자 및 이에 의해 코드되는 단백질 {HUMAN PROTOONCOGENE AND PROTEIN ENCODED THEREIN}

인간을 포함한 고등동물들은 약 100,000 개의 유전자들을 갖고 있으나 이들중 약 15% 만이 각각의 개체에서 발현된다. 따라서, 어떠한 유전자가 선택되어 발현되느냐에 따라서 생명의 모든 현상 즉, 발생, 분화, 항상성(homeostasis), 자극에 대한 반응, 세포분열 주기조절, 노화 및 아폽토시스(apoptosis; programmed cell death) 등이 결정된다(Liang, P. and A. B. Pardee,Science, 257: 967-971(1992)).

종양발생과 같은 병리학적 현상은 유전자 변이과정으로 유발되어 결국에는 유전자 발현의 변화를 유도하게 된다. 따라서 상이한 세포들 사이에서 나타나는 유전자 발현들의 비교는 여러 생물학적 현상을 이해하는데 기본적이고 효과적인 접근방법이라고 할 수 있다.

예를 들면, 리앙과 파디(Liang and Pardee, 상기 문헌 참조)에 의해 제안된 mRNA 감별전개(differential display) 방법은 현재 종양억제 유전자나 세포분열 주기(cell cycle)에 관련된 유전자 및 아폽토시스에 관련된 전사조절 유전자(transcriptional regulatory gene) 등의 탐색에 효과적으로 이용되고 있으며 또한 하나의 세포에서 일어나는 다양한 유전자들의 상호 관련성의 규명에도 다양하게 활용되고 있다.

종양발생에 대한 여러 연구결과들을 종합하여 보면 특정 염색체부위의 소실(loss of chromosomal heterozygosity), 원암 유전자들의 활성화 및 p53 유전자를 포함한 다른 종양억제 유전자들의 불활성화 등과 같은 여러 가지 유전적 변화들이 종양조직에 축적되어 인간종양을 일으킨다고 보고되었다(Bishop, J. M.,Cell, 64: 235-248(1991); 및 Hunter, T.,Cell, 64:249-270(1991)). 또한, 암의 10 내지 30%는 원암유전자가 증폭됨으로써 원암 유전자가 활성화되어 일어난다고 보고되어 있다.

원암유전자의 활성화는 많은 암의 병인학 연구에 중요한 역할을 하며, 이를 밝히는 것이 요구되고 있다.

이에 본 발명자들은 자궁경부암의 발생기전을 원암 유전자 수준에서 접근한 결과, 인간 자궁경부암 유전자 3(HCC-3)으로 명명된 원암유전자가 암세포에서만 특이하게 발현이 증가된다는 것을 밝혀내었다. 상기 원암유전자는 백혈병, 림프종, 자궁암, 피부암, 폐암 및 대장암등과 같은 다양한 암의 진단, 예방 및 치료에 효과적으로 사용될 수 있다.

따라서, 본 발명의 목적은 신규 원암 유전자 및 그의 단편을 제공하는 것이다.

본 발명의 다른 목적은 상기 원암 유전자 또는 그의 단편을 포함하는 재조합 벡터 및 이에 의해 형질전환된 미생물을 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 원암 유전자에 의해 코드되는 단백질 및 그의 단편을 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 원암 유전자 또는 그의 단편을 포함하는 암 진단용 키트를 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 단백질 또는 그의 단편을 포함하는 암 진단용 키트를 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 원암 유전자 또는 그의 단편으로부터 유도되는 mRNA에 상보적인 염기서열을 지닌 안티센스 유전자를 제공하는 것이다.

본 발명의 또 다른 목적은 상기 안티센스 유전자를 사용하여 암을 치료 또는 예방하는 것이다.

본 발명의 한 태양에 따라, 서열번호: 1의 뉴클레오티드 서열을 갖는 신규 원암 유전자 또는 그의 단편이 제공된다.

본 발명의 다른 태양에 따라, 상기 원암 유전자 또는 그의 단편을 포함하는 재조합 벡터 및 이에 의해 형질전환된 미생물이 제공된다.

본 발명의 또 다른 태양에 따라, 서열번호: 2의 아미노산 서열을 갖는 단백질 또는 그의 단편이 제공된다.

도 1은 정상 자궁경부 조직, 자궁경부 종양 조직, 전이 임파절 종양조직 및 CUMC-6 암세포에서 CC271의 발현여부를 확인한 감별전개 역전사 중합효소 연쇄반응(DDRT-PCR)의 결과를 나타낸 것이고;

도 2a는 자궁암 조직들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸 것이며;

도 2b는 도 2a와 동일한 샘플들을 β-액틴으로 하이브리드시켜 얻은 결과를 나타낸 것이며;

도 3a는 백혈병 조직들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸 것이며;

도 3b는 도 3a와 동일한 샘플들을 β-액틴으로 하이브리드시켜 얻은 결과를 나타낸 것이며;

도 4a는 림프종 조직들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸 것이며;

도 4b는 도 4a와 동일한 샘플들을 β-액틴으로 하이브리드시켜 얻은 결과를나타낸 것이며;

도 5a는 피부암 조직들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸 것이며;

도 5b는 도 5a와 동일한 샘플들을 β-액틴으로 하이브리드시켜 얻은 결과를 나타낸 것이며;

도 6a는 폐암 조직들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸 것이며;

도 6b는 도 6a와 동일한 샘플들을 β-액틴으로 하이브리드시켜 얻은 결과를 나타낸 것이며;

도 7a는 대장암 조직들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸 것이며;

도 7b는 도 7a와 동일한 샘플들을 β-액틴으로 하이브리드시켜 얻은 결과를 나타낸 것이며;

도 8은 HCC-3 원암 유전자를 대장균에 형질도입시킨 후 IPTG 유도 이전 및 이후에 발현되는 단백질의 크기를 나트륨 도데실 설페이트(SDS)-폴리아크릴아마이드 겔(PAGE)에서 전기영동한 결과이다.

본 발명의 신규 원암(原癌)유전자(protooncogene)인 인간 자궁경부암 유전자 3(Human Cervical Cancer oncogene 3, HCC-3, 이후 "HCC-3 원암유전자"로 지칭함)은 서열번호: 1로 나타낸 바와 같은 1,170 bp 길이의 전체 염기서열을 가진다.

서열번호: 1의 염기서열에서, 뉴클레오티드 번호 114 내지 683 부위(681-683: 종료코돈)에 해당하는 전사 해독 프레임(open reading frame)은 전체 단백질 코딩 영역으로서 이로부터 유도되는 아미노산 서열은 서열번호: 2에 나타나 있으며189개의 아미노산으로 이루어져 있다("HCC-3 단백질").

그러나, 코돈의 축퇴성(degeneracy)으로 인해서 또는 상기 원암 유전자를 발현시키고자 하는 생물에서 선호되는 코돈을 고려하여 본 발명의 원암 유전자는 코딩영역으로부터 발현되는 발암단백질의 아미노산 서열을 변화시키지 않는 범위내에서 코딩영역에 다양한 변형이 이루어질 수 있고 코딩영역을 제외한 부분에서도 유전자의 발현에 영향을 미치지 않는 범위내에서 다양한 변형 또는 수식이 이루어질 수 있으며, 그러한 변형 유전자 역시 본 발명의 범위에 포함된다. 따라서, 본 발명은 상기 서열번호:1의 원암 유전자와 실질적으로 동일한 염기 서열을 갖는 폴리뉴클레오티드 및 상기 유전자의 단편을 역시 포함한다. 실질적으로 동일한 폴리뉴클레오티드란 80% 이상, 바람직하게는 90% 이상, 가장 바람직하게는 95% 이상의 서열 상동성을 갖는 것들을 의미한다.

본 발명의 원암 유전자로부터 발현되는 단백질은 189개의 아미노산으로 이루어져 있고 서열번호: 2와 같은 서열을 가지며 크기는 약 21 kd이다. 그러나, 상기 단백질의 아미노산 서열에서도 역시 단백질의 기능에 영향을 미치지 않는 범위내에서 아미노산의 치환, 부가 또는 결실이 이루어질 수 있으며, 목적에 따라 단백질의 일부만이 사용될 수도 있다. 그러한 변형된 아미노산 서열 역시 본 발명의 범위에 포함된다. 따라서, 본 발명은 상기 발암 단백질과 실질적으로 동일한 아미노산 서열을 갖는 폴리펩티드 및 그의 단편을 역시 포함하며, 실질적으로 동일한 폴리펩티드란 80% 이상, 바람직하게는 90% 이상, 가장 바람직하게는 95% 이상의 서열 상동성을 갖는 것들을 의미한다.

본 발명의 원암 유전자 및 단백질은 사람의 암 조직으로부터 분리하거나, 공지의 DNA 또는 펩타이드 합성 방법에 따라 합성할 수도 있다. 또한, 이렇게 제조된 유전자를 당 분야에 공지된 미생물 발현용 벡터에 삽입하여 발현 벡터를 제조한 후 이를 적절한 숙주 세포, 예를 들어, 대장균 또는 효모 세포 등에 도입시킬 수 있다. 이와 같이 형질전환된 숙주를 이용하여 본 발명의 유전자의 DNA를 대량으로 복제하거나 단백질을 대량 생산할 수 있다. 예를 들면, 벡터를 사용하여 HCC-3 원암유전자를 대장균 DH5α에 형질감염(transfection)시키고, 이렇게 하여 얻어진 대장균 DH5α/HCC-3/pCEV-LAC를 2000년 11월 29일자로 한국생명공학연구소 유전자은행(Korea Collection for Type Cultures(KCTC))에 기탁번호 제KCTC 0896BP호로서 기탁하였다.

벡터의 제작시에는, 상기 원암 유전자 또는 단백질을 생산하고자 하는 숙주 세포의 종류에 따라 프로모터, 터미네이터 등과 같은 발현 조절서열, 자가복제서열 및 분비 시그날 등을 적절히 선택하고 조합할 수 있다.

본 발명의 유전자는 노던 블롯(Northern blot) 등의 분석방법에서 정상 자궁경부조직에서는 발현이 거의 확인되지 않은 반면 자궁경부암 조직과 자궁암 세포주들에서는 그 과발현이 확인되므로 자궁암을 유발시키는 강력한 발암 유전자로 판단된다. 자궁경부암과 같은 상피성 조직외에도, 본 발명의 원암 유전자는 백혈병, 림프종, 피부암, 폐암 및 대장암 등과 같은 많은 다른 암 종양들에서 높게 발현된다. 따라서, 본 발명의 원암유전자는 다양한 암의 발생에 공통된 발암유전자일 것으로 판단되며, 다양한 암의 진단, 형질전환된 동물의 제조 및 안티-센스(anti-sense)유전자 치료 등에 효과적으로 이용될 수 있다.

상기 원암 유전자를 이용한 암의 진단 방법은, 예를 들어, 상기 원암 유전자의 전부 또는 일부를 프로브로서 사용하여 대상자의 체액으로부터 분리한 핵산과 하이브리드화한 후 당 분야에 공지된 다양한 방법으로 이를 검출하므로써 대상자가 본 발명의 원암 유전자를 가지고 있는지를 판단하는 과정을 포함한다. 상기 프로브를 방사선 동위원소 또는 효소 등으로 표지하면 용이하게 유전자의 존재를 확인할 수 있다. 따라서, 본 발명에서는 상기 원암 유전자의 전부 또는 일부를 포함하는 암 진단용 키트를 역시 제공한다.

형질전환 동물은 본 발명의 원암 유전자를 포유동물, 예를 들어, 래트 등의 설치류 동물에 도입함으로써 제조할 수 있으며, 이 유전자를 적어도 8세포기 이전의 수정란 단계에서 도입하는 것이 바람직하다. 이렇게 제조된 형질전환 동물은 발암성 물질 또는 항산화제와 같은 항암성 물질의 탐색 등에 유용하게 사용될 수 있다.

본 발명은 또한 유전자 치료에 효과적인 안티-센스 유전자를 제공한다. 본원에서, "안티센스 유전자(anti-sense gene)"는 서열번호: 1의 원암 유전자 또는 그의 일부로부터 전사되는 mRNA의 일부 또는 전부와 상보적인 서열을 가지는 폴리뉴클레오티드로서, 상기 mRNA의 단백질 결합부위에 결합하여 원암유전자의 오픈 리딩 프레임(open reading frame; ORF)을 파괴할 수 있는 서열을 갖는 DNA 서열을 환자의 체내로 도입함으로써 상기 원암 유전자의 발현으로 인한 암을 예방 또는 치료할 수 있다.

본 발명은 또한 그 범위내에 본 발명의 안티센스 유전자의 치료 효과량을 환자에게 투여하여 암을 치료 또는 예방하는 방법을 포함한다.

본 발명의 안티센스 유전자 치료에서, 본 발명의 안티센스 유전자는 통상적인 방법으로 환자에게 투여되어 원암유전자의 발현을 예방한다. 예를 들면, 문헌[J.S. Kim et al.,J. Controlled Release, 53, 175-182(1998)]의 방법에 따라 안티센스 ODN을 폴리-L-리신 유도체와 정전기적 인력에 의하여 혼합시키고, 이 혼합체를 환자에게 정맥투여한다.

본 발명의 범위에는 또한, 약학적으로 허용가능한 담체, 부형제 또는 경우에 따라 다른 첨가제와 함께 본 발명의 안티센스 유전자를 활성성분으로 포함하는 항암조성물을 포함한다. 본 발명의 약학 조성물을 주사제로 제제화하는 것이 바람직하다.

실제로 투여되는 안티센스 유전자의 양은 치료되는 증상, 투여 경로, 환자의 연령 및 체중, 증상의 중증도와 같은 다양한 관련되는 인자를 고려하여 결정한다.

본 발명의 원암 유전자로부터 유도되는 단백질은 진단 도구로서 항체를 생산하는데 유용하게 사용될 수 있다. 본 발명의 항체는, 본 발명의 원암 유전자로부터 발현된 서열번호: 2의 아미노산 서열을 갖는 단백질 또는 그의 단편을 이용하여 당 분야에 공지된 통상의 방법에 따라 모노클로날 항체 또는 폴리클로날 항체로서 제조할 수 있으며, 이러한 항체들을 이용하여 당분야에 공지된 효소 면역측정법(enzyme linked immunosorbent assay; ELISA), 방사선면역측정법(radioimmunoassay; RIA), 샌드위치 측정법(sandwich assay), 폴리아크릴 겔상의 웨스턴 블롯 또는 면역 블롯 등의 방법에 의해 대상자의 체액 시료중에 상기 단백질이 발현되었는지를 확인함으로써 암을 진단할 수 있다.

또한, 본 발명의 원암 유전자를 이용하여 지속적으로 증식할 수 있는 암 세포주를 확립할 수 있으며, 이러한 세포주는 예를 들어, 상기 원암 유전자가 형질도입된 섬유모세포를 이용하여 누드 마우스 등에 형성시킨 종양조직으로부터 제조할 수 있다. 이러한 암 세포주는 항암제 등의 탐색에 유용하게 이용될 수 있다.

이하 본 발명을 실시예에 의하여 상세히 설명하나, 본 발명이 이에 한정되는 것은 아니다.

실시예 1: 종양세포 배양 및 총 RNA의 분리

(단계 1) 종양세포 배양

mRNA의 감별 전개를 위하여, 자궁적출술을 받은 자궁근종 환자로부터 정상자궁경부 조직, 그리고 이전에 항암요법과 방사선치료를 받지않은 자궁암 환자로부터 수술시에 원발성 자궁경부 종양조직 및 전이 임파절 종양조직을 취하였다. 감별 전개법에 사용된 인간 자궁경부암 세포주는 CUMC-6(Kim, J. W.et al.,Gynecol. Oncol., 62: 230-240(1996))이었다.

상기 기술된 조직 및 CUMC-6 세포주로부터 얻은 세포를 2 mM 글루타민, 100 IU/㎖ 페니실린, 100 ㎍/㎖ 스트렙토마이신 및 10% 우태아 혈청(Gibco, USA)이 함유된 웨이마우쓰(Waymouth's) MB 752/1 배양액(Gibco)에서 증식시켰다. 실험에 사용한 배양 세포들은 지수적 증식 도중의 세포들로서 트리판 블루(trypan blue) 염료로 염색할 때 95% 이상의 생존도를 보이는 세포를 이용하였다(프레쉬니(Freshney), "Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Technique" 2nd Ed., A. R. Liss, New York(1987) 참조).

(단계 2) RNA의 분리 및 mRNA의 감별 전개법

상업적으로 판매되는 시스템인 RNeasy 총 RNA 키트(Qiagen Inc., 독일)을 사용하여 단계 1에서 얻은 정상 자궁경부 조직, 원발성 자궁경부 종양조직, 전이 임파절 종양조직 및 CUMC-6 세포로부터 총 RNA를 추출하였다. 메시지 클린 키트(Message clean kit)(GenHunter Corp., Brookline, MA)를 사용하여 RNA로부터 DNA 오염원을 제거하였다.

실시예 2: 감별 전개 역전사 중합효소 연쇄반응(differential display reverse transcription(DDRT)-PCR)

감별전개 역전사는 상기 리앙과 파디에 의해 기술된 역전사-중합효소 연쇄반응(RT-PCR)을 약간 변형하여 수행하였다.

먼저, 실시예 1의 단계 1에서 얻은 총 RNA 0.2㎍ 씩에 고정된 올리고-dT 프라이머로서 H-T11G, H-T11C 또는 H-T11A의 세 가지 프라이머(RNAimage kit, Genhunter, Cor., MA, USA) 중 하나를 사용하여 역전사를 수행하였다.

이어서, 0.5mM [α-³⁵S] dATP(1200 Ci/mmole) 존재하에, 동일한 고정 프라이머 및 무작위 5' 13프라이머(RNAimage primer sets 1-4, H-AP 1-32)를 사용하여 PCR을 수행하였다. PCR 반응의 조건은 95℃에서 40초 반응 후 40℃에서 2분, 72℃에서 40초를 40회 반응시키며 최종 연장(final extension)을 위하여 72℃에서 5 분간 더 반응시켰다.

PCR-증폭된 단편을 6% 폴리아크릴아미드 시퀀싱 겔에 용해시킨 후, 방사능 사진을 이용하여 서로 다른 발현(differentially expressed) 정도를 보이는 밴드의 위치를 확인하였다.

건조된 시퀀싱 겔로부터 약 200 염기쌍(bp) 크기 이상의 밴드, CC271을 도려내었다. 15분간 가열하여 CC271 cDNA를 용출시킨후, [α-³⁵S] dATP(1200 Ci/mmole) 및 20μM dNTP를 사용하지 않는 것을 제외하고는 상기 프라이머 및 PCR 조건하에서 증폭시켰다.

실시예 3: 클로닝

상기에서 얻은 재증폭된 CC271 PCR 산물을 TA클로닝 시스템(Promega, USA)을 사용하여 제조사의 방법에 따라 pGEM-T 이지(EASY) 벡터에 삽입하였다.

(단계 1) 연결반응

실시예 2에서 얻은 재증폭된 CC271 PCR 산물 2㎕, pGEM-T 이지 벡터(50 ng) 1 ㎕, T4 DNA 연결효소 10X 완충액 1㎕ 및 T4 DNA 연결효소(3 weiss units/ul; T4 DNA ligase, Promega) 1 ㎕를 0.5㎖ 시험관에 넣은 후, 증류수를 가하여 최종 부피가 10 ㎕가 되도록 하였다. 연결 반응 혼합물은 14℃에서 밤새 배양하였다.

(단계 2) TA 클로닝 형질전환

TA 클로닝 형질전환은 다음 절차에 따라 수행되었다.

대장균 JM109(Promega, WI, USA)를 10 ml 의 LB 브로쓰(박토-트립톤 10 g, 박토-효모 추출물 5 g, NaCl 5 g) 중에서 600㎚에서의 광학밀도 값이 약 0.3 - 0.6이 될 때까지 배양하였다. 배양 혼합물을 얼음에 약 10분간 방치한 후, 4℃에서 10 분간 4000 rpm으로 원심분리하여 상청액을 버리고 세포를 수집하였다. 수집한 세포 펠릿을 10 ml의 빙냉 0.1 M CaCl₂에 30분 내지 1시간 가량 노출시켜 컴피턴트(competent) 세포를 제조하였다. 결과물을 4℃, 4000 rpm에서 10분 동안 다시 원심분리하여 상청액을 버리고 세포를 모아서 2 ml의 빙냉 0.1 M CaCl₂에 현탁시켰다.

컴피턴트 세포 현탁액 200 ㎕를 새로운 마이크로퓨즈(microfuge) 튜브에 옮기고, 여기에 단계 1에서 제조한 연결 반응 산물 2㎕를 가하였다. 혼합물을 42℃의 수욕(water bath)에서 90초간 배양시킨 후, 0℃에서 급냉시켰다. 여기에, SOC배지(박토-트립톤 2.0 g, 박토-효모 추출물 0.5 g, 1 M NaCl 1 ml, 1 M KCl 0.25 ml, TDW 97 ml, 2M Mg²⁺1 ml, 2 M 글루코스 1 ml) 800 ㎕를 첨가하고, 혼합물을 37℃에서 220 rpm의 회전진탕 배양기에서 45분간 배양시켰다.

37℃ 배양기에 미리 넣어둔, 앰피실린이 첨가된 LB 플레이트에 X-gal(40㎎/㎖ 디메틸포름아미드에 저장) 25 ㎕를 유리봉으로 확산시킨 후, 여기에 25 ㎕의 형질전환된 세포를 넣어서 다시 유리봉으로 확산시키고 37℃에서 밤새 배양하였다. 배양 후 형성된 백색 콜로니를 3-4개 선택하여 앰피실린이 첨가된 LB 플레이트에 각각의 선택된 클론들을 심었다. 플라스미드를 제조하기 위하여 이들 중 삽입이 확인된 콜로니, 즉, 형질전환된 대장균 JM109/CC271을 선택하여 10 ml의 테리픽 브로쓰(terrific broth; TDW 900 ml, 박토-트립톤 12 g, 박토-효모 추출물 24 g, 글리세롤 4 ml, 0.17 M KH₂PO₄, 0.72 N K₂HPO₄100 ml)에서 배양하였다.

실시예 4: 재조합 플라스미드 DNA의 분리

위저드 플러스 미니프렙스 DNA 정제 키트(Wizard^TMPlus Minipreps DNA Purificatin Kit, Promega, USA)를 사용해서 제조사의 지시에 따라 형질전환된 대장균으로부터 CC271 플라스미드 DNA를 분리하였다.

분리된 플라스미드 DNA의 일부를ECoRI효소로 처리한 후, 2% 겔에서 전기영동을 실시하여 CC271 부분서열이 플라스미드에 삽입되었음을 확인하였다.

실시예 5: DNA 염기서열 분석

실시예 2에서 수득한 CC271 PCR 산물을 통상적인 방법에 따라 PCR 시킨 후, 클로닝되고 재증폭된 CC271 PCR 단편을 시쿼나제 버전 2.0 DNA 서열분석 키트(Sequenase version 2.0 DNA Sequencing kit; United States Biochemical, Cleveland, OH, USA)를 이용하여 디데옥시 쇄 종결법(dideoxy chain termination)에 따라 서열 분석을 실시하였다.

상기 DNA의 염기 서열은 서열번호: 1의 뉴클레오티드 번호 832 내지 1046에 해당하며, 본원에서 "CC271"로 지칭하였다.

5' 무작위 프라이머 H-AP27 및 3' H-T11C 고정 프라이머를 사용하여 상기에서 수득한 215 bp cDNA 단편, 즉, CC271을 감별전개 역전사 중합효소 연쇄반응(DDRT-PCR)시키고, 전기 영동으로 확인하였다. 도 1에 나타낸 바와 같이, 정상 자궁경부 조직, 전이 임파절 조직 및 CUMC-6 세포에서 DD에 의한 유전자 발현이 상이한 것으로 확인되었다. 도 1에서 알 수 있는 바와 같이, 215 bp cDNA 단편인 CC271은 자궁경부암, 전이 임파절 조직 및 CUMC-6 암 세포에서는 발현되었으나, 정상 조직에서는 발현되지 않았다.

실시예 6: HCC-3 원암유전자의 전체 cDNA 서열 분석

³²P-표지된 CC271을 프로브로 사용하여 박테리오파지 λgt11 인간 폐 태아 섬유모세포 cDNA 라이브러리(Miki, T.et al.,Gene, 83: 137-146 (1989))를 스크리닝하였다. 상기 인간 폐 태아 섬유모세포 cDNA 라이브러리로부터 pCEV-LAC 벡터 중에 1,170 bp가 삽입된 전체 HCC-3 cDNA 클론을 얻고, 이를 2000년 11월 13일자로 AF320778 호로 미국 진뱅크(GeneBank)에 등록하였다.

파지로부터 λpCEV 벡터에 삽입된 HCC-3 클론을NotI 절단에 의해 앰피실린 내성 pCEV-LAC 파지미드(phagemid) 벡터 형태로 분리하였다(상기 문헌 참조).

상기 HCC-3 유전자를 함유하는 pCEV-LAC 벡터를 T4 DNA 리게이즈로 연결시켜 HCC-3 플라스미드 DNA를 제조하고, 연결된 클론으로 대장균 DH5α를 형질전환시켰다.

상기 수득한 DH5α/HCC-3/pCEV-LAC를, 특허절차상 미생물 기탁의 국제적 승인에 관한 부다페스트 조약의 규정에 따라, 2000년 11월 29일자로 한국생명공학연구소 유전자 은행(Korea Collection for Type Cultures(KCTC), 한국생명공학연구소(Korea Research Institute of Bioscience and Biotechnology(KRIBB), 대한민국 대전 305-333 유성구 어은동 #52)에 기탁번호 제KCTC 0896BP호로서 기탁하였다.

1170 bp로 이루어진 HCC-3의 전체 서열은 서열번호: 1에 나타내었다.

서열번호: 1의 염기서열에서, 본 발명의 원암유전자의 전체 전사 해독 프레임(open reading frame)은 뉴클레오티드 번호 114 내지 683에 해당하며, 서열번호:2의 189개의 아미노산으로 이루어진 단백질을 코드하는 것으로 예측된다.

실시예 7 : 다양한 세포에서의 HCC-3 유전자의 노던 블롯 분석

실시예 1에서와 같이, 정상 자궁경부 조직, 자궁경부암 조직, 및 자궁경부암 세포주 CaSki(ATCC CRL 1550) 및 CUMC-6로부터 총 RNA를 추출하였다.

HCC-3 유전자 발현 정도를 결정하기 위하여, 각각의 조직 및 세포주로부터 추출한 변성된 총 RNA 20 ㎍씩을 1% 포름알데히드 아가로즈 겔에서 전기영동한 후 나일론 막(Boehringer-Mannheim, 독일)으로 옮겼다. 레디프라임 II(Rediprime II) 무작위 프라임 표지 시스템(Amersham, 영국)을 사용하여 제조한³²P-표지된 무작위 프라임된 HCC-3 전체 cDNA 프로브로 블롯을 하이브리드시켰다. 노던 블롯 분석을 2회 반복실시하였으며, 그 결과는 농도계(densitometry)를 사용하여 정량화하였고, β-액틴(actin)으로 표준화시켰다.

도 2a는 정상 자궁경부 조직, 자궁경부암조직 및 자궁경부암 세포주(CaSki 및 CUMC-6)들에서 HCC-3 원암 유전자의 발현여부를 확인한 노던 블롯 분석 결과를 나타낸다. 도 3에서 알 수 있는 바와 같이, 자궁경부암 조직 및 자궁경부암 세포주인 CaSki와 CUMC-6 세포주들에서는 현저한 유전자 발현이 관찰되었으나, 정상조직에서는 발현 정도가 매우 낮거나 관찰되지 않았다. 도 2에서, 정상(Normal)열은 정상 자궁 경부 조직을, 암(Cancer)열은 자궁 경부암 조직을, 그리고 CaSki열 및CUMC-6열은 자궁암 세포주를 각각 나타낸다. 도 2b는 동일한 시료를 β-액틴 프로브로 하이브리드시켜 mRNA의 존재를 확인한 것이다.

또한, 인간 백혈병 (도 3a), 림프종 (도 4a), 피부암 (도 5a), 폐암 (도 6a) 및 대장암 (도 7a) 및 이들 각각의 정상 조직에 대한 노던 블롯 분석을 실시하였다. 각 도에서 정상(Normal)열은 정상 조직을, 암(Cancer)열은 암 조직을 각각 나타낸다. 도 3a 내지 7A에 나타난 바와 같이, HCC-3는 인간 암 조직들에서 높은 수준으로 전사되는 반면, 정상 조직들에서는 HCC-3 유전자의 발현이 거의 관찰되지 않았다. 도 3b, 4b, 5b, 6b 및 7b는 동일한 시료를 β-액틴 프로브로 하이브리드시켜 mRNA의 존재를 확인한 것이다.

실시예 8: HCC-3 원암유전자를 대장균에 형질감염시킨 후 발현되는 단백질의 크기결정

서열번호: 1의 HCC-3 원암유전자 전체를 pGEX-4T-3 벡터(Amersham Pharmacia)의 다중 클로닝 부위에 삽입한 후, 생성된 pGEX-4T-3/HCC-3 벡터를 대장균 BL21(ATCC 47092)에 형질감염시켰다. pGEX-4T-3 벡터의 다중클로닝 부위의 앞부위에는 발현 단백질인 글루타티온 S 트랜스퍼레이즈 (GST)가 삽입되어 있다. 형질감염된 대장균을 LB 브로쓰에서 진탕 배양한 후, 이를 1/100로 희석시켜 다시 3시간동안 배양하였다. 여기에 1 mM의 이소프로필 β-D-티오갈락토피라노즈(Isopropyl beta-D-thiogalacto-pyranoside(IPTG), Sigma)를 첨가하여 단백질 생산을 유도하였다.

IPTG 유도 전후의 배양액 중의 대장균 세포를 초음파분쇄한 후, 12% 나트륨 도데실설페이트(SDS)-폴리아크릴아미드 겔에서 전기영동하였다(SDS-PAGE). 도 8은 pGEX-4T-3/HCC-3 벡터로 형질감염된 대장균 BL21 균주의 단백질의 발현 양상을 SDS-PAGE로 확인한 결과로서, IPTG 유도 후에 약 47kDa의 융합 단백질 밴드가 뚜렷하게 관찰되었다. 이 47kDa 융합단백질은 pGEX-4T-3 벡터에 삽입되어 있는 약 26kDa 크기의 GST 단백질과 약 21kDa의 HCC-3 단백질을 함유하고 있다.

본 발명의 원암 유전자는 기존의 보고된 발암유전자와는 전혀 상동성을 나타내지 않는 신규 유전자로서 백혈병, 림프종, 자궁암, 피부암, 폐암, 대장암 등을 비롯한 암의 진단, 형질전환 동물의 제조 및 안티-센스(anti-sense) 유전자치료 등에 효과적으로 이용될 수 있다.

<110> KIM, Jin Woo <120> Human protooncogene and protein encoded therein <130> KJW-0050 <160> 2 <170> KopatentIn 1.71 <210> 1 <211> 1170 <212> DNA <213> Homo sapiens <220> <221> CDS <222> (114)..(680) <400> 1 acggccatta ccaatcgcga aaccgcacgc tgagctctgt gatgtagccg cttgcggaga 60 ctgcaagcag ccgcggcgcg cccggccctc cctcttccgc tgccgccgtg gga 113 atg gaa aca tct gcc cca cgt gcc gga agc caa gtg gtg gcg aca act 161 Met Glu Thr Ser Ala Pro Arg Ala Gly Ser Gln Val Val Ala Thr Thr 1 5 10 15 gcg cgc cac tcc gcg gcc tac cgc gca gat cct cta cgt gtg tcc tcg 209 Ala Arg His Ser Ala Ala Tyr Arg Ala Asp Pro Leu Arg Val Ser Ser 20 25 30 cga gac aag ctc acc gaa atg gcc gcg tcc agt caa gga aac ttt gag 257 Arg Asp Lys Leu Thr Glu Met Ala Ala Ser Ser Gln Gly Asn Phe Glu 35 40 45 gga aat ttt gag tca ctg gac ctt gcg gaa ttt gct aag aag cag cca 305 Gly Asn Phe Glu Ser Leu Asp Leu Ala Glu Phe Ala Lys Lys Gln Pro 50 55 60 tgg tgg cgt aag ctg ttc ggg cag gaa tct gga cct tca gca gaa aag 353 Trp Trp Arg Lys Leu Phe Gly Gln Glu Ser Gly Pro Ser Ala Glu Lys 65 70 75 80 tat agc gtg gca acc cag ctg ttc att gga ggt gtc act gga tgg tgc 401 Tyr Ser Val Ala Thr Gln Leu Phe Ile Gly Gly Val Thr Gly Trp Cys 85 90 95 aca ggt ttc ata ttc cag aag gtt gga aag ttg gct gca aca gct gtg 449 Thr Gly Phe Ile Phe Gln Lys Val Gly Lys Leu Ala Ala Thr Ala Val 100 105 110 gga ggt gga ttt ttt ctc ctt cag ctt gca aac cat act ggg tac atc 497 Gly Gly Gly Phe Phe Leu Leu Gln Leu Ala Asn His Thr Gly Tyr Ile 115 120 125 aaa gtt gac tgg caa cga gtg gag aag gac atg aag aaa gcc aaa gag 545 Lys Val Asp Trp Gln Arg Val Glu Lys Asp Met Lys Lys Ala Lys Glu 130 135 140 cag ctg aag atc cgt aag agc aat cag ata cct act gag gtc agg agc 593 Gln Leu Lys Ile Arg Lys Ser Asn Gln Ile Pro Thr Glu Val Arg Ser 145 150 155 160 aaa gct gag gag gtg gtg tca ttt gtg aag aag aat gtt cta gta act 641 Lys Ala Glu Glu Val Val Ser Phe Val Lys Lys Asn Val Leu Val Thr 165 170 175 ggg gga ttt ttc gga ggc ttt ctg ctt ggc atg gca tcc taaggaagat 690 Gly Gly Phe Phe Gly Gly Phe Leu Leu Gly Met Ala Ser 180 185 gacctcatgt tcattgttcc tggttttttc cagccagcag cctctacact ccatcatagg 750 acatcgagtc cctcctcctc ttctcccatg ccttcttccc tgccatggca aatctgagtg 810 gcttctctaa gcatctgctg gtacaagtca atgtggcacc atgagcttca tggtggcaga 870 agagacaata gtccttagct ctcctcccag tacaccccct acttggccag tctgtaggcc 930 aacaagaagg ttcctttacc cccatgcaag acacttatga gaacacatta caagatggct 990 gaccgtggag gatgagtgga tcctgaaagg ttgtcccaaa ctgttgattt ggaaaagaaa 1050 taagcacata gataacctta ttgtgtgctg catggaaagg aactgaatac atttccttta 1110 agcatgaaaa aaaaaaaaaa aaaaaaaaaa aaaaaaaaaa aaaaaaaggc cgcctcggcc 1170 1170 <210> 2 <211> 189 <212> PRT <213> Homo sapiens <400> 2 Met Glu Thr Ser Ala Pro Arg Ala Gly Ser Gln Val Val Ala Thr Thr 1 5 10 15 Ala Arg His Ser Ala Ala Tyr Arg Ala Asp Pro Leu Arg Val Ser Ser 20 25 30 Arg Asp Lys Leu Thr Glu Met Ala Ala Ser Ser Gln Gly Asn Phe Glu 35 40 45 Gly Asn Phe Glu Ser Leu Asp Leu Ala Glu Phe Ala Lys Lys Gln Pro 50 55 60 Trp Trp Arg Lys Leu Phe Gly Gln Glu Ser Gly Pro Ser Ala Glu Lys 65 70 75 80 Tyr Ser Val Ala Thr Gln Leu Phe Ile Gly Gly Val Thr Gly Trp Cys 85 90 95 Thr Gly Phe Ile Phe Gln Lys Val Gly Lys Leu Ala Ala Thr Ala Val 100 105 110 Gly Gly Gly Phe Phe Leu Leu Gln Leu Ala Asn His Thr Gly Tyr Ile 115 120 125 Lys Val Asp Trp Gln Arg Val Glu Lys Asp Met Lys Lys Ala Lys Glu 130 135 140 Gln Leu Lys Ile Arg Lys Ser Asn Gln Ile Pro Thr Glu Val Arg Ser 145 150 155 160 Lys Ala Glu Glu Val Val Ser Phe Val Lys Lys Asn Val Leu Val Thr 165 170 175 Gly Gly Phe Phe Gly Gly Phe Leu Leu Gly Met Ala Ser 180 185

Claims (11)

1. 서열번호: 1의 염기서열을 갖는 원암 유전자.
2. 제 1 항에 있어서,

   서열번호: 1의 염기 번호 114 내지 683에 해당하는 염기서열을 지닌 원암 유전자.
3. 서열 번호: 2의 아미노산 서열을 갖는 단백질.
4. 제 1 항의 원암 유전자를 포함하는 벡터.
5. 제 4 항의 벡터에 의해 형질전환된 대장균.
6. 제 5 항에 있어서,

   대장균 DH5α/HCC-3(기탁번호: KCTC 0896BP).
7. 제 5 항 또는 제 6 항의 대장균을 배양하여 서열 번호: 2의 아미노산 서열을 갖는 단백질을 제조하는 방법.
8. 제 1 항 또는 제 2 항의 원암 유전자를 포함하는 암 진단용 키트.
9. 제 3 항의 단백질을 포함하는 암 진단용 키트.
10. 삭제
11. 삭제