JPWO2014126233A1 - マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 - Google Patents
マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 Download PDFInfo
- Publication number
- JPWO2014126233A1 JPWO2014126233A1 JP2015500326A JP2015500326A JPWO2014126233A1 JP WO2014126233 A1 JPWO2014126233 A1 JP WO2014126233A1 JP 2015500326 A JP2015500326 A JP 2015500326A JP 2015500326 A JP2015500326 A JP 2015500326A JP WO2014126233 A1 JPWO2014126233 A1 JP WO2014126233A1
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- mir
- hsa
- cancer
- nrf2
- therapeutic agent
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Granted
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
- C12N15/09—Recombinant DNA-technology
- C12N15/11—DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
- C12N15/113—Non-coding nucleic acids modulating the expression of genes, e.g. antisense oligonucleotides; Antisense DNA or RNA; Triplex- forming oligonucleotides; Catalytic nucleic acids, e.g. ribozymes; Nucleic acids used in co-suppression or gene silencing
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/7088—Compounds having three or more nucleosides or nucleotides
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K31/00—Medicinal preparations containing organic active ingredients
- A61K31/70—Carbohydrates; Sugars; Derivatives thereof
- A61K31/7088—Compounds having three or more nucleosides or nucleotides
- A61K31/713—Double-stranded nucleic acids or oligonucleotides
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K33/00—Medicinal preparations containing inorganic active ingredients
- A61K33/24—Heavy metals; Compounds thereof
- A61K33/243—Platinum; Compounds thereof
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K45/00—Medicinal preparations containing active ingredients not provided for in groups A61K31/00 - A61K41/00
- A61K45/06—Mixtures of active ingredients without chemical characterisation, e.g. antiphlogistics and cardiaca
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K48/00—Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
- A61P1/02—Stomatological preparations, e.g. drugs for caries, aphtae, periodontitis
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
- A61P1/04—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for ulcers, gastritis or reflux esophagitis, e.g. antacids, inhibitors of acid secretion, mucosal protectants
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P1/00—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system
- A61P1/16—Drugs for disorders of the alimentary tract or the digestive system for liver or gallbladder disorders, e.g. hepatoprotective agents, cholagogues, litholytics
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P11/00—Drugs for disorders of the respiratory system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P15/00—Drugs for genital or sexual disorders; Contraceptives
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P17/00—Drugs for dermatological disorders
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P19/00—Drugs for skeletal disorders
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P21/00—Drugs for disorders of the muscular or neuromuscular system
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P35/00—Antineoplastic agents
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P43/00—Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/5005—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
- G01N33/5008—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
- G01N33/5011—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics for testing antineoplastic activity
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/14—Type of nucleic acid interfering N.A.
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
- C12N2310/10—Type of nucleic acid
- C12N2310/14—Type of nucleic acid interfering N.A.
- C12N2310/141—MicroRNAs, miRNAs
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2320/00—Applications; Uses
- C12N2320/30—Special therapeutic applications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2320/00—Applications; Uses
- C12N2320/30—Special therapeutic applications
- C12N2320/31—Combination therapy
Abstract
Description
(1)本発明の低値測定方法
上記の通り本発明の低値測定方法は、「ヒト検体における『低値miRNA』を定量して、当該定量値の低下を指標として、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、がん患者の予後、を鑑別することを特徴とするマイクロRNAの測定方法」である。
上記の通り本発明の高値測定方法は、「ヒト検体における『高値miRNA』を定量して、当該定量値の上昇を指標として、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、がん患者の予後、を鑑別することを特徴とするマイクロRNAの測定方法」である。
(1)本発明のがん治療剤
上述のように本発明のがん治療剤は、「hsa−miR−507の塩基配列である配列番号1、hsa−miR−634の塩基配列である配列番号2、hsa−miR−450aの塩基配列である配列番号3、hsa−miR−129−5pの塩基配列である配列番号4、hsa−miR−639の塩基配列である塩基配列5、hsa−miR−337の塩基配列である配列番号6、hsa−miR−153の塩基配列である配列番号7、及び、hsa−miR−556の塩基配列である配列番号8、からなる群の塩基配列から選ばれる1種又は2種以上を含む核酸からなるがん治療剤」である。
上述のように本発明の医薬組成物は「上記のがん治療剤を含有することを特徴とする、がん治療のための医薬組成物」である。
1.材料と方法
実施例の結果の開示に先立ち、それに用いられた材料と試験方法について説明する。
HeLa,Lk−2,A549及びJHH−5細胞は、アメリカンカルチャーコレクション(米国)から購入した。当該細胞は、ダルベッコ改変イーグル培地(HeLa,Lk−2細胞用)、RPMI1640培地(A549細胞用)、又は、ウイリアムE培地(JHH−5細胞用)に、10%ウシ胎児血清、ペニシリン、及び、ストレプトマイシンを添加して、5%CO2・37℃にて培養した。
ウェスタンブロッティング用の抗NRF2ウサギポリクローナル抗体(サンタクルズバイオテクノロジー社)、免疫組織化学解析用の抗NRF2ウサギポリクローナル抗体(サンタクルズバイオテクノロジー社)、抗KEAP1ウサギポリクローナル抗体(プロテインテック社)、抗ME−1マウスモノクローナル抗体(サンタクルズバイオテクノロジー社)、抗XIAPウサギ抗体(Cell signaling社)、抗APIPウサギ抗体(Abcam社)、抗OPA1ウサギ抗体(Abcam社)、抗TFAMウサギ抗体(シグマ社)、及び、抗β−アクチンマウスモノクローナル抗体(シグマ社)、を用いた。培養細胞の処理のために過酸化水素(和光純薬社)又はシスプラチン(和光純薬社)を用いた。
細胞の生存は、クリスタルバイオレット(CV)染色アッセイにより評価した。細胞はPBSで洗浄され、0.2%CV含有10%ホルムアルデヒドPBSにおいて3分間固定した。過剰なCV溶液は除去され、完全に空気乾燥した後、染色細胞は2%SDS溶液に接触させつつ、プレートを1時間振とうすることにより溶解した。光学密度(OD)吸光度は、マイクロプレートリーダー(ARVOmx;ペルキンエルマー社)を用いて560nmにて計測し、吸光度百分率はウエル毎に算出した。コントロールウエルにおける細胞のOD吸光度値は、生存細胞の百分率を決定するために、任意に100%にセットした。
ルシラーゼレポータープラスミドは、抗酸化応答エレメント(ARE)を含んだヒトNQO−1プロモーター領域「5’-CTCAGCCTTCCAAATCGCAGTCACAGTGACTCAGCAGAATC-3’」(配列番号19)を、pGL3ベクター(プロメガ社)のMlu1/Xho1サイトに挿入することを目的として、下記表2の互いに相補的な合成オリゴの組(上段は配列番号20、下段は配列番号21)をアニールして二本鎖DNAとし、Mlu1とXho1を用いて当該Mlu1/Xho1サイトに相補的な粘着末端を有する2本鎖DNAを調製した。これを当該Mlu1/Xho1サイトに挿入することにより、所望の組換えpGL3(レポータープラスミド)を作出した。
20nmol/LのmiRNAs又はsiRNAsが個別にLipofectamin RNAiMAX(インビロトロゲン社)を用いて細胞に操作用マニュアルに従ってトランスフェクトされた。ヒト成熟miRNAに模した二本鎖RNA(hsa−miR−507(PM10509)、hsa−miR−129−5p(PM10195)、hsa−miR−450a(PM11192)、及び、hsa−miR−634(PM11538))、並びに、コントロールmiRNA(ネガティブコントロール#1)は、アンビオン社から入手した。NRF2に対するsiRNA(siGENOME SMARTpool;M−003755−02−0005)とKEAP1に対するsiRNA(siGENOME SMARTpool;M−012453−00−0005)は、サーモサイエンティフィックダルマコン社から入手した。
ルシフェラーゼリポータープラスミドは、pmirGlo Dual-Luciferase miRNA Target Expression Vector(プロメガ社)のルシフェラーゼ遺伝子の下流に、NRF2、ME1、又は、NQO1の3’非翻訳領域(UTR:配列番号49〜51)を挿入することで作出した。全ての部位特異性変異は、GeneTailor site-directed mutagenesis system(インビトロゲン社)、又は、KOD mutagenesis kit(TOYOBO社)を用いて行った。ルシフェラーゼレポータープラスミドと、内部標準コントロールとしてのpTKプラスミドには、共にHeLA細胞にトランスフェクトされ、次の日にヒト成熟miRNAに模した二本鎖RNA又はコントロールmiRNAをトランスフェクトした。2日後、ホタルルシフェラーゼ活性とウミシイタケルシフェラーゼ活性を、Dual-Luciferase Reporter Assay System(プロメガ社)を用いて計測し、相対的ルシフェラーゼ活性は、対応する内部標準コントロールのウミシイタケルシフェラーゼで読み取りながらホタルルシフェラーゼ活性を標準化することにより算出された。
全細胞の溶解物はSDS−PAGEに付されて、蛋白はPVDFメンブレン(GEヘルスケア社)に転写された。0.05%のTween20と5%のスキムミルクを含有するTBSで1時間ブロッキングを行った後、当該膜を抗体と共に一晩反応した。初期の抗体の希釈は、抗NRF2ウサギ抗体(1/1000)、抗KEAP1ウサギ抗体(1/1000)、抗ME1マウス抗体(1/1000)、及び、抗βアクチンマウス抗体(1/5000)であった。当該膜は洗浄され、HRP結合抗マウス又は抗ウサギIgG抗体(共に1/2000)で2時間曝露した。結合した抗体は、HRP染色溶液又はECLウェスタンブロッティングキット(セルシグナリングテクノロジー社)の操作用マニュアルに従って、視覚化された。
全RNAは、TRIzol(登録商標)試薬(インビトロゲン社)を標準的方法にて用いて分離した。当該全RNAから調製された一本鎖cDNAは、各々の遺伝子に特異的なプライマーで増幅された。定量リアルタイムRT−PCR(qRT−PCR)は、KAPA SYBR System(カパバイオシステム社)とABI PRISM 7500配列検出システム(アプライドバイオシステム社)を用いて、操作用マニュアルに従い行った。遺伝子発現値は、遺伝子産物(the genes of interest)と内部標準コントロール(GAPDH)若しくはU6の間の比率(Ct値の差違)により与えられ、そして引き続いてコントロール細胞における値と一緒に標準化される(相対的発現レベル)。用いられたプライマーとTaqManプローブの情報は表3と表4を参照のこと。表3において、フォワードプライマーを示す左側の欄の塩基配列の配列番号として、上から順番に配列番号22〜32を割り振り、リバースプライマーを示す右側の欄の塩基配列の配列番号として、上から順番に33〜43を割り振った。また、表4においてTaqManプローブの塩基配列の配列番号として、上から順に配列番号44〜48を割り振った。
腫瘍検体は、10%のホルムアルデヒド含有PBSによって固定化し、パラフィン包埋を行い、4μm厚の切片へと薄片化し、アビジン−ビオチン−ペルオキシダーゼ法でNRF2又はME1の免疫組織化学的染色を行った。パラフィンで包埋された腫瘍検体からの切片はキシレンで脱パラフィンを行い、エタノール中で再水和を行った。10mMのクエン酸緩衝液(pH6.0)中での煮沸による抗原の回復の後、当該切片は、内因性のペルオキシダーゼを不活性化するために0.3%過酸化水素含有メタノールで処理した。そして当該切片は、抗NRF2抗体(1/1000希釈)又は抗ME1抗体(1/500希釈)と一緒に4℃で一晩インキュベートした。結合した抗体は、色原体としてのジアミノベンディジン(VECTASTAIN-EluteABC Kit,ベクターラボラトリー社)を用いて可視化し、当該切片は素早くヘマトキシリンにて対比染色した。
NRF2のエクソン2又はKEAP1の全てのコーディング領域を含む遺伝子領域は、KOD−plus(TOYOBO社)を用いたPCRによって増幅した。PCR産物は、ExoSAP−IT(GEヘルスケア社)を用いて精製され、配列解析を行った。プライマーの情報は、上記表3を参照のこと。
遺伝子発現のアレイ解析のために、Agilent4×44K遺伝子発現アレイ(アジレントテクノロジーズ社)を、操作用マニュアルに従い用いた。各々の遺伝子アレイ実験は、二重に行われ、データはGeneSpring(アジレントテクノロジー社)で解析した。
7週齢の雌のBALB/cヌードマウスをオリエンタル酵母工業株式会社から購入し、無菌状態を保った。1×107cellsを含むPBS200μlをマウスの横腹に皮下注射した。1nmolの2本鎖RNA(アンビオン社)と200μlのAteroGene(KOKEN社)の混合物を、腫瘍と皮膚の間の空隙に投与した。マウスに、5mg/kg体重のシスプラチンの腹腔内投与を施した。細胞投与35日間後、マウスを安楽死させ腫瘍を摘出した。全てのマウスに対して行った実験の手順は、東京医科歯科大学の動物保護と利用委員会の承認を受けた。
サブグループ間の差違は、Student"s t-testによって検討した。対応する患者に関係する臨床病理学的な変化は、Χ2テスト、又は、フィッシャーの抽出テストによって解析された。生存の解析を行うために、Kaplan-Meierカーブが一変量の予測に基礎付けられた群のために構築され、群間の差違はlog-rank testによって検討した。インビボの実験の結果とA549細胞における細胞生存試験は、変化に対するtwo−way ANOVA(二要因の分散分析)を用いて統計学的有意性を解析した。計算されたP値が0.05未満(<0.05)の場合に統計学的な有意性有りと判断した。
[実施例1] NRF2の転写活性をネガティブ制御しているmiRNAのスクリーニング
NRF2の転写活性をネガティブ制御しているmiRNAを確認するために、我々はルシフェラーゼレポーターシステムを用いてmiRNAライブラリーをスクリーニングした。当該システムは、antioxidative responsible element(ARE)を動かすことでルシフェラーゼの発現の計測が可能である。このレポーターシステムを用いて、当該ARE活性が、HeLa細胞におけるNRF2蛋白レベルに依存して変化することを確認した(図1)。図1は、siRNAを用いたAREレポーターシステムの検証の結果を示す図面である。具体的には、AREルシフェラーゼレポータープラスミド及び内部標準コントロールベクターを用いて、HeLa細胞に共トランフェクションを行い、24時間後、コントロールsiRNA、又は、NRF2−siRNA(a)、若しくは、KEAP1−siRNA(b)でトランフェクションを行った。siRNAでのトランフェクションの48時間後、当該細胞溶解物のSDS−PAGEを行い、各々の抗体での免疫反応を行った(上部パネル)。一方で、ホタル又はウミシイタケルシフェラーゼ活性を測定し、Mock中のARE活性に対するARE活性を縦軸に示した(下部パネル)。バーは、標準偏差(SD)である。
4つの候補miRNA(hsa−miR−507、hsa−miR−634、hsa−miR−450a、及び、hsa−miR−129−5p)のための機能的標的を同定するために、まず、NRF2経路に関連していることが知られている遺伝子が、IPA(Ingenuity Systems Pathway Analysis, Redwood City, CA)(http://www.ingenity.com)を用いて、TargetScanプログラム(http://www.targetscan.org)により予測された標的の中に存在するかを調査した。コンピュータ内での分析により、意外にも、4つの候補miRNA全てが、NRF2それ自体を機能的に標的にしていることを見出した。なぜならば、hsa−miR−450aではない3つのmiRNAのためのシード配列は、NRF2の3’−UTRの中にマップされたからである(hsa−miR−507において2箇所、hsa−miR−634において1箇所、hsa−miR−129−5pにおいて2箇所)(図3(b))。図3(b)は、NRF2の3’UTR配列内における、4種の候補miRNAのシード配列(seed sequence)の相同配列とレポータープラスミドのデザインを示している。hsa−miR−507(2カ所)、hsa−miR−634(1カ所)、及び、hsa−miR−129−5p(2カ所)のシード配列が、NRF2の3’UTRにおいてマップされた。hsa−miR−450aのシード配列はhsa−miR−507と高度に相同している(7シード配列のうち6)から、hsa−miR−450a のシード配列はhsa−miR−507と同じサイトとして示されている。領域1(R1)、領域2(R2)又は変異R2はルシフェラーゼアッセイにおいて用いられた。黒い×印は、各々のシード配列に挿入された変異サイトを示している。
原発性の食道扁平上皮癌患者からの30検体においてqRT−PCR解析による各々のmiRNAのレベルを検討した。図5は、食道がん(食道扁平上皮癌:ESCC)由来の原発腫瘍検体における臨床的な意義とmiRNAの負の調節の関わりに関して検討した図面である。
一つのmiRNAは、一つのがん性経路に貢献する複数の遺伝子をターゲットにすることができるから、当該miRNAはこのがん性経路を伴う腫瘍に対して効果的であると考えられる。そして、当該4つのmiRNAのうちhsa−miR−507について、それがNRF2によって転写制御されている遺伝子を機能的にターゲットとすることができるかどうかを、発現アレイと経路解析を用いて検討し、これらの解析においてhsa−miR−507のトランスフェクションによって抑制されている、8種類のNRF2の転写標的遺伝子を見出した。そしてそれらの中でME1は、NRF2の3’−UTRへの結合を通じhsa−miR−507の直接的な標的であることを確認した(図6)。図6は、hsa−miR−507の標的としてのNRF2の転写標的遺伝子の同定の結果を示す図面である。図6(a)は、hsa−miR−507により負に制御されたNRF2の転写標的遺伝子の検証の結果を示している。hsa−miR−507又はNRF2−siRNAのトランスフェクションにより発現低下した遺伝子のうち、181は、TargetScanプログラムによりhsa−miR−507の標的として予測されたことを示している。図6(b)は、IPAを用いて、181の遺伝子の中で、NRF2の8つの転写標的(ME1,PSMB6,SLC7A11,MGLL,DNAJB5,LGALS8,B4GALNT1,EIF4G2)が、hsa−miR−507の標的とされることが予測されたことを示している。図6(c)は、ME1 3’−UTR中のhsa−miR−507のためのシード配列及びレポータープラスミドのための設計のマッピングを示している。ルシフェラーゼ分析を行うことによって、hsa−miR−507が、ME1 3’−UTRに直接的に結合するかを調べた結果を示している。hsa−miR−507のためのシード配列は、ME1 3’UTR中にマッピングされている。hsa−miR−507(野生型;WT)のためのシード配列又はその突然変異体のゲノム領域を有するレポータープラスミドをルシフェラーゼ分析において用いた。黒色の十字形は変異部位を示している。図6(d)は、レポータープラスミドを用いたルシフェラーゼ分析の結果を示している。レポータープラスミド及び内部標準コントロールベクターでHeLa細胞の共トランスフェクションを行い、24時間後、hsa−miR−507又はコントロールmiRNAでのトランスフェクションを行った結果を示している。miRNAでのトランスフェクションの48時間後、ホタル又はウミシイタケのルシフェラーゼ活性を測定した。コントロールmiRNAでのトランスフェクト細胞のルシフェラーゼ活性に対するルシフェラーゼ活性を縦軸に示す。空ベクターのルシフェラーゼ活性よりWT領域を持つベクターのルシフェラーゼ活性が弱かったが、シード配列中に変異を挿入することにより完全に修復された。バーは標準偏差(SD)である。図6(e)は、miRNAでのトランスフェクト細胞中のME1発現に関するウェスタンブロット分析の結果を示している。hsa−miR−507又はコントロールmiRNAでHeLa細胞のトランスフェクションを行った結果を示している。トランスフェクションの48時間後、細胞溶解物のSDS−PAGEを行い、指示された抗体での免疫反応を行い、hsa−miR−507のトランスフェクションが、実際に、ME1タンパク質に関する発現レベルの低下を引き起こすことを確認した。
(1)hsa−miR−634の投与によるインビトロでの腫瘍の細胞死誘導効果(1)(図9)
図9は、hsa−miR−634の腫瘍細胞に対するアポトーシス誘導効果についてインビトロで検討した結果を示す図面である。hsa−miR−634のインビトロでの腫瘍抑制効果を調べるために、hsa−miR−634を模した二本鎖RNA若しくはコントロールmiRNAをリポフェクション法により子宮頸癌細胞株HeLa細胞に導入し、その後、3日間培養した。導入1、2、3日後、それぞれ1%クリスタルバイオレットを含むPBS溶液で1分間染色し、水洗浄後、2%SDSを含むPBSバッファーにより1時間反応させた。その後、マルチプレートリーダーにより、染色強度を測定することにより、生存細胞の定量を行った。その結果、hsa−miR−634を発現させた細胞では、顕著な細胞増殖抑制および細胞死の誘導が確認された。ここで図9(A)は導入2日後の顕微鏡像であり、HeLa細胞に対して、hsa−miR−634をトランスフェクトして、これを5%CO2・37℃で48時間インキュベートした際の形態変化を顕微鏡写真にて表している。上段がコントロールmiRをトランスフェクトした細胞であり、下段がhsa−miR−634をトランスフェクトした細胞である。右側の写真は左側の写真の拡大図である。図9(B)は経時的な細胞増殖の抑制効果を追った結果を示しており、上記図9(A)のインキュベートを行いつつ、1日後、2日後及び3日後における細胞増殖の傾向を、CV染色による蛍光強度を指標に検討した図面である。Mockのみ用いた細胞群、コントロールmiRをトランスフェクトした細胞群、及び、miR−634をトランスフェクトした細胞群における結果を示している。
hsa−miR−634を模した二本鎖RNA若しくはコントロールmiRNAをリポフェクション法により食道癌細胞株KYSE170に導入した。図10の上段には、このhsa−miR−634とシスプラチン(CDDP)の組み合わせ投与のin vitro実験スケジュールを示した。このスケジュールに記載されているように、hsa−miR−634を模した二本鎖RNA若しくはコントロールmiRNAの添加量は、それぞれ0.2nMであり、シスプラチンを2.5μM添加した群と、5.0μM添加した群についてインキュベートを行い、検証した。インキュベート時間は72時間である。細胞死の誘導効果は、トリパンブルー染色により、細胞死した細胞をカウントし、全細胞数に対する細胞死した細胞数の頻度(%)で評価した。図10の下段のグラフはその結果を示している。縦軸が前記頻度を示している。特に、hsa−miR−634とシスプラチンを同時投与された細胞では、高頻度に細胞死が誘導されていることを表している。これにより、本発明の治療剤とシスプラチンとの併用による相乗的な抗がん効果が明らかになった。
インビボでのhsa−miR−634とシスプラチンの併用効果の検討は、ヌードマウスにKYSE170細胞を皮下注射することによって腫瘍を形成させることにより行った。図11の上段には、hsa−miR−634を模した二本鎖RNA若しくはコントロールmiRNAと、シスプラチン(CDDP)の組み合わせ投与のin vivo実験スケジュールを示した。腫瘍を形成させるためのインキュベート期間は7日間である。インキュベート7日目に、コントロールmiRNA又はhsa−miR−634を、KYSE170細胞によりヌードマウスの皮下に形成された腫瘍の周囲に計5回注射により投与した。加えてマウスにおける、PBS又はシスプラチンの腹腔内投与は、miRNA投与の1回目と4回目に、miRNA投与と同時に計2回行った。KYSE170細胞の注射から21日後にマウスを安楽死させ、腫瘍を摘出した。図11の下段のグラフは、摘出された腫瘍の重量(縦軸)を示している。当該下段のグラフにおいては7個体のPBSが用いられたマウスと、8個体のシスプラチンが用いられたマウスにおける、腫瘍の重量の「平均±SD値」を示している。両群間における顕著な差違がt−testによる解析により明らかになった。すなわち、p=0.0182がシスプラチン処理群でコントロールmiRNA群とhsa−miR−634投与間で認められ、p=0.00813がhsa−miR−634投与群でPBSとシスプラチン間で認められた。
図12(図12−1〜4)は、骨肉腫細胞株であるU2OS細胞へのhsa−miR−634の導入による標的遺伝子の発現抑制効果を示している。図12−1〜4の各図面の左側のグラフに結果を示したルシフェラーゼアッセイは、前述の「伝統的なルシフェラーゼアッセイ」の手法に従って行った。すなわち、各標的遺伝子の3’非翻訳領域(UTR)をpmirGlo Dual-Luciferase miRNA Target Expression Vector(プロメガ社)のルシフェラーゼ遺伝子の下流に挿入することにより、各々の検討に用いるルシフェラーゼリポータープラスミドを調製した。各々の標的遺伝子は、(a)XIAP (X-linked inhibitor of
apoptosis protein:図12−1)、 (b)APIP (APAF1 interacting protein:図12−2)、 (c)OPA1(optic atrophy 1:図12−3)、及び、(d)TFAM(transcription factor A, mitochondrial:図12−4)、である。これらの4種の蛋白をコードする遺伝子のUTRのシード配列を、配列番号52(XIAP)、53(APIP)、54(OPA1)、及び、55(TFAM)にて、配列表において示した。また全ての部位特異性変異は、KOD mutagenesis kit(TOYOBO社)を用いて行った。また、各グラフの「mt」は、各々の変異挿入プラスミド(mutant:mt)を示している。
Claims (20)
- ヒト検体における、hsa−miR−507、hsa−miR−634、hsa−miR−450a、hsa−miR−129−5p、hsa−miR−639、hsa−miR−337、hsa−miR−153、及び、hsa−miR−556、からなる群のマイクロRNAから選ばれる1種又は2種以上を定量して、当該定量値の低下を指標として、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、がん患者の予後、を鑑別することを特徴とする、マイクロRNAの測定方法。
- ヒト検体における、hsa−miR−507、hsa−miR−634、hsa−miR−450a、及び、hsa−miR−129−5p、からなる群のマイクロRNAから選ばれる1種又は2種以上を定量して、当該定量値の低下を指標として、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、がん患者の予後、を鑑別することを特徴とする、マイクロRNAの測定方法。
- ヒト検体における、hsa−miR−26a、hsa−miR−17−3p、hsa−miR−190、hsa−miR−567、hsa−miR−125b、hsa−miR−125a、hsa−miR−432*、及び、hsa−miR−29、からなる群のマイクロRNAから選ばれる1種又は2種以上を定量して、当該定量値の上昇を指標として、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、患者の予後、を鑑別することを特徴とする、マイクロRNAの測定方法。
- さらに腫瘍におけるNRF2遺伝子の変異、KEAP1遺伝子の変異、及び、p62蛋白の蓄積、からなる群から選ばれる1〜3種を検出して、これらの遺伝子変異を指標として加入することを特徴とする、請求項1〜3のいずれかに記載のマイクロRNAの測定方法。
- さらに腫瘍におけるXIAP、APIP、OPA1、及び、TFAMからなる群から選ばれる1〜4種の遺伝子の発現の亢進又は安定化を検出して、これらを指標として加入することを特徴とする、請求項1〜4のいずれかに記載のマイクロRNAの測定方法。
- 腫瘍の悪性度の増大、NRF2の活性化、又は、がん患者の予後の悪化、に向かうことを示す個別指標の総数をスコア指標として、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、患者の予後、を鑑別することを特徴とする、請求項1〜5のいずれかに記載のマイクロRNAの測定方法。
- ヒト検体は腫瘍検体又は血液検体であることを特徴とする、請求項1〜6のいずれかに記載のマイクロRNAの測定方法。
- 食道がん、肺がん、乳がん、口腔がん、胃がん、大腸がん、肝臓がん、子宮がん、若しくは、皮膚がんにおける、腫瘍の悪性度、NRF2の活性化、又は、患者の予後、を鑑別することを特徴とする、請求項1〜7のいずれかに記載のマイクロRNAの測定方法。
- hsa−miR−507の塩基配列である配列番号1、hsa−miR−634の塩基配列である配列番号2、hsa−miR−450aの塩基配列である配列番号3、hsa−miR−129−5pの塩基配列である配列番号4、hsa−miR−639の塩基配列である塩基配列5、hsa−miR−337の塩基配列である配列番号6、hsa−miR−153の塩基配列である配列番号7、及び、hsa−miR−556の塩基配列である配列番号8、からなる群の塩基配列から選ばれる1種又は2種以上を含む核酸からなるがん治療剤。
- hsa−miR−507の塩基配列である配列番号1、hsa−miR−634の塩基配列である配列番号2、hsa−miR−450aの塩基配列である配列番号3、hsa−miR−129−5pの塩基配列である配列番号4、からなる群の塩基配列から選ばれる1種又は2種以上を含む核酸からなるがん治療剤。
- 核酸は二本鎖RNAであることを特徴とする、請求項9又は10に記載のがん治療剤。
- がん細胞に対するストレスの付与手段と組み合わせて用いることを特徴とする、請求項9〜11のいずれかに記載のがん治療剤。
- がん細胞に対するストレスの付与手段は、抗癌剤、放射線療法、外科的手術、又は、生検、であることを特徴とする、請求項9〜12のいずれかに記載のがん治療剤。
- がん細胞は、NRF2が亢進又は安定化したがん細胞である、請求項9〜13のいずれかに記載のがん治療剤。
- がん細胞は、NRF2に加えて、XIAP、APIP、OPA1、及び、TFAMからなる群から選ばれる1〜4種が亢進又は安定化したがん細胞である、請求項14に記載のがん治療剤。
- がん治療剤の本質成分は、hsa−miR−634の塩基配列である配列番号2を含む核酸からなる、請求項15に記載のがん治療剤。
- (1)プラチナ製剤、及び、(2)hsa−miR−507の塩基配列である配列番号1を含む核酸又はhsa−miR−634の塩基配列である配列番号2を含む核酸、を組み合わせてなる、がん治療剤。
- プラチナ製剤はシスプラチンである、請求項17に記載のがん治療剤。
- がん細胞は、食道がん、肺がん、乳がん、口腔がん、胃がん、大腸がん、肝臓がん、子宮がん、骨肉腫、又は、皮膚がんのがん細胞であることを特徴とする、請求項9〜18のいずれかに記載のがん治療剤。
- 請求項9〜19のいずれかに記載のがん治療剤を含有することを特徴とする、がん治療のための医薬組成物。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2013027399 | 2013-02-15 | ||
JP2013027399 | 2013-02-15 | ||
PCT/JP2014/053594 WO2014126233A1 (ja) | 2013-02-15 | 2014-02-17 | マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 |
Related Child Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2018094747A Division JP6745071B2 (ja) | 2013-02-15 | 2018-05-16 | マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 |
Publications (3)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPWO2014126233A1 true JPWO2014126233A1 (ja) | 2017-02-02 |
JPWO2014126233A6 JPWO2014126233A6 (ja) | 2017-02-02 |
JP6587142B2 JP6587142B2 (ja) | 2019-10-09 |
Family
ID=51354231
Family Applications (2)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2015500326A Active JP6587142B2 (ja) | 2013-02-15 | 2014-02-17 | マイクロrnaからなるがん治療剤 |
JP2018094747A Active JP6745071B2 (ja) | 2013-02-15 | 2018-05-16 | マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 |
Family Applications After (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2018094747A Active JP6745071B2 (ja) | 2013-02-15 | 2018-05-16 | マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
US (2) | US9994843B2 (ja) |
EP (1) | EP2963125B1 (ja) |
JP (2) | JP6587142B2 (ja) |
DK (1) | DK2963125T3 (ja) |
ES (1) | ES2828510T3 (ja) |
WO (1) | WO2014126233A1 (ja) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN106676196B (zh) * | 2017-03-10 | 2019-05-07 | 上海核盾生物科技有限公司 | 一种用于诊断重度吸烟人群中肺鳞癌患者的非侵入性标记物及试剂盒 |
EP3479845A1 (en) * | 2017-11-06 | 2019-05-08 | Stalicla S.A. | Challenge test for diagnosing subtype of autism spectrum disease |
WO2020145350A1 (ja) | 2019-01-10 | 2020-07-16 | 国立大学法人大阪大学 | 免疫賦活用組成物 |
WO2020150480A1 (en) * | 2019-01-17 | 2020-07-23 | Board Of Regents, The University Of Texas System | Methods for treatment of lung cancers |
Citations (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2008519606A (ja) * | 2004-11-12 | 2008-06-12 | アンビオン インコーポレーティッド | miRNAおよびmiRNA阻害分子に関する方法および組成物 |
WO2009044899A1 (ja) * | 2007-10-03 | 2009-04-09 | Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. | 細胞の増殖を制御する核酸 |
WO2009136501A1 (ja) * | 2008-05-07 | 2009-11-12 | 北海道公立大学法人札幌医科大学 | 癌の検出方法および検出用キット、ならびに癌治療剤 |
WO2011111715A1 (ja) * | 2010-03-09 | 2011-09-15 | 協和発酵キリン株式会社 | 細胞周期を制御する核酸 |
WO2012121178A1 (ja) * | 2011-03-04 | 2012-09-13 | 独立行政法人国立がん研究センター | 腫瘍血管形成阻害剤 |
JP2012184230A (ja) * | 2004-12-20 | 2012-09-27 | Genentech Inc | Iapのピロリジンインヒビター |
WO2012174282A2 (en) * | 2011-06-16 | 2012-12-20 | Caris Life Sciences Luxembourg Holdings, S.A.R.L. | Biomarker compositions and methods |
Family Cites Families (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8361714B2 (en) | 2007-09-14 | 2013-01-29 | Asuragen, Inc. | Micrornas differentially expressed in cervical cancer and uses thereof |
JP5116026B2 (ja) | 2008-01-23 | 2013-01-09 | 富士フイルム株式会社 | 癌の検出方法および癌抑制剤 |
US8252760B2 (en) * | 2008-03-24 | 2012-08-28 | New York University | Compositions and methods for diagnosing and treating melanoma |
WO2011125245A1 (ja) * | 2010-04-05 | 2011-10-13 | 財団法人癌研究会 | miRNAを用いた小細胞肺癌の予後予測方法、小細胞肺癌治療方法、小細胞肺癌予後改善方法、及び小細胞肺癌治療剤のスクリーニング方法 |
US8765707B2 (en) * | 2011-04-22 | 2014-07-01 | University Of Houston System | MicroRNA-140-5p as a tumor suppressor and sensitizing agent for chemotherapy |
JP2013028575A (ja) * | 2011-07-29 | 2013-02-07 | Toray Ind Inc | Keap1タンパク質結合化合物、該Keap1タンパク質結合化合物とKeap1タンパク質の複合体の結晶及びその製造方法 |
WO2014022852A1 (en) * | 2012-08-03 | 2014-02-06 | Aptamir Therapeutics, Inc. | Cell-specific delivery of mirna modulators for the treatment of obesity and related disorders |
US9315809B2 (en) * | 2012-08-29 | 2016-04-19 | City Of Hope | Differentially expressed microRNA molecules for the treatment and diagnosis of cancer |
-
2014
- 2014-02-17 WO PCT/JP2014/053594 patent/WO2014126233A1/ja active Application Filing
- 2014-02-17 JP JP2015500326A patent/JP6587142B2/ja active Active
- 2014-02-17 DK DK14751787.4T patent/DK2963125T3/da active
- 2014-02-17 US US14/767,372 patent/US9994843B2/en active Active
- 2014-02-17 EP EP14751787.4A patent/EP2963125B1/en active Active
- 2014-02-17 ES ES14751787T patent/ES2828510T3/es active Active
-
2018
- 2018-05-16 JP JP2018094747A patent/JP6745071B2/ja active Active
-
2019
- 2019-01-07 US US16/241,269 patent/US10876115B2/en active Active
Patent Citations (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2008519606A (ja) * | 2004-11-12 | 2008-06-12 | アンビオン インコーポレーティッド | miRNAおよびmiRNA阻害分子に関する方法および組成物 |
JP2012184230A (ja) * | 2004-12-20 | 2012-09-27 | Genentech Inc | Iapのピロリジンインヒビター |
WO2009044899A1 (ja) * | 2007-10-03 | 2009-04-09 | Kyowa Hakko Kirin Co., Ltd. | 細胞の増殖を制御する核酸 |
WO2009136501A1 (ja) * | 2008-05-07 | 2009-11-12 | 北海道公立大学法人札幌医科大学 | 癌の検出方法および検出用キット、ならびに癌治療剤 |
WO2011111715A1 (ja) * | 2010-03-09 | 2011-09-15 | 協和発酵キリン株式会社 | 細胞周期を制御する核酸 |
WO2012121178A1 (ja) * | 2011-03-04 | 2012-09-13 | 独立行政法人国立がん研究センター | 腫瘍血管形成阻害剤 |
WO2012174282A2 (en) * | 2011-06-16 | 2012-12-20 | Caris Life Sciences Luxembourg Holdings, S.A.R.L. | Biomarker compositions and methods |
Non-Patent Citations (4)
Title |
---|
CARCINOGENESIS, vol. 31, no. 8, JPN6018038526, 2010, pages 1354 - 1359, ISSN: 0004100928 * |
MITSUISHI ET AL, CANCER CELL, vol. 22, JPN6014011335, 10 July 2012 (2012-07-10), pages 66 - 79, ISSN: 0003716390 * |
OHTA ET AL, CANCER RES., vol. 68, no. 5, JPN6014011328, 1 March 2008 (2008-03-01), pages 1303 - 1309, ISSN: 0003716389 * |
VOGLER ET AL, CANCER RES., vol. 69, no. 6, JPN6014011332, 15 March 2009 (2009-03-15), pages 2425 - 2434, ISSN: 0003716391 * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JP6587142B2 (ja) | 2019-10-09 |
EP2963125B1 (en) | 2020-09-30 |
WO2014126233A1 (ja) | 2014-08-21 |
EP2963125A4 (en) | 2016-11-02 |
US20160053257A1 (en) | 2016-02-25 |
JP6745071B2 (ja) | 2020-08-26 |
DK2963125T3 (da) | 2020-10-12 |
US10876115B2 (en) | 2020-12-29 |
ES2828510T3 (es) | 2021-05-26 |
US9994843B2 (en) | 2018-06-12 |
US20190367915A1 (en) | 2019-12-05 |
EP2963125A1 (en) | 2016-01-06 |
JP2018143248A (ja) | 2018-09-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Xiao et al. | Downregulation of HOXA1 gene affects small cell lung cancer cell survival and chemoresistance under the regulation of miR-100 | |
Murray et al. | Attenuation of dexamethasone-induced cell death in multiple myeloma is mediated by miR-125b expression | |
JP6745071B2 (ja) | マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 | |
Xiang et al. | Deregulation of miR-520d-3p promotes hepatocellular carcinoma development via lncRNA MIAT regulation and EPHA2 signaling activation | |
Xie et al. | MicroRNA-218 regulates cisplatin (DPP) chemosensitivity in non-small cell lung cancer by targeting RUNX2 | |
Liu et al. | MiR-30e inhibits tumor growth and chemoresistance via targeting IRS1 in Breast Cancer | |
US20110178163A1 (en) | Mir-182 in the diagnosis and treatment of cancer | |
Shi et al. | MicroRNA‑877 acts as a tumor suppressor by directly targeting eEF2K in renal cell carcinoma | |
EP3020828A1 (en) | Method of predicting response of cancer to treatment | |
Duan et al. | Targeted silencing of CXCR4 inhibits epithelial-mesenchymal transition in oral squamous cell carcinoma | |
Li et al. | CircCTDP1 promotes nasopharyngeal carcinoma progression via a microRNA‑320b/HOXA10/TGFβ2 pathway | |
EP4013869A1 (en) | New treatments involving mirna-193a | |
Ge et al. | Hsa-miR-889-3p promotes the proliferation of osteosarcoma through inhibiting myeloid cell nuclear differentiation antigen expression | |
Zhang et al. | MicroRNA-224 aggrevates tumor growth and progression by targeting mTOR in gastric cancer | |
Shao et al. | Silencing EGFR-upregulated expression of CD55 and CD59 activates the complement system and sensitizes lung cancer to checkpoint blockade | |
JPWO2014126233A6 (ja) | マイクロrnaの測定方法、並びに、がん治療剤及びこれを含有するがん治療のための医薬組成物 | |
Li et al. | MicroRNA‑23a inhibits endometrial cancer cell development by targeting SIX1 | |
JP2016064989A (ja) | 癌を治療するための医薬組成物、およびpd−1阻害剤による治療に対する感受性を評価する方法 | |
JP6543612B2 (ja) | 大腸癌の治療剤、及び大腸癌患者の予後の予測方法 | |
Merhi et al. | The complex network of transcription factors, immune checkpoint inhibitors and stemness features in colorectal cancer: A recent update | |
Chu et al. | CMPK1 regulated by miR-130b attenuates response to 5-FU treatment in gastric cancer | |
Wang et al. | miR-299-3p suppresses cell progression and induces apoptosis by downregulating PAX3 in gastric cancer | |
Jiang et al. | Effects of microRNA‑125b on multiple myeloma cell growth in vitro and in vivo | |
Yang et al. | DNMT3B regulates proliferation of A549 cells through the microRNA‑152‑3p/NCAM1 pathway | |
WO2013071502A1 (en) | Mir-193a-3p and associated genes predict tumorigenesis and chemotherapy outcomes |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20170209 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20180116 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20180301 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20180516 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20181002 |
|
A601 | Written request for extension of time |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601 Effective date: 20181129 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20190131 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821 Effective date: 20190131 |
|
A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20190611 |
|
A521 | Request for written amendment filed |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20190807 |
|
TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20190827 |
|
A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20190829 |
|
R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Ref document number: 6587142 Country of ref document: JP Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |