JPWO2009048067A1 - 糖鎖を持たない遺伝子組換え血液凝固第x因子およびその製法 - Google Patents
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Abstract
Description
Journal of Thrombosis and Haemostasis, 3: 2633-2648 (2005) Thrombosis Research 97: 51-67 (2000)
(1)二本鎖の遺伝子組換え血液凝固第X因子(以下、FXと称することもある)の効率的な生産方法であって、FXの糖鎖付加に必須なアミノ酸配列への糖鎖付加を阻害することにより、糖鎖を持たない遺伝子組換えFXを発現させることを特徴とする方法。
(2)糖鎖を持たない遺伝子組換えFXが、FX内の配列番号1に記載の181番目のアスパラギン(Asn181)部位および/または191番目のアスパラギン(Asn191)部位にアスパラギン型糖鎖を持たない遺伝子組換えFXである、上記(1)に記載の方法。
(3)Asn181部位および/またはAsn191部位にアスパラギン型糖鎖を持たない遺伝子組換えFXが、Asn181および/またはAsn191をAsn以外のタンパク質構成アミノ酸残基に置換することにより得られる、上記(2)に記載の方法。
(4)Asn181部位および/またはAsn191部位にアスパラギン型糖鎖を持たない遺伝子組換えFXが、配列番号1に記載の183番目のトレオニン(Thr183)部位と193番目のトレオニン(Thr193)部位とがトレオニン(Thr)またはセリン(Ser)以外のタンパク質構成アミノ酸残基に置換されることにより得られる、上記(2)に記載の方法。
(5)FXの糖鎖付加に必須なアミノ酸配列への糖鎖付加の阻害を、培養細胞培地中に糖転移酵素の阻害剤を添加することにより行う、上記(1)に記載の方法。
(6)糖転移酵素の阻害剤がツニカマイシン、RNAi、またはアンチセンスDNAのいずれかである上記(5)に記載の方法。
(7)FXの糖鎖付加に必須なアミノ酸配列への糖鎖付加の阻害を、宿主細胞として糖転移酵素欠損細胞株を使用することにより行う、上記(1)に記載の方法。
(8)上記(1)ないし(7)のいずれかの方法により得られる、糖鎖を持たない遺伝子組換えFX。
(9)上記(8)に記載の糖鎖を持たない遺伝子組換えFXをコードする塩基配列を含む遺伝子断片。
(10)上記(9)に記載の遺伝子断片を含む発現ベクター。
(11)上記(10)に記載の発現ベクターが導入された形質転換体。
(12)上記(8)に記載の糖鎖を持たない遺伝子組換えFXを有効成分として含有する医薬組成物。
(13)上記(12)に記載の医薬組成物からなる血友病患者の治療に有効な薬剤。
ヒト肝臓cDNAライブラリー(オリジーン社)を購入し、文献等(Molecular Basis of Thrombosia and Hemostasis edited by K. A. High and H. R. Roberts, Marcel Dekker, Inc. 1995)で公知のプレプロ配列を含むFXのアミノ酸配列をコードするcDNA配列(配列表3に記載)を基にSalIサイトを付加したFX合成DNAセンスプライマー(FX-S; GGCGTCGACCCACCATGGATGGGGCGCCCACTGCACCTC:配列番号10)及び、XhoIサイトを付加したアンチセンスプライマー(FX-AS; CTCGAGTTATCACTTTAATGGAGAGGA:配列番号11)を用いてPCRを行い、市販のクローニングベクターpCRII(Invitrogen社)にクローニングした。この際、常法によりDNAシークエンスを行い、文献等で公知の配列を有することを確認した。
発現ベクターpCAGG(特許第2824434号公報)をSalIで消化し、そこにFXをコードした配列を含む上記実施例1で調製したDNAフラグメントをSalI/XhoIでカットしたものをライゲーションし、大腸菌JM109に形質転換し、アンピシリン含有のLB寒天培地上で培養し、形質転換大腸菌を選択した。出現したコロニーを市販の培地で一晩培養し、目的の発現プラスミドを抽出精製し「pCAGFX」を調製した。この発現ベクターのDNAシークエンスを行い、目的の遺伝子配列を有することを確認した。
実施例1記載のFXのcDNAを制限酵素SalI/XhoIにて消化・抽出し、これをタカラ社製Site-Directed MutagenesisキットMutan-Super Express Km付属のpKFベクターへリクローニングし、キットの添付文書に従い、5'リン酸化合成DNAプライマー配列(表1)を作製し、これを用いて、目的部位荷電アミノ酸のアラニン置換体計6種を作製した。全ての改変体は、自動DNAシークエンサー(ベックマン社製)にて配列を確認した。
発現ベクターpCAGG(特許第2824434号公報)をSalIで消化し、そこに点変異を導入した上記実施例3で調製したベクターをSalI/XhoIで消化して得られたフラグメントをライゲーションした。得られたベクターを大腸菌JM109に形質転換し、アンピシリン含有のLB寒天培地上で培養し、形質転換大腸菌を選択した。出現したコロニーを市販の培地で一晩培養し、目的の発現プラスミドを抽出精製し調製した。
実施例4で得られた改変体FX発現ベクターを、市販のリポフェクチン試薬(TransIT;タカラ社製)でBHK細胞に対して遺伝子導入を行い、一時発現培養上清を遺伝子導入後3日目に回収した。そして、その上清をセントリコンYM-10(ミリポア社製)で10倍濃縮後、市販のFX定量ELISAキット(フナコシ製)により定量した(表2)。
各改変体の凝固活性は常法に従い、FX欠乏血漿を用いた凝固法で測定した。精製した各改変体を10ng/ml〜10μg/mlになるようにベロナール緩衝液(28.5mMバルビタールナトリウム、125.6mM NaCl、pH7.35)で希釈し、FX欠乏血漿と混合し、37℃で加温後、APTT試薬を添加し、0.025M塩化カルシウム溶液を添加して凝固反応を開始させた。凝固時間を測定し、標準曲線と希釈率より凝固活性を求めた(表2)。さらに凝固活性を蛋白濃度(実施例5、ELISA法で測定)当たりに換算し比活性を求めた(表2)。その結果、本願発明のFX改変体の中に、血漿由来FXあるいは野生型組換えFXと比較して、高い発現量と凝固活性を有するものが存在した(N181A、N191A)(表2)。
常法により(Current Protocols in Molecular Biology:Chapter 10 analysis of proteins、Chapter 11 immunologyなど)、本酵素のウエスタンブロット法による検出を行った。具体的には、遺伝子組み換え体の発現の確認として、実施例5に示す手順で得られた改変体発現BHK細胞の培養上清の還元状態でのSDS-PAGEを行った後、PVDF膜への転写後、抗ヒトFXモノクローナル抗体により確認した(図1)。その結果、明らかにAsn181、Asn191のアスパラギン型糖鎖付加サイトに変異を加えたものでは、二本鎖発現が優位であった。
Claims (13)
- 二本鎖の遺伝子組換え血液凝固第X因子(以下、FXと称することもある)の効率的な生産方法であって、FXの糖鎖付加に必須なアミノ酸配列への糖鎖付加を阻害することにより、糖鎖を持たない遺伝子組換えFXを発現させることを特徴とする方法。
- 糖鎖を持たない遺伝子組換えFXが、FX内の配列番号1に記載の181番目のアスパラギン(Asn181)部位および/または191番目のアスパラギン(Asn191)部位にアスパラギン型糖鎖を持たない遺伝子組換えFXである、請求項1に記載の方法。
- Asn181部位および/またはAsn191部位にアスパラギン型糖鎖を持たない遺伝子組換えFXが、Asn181および/またはAsn191をAsn以外のタンパク質構成アミノ酸残基に置換することにより得られる、請求項2に記載の方法。
- Asn181部位および/またはAsn191部位にアスパラギン型糖鎖を持たない遺伝子組換えFXが、配列番号1に記載の183番目のトレオニン(Thr183)部位と193番目のトレオニン(Thr193)部位とがトレオニン(Thr)またはセリン(Ser)以外のタンパク質構成アミノ酸残基に置換されることにより得られる、請求項2に記載の方法。
- FXの糖鎖付加に必須なアミノ酸配列への糖鎖付加の阻害を、培養細胞培地中に糖転移酵素の阻害剤を添加することにより行う、請求項1に記載の方法。
- 糖転移酵素の阻害剤がツニカマイシン、RNAi、またはアンチセンスDNAのいずれかである請求項5に記載の方法。
- FXの糖鎖付加に必須なアミノ酸配列への糖鎖付加の阻害を、宿主細胞として糖転移酵素欠損細胞株を使用することにより行う、請求項1に記載の方法。
- 請求項1ないし7のいずれかの方法により得られる、糖鎖を持たない遺伝子組換えFX。
- 請求項8に記載の糖鎖を持たない遺伝子組換えFXをコードする塩基配列を含む遺伝子断片。
- 請求項9に記載の遺伝子断片を含む発現ベクター。
- 請求項10に記載の発現ベクターが導入された形質転換体。
- 請求項8に記載の糖鎖を持たない遺伝子組換えFXを有効成分として含有する医薬組成物。
- 請求項12に記載の医薬組成物からなる血友病患者の治療に有効な薬剤。
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