JPWO2007064038A1 - Ｌｍｐ２を用いた子宮平滑筋肉腫の検出 - Google Patents

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Abstract

本発明は、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法の提供を目的とする、ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥをマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法である。

Description

本発明は、ＬＭＰ２およびサイクリンＥ、ならびにインターフェロンγ（ＩＦＮ−γ）シグナル伝達カスケードに関与するＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子およびＬＭＰ２プロモーターにおける変異をマーカーとして用いる、子宮平滑筋肉腫の検出方法および子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫の鑑別検出方法に関する。
子宮癌は婦人科の癌で最も多いが、子宮平滑筋肉腫は発症頻度が低く子宮体部癌の２〜５％である。子宮平滑筋肉腫は、子宮頚部よりも子宮体部の筋肉層から多く発生する。子宮筋層は平滑筋よりできており、子宮筋層の中にできる良性の腫瘍が子宮平滑筋腫であり、悪性の腫瘍が子宮平滑筋肉腫である。子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫を鑑別することは非常に難しく、通常手術をして組織を採取し、顕微鏡下での細胞検査により判断していた。子宮平滑筋肉腫は異型性が強く巨大化することもある腫瘍細胞が増殖していることが多い。しかし、ほとんど細胞異型性を示さない場合もあり、細胞異型性の有無は決定的な鑑別基準とはならない。子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫との鑑別は、専ら凝固壊死があるかどうか、および細胞分裂像が増大しているかどうかにより行う。原則的には、細胞密度が高い場合には１０倍高視野で１０個以上の細胞分裂がある場合、腫瘍細胞に異型性が認められる場合には１０倍高視野で５個以上ある場合に、子宮平滑筋肉腫と診断される。現実的には、腫瘍細胞の細胞異型度、細胞密度、細胞分裂の数、腫瘍内の壊死、出欠の有無等を参考に、主として顕微鏡および肉眼で組織の形態を観察して鑑別していた。しかしながら、このような鑑別を行うためには熟練を要し、必ずしも確実に鑑別できない場合もあった。
本発明者は、先にイムノプロテアーゼの構成因子であるＬＭＰ２（ｌｏｗ ｍｏｌｅｃｕｌａｒｍａｓｓ ｐｏｌｙｐｅｐｔｉｄｅ２）を欠損したマウスのメスにおいて、生後６ヶ月以降に子宮平滑筋肉腫（ｌｅｉｏｍｙｏｓａｒｃｏｍａ）が認められ、生後１２ヶ月までの発症率が全ＬＭＰ２欠損マウスのメスの約３５％にまでおよぶことを報告した（非特許文献１および２参照）。ＬＭＰ２の機能は、組織特異的であり、ＣＴＬｓによるＭＨＣクラスＩ仲介腫瘍拒絶に不可欠の役割を持っている（非特許文献１参照）。
このように、ＬＭＰ２の欠損が何らかの機能で子宮平滑筋肉腫の発症のファクターになっていることは予測できた。しかしながら、ＬＭＰ２が含まれる２６Ｓプロテアソームは、転写調節因子や細胞周期調節因子等の活性化、ＭＨＣクラスＩ分子のペプチド抗原の産生等に複雑に関与しており、ＬＭＰ２と子宮平滑筋肉腫の発症との直接の関係は不明であり、子宮平滑筋肉腫が発症した場合に、２６Ｓプロテアソームの機能がどう変化し、またＬＭＰ２の転写発現がどう変化するかは不明であった。
Ｖａｎ Ｋａｅｒ Ｌ．ｅｔ ａｌ．（１９９４）Ｉｍｍｕｎｉｔｙ，１，５３３−５４１ Ｈａｙａｓｈｉ Ｔ．ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，６２，２４−２７
本発明は、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法およびそのための検出試薬の提供を目的とする。
本発明者は、筋肉層におけるＬＭＰ２の発現を調べるためにマウスの生体を抗ＬＭＰ２で染色してみた。その結果、平滑筋、横紋筋、心筋等の筋原性組織に特異的なＬＭＰ２の発現が認められることから、ＬＭＰ２欠損マウスの子宮平滑筋層で認められた腫瘍細胞の起源が筋原性細胞（平滑筋細胞）であることを新たに見出した。
さらに、本発明者は正常子宮平滑筋層、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の生検組織または手術組織におけるＬＭＰ２の発現状況を調べた。その結果、悪性腫瘍である子宮平滑筋肉腫のみにおいて、顕著なＬＭＰ２の発現低下が認められることを見出した。
本発明者は、次いでＬＭＰ２の発現低下が、子宮平滑筋細胞において形質転換（癌化）に直接的に関与しているか検討するため、ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ＳＫＮ細胞の形態、細胞増殖速度およびＳＫＮ細胞におけるファイブロネクチンの発現変化について検討した。その結果、ＳＫＮ細胞において、形態および細胞増殖速度が正常子宮平滑筋細胞に近づき、さらに有意なファイブロネクチンの発現誘導が起こることを見出した。
本発明者は上記の新知見から、ＬＭＰ２の転写発現を指標に子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫の鑑別診断をし得ること、およびＬＭＰ２の発現により子宮平滑筋肉腫の治療を行い得ることを見出した。
本発明者らは、さらにサイクリンＥの発現と子宮平滑筋肉腫との関係に着目し、子宮平滑筋組織において、子宮平滑筋肉腫の悪性度に依存してサイクリンＥの転写・発現が著しく亢進することを見出した。
また、本発明者らは、ＬＭＰ２の発現に関与するインターフェロンγ（ＩＦＮ−γ）シグナル伝達系に関与する遺伝子と子宮平滑筋肉腫との関係について検討を行なった。その結果、子宮平滑筋肉腫組織の細胞において同シグナル伝達因子であるＪＡＫ１キナーゼ、ＳＴＡＴ１をコードする遺伝子およびＬＭＰ２プロモーターに変異が生じていることを見出し、該変異を検出することにより、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、および子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクが高いか否かを判定することを見出した。
以上のようにして、本発明者らは本発明を完成させた。
すなわち、本発明は以下の通りである。
［１］ ＬＭＰ２をマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法。
［２］ 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する方法。
［３］ 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
［４］ 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に悪性子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
［５］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用いｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションを行いＬＭＰ２の転写を測定する、［１］〜［４］のいずれかの方法。
［６］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２のｍＲＮＡを抽出しＲＴ−ＰＣＲまたはノーザンブロットを行いＬＭＰ２の転写を測定する、［１］〜［４］のいずれかの方法。
［７］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用い免疫組織化学染色または免疫細胞化学染色を行いＬＭＰ２の発現を測定する、［１］〜［４］のいずれかの方法。
［８］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２タンパク質を抽出しイムノアッセイを行いＬＭＰ２の発現を測定する、［１］〜［４］のいずれかの方法。
［９］ さらに、ミオシンをマーカーとして用い、ＬＭＰ２およびミオシンの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつミオシンの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する［１］の方法。
［１０］ ＬＭＰ−２およびサイクリンＥをマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法。
［１１］ 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンＥの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する方法。
［１２］ 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンＥの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
［１３］ 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンＥの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に悪性子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
［１４］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用いｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションを行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写を測定する、［１０］〜［１３］のいずれかの方法。
［１５］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２およびサイクリンＥのｍＲＮＡを抽出しＲＴ−ＰＣＲまたはノーザンブロットを行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写を測定する、［１０］〜［１３］のいずれかの方法。
［１６］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用い免疫組織化学染色または免疫細胞化学染色を行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの発現を測定する、［１０］〜［１３］のいずれかの方法。
［１７］ 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２およびサイクリンＥタンパク質を抽出しイムノアッセイを行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの発現を測定する、［１０］〜［１３］のいずれかの方法。
［１８］ 少なくともＬＭＰ２遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含む、ＬＭＰ２をマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
［１９］ 少なくともＬＭＰ２遺伝子断片およびサイクリンＥ遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含む、ＬＭＰ２およびサイクリンＥをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
［２０］ ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション用試薬である［１８］または［１９］の子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
［２１］ さらに、ミオシン遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含み、ＬＭＰ２およびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための［１８］または［２０］の検出試薬。
［２２］ さらに、ミオシン遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含み、ＬＭＰ２、サイクリンＥおよびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための［１９］または［２０］の検出試薬。
［２３］ 少なくとも抗ＬＭＰ２抗体を含む、ＬＭＰ２をマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
［２４］ 少なくとも抗ＬＭＰ２抗体および抗サイクリンＥ抗体を含む、ＬＭＰ２およびサイクリンＥをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
［２５］ 免疫組織化学または免疫細胞染色用試薬である［２３］または［２４］の子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
［２６］ さらに、抗ミオシン抗体を含み、ＬＭＰ２およびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための［２３］または［２５］の検出試薬。
［２７］ さらに、抗ミオシン抗体を含み、ＬＭＰ２、サイクリンＥおよびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための［２４］または［２５］の検出試薬。
［２８］ ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の以下の（Ａ１）〜（Ａ６）の変異部位の少なくとも１つを含むＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の部分配列、およびＬＭＰ２プロモーターの以下の（Ｂ１）〜（Ｂ５）の変異部位の少なくとも１つを含むＬＭＰ２プロモーターの部分配列からなる群から選択される部分配列からなるオリゴヌクレオチドまたはその標識物であって、１０から３０塩基からなる部分配列またはその部分配列に相補的な配列からなるオリゴヌクレオチドまたはその標識物：
（Ａ１） Ａ２６１２Ａ
（Ａ２） Ｇ２６２６Ａ
（Ａ３） Ｇ２６４２Ｔ
（Ａ４） Ａ２９６７Ｃ
（Ａ５） Ａ２９６０Ｃ
（Ａ６） Ａ２９８５Ｔ
（Ｂ１） Ａ２１０Ｇ
（Ｂ２） Ｃ２１４Ｔ
（Ｂ３） Ａ２１６Ｇ
（Ｂ４） Ａ２１７Ｇ
（Ｂ５） Ｇ２１９Ａ。
［２９］ プローブとして用いられる［２８］のオリゴヌクレオチドまたはその標識物。
［３０］ ［２８］のオリゴヌクレオチドまたはその標識物を固定化した固定化基板。
［３１］ ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の以下の（Ａ１）〜（Ａ６）の変異部位の少なくとも１つ、およびＬＭＰ２プロモーターの以下の（Ｂ１）〜（Ｂ５）の変異部位の少なくとも１つからなる群から選択される変異部位を含むＤＮＡ断片の増幅に用いる少なくとも一対のプライマーセットであって、上記変異部位の３’側および５’側に存在する１０から３０塩基からなる部分配列からなる、ＤＮＡ断片の増幅に用い得る一対のプライマーセット：
（Ａ１） Ａ２６１２Ａ
（Ａ２） Ｇ２６２６Ａ
（Ａ３） Ｇ２６４２Ｔ
（Ａ４） Ａ２９６７Ｃ
（Ａ５） Ａ２９６０Ｃ
（Ａ６） Ａ２９８５Ｔ
（Ｂ１） Ａ２１０Ｇ
（Ｂ２） Ｃ２１４Ｔ
（Ｂ３） Ａ２１６Ｇ
（Ｂ４） Ａ２１７Ｇ
（Ｂ５） Ｇ２１９Ａ。
［３２］ ［３１］のプライマーセット、［２８］もしくは［２９］のオリゴヌクレオチドもしくはその標識物、または［３０］の固定化基板を含む子宮平滑筋肉腫検出キット。
［３３］ 動物から採取した子宮平滑筋組織または細胞におけるＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の以下の（Ａ１）〜（Ａ６）の変異部位の少なくとも１つ、およびＬＭＰ２プロモーターの以下の（Ｂ１）〜（Ｂ５）の変異部位の少なくとも１つからなる群から選択される変異部位の検出を行い、その結果に基づいて、上記変異が存在する場合に、前記動物が子宮平滑筋肉腫に罹患しているか、または罹患するリスクが高いと判断する、子宮平滑筋肉腫の検出方法：
（Ａ１） Ａ２６１２Ａ
（Ａ２） Ｇ２６２６Ａ
（Ａ３） Ｇ２６４２Ｔ
（Ａ４） Ａ２９６７Ｃ
（Ａ５） Ａ２９６０Ｃ
（Ａ６） Ａ２９８５Ｔ
（Ｂ１） Ａ２１０Ｇ
（Ｂ２） Ｃ２１４Ｔ
（Ｂ３） Ａ２１６Ｇ
（Ｂ４） Ａ２１７Ｇ
（Ｂ５） Ｇ２１９Ａ。
［３４］ ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、またはＭＰ２プライマーの変異の検出を［３１］のプライマーセット、［２８］もしくは［２９］のプローブまたは［３０］の固定化基板を用いて行う［３３］の方法。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願２００５−３４７２２７号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
図１ａは、ＳＫＮ細胞の中でのＩＦＮ−γ誘導性ＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現の欠損を示す写真である。写真に示す時間２５０ユニット／ｍｌのＩＦＮ−γで処理したＨｅＬａ、ＨｅＬａ．Ｓ３、ＳＫＮ細胞およびヒト正常子宮平滑筋細胞（Ｈｕ．ＵＳＭＣ）から細胞質抽出を調製し、５０μｇの細胞質抽出物を１０％のＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離した。ＴＡＰ１、ＬＭＰ２およびβアクチンの発現レベルは適切な抗体を用いたイムノブロット分析で調べた。
図１ｂは、ＳＫＮ細胞の中でのＩＦＮ−γ誘導性ＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現の欠損を示す写真であり、ＲＴ−ＰＣＲによるＨｅＬａ、ＨｅＬａ．Ｓ３、ＳＫＮ細胞およびＨｕ．ＵＳＭＣ細胞中のＴＡＰ１、ＬＭＰ２およびβアクチンのｍＲＮＡ発現の試験の結果を示す写真である。ＩＦＮ−γ（２５０ユニット／ｍｌ）の非存在下または存在下で細胞を４８時間培養した後に、プライマーを用いてＲＴ−ＰＣＲを行った。ＲＴ−ＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ製品をアガロース・ゲルにより分離した。ＤＮＡサイズマーカーは写真の左側に示す。
図１ｃは、子宮平滑筋肉腫の中でのＬＭＰ２発現の欠損を示す写真であり、正常子宮平滑筋および子宮平滑筋腫中のＬＭＰ２の免疫組織化学の結果を示す写真である。組織標本の５μｍの切片を抗ＬＭＰ２抗体およびペルオキシダーゼ結合抗ウサギのＩｇＧ抗体を用いて染色した。
図２は、ＨｅＬａおよびＳＫＮ細胞中でのＩＦＮ−γ誘導ＴＡＰ１とＬＭＰ２共有のｗｔおよびＩＲＦ−Ｅ ｍｔプロモーターの示差活性を示す図である。ＴＡＰ１とＬＭＰ２共有のプロモーターｗｔ（ＴＡＰ１ ５９３−１／ｐＧＬ３およびＬＭＰ２ １−５９３／ｐＬＧ３）の図ならびにそれらのそれぞれのＩＲＦ−Ｅ変異体プロモーターを含んだルシフェラーゼレポーター遺伝子の構築物を示す。ＨｅＬａおよびＳＫＮ細胞に同レポーター遺伝子を移入し、ＩＦＮ−γを２４時間後に添加しさらに回収の前２４時間細胞をインキュベートした。レポーター遺伝子の移入効率の標準化のためにｐＳＭＶ−β ＧＡＬとの同時に移入した。結果は、ＨｅＬａおよびＳＫＮ細胞について別々に測定されたルシフェラーゼ遺伝子発現に標準化され、相対的ＴＡＰ１およびＬＭＰ２活性として示される。結果は３つの独立している実験の平均で示され、エラーバーはＳＥを表す。
図３は、ヒト正常子宮平滑筋組織の顕微鏡写真である。
図４は、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の顕微鏡写真である。
図５は、ヒト子宮内膜間質肉腫の顕微鏡写真である。
図６は、正常子宮平滑筋、子宮平滑筋腫および子宮平滑筋肉腫の免疫組織化学染色写真である。
図７は、同一組織における子宮平滑筋肉腫部位と正常子宮平滑筋部位の免疫組織化学染色写真である。子宮平滑筋肉腫部位においてＬＭＰ２の発現低下が認められる。
図８は、ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ＳＫＮ細胞の形態の変化を示す写真である（その１）。
図９は、ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ＳＫＮ細胞の形態の変化を示す写真である（その２）。
図１０は、ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ＳＫＮ細胞のファイブロネクチンの発現変化を示す写真である。
図１１は、ヒト正常子宮平滑筋細胞（ＨｕＵＳＭＣ）におけるファイブロネクチンの発現変化を示す写真である。
図１２は、各細胞における形態の変化、細胞増殖速度、およびファイブロネクチンの発現状況のまとめを示す図である。
図１３は、マウス骨格筋組織、心筋組織および平滑筋組織におけるＬＭＰ２発現を示す写真である。
図１４は、子宮平滑筋肉腫、子宮平滑筋腫および他臓器で発症した平滑筋肉腫におけるＬＭＰ２の発現を示す図である。
図１５は、ＩＮＦγシグナル伝達経路とＬＭＰ２の発現の関係を示す図である。
図１６は、子宮平滑筋肉腫組織由来のＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子およびＬＭＰ２プロモーターの変異を示す図である。
図１７は、子宮平滑筋肉腫組織由来のＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子およびＬＭＰ２プロモーターの変異を示す図である。
図１８は、各組織におけるＬＭＰ２の発現状況を示す図である。図１８において、Ｎは、ＬＭＰ２の発現を検査した組織の症例数を示す。
図１９は、ｐＣＥＭ９ベクター（ＬＭＰ２遺伝子が含まれていない）またはｐＣＥＭ９−ＬＭＰ２ベクター（ＬＭＰ２遺伝子がふくまれている）をヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞（ＳＫＮ細胞）に移入し、ネオマイシンにより選択された各ベクターを取り込んだ場合の、ＳＫＮ細胞の増殖により形成されたコロニーの数を示す図である。１μｇのｐＣＥＭ９およびｐＬＭＰ２ ＤＮＡを２×１０５細胞のＤＴ細胞又はＳＫＮ細胞にトランスフェクトし、０．５または０．４ｍｇ／ｍｌのＧ４１８を含む成長培地中でセレクトした。
図２０は、ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ＳＫＮ細胞の形態の変化を示す写真である。
図２１は、各細胞における形態の変化、細胞増殖速度、およびファイブロネクチンの発現状況のまとめを示す図である。
図２２は、ＬＭＰ２を恒常的に発現させたＳＫＮ細胞が腫瘍形成能の指標であるコロニー形成を著しく低下していることを示す写真である。
図２３Ａは、ＬＭＰ２を恒常的に発現させたＳＫＮ細胞がヌードマウスへの移植実験により腫瘍形成能を著しく低下していることを示す写真である。
図２３Ｂは、ＬＭＰ２を恒常的に発現させたＳＫＮ細胞がヌードマウスへの移植実験により腫瘍形成能を著しく低下していることを示す図である。
図２３Ｃは、ｐＣＥＭ９−ＬＭＰ２ベクター（ＬＭＰ２遺伝子が含まれている）を移入したヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞（ＳＫＮ細胞）のコロニー＃１２１が、ＳＫＮ細胞と比較してＬＭＰ２遺伝子を著しく発現していることを示す写真である。
図２４は、マイクロアレイを用いた遺伝子発現解析の結果、ＬＭＰ２を恒常的に発現させたＳＫＮ細胞（コロニー＃１２１）では、細胞増殖を誘導するサイクリンＥの発現が著しく低下していることを示す図である。
図２５は、サイクリンＥプロモーターを含んだルシフェラーゼレポーター遺伝子の構造を示す図である。
図２６は、ＳＫＮ細胞とＬＭＰ２を恒常的に発現しているＳＫＮ細胞（コロニー＃１２１と＃１２２）での、サイクリンＥプロモーター活性を示す図である。子宮平滑筋肉腫培養細胞ＳＫＮ細胞で認められた顕著なサイクリンＥの発現は、ＬＭＰ２の恒常的な発現により著しく低下した。
図２７は、ヒト子宮平滑筋肉腫組織におけるサイクリンＥの顕著な発現を示す組織染色写真である。正常な子宮平滑筋層においては、サイクリンＥの発現は認められないが、悪性腫瘍であるヒト子宮平滑筋肉腫組織では、サイクリンＥの顕著な発現が認められる。
図２８は、ヒト子宮平滑筋肉腫組織における分裂期の核内でのサイクリンＥの発現を示す組織染色写真である。通常、細胞増殖を誘導するサイクリンＥは、細胞増殖の開始期であるＧ１期に細胞質において過剰に発現し、速やかに核内へと移行しＳ期において染色体の合成を開始させる。その後、サイクリンＥは、Ｓ期の後半から即座に分解される。したがって、正常な細胞のＧ２期とＭ期においては、サイクリンＥの発現は認められない。しかし、ヒト子宮平滑筋肉腫組織において、分裂期の核内での顕著なサイクリンＥの発現が認められる。
本発明はＬＭＰ２をマーカーとして用いて、子宮平滑筋肉腫を検出する。ここで、検出とは、子宮平滑筋肉腫が存在するかどうかを判定すること、患者が子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうか判定すること、子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別すること、子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定すること等を含む。
ＬＭＰ２は、プロテアソームのサブユニットであり、本発明の方法においては、子宮平滑筋層において、ＬＭＰ２が転写発現しているかどうかを検出する。ヒトの子宮平滑筋層の組織でのＬＭＰ２の転写発現を調べると、正常な子宮平滑筋層と子宮平滑筋腫では、ＬＭＰ２の発現は陽性（中程度から強陽性）であるのに対して、子宮平滑筋肉腫では、ＬＭＰ２の発現は陰性の部分が多く弱陽性の部分が若干認められる。従って、ＬＭＰ２の転写発現を指標に子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうか、あるいは子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫か子宮平滑筋肉腫のいずれかであるかを鑑別診断することができる。また、良性腫瘍である子宮平滑筋腫ではＬＭＰ２の転写発現は強いのに対して、悪性化した腫瘍である子宮平滑筋肉腫ではＬＭＰ２の転写発現が著しく減弱する。このことは、ＬＭＰ２の転写発現が子宮平滑筋細胞に認められる腫瘍に対して悪性度の指標になることを示す。
さらに、本発明は、サイクリンＥ（ＣｙｃｌｉｎＥ）をマーカーとして用いて、子宮平滑筋肉腫を検出する方法を包含する。サイクリンは、サイクリン依存性キナーゼの活性を調節する細胞周期で重要な役割を果たすタンパク質であり、サイクリンＥは、ほ乳類細胞のＧ１期において作用するＧ１サイクリンの一つである。サイクリンＥは、子宮平滑筋肉腫組織において、正常組織に比較して発現が著しく上昇するが、子宮平滑筋腫組織においては上昇しない。本発明においては、ＬＭＰ２と同様に子宮平滑筋層において、サイクリンＥが転写発現しているかどうかを検出する。サイクリンＥの転写発現を指標に子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうか、あるいは子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫か子宮平滑筋肉腫のいずれかであるかを鑑別診断することができる。また、良性腫瘍である子宮平滑筋腫ではサイクリンＥの転写発現は正常子宮平滑筋組織と比べて変化がないのに対して、悪性化した腫瘍である子宮平滑筋肉腫ではサイクリンＥの転写発現が亢進する。さらに、通常、増殖期にある正常な細胞のＧ２期とＭ期においては、サイクリンＥの発現は認められない。しかし、ヒト子宮平滑筋肉腫組織において、分裂期の核内での顕著なサイクリンＥの発現が認められる。このことは、サイクリンＥの転写発現が子宮平滑筋細胞に認められる腫瘍に対して悪性度の指標になることを示す。
また、ＬＭＰ２とサイクリンＥを同時に検出してもよい。ＬＭＰ２の転写発現が減弱し、かつサイクリンＥの転写発現が亢進している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判断することができる。ＬＭＰ２またはサイクリンＥ単独を指標とする場合よりも、ＬＭＰ−２およびサイクリンＥの両方を指標とした場合に、より正確に子宮平滑筋肉腫を検出することが可能である。
本発明においては、子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうかの判断、子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫か子宮平滑筋肉腫のいずれかであるかの鑑別診断、および子宮平滑筋細胞に認められる腫瘍の悪性度の評価を含めて子宮平滑筋肉腫の検出と呼ぶ。
本発明の方法においては、子宮平滑筋層におけるＬＭＰ２および／もしくはサイクリンＥの転写もしくは発現のいずれかまたは両方を検出することにより、子宮平滑筋肉腫を検出することができる。ＬＭＰ２またはサイクリンＥの転写はＬＭＰ２またはサイクリンＥをコードするｍＲＮＡを測定することにより検出することができ、ＬＭＰ２またはサイクリンＥの発現はＬＭＰ２またはサイクリンＥタンパク質を測定することにより検出することができる。
ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの転写を検出する場合、子宮平滑筋層の組織または細胞を生体試料として採取し、該試料中に含まれるＬＭＰ２および／またはサイクリンＥをコードするｍＲＮＡを測定すればよい。ｍＲＮＡの測定のためには、子宮平滑筋組織からバイオプシーにより組織の一部を採取し、また子宮平滑筋組織より綿棒等を用いて採取し、材料として用いる。組織の採取は、例えば通常の外来診察中に、子宮内腔にバイオプシー用のかん子を挿入し、１〜２ｍｍ角程度の子宮組織片を採取すればよい。ｍＲＮＡの測定は採取した組織または細胞からｍＲＮＡを抽出して行ってもよいし、組織切片標本を作製するか、または採取した細胞をスライドガラス上に固定し、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法により染色して行ってもよい。あるいは、抽出したｍＲＮＡをノーザンブロット法やＲＴ−ＰＣＲ等の公知のＲＮＡ測定法により測定すればよい。ｍＲＮＡの抽出は公知の方法、例えば、新生化学実験講座２ 核酸１ 分離精製 東京化学同人 １９９１年７月１０日や分子生物学実験プロトコールＩ 丸善株式会社 平成９年６月３０日の記載に従って行うことができる。ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションは、例えば分子生物学実験プロトコールＩＩＩ 丸善株式会社 平成９年８月３０日の記載に従って行うことができる。この際、ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥをコードするｍＲＮＡを特異的に測定するために、ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥをコードするｍＲＮＡの部分配列に相補的な部分配列からなるプローブまたはプライマーを用いる。ＬＭＰ２の塩基配列は公知であり（例えば、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｕ０１０２５、配列番号１、配列番号２はＬＭＰ２タンパク質のアミノ酸配列を示す）、公知の塩基配列情報に基づいて、プローブまたはプライマーを設計することができる。同様に、サイクリンＥの塩基配列も公知であり（例えば、ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号Ｍ７３８１２、配列番号８）該プライマーまたはプローブは、上記のＬＭＰ２および／またはサイクリンＥ遺伝子の断片であり、塩基の数は５〜５０、好ましくは１０〜３０、さらに好ましくは１５〜２５である。
ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの発現を検出する場合、子宮平滑筋層の組織または細胞を生体試料として採取し、該試料中に含まれるＬＭＰ２および／またはサイクリンＥタンパク質を測定すればよい。子宮平滑筋層の組織または細胞は上記のようにして採取すればよい。また、ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥタンパク質の測定も、組織または細胞からタンパク質を抽出し、該抽出物中のＬＭＰ２および／またはサイクリンＥタンパク質を測定してもよいし、免疫組織化学または免疫細胞化学の手法により行ってもよい。抽出したタンパク質の測定は、ＥＬＩＳＡ、ラジオイムノアッセイ等の公知の免疫測定法（イムノアッセイ）を用いればよい。この際、ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥに対する抗体が必要であるが、抗ＬＭＰ２抗体および／または抗サイクリンＥ抗体は公知の手法によりモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体として作製すればよい。また、市販の抗ＬＭＰ２抗体および／または抗サイクリンＥ抗体を用いることもできる。抗体は必要に応じて、酵素、蛍光物質、放射性同位元素により標識して用いるが、抗体の標識は公知の方法により行うことができる。免疫組織化学または免疫細胞化学の手法による測定は、採取した子宮平滑筋組織切片標本を作製するか、採取した細胞をスライドガラス上に固定して行う。免疫組織化学の手法による測定のためには、組織を例えば、ホルマリンで固定し、パラフィン中に包埋し、ミクロトーム等の薄切装置で１〜５μｍ程度の厚さの切片標本を作製し、測定時にキシレンやエタノール処理等によりパラフィンを除去し、生理食塩水または緩衝液に浸して親水化すればよい。染色は、酵素、蛍光物質、放射性同位元素等で標識した抗ＬＭＰ２抗体および／または抗サイクリンＥ抗体を用いてもよいし、抗ＬＰＭ２抗体を切片標本中のＬＭＰ２および／またはサイクリンＥに結合させた後に、抗ＬＭＰ２抗体および／または抗サイクリンＥ抗体に結合する２次抗体であって酵素、蛍光物質等で標識した２次抗体を用いてもよい。標識に用いる酵素として、例えば西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ等が挙げられ、蛍光物質として、例えばフルオレセイン、ローダミン等が挙げられる。また、公知のビオチン−アビジン複合体を利用して染色してもよい。免疫細胞化学は採取した細胞をホルマリン等によりスライドガラス上に固定し、免疫組織化学の手法と同様の方法で細胞中のＬＭＰ２および／またはサイクリンＥを可視化すればよい。免疫組織化学または免疫細胞化学において、染色は顕微鏡や肉眼で判断することもできるし、適当な光学的測定装置を用いてもよい。免疫組織化学による染色は、例えば分子生物学実験プロトコールＩＩＩ 丸善株式会社 平成９年８月３０日刊行の記載に従って行うことができる。
上記のように、子宮平滑筋組織または細胞におけるＬＭＰ２の転写または発現を検出し、ＬＭＰ２の転写または発現が喪失しているか、または低下している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。また、子宮平滑筋組織または細胞におけるサイクリンＥの転写または発現を検出し、サイクリンＥの転写または発現が亢進している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。さらに、ＬＭＰ２とサイクリンＥの両方の転写または発現を同時に検出してもよい。ＬＭＰ２の転写または発現が喪失しているか、または低下しており、なおかつサイクリンＥの転写または発現が亢進している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。例えば、組織または細胞の抽出物中のＬＭＰ２ ｍＲＮＡもしくはＬＭＰ２タンパク質またはサイクリンＥ ｍＲＮＡもしくはサイクリンＥタンパク質を測定する場合、あらかじめ子宮平滑筋肉腫に罹患していない正常人の単位重量組織または単位細胞数当りのＬＭＰ２ ｍＲＮＡもしくはＬＭＰ２タンパク質またはサイクリンＥ ｍＲＮＡもしくはサイクリンＥタンパク質を測定する。正常人の値よりＬＭＰ２ ｍＲＮＡまたはＬＭＰ２タンパク質が有意に低い場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定し得、正常人の値よりサイクリンＥ ｍＲＮＡまたはサイクリンＥタンパク質が有意に高い場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定し得る。
また、組織または細胞のＬＭＰ２の転写または発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、免疫組織化学、免疫細胞化学により検出する場合、組織または細胞が染色されず、ＬＭＰ２の転写、発現が認められない場合は、その部分の組織または細胞は子宮平滑筋肉腫組織または細胞であり、組織または細胞を採取した患者は子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。さらに、組織または細胞のサイクリンＥの転写または発現をｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション、免疫組織化学、免疫細胞化学により検出する場合、組織または細胞が強く染色され、サイクリンＥの転写、発現が強く認められる場合は、その部分の組織または細胞は子宮平滑筋肉腫組織または細胞であり、組織または細胞を採取した患者は子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。この際、子宮平滑筋肉腫でない正常組織および子宮平滑筋肉腫組織の染色組織切片標品または染色細胞標品をあらかじめ作製しておき、該標品と比較してもよい。
ＬＭＰ２の転写または発現の検出は、子宮平滑筋腫瘍に罹患した患者の腫瘍が悪性か良性か、すなわち、子宮平滑筋肉腫かそれとも子宮平滑筋腫かの鑑別に利用することもできる。この場合、ＬＭＰ２の転写または発現が喪失しているか、正常組織に比較して有意に低下している部分の組織は、悪性の子宮平滑筋肉腫であると判定することができる。また、サイクリンＥの転写または発現の検出は、子宮平滑筋腫瘍に罹患した患者の腫瘍が悪性か良性か、すなわち、子宮平滑筋肉腫かそれとも子宮平滑筋腫かの鑑別に利用することもできる。この場合、サイクリンＥの転写または発現が、正常組織に比較して有意に亢進している部分の組織は、悪性の子宮平滑筋肉腫であると判定することができる。この際、ＬＭＰ２およびサイクリンＥの両方を検出することにより、悪性度についてより正確な判断が可能になり、また、より正確に鑑別を行なうことができる。さらに、組織を用いたｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションまたは免疫組織化学の手法によれば、組織のどの部分が正常でどの部分が子宮平滑筋肉腫部分かを鑑別することもできる。さらに、例えば、組織切片の単位体積当り、または単位細胞数当りのＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの転写または発現が喪失しているかまたは低下している細胞の数を測定することにより、子宮平滑筋腫瘍の悪性度を判定することができる。
さらに、従来の子宮平滑筋肉腫の診断方法と本発明のＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫を診断する方法を組合せることにより、より精度の高い検出を行うことができる。従来法として、細胞の形態、密度等を観察する方法、またはミオシンの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫を診断する方法が挙げられ、これらの方法は主に組織または細胞を固定して行われてきた。すなわち、組織切片標本または細胞スライドガラス標本を作製し、該標本の細胞の形態や密度を測定し、さらに、ミオシンの転写または発現を測定し、さらに、ＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの転写または発現を測定すればよい。
本発明は、さらにＬＭＰ２遺伝子を子宮平滑筋肉腫患者に投与することにより、子宮平滑筋肉腫を治療する方法、ＬＭＰ２遺伝子を含む遺伝子治療のための遺伝子治療剤も包含する。遺伝子治療における目的の遺伝子の子宮平滑筋肉腫患者への導入は公知の方法により行うことができる。遺伝子を患者への導入する方法として、ウイルスベクターを用いる方法および非ウイルスベクターを用いる方法があり、種々の方法が公知である（別冊実験医学、遺伝子治療の基礎技術、羊土社、１９９６；別冊実験医学、遺伝子導入＆発現解析実験法、羊土社、１９９７；日本遺伝子治療学会編、遺伝子治療開発研究ハンドブック、エヌ・ティー・エス、１９９９）。遺伝子導入のためのウイルスベクターとしては、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レトロウイルス等のウイルスベクターを用いた方法が代表的なものである。無毒化（ウイルス自身の複製が起こらない）したレトロウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス、シンビスウイルス、センダイウイルス、ＳＶ４０、免疫不全症ウイルス（ＨＩＶ）等のＤＮＡウイルスまたはＲＮＡウイルスに目的とする遺伝子を導入し、細胞に組換えウイルスを感染させることによって、細胞内に遺伝子を導入することが可能である。また、プラスミドベクター等の遺伝子発現ベクターを用いて、ＬＭＰ２遺伝子を細胞や組織に導入することができる。例えば、リポフェクション法、リン酸−カルシウム共沈法、ＤＥＡＥ−デキストラン法、微小ガラス管を用いたＤＮＡの直接注入法などにより細胞内へ遺伝子を導入することができる。また、内包型リポソーム（ｉｎｔｅｒｎａｌ ｌｉｐｏｓｏｍｅ）による遺伝子導入法、静電気型リポソーム（ｅｌｅｃｔｒｏｓｔａｔｉｃ ｔｙｐｅ ｌｉｐｏｓｏｍｅ）による遺伝子導入法、ＨＶＪ−リポソーム法、改良型ＨＶＪ−リポソーム法（ＨＶＪ−ＡＶＥリポソーム法）、ＨＶＪ−Ｅ（エンベロープ）ベクターを用いた方法、レセプター介在性遺伝子導入法、パーティクル銃で担体（金属粒子）とともにＤＮＡ分子を細胞に移入する方法、ｎａｋｅｄ−ＤＮＡの直接導入法、種々のポリマーによる導入法等によっても、組換え発現ベクターを細胞内に取り込ませることが可能である。この場合に用いる発現ベクターとしては、生体内で目的遺伝子を発現させることのできるベクターであれば如何なる発現ベクターも用いることができるが、例えばｐＣＡＧＧＳ（Ｇｅｎｅ １０８，１９３−２００（１９９１））や、ｐＢＫ−ＣＭＶ、ｐｃＤＮＡ３、ｐＺｅｏＳＶ（インビトロゲン社、ストラタジーン社）、ｐＶＡＸ１などの発現ベクターが挙げられる。
ＬＭＰ２遺伝子を含むベクターは、遺伝子を転写するためのプロモーターやエンハンサー、ポリＡシグナル、遺伝子が導入された細胞の標識および／または選別のためのマーカー遺伝子等を含んでいてもよい。この際のプロモーターとしては、公知のプロモーターを用いることができる。
ＬＭＰ２遺伝子を含む遺伝子治療剤は、ＬＭＰ２遺伝子を含むベクターならびに薬理学的に許容され得る担体、希釈剤もしくは賦形剤を含む。担体、希釈剤、賦形剤としては、製剤分野において通常用いられるものを用いることができる。例えば、錠剤用の担体、賦形剤としては、乳糖、ステアリン酸マグネシウムなどが使用される。注射用の水性液としては、生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液などが使用され、適当な溶解補助剤、たとえばアルコール、プロピレングリコールなどのポリアルコール、非イオン界面活性剤などと併用しても良い。油性液としては、ゴマ油、大豆油などが使用され、溶解補助剤としては安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどを併用しても良い。本発明の遺伝子治療剤は、子宮平滑筋肉腫部位に局所投与することが好ましく、例えば子宮平滑筋肉腫部位に注射により投与すればよい。
投与量は、症状、年齢、体重などによって異なるが、子宮平滑筋肉腫患者体内でＬＭＰ２を発現する発現ベクター等に挿入されたＬＭＰ２遺伝子は、数日または数週間または数ヶ月おきに１回あたり、０．００１ｍｇ〜１００ｍｇを子宮平滑筋肉腫部位に注射等により直接投与すればよい。
本発明は、さらにインターフェロンγ（ＩＦＮ−γ）シグナル伝達カスケードに関与する特定の因子における変異により子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、または子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクを有しているか否かを判定する方法をも包含する。
正常細胞においては、ＩＦＮ−γによりＬＭＰ２の遺伝子は活性化されるのに対して、子宮平滑筋肉腫細胞においては、ＩＦＮ−γによるＬＭＰ２の活性化はほとんど認められない。ＩＦＮ−γによるＬＭＰ２の活性化は、図１５にメカニズムを示すようにＪＡＫ１キナーゼ、ＪＡＫ２キナーゼ、ＳＴＡＴ１などを介して、ＩＲＦ−１が発現誘導され、ＬＭＰ−２遺伝子のプロモーターに結合することにより生じる。ＩＦＮ−γシグナル伝達に関与する因子のうち、ＪＡＫ１キナーゼ及びＳＴＡＴ１遺伝子の変異、並びにＬＭＰ２のプロモーター領域の変異によりシグナル伝達が遮断され、ＬＭＰ−２の発現が阻害される。
変異は以下のとおりである。以下、例えば遺伝子の変異をＡ２１０Ｇで表した場合、遺伝子の塩基配列の２１番目のＡがＧに置換していることを示す。また、遺伝子のコードするタンパク質のアミノ酸配列の変異をＧ８７１Ｅで表した場合、アミノ酸配列中、８７１番目のグリシン（Ｇ）がグルタミン酸（Ｅ）に置換していることを示す。
ＪＡＫ１キナーゼにおける変異
遺伝子変異 対応アミノ酸変異 変異の存在するドメイン
Ａ２６１２Ａ Ｇ７８１Ｅ ＡＴＰ ｂｉｎｄｉｎｇ
Ｇ２６２６Ａ Ｇ８７６Ｒ ＡＴＰ ｂｉｎｄｉｎｇ
Ｇ２６４２Ｔ Ｃ８８１Ｆ ＡＴＰ ｂｉｎｄｉｎｇ
Ａ２９６７Ｃ Ｇ９８６Ｐ ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅ
Ａ２９６０Ｃ Ｙ９８７Ｓ ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅ
Ａ２９８５Ｔ Ｒ９９５Ｓ ａｃｔｉｖｅ ｓｉｔｅ
ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の塩基配列を配列番号３に、ＪＡＫ１キナーゼのアミノ酸配列を配列番号４に示す。
ＳＴＡＴ１における変異
ＳＴＡＴ１遺伝子の塩基配列を配列番号５に、ＳＴＡＴ１のアミノ酸配列を配列番号６に示す。
ＬＭＰ２プロモーター
遺伝子変異 対応アミノ酸変異 変異の存在するドメイン
Ａ２１０Ｇ ＩＲＦ−Ｅ ｓｉｔｅ
Ｃ２１４Ｔ ＩＲＦ−Ｅ ｓｉｔｅ
Ａ２１６Ｇ ＩＲＦ−Ｅ ｓｉｔｅ
Ａ２１７Ｇ ＩＲＦ−Ｅ ｓｉｔｅ
Ｇ２１９Ａ ＩＲＦ−Ｅ ｓｉｔｅ
ＬＭＰ２プロモーターの遺伝子配列を配列番号７に示す。
ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子およびＬＭＰ２プロモーターの全長ＤＮＡまたはその断片は塩基配列情報に基づいて容易に得ることができる。
本発明は、上記のＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子またはＬＭＰ２プロモーターの塩基の変異を検出し、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否かを検出する方法若しくは子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクが高いか否かを判定する方法、並びに上記のＪＡＫ１キナーゼまたはＳＴＡＴ１のアミノ酸の変異を検出し、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否かを検出する方法若しくは子宮筋肉腫に罹患するリスクが高いか否かを判定する方法を包含する。
遺伝子における塩基の変異は、上記変異部位を含む遺伝子の断片をプローブとして、またはＤＮＡチップ、ＤＮＡマイクロアレイ技術において固相化するＤＮＡとして用いればよい。その場合の、断片の塩基長は全長でもよいが、通常は１５ｂｐ〜１００ｂｐが好ましく、さらに１５ｂｐ〜５０ｂｐが好ましく、特に１８ｂｐ〜３０ｂｐが好ましい。断片に含まれる変異部位は、１つだけでもよいし、複数、すなわち２個、３個、４個、５個または６個でもよい。
また、上記断片に相補的な配列を有するＤＮＡも本発明の範囲である。相補的なＤＮＡも本願明細書の開示に基づいて得ることができる。
本発明のプローブは、検出のために蛍光物質、酵素、放射性同位体、化学発光物質等で標識されていてもよい。標識に用いる標識物質は、公知のものを用い、公知の方法で標識することができる。蛍光物質としては、例えば、Ｃｙ３、Ｃｙ５、ローダミン、フルオレセイン等が挙げられる。
さらに、上記の遺伝子変異を検出するＰＣＲ−ＲＦＬＰ等のＰＣＲに用いるプライマーも本発明の範囲である。すなわち、本発明は上記のＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子及びＬＭＰ２プロモーターの変異部位の３’側および５’側に存在する１０から３０塩基からなる部分配列からなる、ＤＮＡ断片の増幅に用い得る一対のプライマーセットを包含する。
変異は、本発明のＤＮＡを用いてＰＣＲ法、サザンハイブリダイゼーション法、ノーザンハイブリダイゼーション法、定量的ＰＣＲ法、ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション法、ＦＩＳＨ（Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｈｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎ）、ＰＣＲ−ＲＦＬＰ法、ＰＣＲ−ＳＳＣＰ法等により、検出することができる。
例えば、まずＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子またはＬＭＰ２プロモーターの変異塩基部分を含むヌクレオチド配列に相補的なプローブ、ならびに野生型遺伝子の該変異塩基部分に対応する部分を含むヌクレオチド配列に相補的なプローブを調製する。用いるプローブの長さに制限はなく、後述の核酸増幅法で増幅しようとする核酸断片の全長でもよいが、通常は１５ｂｐ〜１００ｂｐが好ましく、さらに１５ｂｐ〜５０ｂｐが好ましく、特に１８ｂｐ〜３０ｂｐが好ましい。プローブは、放射性同位元素、蛍光物質、酵素等で標識したものを用いてもよい。次いで、子宮平滑筋組織から採取した組織または細胞検体試料中の変異塩基部分を含む遺伝子断片を核酸増幅法により増幅し、この増幅断片とプローブを反応させる。検体試料中のＤＮＡが野生型、変異型のいずれのプローブとハイブリダイズするか調べることにより、上記遺伝子ＤＮＡに変異が生じているか否かを検出することができる。本発明のプローブは、１塩基のミスマッチを検出するため、そのハイブリダイゼーション条件は、ストリンジェントなものであることが必要である。ハイブリダイゼーション時の温度、塩濃度を調節することにより１塩基のミスマッチのみを検出し得るハイブリダイゼーション条件を選択することが可能である。用いるプローブＤＮＡの長さにも依存するが、例えば具体的には、ナトリウム濃度が１５０〜９００ｍＭ、好ましくは６００〜９００ｍＭであり、温度が６０〜６８℃、好ましくは６５℃での条件で行い得る。
核酸増幅の際に用いるプライマーとしては、上記遺伝子の変異部位を挟み増幅しようとする領域の端部と相補的な配列を用いることができる。増幅する領域の塩基長に制限はないが、数十から数百塩基とすることができる。増幅領域に上記ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子またはＬＭＰ２プロモーターＤＮＡの変異を１つだけ含むように増幅塩基長を設定してもよいし、複数の変異、すなわち、２個、３個、４個、５個または６個の変異を含むように設定してもよい。また、プライマーを変異部位を含む領域に設定することも可能である。プライマーの長さに制限はないが、好ましくは１５ｂｐ〜５０ｂｐ、さらに好ましくは２０ｂｐ〜３０ｂｐである。
さらに、本発明のＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子またはＬＭＰ２プロモーター部位の変異を含むＤＮＡ配列またはその断片に相補的なＤＮＡを用いて、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、または子宮平滑筋肉腫患の罹患のリスクを決定するためのＤＮＡチップを作製することもできる。この際、本発明のＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子またはＬＭＰ２プロモーター部位の変異を含む部分に相補的なＤＮＡ断片をニトロセルロース、ナイロン等のメンブレン、スライドグラス等に固相化すればよい。この際、固相化するＤＮＡ断片の塩基長は、通常は１５ｂｐ〜１００ｂｐが好ましく、さらに１５ｂｐ〜５０ｂｐが好ましく、特に１５ｂｐ〜２５ｂｐが好ましい。次いで、該ＤＮＡチップを放射性同位元素、酵素、蛍光色素等で標識した被験体由来のＤＮＡまたはＲＮＡと接触させ、ハイブリダイズを形成するか否かにより検体中に変異を有する核酸が含まれているかどうかがわかる。
変異の検出は子宮平滑筋肉組織から採取した組織片、細胞から核酸を抽出して行なえばよい。
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
ヒト子宮平滑筋肉腫におけるＬＭＰ２の転写および発現
本実施例においては、以下に記載する材料及び方法を用いて検討を行った。
細胞株および培地
ヒト子宮平滑筋肉腫細胞株であるＳＫＮ細胞（ＲＣＢ０５１３）は、理化学研究所セルバンクから購入し、０．６％のＬ−グルタミン（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）および１５％の牛胎児血清（シグマ−オルドリッチ社）を補足したＦ−１２Ｎｕｔｒｉｅｎｔ Ｍｉｘｔｕｒｅ（Ｈａｍ）培地（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）で維持した。ＨｅＬａ細胞およびＨｅＬａ．Ｓ３細胞は０．６％のＬ−グルタミンおよび１０％の牛胎児血清を補足したダルベッコのＭＥＭで維持した。ヒト子宮平滑筋細胞はＣａｍｂｒｅｘ ＢｉｏＳｃｉｅｎｃｅ Ｗａｉｌｅｒｓｖｉｌｌｅ社から購入し、メーカーのプロトコルに従って維持した。
逆転写ポリメラーゼ連鎖反応（ＲＴ−ＰＣＲ）分析
ＴＡＰ１、ＬＭＰ２、β２−ｍおよびβアクチンの転写物をＲＴ−ＰＣＲにより調べた。細胞を２５０ユニット／ｍｌのヒトＩＦＮ−γ（Ｐｅｐｒｏ Ｔｅｃｈ社）で処理しないかまたは４８時間処理し、ＲＮＡを回収した。トータルＲＮＡはＴＲＩｚｏｌ試薬（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いメーカーのプロトコルに従って５×１０６細胞から調製した。ＲＮＡは、Ｓｕｐｅｒｓｃｒｉｐｔ ＩＩｅｎｚｙｍｅ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社）を用いて逆転写し、１本鎖ｃＤＮＡをＴＡＰ１、ＬＭＰ２、β２ｍおよびβアクチン転写物を増幅するのに用いた。ＰＣＲは適切なプライマーを用いて、３０秒９４℃３５サイクル、３０秒６０℃、１．５分７２℃および追加の５分のプログラムで行い、転写物を伸長させた（Ｃａｂｒｅｒａ ＣＭ．ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｔｉｓｓｕｅ Ａｎｔｉｇｅｎｓ，６１，２１１−２１９；Ｍｉｙａｇｉ Ｔ．ｅｔ ａｌ．（２００３）Ｊ．Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌ．Ｈｅｐａｔｏｌ．，１８，３２−４０）。
免疫組織化学（Ｉｍｍｕｎｏｈｉｓｔｃｈｅｍｉｓｔｒｙ＝ＩＨＣ）
ＩＨＣは、Ｈｓｕ ＳＭ．ｅｔ ａｌ．（１９８１）Ｊ．Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ．Ｃｙｔｏｃｈｅｍ．２９，５７７−５８０に記載の方法によりアビジン−ビオチン複合体を用いて行った。すなわち、子宮平滑筋肉腫患者から得られた子宮摘出標本のパラフィン包埋サンプルから代表的な６つの５μｍ組織切片を作製した。切片はパラフィン除去しアルコール中で再水和し、正常マウス血清を用いて２０分間インキュベートした。次いで、切片を抗ＬＭＰ２抗体（Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｒｅｓ．Ｐｒｏｄｕｃｔｓ社、希釈１／１００）を用いて１時間室温でインキュベートした。その後、切片をビオチン化２次抗体（Ｄａｋｏ社）とともにインキュベートした。反応を３、３’−ジアミノベンジジンを用いて完了し、スライドをヘマトキシリンで対比染色した。標本中の正常子宮平滑筋組織を陽性対照として用いた。組織切片からなる陰性対照も、１次抗体の代わりに正常ウサギＩｇＧとともにインキュベートした。
免疫沈降反応およびイムノブロット
細胞質抽出物および核抽出物は２５０ユニット／ｍｌのヒトＩＦＮ−γで処理したか、または処理しない５×１０６細胞から調製した（Ｂｒｕｃｅｔ Ｍ．ｅｔ ａｌ．（２００４）Ｇｅｎｅｓ Ｉｍｍｕｎ．，５，２６−３５）。細胞を１２００ｒｐｍ、１０分間の遠心分離により回収し、５ｍｌの氷冷ＰＢＳで洗浄し、５分間、１２０００ｒｐｍ、４℃で遠心分離した。細胞をペレット化し、０．４ｍｌのバッファーＡ（１０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．８；１０ｍＭ ＫＣｌ；２ｍＭ ＭｇＣｌ２；１ｍＭ ＤＴＴ；０．１ｍＭ ＥＤＴＡ；およびコンプリートプロテアーゼインヒビターカクテル（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒ Ｌａｂ社）中で一度洗浄し、２時間、４℃でインキュベートした。次いで、１０％のＮｏｎｉｄｅｔ Ｐ−４０溶液２５μｌを添加し、細胞を１時間、４℃で激しく混ぜ、次に、５分間、１２０００ｒｐｍで遠心分離した。遠心分離の後に上清を細胞質抽出物として回収し、−８０℃で保存した。ペレット化核は、４０μｌのバッファーＣ（５０ｍＭ Ｈｅｐｅｓ、ｐＨ７．８；５０ｍＭ ＫＣｌ；３００ｍＭ ＮａＣｌ；０．１ｍＭ ＥＤＴＡ；１ｍＭ ＤＴＴ；１０％（ｖ／ｖ）グリセロール）に再懸濁し、４℃で２時間混ぜて、５分間、４℃で１２０００ｒｐｍ遠心分離した。核タンパク質を含む上清を回収し、−８０℃で保存した。
ＳＴＡＴ１、リン酸化状態のＳＴＡＴ１、ＪＡＫ１、ＪＡＫ２、ＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現を検出するために、細胞可溶化液または細胞質抽出物を１０％ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル（ＳＤＳ−ＰＡＧＥ）で分離し、抗ＳＴＡＴ１抗体、抗リン酸化ＳＴＡＴ１抗体（Ｓａｎｔａ−Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．社）、抗ＪＡＫ１、抗ＪＡＫ２抗体（Ｃｈｅｍｉｃｏｎ Ｉｎｔ’ｌ社）、抗体ＴＡＰ１抗体（Ｓｔｒｅｓｓｇｅｎ社）または抗ＬＭＰ２抗体（Ａｆｆｉｎｉｔｉ Ｒｅｓ．Ｐｒｏｄｕｃｔｓ社）を用いて標準方法でイムノブロットを行った。ＩＲＦ１またはＩＲＦ２発現の検出のために、核抽出物を１０％のＳＤＳ−ＰＡＧＥページで分離し、抗ＩＲＦ１抗体（Ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ Ｌａｂ．社）、抗ＩＲＦ２抗体（Ｓａｎｔａ−Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．社）を用いて標準方法でイムノブロットを行った。目的のタンパク質の発現は、アルカリフォスファターゼを結合した２次抗体を用いてアルカリフォスファターゼ発色をメーカーのプロトコールに従って行うことで、可視化して検討された。
図に示す時間２５０ユニット／ｍｌのＩＦＮ−γで処理するか処理しなかった５×１０６細胞からの細胞全体の抽出物を、５０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ、０．１ｍＭ ＥＤＴＡ、２００ｍＭ ＮａＣｌ、１０％グリセロール、０．５％ＮＰ−４０、１ｍＭ ＤＴＴおよびコンプリートプロテアーゼインヒビターカクテル（Ｋｉｒｋｅｇａａｒｄ＆Ｐｅｒｒ Ｌａｂ．社）を含むバッファーで溶解した。細胞可溶化液は、正常ウサギの血清（Ｓａｎｔａ−Ｃｒｕｚ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．社）および２０ｍｌのプロテインＧ Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（Ａｍｅｒｓｈａｍ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）であらかじめ清澄化し、次に、２μｇの抗ＪＡＫ１または抗ＪＡＫ２抗体を用いて免疫沈降を行った。サンプルを１０％のＳＤＳ−ＰＡＧＥで分離し、Ｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐメンブランにトランスファーした。リン酸化タンパク質は、抗チロシンリン酸化抗体を１次抗体として反応させた後アルカリフォスファターゼを結合した２次抗体を用いてアルカリフォスファターゼ発色をメーカーのプロトコールに従って行うことで、可視化して検討された。ＩＦＮ−γＲ１鎖発現を検出するために、細胞全体のライセートは上述のように分離した。ブロットは抗ＩＦＮ−γＲ１鎖抗体（ＰＢＬ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ研究所）を用いて行った。ＳＫＮ細胞をｐＲＫ５コントロール（２μｇ）またはＪＡＫ１発現ベクター（２μｇ）（Ｓｔ．Ｊｕｄｅ Ｃｈｉｌｄｒｅｎ Ｒｅｓｅａｒｃｈ Ｈｏｓｐｉｔａｌ（テネシー州メンフィスのＪ．Ｉｈｌｅ博士から提供された）でトランスフェクトした。ＩＦＮ−γをトランスフェクト２４時間後に添加し、細胞を回収の前さらに２４時間インキュベートした。ｐＣＭＶ β−Ｇａｌとの同時トランスフェクトをトランスフェクト効率を標準化するために行った。
トランスフェクトおよびレポーターアッセイ
ＴＡＰ１およびＬＭＰ２ｗｔ（ＴＡＰ１ ５９３−１／ｐＧＬ３およびＬＭＰ２ １−５９３／ｐＬＧ３）の構造ならびにそれらのＩＲＦ−Ｅ変異体プロモーター構築物の構造を図２に示す。トータル２μｇのこれらのプラスミドＤＮＡ（Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ ｏｆ Ｓｏｕｔｈ ＦｌｏｒｉｄａのＫ．Ｌ．Ｗｒｉｇｈｔ博士から提供を受けた）を、メーカーの推奨に従って、ＦｕＧＥＮＥ ６ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｒｏｃｈｅ社）によりＨｅＬａまたはＳＫＮ細胞中に移入した。すべての移入されたＤＮＡには２００ｎｇのｐＣＭＶ β−Ｇａｌ（Ｔｒｏｐｉｘ社）を内部トランスフェクト効率コントロールとして含んでいた。ＩＦＮ−γ（最終濃度２５０ユニット／ｍｌ）をトランスフェクト２４時間後に添加し、細胞をさらに２４時間インキュベートした。最終的に、細胞を洗浄し、５００μｌの溶解バッファーで溶解し、Ｄｕａｌ−Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ Ｒｅｐｏｒｔｅｒ Ａｓｓａｙ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を用いてメーカーの指示に従って分析した。ＬＭＰ２またはＴＡＰ１／ｐＧＬ３の代わりにｐＧＬ３ベースで移入した細胞のルシフェラーゼ活性をバックグラウンドとして差し引いた。
上記材料および方法を用いた検討により以下の結果が得られた。
ヒト子宮平滑筋肉腫細胞中におけるＩＮＦ−γによるＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現の非誘導
ＬＭＰ２欠損マウスは子宮平滑筋肉腫を発症した（Ｈａｙａｓｈｉ Ｔ．ｅｔ ａｌ．（２００２）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，６２，２４−２７）。次いで、ヒト子宮平滑筋肉腫がＴＡＰ１およびＬＭＰ２の弱い発現を示すか否かを示す必要がある。ＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現に対するＴＦＮ−γの効果は、４種の細胞株を用いたイムノブロットにより調べた。ＩＦＮ−γ処理に続くＨｅＬａ、ＨｅＬａ．Ｓ３、およびＨｕ．ＵＳＭＣ（対照）はＴＡＰ１およびＬＭＰ２の強い誘導を受けたが、ヒト平滑筋肉腫細胞株ＳＫＮにおけるＩＦＮ−γ処理ではＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現はそれほど誘導されなかった（図１ａ）。ＳＫＮ細胞は、ＨｅＬａ、ＨｅＬａ．Ｓ３細胞の両方とＨｕ．ＵＳＭＣ（対照）と比べると、同じようなβアクチン発現が認められたので、抽出物の調製工程はＩＦＮ−γ処理に続くＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現の非誘導に影響しなかった。このＩＦＮ−γの量は、ＨｅＬａ、ＨｅＬａ．Ｓ３細胞の両方とＨｕ．ＵＳＭＣ中（図１ａ）のＴＡＰ１およびＬＭＰ２遺伝子の両方に共有されている双方向プロモーターを最大限に誘導するのに十分であった（図１ａ）。ＩＮＦ−γ量を５００ユニット／ｍｌまで増加させても、ＳＫＮ細胞中でＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現を顕著に誘導することはなかった。従って、ＳＫＮ細胞はＩＦＮ−γ処理によりＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現を増強する能力を失っていた。
ＩＦＮ−γ処理に続くＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現の非誘導を立証するために、４種の細胞株を用いてＲＴ−ＰＣＲ分析を行った。ＩＦＮ−γ処理により誘導されたＴＡＰ１またはＬＭＰ２のいずれかのｍＲＮＡ発現はＨｅＬａ、ＨｅＬａ．Ｓ３細胞およびＨｕ．ＵＳＭＣにおいて明確に検出されたが、ＩＦＮ−γ処理はＳＫＮ細胞中でＴＡＰ１およびＬＭＰ２のｍＲＮＡ発現をそれほど誘導しなかった（図１ｂ）。βアクチン対照のｍＲＮＡ発現は試験したすべての細胞中で同様の高いレベルで検出された。このことはＲＮＡ調製ステップがＩＦＮ−γ処理に続くＴＡＰ１およびＬＭＰ２発現の非誘導に影響しなかったことを示す（図１ｂ）。ＩＨＣ実験により、正常子宮平滑筋細胞が６ケースにおいてＬＭＰ２を著しく発現したが、子宮平滑筋肉腫細胞では発現しなかったことが示された（図１ｃ）。ＩＨＣの結果は、ＳＫＮ細胞中でのＴＡＰ１およびＬＭＰ２の非誘導を立証した。
ＴＡＰ１およびＬＭＰ２遺伝子のＩＦＮ−γに誘導される共通の双方向性プロモーター活性化の喪失
ＩＲＦ−１はＴＡＰ１およびＬＭＰ２遺伝子に共有される双方向プロモーター中のＩＲＦ−Ｅと呼ばれるシスエレメントに直接結合する（Ｗｒｉｇｈｔ ＫＬ．ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８１，１４５９−１４７１；Ｗｈｉｔｅ ＬＣ．ｅｔ ａｌ．（１９９６）Ｉｍｍｕｎｉｔｙ，５，３６５−３７６；Ｄｏｖｈｅｙ ＳＥ．ｅｔ ａｌ．（２０００）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，６０，５７８９−５７９６；Ｂｒｕｃｅｔ Ｍ．ｅｔ ａｌ．（２００４）Ｇｅｎｅｓ Ｉｍｍｕｎ．，５，２６−３５）。ＩＲＦ−Ｅは図２に表されるように、ＮＦκＢ様結合部位およびＧＣ１ボックスの上流に位置する。ＩＦＮ−γ処理によるＴＡＰ１およびＬＭＰ２の発現増強にＩＲＦ−Ｅが必要であることが示された（Ｗｒｉｇｈｔ ＫＬ．ｅｔ ａｌ．（１９９５）Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ．，１８１，１４５９−１４７１；Ｗｈｉｔｅ ＬＣ．ｅｔ ａｌ．（１９９６）Ｔｍｍｕｎｉｔｙ，５，３６５−３７６；Ｄｏｖｈｅｙ ＳＥ．ｅｔ ａｌ．（２０００）Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ．，６０，５７８９−５７９６；Ｂｒｕｃｅｔ Ｍ，ｅｔ ａｌ．（２００４）Ｇｅｎｅｓ Ｉｍｍｕｎ．，５，２６−３５）。ＩＦＮ−γがＳＫＮ細胞においてＴＡＰ１／ＬＭＰ２の共有された双方向のプロモーターを確実に活性化するかどうかを調べるために、ＳＫＮ細胞およびＨｅＬａ細胞にＴＡＰ１またはＬＭＰ２の発現を誘導すべくＩＲＦ−Ｅがｗｔもしくはｍｕｔであるプロモーター−ルシフェラーゼコンストラクトＤＮＡを移入した。ＨｅＬａ細胞の場合、ＩＦＮ−γ処理により１１倍のＬＭＰ２プロモーター活性が誘導され、さらに１０倍のＴＡＰ１プロモーター活性が誘導された（図２）。しかしながら、ＳＫＮ細胞中では、ＩＦＮ−γ処理の結果、ＴＡＰ１／ＬＭＰ２の共有された双方向のプロモーターの活性化誘導は認められなかった。ＩＲＦ−Ｅの変異により、ＨｅＬａ細胞中で認められたＩＦＮ−γのＴＡＰ１／ＬＭＰ２遺伝子発現を誘導する能力が失われた（図２）。これらの結果は内在性のｍＲＮＡレベルと一致しており、ＨｅＬａ細胞中でのＴＡＰ１およびＬＭＰ２遺伝子の活性が強調しているが、ＳＫＮ細胞では強調していないことを示す。ＩＲＦ−Ｅ部位の変異はＨｅＬａ細胞およびＳＫＮ細胞の両方でベースとなる発現レベルをいくらか減少させた。このことはこの部位がＬＭＰ−２の発現において一定の役割を果たすことを示す。これらの結果は、ＩＦＮγ処理が、ＨｅＬａ細胞中でＴＡＰ１／ＬＭＰ２の共有されたプロモーター活性を強く誘導し得るが、ＳＫＮ細胞中では誘導しないことを示す（図２）。
免疫組織化学によるヒト正常子宮平滑筋層、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の生検組織または手術摘出組織におけるＬＭＰ２の発現状況
ヒト正常子宮平滑筋層、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の顕微鏡観察
ヒト子宮平滑筋組織をバイオプシーまたは手術により採取し、顕微鏡観察した。
図３はヒト正常子宮平滑筋組織を、図４は、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫を、図５はヒト子宮内膜間質肉腫の顕微鏡写真を示す。
上記顕微鏡観察により判定した、正常子宮平滑筋１０例、子宮平滑筋腫６例、子宮内膜肉腫６例および子宮平滑筋肉腫（悪性度低）３例、子宮平滑筋肉腫（悪性度高）４例を用いて、免疫組織化学により各組識のＬＭＰ２発現を調べた。
免疫組織化学は、前記の方法で行った。
図６に、正常子宮平滑筋、子宮平滑筋腫および子宮平滑筋肉腫の免疫組織化学染色写真を示す。図に示すように、正常子宮平滑筋および子宮平滑筋腫は染色され、ＬＭＰ２が発現されていることが確認された。しかし、子宮平滑筋肉腫では染色されなかったため、ＬＭＰ２の発現が確認されなかった。
図７に、子宮平滑筋肉腫の免疫組織化学染色写真を示す。図に示すように、同じ組織内で染色された部分と染色されない部分が存在した。
各組織におけるＬＭＰ２の発現状況は以下のとおりであった。＋は陽性、−は陰性、−／＋はグレーゾーンであることを示す。
ＬＭＰ２発現
正常子宮平滑筋組織 ＋＋＋＋
子宮平滑筋腫組織 ＋＋＋＋
子宮内膜肉腫組織 −／＋
子宮平滑筋肉腫（悪性度低）組織 −／＋
子宮平滑筋肉腫（悪性度高）組織 −
上記表に示されるように、悪性腫瘍である子宮平滑筋肉腫のみにおいて、顕著なＬＭＰ２の発現低下が認められた。また、子宮平滑筋肉腫の組織でのＬＭＰ２の発現低下度は、悪性度に依存していており、ＬＭＰ２の発現低下度合いは、子宮平滑筋肉腫の悪性度の指標と成りうることが明らかとされた。
ＳＫＮ細胞におけるＬＭＰ２の強制発現
１． ＳＫＮ細胞におけるＬＭＰ２の強制発現による細胞形態の変化
ＬＭＰ２の発現低下が、子宮平滑筋細胞において形質転換（癌化）に直接的に関与しているかについて検討を行った。ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ＳＫＮ細胞の形態を観察した。
方法
ＬＭＰ２発現プラスミドベクター（２μｇ）をＳＫＮ細胞（５ ｘ １０５）内にＦｕＧｅｎｅ６（Ｒｏｃｈｅ，Ｉｎｄｉａｎａｐｏｌｉｓ，ＩＮ）を用いメーカーのプロトコールに従って導入した。同プラスミドベクターを細胞に導入した３日後に、Ｇ４１８（ネオマイシン）を培養液に加えて（最終濃度２００μｇ／ｍｌ）、ＬＭＰ２発現プラスミドベクターが導入されたＳＫＮ細胞のみを選択した。ＬＭＰ２の強制発現されたＳＫＮ細胞の細胞増殖能、細胞形態能について検討を行った。結果を図８、図９および図２１に示す。図８、図９および図２１に示すように、ＳＫＮ細胞の増殖能は、倍加時間１５．２時間だったの対して、ＬＭＰ２の強制発現されたＳＫＮ細胞の細胞増殖能は、倍加時間１７．５時間となった。ＬＭＰ２の発現により、ＳＫＮ細胞の増殖速度が、倍加時間２時間遅くなった。また、細長い斜方形の細胞形態を持っているＳＫＮ細胞が、ＬＭＰ２の強制発現により繊維芽細胞様（菱形）の細胞形態に変化したことが認められた。
２． ＳＫＮ細胞におけるＬＭＰ２の強制発現によるファイブロネクチンの発現の変化
一般的に転移能を有する悪性度の高い癌細胞は、細胞と細胞との接着因子（ファイブロネクチン）の著しい発現低下が認められる。ＬＭＰ２の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（ＳＫＮ）に、遺伝子組換えによりＬＭＰ２を強制発現させ、ファイブロネクチンの発現変化について検討を行った。
ＬＭＰ２の強制発現は実施例３と同様の方法で行った。ファイブロネクチンの発現は、抗ファイブロネクチン抗体（Ｒｏｃｋｌａｎｄ社）を用いた免疫染色法により検討した。また、コントロールとして、ヒト正常子宮平滑筋細胞：ＨｕＵＳＭＣを用いた。
ＳＫＮ細胞における結果を図１０に、ヒトＨｕＵＳＭＣにおける結果を図１１に示す。また、図１２には各細胞における形態の変化、細胞増殖速度、およびファイブロネクチンの発現状況のまとめを示す。
図に示すように、ＳＫＮ細胞にＬＭＰ２を強制発現させた場合、ＳＫＮ細胞の形態と増殖速度が、正常の子宮平滑筋細胞に近づいた。また、ＳＫＮ細胞にＬＭＰ２を強制発現させた場合、有意なファイブロネクチンの発現誘導が認められた。つまり、ＬＭＰ２の強制発現により誘導されたファイブロネクチンの発現は、ＳＫＮ細胞の持つ転移能の減弱の可能性を示唆している。
各組織におけるＬＭＰ２の発現
ＬＭＰ２の発現は、子宮平滑筋組織のみならず、本来骨格筋組織および心筋組織においても認められる。ところが、ＬＭＰ２の欠損により、平滑筋肉腫が発症するのは子宮平滑筋組織のみである。そこで、骨格筋、心筋および平滑筋におけるＬＭＰ２発現を調べた。また、免疫機構に必須であるＲａｇ１遺伝子を欠損させたマウスの骨格筋、心筋および平滑筋におけるＬＭＰ２発現を調べた。
免疫組織化学は、生後１日目のマウス新生児のパラフィン包埋サンプルを用いて、前記の方法で行った。
図１３に免疫組織化学染色写真を示す。
子宮及び他の器官での平滑筋肉腫におけるＬＭＰ２の発現
ヒト子宮平滑筋肉腫の組織においてＬＭＰ２の発現の著しい消失が確認された。平滑筋肉腫は、子宮以外にも種々の臓器にいても発症するが、ＬＭＰ２の発現の消失は子宮平滑筋肉腫に特異的に認められるものか検討した。
方法
病理ファイルより、子宮平滑筋肉腫（悪性度高い）４症例、子宮平滑筋肉腫（悪性度低い）４症例、子宮上皮平滑筋肉腫１症例、子宮内膜間質肉腫１症例、子宮平滑筋腫１症例、正常子宮平滑筋１症例、後腹膜原発平滑筋肉腫１症例、大網原発平滑筋肉腫１症例、小腸原発平滑筋肉腫１症例、腸管膜原発平滑筋肉腫１症例を選び、各疾患の組織におけるＬＭＰ２の発現を抗ヒトＬＭＰ２抗体を用いた免疫組織染色により検討した。
図１４に示されるように、正常な子宮平滑筋組織や子宮平滑筋腫（良性腫瘍）において認められた顕著なＬＭＰ２の発現が、子宮平滑筋肉腫（悪性腫瘍）では著しく減弱していることを再確認した。子宮内膜間質肉腫１症例ではＬＭＰ２の発現が認められなかったが、子宮上皮平滑筋肉腫１症例においてはＬＭＰ２の発現が有意に認められた。腹部・消化器系組織に発症した平滑筋肉腫においては、顕著なＬＭＰ２の発現が認められる場合もあるが、著しいＬＭＰ２の発現の減弱が認められる場合もある。これまでのＧｅｎｅ Ｃｏｐｙ Ｎｕｍｂｅｒ Ｐｒｏｆｉｌｉｎｇのゲノム解析より、子宮平滑筋肉腫の発症機序は、他の臓器における平滑筋肉腫の発症機序とは大きく異なっている可能性が示されている。実施例５の結果より、ＬＭＰ２の発現の消失は子宮平滑筋肉腫に特異的に認められる現象と思われる。
ＩＦＮ−γシグナル伝達因子の変異と子宮平滑筋肉腫の関係
「子宮平滑筋肉腫において特異的に認められるＬＭＰ２発現の著しい減弱」について再検討し、その特異性を確立した。具体的には、ヒト正常子宮平滑筋組織２１症例、子宮平滑筋腫２４症例、子宮内膜間質肉腫６症例、子宮平滑筋肉腫２９症例についてＬＭＰ２の発現を抗ヒトＬＭＰ２抗体を用いた免疫組織染色により検討した。図１８に示されるように、子宮平滑筋肉腫において特異的に認められるＬＭＰ２発現の著しい減弱性を確認した。
ＬＭＰ２の発現は、図１５に示される様にＩＦＮ−γの刺激により顕著に誘導される。子宮平滑筋肉腫において特異的に認められるＬＭＰ２発現の著しい減弱は、ＩＦＮ−γのシグナル伝達因子：ＪＡＫ１、ＪＡＫ２、ＳＴＡＴ１、ＰＫＣ・、ＰＩ３Ｋ、ＬＭＰ２のｐｒｏｍｏｔｅｒ領域の変異や欠損による不活性化に起因している可能性が考えられる。そこで、ＩＦＮ−γのシグナル伝達因子：ＪＡＫ１、ＪＡＫ２、ＳＴＡＴ１、ＬＭＰ２のｐｒｏｍｏｔｅｒ領域の変異について検討した。
方法
手術により摘出されたヒト子宮体部組織１３症例から平滑筋肉腫組織部位のみと正常な平滑筋組織部位のみをレーザーマイクロダイセクションにより切り取り回収した。正常な子宮平滑筋組織１３検体にヒト正常子宮平滑筋培養細胞１検体を加えた合計１４検体、子宮平滑筋肉腫組織１３検体にヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞１検体を加えた合計１４検体を用いてＪＡＫ１、ＪＡＫ２、ＳＴＡＴ１、ＬＭＰ２のｐｒｏｍｏｔｅｒ領域の変異について検討した。各検体をＨＭＷ溶液（１０ｍＭ Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ ｐＨ８．０、１５０ｍＭ ＮａＣｌ、１０ｍＭ ＥＤＴＡ−ＮａＯＨ ｐＨ８．０、０．１％ ＳＤＳ）−ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ Ｋ（１００・ｇ／ｍｌ）に加えて５５℃で２４時間保温し、フェノール／クロロホルムにより不純物を取り除きゲノムＤＮＡを精製した。ＪＡＫ１分子内のＡＴＰ結合領域をコードする遺伝子領域（Ａ）とチロシンリン酸化酵素活性化領域をコードする遺伝子領域（Ｂ）の塩基配列を決定するために、遺伝子領域（Ａ）と遺伝子領域（Ｂ）の各領域に対するＰＣＲ−ｐｒｉｍｅｒを用いてそれぞれの領域を含むＤＮＡ断片を各検体より得られたゲノムＤＮＡを用いてＰＣＲにより増幅させた。ＰＣＲにより増幅されたＤＮＡ断片をアガロースゲル電気泳動法により抽出し精製し、シークエンサー（ＡＢＩ Ｐｒｉｓｍ３１００ Ｇｅｎｅｔｉｃ Ａｎａｌｙｚｅｒ）により塩基配列を決定した。さらに、ＪＡＫ１の塩基配列を決定した方法と同様の手法を用いて、ＪＡＫ２分子内のＡＴＰ結合領域をコードする遺伝子領域（Ｃ）とチロシンリン酸化酵素活性化領域をコードする遺伝子領域（Ｄ）の塩基配列、ＳＴＡＴ１分子内における転写因子活性化領域（７０１番目のチロシンと７２７番目のセリン）コードする遺伝子領域（Ｅ）の塩基配列、ＬＭＰ２のｐｒｏｍｏｔｅｒ領域をコードする遺伝子領域（Ｆ）の塩基配列を決定した。子宮平滑筋肉腫における特異的な変異を検出するために、同一子宮体部における子宮平滑筋肉腫組織部位と正常子宮平滑筋組織部位での塩基配列（ＡからＥ領域）を比較検討した。
ＩＦＮ−γのシグナル伝達因子：ＪＡＫ１、ＪＡＫ２、ＳＴＡＴ１、各因子におけるリン酸化酵素あるいは転写因子の活性化領域、ＬＭＰ２のｐｒｏｍｏｔｅｒ領域の変異解析の結果は、図１６（変異を各検体ごとにまとめた図）と図１７（変異を各因子ごとにまとめた図）に示している。
ヒト子宮平滑筋肉腫細胞における、ＬＭＰ−２の恒常的発現による細胞形態と細胞増殖への影響
ヒト子宮平滑筋肉腫の組織において顕著なＬＭＰ２の発現低下が認められるが、ＬＭＰ２の発現低下が、子宮平滑筋肉腫の発症に関与しているのか検討した。
方法
ＳＫＮ細胞を６穴プレートにおいて培養し、７０％コンフルエントの際、ＨａｍＦ−１２−１５％Ｆｃｓ培養液２ｍｌを交換した。培養液を交換した次ぎの日、Ｒｏｃｈｅ社のプロトコールに従って、１穴に対して２μｇのｐＣＥＭ９ベクター（ＬＭＰ２の遺伝子を含まない）またはｐＣＥＭ−ＬＭＰ２ベクター（ＬＭＰ２の遺伝子を含んでいる）をＦｕＧＥＮＥ６（Ｒｏｃｈｅ社）によりＳＫＮ細胞に移入した。各ベクターの移入を行ったＳＫＮ細胞をＣＯ２インキュベーター内において３７℃で４８時間培養した後、ＳＫＮ細胞をトリプシン処理によって剥がして１００ｍｍ培養シャーレでＣＯ２インキュベーター内において３７℃で４８時間培養した。その後、Ｇ４１８（ネオマイシン）１００μｇ／ｍｌを含んだＨａｍＦ−１２−１５％Ｆｃｓ培養液で培養を行った。ＣＯ２インキュベーター内において３７℃で２週間培養すると、ｐＣＥＭ９ベクターまたはｐＣＥＭ−ＬＭＰ２ベクターが移入されたＳＫＮ細胞のみがＧ４１８によって選択的に生き残り増殖しコロニーを形成しているのが確認された。Ｇ４１８（ネオマイシン）含有培養液にて選択培養の３週間後、１００ｍｍ培養シャーレ内における各ベクターが移入されたＳＫＮ細胞により形成されたコロニー数を数え、かつＳＫＮ細胞の細胞形態を観察した。
図９および図２０に示される様に、ｐＣＥＭ−ＬＭＰ２ベクターが移入されたＳＫＮ細胞の形態が、線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）に変化していることが確認された。全般的に、（Ａ）ＳＫＮ細胞のもともとの形態を維持している細胞のみで形成されているコロニー、（Ｂ）線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）に形態が変化している細胞が一部存在しているコロニー、（Ｃ）線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）に形態が変化している細胞のみで形成されているコロニーが確認された。（Ａ）（Ｂ）（Ｃ）の各カテゴリーに属するコロニーの数は、図１９に示している。また、（Ａ）（Ｂ）（Ｃ）の各カテゴリーに属する細胞の増殖速度をトリパンブルーにより染色法により検討を行ったところ、（Ａ）カテゴリーでは、Ｐ．Ｄ．Ｔ．（Ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ ｄｏｕｂｌｉｎｇ ｔｉｍｅ＝倍加時間）１５．２時間、（Ｂ）カテゴリーでは、Ｐ．Ｄ．Ｔ．＝１６．８時間、（Ｃ）カテゴリーでは、Ｐ．Ｄ．Ｔ．＝１７．８時間となった。ヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞ＳＫＮ細胞において、恒常的なＬＭＰ２の発現は、細胞形態が線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）に変化させ、細胞速度が遅くなることが確認された（図９、図２０および図２１）。
通常、転移能を有する悪性度の高い癌細胞は、細胞と細胞との繋がりが粗になり１つの細胞のみでも増殖が可能となる。特に、細胞間のマトリックス構造を形成するファイブロネクチンの発現が、転移能を有する悪性度の高い癌細胞において著しく低下することが知られている。ＳＫＮ細胞は、転移能を有する悪性度の高い平滑筋肉腫細胞であるため、ファイブロネクチンの発現が著しく低いと思われる。そこで、（Ａ）（Ｂ）（Ｃ）の各カテゴリーに属するＳＫＮ細胞をＬａｂｔｅｃｈ Ｃｈａｍｂｅｒ Ｓｌｉｄｅ（ＩＷＡＫＩ社）において培養し、顕微鏡下において８０％コンフルエントの状況を確認した後、公知の方法に従って抗ヒト−ファイブロネクチン抗体（Ｒｏｃｋｌａｎｄ社）によりファイブロネクチンの発現状況を確認した。図１０と図１１で示されている様に、正常なヒト子宮平滑筋培養細胞：Ｎ．ＨｕＵＳＭＣでは、ファイブロネクチンが顕著に発現しマトリックス構造を形成していることが確認されたが、ヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞：ＳＫＮ細胞では、ファイブロネクチンの発現は僅かでありマトリックス構造の形成が認められなかった。しかし、線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）のＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的な発現によりファイブロネクチンの発現が認められたが、ファイブロネクチンのマトリックス構造の形成は確認されなかった（図１０）。ＳＫＮ細胞におけるＬＭＰ２の恒常的な発現による細胞形態、細胞増殖とファイブロネクチンの発現状況への影響に関する結果が、図２１に纏められている。
図２１に示されているように、ＳＫＮ細胞が本来有する腫瘍形成能が、ＬＭＰ２の発現により有意に低下すると予測される。そこで、Ｌｏｗ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｆｌａｔ Ｃｈａｍｂｅｒ ２４穴（Ｃｏｓｔｏｒ社）を用いて、線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）のＳＫＮ細胞（ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞）とＳＫＮ細胞（ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞）における腫瘍形成能の指標となるコロニー形成能を検討した。Ｌｏｗ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｆｌａｔ Ｃｈａｍｂｅｒ ２４穴（Ｃｏｓｔｏｒ社）の１穴あたりＳＫ−ｌｍｐ２細胞（＃１２１）（１ｘ１０４個）あるいはＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞（１ｘ１０４個）を培養して、コロニー形成を顕微鏡下で観察した。図２２で認められる様に、培養開始３週間目において、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞が大きなコロニーを形成して増殖しているのを確認出来たが、一方、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞はコロニーを形成しているが、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞と比較すると明らかにコロニーは小さく増殖能が低いことが認められた。Ｌｏｗ Ａｔｔａｃｈｍｅｎｔ Ｆｌａｔ Ｃｈａｍｂｅｒを用いた実験では、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞（コロニー＃１２１）は、コロニー形成能が低いことから、腫瘍形成能が著しく低下していることが認められた。そこで、免疫が欠損しているヌードマウス（日本クレア社）を用いて、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞とＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞（コロニー＃１２１）における腫瘍形成能の検討を行った。ヌードマウス（日本クレア社）メス（６週齢）５匹を購入し、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞（１ｘ１０６個）をマウスの背中の右側に皮内接種し、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞（＃１２１）（１ｘ１０５個）をマウスの背中の左側に皮内接種し計時的に腫瘍形成を観察した。皮内接種４週間後、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞（１ｘ１０６個）はヌードマウスの皮内において増殖し顕著な腫瘍形成（腫瘍体積９８０ｍｍ３）が認められた。一方、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞（コロニー＃１２１）（１ｘ１０５個）はヌードマウスの皮内において増殖せず、顕著な腫瘍形成（腫瘍体積９０ｍｍ３）が認められなかった（図２３Ａおよび２３Ｂ）。ヒト子宮平滑筋培養細胞ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的な発現は、腫瘍形成能を顕著に低下させることを認めた（図２３Ａ〜２３Ｃ）。
子宮平滑筋肉腫における顕著なサイクリンＥの発現
ヒト子宮平滑筋培養細胞ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的な発現は、（１）ＳＫＮの細胞形態を線維芽細胞様（Ｆｌａｔｒｅｖｅｒｔａｎｔ）に変化させる、（２）ＳＫＮ細胞の増殖速度を有意に低下させる、（３）ＳＫＮ細胞の有する腫瘍形成能を顕著に低下させる、以上３つの生物学的特長を認めた。そこで、ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的な発現によりどのような因子の発現に顕著な変化が認められるのか、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞とＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞間において遺伝子発現のプロファイリングを行った。
方法
ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞とＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞とを１００ｍｍデイッシュ４枚ずつでＣＯ２インキュベーター内において３７℃で、８０％コンフルエントの状況まで（シャーレ１枚あたり２ｘ１０６個の細胞が増殖）培養した。各細胞をトリプシンによって剥がして回収し、１ＸＰＢＳによって細胞を洗った。シャーレ１枚あたりＴＲＩｓｏｌ（インビトロジェン社）２ｍｌの割合で、各細胞をＴＲＩｓｏｌに溶かした（細胞が完全にＴＲＩｓｏｌに溶けるように１０分間穏やかに振揺させる）。ＴＲＩｓｏｌ １ｍｌあたりクロロホルム２００μｌの割合で、ＴＲＩｓｏｌ溶液にクロロホルムを加えて１０分間穏やかに振揺させる。１０分間の振揺後、７０００ｒｐｍ、室温、２０分間の条件で遠心を行い、水層と有機層に分離して中間層を採取しない様に水層を採取した。水層に含まれているトータルＲＮＡを公知の方法を精製した。上記の手法により、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞よりトータルＲＮＡ１５２．３μｇ、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞よりトータルＲＮＡ１２８．８μｇ得られた。各トータルＲＮＡ１００μｇを調整して、遺伝子発現のプロファイリングを行った。
マイクロアレイ遺伝子発現のプロファイリングの結果の一部を図２４に示す。ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞において顕著な発現が認められたサイクリンＥが、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞においては殆ど発現が認められない。つまり、ＳＫＮ細胞では、ＬＭＰ２を恒常的に発現により細胞増殖を誘導するサイクリンＥの発現が著しく低下された。
トランスフェクトおよびレポーターアッセイ
サイクリンＥのプロモター領域の活性化によりルシフェラーゼ遺伝子が発現誘導されるレーポータープラスミド（ｐ１０−４−Ｌｕｃ）（Ｄｅｐａｒｔｍｅｎｔ ｏｆ Ｃａｎｃｅｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｍａｙｏ Ｃｌｉｎｉｃ Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅ Ｃａｎｃｅｒ ＣｅｎｔｅｒのＥ Ａ．Ｔｈｏｍｐｓｏｎ博士から提供を受けた）の構造を図２５に示す。ｐ１０−４−ＬｕｃレーポータープラスミドとＬＭＰ２発現プラスミドｐＣＥＭ９−Ｌｍｐ２とを図に示した内容にしたがって、トータル２μｇのプラスミドをメーカーの推奨に従って、ＦｕＧＥＮＥ ６ Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｒｏｃｈｅ）によりＳＫＮ細胞、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞（クローン＃１２１と＃１２２）中に移入した。すべての移入されたＤＮＡには２００ｎｇのｐＣＭＶ β−Ｇａｌ（Ｔｒｏｐｉｘ社）を内部トランスフェクト効率コントロールとして含んでいた。トランスフェクト後、各細胞をＣＯ２インキュベーター内において３７℃で４８時間培養した。最終的に、細胞を洗浄し、５００μｌの溶解バッファーで溶解し、Ｄｕａｌ−Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ Ｒｅｐｏｒｔｅｒ Ａｓｓａｙ Ｓｙｓｔｅｍ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を用いてメーカーの指示に従って分析した。
上記材料および方法を用いた検討により以下の結果が得られた。
ヒト子宮平滑筋肉腫培養ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的発現によりサイクリンＥのプロモーター活性が顕著に低下された。
マイクロアレイ遺伝子発現のプロファイリングの結果の一部を図２４に示す。ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞において顕著な発現が認められたサイクリンＥが、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞においては殆ど発現が認められない。つまり、ＳＫＮ細胞では、ＬＭＰ２を恒常的に発現により細胞増殖を誘導するサイクリンＥの発現が著しく低下された。次いで、ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的発現がサイクリンＥのプロモーター活性を有意に抑えることを確認する必要がある。サイクリンＥのプロモーター活性に対するＬＭＰ２の恒常的発現の効果は、３種のＳＫＮ細胞株（ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９，ＳＫＮ−ｌｍｐ２＃１２１，ＳＫＮ−ｌｍｐ２＃１２２）を用いたレポーターアッセイにより検討された。ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の発現の無い環境では、顕著に活性化されたサイクリンＥのプロモーターが認められた（図２６）。しかし、ＬＭＰ２が発現している環境では、サイクリンＥのプロモーターの著しい活性化が認められなかった（図２６）。また、ＳＫＮ−ｐＣＥＭ９細胞においては、サイクリンＥのプロモーターの著しい活性化が認められたが、ＳＫＮ−ｌｍｐ２細胞においては、サイクリンＥのプロモーターの著しい活性化が認められなかった（図２６）。ヒト子宮平滑筋肉腫培養ＳＫＮ細胞において、ＬＭＰ２の恒常的発現によりサイクリンＥのプロモーター活性が顕著に低下されることが確認された。
図２６は、ＳＫＮ細胞とＬＭＰ２を恒常的に発現しているＳＫＮ細胞（クローン＃１２１と＃１２２）での、サイクリンＥプロモーター活性を示す図である。子宮平滑筋肉腫培養細胞ＳＫＮ細胞で認められた顕著なサイクリンＥの発現は、ＬＭＰ２の恒常的な発現により著しく低下した。つまり、ＳＫＮ細胞では、ＬＭＰ２の発現誘導が起こらないため、細胞増殖誘導因子であるサイクリンＥの発現抑制が認められないと思われる。サイクリンＥの遺伝子を欠損させた細胞は、通常に細胞増殖するが、外部からの刺激等による形質転換には耐性であることが明らかである。したがって、顕著なＬＭＰ２の発現誘導が起こらないためサイクリンＥの発現制御が起こらないことが、ヒト子宮平滑筋肉腫の発症に関与していると考えられる。そこで、ヒト子宮平滑筋肉腫の組織でのサイクリンＥの発現状況を、抗ヒトサイクリンＥ抗体を用いた免疫組織染色法によって検討した。図２７で示されている様に、同一切片内にて、正常なヒト子宮平滑筋組織部位では認められないサイクリンＥの発現が、ヒト子宮平滑筋肉腫組織部位に鮮明に認められた。ヒト子宮平滑筋肉腫１４症例において検討した結果、正常な子宮平滑筋層においては、サイクリンＥの発現は認められないが、悪性腫瘍であるヒト子宮平滑筋肉腫組織では、サイクリンＥの顕著な発現が認められることが明かとなった。
図２８は、ヒト子宮平滑筋肉腫組織における分裂期の核内でのサイクリンＥの発現を示す組織染色写真である。通常、細胞増殖を誘導するサイクリンＥは、細胞増殖の開始期であるＧ１期に細胞質において過剰に発現し、速やかに核内へと移行しＳ期において染色体の合成を開始させる。その後、サイクリンＥは、Ｓ期の後半から即座に分解される。したがって、正常な細胞のＧ２期とＭ期においては、サイクリンＥの発現は認められない。しかし、ヒト子宮平滑筋肉腫組織において、分裂期の核内での顕著なサイクリンＥの発現が認められる。つまり、サイクリンＥの発現は、ヒト子宮平滑筋肉腫の鑑別マーカーとして有用である。
子宮平滑筋におけるＬＭＰ２および／またはサイクリンＥの転写または発現を調べることにより、子宮平滑筋組織に子宮平滑筋肉腫が存在するかどうかを検出することができ、ＬＭＰ２の転写または発現が著しく低い場合および／またはサイクリンＥの転写または発現が高い場合に平滑筋肉腫が存在すると判定することができる。従来は、細胞の形態、密度、増殖速度等を指標に子宮平滑筋肉腫を検出していたが、本発明の方法によれば、容易にかつ確実に子宮平滑筋肉腫を検出することができる。さらに、本発明の方法によれば、子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるか子宮平滑筋肉腫であるか鑑別することができ、さらに、子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定することができる。
また、本発明のＬＭＰ２および／またはサイクリンＥをマーカーとして用いる方法と、従来から用いられていた細胞の形態、密度等を指標にする方法および／またはミオシンをマーカーとして用いる方法を組合せることにより、確実に子宮平滑筋肉腫を検出することができる。
さらに、ＩＦＮ−γシグナル伝達因子であるＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、ＳＴＡＴ１遺伝子およびＬＭＰ２プロモーターの変異と子宮平滑筋肉腫の発症が密接に関連しており、上記遺伝子またはプロモーターの変異を検出することにより、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、および子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクがあるか否かを判定することができる。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。
［配列表］
本発明は、LMP2およびサイクリンE、ならびにインターフェロンγ(IFN-γ）シグナル伝達カスケードに関与するJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子およびLMP2プロモーターにおける変異をマーカーとして用いる、子宮平滑筋肉腫の検出方法および子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫の鑑別検出方法に関する。
子宮癌は婦人科の癌で最も多いが、子宮平滑筋肉腫は発症頻度が低く子宮体部癌の２〜５％である。子宮平滑筋肉腫は、子宮頚部よりも子宮体部の筋肉層から多く発生する。子宮筋層は平滑筋よりできており、子宮筋層の中にできる良性の腫瘍が子宮平滑筋腫であり、悪性の腫瘍が子宮平滑筋肉腫である。子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫を鑑別することは非常に難しく、通常手術をして組織を採取し、顕微鏡下での細胞検査により判断していた。子宮平滑筋肉腫は異型性が強く巨大化することもある腫瘍細胞が増殖していることが多い。しかし、ほとんど細胞異型性を示さない場合もあり、細胞異型性の有無は決定的な鑑別基準とはならない。子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫との鑑別は、専ら凝固壊死があるかどうか、および細胞分裂像が増大しているかどうかにより行う。原則的には、細胞密度が高い場合には10倍高視野で10個以上の細胞分裂がある場合、腫瘍細胞に異型性が認められる場合には10倍高視野で５個以上ある場合に、子宮平滑筋肉腫と診断される。現実的には、腫瘍細胞の細胞異型度、細胞密度、細胞分裂の数、腫瘍内の壊死、出血の有無等を参考に、主として顕微鏡および肉眼で組織の形態を観察して鑑別していた。しかしながら、このような鑑別を行うためには熟練を要し、必ずしも確実に鑑別できない場合もあった。
本発明者は、先にイムノプロテアーゼの構成因子であるLMP2(low molecular mass polypeptide2)を欠損したマウスのメスにおいて、生後６ヶ月以降に子宮平滑筋肉腫(leiomyosarcoma)が認められ、生後12ヶ月までの発症率が全LMP２欠損マウスのメスの約35％にまでおよぶことを報告した（非特許文献１および２参照）。LMP2の機能は、組織特異的であり、CTLsによるMHCクラスI仲介腫瘍拒絶に不可欠の役割を持っている（非特許文献１参照)。
このように、LMP2の欠損が何らかの機能で子宮平滑筋肉腫の発症のファクターになっていることは予測できた。しかしながら、LMP2が含まれる26Sプロテアソームは、転写調節因子や細胞周期調節因子等の活性化、MHCクラスI分子のペプチド抗原の産生等に複雑に関与しており、LMP2と子宮平滑筋肉腫の発症との直接の関係は不明であり、子宮平滑筋肉腫が発症した場合に、26Sプロテアソームの機能がどう変化し、またLMP2の転写発現がどう変化するかは不明であった。
Van Kaer L. et al. (1994) Immunity, 1, 533-541 Hayashi T. et al. (2002) Cancer Res., 62, 24-27
本発明は、子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法およびそのための検出試薬の提供を目的とする。
本発明者は、筋肉層におけるLMP2の発現を調べるためにマウスの生体を抗LMP２で染色してみた。その結果、平滑筋、横紋筋、心筋等の筋原性組織に特異的なLMP２の発現が認められることから、LMP２欠損マウスの子宮平滑筋層で認められた腫瘍細胞の起源が筋原性細胞（平滑筋細胞）であることを新たに見出した。
さらに、本発明者は正常子宮平滑筋層、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の生検組織または手術組織におけるLMP2の発現状況を調べた。その結果、悪性腫瘍である子宮平滑筋肉腫のみにおいて、顕著なLMP2の発現低下が認められることを見出した。
本発明者は、次いでLMP2の発現低下が、子宮平滑筋細胞において形質転換（癌化）に直接的に関与しているか検討するため、LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN）に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、SKN細胞の形態、細胞増殖速度およびSKN細胞におけるファイブロネクチンの発現変化について検討した。その結果、SKN細胞において、形態および細胞増殖速度が正常子宮平滑筋細胞に近づき、さらに有意なファイブロネクチンの発現誘導が起こることを見出した。
本発明者は上記の新知見から、LMP2の転写発現を指標に子宮平滑筋腫と子宮平滑筋肉腫の鑑別診断をし得ること、およびLMP2の発現により子宮平滑筋肉腫の治療を行い得ることを見出した。
本発明者らは、さらにサイクリンEの発現と子宮平滑筋肉腫との関係に着目し、子宮平滑筋組織において、子宮平滑筋肉腫の悪性度に依存してサイクリンEの転写・発現が著しく亢進することを見出した。
また、本発明者らは、LMP2の発現に関与するインターフェロンγ(IFN-γ）シグナル伝達系に関与する遺伝子と子宮平滑筋肉腫との関係について検討を行なった。その結果、子宮平滑筋肉腫組織の細胞において同シグナル伝達因子であるJAK1キナーゼ、STAT1をコードする遺伝子およびLMP2プロモーターに変異が生じていることを見出し、該変異を検出することにより、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、および子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクが高いか否かを判定することを見出した。
以上のようにして、本発明者らは本発明を完成させた。
すなわち、本発明は以下の通りである。
[１] LMP2をマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法。
[２] 子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現を測定し、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する方法。
[３] 子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別する方法であって、子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現を測定し、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
[４] 子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定する方法であって、子宮平滑筋組織におけるLMP2の転写または発現を測定し、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に悪性子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
[５] 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用いin situ ハイブリダイゼーションを行いLMP2の転写を測定する、[１]〜[４]のいずれかの方法。
[６] 採取した子宮平滑筋組織または細胞からLMP2のmRNAを抽出しRT-PCRまたはノーザンブロットを行いLMP2の転写を測定する、[１]〜[４]のいずれかの方法。
[７] 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用い免疫組織化学染色または免疫細胞化学染色を行いLMP2の発現を測定する、[１]〜[４]のいずれかの方法。
[８] 採取した子宮平滑筋組織または細胞からLMP2タンパク質を抽出しイムノアッセイを行いLMP2の発現を測定する、[１]〜[４]のいずれかの方法。
[９] さらに、ミオシンをマーカーとして用い、LMP2およびミオシンの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつミオシンの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する[１]の方法。
[１０] LMP-2およびサイクリンEをマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法。
[１１] 子宮平滑筋組織におけるLMP2およびサイクリンEの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、子宮平滑筋組織におけるLMP2およびサイクリンEの転写または発現を測定し、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンEの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する方法。
[１２] 子宮平滑筋組織におけるLMP2およびサイクリンEの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別する方法であって、子宮平滑筋組織におけるLMP2およびサイクリンEの転写または発現を測定し、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンEの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
[１３] 子宮平滑筋組織におけるLMP2およびサイクリンEの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定する方法であって、子宮平滑筋組織におけるLMP2およびサイクリンEの転写または発現を測定し、LMP2の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンEの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に悪性子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
[１４] 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用いin situ ハイブリダイゼーションを行いLMP2およびサイクリンEの転写を測定する、[１０]〜[１３]のいずれかの方法。
[１５] 採取した子宮平滑筋組織または細胞からLMP2およびサイクリンEのmRNAを抽出しRT-PCRまたはノーザンブロットを行いLMP2およびサイクリンEの転写を測定する、[１０]〜[１３]のいずれかの方法。
[１６] 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用い免疫組織化学染色または免疫細胞化学染色を行いLMP2およびサイクリンEの発現を測定する、[１０]〜[１３]のいずれかの方法。
[１７] 採取した子宮平滑筋組織または細胞からLMP2およびサイクリンEタンパク質を抽出しイムノアッセイを行いLMP2およびサイクリンEの発現を測定する、[１０]〜[１３]のいずれかの方法。
[１８] 少なくともLMP2遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含む、LMP2をマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
[１９] 少なくともLMP2遺伝子断片およびサイクリンE遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含む、LMP2およびサイクリンEをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
[２０] in situ ハイブリダイゼーション用試薬である[１８]または[１９]の子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
[２１] さらに、ミオシン遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含み、LMP2およびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための[１８]または[２０]の検出試薬。
[２２] さらに、ミオシン遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含み、LMP2、サイクリンEおよびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための[１９]または[２０]の検出試薬。
[２３] 少なくとも抗LMP2抗体を含む、LMP2をマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
[２４] 少なくとも抗LMP2抗体および抗サイクリンE抗体を含む、LMP2およびサイクリンEをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
[２５] 免疫組織化学または免疫細胞染色用試薬である[２３]または[２４]の子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
[２６] さらに、抗ミオシン抗体を含み、LMP2およびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための[２３]または[２５]の検出試薬。
[２７] さらに、抗ミオシン抗体を含み、LMP2、サイクリンEおよびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための[２４]または[２５]の検出試薬。
[２８] JAK1キナーゼ遺伝子の以下の（A1)〜（A6)の変異部位の少なくとも１つを含むJAK1キナーゼ遺伝子の部分配列、およびLMP2プロモーターの以下の（B1)〜（B5)の変異部位の少なくとも１つを含むLMP2プロモーターの部分配列からなる群から選択される部分配列からなるオリゴヌクレオチドまたはその標識物であって、１０から３０塩基からなる部分配列またはその部分配列に相補的な配列からなるオリゴヌクレオチドまたはその標識物：
（A1） A2612A
（A2） G2626A
（A3） G2642T
（A4） A2967C
（A5） A2960C
（A6) A2985T
（B1) A210G
（B2) C214T
（B3) A216G
（B4) A217G
（B5) G219A。
[２９] プローブとして用いられる[２８]のオリゴヌクレオチドまたはその標識物。
[３０] [２８]のオリゴヌクレオチドまたはその標識物を固定化した固定化基板。
[３１] JAK1キナーゼ遺伝子の以下の（A1)〜（A6)の変異部位の少なくとも１つ、およびLMP2プロモーターの以下の（B1)〜（B5)の変異部位の少なくとも１つからなる群から選択される変異部位を含むDNA断片の増幅に用いる少なくとも一対のプライマーセットであって、上記変異部位の3’側および5’側に存在する１０から３０塩基からなる部分配列からなる、DNA断片の増幅に用い得る一対のプライマーセット：
（A1） A2612A
（A2） G2626A
（A3） G2642T
（A4） A2967C
（A5） A2960C
（A6) A2985T
（B1) A210G
（B2) C214T
（B3) A216G
（B4) A217G
（B5) G219A。
[３２] [３１]のプライマーセット、[２８]もしくは[２９]のオリゴヌクレオチドもしくはその標識物、または[３０]の固定化基板を含む子宮平滑筋肉腫検出キット。
[３３] 動物から採取した子宮平滑筋組織または細胞におけるJAK1キナーゼ遺伝子の以下の（A1)〜（A6)の変異部位の少なくとも１つ、およびLMP2プロモーターの以下の（B1)〜（B5)の変異部位の少なくとも１つからなる群から選択される変異部位の検出を行い、その結果に基づいて、上記変異が存在する場合に、前記動物が子宮平滑筋肉腫に罹患しているか、または罹患するリスクが高いと判断する、子宮平滑筋肉腫の検出方法：
（A1） A2612A
（A2） G2626A
（A3） G2642T
（A4） A2967C
（A5） A2960C
（A6) A2985T
（B1) A210G
（B2) C214T
（B3) A216G
（B4) A217G
（B5) G219A。
[３４] JAK1キナーゼ遺伝子、またはMP2プライマーの変異の検出を[３１]のプライマーセット、[２８]もしくは[２９]のプローブまたは[３０]の固定化基板を用いて行う[３３]の方法。
本明細書は本願の優先権の基礎である日本国特許出願2005-347227号の明細書および／または図面に記載される内容を包含する。
図１ａは、SKN細胞の中でのIFN-γ誘導性TAP1およびLMP2発現の欠損を示す写真である。写真に示す時間250ユニット/mlのIFN-γで処理したHeLa、HeLa.S3、SKN細胞およびヒト正常子宮平滑筋細胞(Hu.USMC)から細胞質抽出を調製し、50μgの細胞質抽出物を10%のSDS-PAGEで分離した。TAP1、LMP2およびβアクチンの発現レベルは適切な抗体を用いたイムノブロット分析で調べた。
図１ｂは、SKN細胞の中でのIFN-γ誘導性TAP1およびLMP2発現の欠損を示す写真であり、RT-PCRによるHeLa、HeLa.S3、SKN細胞およびHu.USMC細胞中のTAP1、LMP2およびβアクチンのmRNA発現の試験の結果を示す写真である。IFN-γ(250ユニット/ml)の非存在下または存在下で細胞を48時間培養した後に、プライマーを用いてRT-PCRを行った。RT-PCRにより増幅されたDNA製品をアガロース・ゲルにより分離した。DNAサイズマーカーは写真の左側に示す。
図１ｃは、子宮平滑筋肉腫の中でのLMP2発現の欠損を示す写真であり、正常子宮平滑筋および子宮平滑筋腫中のLMP2の免疫組織化学の結果を示す写真である。組織標本の５μmの切片を抗LMP2抗体およびペルオキシダーゼ結合抗ウサギのIgG抗体を用いて染色した。
図２は、HeLaおよびSKN細胞中でのIFN-γ誘導TAP1とLMP2共有のwtおよびIRF-E mtプロモーターの示差活性を示す図である。TAP1とLMP2共有のプロモーターwt(TAP1 593-1/pGL3およびLMP2 1-593/pLG3)の図ならびにそれらのそれぞれのIRF-E変異体プロモーターを含んだルシフェラーゼレポーター遺伝子の構築物を示す。HeLaおよびSKN細胞に同レポーター遺伝子を移入し、IFN-γを24時間後に添加しさらに回収の前24時間細胞をインキュベートした。レポーター遺伝子の移入効率の標準化のためにpSMV-βGALとの同時に移入した。結果は、HeLaおよびSKN細胞について別々に測定されたルシフェラーゼ遺伝子発現に標準化され、相対的TAP1およびLMP2活性として示される。結果は3つの独立している実験の平均で示され、エラーバーはSEを表す。
図３は、ヒト正常子宮平滑筋組織の顕微鏡写真である。
図４は、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の顕微鏡写真である。
図５は、ヒト子宮内膜間質肉腫の顕微鏡写真である。
図６は、正常子宮平滑筋、子宮平滑筋腫および子宮平滑筋肉腫の免疫組織化学染色写真である。
図７は、同一組織における子宮平滑筋肉腫部位と正常子宮平滑筋部位の免疫組織化学染色写真である。子宮平滑筋肉腫部位においてLMP2の発現低下が認められる。
図８は、LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN)に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、SKN細胞の形態の変化を示す写真である（その１）。
図９は、LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN)に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、SKN細胞の形態の変化を示す写真である（その２）。
図１０は、LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN)に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、SKN細胞のファイブロネクチンの発現変化を示す写真である。
図１１は、ヒト正常子宮平滑筋細胞（HuUSMC）におけるファイブロネクチンの発現変化を示す写真である。
図１２は、各細胞における形態の変化、細胞増殖速度、およびファイブロネクチンの発現状況のまとめを示す図である。
図１３は、マウス骨格筋組織、心筋組織および平滑筋組織におけるLMP2発現を示す写真である。
図１４は、子宮平滑筋肉腫、子宮平滑筋腫および他臓器で発症した平滑筋肉腫におけるLMP2の発現を示す図である。
図１５は、INFγシグナル伝達経路とLMP2の発現の関係を示す図である。
図１６は、子宮平滑筋肉腫組織由来のJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子およびLMP2プロモーターの変異を示す図である。
図１７は、子宮平滑筋肉腫組織由来のJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子およびLMP2プロモーターの変異を示す図である。
図１８は、各組織におけるLMP2の発現状況を示す図である。図１８において、Nは、LMP2の発現を検査した組織の症例数を示す。
図１９は、pCEM9ベクター(LMP2遺伝子が含まれていない)またはpCEM9-LMP2ベクター(LMP2遺伝子がふくまれている)をヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞(SKN細胞)に移入し、ネオマイシンにより選択された各ベクターを取り込んだ場合の、SKN細胞の増殖により形成されたコロニーの数を示す図である。１μgのpCEM9およびpLMP2 DNAを２×105細胞のDT細胞又はSKN細胞にトランスフェクトし、0.5または0.4mg/mlのG418を含む成長培地中でセレクトした。
図２０は、LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN）に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、SKN細胞の形態の変化を示す写真である。
図２１は、各細胞における形態の変化、細胞増殖速度、およびファイブロネクチンの発現状況のまとめを示す図である。
図２２は、LMP2を恒常的に発現させたSKN細胞が腫瘍形成能の指標であるコロニー形成を著しく低下していることを示す写真である。
図２３Aは、LMP2を恒常的に発現させたSKN細胞がヌードマウスへの移植実験により腫瘍形成能を著しく低下していることを示す写真である。
図２３Bは、LMP2を恒常的に発現させたSKN細胞がヌードマウスへの移植実験により腫瘍形成能を著しく低下していることを示す図である。
図２３Cは、pCEM9-LMP2ベクター(LMP2遺伝子が含まれている)を移入したヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞(SKN細胞)のコロニー#121が、SKN細胞と比較してLMP2遺伝子を著しく発現していることを示す写真である。
図２４は、マイクロアレイを用いた遺伝子発現解析の結果、LMP2を恒常的に発現させたSKN細胞(コロニー#121)では、細胞増殖を誘導するサイクリンEの発現が著しく低下していることを示す図である。
図２５は、サイクリンEプロモーターを含んだルシフェラーゼレポーター遺伝子の構造を示す図である。
図２６は、SKN細胞とLMP2を恒常的に発現しているSKN細胞(コロニー#121と＃122)での、サイクリンEプロモーター活性を示す図である。子宮平滑筋肉腫培養細胞SKN細胞で認められた顕著なサイクリンEの発現は、LMP2の恒常的な発現により著しく低下した。
図２７は、ヒト子宮平滑筋肉腫組織におけるサイクリンEの顕著な発現を示す組織染色写真である。正常な子宮平滑筋層においては、サイクリンEの発現は認められないが、悪性腫瘍であるヒト子宮平滑筋肉腫組織では、サイクリンEの顕著な発現が認められる。
図２８は、ヒト子宮平滑筋肉腫組織における分裂期の核内でのサイクリンEの発現を示す組織染色写真である。通常、細胞増殖を誘導するサイクリンEは、細胞増殖の開始期であるG1期に細胞質において過剰に発現し、速やかに核内へと移行しS期において染色体の合成を開始させる。その後、サイクリンEは、S期の後半から即座に分解される。したがって、正常な細胞のG2期とM期においては、サイクリンEの発現は認められない。しかし、ヒト子宮平滑筋肉腫組織において、分裂期の核内での顕著なサイクリンEの発現が認められる。
本発明はLMP2をマーカーとして用いて、子宮平滑筋肉腫を検出する。ここで、検出とは、子宮平滑筋肉腫が存在するかどうかを判定すること、患者が子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうか判定すること、子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別すること、子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定すること等を含む。
LMP2は、プロテアソームのサブユニットであり、本発明の方法においては、子宮平滑筋層において、LMP2が転写発現しているかどうかを検出する。ヒトの子宮平滑筋層の組織でのLMP2の転写発現を調べると、正常な子宮平滑筋層と子宮平滑筋腫では、LMP2の発現は陽性（中程度から強陽性）であるのに対して、子宮平滑筋肉腫では、LMP2の発現は陰性の部分が多く弱陽性の部分が若干認められる。従って、LMP2の転写発現を指標に子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうか、あるいは子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫か子宮平滑筋肉腫のいずれかであるかを鑑別診断することができる。また、良性腫瘍である子宮平滑筋腫ではLMP2の転写発現は強いのに対して、悪性化した腫瘍である子宮平滑筋肉腫ではLMP2の転写発現が著しく減弱する。このことは、LMP2の転写発現が子宮平滑筋細胞に認められる腫瘍に対して悪性度の指標になることを示す。
さらに、本発明は、サイクリンE（CyclinE）をマーカーとして用いて、子宮平滑筋肉腫を検出する方法を包含する。サイクリンは、サイクリン依存性キナーゼの活性を調節する細胞周期で重要な役割を果たすタンパク質であり、サイクリンEは、ほ乳類細胞のG1期において作用するG1サイクリンの一つである。サイクリンEは、子宮平滑筋肉腫組織において、正常組織に比較して発現が著しく上昇するが、子宮平滑筋腫組織においては上昇しない。本発明においては、LMP2と同様に子宮平滑筋層において、サイクリンEが転写発現しているかどうかを検出する。サイクリンEの転写発現を指標に子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうか、あるいは子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫か子宮平滑筋肉腫のいずれかであるかを鑑別診断することができる。また、良性腫瘍である子宮平滑筋腫ではサイクリンEの転写発現は正常子宮平滑筋組織と比べて変化がないのに対して、悪性化した腫瘍である子宮平滑筋肉腫ではサイクリンEの転写発現が亢進する。さらに、通常、増殖期にある正常な細胞のG2期とM期においては、サイクリンEの発現は認められない。しかし、ヒト子宮平滑筋肉腫組織において、分裂期の核内での顕著なサイクリンEの発現が認められる。このことは、サイクリンEの転写発現が子宮平滑筋細胞に認められる腫瘍に対して悪性度の指標になることを示す。
また、LMP2とサイクリンEを同時に検出してもよい。LMP2の転写発現が減弱し、かつサイクリンEの転写発現が亢進している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判断することができる。LMP2またはサイクリンE単独を指標とする場合よりも、LMP-2およびサイクリンEの両方を指標とした場合に、より正確に子宮平滑筋肉腫を検出することが可能である。
本発明においては、子宮平滑筋肉腫に罹患しているかどうかの判断、子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫か子宮平滑筋肉腫のいずれかであるかの鑑別診断、および子宮平滑筋細胞に認められる腫瘍の悪性度の評価を含めて子宮平滑筋肉腫の検出と呼ぶ。
本発明の方法においては、子宮平滑筋層におけるLMP2および／もしくはサイクリンEの転写もしくは発現のいずれかまたは両方を検出することにより、子宮平滑筋肉腫を検出することができる。LMP2またはサイクリンEの転写はLMP2またはサイクリンEをコードするmRNAを測定することにより検出することができ、LMP2またはサイクリンEの発現はLMP2またはサイクリンEタンパク質を測定することにより検出することができる。
LMP2および／またはサイクリンEの転写を検出する場合、子宮平滑筋層の組織または細胞を生体試料として採取し、該試料中に含まれるLMP2および／またはサイクリンEをコードするmRNAを測定すればよい。mRNAの測定のためには、子宮平滑筋組織からバイオプシーにより組織の一部を採取し、また子宮平滑筋組織より綿棒等を用いて採取し、材料として用いる。組織の採取は、例えば通常の外来診察中に、子宮内腔にバイオプシー用のかん子を挿入し、１〜２mm角程度の子宮組織片を採取すればよい。mRNAの測定は採取した組織または細胞からmRNAを抽出して行ってもよいし、組織切片標本を作製するか、または採取した細胞をスライドガラス上に固定し、in situ ハイブリダイゼーション法により染色して行ってもよい。あるいは、抽出したmRNAをノーザンブロット法やRT-PCR等の公知のRNA測定法により測定すればよい。mRNAの抽出は公知の方法、例えば、新生化学実験講座２ 核酸I 分離精製 東京化学同人 1991年７月10日や分子生物学実験プロトコールI 丸善株式会社 平成９年６月30日の記載に従って行うことができる。in situ ハイブリダイゼーションは、例えば分子生物学実験プロトコールIII 丸善株式会社 平成９年８月30日の記載に従って行うことができる。この際、LMP2および／またはサイクリンEをコードするmRNAを特異的に測定するために、LMP2および／またはサイクリンEをコードするmRNAの部分配列に相補的な部分配列からなるプローブまたはプライマーを用いる。LMP2の塩基配列は公知であり（例えば、GenBank アクセッション番号U01025、配列番号１、配列番号2はLMP2タンパク質のアミノ酸配列を示す）、公知の塩基配列情報に基づいて、プローブまたはプライマーを設計することができる。同様に、サイクリンEの塩基配列も公知であり（例えば、GenBankアクセッション番号M73812、配列番号８）該プライマーまたはプローブは、上記のLMP2および／またはサイクリンE遺伝子の断片であり、塩基の数は５〜50、好ましくは10〜30、さらに好ましくは15〜25である。
LMP2および／またはサイクリンEの発現を検出する場合、子宮平滑筋層の組織または細胞を生体試料として採取し、該試料中に含まれるLMP2および／またはサイクリンEタンパク質を測定すればよい。子宮平滑筋層の組織または細胞は上記のようにして採取すればよい。また、LMP2および／またはサイクリンEタンパク質の測定も、組織または細胞からタンパク質を抽出し、該抽出物中のLMP2および／またはサイクリンEタンパク質を測定してもよいし、免疫組織化学または免疫細胞化学の手法により行ってもよい。抽出したタンパク質の測定は、ELISA、ラジオイムノアッセイ等の公知の免疫測定法（イムノアッセイ）を用いればよい。この際、LMP2および／またはサイクリンEに対する抗体が必要であるが、抗LMP2抗体および／または抗サイクリンE抗体は公知の手法によりモノクローナル抗体またはポリクローナル抗体として作製すればよい。また、市販の抗LMP2抗体および／または抗サイクリンE抗体を用いることもできる。抗体は必要に応じて、酵素、蛍光物質、放射性同位元素により標識して用いるが、抗体の標識は公知の方法により行うことができる。免疫組織化学または免疫細胞化学の手法による測定は、採取した子宮平滑筋組織切片標本を作製するか、採取した細胞をスライドガラス上に固定して行う。免疫組織化学の手法による測定のためには、組織を例えば、ホルマリンで固定し、パラフィン中に包埋し、ミクロトーム等の薄切装置で１〜５μm程度の厚さの切片標本を作製し、測定時にキシレンやエタノール処理等によりパラフィンを除去し、生理食塩水または緩衝液に浸して親水化すればよい。染色は、酵素、蛍光物質、放射性同位元素等で標識した抗LMP2抗体および／または抗サイクリンE抗体を用いてもよいし、抗LPM2抗体を切片標本中のLMP2および／またはサイクリンEに結合させた後に、抗LMP2抗体および／または抗サイクリンE抗体に結合する２次抗体であって酵素、蛍光物質等で標識した２次抗体を用いてもよい。標識に用いる酵素として、例えば西洋ワサビペルオキシダーゼ、アルカリフォスファターゼ等が挙げられ、蛍光物質として、例えばフルオレセイン、ローダミン等が挙げられる。また、公知のビオチン-アビジン複合体を利用して染色してもよい。免疫細胞化学は採取した細胞をホルマリン等によりスライドガラス上に固定し、免疫組織化学の手法と同様の方法で細胞中のLMP2および／またはサイクリンEを可視化すればよい。免疫組織化学または免疫細胞化学において、染色は顕微鏡や肉眼で判断することもできるし、適当な光学的測定装置を用いてもよい。免疫組織化学による染色は、例えば分子生物学実験プロトコールIII 丸善株式会社 平成９年８月30日刊行の記載に従って行うことができる。
上記のように、子宮平滑筋組織または細胞におけるLMP2の転写または発現を検出し、LMP2の転写または発現が喪失しているか、または低下している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。また、子宮平滑筋組織または細胞におけるサイクリンEの転写または発現を検出し、サイクリンEの転写または発現が亢進している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。さらに、LMP2とサイクリンEの両方の転写または発現を同時に検出してもよい。LMP2の転写または発現が喪失しているか、または低下しており、なおかつサイクリンEの転写または発現が亢進している場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。例えば、組織または細胞の抽出物中のLMP2 mRNAもしくはLMP2タンパク質またはサイクリンE mRNAもしくはサイクリンEタンパク質を測定する場合、あらかじめ子宮平滑筋肉腫に罹患していない正常人の単位重量組織または単位細胞数当りのLMP2 mRNAもしくはLMP2タンパク質またはサイクリンE mRNAもしくはサイクリンEタンパク質を測定する。正常人の値よりLMP2 mRNAまたはLMP2タンパク質が有意に低い場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定し得、正常人の値よりサイクリンE mRNAまたはサイクリンEタンパク質が有意に高い場合、子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定し得る。
また、組織または細胞のLMP2の転写または発現をin situ ハイブリダイゼーション、免疫組織化学、免疫細胞化学により検出する場合、組織または細胞が染色されず、LMP2の転写、発現が認められない場合は、その部分の組織または細胞は子宮平滑筋肉腫組織または細胞であり、組織または細胞を採取した患者は子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。さらに、組織または細胞のサイクリンEの転写または発現をin situ ハイブリダイゼーション、免疫組織化学、免疫細胞化学により検出する場合、組織または細胞が強く染色され、サイクリンEの転写、発現が強く認められる場合は、その部分の組織または細胞は子宮平滑筋肉腫組織または細胞であり、組織または細胞を採取した患者は子宮平滑筋肉腫に罹患していると判定することができる。この際、子宮平滑筋肉腫でない正常組織および子宮平滑筋肉腫組織の染色組織切片標品または染色細胞標品をあらかじめ作製しておき、該標品と比較してもよい。
LMP2の転写または発現の検出は、子宮平滑筋腫瘍に罹患した患者の腫瘍が悪性か良性か、すなわち、子宮平滑筋肉腫かそれとも子宮平滑筋腫かの鑑別に利用することもできる。この場合、LMP2の転写または発現が喪失しているか、正常組織に比較して有意に低下している部分の組織は、悪性の子宮平滑筋肉腫であると判定することができる。また、サイクリンEの転写または発現の検出は、子宮平滑筋腫瘍に罹患した患者の腫瘍が悪性か良性か、すなわち、子宮平滑筋肉腫かそれとも子宮平滑筋腫かの鑑別に利用することもできる。この場合、サイクリンEの転写または発現が、正常組織に比較して有意に亢進している部分の組織は、悪性の子宮平滑筋肉腫であると判定することができる。この際、LMP2およびサイクリンEの両方を検出することにより、悪性度についてより正確な判断が可能になり、また、より正確に鑑別を行なうことができる。さらに、組織を用いたin situ ハイブリダイゼーションまたは免疫組織化学の手法によれば、組織のどの部分が正常でどの部分が子宮平滑筋肉腫部分かを鑑別することもできる。さらに、例えば、組織切片の単位体積当り、または単位細胞数当りのLMP2および／またはサイクリンEの転写または発現が喪失しているかまたは低下している細胞の数を測定することにより、子宮平滑筋腫瘍の悪性度を判定することができる。
さらに、従来の子宮平滑筋肉腫の診断方法と本発明のLMP2および／またはサイクリンEの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫を診断する方法を組合せることにより、より精度の高い検出を行うことができる。従来法として、細胞の形態、密度等を観察する方法、またはミオシンの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫を診断する方法が挙げられ、これらの方法は主に組織または細胞を固定して行われてきた。すなわち、組織切片標本または細胞スライドガラス標本を作製し、該標本の細胞の形態や密度を測定し、さらに、ミオシンの転写または発現を測定し、さらに、LMP2および／またはサイクリンEの転写または発現を測定すればよい。
本発明は、さらにLMP2遺伝子を子宮平滑筋肉腫患者に投与することにより、子宮平滑筋肉腫を治療する方法、LMP2遺伝子を含む遺伝子治療のための遺伝子治療剤も包含する。遺伝子治療における目的の遺伝子の子宮平滑筋肉腫患者への導入は公知の方法により行うことができる。遺伝子を患者への導入する方法として、ウイルスベクターを用いる方法および非ウイルスベクターを用いる方法があり、種々の方法が公知である(別冊実験医学、遺伝子治療の基礎技術、羊土社、1996；別冊実験医学、遺伝子導入&発現解析実験法、羊土社、1997；日本遺伝子治療学会編、遺伝子治療開発研究ハンドブック、エヌ・ティー・エス、1999)。遺伝子導入のためのウイルスベクターとしては、アデノウイルス、アデノ随伴ウイルス、レトロウイルス等のウイルスベクターを用いた方法が代表的なものである。無毒化(ウイルス自身の複製が起こらない)したレトロウイルス、ヘルペスウイルス、ワクシニアウイルス、ポックスウイルス、ポリオウイルス、シンビスウイルス、センダイウイルス、SV40、免疫不全症ウイルス(HIV)等のDNAウイルスまたはRNAウイルスに目的とする遺伝子を導入し、細胞に組換えウイルスを感染させることによって、細胞内に遺伝子を導入することが可能である。また、プラスミドベクター等の遺伝子発現ベクターを用いて、LMP2遺伝子を細胞や組織に導入することができる。例えば、リポフェクション法、リン酸-カルシウム共沈法、DEAE-デキストラン法、微小ガラス管を用いたDNAの直接注入法などにより細胞内へ遺伝子を導入することができる。また、内包型リポソーム(internal liposome)による遺伝子導入法、静電気型リポソーム(electrostatic type liposome)による遺伝子導入法、HVJ-リポソーム法、改良型HVJ-リポソーム法(HVJ-AVEリポソーム法)、HVJ-E(エンベロープ)ベクターを用いた方法、レセプター介在性遺伝子導入法、パーティクル銃で担体(金属粒子)とともにDNA分子を細胞に移入する方法、naked-DNAの直接導入法、種々のポリマーによる導入法等によっても、組換え発現ベクターを細胞内に取り込ませることが可能である。この場合に用いる発現ベクターとしては、生体内で目的遺伝子を発現させることのできるベクターであれば如何なる発現ベクターも用いることができるが、例えばpCAGGS（Gene 108, 193-200(1991)）や、pBK-CMV、pcDNA3、pZeoSV(インビトロゲン社、ストラタジーン社)、pVAX1などの発現ベクターが挙げられる。
LMP2遺伝子を含むベクターは、遺伝子を転写するためのプロモーターやエンハンサー、ポリAシグナル、遺伝子が導入された細胞の標識および／または選別のためのマーカー遺伝子等を含んでいてもよい。この際のプロモーターとしては、公知のプロモーターを用いることができる。
LMP2遺伝子を含む遺伝子治療剤は、LMP2遺伝子を含むベクターならびに薬理学的に許容され得る担体、希釈剤もしくは賦形剤を含む。担体、希釈剤、賦形剤としては、製剤分野において通常用いられるものを用いることができる。例えば、錠剤用の担体、賦形剤としては、乳糖、ステアリン酸マグネシウムなどが使用される。注射用の水性液としては、生理食塩水、ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張液などが使用され、適当な溶解補助剤、たとえばアルコール、プロピレングリコールなどのポリアルコール、非イオン界面活性剤などと併用しても良い。油性液としては、ゴマ油、大豆油などが使用され、溶解補助剤としては安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどを併用しても良い。本発明の遺伝子治療剤は、子宮平滑筋肉腫部位に局所投与することが好ましく、例えば子宮平滑筋肉腫部位に注射により投与すればよい。
投与量は、症状、年齢、体重などによって異なるが、子宮平滑筋肉腫患者体内でLMP2を発現する発現ベクター等に挿入されたLMP2遺伝子は、数日または数週間または数ヶ月おきに１回あたり、0.001mg〜100mgを子宮平滑筋肉腫部位に注射等により直接投与すればよい。
本発明は、さらにインターフェロンγ（IFN-γ）シグナル伝達カスケードに関与する特定の因子における変異により子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、または子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクを有しているか否かを判定する方法をも包含する。
正常細胞においては、IFN-γによりLMP2の遺伝子は活性化されるのに対して、子宮平滑筋肉腫細胞においては、IFN-γによるLMP2の活性化はほとんど認められない。IFN-γによるLMP2の活性化は、図１５にメカニズムを示すようにJAK1キナーゼ、JAK2キナーゼ、STAT1などを介して、IRF-1が発現誘導され、LMP-2遺伝子のプロモーターに結合することにより生じる。IFN-γシグナル伝達に関与する因子のうち、JAK1キナーゼ及びSTAT１遺伝子の変異、並びにLMP2のプロモーター領域の変異によりシグナル伝達が遮断され、LMP-2の発現が阻害される。
変異は以下のとおりである。以下、例えば遺伝子の変異をA210Gで表した場合、遺伝子の塩基配列の21番目のAがGに置換していることを示す。また、遺伝子のコードするタンパク質のアミノ酸配列の変異をG871Eで表した場合、アミノ酸配列中、871番目のグリシン(G)がグルタミン酸（E）に置換していることを示す。
JAK1キナーゼにおける変異
遺伝子変異 対応アミノ酸変異 変異の存在するドメイン
A2612A G781E ATP binding
G2626A G876R ATP binding
G2642T C881F ATP binding
A2967C G986P active site
A2960C Y987S active site
A2985T R995S active site
JAK1キナーゼ遺伝子の塩基配列を配列番号３に、JAK1キナーゼのアミノ酸配列を配列番号４に示す。
STAT1における変異
遺伝子変異 対応アミノ酸変異 変異の存在するドメイン
A2104C I702L non kinase active region
T2128G S710A non kinase active region
T2078G L693R non kinase active region
A2148C R716S non kinase active region
STAT1遺伝子の塩基配列を配列番号５に、STAT1のアミノ酸配列を配列番号６に示す。
LMP2プロモーター
遺伝子変異 対応アミノ酸変異 変異の存在するドメイン
A210G IRF-E site
C214T IRF-E site
A216G IRF-E site
A217G IRF-E site
G219A IRF-E site
LMP2プロモーターの遺伝子配列を配列番号７に示す。
JAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子およびLMP2プロモーターの全長DNAまたはその断片は塩基配列情報に基づいて容易に得ることができる。
本発明は、上記のJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子またはLMP2プロモーターの塩基の変異を検出し、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否かを検出する方法若しくは子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクが高いか否かを判定する方法、並びに上記のJAK1キナーゼまたはSTAT1のアミノ酸の変異を検出し、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否かを検出する方法若しくは子宮筋肉腫に罹患するリスクが高いか否かを判定する方法を包含する。
遺伝子における塩基の変異は、上記変異部位を含む遺伝子の断片をプローブとして、またはDNAチップ、DNAマイクロアレイ技術において固相化するDNAとして用いればよい。その場合の、断片の塩基長は全長でもよいが、通常は15bp〜100bpが好ましく、さらに15bp〜50bpが好ましく、特に18bp〜30bpが好ましい。断片に含まれる変異部位は、１つだけでもよいし、複数、すなわち２個、３個、４個、５個または６個でもよい。
また、上記断片に相補的な配列を有するDNAも本発明の範囲である。相補的なDNAも本願明細書の開示に基づいて得ることができる。
本発明のプローブは、検出のために蛍光物質、酵素、放射性同位体、化学発光物質等で標識されていてもよい。標識に用いる標識物質は、公知のものを用い、公知の方法で標識することができる。蛍光物質としては、例えば、Cy3、Cy5、ローダミン、フルオレセイン等が挙げられる。
さらに、上記の遺伝子変異を検出するPCR-RFLP等のPCRに用いるプライマーも本発明の範囲である。すなわち、本発明は上記のJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子及びLMP2プロモーターの変異部位の3’側および5’側に存在する10から30塩基からなる部分配列からなる、DNA断片の増幅に用い得る一対のプライマーセットを包含する。
変異は、本発明のDNAを用いてPCR法、サザンハイブリダイゼーション法、ノーザンハイブリダイゼーション法、定量的PCR法、in situ ハイブリダイゼーション法、FISH(Fluorescence In Situ Hybridization)、PCR-RFLP法、PCR-SSCP法等により、検出することができる。
例えば、まずJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子またはLMP2プロモーターの変異塩基部分を含むヌクレオチド配列に相補的なプローブ、ならびに野生型遺伝子の該変異塩基部分に対応する部分を含むヌクレオチド配列に相補的なプローブを調製する。用いるプローブの長さに制限はなく、後述の核酸増幅法で増幅しようとする核酸断片の全長でもよいが、通常は15bp〜100bpが好ましく、さらに15bp〜50bpが好ましく、特に18bp〜30bpが好ましい。プローブは、放射性同位元素、蛍光物質、酵素等で標識したものを用いてもよい。次いで、子宮平滑筋組織から採取した組織または細胞検体試料中の変異塩基部分を含む遺伝子断片を核酸増幅法により増幅し、この増幅断片とプローブを反応させる。検体試料中のDNAが野生型、変異型のいずれのプローブとハイブリダイズするか調べることにより、上記遺伝子DNAに変異が生じているか否かを検出することができる。本発明のプローブは、１塩基のミスマッチを検出するため、そのハイブリダイゼーション条件は、ストリンジェントなものであることが必要である。ハイブリダイゼーション時の温度、塩濃度を調節することにより１塩基のミスマッチのみを検出し得るハイブリダイゼーション条件を選択することが可能である。用いるプローブDNAの長さにも依存するが、例えば具体的には、ナトリウム濃度が150〜900mM、好ましくは600〜900mMであり、温度が60〜68℃、好ましくは65℃での条件で行い得る。
核酸増幅の際に用いるプライマーとしては、上記遺伝子の変異部位を挟み増幅しようとする領域の端部と相補的な配列を用いることができる。増幅する領域の塩基長に制限はないが、数十から数百塩基とすることができる。増幅領域に上記JAK１キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子またはLMP2プロモーターDNAの変異を１つだけ含むように増幅塩基長を設定してもよいし、複数の変異、すなわち、２個、３個、４個、５個または６個の変異を含むように設定してもよい。また、プライマーを変異部位を含む領域に設定することも可能である。プライマーの長さに制限はないが、好ましくは15bp〜50bp、さらに好ましくは20bp〜30bpである。
さらに、本発明のJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子またはLMP2プロモーター部位の変異を含むDNA配列またはその断片に相補的なDNAを用いて、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、または子宮平滑筋肉腫患の罹患のリスクを決定するためのDNAチップを作製することもできる。この際、本発明のJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子またはLMP2プロモーター部位の変異を含む部分に相補的なDNA断片をニトロセルロース、ナイロン等のメンブレン、スライドグラス等に固相化すればよい。この際、固相化するDNA断片の塩基長は、通常は15bp〜100bpが好ましく、さらに15bp〜50bpが好ましく、特に15bp〜25bpが好ましい。次いで、該DNAチップを放射性同位元素、酵素、蛍光色素等で標識した被験体由来のDNAまたはRNAと接触させ、ハイブリダイズを形成するか否かにより検体中に変異を有する核酸が含まれているかどうかがわかる。
変異の検出は子宮平滑筋肉組織から採取した組織片、細胞から核酸を抽出して行なえばよい。
本発明を以下の実施例によって具体的に説明するが、本発明はこれらの実施例によって限定されるものではない。
実施例１ ヒト子宮平滑筋肉腫におけるLMP2の転写および発現
本実施例においては、以下に記載する材料及び方法を用いて検討を行った。
細胞株および培地
ヒト子宮平滑筋肉腫細胞株であるSKN細胞(RCB0513)は、理化学研究所セルバンクから購入し、0.6%のL-グルタミン(Invitrogen社)および15%の牛胎児血清(シグマ-オルドリッチ社)を補足したF-12Nutrient Mixture(Ham)培地(Invitrogen社)で維持した。HeLa細胞およびHeLa.S3細胞は0.6%のL-グルタミンおよび10%の牛胎児血清を補足したダルベッコのMEMで維持した。ヒト子宮平滑筋細胞はCambrex BioScience Wailersville社から購入し、メーカーのプロトコルに従って維持した。
逆転写ポリメラーゼ連鎖反応(RT-PCR)分析
TAP1、LMP2、β２-mおよびβアクチンの転写物をRT-PCRにより調べた。細胞を250ユニット/mlのヒトIFN-γ(Pepro Tech社)で処理しないかまたは48時間処理し、RNAを回収した。トータルRNAはTRIzol試薬(Invitrogen社)を用いメーカーのプロトコルに従って5×106細胞から調製した。RNAは、Superscript II enzyme(Invitrogen社)を用いて逆転写し、１本鎖cDNAをTAP1、LMP2、β2mおよびβアクチン転写物を増幅するのに用いた。PCRは適切なプライマーを用いて、30秒94℃35サイクル、30秒60℃、1.5分72℃および追加の５分のプログラムで行い、転写物を伸長させた(Cabrera CM. et al. (2003) Tissue Antigens, 61,211-219; Miyagi T. et al. (2003) J.Gastroenterol.Hepatol., 18, 32-40)。
免疫組織化学(Immunohistchemistry = IHC)
IHCは、Hsu SM. et al. (1981) J.Histochem.Cytochem. 29, 577-580に記載の方法によりアビジン-ビオチン複合体を用いて行った。すなわち、子宮平滑筋肉腫患者から得られた子宮摘出標本のパラフィン包埋サンプルから代表的な６つの５μm組織切片を作製した。切片はパラフィン除去しアルコール中で再水和し、正常マウス血清を用いて20分間インキュベートした。次いで、切片を抗LMP2抗体(Affinity Res. Products社、希釈1/100)を用いて１時間室温でインキュベートした。その後、切片をビオチン化２次抗体(Dako社)とともにインキュベートした。反応を3、3'-ジアミノベンジジンを用いて完了し、スライドをヘマトキシリンで対比染色した。標本中の正常子宮平滑筋組織を陽性対照として用いた。組織切片からなる陰性対照も、１次抗体の代わりに正常ウサギIgGとともにインキュベートした。
免疫沈降反応およびイムノブロット
細胞質抽出物および核抽出物は250ユニット/mlのヒトIFN-γで処理したか、または処理しない5×106細胞から調製した(Brucet M. et al. (2004) Genes Immun., 5, 26-35)。細胞を1200rpm、10分間の遠心分離により回収し、5mlの氷冷PBSで洗浄し、5分間、12000rpm、４℃で遠心分離した。細胞をペレット化し、0.4mｌのバッファーA（10mM Hepes、pH7.8; 10mM KCl; 2mM MgCl2; 1mM DTT; 0.1mM EDTA; およびコンプリートプロテアーゼインヒビターカクテル(Kirkegaard&Perr Lab社）中で一度洗浄し、２時間、４℃でインキュベートした。次いで、10%のNonidet P-40溶液25μlを添加し、細胞を１時間、４℃で激しく混ぜ、次に、5分間、12000rpmで遠心分離した。遠心分離の後に上清を細胞質抽出物として回収し、-80℃で保存した。ペレット化核は、40μlのバッファーC（50mM Hepes、pH7.8; 50mM KCl; 300mM NaCl; 0.1mM EDTA; 1mM DTT; 10％(v/v)グリセロール）に再懸濁し、４℃で2時間混ぜて、5分間、4℃で12000rpm遠心分離した。核タンパク質を含む上清を回収し、-80℃で保存した。
STAT1、リン酸化状態のSTAT1、JAK1、JAK2、TAP1およびLMP2発現を検出するために、細胞可溶化液または細胞質抽出物を10%SDS-ポリアクリルアミドゲル(SDS-PAGE)で分離し、抗STAT1抗体、抗リン酸化STAT1抗体(Santa-Cruz Biotechnol.社)、抗JAK1、抗JAK2抗体(Chemicon Int'l社)、抗体TAP1抗体(Stressgen社)または抗LMP2抗体(Affiniti Res. Products社)を用いて標準方法でイムノブロットを行った。IRF1またはIRF2発現の検出のために、核抽出物を10%のSDS-PAGEページで分離し、抗IRF1抗体(Transduction Lab.社)、抗IRF2抗体(Santa-Cruz Biotechnol.社)を用いて標準方法でイムノブロットを行った。目的のタンパク質の発現は、アルカリフォスファターゼを結合した２次抗体を用いてアルカリフォスファターゼ発色をメーカーのプロトコールに従って行うことで、可視化して検討された。
図に示す時間250ユニット/mlのIFN-γで処理するか処理しなかった5×106細胞からの細胞全体の抽出物を、50mM Tris-HCl、0.1mM EDTA、200mM NaCl、10%グリセロール、0.5%NP-40、１mM DTTおよびコンプリートプロテアーゼインヒビターカクテル(Kirkegaard&Perr Lab.社)を含むバッファーで溶解した。細胞可溶化液は、正常ウサギの血清(Santa-Cruz Biotechnol.社)および20mlのプロテインG Sepharose(Amersham Biosciences社)であらかじめ清澄化し、次に、２μgの抗JAK1または抗JAK2抗体を用いて免疫沈降を行った。サンプルを10%のSDS-PAGEで分離し、Immobilon-Pメンブランにトランスファーした。リン酸化タンパク質は、抗チロシンリン酸化抗体を1次抗体として反応させた後アルカリフォスファターゼを結合した2次抗体を用いてアルカリフォスファターゼ発色をメーカーのプロトコールに従って行うことで、可視化して検討された。IFN-γR1鎖発現を検出するために、細胞全体のライセートは上述のように分離した。ブロットは抗IFN-γR1鎖抗体(PBL Biomedical研究所)を用いて行った。SKN細胞をpRK5コントロール（２μg）またはJAK1発現ベクター（２μg）(St.Jude Children Research Hospital（テネシー州メンフィスのJ.Ihle博士から提供された)でトランスフェクトした。IFN-γをトランスフェクト24時間後に添加し、細胞を回収の前さらに24時間インキュベートした。pCMVβ-Galとの同時トランスフェクトをトランスフェクト効率を標準化するために行った。
トランスフェクトおよびレポーターアッセイ
TAP1およびLMP2wt(TAP1 593-1/pGL3およびLMP2 1-593/pLG3)の構造ならびにそれらのIRF-E変異体プロモーター構築物の構造を図２に示す。トータル２μgのこれらのプラスミドDNA(University of South FloridaのK.L. Wright博士から提供を受けた)を、メーカーの推奨に従って、FuGENE 6 Transfection Reagent(Roche社)によりHeLaまたはSKN細胞中に移入した。すべての移入されたDNAには200ngのpCMVβ-Gal(Tropix社)を内部トランスフェクト効率コントロールとして含んでいた。IFN-γ(最終濃度250ユニット/ml)をトランスフェクト24時間後に添加し、細胞をさらに24時間インキュベートした。最終的に、細胞を洗浄し、500μlの溶解バッファーで溶解し、Dual-Luciferase Reporter Assay System(Promega社)を用いてメーカーの指示に従って分析した。LMP2またはTAP1/pGL3の代わりにpGL3ベースで移入した細胞のルシフェラーゼ活性をバックグラウンドとして差し引いた。
上記材料および方法を用いた検討により以下の結果が得られた。
ヒト子宮平滑筋肉腫細胞中におけるINF-γによるTAP1およびLMP2発現の非誘導
LMP2欠損マウスは子宮平滑筋肉腫を発症した(Hayashi T. et al. (2002) Cancer Res., 62, 24-27）。次いで、ヒト子宮平滑筋肉腫がTAP1およびLMP2の弱い発現を示すか否かを示す必要がある。TAP1およびLMP2発現に対するIFN-γの効果は、４種の細胞株を用いたイムノブロットにより調べた。IFN-γ処理に続くHeLa、HeLa.S3、およびHu.USMC（対照）はTAP1およびLMP2の強い誘導を受けたが、ヒト平滑筋肉腫細胞株SKNにおけるIFN-γ処理ではTAP1およびLMP2発現はそれほど誘導されなかった(図1a)。SKN細胞は、HeLa、HeLa.S3細胞の両方とHu.USMC（対照）と比べると、同じようなβアクチン発現が認められたので、抽出物の調製工程はIFN-γ処理に続くTAP1およびLMP2発現の非誘導に影響しなかった。このIFN-γの量は、HeLa、HeLa.S3細胞の両方とHu.USMC中(図1a)のTAP1およびLMP2遺伝子の両方に共有されている双方向プロモーターを最大限に誘導するのに十分であった（図１a）。INF-γ量を500ユニット/mlまで増加させても、SKN細胞中でTAP1およびLMP2発現を顕著に誘導することはなかった。従って、SKN細胞はIFN-γ処理によりTAP1およびLMP2発現を増強する能力を失っていた。
IFN-γ処理に続くTAP1およびLMP2発現の非誘導を立証するために、４種の細胞株を用いてRT-PCR分析を行った。IFN-γ処理により誘導されたTAP1またはLMP2のいずれかのmRNA発現はHeLa、HeLa.S3細胞およびHu.USMCにおいて明確に検出されたが、IFNγ処理はSKN細胞中でTAP1およびLMP2のmRNA発現をそれほど誘導しなかった(図1b)。βアクチン対照のmRNA発現は試験したすべての細胞中で同様の高いレベルで検出された。このことはRNA調製ステップがIFN-γ処理に続くTAP1およびLMP2発現の非誘導に影響しなかったことを示す(図1b)。IHC実験により、正常子宮平滑筋細胞が6ケースにおいてLMP2を著しく発現したが、子宮平滑筋肉腫細胞では発現しなかったことが示された（図1c）。IHCの結果は、SKN細胞中でのTAP1およびLMP2の非誘導を立証した。
TAP1およびLMP2遺伝子のIFN-γに誘導される共通の双方向性プロモーター活性化の喪失
IRF-1はTAP1およびLMP2遺伝子に共有される双方向プロモーター中のIRF-Eと呼ばれるシスエレメントに直接結合する（Wright KL. et al. (1995) J.Exp.Med., 181, 1459-1471; White LC. et al. (1996) Immunity, 5, 365-376; Dovhey SE. et al. (2000) Cancer Res., 60, 5789-5796; Brucet M. et al. (2004) Genes Immun., 5, 26-35）。IRF-Eは図２に表されるように、NFκB様結合部位およびGC1ボックスの上流に位置する。IFN-γ処理によるTAP1およびLMP2の発現増強にIRF-Eが必要であることが示された(Wright KL. et al. (1995) J.Exp.Med., 181, 1459-1471; White LC. et al. (1996) Immunity, 5, 365-376; Dovhey SE. et al. (2000) Cancer Res., 60, 5789-5796; Brucet M. et al. (2004) Genes Immun., 5, 26-35)。IFN-γがSKN細胞においてTAP1/LMP2の共有された双方向のプロモーターを確実に活性化するかどうかを調べるために、SKN細胞およびHeLa細胞にTAP1またはLMP2の発現を誘導すべくIRF-Eがwtもしくはmutであるプロモーター-ルシフェラーゼコンストラクトDNAを移入した。HeLa細胞の場合、IFN-γ処理により11倍のLMP2プロモーター活性が誘導され、さらに10倍のTAP1プロモーター活性が誘導された(図２)。しかしながら、SKN細胞中では、IFN-γ処理の結果、TAP1/LMP2の共有された双方向のプロモーターの活性化誘導は認められなかった。IRF-Eの変異により、HeLa細胞中で認められたIFN-γのTAP1/LMP2遺伝子発現を誘導する能力が失われた(図２)。これらの結果は内在性のmRNAレベルと一致しており、HeLa細胞中でのTAP1およびLMP2遺伝子の活性が強調しているが、SKN細胞では強調していないことを示す。IRF-E部位の変異はHeLa細胞およびSKN細胞の両方でベースとなる発現レベルをいくらか減少させた。このことはこの部位がLMP-2の発現において一定の役割を果たすことを示す。これらの結果は、IFNγ処理が、HeLa細胞中でTAP1/LMP2の共有されたプロモーター活性を強く誘導し得るが、SKN細胞中では誘導しないことを示す(図２)。
実施例２ 免疫組織化学によるヒト正常子宮平滑筋層、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の生検組織または手術摘出組織におけるLMP2の発現状況
ヒト正常子宮平滑筋層、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫の顕微鏡観察
ヒト子宮平滑筋組織をバイオプシーまたは手術により採取し、顕微鏡観察した。
図３はヒト正常子宮平滑筋組織を、図４は、ヒト子宮平滑筋腫およびヒト子宮平滑筋肉腫を、図５はヒト子宮内膜間質肉腫の顕微鏡写真を示す。
上記顕微鏡観察により判定した、正常子宮平滑筋10例、子宮平滑筋腫６例、子宮内膜肉腫６例および子宮平滑筋肉腫（悪性度低）３例、子宮平滑筋肉腫（悪性度高）４例を用いて、免疫組織化学により各組識のLMP2発現を調べた。
免疫組織化学は、前記の方法で行った。
図６に、正常子宮平滑筋、子宮平滑筋腫および子宮平滑筋肉腫の免疫組織化学染色写真を示す。図に示すように、正常子宮平滑筋および子宮平滑筋腫は染色され、LMP2が発現されていることが確認された。しかし、子宮平滑筋肉腫では染色されなかったため、LMP2の発現が確認されなかった。
図７に、子宮平滑筋肉腫の免疫組織化学染色写真を示す。図に示すように、同じ組織内で染色された部分と染色されない部分が存在した。
各組織におけるLMP2の発現状況は以下のとおりであった。+は陽性、-は陰性、-/+はグレーゾーンであることを示す。
LMP2発現
正常子宮平滑筋組織 ++++
子宮平滑筋腫組織 ++++
子宮内膜肉腫組織 -/+
子宮平滑筋肉腫（悪性度低）組織 -/+
子宮平滑筋肉腫（悪性度高）組織 -
上記表に示されるように、悪性腫瘍である子宮平滑筋肉腫のみにおいて、顕著なLMP2の発現低下が認められた。また、子宮平滑筋肉腫の組織でのLMP2の発現低下度は、悪性度に依存していており、LMP2の発現低下度合いは、子宮平滑筋肉腫の悪性度の指標と成りうることが明らかとされた。
実施例３ SKN細胞におけるLMP2の強制発現
１． SKN細胞におけるLMP2の強制発現による細胞形態の変化
LMP2の発現低下が、子宮平滑筋細胞において形質転換（癌化）に直接的に関与しているかについて検討を行った。LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN)に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、SKN細胞の形態を観察した。
方法
LMP2発現プラスミドベクター(2μg)をSKN細胞(5 x 105)内にFuGene6 (Roche,Indianapolis, IN)を用いメーカーのプロトコールに従って導入した。同プラスミドベクターを細胞に導入した3日後に、G418(ネオマイシン)を培養液に加えて(最終濃度200μg/ml)、LMP2発現プラスミドベクターが導入されたSKN細胞のみを選択した。LMP2の強制発現されたSKN細胞の細胞増殖能、細胞形態能について検討を行った。結果を図８、図９および図２１に示す。図８、図９および図２１に示すように、SKN細胞の増殖能は、倍加時間15.2時間だったの対して、LMP2の強制発現されたSKN細胞の細胞増殖能は、倍加時間17.5時間となった。LMP2の発現により、SKN細胞の増殖速度が、倍加時間２時間遅くなった。また、細長い斜方形の細胞形態を持っているSKN細胞が、LMP2の強制発現により繊維芽細胞様(菱形)の細胞形態に変化したことが認められた。
２． SKN細胞におけるLMP2の強制発現によるファイブロネクチンの発現の変化
一般的に転移能を有する悪性度の高い癌細胞は、細胞と細胞との接着因子（ファイブロネクチン）の著しい発現低下が認められる。LMP2の発現が認められない子宮平滑筋肉腫細胞（SKN)に、遺伝子組換えによりLMP2を強制発現させ、ファイブロネクチンの発現変化について検討を行った。
LMP2の強制発現は実施例３と同様の方法で行った。ファイブロネクチンの発現は、抗ファイブロネクチン抗体（Rockland社）を用いた免疫染色法により検討した。また、コントロールとして、ヒト正常子宮平滑筋細胞：HuUSMCを用いた。
SKN細胞における結果を図１０に、ヒトHuUSMCにおける結果を図１１に示す。また、図１２には各細胞における形態の変化、細胞増殖速度、およびファイブロネクチンの発現状況のまとめを示す。
図に示すように、SKN細胞にLMP2を強制発現させた場合、SKN細胞の形態と増殖速度が、正常の子宮平滑筋細胞に近づいた。また、SKN細胞にLMP2を強制発現させた場合、有意なファイブロネクチンの発現誘導が認められた。つまり、LMP2の強制発現により誘導されたファイブロネクチンの発現は、SKN細胞の持つ転移能の減弱の可能性を示唆している。
実施例４ 各組織におけるLMP2の発現
LMP2の発現は、子宮平滑筋組織のみならず、本来骨格筋組織および心筋組織においても認められる。ところが、LMP2の欠損により、平滑筋肉腫が発症するのは子宮平滑筋組織のみである。そこで、骨格筋、心筋および平滑筋におけるLMP2発現を調べた。また、免疫機構に必須であるRag1遺伝子を欠損させたマウスの骨格筋、心筋および平滑筋におけるLMP2発現を調べた。
免疫組織化学は、生後１日目のマウス新生児のパラフィン包埋サンプルを用いて、前記の方法で行った。
図１３に免疫組織化学染色写真を示す。
実施例５ 子宮及び他の器官での平滑筋肉腫におけるLMP2の発現
ヒト子宮平滑筋肉腫の組織においてLMP2の発現の著しい消失が確認された。平滑筋肉腫は、子宮以外にも種々の臓器にいても発症するが、LMP2の発現の消失は子宮平滑筋肉腫に特異的に認められるものか検討した。
方法
病理ファイルより、子宮平滑筋肉腫(悪性度高い)４症例、子宮平滑筋肉腫(悪性度低い)４症例、子宮上皮平滑筋肉腫１症例、子宮内膜間質肉腫１症例、子宮平滑筋腫１症例、正常子宮平滑筋１症例、後腹膜原発平滑筋肉腫１症例、大網原発平滑筋肉腫１症例、小腸原発平滑筋肉腫１症例、腸管膜原発平滑筋肉腫１症例を選び、各疾患の組織におけるLMP2の発現を抗ヒトLMP2抗体を用いた免疫組織染色により検討した。
図１４に示されるように、正常な子宮平滑筋組織や子宮平滑筋腫(良性腫瘍)において認められた顕著なLMP2の発現が、子宮平滑筋肉腫(悪性腫瘍)では著しく減弱していることを再確認した。子宮内膜間質肉腫１症例ではLMP2の発現が認められなかったが、子宮上皮平滑筋肉腫1症例においてはLMP2の発現が有意に認められた。腹部・消化器系組織に発症した平滑筋肉腫においては、顕著なLMP2の発現が認められる場合もあるが、著しいLMP2の発現の減弱が認められる場合もある。これまでのGene Copy Number Profilingのゲノム解析より、子宮平滑筋肉腫の発症機序は、他の臓器における平滑筋肉腫の発症機序とは大きく異なっている可能性が示されている。実施例５の結果より、LMP2の発現の消失は子宮平滑筋肉腫に特異的に認められる現象と思われる。
実施例６ IFN-γシグナル伝達因子の変異と子宮平滑筋肉腫の関係
「子宮平滑筋肉腫において特異的に認められるLMP2発現の著しい減弱」について再検討し、その特異性を確立した。具体的には、ヒト正常子宮平滑筋組織21症例、子宮平滑筋腫24症例、子宮内膜間質肉腫6症例、子宮平滑筋肉腫29症例についてLMP2の発現を抗ヒトLMP2抗体を用いた免疫組織染色により検討した。図１８に示されるように、子宮平滑筋肉腫において特異的に認められるLMP2発現の著しい減弱性を確認した。
LMP2の発現は、図１５に示される様にIFN-γの刺激により顕著に誘導される。子宮平滑筋肉腫において特異的に認められるLMP2発現の著しい減弱は、IFN-γのシグナル伝達因子：JAK1、JAK2、STAT1、PKCd、PI3K、LMP2のpromoter領域の変異や欠損による不活性化に起因している可能性が考えられる。そこで、IFN-γのシグナル伝達因子：JAK1、JAK2、STAT1、LMP2のpromoter領域の変異について検討した。
方法
手術により摘出されたヒト子宮体部組織13症例から平滑筋肉腫組織部位のみと正常な平滑筋組織部位のみをレーザーマイクロダイセクションにより切り取り回収した。正常な子宮平滑筋組織13検体にヒト正常子宮平滑筋培養細胞１検体を加えた合計14検体、子宮平滑筋肉腫組織13検体にヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞１検体を加えた合計14検体を用いてJAK1、JAK2、STAT1、LMP2のpromoter領域の変異について検討した。各検体をHMW溶液(10mM Tris-HCl pH8.0、150mM NaCl、10mMEDTA-NaOH pH8.0、0.1% SDS)-proteinase K (100mg/ml)に加えて55℃で24時間保温し、フェノール/クロロホルムにより不純物を取り除きゲノムDNAを精製した。JAK1分子内のATP結合領域をコードする遺伝子領域(A)とチロシンリン酸化酵素活性化領域をコードする遺伝子領域(B)の塩基配列を決定するために、遺伝子領域(A)と遺伝子領域(B)の各領域に対するPCR-primerを用いてそれぞれの領域を含むDNA断片を各検体より得られたゲノムDNAを用いてPCRにより増幅させた。PCRにより増幅されたDNA断片をアガロースゲル電気泳動法により抽出し精製し、シークエンサー(ABI Prism3100 Genetic Analyzer)により塩基配列を決定した。さらに、JAK1の塩基配列を決定した方法と同様の手法を用いて、JAK2分子内のATP結合領域をコードする遺伝子領域(C)とチロシンリン酸化酵素活性化領域をコードする遺伝子領域(D)の塩基配列、STAT1分子内における転写因子活性化領域(701番目のチロシンと727番目のセリン)コードする遺伝子領域(E)の塩基配列、LMP2のpromoter領域をコードする遺伝子領域(F)の塩基配列を決定した。子宮平滑筋肉腫における特異的な変異を検出するために、同一子宮体部における子宮平滑筋肉腫組織部位と正常子宮平滑筋組織部位での塩基配列(AからE領域)を比較検討した。
IFN-γのシグナル伝達因子：JAK1、JAK2、STAT1、各因子におけるリン酸化酵素あるいは転写因子の活性化領域、LMP2のpromoter領域の変異解析の結果は、図１６(変異を各検体ごとにまとめた図)と図１７(変異を各因子ごとにまとめた図)に示している。
実施例７ ヒト子宮平滑筋肉腫細胞における、LMP-2の恒常的発現による細胞形態と細胞増殖への影響
ヒト子宮平滑筋肉腫の組織において顕著なLMP2の発現低下が認められるが、LMP2の発現低下が、子宮平滑筋肉腫の発症に関与しているのか検討した。
方法
SKN細胞を６穴プレートにおいて培養し、70％コンフルエントの際、HamF-12-15％Fcs培養液２mlを交換した。培養液を交換した次ぎの日、Roche社のプロトコールに従って、１穴に対して２μgのpCEM9ベクター(LMP2の遺伝子を含まない)またはpCEM-LMP2ベクター(LMP2の遺伝子を含んでいる)をFuGENE6(Roche社)によりSKN細胞に移入した。各ベクターの移入を行ったSKN細胞をCO2インキュベーター内において37℃で48時間培養した後、SKN細胞をトリプシン処理によって剥がして100mm培養シャーレでCO2インキュベーター内において37℃で48時間培養した。その後、G418(ネオマイシン)100μg/mlを含んだHamF-12-15％Fcs培養液で培養を行った。CO2インキュベーター内において37℃で２週間培養すると、pCEM9ベクターまたはpCEM-LMP2ベクターが移入されたSKN細胞のみがG418によって選択的に生き残り増殖しコロニーを形成しているのが確認された。G418(ネオマイシン)含有培養液にて選択培養の３週間後、100mm培養シャーレ内における各ベクターが移入されたSKN細胞により形成されたコロニー数を数え、かつSKN細胞の細胞形態を観察した。
図９および図２０に示される様に、pCEM-LMP2ベクターが移入されたSKN細胞の形態が、線維芽細胞様(Flatrevertant)に変化していることが確認された。全般的に、(A)SKN細胞のもともとの形態を維持している細胞のみで形成されているコロニー、(B)線維芽細胞様(Flatrevertant)に形態が変化している細胞が一部存在しているコロニー、(C)線維芽細胞様(Flatrevertant)に形態が変化している細胞のみで形成されているコロニーが確認された。(A)(B)(C)の各カテゴリーに属するコロニーの数は、図１９に示している。また、(A)(B)(C)の各カテゴリーに属する細胞の増殖速度をトリパンブルーにより染色法により検討を行ったところ、(A)カテゴリーでは、P.D.T.(Population doubling time = 倍加時間)15.2時間、(B)カテゴリーでは、P.D.T.=16.8時間、(C)カテゴリーでは、P.D.T.=17.8時間となった。ヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞SKN細胞において、恒常的なLMP2の発現は、細胞形態が線維芽細胞様(Flatrevertant)に変化させ、細胞速度が遅くなることが確認された(図９、図２０および図２１)。
通常、転移能を有する悪性度の高い癌細胞は、細胞と細胞との繋がりが粗になり１つの細胞のみでも増殖が可能となる。特に、細胞間のマトリックス構造を形成するファイブロネクチンの発現が、転移能を有する悪性度の高い癌細胞において著しく低下することが知られている。SKN細胞は、転移能を有する悪性度の高い平滑筋肉腫細胞であるため、ファイブロネクチンの発現が著しく低いと思われる。そこで、(A)(B)(C)の各カテゴリーに属するSKN細胞をLabtech Chamber Slide (IWAKI社)において培養し、顕微鏡下において80％コンフルエントの状況を確認した後、公知の方法に従って抗ヒト-ファイブロネクチン抗体(Rockland社)によりファイブロネクチンの発現状況を確認した。図１０と図１１で示されている様に、正常なヒト子宮平滑筋培養細胞:N.HuUSMCでは、ファイブロネクチンが顕著に発現しマトリックス構造を形成していることが確認されたが、ヒト子宮平滑筋肉腫培養細胞：SKN細胞では、ファイブロネクチンの発現は僅かでありマトリックス構造の形成が認められなかった。しかし、線維芽細胞様(Flatrevertant)のSKN細胞において、LMP2の恒常的な発現によりファイブロネクチンの発現が認められたが、ファイブロネクチンのマトリックス構造の形成は確認されなかった(図１０)。SKN細胞におけるLMP2の恒常的な発現による細胞形態、細胞増殖とファイブロネクチンの発現状況への影響に関する結果が、図２１に纏められている。
図２１に示されているように、SKN細胞が本来有する腫瘍形成能が、LMP2の発現により有意に低下すると予測される。そこで、Low Attachment Flat Chamber 24穴(Costor社)を用いて、線維芽細胞様(Flatrevertant)のSKN細胞(SKN-lmp2細胞)とSKN細胞(SKN-pCEM9細胞)における腫瘍形成能の指標となるコロニー形成能を検討した。Low Attachment Flat Chamber 24穴(Costor社)の１穴あたりSKN-lmp2細胞(#121)(１x104個)あるいはSKN-pCEM9細胞(１x104個)を培養して、コロニー形成を顕微鏡下で観察した。図２２で認められる様に、培養開始３週間目において、SKN-pCEM9細胞が大きなコロニーを形成して増殖しているのを確認出来たが、一方、SKN-lmp2細胞はコロニーを形成しているが、SKN-pCEM9細胞と比較すると明らかにコロニーは小さく増殖能が低いことが認められた。Low Attachment Flat Chamberを用いた実験では、SKN-lmp2細胞(コロニー#121)は、コロニー形成能が低いことから、腫瘍形成能が著しく低下していることが認められた。そこで、免疫が欠損しているヌードマウス(日本クレア社)を用いて、SKN-pCEM9細胞とSKN-lmp2細胞(コロニー#121)における腫瘍形成能の検討を行った。ヌードマウス(日本クレア社)メス(６週齢)５匹を購入し、SKN-pCEM9細胞(１x106個)をマウスの背中の右側に皮内接種し、SKN-lmp2細胞(#121)(１x105個)をマウスの背中の左側に皮内接種し計時的に腫瘍形成を観察した。皮内接種４週間後、SKN-pCEM9細胞(１x106個)はヌードマウスの皮内において増殖し顕著な腫瘍形成(腫瘍体積980mm3)が認められた。一方、SKN-lmp2細胞(コロニー#121)(１x105個)はヌードマウスの皮内において増殖せず、顕著な腫瘍形成(腫瘍体積90mm3)が認められなかった(図２３Aおよび２３B)。ヒト子宮平滑筋培養細胞SKN細胞において、LMP2の恒常的な発現は、腫瘍形成能を顕著に低下させることを認めた（図２３A〜２３C）。
実施例８ 子宮平滑筋肉腫における顕著なサイクリンEの発現
ヒト子宮平滑筋培養細胞SKN細胞において、LMP2の恒常的な発現は、(1)SKNの細胞形態を線維芽細胞様(Flatrevertant)に変化させる、(2)SKN細胞の増殖速度を有意に低下させる、(3)SKN細胞の有する腫瘍形成能を顕著に低下させる、以上３つの生物学的特長を認めた。そこで、SKN細胞において、LMP2の恒常的な発現によりどのような因子の発現に顕著な変化が認められるのか、SKN-pCEM9細胞とSKN-lmp2細胞間において遺伝子発現のプロファイリングを行った。
方法
SKN-pCEM9細胞とSKN-lmp2細胞とを100mmデイッシュ４枚ずつでCO2インキュベーター内において37℃で、80％コンフルエントの状況まで(シャーレ１枚あたり２x106個の細胞が増殖)培養した。各細胞をトリプシンによって剥がして回収し、１XPBSによって細胞を洗った。シャーレ１枚あたりTRIsol(インビトロジェン社)２mlの割合で、各細胞をTRIsolに溶かした(細胞が完全にTRIsolに溶けるように10分間穏やかに振揺させる)。TRIsol １mlあたりクロロホルム200μlの割合で、TRIsol溶液にクロロホルムを加えて10分間穏やかに振揺させる。10分間の振揺後、7000rpm、室温、20分間の条件で遠心を行い、水層と有機層に分離して中間層を採取しない様に水層を採取した。水層に含まれているトータルRNAを公知の方法を精製した。上記の手法により、SKN-pCEM9細胞よりトータルRNA 152.3μg、SKN-lmp2細胞よりトータルRNA 128.8μg得られた。各トータルRNA 100μgを調整して、遺伝子発現のプロファイリングを行った。
マイクロアレイ遺伝子発現のプロファイリングの結果の一部を図２４に示す。SKN-pCEM9細胞において顕著な発現が認められたサイクリンEが、SKN-lmp2細胞においては殆ど発現が認められない。つまり、SKN細胞では、LMP2を恒常的に発現により細胞増殖を誘導するサイクリンEの発現が著しく低下された。
トランスフェクトおよびレポーターアッセイ
サイクリンEのプロモター領域の活性化によりルシフェラーゼ遺伝子が発現誘導されるレーポータープラスミド(p10-4-Luc) (Department of Cancer Biology, Mayo Clinic Comprehensive Cancer CenterのE A.Thompson博士から提供を受けた)の構造を図２５に示す。p10-4-LucレーポータープラスミドとLMP2発現プラスミドpCEM9-Lmp2とを図に示した内容にしたがって、トータル２μgのプラスミドをメーカーの推奨に従って、FuGENE 6 Transfection Reagent(Roche)によりSKN細胞、SKN-lmp2細胞(クローン#121と#122)中に移入した。すべての移入されたDNAには200ngのpCMVβ-Gal(Tropix社)を内部トランスフェクト効率コントロールとして含んでいた。トランスフェクト後、各細胞をCO2インキュベーター内において37℃で48時間培養した。最終的に、細胞を洗浄し、500μlの溶解バッファーで溶解し、Dual-Luciferase Reporter Assay System(Promega社)を用いてメーカーの指示に従って分析した。
上記材料および方法を用いた検討により以下の結果が得られた。
ヒト子宮平滑筋肉腫培養SKN細胞において、LMP2の恒常的発現によりサイクリンEのプロモーター活性が顕著に低下された。
マイクロアレイ遺伝子発現のプロファイリングの結果の一部を図２４に示す。SKN-pCEM9細胞において顕著な発現が認められたサイクリンEが、SKN-lmp2細胞においては殆ど発現が認められない。つまり、SKN細胞では、LMP2を恒常的に発現により細胞増殖を誘導するサイクリンEの発現が著しく低下された。次いで、SKN細胞において、LMP2の恒常的発現がサイクリンEのプロモーター活性を有意に抑えることを確認する必要がある。サイクリンEのプロモーター活性に対するLMP2の恒常的発現の効果は、３種のSKN細胞株(SKN-pCEM9, SKN-lmp2#121, SKN-lmp2#122)を用いたレポーターアッセイにより検討された。SKN細胞において、LMP2の発現の無い環境では、顕著に活性化されたサイクリンEのプロモーターが認められた(図２６)。しかし、LMP2が発現している環境では、サイクリンEのプロモーターの著しい活性化が認められなかった(図２６)。また、SKN-pCEM9細胞においては、サイクリンEのプロモーターの著しい活性化が認められたが、SKN-lmp2細胞においては、サイクリンEのプロモーターの著しい活性化が認められなかった(図２６)。ヒト子宮平滑筋肉腫培養SKN細胞において、LMP2の恒常的発現によりサイクリンEのプロモーター活性が顕著に低下されることが確認された。
図２６は、SKN細胞とLMP2を恒常的に発現しているSKN細胞(クローン#121と＃122)での、サイクリンEプロモーター活性を示す図である。子宮平滑筋肉腫培養細胞SKN細胞で認められた顕著なサイクリンEの発現は、LMP2の恒常的な発現により著しく低下した。つまり、SKN細胞では、LMP2の発現誘導が起こらないため、細胞増殖誘導因子であるサイクリンEの発現抑制が認められないと思われる。サイクリンEの遺伝子を欠損させた細胞は、通常に細胞増殖するが、外部からの刺激等による形質転換には耐性であることが明らかである。したがって、顕著なLMP2の発現誘導が起こらないためサイクリンEの発現制御が起こらないことが、ヒト子宮平滑筋肉腫の発症に関与していると考えられる。そこで、ヒト子宮平滑筋肉腫の組織でのサイクリンEの発現状況を、抗ヒトサイクリンE抗体を用いた免疫組織染色法によって検討した。図２７で示されている様に、同一切片内にて、正常なヒト子宮平滑筋組織部位では認められないサイクリンEの発現が、ヒト子宮平滑筋肉腫組織部位に鮮明に認められた。ヒト子宮平滑筋肉腫14症例において検討した結果、正常な子宮平滑筋層においては、サイクリンEの発現は認められないが、悪性腫瘍であるヒト子宮平滑筋肉腫組織では、サイクリンEの顕著な発現が認められることが明かとなった。
図２８は、ヒト子宮平滑筋肉腫組織における分裂期の核内でのサイクリンEの発現を示す組織染色写真である。通常、細胞増殖を誘導するサイクリンEは、細胞増殖の開始期であるG1期に細胞質において過剰に発現し、速やかに核内へと移行しS期において染色体の合成を開始させる。その後、サイクリンEは、S期の後半から即座に分解される。したがって、正常な細胞のG2期とM期においては、サイクリンEの発現は認められない。しかし、ヒト子宮平滑筋肉腫組織において、分裂期の核内での顕著なサイクリンEの発現が認められる。つまり、サイクリンEの発現は、ヒト子宮平滑筋肉腫の鑑別マーカーとして有用である。
子宮平滑筋におけるLMP2および／またはサイクリンEの転写または発現を調べることにより、子宮平滑筋組織に子宮平滑筋肉腫が存在するかどうかを検出することができ、LMP2の転写または発現が著しく低い場合および／またはサイクリンEの転写または発現が高い場合に平滑筋肉腫が存在すると判定することができる。従来は、細胞の形態、密度、増殖速度等を指標に子宮平滑筋肉腫を検出していたが、本発明の方法によれば、容易にかつ確実に子宮平滑筋肉腫を検出することができる。さらに、本発明の方法によれば、子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるか子宮平滑筋肉腫であるか鑑別することができ、さらに、子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定することができる。
また、本発明のLMP2および／またはサイクリンEをマーカーとして用いる方法と、従来から用いられていた細胞の形態、密度等を指標にする方法および／またはミオシンをマーカーとして用いる方法を組合せることにより、確実に子宮平滑筋肉腫を検出することができる。
さらに、IFN-γシグナル伝達因子であるJAK1キナーゼ遺伝子、STAT1遺伝子およびLMP2プロモーターの変異と子宮平滑筋肉腫の発症が密接に関連しており、上記遺伝子またはプロモーターの変異を検出することにより、子宮平滑筋肉腫に罹患しているか否か、および子宮平滑筋肉腫に罹患するリスクがあるか否かを判定することができる。
本明細書で引用した全ての刊行物、特許および特許出願をそのまま参考として本明細書にとり入れるものとする。

Claims (34)

  1. ＬＭＰ２をマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法。
  2. 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する方法。
  3. 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
  4. 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２の転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少ない場合に悪性子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
  5. 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用いｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションを行いＬＭＰ２の転写を測定する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
  6. 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２のｍＲＮＡを抽出しＲＴ−ＰＣＲまたはノーザンブロットを行いＬＭＰ２の転写を測定する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
  7. 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用い免疫組織化学染色または免疫細胞化学染色を行いＬＭＰ２の発現を測定する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
  8. 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２タンパク質を抽出しイムノアッセイを行いＬＭＰ２の発現を測定する、請求項１〜４のいずれか１項に記載の方法。
  9. さらに、ミオシンをマーカーとして用い、ＬＭＰ２およびミオシンの転写または発現を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつミオシンの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する請求項１記載の方法。
  10. ＬＭＰ２およびサイクリンＥをマーカーとして用い、子宮平滑筋肉腫を検出する方法。
  11. 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の存在を検出する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンＥの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫が存在すると判定する方法。
  12. 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋の腫瘍が子宮平滑筋腫であるかまたは子宮平滑筋肉腫であるかを鑑別する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンＥの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
  13. 子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現の程度を指標に子宮平滑筋肉腫の悪性度を判定する方法であって、子宮平滑筋組織におけるＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写または発現を測定し、ＬＭＰ２の転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して少なく、かつサイクリンＥの転写または発現が正常子宮平滑筋組織に比較して多い場合に悪性子宮平滑筋肉腫であると判定する方法。
  14. 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用いｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーションを行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写を測定する、請求項１０〜１３のいずれか１項に記載の方法。
  15. 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２およびサイクリンＥのｍＲＮＡを抽出しＲＴ−ＰＣＲまたはノーザンブロットを行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの転写を測定する、請求項１０〜１３のいずれか１項に記載の方法。
  16. 採取した子宮平滑筋組織または細胞を用い免疫組織化学染色または免疫細胞化学染色を行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの発現を測定する、請求項１０〜１３のいずれか１項に記載の方法。
  17. 採取した子宮平滑筋組織または細胞からＬＭＰ２およびサイクリンＥタンパク質を抽出しイムノアッセイを行いＬＭＰ２およびサイクリンＥの発現を測定する、請求項１０〜１３のいずれか１項に記載の方法。
  18. 少なくともＬＭＰ２遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含む、ＬＭＰ２をマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
  19. 少なくともＬＭＰ２遺伝子断片およびサイクリンＥ遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含む、ＬＭＰ２およびサイクリンＥをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
  20. ｉｎ ｓｉｔｕハイブリダイゼーション用試薬である請求項１８または１９に記載の子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
  21. さらに、ミオシン遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含み、ＬＭＰ２およびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための請求項１８または２０に記載の検出試薬。
  22. さらに、ミオシン遺伝子断片をプローブまたはプライマーとして含み、ＬＭＰ２、サイクリンＥおよびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための請求項１９または２０に記載の検出試薬。
  23. 少なくとも抗ＬＭＰ２抗体を含む、ＬＭＰ２をマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
  24. 少なくとも抗ＬＭＰ２抗体および抗サイクリンＥ抗体を含む、ＬＭＰ２およびサイクリンＥをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
  25. 免疫組織化学または免疫細胞染色用試薬である請求項２３または２４に記載の子宮平滑筋肉腫を検出するための検出試薬。
  26. さらに、抗ミオシン抗体を含み、ＬＭＰ２およびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための請求項２３または２５に記載の検出試薬。
  27. さらに、抗ミオシン抗体を含み、ＬＭＰ２、サイクリンＥおよびミオシンをマーカーとして用い子宮平滑筋肉腫を検出するための請求項２４または２５に記載の検出試薬。
  28. ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の以下の（Ａ１）〜（Ａ６）の変異部位の少なくとも１つを含むＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の部分配列、およびＬＭＰ２プロモーターの以下の（Ｂ１）〜（Ｂ５）の変異部位の少なくとも１つを含むＬＭＰ２プロモーターの部分配列からなる群から選択される部分配列からなるオリゴヌクレオチドまたはその標識物であって、１０から３０塩基からなる部分配列またはその部分配列に相補的な配列からなるオリゴヌクレオチドまたはその標識物：
    （Ａ１） Ａ２６１２Ａ
    （Ａ２） Ｇ２６２６Ａ
    （Ａ３） Ｇ２６４２Ｔ
    （Ａ４） Ａ２９６７Ｃ
    （Ａ５） Ａ２９６０Ｃ
    （Ａ６） Ａ２９８５Ｔ
    （Ｂ１） Ａ２１０Ｇ
    （Ｂ２） Ｃ２１４Ｔ
    （Ｂ３） Ａ２１６Ｇ
    （Ｂ４） Ａ２１７Ｇ
    （Ｂ５） Ｇ２１９Ａ。
  29. プローブとして用いられる請求項２８に記載のオリゴヌクレオチドまたはその標識物。
  30. 請求項２８記載のオリゴヌクレオチドまたはその標識物を固定化した固定化基板。
  31. ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の以下の（Ａ１）〜（Ａ６）の変異部位の少なくとも１つ、およびＬＭＰ２プロモーターの以下の（Ｂ１）〜（Ｂ５）の変異部位の少なくとも１つからなる群から選択される変異部位を含むＤＮＡ断片の増幅に用いる少なくとも一対のプライマーセットであって、上記変異部位の３’側および５’側に存在する１０から３０塩基からなる部分配列からなる、ＤＮＡ断片の増幅に用い得る一対のプライマーセット：
    （Ａ１） Ａ２６１２Ａ
    （Ａ２） Ｇ２６２６Ａ
    （Ａ３） Ｇ２６４２Ｔ
    （Ａ４） Ａ２９６７Ｃ
    （Ａ５） Ａ２９６０Ｃ
    （Ａ６） Ａ２９８５Ｔ
    （Ｂ１） Ａ２１０Ｇ
    （Ｂ２） Ｃ２１４Ｔ
    （Ｂ３） Ａ２１６Ｇ
    （Ｂ４） Ａ２１７Ｇ
    （Ｂ５） Ｇ２１９Ａ。
  32. 請求項３１記載のプライマーセット、請求項２８もしくは２９に記載のオリゴヌクレオチドもしくはその標識物、または請求項３０記載の固定化基板を含む子宮平滑筋肉腫検出キット
  33. 動物から採取した子宮平滑筋組織または細胞におけるＪＡＫ１キナーゼ遺伝子の以下の（Ａ１）〜（Ａ６）の変異部位の少なくとも１つ、およびＬＭＰ２プロモーターの以下の（Ｂ１）〜（Ｂ５）の変異部位の少なくとも１つからなる群から選択される変異部位の検出を行い、その結果に基づいて、上記変異が存在する場合に、前記動物が子宮平滑筋肉腫に罹患しているか、または罹患するリスクが高いと判断する、子宮平滑筋肉腫の検出方法：
    （Ａ１） Ａ２６１２Ａ
    （Ａ２） Ｇ２６２６Ａ
    （Ａ３） Ｇ２６４２Ｔ
    （Ａ４） Ａ２９６７Ｃ
    （Ａ５） Ａ２９６０Ｃ
    （Ａ６） Ａ２９８５Ｔ
    （Ｂ１） Ａ２１０Ｇ
    （Ｂ２） Ｃ２１４Ｔ
    （Ｂ３） Ａ２１６Ｇ
    （Ｂ４） Ａ２１７Ｇ
    （Ｂ５） Ｇ２１９Ａ。
  34. ＪＡＫ１キナーゼ遺伝子、またはＭＰ２プライマーの変異の検出を請求項３１記載のプライマーセット、請求項２８もしくは２９に記載のプローブまたは請求項３０記載の固定化基板を用いて行う請求項３３記載の方法。
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