JPWO2006109485A1 - 質量分析法 - Google Patents

Abstract

本発明の目的は、微量試料においてもＭＳｎ（ｎ＞１）解析を可能にするとともに、ＭＳｎ（ｎ＞１）解析によって分子中の標識化合物の結合位置を同定することによって簡便、迅速に構造情報を得る方法を提供することである。本発明においては、分子を安定に分子上の特定の部分に標識することによって、容易にイオンを生成、安定化させ、ＭＳの感度を向上させる。このようにして生じたプリカーサーイオンは、ＭＳｎ（ｎ＞１）解析に十分量であり、再現性よく構造特異的なイオンを生成させる。高感度で、簡便、迅速に構造情報を得ることができる。

Description

本発明は、分子の質量分析法、該方法によって得られるスペクトル、該スペクトルから得られる情報、および該情報を集積したデータ集積体に関する。

「質量分析法」とは、分子を含む試料をイオン化し、イオン化した分子を質量／電荷（ｍ／ｚ）に従って分離し検出することによって構造情報を得る方法である。

糖、糖鎖、タンパク質（ペプチドを含む）、糖などによる修飾を含むタンパク質（糖などによる修飾を含むペプチドを含む）、核酸、糖脂質などの分子は、分子量および組成が同一の構造異性体が存在するので、質量分析装置による分子量を知るための分子イオンの検出のみでは詳細な構造情報が得られない。

そこで、ＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う。「ＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析」とは、生体分子をイオン化したのち、プリカーサーイオンを選択して、post source decay(PSD), in source decay(ISD) およびタンデムマスなどによって生じたプロダクトイオンを検出すること、あるいは、生じたプロダクトイオンの中からプリカーサーイオンを選択して、同様の測定を繰り返すことによって、分子の構造情報を得る分析法である。

ＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行うためには、プリカーサーイオンとなる親イオン（［Ｍ＋Ｎａ］^＋、［Ｍ＋Ｈ］^＋、［Ｍ−Ｈ］⁻など）が十分に生成する必要がある。しかしながら、前述のような生体試料由来の分子はそのままではイオン化されにくく、十分な量の親イオンを得ることが難しい。たとえば、糖鎖をそのままマトリクス支援レーザー脱離イオン化−飛行時間型質量分析法（ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ）で解析しようとすると１０ｐｍｏｌ以上を要する。この問題に対して、１−ピレンブタン酸ヒドラジド（1-pyrenebutanoic acid, hydrazide; ＰＢＨ）を用いて糖鎖を標識する方法が提案されている（たとえば、非特許文献１参照）。しかしながら、該方法で標識された糖鎖のＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳによる解析では、非標識糖に比較して検出限界の低下（すなわちＭＳの感度の改善）が認められたものの、生体試料をＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析に適用するのに必要とされるサブｐｍｏｌレベルにおける親イオンの生成は、未だ不十分であるのが現状である。

Sugahara, D. et al., Anal. Sci., 19, 167-169 (2003) Harvey, D.J., J. Mass Spectrom., 40, 642-653 (2005) Harvey, D.J., J. Am. Soc. Mass. Spectrom., 16, 647-659 (2005)

本発明の目的は、分子を標識することによって、イオン化の促進および生成イオンの安定化によって、より微量な試料レベルにおいても十分な量の親イオンを生成させ、同時にＭＳの感度を向上させて、微量試料においてもＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を可能にすることである。本発明のさらなる目的は、前述の方法によるＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析によって、分子中の標識化合物の結合位置を同定し、分析試料の構造情報をより簡便かつ迅速に得る方法を提供することである。

本発明者は、分子を安定に分子上の特定の部分に標識することによって、イオン化効率の向上および生成したイオンの安定化を実現して、ＭＳの感度を向上させることを見いだした。このようにして生じたプリカーサーイオンは、ＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析に十分量であり、再現性よく構造特異的なイオンを生成させることも見いだし、高感度で、簡便、迅速に構造情報を得る方法を完成させた。

すなわち、
１． 縮合多環炭化水素を有する標識化合物を分子と結合させて標識された分子を形成する工程と、該標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程とを備えたことを特徴とする分子の質量分析法；
２． 標識化合物がピレン誘導体化合物であることを特徴とする１．に記載の質量分析法；
３． 糖鎖である分子の質量分析法であって、（１）該分子の還元末端をヒドラジド基またはアミノ基を有するピレン誘導体化合物で標識して、標識化中間体を得る工程と、（２）標識化中間体を還元して、還元標識された分子を得る工程と、（３）該還元標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程とを備えたことを特徴とする分子の質量分析法；
４． 糖鎖または糖タンパク質である分子の質量分析法であって、（１）該分子中の糖鎖部分のみを酸化して、酸化生成物を得る工程と、（２）酸化生成物をヒドラジド基またはアミノ基を有するピレン誘導体化合物で標識して、標識化中間体を得る工程と、（３）標識化中間体を還元して、還元標識された分子を得る工程と、（４）該還元標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程とを備えたことを特徴とする分子の質量分析法；
５． タンパク質または糖タンパク質である分子の質量分析法であって、（１）該分子内のカルボキシ基またはアミノ基を利用して、該分子をピレン誘導体化合物で標識し、標識された分子を得る工程と、（２）該標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程とを備えたことを特徴とする分子の質量分析法
６． １．から５．のいずれかに記載の質量分析法によって得られるスペクトル；
７． ６．に記載のスペクトルから得られる情報；および
８． ７．に記載の情報を集積したデータ集積体
である。

本発明によると、分子に縮合多環炭化水素を有する化合物を結合させることによってイオン化効率を向上させ、同時にＭＳの感度を向上させることによって、分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を容易にし、信頼性の高い構造情報を得ることができる。また、本発明によると、糖鎖の構造情報と同時に、糖鎖のペプチド上の結合位置が明確になり、糖タンパク質の機能解明や病態の解明に有用な情報を得る方法を提供できる。

図１Ａは実施例２において還元標識されたＬＮＦ−Ｉから得られたpositive-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳスペクトルを示す図である。 図１Ｂは実施例２において還元標識されたＬＮＦ−ＩＩから得られたpositive-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳスペクトルを示す図である。 図２Ａは実施例２において還元標識されたＬＮＦ−Ｉの親イオン［Ｍ＋Ｎａ］^＋から得られたＰＳＤ−ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図２Ｂは実施例２において還元標識されたＬＮＦ−ＩＩの親イオン［Ｍ＋Ｎａ］^＋から得られたＰＳＤ−ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図３Ａは実施例３において還元標識されたＬＮＦ−Ｉの親イオン［Ｍ＋Ｈ］^＋から得られたＥＳＩ−ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図３Ｂは実施例３において還元標識されたＬＮＦ−ＩＩの親イオン［Ｍ＋Ｈ］^＋から得られたＥＳＩ−ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図４は実施例４にて得られた、化合物（３）のフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図５は実施例４にて得られた、化合物（４）のフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図６は実施例４にて得られた、化合物（５）のフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図７は実施例５にて得られた、化合物（６）のフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図８は実施例５にて得られた、化合物（６）のnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳ分析により得られたｍ／ｚ＝１１３８のプリカーサーイオンのフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ^３スペクトルを示す図である。 図９は実施例６にて得られた、非還元末端を還元標識された化合物（１）のフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。 図１０は実施例６にて得られた、非還元末端を還元標識された化合物（２）のフラグメント位置およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳスペクトルを示す図である。

本発明では、試料中の分子を縮合多環炭化水素を有する化合物で標識し、その後に標識した分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う。これらの工程について詳述する。

（１）分子の標識
「分子」とは、糖、糖鎖、タンパク質、核酸、複合糖質（糖タンパク質、糖脂質など）などであって、天然から調製する他、化学的または酵素学的に調製するものを含む。なお、本発明における用語「タンパク質」はペプチドを含み、本発明における用語「糖タンパク質」は糖ペプチドを含む。また、生体に含まれる分子の部分構造を有するものや生体に含まれる分子を模倣して作製されたものを含む。

糖、糖鎖、または複合糖質から化学的あるいは酵素学的に遊離して得た糖鎖（以下糖鎖とする）は、還元末端にある糖のアルデヒド基と、アミノ基あるいはヒドラジド基（−ＣＯＮＨＮＨ_２）などを有する縮合多環炭化水素誘導体である標識化合物とを縮合反応させて標識化中間体を形成し、次いで該標識化中間体を還元することによって還元標識された分子を与える。縮合反応は、通常、メタノールまたはＤＭＳＯなどの有機溶媒中で、触媒としての酢酸などの存在下または非存在下において、糖鎖と標識化合物とを加温して行う。その後、ＮａＣＮＢＨ_３、ＮａＢＨ_４などの還元剤を加えて、加温または室温で還元反応を行う。あるいはまた、縮合反応溶液中に始めから還元剤を共存させる場合もある。還元末端の糖のアルデヒド基とＰＢＨとを縮合させることにより標識する従来法では、［Ｍ＋Ｎａ］^＋あるいは［Ｍ−Ｈ］⁻などの親イオンの安定性が低く感度が劣っていたが、本発明により、還元反応をさらに行うことで親イオンが多く生成し十分な感度を得ることが見いだされた。

また、糖、糖鎖または複合糖質の中でもシアル酸を含むものについては、アミノ基、ヒドラジド基、ジアゾメチル基などを有する縮合多環炭化水素誘導体を標識化合物として用いて、シアル酸のカルボキシ基と、標識化合物のアミノ基、ヒドラジド基、ジアゾメチル基などとを反応させることによって標識できる。この反応は、例えば、水溶性カルボジイミドおよびＮ−ヒドロキシスルホスクシンイミド存在下で行う。

さらに、シアル酸を含む糖、糖鎖、または複合糖質は、シアル酸のＣ_７−９位のみを選択的に過ヨウ素酸酸化してアルデヒド基を生じさせることができる。シアル酸のＣ_７−９位の選択的酸化は、５ｍＭのＮａＩＯ_４水溶液中で０℃、１０〜２０分間にわたり反応させることによって実施することができる。アミノ基あるいはヒドラジド基などを有する縮合多環炭化水素誘導体である標識化合物を用いて、上記の選択的酸化により生じたアルデヒド基と、標識化合物のアミノ基あるいはヒドラジド基を前述のように縮合反応させて標識化中間体を形成し、次いで該標識化中間体を還元することによって還元標識された分子を得ることができる。

あるいは、多くの糖、糖鎖、または複合糖質は、非還元末端にガラクトースを含む。その非還元末端のガラクトースを特異的にガラクトースオキシダーゼによってＣ_６位を酸化しアルデヒド基を生じさせることができる。酵素反応は、たとえば、中性の緩衝液中で、室温、２時間で行うことができる。アミノ基あるいはヒドラジド基などを有する縮合多環炭化水素誘導体である標識化合物を用いて、上記の酵素的酸化により生じたアルデヒド基と、標識化合物のアミノ基あるいはヒドラジド基を前述のように縮合反応させて標識化中間体を形成し、次いで該標識化中間体を還元することによって還元標識された分子を得ることができる。

シアル酸やガラクトースに標識を行うこれらの方法を、糖タンパク質（糖ペプチドを含む）分子上のシアル酸やガラクトースに適用することが可能である。その場合、糖タンパク質分子を標識できるので、該分子のイオン化効率が高くなり、ＭＳが高感度になる。また、本発明は糖鎖を遊離することなく、分子上の糖鎖を標識することができるので、糖鎖を含むタンパク質のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析により、タンパク質のペプチド鎖上の糖鎖結合位置が特定できる。さらに、標識された糖鎖部分のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析により、糖鎖構造情報を得ることができる。糖タンパク質の機能を解明する上で、糖鎖がペプチド鎖上のどこの位置に、どのような構造を有して、付加しているのかを明らかにすることは極めて重要である。さらに、多くの場合、複数の異なる構造の糖鎖がペプチド鎖の複数の結合位置に結合しているので、糖鎖の位置と構造の対応を明確にする必要がある。本発明によってこれらの情報を得ることが可能になる。

タンパク質（ペプチドを含む）および糖タンパク質（糖ペプチドを含む）は、その中に含まれるカルボキシ基、アミノ基、またはＳＨ基を用いて標識することができる。カルボキシ基を用いて標識する場合には、アミノ基、ヒドラジド基、ジアゾメチル基などを有する縮合多環炭化水素誘導体を標識化合物として用い、それらの基と、タンパク質または糖タンパク質中のカルボキシ基とを反応させることによって標識された分子を得ることができる。一方、アミノ基を用いて標識する場合には、スクシニミジルエステル基、塩化スルホニル基などを有する縮合多環炭化水素誘導体を標識化合物として用い、それらの基と、タンパク質または糖タンパク質中のアミノ基とを反応させることによって標識された分子を得ることができる。さらに、タンパク質または糖タンパク質に含まれるシステイン残基のＳＨ基を用いて標識する場合には、ヨード基（−Ｉ）などを有する縮合多環炭化水素誘導体を標識化合物として用い、それらの基と、タンパク質または糖タンパク質中のＳＨ基とを反応させることによって標識された分子を得ることができる。

（２）標識化合物
標識化合物は、縮合多環炭化水素誘導体である。「縮合多環炭化水素誘導体」とは、ナフタレン、アントラセン、ピレンなどの縮合多環炭化水素部分と、分析対象の分子と結合することが可能である反応性官能基と、必要に応じて該ピレン環と該反応性官能基とを連結するスぺーサー部分とを有する化合物をいう。

本発明で用いる標識化合物は、好ましくはピレン誘導体化合物である。「ピレン誘導体化合物」とは、ピレン環と、分析対象の分子に結合することが可能である反応性官能基と、必要に応じて該ピレン環と該反応性官能基とを連結するスペーサ部分とを有する化合物をいう。具体的には、１−ピレンブタン酸ヒドラジド（1-pyrenebutanoic acid, hydrazide; ＰＢＨ）、１−ピレン酢酸ヒドラジド（1-pyreneacetic acid, hydrazide）、１−ピレンプロピオン酸ヒドラジド（1-pyrenepropionic acid, hydrazide）、１−ピレン酢酸スクシニミジルエステル（1-pyreneacetic acid, succinimidyl ester）、１−ピレンプロピオン酸スクシニミジルエステル（1-pyrenepropionic acid, succinimidyl ester）、１−ピレンブタン酸スクシニミジルエステル（1-pyrenebutanoic acid, succinimidyl ester）、Ｎ−（１−ピレンブタノイル）システイン酸スクシニミジルエステル（N-(1-pyrenebutanoyl)cysteic acid, succinimidyl ester）、Ｎ−（１−ピレン）ヨードアセトアミド（N-(1-pyrene) iodoacetamide）、Ｎ−（１−ピレン）ヨードマレイミド（N-(1-pyrene) maleimide）、Ｎ−（１−ピレンメチル）ヨードアセトアミド（N-(1-pyrenemethyl) iodoacetamide）、１−ピレンメチルヨードアセテート（1-pyrenemethyl iodoacetate）、アミノピレン（aminopyrene）、１−ピレンメチルアミン（1-pyrenemethyl amine）、１−ピレンプロピルアミン（3-(1-pyrenyl)propylamine)、１−ピレンブチルアミン（4-(1-pyrenyl)butylamine)、１−ピレンスルホン酸クロリド（1-pyrenesulfonyl chloride）などが挙げられる。好ましくは、ＰＢＨである。

（３）質量分析法
「質量分析法」とは、マトリクス支援レーザー脱離イオン化（ＭＡＬＤＩ）法、レーザー脱離（ＬＤ）法、高速電子衝撃（ＦＡＢ）法、エレクトロスプレーイオン化（ＥＳＩ）法、大気圧化学（ＡＰＣＩ）法などのイオン化方法によって分子を含む試料をイオン化し、次いで、飛行時間法（タイムオブフライト法、ＴＯＦ法）、二重収束法、四重極集束法などを用いて、イオン化した分子を質量／電荷比（ｍ／ｚ）に従って分離し検出する方法である。

ＭＡＬＤＩ法においては、縮合多環炭化水素が分子に結合していることで、イオン化効率があがるが、還元標識によって、さらに分子イオンが安定になる。

また、ＥＳＩ法においては、試料溶液が容易に気化される必要がある。糖、糖鎖、タンパク質、糖タンパク質などの物質は、親水性が高く、有機溶媒を含有する溶液に溶かすことは困難であるが、縮合多環炭化水素誘導体を標識することによって、標識された物質が有機溶媒に可溶性となり、それらに対してＥＳＩ法を適用できるようになる。

本発明においてイオン化法は限定されないが、好ましくは、ＥＳＩ法、またはＭＡＬＤＩ法であり、より好ましくは、ＭＡＬＤＩ法である。

糖、糖鎖、タンパク質、糖など修飾を含むタンパク質、核酸、糖脂質などの分子は、分子量および組成が同一の構造異性体が存在するので、縮合多環炭化水素誘導体による標識化後、プリカーサーイオンの生成を高めて、ＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行い、異性体に特異的なイオンを生成して構造情報を得ることができる。糖ペプチドや糖タンパク質の糖鎖部分に標識した分子をＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析する場合、標識を含むプロダクトイオンを選択することによって、分子中の糖鎖結合位置を決定することができる。

以上に記載された本発明の質量分析法によって得られるスペクトルは、糖、糖鎖、タンパク質、糖など修飾を含むタンパク質、核酸、糖脂質などの分子の構造を特定する上で油溶である。また、該スペクトルから得られる糖鎖部分の構造情報および該糖鎖部分の分子内結合位置のような情報は、当該分子の機能解明あるいは当該分子が関与する病態の解明に有用な情報を得る方法を提供する。したがって、本発明の質量分析法によって得られるスペクトルから得られる情報を集積したデータ集積体は、集積された情報の照会を行うコンピュータシステムおよび本発明の質量分析法と組み合わせることによって、広範な構造未知の分子の構造の特定、機能の解明および当該分子が関与する病態の解明に有用な情報を提供することができる。

（実施例１） 糖鎖の標識
それぞれ血液型抗原ＨまたはＬｅ^ａを有し、互いに分子量および組成式が同一で構造異性体の関係にある糖鎖であるラクト−Ｎ−フコペンタオースＩ（lacto-N-fucopentaose I、ＬＮＦ−Ｉ、式（１）の化合物）およびラクト−Ｎ−フコペンタオースＩＩ（lacto-N-fucopentaose II、ＬＮＦ−ＩＩ、式（２）の化合物）をピレン誘導体化合物（ＰＢＨ）で標識し、次いで還元して還元標識糖を得た。

（式中、Ｇａｌ、Ｇｌｃ、ＦｕｃおよびＧｌｃＮＡｃは、それぞれはガラクトース、グルコース、フコースおよびＮ−アセチルグルコサミンを示す。）

具体的には、糖１ｎｍｏｌをねじふた付きガラス反応管に加え乾固させた。５００ｎｍｏｌのＰＢＨをメタノール２０μＬに溶解して反応管に加え、さらにメタノールで希釈した酢酸（酢酸：メタノール＝１：８，ｖ／ｖ）２μＬを加えてふたを完全に閉めた。よく撹拌後、８０℃で２０分間加熱し、１ＭのＮａＯＨ水溶液加えて中和した。１．７ＭのＮａＢＨ_４溶液３０μＬを加えて４０℃で３０分間反応させ、さらに１．７ＭのＮａＢＨ_４溶液１０μＬを加えて４０℃で３０分間反応させた。純水４００μＬおよびクロロホルム４００μＬを加えてよく振った後静置した。下層のクロロホルムを捨て、新しいクロロホルム４００μＬを加えてもう一度抽出した。上層を取り乾固させた。Ｓｅｐ−ｐａｋ Ｃ_１８カートリッジをメタノール、続いて純水で洗浄し、乾固した反応物を純水に溶解してカートリッジに通した。純水でカートリッジを洗浄し、次に、アセトニトリル−純水（アセトニトリル：水＝６：４，ｖ／ｖ）で溶出することによって、ＰＢＨで標識され還元されたＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩ（以後、それぞれ、還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩと称する）を得た。得られた還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩは、遮光して−３０℃において保存した。

（実施例２）
実施例１で得られた還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩのそれぞれを純水に溶解し、それら還元標識糖１ｐｍｏｌをＭＡＬＤＩターゲットプレートに塗布した。２，５−ジヒドロキシ安息香酸（ＤＨＢＡ）を４０％アセトニトリル−純水に溶解させたマトリクス溶液を、ターゲットプレート上の標識糖溶液と混合し、そして乾固した。ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ装置（Ａｘｉｍａ−ＣＦＲ ｐｌｕｓ(Shimadzu/Kratos)）を用いてＭＳ分析を行った。図１Ａに還元標識ＬＮＦ−Ｉから得られたスペクトルを示し、図１Ｂに還元標識ＬＮＦ−ＩＩから得られたスペクトルを示す。図１Ａおよび図１Ｂから分かるように、いずれの還元標識糖からもｍ／ｚ＝１１６２．５である［Ｍ＋Ｎａ］^＋が十分量検出された。

次いで、上記で得られた親イオンをプリカーサーイオンとしてＰＳＤ−ＭＳ／ＭＳ（すなわちＭＳ^２）分析を行った。図２Ａに還元標識ＬＮＦ−Ｉ親イオンから得られたスペクトルを示し、図２Ｂに還元標識ＬＮＦ−ＩＩ親イオンから得られたスペクトルを示す。図２Ａおよび図２Ｂから分かるように、還元標識ＬＮＦ−ＩＩからのみｍ／ｚ＝１０００のイオン（図２Ｂにおいて、矢印を付して示したピーク）が検出され、還元標識ＬＮＦ−Ｉからは当該イオンは検出されなかった。すなわち、この構造特異的に生成したイオンによって、還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩの両異性体を区別することができた。

（実施例３）
ＬＣポンプに接続したＥＳＩ−ＭＳ装置ＬＣＱ(Thermo Electron)を用いて、実施例１で得られた還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩのそれぞれのＭＳ分析を行った。還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩのそれぞれは、５０％アセトニトリル−純水に溶解させて１ｐｍｏｌ／ｍＬの溶液とし、該溶液の１ｍＬをＥＳＩ−ＭＳ装置に注入した。また、移動相として、０．１％ＴＦＡを含む純水／９０％アセトニトリル−純水（５０／５０）を用い、移動相の流速は、３ｍＬ／ｍｉｎであった。

上記のＭＳ分析で得られたｍ／ｚ＝１１４０．５の親イオン［Ｍ＋Ｈ］^＋をプリカーサーイオンとして選択し、ＭＳ／ＭＳ測定を行った。図３Ａに還元標識ＬＮＦ−Ｉ親イオンから得られたスペクトルを示し、図３Ｂに還元標識ＬＮＦ−ＩＩ親イオンから得られたスペクトルを示す。図３Ａおよび図３Ｂから分かるように、還元標識ＬＮＦ−ＩＩのみから特異的に、ｍ／ｚ＝９７８のイオン（図３Ｂにおいて、矢印を付して示したピーク）が検出され、両異性体を区別することができた。

（比較例１）
ＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩのそれぞれについて、還元剤ＮａＢＨ_４による還元を行わなかったことを除いて実施例１の手順を繰り返して、ＰＢＨで標識された標識ＬＮＦ−Ｉおよび標識ＬＮＦ−ＩＩを得た。標識ＬＮＦ−Ｉおよび標識ＬＮＦ−ＩＩのそれぞれを、実施例２に記載の手順に従ってＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ分析を行った。しかしながら、標識ＬＮＦ−Ｉおよび標識ＬＮＦ−ＩＩから得られた親イオンのイオン強度は、還元標識ＬＮＦ−Ｉおよび還元標識ＬＮＦ−ＩＩに比較して１／１０以下であったため、ＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を実施することは困難であった。

（実施例４）
以下に示す化合物（３）〜（５）を、実施例１の方法でピレン誘導体化合物（ＰＢＨ）を用いた還元標識した後に、四重極型イオントラップ（ＱＩＴ）を装備したＭＡＬＤＩ−ＱＩＴ−ＴＯＦＭＳ（Ａｘｉｍａ−ＱＩＴ(Shimadzu/Kratos)）を用いてnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳ測定を行った。ここで、２段階目のＭＳ測定においては、各化合物の親イオンをプリカーサーイオンとして用いた。

（式中、Ｍａｎは、マンノースを示す。）

図４〜図６に、それぞれ化合物（３）〜（５）のフラグメント位置および得られたスペクトルを示す（これらの図においては、フラグメント位置を明確にするためにグリコシド結合のＯ原子を明示した。以下の図も同様である）。図４〜６に示されるように、各構造に特徴的なフラグメントイオンである^０，４Ａ_４、^２，４Ａ_５、ＤおよびＥのタイプのイオンが生成した。negative-ＭＳ／ＭＳ測定においてこれらのイオンを検出することは、構造同定に有効である（たとえば、非特許文献２および３参照）。たとえば、非特許文献２においては、２−アミノ安息香酸を用いて還元標識をおこなっているが、^０，４Ａ_４イオンのみが検出されている。一方、非特許文献３においては、非標識糖鎖を用いて、^２，４Ａ_５、ＤおよびＥイオンが検出されている。それら文献に対して、本発明のピレン誘導体化合物を用いた還元標識方法を用いることによって、より多くの種類の構造特異的なイオンを生成できることが分かった。したがって、本発明の方法は、ピレン誘導体化合物を用いる還元標識によって高感度の検出が可能となる点に加えて、構造同定のためにより多くの情報量が得られる点において、極めて有用である。

（実施例５）
以下に示す化合物（６）を、実施例１の方法でＰＢＨを用いた還元標識した後に、ＭＡＬＤＩ−ＱＩＴ−ＴＯＦＭＳ（Ａｘｉｍａ−ＱＩＴ(Shimadzu/Kratos)）を用いてnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳ測定を行った。

ここで、２段階目のＭＳ測定においては、ｍ／ｚ（質量／電荷比）＝１６５０の［Ｍ−Ｈ］⁻イオンをプリカーサーイオンとして用いた。図７に、化合物（６）のフラグメント位置および得られたスペクトルを示す。図７に示したスペクトル中の矢印は、プリカーサーイオンのピークを示す。図７に示したスペクトルにおいては、６位側の側鎖にフコースが存在することを示すｍ／ｚ＝５７０のイオン、およびＦｕｃα１−Ｏ−２Ｇａｌ構造が脱離したことを示すｍ／ｚ＝１３２４のイオンが検出された。

さらに、ｍ／ｚ＝１１３８のイオン（３位側の側鎖であるＦｕｃα１−２Ｇａｌβ１−３ＧｌｃＮＡｃが脱離したイオン）をプリカーサーイオンとして用いて、negative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ^３測定を行った。図８に、フラグメント位置および得られたスペクトルを示す。図８に示したスペクトル中の矢印は、プリカーサーイオンのピークを示す。図８に示したスペクトルにおいては、６位側の側鎖にフコースが存在することを示すｍ／ｚ＝５７０のイオンに加えて、Ｇａｌβ１−４（Ｆｕｃα１−３）ＧｌｃＮＡｃ構造が存在するときに生じるｍ／ｚ＝３６４のイオンが検出された。

以上のnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳ測定およびnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ^３測定の結果から、化合物（６）の構造を簡単に同定することができた。

（実施例６）
それぞれ血液型抗原ＨまたはＬｅ^ａを有し、構造異性体の関係にあるＬＮＦ−Ｉ（化合物（１））およびＬＮＦ−ＩＩ（化合物（２））を、還元末端のグルコースではなく、非還元末端のガラクトースにピレン誘導体化合物を導入して標識した。以下に、具体的方法を示す。最初に、還元末端のグルコースにピレン誘導体化合物の標識が導入されないようにするために、ＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩを、２時間にわたって濃度１０ｍｇ／ｍｌの水素化ホウ素ナトリウム溶液中に放置して還元した。次いで、ガラクトースオキシダーゼ（６単位）を加えて、３７℃で一晩放置して、ガラクトースを酸化しアルデヒド基を生成させた。反応終了後、酵素をメタノールにより変性させた後、フィルターを用いて反応液を濾過して、酵素を除去した。そして、濾液を乾固させ、実施例１の方法により、ＰＢＨを用いて残留物を還元標識した。

この反応生成物を、ＭＡＬＤＩ−ＱＩＴ−ＴＯＦＭＳ（Ａｘｉｍａ−ＱＩＴ(Shimadzu/Kratos)）を用いて負イオンのＭＳ測定を行った。その結果、ｍ／ｚ＝１１３８の［Ｍ−Ｈ］⁻イオンが得られ、ＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩの両方がＰＢＨによって還元標識されたことが確認された。

さらに得られたｍ／ｚ＝１１３８の［Ｍ−Ｈ］⁻イオンをプリカーサーイオンとして用いて、ＭＡＬＤＩ−ＱＩＴ−ＴＯＦＭＳ（Ａｘｉｍａ−ＱＩＴ(Shimadzu/Kratos)）を用いてnegative-ion ＭＡＬＤＩ−ＴＯＦ ＭＳ／ＭＳ測定を行った。図９および図１０に、それぞれＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩに関するフラグメント位置および得られたスペクトルを示す。

図９および図１０から分かるように、ＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩの両方からｍ／ｚ＝７９４．３のイオンが検出された。このイオンはＰＢＨを用いて還元標識された糖鎖（Ｆｕｃ／Ｇａｌ／ＧｌｃＮＡｃの３糖）に由来するものである。このイオンの検出によって、ＬＮＦ−ＩおよびＬＮＦ−ＩＩの両方が、非還元末端にフコースを有するラクトサミン構造を有することが分かった。また、図９に示されるように、ＰＢＨ標識されたＦｕｃα１−２Ｇａｌ構造が遊離したｍ／ｚ＝５２８．２のイオンが検出された。実施例５においても同構造が検出されていることから、ＰＢＨ還元標識が糖鎖の還元末端であっても、非還元末端であっても、該２糖構造が遊離することが分かった。さらに、図１０に示されるように、ＰＢＨにより還元標識されたＬＮＦ−ＩＩからはｍ／ｚ＝６９２．２および３４３．１のイオンが検出された。これらのイオンの検出は、フコースがＮ−アセチルグルコサミンと結合していることを示す。

以上のように、ピレン誘導体化合物を用いて非還元末端において糖鎖の還元標識を行うことによって、非還元末端部に存在する血液型抗原の分析が可能となる。また、糖タンパク質を分析する場合、この方法は、糖鎖を糖タンパク質から遊離させることなしに、糖鎖を還元標識することを可能にする。したがって、この方法は、糖タンパク質のイオン化効率を向上させるとともに、糖タンパク質のままで糖鎖部分を解析することを可能にする。

Claims (8)

1. 分子の質量分析法であって、縮合多環炭化水素を有する標識化合物を分子と結合させて標識された分子を形成する工程と、該標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程とを備えたことを特徴とする分子の質量分析法。
2. 前記標識化合物がピレン誘導体化合物であることを特徴とする請求項１に記載の質量分析法。
3. 分子の質量分析法であって、該分子は、糖鎖であり、および
   （１）該分子の還元末端をヒドラジド基またはアミノ基を有するピレン誘導体化合物で標識して、標識化中間体を得る工程と、
   （２）標識化中間体を還元して、還元標識された分子を得る工程と、
   （３）該還元標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程と
   を備えたことを特徴とする分子の質量分析法。
4. 分子の質量分析法であって、該分子は、糖鎖および糖タンパク質から成る群から選択され、および
   （１）該分子中の糖鎖部分のみを酸化して、酸化生成物を得る工程と、
   （２）酸化生成物をヒドラジド基またはアミノ基を有するピレン誘導体化合物で標識して、標識化中間体を得る工程と、
   （３）標識化中間体を還元して、還元標識された分子を得る工程と、
   （４）該還元標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程と
   を備えたことを特徴とする分子の質量分析法。
5. 分子の質量分析法であって、該分子は、タンパク質および糖タンパク質から成る群から選択され、および
   （１）該分子内のカルボキシ基、アミノ基またはＳＨ基を利用して、該分子をピレン誘導体化合物で標識し、標識された分子を得る工程と、
   （２）該標識された分子のＭＳ^ｎ（ｎ＞１）解析を行う工程と
   を備えたことを特徴とする分子の質量分析法。
6. 請求項１から５のいずれかに記載の質量分析法によって得られるスペクトル。
7. 請求項６に記載のスペクトルから得られる情報。
8. 請求項７に記載の情報を集積したデータ集積体。

Images