JPWO2004005510A1

JPWO2004005510A1 - 新規Ｎｏｇｏ受容体様ポリペプチドおよびそのＤＮＡ

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Publication number: JPWO2004005510A1
Application number: JP2004519248A
Authority: JP
Inventors: 織田　聡; 聡織田; 淳行島崎; 徹柳本; 雅壽中嶋; 岳夫大島
Original assignee: Shionogi and Co Ltd
Current assignee: Shionogi and Co Ltd
Priority date: 2002-07-05
Filing date: 2003-07-03
Publication date: 2005-11-04
Also published as: WO2004005510A1; AU2003246254A1

Abstract

糖尿病モデルラットであるＺｕｃｋｅｒｆａｔｔｙラットにおいて、食餌制限と運動により骨格筋で発現が増大するタンパク質としてＮｏｇｏ受容体様新規ポリペプチドを見出した。また、それに対応するヒトホモローグタンパク質を見出した。本発明のポリペプチドは、糖尿病マーカーおよび糖尿病治療薬として有用である。さらに、本発明のポリペプチドは、脳内の大脳皮質で最も強く発現していることからアルツハイマー病などの神経変性疾患マーカーおよび神経変性疾患治療薬としても有用である。

Description

本発明は、Ｎｏｇｏ受容体と類似構造を有する、糖尿病発症および神経再生に関与する新規ポリペプチド、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドに対する相補的ポリヌクレオチド、該ポリヌクレオチドを含むベクター、該ベクターで形質転換された形質転換体、該ポリペプチドを認識する抗体、該ポリペプチドのリガンドおよび該ポリペプチドを利用した物質のスクリーニング方法、並びに該ポリペプチドおよび該ポリヌクレオチドの神経疾患および糖尿病マーカーとしての用途に関する。

食事による血中グルコース濃度の上昇は、その大部分がインスリン作用による肝臓、骨格筋および脂肪細胞でのグルコース取り込み活性の増加によって処理される。糖尿病は、インスリン分泌障害や作用が不足して血糖値が上昇した病態であるが、その原因の一つに、インスリン感受性の低下がある。すなわち、インスリンは適当量存在するが、骨格筋および脂肪細胞が十分な応答ができずグルコースが取り込まれない、インスリン抵抗性を示す状態である。また、過食と運動不足がインスリン抵抗性の原因としてあげられており、適度な運動により骨格筋におけるグルコースの取り込み能が増大して血糖値が改善されることが知られている（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＭｅｄｉｃｉｎｅ，３８，１６５（２００１）．）。インスリンが、骨格筋に作用すると、細胞質内の小胞に局在しているグルコース輸送体（Ｇｌｕｔ４）が細胞膜に移行してグルコースが取り込まれることが知られている（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２６８，１４５２３（１９９３）．）。また、運動により、Ｇｌｕｔ４の発現量と細胞膜への移行量の増大が認められる（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＭｅｄｉｃｉｎｅ，３８，１６５（２００１）．）。
神経再生に関与しているＮｏｇｏ（別名ｖｐ２０）がＧｌｕｔ４と同じ分秘小胞に存在していることが明らかになっている他、Ｇｌｕｔ４の細胞膜への移行に関与している分子は不明である（ＢｉｏｃｈｉｍｉｃａｅｔＢｉｏｐｈｙｓｉｃａＡｃｔａ，１４５０，６８−７６（１９９９）．）。したがって、インスリンが作用してからＧｌｕｔ４が細胞膜に移行するまでのシグナル伝達機能を解明することは、糖尿病治療薬の開発にとって重要であるが、その機構に関しては詳細な解析がされておらず、その解明が待望されていた。
一方、損傷を受けた哺乳動物の中枢神経の修復再生は起こらないとされてきたが、最近になり、神経幹細胞が存在し神経も再生しうることが報告されつつあり、外傷、虚血、あるいはアルツハイマー病、パーキンソン病、および筋萎縮性側索硬化症など神経変性疾患における応用が期待される。神経変性疾患とは、神経細胞を中心とするさまざまな種類の退行性の変化であり、血管障害、感染、中毒のような明らかな原因がつかめない一群の神経疾患として定義されており、代表的な疾患としては、大脳皮質を犯すアルツハイマー病がある（実験医学、１９、２２５６（２００１）．）。これまで、神経細胞の再生や軸索の進展に関与する分子は、いくつか報告されているが、その中でも、ＮｏｇｏおよびＮｏｇｏ受容体が重要な槻能を有している（Ｎａｔｕｒｅ，１８，４０９（２００１）．）。すなわち、ＮｏｇｏがＮｏｇｏ受容体と結合することにより神経細胞の軸索の伸長が阻害されているため、成人では再生が起こりにくく、胎児期では、ＮｏｇｏおよびＮｏｇｏ受容体の発現が弱いため再生が起こりやすくなっているというものである（Ｎｅｕｒｏｎ，３０，１１（２００１）．）。しかし、これらの分子の機能も含めて、神経細胞の再生の分子機能に関しては詳細な解析がされておらず、その解明が待望されていた。

本発明は、神経疾患および糖尿病等の疾患の検出に有用な新規ポリペプチドおよびポリヌクレオチドの提供を課題とする。さらに、当該ポリベプチド、作動薬およびその阻害剤を用いた、糖尿病および神経疾患の治療薬を提供する。
本発明者らは、骨格筋におけるインスリン抵抗性に関与する新規遺伝子を単離することを目的として、鋭意研究を行なった結果、Ｎｏｇｏ受容体様新規ポリペプチド（３９Ｃ７）をコードする新規な遺伝子を見出した。更に研究を進めた結果、当該遺伝子の発現がインスリン抵抗性モデルラットの骨格筋において食餌制限と運動により発現が増大すること、ヒト組織において脳と骨格筋に特異的に発現していること、および脳内では大脳皮質で最も強く発現していることを見出し本発明のポリペプチドおよびポリヌクレオチドが糖尿病および神経変性疾患の検出および治療に有用であることを確認し本発明を完成させた。
すなわち、本発明は、
（１）配列番号２の２２位のＧｌｙから４４１位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩；
（２）配列番号２の１位のＭｅｔから４４１位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有する（１）記載のポリペプチドまたはその塩；
（３）配列番号４の２２位のＳｅｒから４４５位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩；
（４）配列番号４の１位のＭｅｔから４４５位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有する（３）記載のポリペプチドまたはその塩；
（５）上記（１）から（４）のいずれか記載のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換または付加から選択される少なくとも１つの変異を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドまたはその塩；
（６）糖尿病マーカー、神経変性疾患マーカー、糖尿病治療薬、あるいは神経変性疾患治療薬として用いることを特徴とする上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチド；
（７）上記（１）から（６）のいずれか記載のポリペプチドをコードする塩基配列を有するポリヌクレオチド；
（８）配列番号１の１７４番目のＧから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有する上記（７）記載のポリヌクレオチド；
（９）配列番号１の１１１番目のＡから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有する上記（７）記載のポリヌクレオチド；
（１０）配列番号３の１７０番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有する上記（７）記載のポリヌクレオチド；
（１１）配列番号３の１０７番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有する上記（７）記載のポリヌクレオチド；
（１２）上記（７）から（１１）のいずれか記載のポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチド；
（１３）上記（７）から（１２）のいずれか記載のポリヌクレオチドに相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド；
（１４）糖尿病マーカー、神経変性疾患マーカー、糖尿病治療薬あるいは神経変性疾患治療薬として用いることを特徴とする上記（７）から（１１）および（１３）のいずれか記載のポリヌクレオチド；
（１５）配列番号１または３記載の塩基配列中の連続した５から６０塩基と同一配列を有するオリゴヌクレオチド、該オリゴヌクレオチドと相補的な配列を有するオリゴヌクレオチドおよびそれらの誘導体オリゴヌクレオチドからなる群より選ばれるポリヌクレオチド；
（１６）上記（７）から（１３）のいずれか記載のポリヌクレオチドを含有する組換えベクター；
（１７）上記（１６）記載の組換えベクターで形質転換させた形質転換体；
（１８）上記（１７）記載の形質転換体を培養する工程、および産生された上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドを培養液から回収する工程、を含有する該ポリペプチドまたはその塩の製造法；
（１９）上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドを特異的に認識する抗体；
（２０）下記の工程を含む、上記（１９）記載の抗体を用いることを特徴とする、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドの検出または定量方法、
（ａ）ポリペプチドと該抗体とを接触させる工程および、
（ｂ）ポリペプチドと該抗体との結合を検出する工程；
（２１）上記（２０）記載の方法を用いることを特徴とする、請求項１から５のいずれかに記載のポリペプチドが関連する糖尿病または神経変性疾患の検出方法。
（２２）上記（２０）記載の方法を用いることを特徴とする糖尿病または神経変性疾患の検出用キット；
（２３）下記の工程を含む上記（７）から（１３）または（１５）のいずれか記載のポリヌクレオチドを用いることを特徴とする、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドのｍＲＮＡの検出または定量方法、
（ａ）ｍＲＮＡと該ポリヌクレオチドを接触させる工程および、
（ｂ）ｍＲＮＡと該ポリヌクレオチドの結合を検出する工程。
（２４）上記（２３）記載の方法を用いることを特徴とする、（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドが関連する糖尿病または神経変性疾患の検出方法；
（２５）上記（２３）記載の方法を用いることを特徴とする、糖尿病または神経変性疾患の検出用キット；
（２６）上記（２３）記載の方法を用いることを特徴とする、上記（１）から（５）記載のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量の測定方法；
（２７）上記（２３）記載の方法を用いることを特徴とする、上記（１）から（５）記載のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量の測定キット；
（２８）上記（７）から（１３）または（１５）のいずれか記載のポリヌクレオチドを用いることを特徴とする、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドをコードするＤＮＡの転写またはｍＲＮＡの翻訳を促進または抑制する方法；
（２９）下記の工程を含む、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドの結合物質のスクリーニング方法、
（ａ）上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドと被検物質とを接触させる工程および、
（ｂ）該ポリペプチドと被検物質との結合を検出する工程；
（３０）上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドを含むことを特徴とする、該ポリペプチドの結合物質のスクリーニング用キット；
（３１）上記（２９）記載の結合物質のスクリーニング方法により得られることを特徴とする、結合物質；
（３２）下記の工程を含む、上記（３１）記載の結合物質と上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドとの結合活性調節物質のスクリーニング方法、
（ａ）被検物質の存在下または非存在下、上記（１）から（５）のいずれかに記載のポリペプチドと上記（３１）記載の結合物質を接触させる工程および、
（ｂ）該ポリペプチドと該結合物質の結合活性を、被検物質の存在下と非存在下で比較する工程；
（３３）上記（１）から（５）のいずれかに記載のポリペプチドおよび上記（３０）記載の結合物質を含むことを特徴とする、結合活性調節物質のスクリーニング用キット；
（３４）上記（３３）記載のスクリーニング方法により得られることを特徴とする、結合活性調節物質；
（３５）下記の工程を含む、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドの発現調節物質のスクリーニング方法、
（ａ）上記（１）から（５）のいずれかに記載のポリペプチドを発現しうる細胞と被検物質を接触させる工程および、
（ｂ）該ポリペプチドの発現量の変化を、上記（２０）または（２３）のいずれか記載の方法を用いて検出する工程；
（３６）上記（３５）記載の方法を用いることを特徴とする、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドの発現調節物質のスクリーニング用キット；
（３７）上記（３５）記載のスクリーニング方法により得られることを特徴とする、上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドの発現調節物質；
（３８）上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドをコードするＤＮＡを欠損または変異させた非ヒトノックアウト動物；
（３９）上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドをコードするＤＮＡを発現または変異させた非ヒトトランスジェニック動物；
（４０）上記（１９）記載の抗体，（３１）記載の結合物質、（３４）記載の結合活性調節物質または（３７）記載の発現調節物質を含有してなる医薬組成物；
（４１）上記（１）から（５）のいずれか記載のポリペプチドから選ばれる少なくとも１つを含有してなる医薬組成物；
（４２）上記（７）から（１３）および（１５）のいずれか記載のポリヌクレオチドから選ばれる少なくとも１つを含有してなる医薬組成物；
（４３）神経変性疾患または糖尿病の治療剤である上記（４０）から（４２）記載の医薬組成物；
（４４）上記（４０）から（４３）のいずれか記載の医薬組成物を投与することを特徴とする神経変性疾患または糖尿病の治療方法；
に関する。

図１ヒト３９Ｃ７ポリペプチドの構造を表した模式図である。
アミノ配列の第１位から第２１位が、予想されるシグナルペプチド領域（ＳＰ；ＳｉｇｎａｌＰｅｐｔｉｄｅ）、第２２位から第３０５位がＮｏｇｏ受容体のロイシンリッチリピート領域（ＬＲＲ；Ｌｅｕｃｉｎｅ−ｒｉｃｈｒｅｐｅａｔｄｏｍａｉｎ）と類似性を有する９つの領域で、アミノ末端側から順に、ＬＲＲＮＴ（ＬｅｃｉｎｅｒｉｃｈｒｅｐｅａＮ−ｔｅｒｍｉｎａｌｄｏｍａｉｎ）、ＬＲＲ−１、ＬＲＲ−２、ＬＲＲ−３、ＬＲＲ−４、ＬＲＲ−５、ＬＲＲ−６、ＬＲＲ−７、およびＬＲＲＣＴ（ＬｅｃｉｎｅｒｉｃｈｒｅｐｅａＣ−ｔｅｒｍｉｎａｌｄｏｍａｉｎ）で表している。また、４１４位から４４１位には、グルコシルホスファチジルイノシトールアンカー（ＧＰＩアンカー）蛋白質と予想される構造を有している。
図２ヒト正常組織における３９ｃ７ポリペプチドｍＲＮＡの発現量を表している。
図３ヒト脳における３９ｃ７ポリペプチドｍＲＮＡの発現量を表している。ヒト脳内の種々の領域におけるノーザンブロット解析を行い、全脳での３９ｃ７ポリペプチドｍＲＮＡの発現量を１とした相対的な発現量で示している。
図４運動および食餌制限によるｒ３９ｃ−７の発現変動を示す図である。インスリン抵抗性モデルラット骨格筋における３９ｃ７ポリペプチドｍＲＮＡの発現変動の結果を示した図である。Ｔａｑ−ＭＡＮを用いた定量ＰＣＲ解析を行い、インスリン抵抗性を示すモデルラットでの３９ｃ７ポリペプチドｍＲＮＡの発現量を１とした相対的発現量で示している。
図５ｈ３９Ｃ７強制発現細胞のウェスタンブロットの結果を示す図である。
図６ｈ３９Ｃ７強制発現細胞でのグルコース取りこみ能を示す図である。縦軸にＣＣＰＭ／ＤＮＡ（ｎｇ）、横軸にインシュリン濃度（ｎＭ）を示す。

本発明のポリペプチドは、「配列番号２に記載の２２位のＧｌｙから４４１位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩」および「配列番号２に記載の１位のＭｅｔから４４１位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩」である。また、「配列番号４に記載の２２位のＳｅｒから４４５位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩」および「配列番号４に記載の１位のＭｅｔから４４５位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩」も包含する。「塩」としては、酸または塩基との生理学的に許容される塩が挙げられ、とりわけ生理学的に許容される酸付加塩が好ましい。この様な塩としては、例えば、塩酸、リン酸、臭化水素酸、硫酸などの無機酸との塩、または酢酸、ギ酸、プロピオン酸、フマル酸、マレイン酸、コハク酸、酒石酸、クエン酸、リンゴ酸、蓚酸、安息香酸、メタンスルホン酸、ベンゼンスルホン酸などの有機酸との塩などが用いられる。
本発明のポリペプチドは、「配列番号２または４のいずれかに記載されるアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換または付加からなる群より選択される少なくとも１つの変異を有するアミノ酸配列からなり、神経変性疾患マーカーあるいは糖尿病マーカーであるポリペプチドまたはその塩」も包含する。このポリペプチドは神経変性疾患マーカーあるいは糖尿病マーカーである。１若しくは数個のアミノ酸とは、部位特異的変異誘発法などにより欠失、置換または付加することができる程度の数のアミノ酸であり、５０個以下、好ましくは３０個以下、より好ましくは２０個以下、さらに好ましくは１０個以下のアミノ酸残基を意味している。さらに、本発明のポリペプチドは、欠失、置換または付加によっても生物学的活性を有しており、神経変性疾患マーカーあるいは糖尿病マーカーとしての機能を有するポリペプチドであり、配列番号２または配列番号４で表わされるアミノ酸配列と少なくとも６０％以上の相同性を有するポリペプチド、好ましくは８０％以上の相同性を有するポリペプチド、さらに好ましくは、９５％以上の相同性を有するポリペプチドを挙げることができる。
本明細書において「神経変性疾患マーカー」とは、神経変性疾患を検出するに使用される物質である。ある種のｍＲＮＡまたはタンパク質が、神経変性疾患においてその発現が増加または減少する場合に、「神経変性疾患マーカー」となりえる。「神経変性疾患」とは、神経細胞を中心とするさまざまな種類の退行性の変化であり、血管障害、感染、中毒のような明らかな原因のつかめない一群の神経疾患である。「神経変性疾患」としては、アルツハイマー病、パーキンソン病、および筋萎縮性側索硬化症などが例示される。「神経変性疾患マーカー」は神経変性疾患を検出することができる物質であればよく、本発明のポリヌレクオチド、ポリペプチドおよび抗体などを使用することができる。「糖尿病マーカー」とは、糖尿病を検出するのに使用される物質である。ある種のｍＲＮＡまたはタンパク質が、糖尿病においてその発現が増加または減少する場合に、「糖尿病マーカー」となりえる。
本明細書において「神経変性疾患治療薬」とは、神経変性疾患を治療するのに用いられる物質である。本発明のポリペプチドが脳で大量に発現していることから、本発明のポリペプチド、ポリヌクレオチドおよび抗体などは各種神経変性疾患の治療に有用であると考えられる。「糖尿病治療薬」とは、糖尿病を治療するのに用いられる物質である。本発明のポリペプチドが骨格筋で発現しており、運動および食餌制限により発現変動していることから、本発明のポリペプチド、ポリヌクレオチドおよび抗体などは糖尿病性疾患の治療に有用であると考えられる。
本発明のポリヌクレオチドは、本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡであり、本発明のポリヌクレオチドとしては「配列番号１の１７４番目のＧから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有するポリヌクレオチド」、「配列番号１の１１１番目のＡから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有するポリヌクレオチド」、「配列番号３の１７０番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有するポリヌクレオチド」または「配列番号３の１０７番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有するポリヌクレオチド」が例示される。また、本発明のポリヌクレオチドには、「本発明のポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズし、神経変性疾患マーカーであるか糖尿病マーカーであるポリペプチドをコードするポリヌクレオチド」も包含される。本発明のポリヌクレオチドは、好ましくは「配列番号１の１７４番目のＡから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有するポリヌクレオチド」または「配列番号３の１７０番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有するポリヌクレオチド」である。
ここで、「ストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチド」とは、本発明のポリヌクレオチド中から選択されたポリヌクレオチドをプローブとして、当該分野において周知慣用な手法、例えば、コロニーハイブリダイゼーション法、プラークハイブリダイゼーション法あるいはサザンブロットハイブリダイゼーション法などを用いることにより得られるポリヌクレオチドを意味し、具体的には、コロニーあるいはプラーク由来のポリヌクレオチドを固定化したメンブランを用いて、０．７〜１．０ＭのＮａＣｌ存在下、６５℃でハイブリダイゼーションを行った後、０．１〜２倍濃度のＳＳＣ（ＳａｌｉｎｅＳｏｄｉｕｍＣｉｔｒａｔｅ；１５０ｍＭ塩化ナトリウム、１５ｍＭクエン酸ナトリウム）溶液を用い、６５℃でメンブランを洗浄することにより同定できるポリヌクレオチドを意味する。ハイブリダイゼーションは、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（１９９４）（Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）、ＤＮＡＣｌｏｎｉｎｇ１：ＣｏｒｅＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＡｐｐｒｏａｃｈ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９９５）（ＯｘｆｏｒｄＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙＰｒｅｓｓ）などに記載されている方法に準じて行うことができる。ここで、ストリンジェントな条件でハイブリダイズする配列からは、好ましくは、アデニン（Ａ）またはチミン（Ｔ）のみのからなる配列は除外される。
本明細書において「ハイブリダイズするポリヌクレオチド」とは、上記ハイブリダイズ条件で別のポリヌクレオチドにハイブリダイズすることができるポリヌクレオチドをいう。そのようなポリヌクレオチドとして、具体的には、配列番号１または配列番号３で表されるアミノ酸配列を有するポリペプチドをコードするＤＮＡの塩基配列と少なくとも６０％以上の相同性を有するポリヌクレオチド、好ましくは、８０％以上の相同性を有するポリヌクレオチド、更に好ましくは、９５％以上の相同性を有するポリヌクレオチドを挙げることができる。ここで、相同性は、例えば、Ａｌｔｓｃｈｕｌら（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，２１５，４０３−４１０（１９９０）．）の開発したアルゴリズムを使用した検索プログラムＢＬＡＳＴを用いることにより、スコアで類似度が示される。
本発明のポリヌクレオチドは、「配列番号１または３に記載の塩基配列中の連続した５から６０塩基と同じ配列を有するオリゴヌクレオチド」を包含する。その様なポリヌクレオチドは、配列番号１または３のいずれかに記載の塩基配列中の連続した塩基で、例えば、５個、８個、１０個、１２個、１５個、２０個、２５個、３０個、４０個、５０個、６０個などからなる塩基配列と同一配列のオリゴヌクレオチドであり、該オリゴヌクレオチドと相補的な配列を有するオリゴヌクレオチドおよびその誘導体オリゴヌクレオチドも包含される。「誘導体オリゴヌクレオチド」としては、例えば、オリゴヌクレオチド中のりん酸ジエステル結合がホスホロチオエート結合またはＮ３’−Ｐ５’ホスホアミダイト結合などに変換された誘導体オリゴヌクレオチド、リボースとりん酸ジエステル結合がペプチド結合に変換された誘導オリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオチド中のウラシルがＣ−５プロピオニルウラシルまたはＣ−５チアゾールウラシルで置換された誘導体オリゴヌクレオチド、オリゴヌクレオチド中のシトシンがＣ−５プロピオニルシトシンまたはフェノキサジン修飾シトシンなど置換された誘導体オリゴヌクレオチド、ＤＮＡ中のリボースが２’−Ｏ−プロピルリボースまたは２’−メトキシエトキシリボースなどで置換された誘導体オリゴヌクレオチドなどを挙げることができる。その様なポリヌクレオチドは、例えば、遺伝子マーカー、ＰＣＲ用のプライマー、ハイブリダイゼーション用のプローブとして有用である。
本発明は、本発明のポリヌクレオチドを組み込んだベクター、該ベクターにより形質転換された形質転換体、該形質転換体を用いた本発明ポリペプチドの製造法が含まれる。また、ノックアウト動物やトランスジェニック動物も本発明により提供される。これら改変動物は、ヒトを除く哺乳類であれば、いずれの動物でもよく、好ましくはマウス、ラット、ハムスター、モルモットなどの齧歯類が例示される。
本明細書において使用される用語は、特に言及する場合を除いて、当該分野で通常用いられる意味で用いられる。以下に特に本明細書で用いられる用語について説明する。
本明細書において「抗体」とは、当該分野で通常使用される意味で用いられ、抗体の全部またはその断片、誘導体、結合体、修飾体なども包含される。好ましくは、本発明のポリペプチドを認識する抗体であり、より好ましくは、本発明のポリペプチドを特異的に認識する抗体であり、さらに好ましくは単一特異的に認識する抗体である。そのような抗体はポリクローナル抗体またはモノクローナル抗体のいずれでもよい。
本発明のポリペプチドの「検出または定量」は、免疫学的測定方法を含む適切な方法を用いて達成することができる。そのような方法としては、例えば、ＥＬＩＳＡ（ＥｎｚｙｍｅＬｉｎｋｅｄＩｍｍｕｎｏＳｏｒｂｅｎｔＡｓｓａｙ）法、ＲＩＡ（ＲａｄｉｏＩｍｍｕｎｏＡｓｓａｙ）法、蛍光抗体法、ウェスタンブロット法、免疫組織染色法などが挙げられる。
本発明の抗体を用いて、糖尿病または神経変性疾患を検出することができる。本発明のポリペプチドは糖尿病のマーカーおよび神経変性疾患マーカーとなり得ることから、前述のポリペプチドの検出または定量と同様に、適切な免疫学的測定方法を用いることにより達成することができる。
本発明はまた、本発明の抗体を含むことを特徴とする糖尿病および／または神経変性疾患の検出用キットに関する。このキットは、少なくとも本発明の抗体および標準試薬として本発明のポリペプチドを含む。
本発明のポリペプチドのｍＲＮＡの「検出または定量」は、ｍＲＮＡの測定を行う分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法を用いることにより達成することができる。そのような方法としては、例えば、ノーザンハイブリダイゼーション法、ドットブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ法などが挙げられる。
本発明のポリペプチドのｍＲＮＡを測定することにより、糖尿病および／または神経変性疾患を検出することができる。本発明のポリペプチドは糖尿病マーカーおよび神経変性疾患マーカーとなり得ることから、前述のｍＲＮＡの検出または定量と同様な分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法を用いることにより達成することができ、ノーザンブロット法、ドットブロット法またはＰＣＲ法などが例示される。
本発明は、本発明のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの一部または全部を標準試薬として含む、糖尿病および／または神経変性疾患の検出用キットに関する。本発明のポリヌクレオチドは、糖尿病マーカーおよび／または神経変性疾患となり得ることから、前述の糖尿病または神経変性疾患の検出方法に基づき、ポリヌクレオチドを分子生物学的に測定することができる。
本発明のポリペプチドのｍＲＮＡを測定することにより、本発明のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量を測定することができる。遺伝子が発現して、ｍＲＮＡに翻訳されることから、前述のｍＲＮＡの検出または定量と同様な分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法を用いることにより達成することができ、ノーザンブロット法、ドットブロット法またはＰＣＲ法などが例示される。
本発明は、本発明のポリペプチドをコードするポリヌクレオチドの一部または全部を標準試薬として含む、本発明のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量測定キットに関する。本発明のポリペプチドのｍＲＮＡは本発明のポリペプチドをコードする遺伝子が翻訳されることにより発現することから、前述のｍＲＮＡの検出または定量方法に基づいてｍＲＮＡを分子生物学的に測定することができる。
本発明のポリヌクレオチドを用いて、ＤＮＡの転写またはｍＲＮＡの翻訳を抑制することができる。本発明のポリヌクレオチドと相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド、本発明のポリヌクレオチドとハイブリダイズするポリヌクレオチド、本発明のポリヌクレオチドの塩基配列中の連続した５から６０個の塩基配列を有するオリゴヌクレオチドと相補的な配列を有するオリゴヌクレオチドおよび誘導体オリゴヌクレオチドなどを適宜調製し、当該分野で周知なアンチセンスＲＮＡ／ＤＮＡ技術を用いて、このポリペプチドのＤＮＡの転写またはｍＲＮＡの翻訳を抑制する方法を提供することができる。
本発明はまた、本発明のポリペプチドの結合物質に関する。「結合物質」とは本発明のポリペプチドまたはポリヌクレオチドに結合する任意の物質をいう。このような結合物質としては、例えば、低分子物質、ポリヌクレオチド、ポリペプチドなどが挙げられる。
本発明の「結合物質のスクリーニング方法」は、当技術分野で公知となっている技術を適宜適応することにより行うことができ、バイオアッセイおよび結合アッセイなどが例示される。
本発明の「結合物質のスクリーニング用キット」には、少なくとも本発明のポリペプチドまたはその一部、本発明のポリヌクレオチドまたはその一部が含まれる。このキットを用いて、前述の本発明の結合物質を生化学的手法によりスクリーニングすることができる。
本発明はさらに、「結合活性調節物質」に関する。「結合活性調節」とは、本発明のポリペプチドと本発明の結合物質との結合活性を増強あるいは減少させることを意味し、「結合活性」は、ＰｅｒｃｅｎｔＭａｘｉｍｕｍＢｉｎｄｉｎｇ（ＰＭＢ）により評価される。「結合活性調節物質」とは、本発明のポリペプチドと本発明の結合物質との結合活性を増強あるいは減少させる物質であり、このような物質としては、例えば、低分子物質、ポリヌクレオチド、ポリペプチドなどが挙げられる。
本発明の「結合活性調節物質のスクリーニング方法」は当該分野で公知となっている技術を適宜適応することにより達成することができる。本発明のスクリーニング方法により本発明の結合活性調節物質をスクリーニングすることができ、そのような方法としては、バイオアッセイおよび結合アッセイなどが例示される。
本発明の「結合活性調節物質のスクリーニングキット」には少なくとも本発明のポリペプチドまたはその一部、ポリヌクレオチドまたはその一部などが含まれてる。本発明のキットを用いて、前述の結合活性調節物質をスクリーニング方法に基づき、結合活性調節物質を生化学的手法によりスクリーニングすることができる。
また、本発明は、「発現調節物質」に関する。発現量とは、目的の細胞などにおいて、本発明のタンパク質またはｍＲＮＡが発現される量を意味する。発現量は、本発明の抗体を用いた、例えば、ＥＬＩＳＡ法、ＲＩＡ法、蛍光抗体法、免疫組織染色法方法などの免疫学的測定方法などを含む適切な方法により本発明のタンパク質を測定することまたは本発明のｍＲＮＡ測定方法、例えば、ノーザンブロットハイブリダイゼーション法、ドットブロット法、ＲＴ−ＰＣＲ法などの分子生物学的測定方法により本発明のポリペプチドのｍＲＮＡを測定することにより評価することができる。「発現調節」とは、上記の免疫学的測定方法または分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法により評価される本発明のポリペプチドのタンパク質またはｍＲＮＡレベルでの発現量を増加または減少させることを意味する。「発現調節物質」とは上記免疫学的測定方法または分子生物学的測定方法を含む任意の適切な方法により評価される、本発明のポリペプチドのタンパク質またはｍＲＮＡレベルでの発現量を増加または減少させる物質であり、このような物質としては、例えば、低分子物質、ポリヌクレオチド、ポリペプチドなどが例示される。
本発明の「発現調節物質のスクリーニング方法」は当該分野で公知となっている技術を適宜適応することにより達成することができる。本発明のスクリーニング方法により本発明の結合活性調節物質をスクリーニングすることができ、そのような方法としては、バイオアッセイおよび結合アッセイなどが例示される。
本発明の「発現調節物質のスクリーニングキット」には少なくとも本発明のポリペプチドまたはその一部、ポリヌクレオチドまたはその一部などが含まれてる。本発明のキットを用いて、前述の発現調節物質をスクリーニング方法に基づき、発現調節物質を生化学的手法によりスクリーニングすることができる。
本発明の「医薬組成物」とは、少なくとも、本発明のポリペプチド、ポリヌクレオチド、抗体、結合物質、結合活性調節物質または発現調節物質を含有していればよく、特定の疾患、例えば、神経変性疾患、糖尿病などの予防または治療に用い得る。
本発明の「治療方法」とは、本発明のポリペプチドまたはポリヌクレオチドが関連する特定の疾患、例えば、神経変性疾患、糖尿病などを治療するための方法であって、本発明の医薬組成物を投与することによって治療することができる。
以下に本発明ポリヌクレオチドの調製、本発明ポリペプチドの調製、組換えベクター、形質転換体、製造方法、抗体、本発明ポリペプチドの定量方法、免疫学的検出方法、ｍＲＮＡの定量方法、ｍＲＮＡの翻訳抑制方法、結合物質、結合物質スクリーニング方法、結合活性調節物質、結合活性調節物質スクリーニング方法、発現調節物質、発現調節物質スクリーニング方法、スクリーニング用キット、ノックアウト動物、トランスジェニック動物、神経変性疾患または／および糖尿病の検出方法、遺伝子検出用キット、医薬組成物について説明する。本明細書において、特に指示のない限り、当該分野で公知である遺伝子組換え技術、動物細胞、昆虫細胞、酵母および大腸菌での組換えタンパク質の生産技術、発現タンパク質の分離精製法、分析法および免疫学的手法が採用される。
（１）本発明のポリヌクレオチドの取得
脳および骨格筋由来のラット組織、または、脳および骨格筋のヒト組織より、常法によりｃＤＮＡライブラリーを作製する。
ｃＤＮＡライブラリー作製法としては、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）やＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（１９９４）（ＧｒｅｅｎＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＡｓｓｏｃｉａｔｅｓａｎｄＷｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）、ＤＮＡＣｌｏｎｉｎｇ１：ＣｏｒｅＴｅｃｈｎｉｑｕｅｓ、ＡＰｒａｃｔｉｃａｌＡｐｐｒｏａｃｈ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９９５）（ＯｘｆｏｒｄＵｎｉｖｅｒｓｉｔｙＰｒｅｓｓ）などに記載された方法、あるいは市販のキット、例えば、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＰｌａｓｍｉｄＳｙｓｔｅｍｆｏｒｃＤＮＡＳｙｎｔｈｅｓｉｓａｎｄＰｌａｓｍｉｄＣｌｏｎｉｎｇ（インビトロジェン社製）やＺＡＰ−ｃＤＮＡＳｙｎｔｈｅｓｉｓＫｉｔｓ（ストラタジーン社製）などを用いる方法が挙げられる。
本発明のＤＮＡの両末端にＥｃｏＲＩリンカーを付与した後、クローニングベクター、例えば、ｐＳｐｏｒｔ１（インビトロジェン社製）のＥｃｏＲＩサイトに挿入する。本発明のプラスミドを用い、Ｅ．ｃｏｌｉＥｌｅｃｔｒｏＭＡＸＤＨ１０Ｂ（インビトロジェン社製）を形質転換してｃＤＮＡライブラリーを作製する。作製したｃＤＮＡライブラリーより目的とするＤＮＡを含むクローンを以下の方法で選択する。
上記で作製したｃＤＮＡライブラリーより、常法または市販のキット、例えば、ＱＩＡＧＥＮＰｌａｓｍｉｄＭａｘｉＫｉｔ（キアゲン社製）などを用いた方法によりプラスミドを調製する。
上記で調製したｃＤＮＡライブラリーからＮｏｇｏのアミノ酸配列と相同性を有するアミノ酸配列をコードするＤＮＡ断片を有するプラスミドを選択する。そのようなＤＮＡ断片は、各Ｎｏｇｏ受容体のアミノ酸配列がよく保存されている領域を２ヶ所以上見出し、該領域のアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列に対応する縮重プライマーを設計し、ＰｏｌｙｍｅｒａｓｅＣｈａｉｎＲｅａｃｔｉｏｎ（ＰＣＲ）法により増幅することで得られる。縮重プライマーの作製方法は、ＰＣＲＰｒｉｍｅｒ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ（１９９５）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）、ザ・プロトコールシリーズ「ｃＤＮＡクローニング」（１９９６）（井上純一郎、仙波憲太郎編；羊土社）およびＳｃｉｅｎｃｅ，２４１，４２（１９８８）．などに記載の方法が挙げられる。ＰＣＲ法はＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）およびＰＣＲＰｒｏｔｏｃｏｌｓ（１９８９）（ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ）などに記載の方法が挙げられる。
このようにしてＰＣＲ法で増幅したＤＮＡ断片を適当なプラスミドに挿入し、サブクローニングする。サブクローニングは、増幅したＤＮＡ断片をそのままあるいは制限酵素やＤＮＡポリメラーゼで処理した後、常法によりプラスミドベクターに組み込むことにより行うことができる。そのようなベクターとしては、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（＋）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ−、ｐＰＣＲ−ＳｃｒｉｐｔＡｍｐ（ストラタジーン社製）、ｐＤＩＲＥＣＴ（ＮｕｃｒｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓｅａｒｃｈ，１８，６０６９（１９９０）．）、ｐＴ７Ｂｌｕｅ（ノバゲン社製）、ｐＣＲＩＩ（インビトロジェン社製）、ｐＣＲ−ＴＲＡＰ（ジーンハンター社製）、ｐＮｏＴＡＴ７（Ｅｐｐｅｎｄｏｒｆ５ｐｒｉｍｅ社製）などが例示できる。
サブクローン化されたＰＣＲ増幅断片の塩基配列をスクリーニングすることにより、既知のＮｏｇｏ受容体のアミノ酸配列とホモロジーを有するが、完全には一致しないアミノ酸配列をコードするＤＮＡ断片を選択することができる。塩基配列は、通常用いられる塩基配列解析方法、例えば、サンガーらのジデオキシ法（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，７４，５４６３（１９７７）．）あるいは３７３ＡＤＮＡシークエンサー（アプライドバイオシステムズ社製）などの塩基配列分析装置で解析することができる。このようにして選択したＤＮＡ断片をプローブとし、上記で作製したｃＤＮＡライブラリーに対して、コロニーハイブリダイゼーションやプラークハイブリダイゼーションなどのハイブリダイゼーション解析を行うことにより、既知のＮｏｇｏ受容体とホモロジーを有するポリペプチドをコードするｃＤＮＡを取得することができる。プローブは、該ＤＮＡ断片を^３２Ｐなどの放射性同位体、ジゴキシゲニン（ｄｉｇｏｘｉｇｅｎｉｎ）、西洋ワサビペルオキシダーゼなどの酵素などで標識したものを使用することができる。ハイブリダイゼーションは、通常用いられる方法、例えば、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）などに記載の方法で行うことができる。
ハイブリダイゼーションにより取得されたｃＤＮＡ断片をそのままあるいは適当な制限酵素で消化した後、常法によりプラスミドベクターに組み込み、通常用いられる塩基配列解析方法、例えばサンガーらのジデオキシ法（ＰｒｏｃｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，７４，５４６３（１９７７）．）あるいは３７３ＡＤＮＡシークエンサー（アプライドバイオシステムズ社製）などの塩基配列分析装置を用いて塩基配列を分析することで目的とするＤＮＡを取得することができる。
このようにして取得されるＤＮＡとして、例えば、配列番号２で表されるポリペプチドをコードするＤＮＡなどが挙げられ、具体的には、配列番号１で表される塩基配列を有するＤＮＡを挙げることができる。配列番号１のＤＮＡを含むプラスミドとしては、例えば、後述の実施例に記載したプラスミドをあげることができる。
得られたＤＮＡを適当な発現ベクターに組み込み発現プラスミドを構築し、該発現ベクターを適した宿主に導入することにより形質転換体を得ることができる。該発現ベクターとしては、該ｃＤＮＡを組み込んで動物細胞で発現できるベクターであればいずれでもよく、そのようなベクターとしてｐｃＤＮＡ１．１、ｐｃＤＮＡ１．１／Ａｍｐ、ｐＣＤＭ８、ｐＲＥＰ（インビトロジェン社製）、ｐＨＭ６、ｐＨＢ６（ロシュダイアグノスティックス社製）、ｐＫＫ２２３−３、ｐＧＥＸ（アマシャムバイオテク社製）、ｐＥＴ−３、ｐＥＴ−１１、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（＋）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（−）（ストラタジーン社製）、ｐＵＣ１９、ｐＴｒｘＦｕｓ（インビトロジェン社製）、ｐＵＣ１１８、ｐＳＴＶ２８（宝酒造社製）、ｐＭＡＬ−ｃ２Ｘ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏＬａｂｓ社製）、ｐＡＧＥ１０７（Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３（２），１３３−１４０（１９９０）．；特開平３−２２９７９）、ｐＡＧＥ１０３（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１０１（５），１３０７−１３１０（１９８７）．）、ｐＡＭｏ、ｐＡＭｏＡ（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２６８（３０），２２７８２−２２７８７（１９９３）．）、ｐＡＭｏＰＲＳＡ（特開平５−３３６９６３）、ｐＡＳ３−３（特開平２−２２７０７５）などを用いることができる。
該発現ベクターの宿主への導入方法としてはＤＮＡを導入する方法であればいずれの方法も用いることができる。宿主が動物細胞である場合、エレクトロポレーション法（Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３（２），１３３−１４０（１９９０）．）、リン酸カルシウム法（特開平２−２２７０７５）、リポフェクション法（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８４，７４１３（１９８７）．；Ｖｉｌｏｌｏｇｙ，５２，４５６（１９７３）．）に記載の方法が例示される。
宿主としては発現ベクターに対応する適当な細胞または組織を用いることが可能で、例えば、動物細胞などが挙げられる。宿主に用いる動物細胞としては、ヒト由来株細胞のＮａｍａｌｗａ（バーキットリンパ腫、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１４３２）およびそのサブラインＮａｍａｌｗａＫＪＭ−１、ＨＣＴ−１５（ヒト大腸癌細胞、ＡＴＣＣ：ＣＣＬ−２２５）、サル由来株細胞のＣＯＳ−１（アフリカミドリザル腎細胞（ＳＶ４０形質転換細胞）、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１６５０）およびＣＯＳ−７（アフリカミドリザル腎細胞（ＳＶ４０形質転換細胞）、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１６５１）、ハムスター由来株細胞のＣＨＯ−Ｋ１（チャイニーズハムスター卵巣細胞、ＡＴＣＣ：ＣＣＬ−６１）およびＨＢＴ５６３７（特開昭６３−２９９）などが例示される。
本発明の形質転換体は、当該分野において周知慣用の常法により培養する。形質転換した宿主に適した培地を用いて行うことができ、培養に使用される培地としては液体培地が適当である。具体的には、ＭＥＭ培地（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１３０，４３２（１９５９）．）、Ｄ−ＭＥＭ培地（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，８，３９６（１９５９）．）、ＲＰＭＩ１６４０培地（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆｔｈｅＡｍｅｒｉｃａｎＭｅｄｉｃａｌＡｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ，１９９，５１９（１９６７）．）、ＹＴ培地、ＢＥＭ培地などが用いられる。宿主が動物細胞である形質転換体を培養する際の培地としては、例えば、ＭＥＭ培地、Ｄ−ＭＥＭ培地、ＲＰＩＭ培地などにウシ胎児血清（ＦＣＳ）を適量添加したものなどが用いられる。必要により発現ベクターのプロモーターの転写活性を高めるために、転写活性を促進する物質を含んでいてもよく、例えば、イソプロピル−１−チオ−β−Ｄ−ガラクトピラノシン（ＩＰＴＧ）などを用いることができる。
培地には形質転換体が生育するのに必要な栄養素、例えば、グルコース、アミノ酸、ペプトン、ビタミン類、ホルモン類、血清、好ましくは、ＦＣＳ、塩化カルシウム、塩化マグネシウムなどが含有されており、その様な培地であればどのような組成の培地でも用いることができ、市販されている培地も用いることができる。培養はｐＨ６．０〜８．０、２５〜４０℃、５％ＣＯ_２存在下などの条件で行う。
所望のＤＮＡはＮｏｇｏ受容体が有する神経細胞の軸索伸展活性を指標にし、該形質転換体によって産生されたタンパク質をスクリーニングすることによって選択することができる。神経細胞の軸索伸展活性とは、神経細胞の軸索の成長円錐の形態変化をもたらし、該細胞の軸索の伸展を抑制させる活性を指す。該活性は、例えば、顕微鏡による神経細胞の形態学的観察や、成長円錐の分化マーカー、例えば、ＧＡＰ４３（ＣＥＬＬ，８３，２６９−２７８（１９９５）．、Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９，５４２−５４４（１９７８）．）の発現量を測定することにより検出することが可能である。
以上のようにして、脳および骨格筋由来のラット組織、または、脳およ骨格筋由来のヒト組織より、神経細胞の軸索伸展に関与するＮｏｇｏ受容体活性を有する新規ポリペプチドをコードするＤＮＡを取得することができる。
また、上記方法で取得したＤＮＡとストリンジェントな条件でハイブリダイズするＤＮＡを選択することにより、配列番号２記載のアミノ酸配列と比較して、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加から選ばれる少なくとも１つの変異を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードするＤＮＡを取得することができる。即ち、非ヒト動物、例えば、マウス、ラット、ウシ、サルなど由来のｃＤＮＡライブラリーに対してストリンジェントな条件でハイブリダイズするＤＮＡを選択することにより、目的のＤＮＡを取得することができる。
スクリーニングされた新規Ｎｏｇｏ受容体ポリペプチドのアミノ酸配列に基づいて、該ポリペプチドをコードするＤＮＡを化学合成することによっても目的のＤＮＡを調製することができる。ＤＮＡの化学合成はりん酸トリエステル法、ホスホロアミダイト法、ホスホン酸エステル法などの方法により行うことができがＡＢＩ３９２（アプライドバイオシステムズ社製）などの市販の市販の合成機器を用いて行うこともできる。
また、後述のオリゴヌクレオチドをセンスプライマーおよびアンチセンスプライマーとして用い、これらＤＮＡに相補的なｍＲＮＡを発現している細胞のｍＲＮＡから調製したｃＤＮＡを鋳型として、ＰＣＲを行うことによっても、目的とするＤＮＡを調製することができる。
（２）本発明のポリペプチドの製造本発明のポリペプチドは、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）やＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（１９９４）（Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）などに記載された方法を用い、本発明のポリヌクレオチドを宿主細胞中で発現させ、製造することができる。
本発明のポリペプチドをコードする全長ＤＮＡを基に、必要に応じて、該ポリペプチドをコードする部分を含む適当な長さのＤＮＡ断片を調製する。また、該ポリペプチドをコードする部分の塩基配列は、宿主の発現に最適なコドンとなるようにしたものを調製する。該ＤＮＡは該ポリペプチドの生産率を向上させるうえで有用である。該ＤＮＡ断片または全長ＤＮＡは適当な発現ベクターのプロモーターの制御下に挿入し、組換え体ＤＮＡ（組換えベクター）を作製する。該組換えベクターはそれに適合した宿主に導入することにより、本発明のポリペプチドを産生する形質転換体を得ることができる。
宿主としては、大腸菌属などの原核生物、酵母などの単細胞真核生物、動物細胞、昆虫細胞、植物細胞などの多細胞真核生物など目的とする遺伝子を発現できるものであればいずれも用いることができる。また、動物個体や植物個体を用いることができる。発現ベクターは、宿主において自立複製または染色体中への組込みが可能で、新規Ｎｏｇｏ受容体遺伝子の転写に適した位置にプロモーターを含有しているものが用いられる。
（ｉ）原核生物を宿主として用いる場合
新規Ｎｏｇｏ受容体遺伝子の発現ベクターは、原核生物中で自立複製可能であると同時に、プロモーター、リボソーム結合配列、新規Ｎｏｇｏ受容体遺伝子、転写終結配列、より構成されていることが好ましい。プロモーターを制御する遺伝子が含まれていてもよい。発現ベクターとしては、例えば、ｐＨＭ６、ｐＨＢ６（ロシュダイアグノスティックス社製）、ｐＫＫ２２３−３、ｐＧＥＸ（アマシャムバイオテク社製）、ｐＳＥ２８０、ｐＴｒｘＦｕｓ、ｐＵＣ１９（インビトロジェン社製）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（＋）、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩＳＫ（−）、ｐＥＴＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＳｙｓｔｅｍ（ストラタジーン社製）、ｐＧＥＭＥＸ−１（プロメガ社製）、ｐＱＥ−８（キアゲン社製）、ｐＭＡＬ−ｃ２Ｘ（ＮｅｗＥｎｇｌａｎｄＢｉｏｌａｂｓ社製）、ｐＫＹＰ１０（特開昭５８−１１０６００）、ｐＫＹＰ２００（ＡｇｒｉｃａｕｌｔｕｒａｌＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，４５，６６９（１９８４）．）、ｐＬＳＡ１（ＡｇｒｉｃａｕｌｔｕｒａｌＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，５３，２７７（１９８９）．）、ｐＧＥＬ１（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８２，４３０６（１９８５）．）、ｐＥＧ４００（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，１７２，２３９２（１９９０）．）、ｐＴｅｒｍ２（特開平３−２２９７９）、ｐＰＡ１（特開昭６３−２３３７９８）、ｐＴｒｓ３０（ＦＥＲＭＢＰ−５４０７）、ｐＴｒｓ３２（ＦＥＲＭＢＰ−５４０８）、ｐＧＨＡ２（ＦＥＲＭＢＰ−４００）、ｐＧＫＡ２（ＦＥＲＭＢ−６７９８）などを例示することができる。
プロモーターとしては、宿主中で発現できるものであればいかなるものでもよい。例えば、ｔｒｐプロモーター（Ｐｔｒｐ）、ｌａｃプロモーター（Ｐｌａｃ）、ＰＬプロモーター、ＰＲプロモーター、ＰＳＥプロモーターなどの大腸菌やファージに由来するプロモーター、ＳＰＯ１プロモーター、ＳＰＯ２プロモーター、ｐｅｎＰプロモーターなどを挙げることができる。また、Ｐｔｒｐを２つ直列させたＰｔｒｐｘ２プロモーター、ｔａｃプロモーター、ｌａｃＴ７、ｌｅｔプロモーターのように人為的に設計改変されたプロモーターなども用いることができる。
リボソーム結合配列であるシャイン・ダルガーノ（ＳＤ：ＳｈｉｎｅＤａｌｇａｒｎｏ）配列と開始コドンとの間を適当な距離、例えば６〜１８塩基、に調節したプラスミドを用いることが好ましい。本発明のポリヌクレオチドの発現には転写終結配列は必ずしも必要ではないが、構造遺伝子直下に転写終結配列を配置することが好ましい。
宿主としては、例えば、Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ属、Ｓｅｒｒａｔｉａ属、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属、Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属などの原核生物が挙げられる。Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ属として、Ｅ．ｃｏｌｉのＸＬ１−Ｂｌｕｅ株、ＸＬ２−Ｂｌｕｅ株、ＤＨ１株、ＭＣ１０００株、ＫＹ３２７６株、Ｗ１４８５株、ＪＭ１０９株、ＨＢ１０１株、Ｎｏ．４９株、Ｗ３１１０株、ＮＹ４９株、ＢＬ２１（ＤＥ３）株、ＢＬ２１（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ株、ＨＭＳ１７４（ＤＥ３）株およびＨＭＳ１７４（ＤＥ３）ｐＬｙｓＳ株などが、Ｓｅｒｒａｔｉａ属として、Ｓ．ｆｉｃａｒｉａ株、Ｓ．ｆｏｎｔｉｃｏｌａ株、Ｓ．ｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ株、Ｓ．ｍａｒｃｅｓｃｅｎｓ株などが、Ｂａｃｉｌｌｕｓ属として、Ｂ．ｓｕｂｔｉｌｉｓ株、Ｂ．ａｍｙｌｏｌｉｑｕｅｆａｃｉｅｎｓ株などが、Ｂｒｅｖｉｂａｃｔｅｒｉｕｍ属として、Ｂ．ａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅｓ株、Ｂ．Ｉｍｍａｒｉｏｐｈｉｌｕｍ（ＡＴＣＣ：１４０６８）株、Ｂ．ｓａｃｃｈａｒｏｌｙｔｉｃｕｍ（ＡＴＣＣ：１４０６６）株などが、Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ属として、Ｃ．ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ（ＡＴＣＣ：１３０３２）株、Ｃ．ｇｌｕｔａｍｉｃｕｍ（ＡＴＣＣ：１４０６７）株、Ｃ．ｇｕｌｕｔａｍｉｃｕｍ（ＡＴＣＣ：１３８６９）株、Ｃ．ａｃｅｔｏａｃｉｄｏｐｈｉｌｕｍ（ＡＴＣＣ：１３８７０）株などが、Ｍｉｃｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ属として、Ｍ．ａｍｍｏｎｉａｐｈｉｌｕｍ（ＡＴＣＣ：１５３５４）株などが、Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ属として、Ｓ．ｍｅｐｈｉｔｉｃａ株などが例示される。
組換えベクターの導入方法としては、宿主へＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法（ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓｅａｒｃｈ，１６，６１２７（１９８８）．）、りん酸カルシウム法（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，６９，２１１０（１９７２）．）、プロトプラスト法（特開昭６３−２４８３９４２）、Ｇｅｎｅ，１７，１０７（１９８２）．やＭｏｌｅｃｕｌａｒ＆ＧｅｎｅｒａｌＧｅｎｅｔｉｃｓ，１６８，１１１（１９７９）．に記載の方法などがあげられる。
（ｉｉ）酵母を宿主として用いる場合
宿主として酵母を用いる場合、発現ベクターとして、例えば、ＹＥｐ１３（ＡＴＣＣ：３７１１５）、ＹＥｐ２４（ＡＴＣＣ：３７０５１）、ＹＣｐ５０（ＡＴＣＣ：３７４１９）、ｐＨＳ１９、ｐＨＳ１５などが挙げられる。
プロモーターとしては、酵母中で発現できるものであればいずれのものでもよく、例えば、ＡＤＨ１（アルコールデヒドロゲナーゼ）プロモーター、ＰＨＯ５（酸性フォスファターゼ）プロモーター、ＰＧＫ１（ホスホグリセリン酸キナーゼ）プロモーター、ＧＡＰＤＨ（グリセルアルデヒド３−リン酸デヒドロゲナーゼ）プロモーター、ＧＡＬ１（ガラキトースキナーゼ）プロモーター、ＧＡＬ１０（ＵＤＰガラクトース４−エピメラーゼ）プロモーター、ＭＦα１（αフェロモン）プロモーター、ＣＵＰ１（メタロチオネイン）プロモーターなどが挙げられる。
宿主としては、例えば、Ｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｓ．ｃｅｒｅｖｉｓｉａｅ種、Ｓｃｈｉｚｏｓａｃｃｈａｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｓ．ｐｏｍｂｅ種、Ｋｌｕｙｖｅｒｏｍｙｃｅｓ属、Ｋ．ｌａｃｔｉｓ種、Ｔｒｉｃｈｏｓｐｏｒｏｎ属、Ｔ．ｐｕｌｌｕｌａｎｓ種、Ｓｃｈｗａｎｎｉｏｍｙｃｅｓ属、Ｓ．ａｌｌｕｖｉｕｓ種およびＰｉｃｈｉａ属、Ｐ．ｐａｓｔｏｒｉｓ種などが挙げられる。
組換えベクターの導入方法としては、宿主にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法（ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，１９４，１８２（１９９０）．）、スフェロプラスト法（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８４，１９２９（１９７８）．）、酢酸リチウム法（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ，１５３，１６３（１９８３）．およびＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，７５，１９２９（１９７８）．）記載の方法などが挙げられる。
（ｉｉｉ）動物細胞を宿主として用いる場合
宿主として動物細胞を用いる場合、発現ベクターとして、例えば、ｐｃＤＮＡ１／Ａｍｐ、ｐｃＤＮＡ３、ｐＣＤＭ８、ｐＲＥＰ４（インビトロジェン社製）、ｐＡＧＥ１０７（Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３，１３３（１９９０）．）、ｐＡＧＥ１０３（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１０１，１３０７（１９８７）．）、ｐＡＭｏ、ｐＡＭｏＡ（ｐＡＭｏＰＲＳＡ）（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２６８，２２７８２−２２７８７（１９９３）．）、ｐＣＬＸＳＮ、ｐＣＬＮＣＸ（ＩＭＧＥＮＥＸ社）、ｐＡＳ３−３（特開平２−２２７０５）などを用いることができる。
プロモーターとしては、宿主中で発現できるものであればいずれも用いることができ、例えば、ヒトサイトメガロウイルス（ｈＣＭＶ）のＩＥ（Ｉｍｅｄｉａｔｅ−ｅａｒｌｙ）遺伝子のプロモーター、ＳＶ４０の初期プロモーター、モロニー・ミュリン・ロイケミア・ウイルス（ＭｏｌｏｎｅｙＭｕｒｉｎｅＬｅｕｌｅｍｉａＶｉｒｕｓ）のロング・ターミナル・リピート・プロモーター（ＬｏｎｇＴｅｒｍｉｎａｌＲｅｐｅａｔＰｒｏｍｏｔｅｒ）、レトロウイルスのプロモーター、ＨＳＰプロモーター、ＳＲαプロモーターおよびメタロチオネインのプロモーターなどを挙げることができる。また、ヒトＣＭＶのＩＥ遺伝子のエンハンサーをプロモーターと共に用いてもよい。
宿主に用いる動物細胞としては、ヒト由来株細胞のＨＥＫ２９３（ヒト胎児腎細胞、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１５７３）、ＨｅＬａ（子宮頚部癌細胞、ＡＴＣＣ：ＣＣＬ−２）ＨＢＴ５６３７（白血病細胞、特開昭６３−２９９）、ＢＡＬＬ−１（白血病細胞）およびＨＣＴ−１５（大腸癌細胞）、マウス由来株細胞のＳｐ２／０−Ａｇ１４（マウス骨髄種細胞、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１５８１）およびＮＳＯ（マウス骨髄種細胞）、サル由来株細胞のＣＯＳ−１（アフリカミドリザル腎細胞（ＳＶ４０形質転換細胞）、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１６５０）およびＣＯＳ−７（アフリカミドリザル腎細胞（ＳＶ４０形質転換細胞）、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１６５１）、ハムスター由来株細胞のＣＨＯ−Ｋ１（チャイニーズハムスター卵巣細胞、ＡＴＣＣ：ＣＣＬ−６１）およびＢＨＫ−２１（Ｃ−１３）（シシリアンハムスター仔腎細胞、ＡＴＣＣ：ＣＣＬ−１０）、ラット由来株細胞のＰＣ１２（副腎褐色細胞腫、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１７２１）およびＹＢ２／０（ラット骨髄種細胞、ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１６６２）などを例示することができる。
組換えベクターの導入方法としては、宿主にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、エレクトロポレーション法（Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３，１３３，（１９９０）．）、リン酸カルシウム法（特開平２−２２７０５）、リポフェクション法（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓ，ＵＳＡ，８４，７４１３（１９８７）．、Ｖｉｌｏｌｏｇｙ，５２，４５６（１９７３）．）。
（ｉｖ）昆虫細胞を宿主として用いる場合
宿主として昆虫細胞を用いる場合、トランスファーベクターとしては、例えば、ｐＶＬ１３９２、ｐＶＬ１３９３、ｐＢｌｕｅＢａｃＩＩＩ（インビトロジェン社製）などが、感染用ウイルスとしては、例えば、ヨトウガ科昆虫に感染するバキュロウイルス（Ｖａｃｕｌｏｖｉｒｕｓ）Ａｕｔｏｇｒａｐｈａｃａｌｉｆｏｒｎｉａｎｕｃｌｅａｒｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓｖｉｒｕｓ（ＡｃＭＮＰＶ）Ｂａｃ−Ｎ−ＢｌｕｅＤＮＡなどが挙げられる。昆虫細胞の形質転換の方法は、例えば、ＢａｃｕｌｏｖｉｒｕｓＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＶｅｃｔｏｒ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ（１９９２）（Ｗ．Ｈ．ＦｒｅｅｍａｎａｎｄＣｏｍｐａｎｙ）、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（１９９４）（Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）、ＢｉｏＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，６，４７（１９８８）．などに記載の方法が用いれる。
昆虫細胞培養液に目的遺伝子を含むトランスファーベクターおよび昆虫細胞への感染用のバキュロウイルスＤＮＡを添加し、組換えにより作製された目的遺伝子を発現するウイルスが昆虫細胞に感染することによりポリペプチドを発現することができる。
宿主に用いる昆虫細胞としては、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ（ヨトウガ）由来株細胞、Ｔｒｉｃｈｏｐｌｕｓｉａｎｉ（イラクサキンウワバ）由来株細胞などが挙げられ、具体的には、Ｓ．ｆｒｕｇｉｐｅｒｄａ由来細胞としては、Ｓｆ９（ＡＴＣＣ：ＣＲＬ−１７１１、卵巣細胞）、Ｓｆ２１（卵巣細胞）などが、Ｔ．ｎｉ由来細胞株としては、ＨｉｇｈＦｉｖｅ、ＢＴＩ−ＴＮ−５Ｂ１−４（卵細胞）（インビトロジェン社製）などが例示される。
組換えベクターの導入方法としては、宿主に導入できる方法であればいずれも用いることができ、例えば、リン酸カルシウム法（特開平２−２２７０５）、リポフェクション法（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｃｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８４，７４１３（１９８７）．）などを挙げることができる。また、動物細胞と同様に、エレクトロポレーション法（Ｃｙｔｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，３，１３３（１９９０）．）なども用いることができる。
（ｖ）植物細胞を宿主細胞として用いる場合
宿主として植物細胞または植物個体を用いる場合、公知の方法（組織培養，２０（１９９４）．、組織培養，２１（１９９５）．、ＴｒｅｎｄｓｉｎＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，１５、４５（１９９７）．）に準じてポリペプチドを生産することができる。発現ベクターとしては、例えば、Ｔｉプラスミド、タバコモザイクウイルスベクターなどを挙げることができる。遺伝子発現に用いるプロモーターとしては、植物細胞中で発現できるものであればいずれも用いることができ、例えば、カリフラワーモザイクウイルス（ＣａＭＶ）の３５Ｓプロモーター、イネアクチン１プロモーターなどを挙げることができる。また、プロモーターと発現させる遺伝子の間に、トウモロコシのアルコール脱水素酵素遺伝子のイントロン１などを挿入することにより、遺伝子の発現効率をあげることもできる。
宿主としては、ポテト、タバコ、トウモロコシ、イネ、アブラナ、大豆、トマト、ニンジン、小麦、大麦、ライ麦、アルファルファ、亜麻などの植物細胞が例示される。
組換えベクターの導入方法としては、宿主にＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができ、例えば、アグロバクテリウム（Ａｇｒｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）を用いる方法（特開昭５９−１４０８８５、特開昭６０−７００８０、ＷＯ９４／００９７７）、エレクトロポレーション法（特開昭６０−２５１８８７）、パーティクルガン（遺伝子銃）法（特許第２６０６８５６号、特許第２５１７８１３号）などを挙げることができる。
（ｖｉ）培養方法
本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡを組み込んだ組換え体ベクターを保有する形質転換体が、大腸菌、酵母、動物細胞あるいは植物細胞などの細胞の場合、各種宿主に適した通常の培養方法に従って培養し、該ポリペプチドを産生・蓄積させ、形質転換体または培養液より該ポリペプチドを回収することにより、該ポリペプチドを製造することができる。形質転換体が、動物個体または植物個体の場合、各種宿主に適した通常の生育方法に従って飼育または栽培し、該ポリペプチドを産生・蓄積させ、該動物個体または植物個体より該ポリペプチドを回収することにより、該ポリペプチドを製造することができる。
宿主が動物個体の場合、例えば、本発明のポリヌクレオチドを保有する非ヒトトランスジェニック動物を飼育し、該組換え体ＤＮＡのコードする新規Ｎｏｇｏ受容体活性を有するポリペプチドを該動物中に産生・蓄積させ、該動物個体中から該ポリペプチドを回収することにより、新規Ｎｏｇｏ受容体活性を有するポリペプチドを製造することができる。動物個体中の産生・蓄積場所としては、例えば、該動物のミルク、唾液、卵などを挙げることができる。
宿主が植物個体の場合、例えば、本発明のポリヌクレオチドを保有するトランスジェニック植物を栽培し、該組換え体ＤＮＡのコードする新規Ｎｏｇｏ受容体活性を有するポリペプチドを該植物個体中に産生・蓄積させ、植物個体中から該ポリペプチドを回収することにより、新規Ｎｏｇｏ受容体活性を有するポリペプチドを製造することができる。
宿主が大腸菌などの原核生物または酵母などの真核生物である場合、例えば、本発明のポリヌクレオチドを保有する形質転換体を培地中で培養し、該組換え体ＤＮＡのコードする新規Ｎｏｇｏ受容体活性を有するポリペプチドを培養液に産生・蓄積させ、該培養液から該ポリペプチドを回収することにより、本発明のポリペプチドを製造することができる。
本発明の形質転換体を培地で培養する方法は、宿主の培養に用いられる通常の方法に従って行うことができる。
形質転換体が大腸菌などの原核生物あるいは酵母などの真核生物である場合、得られた形質転換体を培養する培地としては、宿主が資化し得る炭素源、窒素源、無機塩類などを含有し、形質転換体の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。宿主が大腸菌である形質転換体を培養する際の培地としては、例えば、バクトトリプトン、イーストエクストラクトおよび塩化ナトリウムを含むＹＴ培地が好ましい。
炭素源としては、それぞれの宿主が資化し得るものであればよく、グルコース、フラクトース、スクロース、これらを含有する糖蜜、デンプンあるいはデンプン加水分解物などの炭水化物、酢酸、プロピオン酸などの有機酸、エタノール、プロパノールなどのアルコール類を用いることができる。
窒素源としては、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム、リン酸アンモニウムなどの各種無機酸や有機酸のアンモニウム塩、その他含窒素物質、並びに、ペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕および大豆粕加水分解物、各種発酵菌体およびその消化物などを用いることができる。
無機塩としては、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅、炭酸カルシウムなどを用いることができる。
培養方法は、振盪培養または深部通気攪拌培養などの好気的条件で行う。培養温度、培養時間および培養液のｐＨは、各種宿主に適した範囲に設定し、通常１５〜４０℃、５時間〜７日間、ｐＨ３．０〜９．０で培養を行う。ｐＨの調整は、無機あるいは有機の酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム、アンモニアなどを用いて行うことができる。また、必要に応じて、アンピシリンやテトラサイクリンなどの抗生物質を培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した宿主を培養する場合、イソプロピル−β−Ｄ−チオガラクトピラノシドなどを、ｔｒｐプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した宿主を培養する場合、インドールアクリル酸などを培地に添加してもよい。
形質転換体が植物細胞や組織である場合、ジャーファーメンターを用いて大量培養することができる。培養する培地としては、一般に使用されているムラシゲ・アンド・スクーグ（ＭＳ）培地、Ｗｈｉｔｅ培地、またはこれら培地にオーキシン、サイトカイニンなどの植物ホルモンを添加した培地を用いることができる。
形質転換体が動物細胞や組織である場合、培養する培地としては、一般に使用されているＲＰＭＩ１６４０培地（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆｔｈｅＡｍｅｒｉｃａｎＭｅｄｉｃａｌＡｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ，１９９，５１９（１９６７）．）、ＭＥＭ培地（Ｓｃｉｅｎｃｅ，１３０，４３２（１９５９）．）、Ｄ−ＭＥＭ培地（Ｖｉｒｏｌｏｇｙ，８，３９６（１９５９）．）、１９９培地（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＳｏｃｉｅｔｙｆｏｒｔｈｅＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＭｅｄｉｃｉｎｅ，７３，１（１９５０）．）またはこれら培地に牛胎児血清（ＦＣＳ）などを添加した培地などが用いられる。
培養は、通常ｐＨ６〜８、２５〜４０℃、５％ＣＯ_２存在下などの条件で１〜７日間行う。また培養中必要に応じて、カナマイシン、ペニシリン、ストレプトマイシンなどの抗生物質を培地に添加してもよい。
形質転換体が昆虫細胞である場合、培養する培地としては、一般に使用されているＴＮＭ−ＦＨ培地（ファーミンジェン社製）、Ｓｆ−９００ＩＩＳＦＭ培地（インビトロジェン社製）、ＥｘＣｅｌｌ４００、ＥｘＣｅｌｌ４０５（ＪＲＨバイオサイエンシーズ社製）、Ｇｒａｃｅ’ｓＩｎｓｅｃｔＭｅｄｉｕｍ（Ｎａｔｕｒｅ，１９５，７８８（１９６２）．）などを用いることができる。
（ｖｉｉ）製造方法
本発明のポリペプチドは、形質転換体を培養し、培養液から本発明のポリペプチドを単離・精製することにより製造することができる。本発明のポリペプチドの単離・精製方法は、当該分野において周知慣用の常法により行うことができ、例えば、酵素の単離・精製方法やＳａｎｄｌｅｒらの糖転移酵素の精製方法（ＭｅｔｈｏｄｓｉｎＥｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，８３，４５８）を用いることができる。
本発明のポリペプチドが溶解性ポリペプチドとして産生・蓄積される場合、上記のように形質転換体を培養した培養液を、例えば、速心分離などの方法で細胞または菌体と培地に分離する。本発明のポリペプチドが宿主細胞内に存在する場合、採取した細胞または菌体をＳＴＥ溶液などの適当な緩衝液で洗浄した後、超音波、フレンチプレス、マントンガウリンホモジナイザー、ダイノミルなどで細胞または菌体を破砕し、遠心分離やろ過により無細胞溶液として得ることができる。
本発明のポリペプチドの分離・精製に用いる緩衝液には界面活性剤が適量含まれていてもよく、例えば、ラウリル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）やＮ−ラウロイルサルコシンナトリウム（サルコシル）などを含んでいてもよい。
得られた粗精製物に含まれる目的タンパク質の分離・精製方法は自体公知の各種分離・精製方法を組合わせて行うことができる。これらの公知の方法としては、例えば、溶媒抽出法、硫酸アンモウニウムなどによる塩析法、透析法、有機溶媒による沈殿法、限外濾過法、ゲル濾過、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）−セファロースクロマトグラフィー、ＤＩＡＩＯＮＨＰＡ−７５（三菱化学社製）などのリジンを用いた陰イオンクロマトグラフィーやイオン交換クロマトグラフィー、Ｓ−ＳｅｐｈａｒｏｓｅＦＦ（ファルマシア社製）などのリジンを用いた陽イオンクロマトグラフィー、ブチルセファロースなどの疎水性クロマトグラフィーやアフィニティークロマトグラフィーなどの各種クロマトグラフィー法、ＳＤＳ−ポリアクリルアミドゲル電気泳動法や等電点電気泳動法などの各種電気泳動などが例示される。アフィニティークロマトグラフィーは、本発明のポリペプチドに対する抗体を用いることによっても行うことができる。
本発明のポリペプチドが不溶性ポリペプチドとして産生・蓄積される場合、上記同様に細胞または菌体を分離し、適当な方法により破砕後、該ポリペプチドを含む分画を回収する。回収した試料は、ラウリル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ）やＮ−ラウロイルサルコシンナトリウム（サルコシル）などの界面活性剤などの可溶化剤で可溶化する。該可溶化液は、可溶化剤を含まないか殆ど含まれない濃度にまで希釈または透析し、該ポリペプチドを正常な立体構造に構成させた後、上記と同様の分離・精製方法により精製標品を得ることができる。
また、本発明のポリペプチドを他のタンパク質との融合タンパク質として生産し、融合したタンパク質に親和性をもつ物質を用いたアフィニティークロマトグラフィーを利用して精製することもできる（山川彰夫，実験医学，１３，４６９−４７４（１９９５）．）。融合タンパク質に使用する付加タンパク質としてはプロテインＡ、ＦＬＡＧなどが例示される（ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８６，８２２７（１９８９）．、ＧｅｎｅｓＤｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，４，１２８８（１９９０）．、特開平５−３３６９６３、特開平６−８２３０２１）。プロテインＡを使用する場合、本発明のポリペプチドとプロテインＡの融合タンパク質を生産し、イムノグロブリンＧを用いてアフィニティークロマトグラフィーを行うことにより精製することができる。ＦＬＡＧペプチドを使用する場合、本発明のポリペプチドととＦＬＡＧの融合タンパク質を生産し、抗ＦＬＡＧ抗体を用いてアフィニティークロマトグラフィーを行うことにより精製することができる。
本発明のポリペプチドは、公知の方法に準じて、ｉｎｖｉｔｒｏ転写・翻訳系を用いてを生産することができる（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｍｏｌｅｃｕｌａｒＮＭＲ，６，１２９−１３４（１９９５）．、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４２，１１６２−１１６４（１９８８）．、ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ，１１０，１６６−１６８（１９９１）．）。
本発明のポリペプチドは、そのアミノ酸配列を基に、Ｆｍｏｃ法（フルオレニルメチルオキシカルボニル法）、ｔＢｏｃ法（ｔ−ブチルオキシカルボニル法）などの化学合成法や市販されているペプチド合成機器、例えば、ＡＰＥＸ３９６（アドバンストケムテック社製）、４３３Ａ（アプライドバイオシステムズ社製）、ＰＳ３（プロテインテクノロジーズ社製）、９０５０（パーセプティブ社製）、ＰＳＳＭ−８（島津製作所製）などのペプチド合成機器をにより化学合成することができる。
本発明のポリペプチドの構造解析は、蛋白質化学で通常用いられる方法、例えば、遺伝子クローニングのためのタンパク質構造解析（平野久著、東京化学同人発行、１９９３年）に記載の方法により実施可能である。本発明のポリペプチドのＮｏｇｏ受容体活性は、公知の測定法（ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２５８，９８９３−９８９８（１９８３）．、ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２６２，１５６４９−１５６５８（１９８７）．、ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２７３，５８−６５（１９９８）．、ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２７３，４３３−４４０（１９９８）．、ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｙｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２７３，１２７７０−１２７７８（１９９８）．、ＡｒｃｈｉｖｅｓｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙａｎｄＢｉｏｐｈｙｓｉｃｓ，２７０，６３０−６４６（１９８９）．、ＡｒｃｈｉｖｅｓｏｆＢｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙａｎｄＢｉｏｐｈｙｓｉｃｓ，２７４，１４−２５（１９８９）．、特開平６−１８１７５９）に準じて測定することができる。
（３）変異型ポリペプチドの作製方法
本発明ポリペプチドのアミノ酸の欠失、置換若しくは付加は、出願前周知技術である部位特異的変異誘発法により実施することができる。１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換若しくは付加は、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ．）、ＣｕｒｒｅｎｔＰｒｏｔｏｃｏｌｓｉｎＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ（１９９４）（Ｗｉｌｅｙ−Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ）、ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓＲｅｓｅａｒｃｈ，１０，６４８７（１９８２）．、ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，７９，６４０９（１９８２）．、Ｇｅｎｅ，３４，３１５（１９８５）．、ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄｓｒｅｓｅａｒｃｈ，１３，４４３１（１９８５）．、ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８２，４８８（１９８５）．、ＰｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓｏｆｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌＡｃａｄｅｍｙｏｆＳｃｉｅｎｃｅｓＵＳＡ，８１，５６６２（１９８４）．、Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２４，１４３１（１９８４）．、ＷＯ８５／００８１７、Ｎａｔｕｒｅ，３１６，６０１（１９８５）．などに記載の方法に準じて調製することができる。
（４）本発明のポリペプチドを認識する抗体の作製
（ｉ）ポリクローナル抗体の作製
本発明のポリペプチドの全長、その部分ペプチドもしくはその部分ペプチド含むポリペプチドを抗原として哺乳動物に投与することで抗体を作製することができる。抗原は、それ自体でもよいが、担体、例えば、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、スカシガイのヘモシアニン（ｋｅｙｈｏｌｅｌｉｍｐｅｔｈｅｍｏｃｙａｎｉｎ；ＫＬＨ）や牛チログロブリン（ＢＴＧ）などに結合したものを用いてもよい。また、抗原による免疫反応を高めるために、例えば、フロイントの完全アジュバント（ＣＦＡ）および不完全アジュバント（ＩＦＡ）を投与してもよい。免疫に用いられる哺乳動物としてはマウス、ラット、ウサギ、ヤギ、ハムスターなどを用いることができる。
ポリクローナル抗体は、例えば、レーンらの方法（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｅｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ））などに従って作製することができる。
哺乳動物に抗原を１回目の投与後、１〜２週間毎に３〜１０回投与することで免疫された哺乳動物を得て、それらの哺乳動物から血清を採取し、精製することで作製できる。
該抗原の投与は、１回目の投与の後１〜２週間おきに３〜１０回行う。該抗原の投与量は１回当たり動物１匹に対し、５０〜１００μｇが好ましい。ペプチドを用いる場合は、適当な担体に共有結合させたものを抗原とするのが望ましい。抗原とするペプチドは、遺伝子工学的手法やペプチド合成機で合成することができる。各投与後、３〜７日目に眼底静脈叢より採血し、該血清が免疫に用いた抗原と反応することを酵素免疫測定法（酵素免疫測定法（ＥＬＩＳＡ法）：医学書院刊（１９７６年）、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）などに記載の方法で確認することができる。
免疫された哺乳動物から採血し、抗体価を測定する。十分な抗体価が得られるまでに免疫された時点で採血し、血清を調製することによりポリクローナル抗体を得ることができる。ポリクローナル抗体の分離、精製方法としては、遠心分離、硫酸アンモニウムによる塩析、カプリル酸沈殿（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）またはＤＥＡＥ−セファロースカラム、陰イオン交換カラム、プロテインＡカラム、Ｇ−カラムあるいはゲル濾過カラムなどの各種クロマトグラフィーを単独または組み合わせることで行うことができる。
（ｉｉ）モノクローナル抗体の作製
（ａ）抗体産性細胞の調製
モノクローナル抗体は、（ｉ）で十分な抗体価が得られたのち、それらの哺乳動物から脾臓またはリンパ節を採取し、それらから得られた抗体産生細胞を骨髄腫（ミエローマ）細胞と融合させることにより、モノクローナル抗体産生ハイブリドーマを得ることができる。骨髄種細胞としては、マウスまたはラットから樹立した細胞株を用いる。細胞融合の方法は既知の方法で行うことができ、例えば、ケーラーとミルスタインの方法（Ｎａｔｕｒｅ，２５６，４９５−４９７（１９７５）．）に従って作製することができる。
本発明のポリペプチド、その部分ペプチドもしくはその部分ペプチドを含むポリペプチドを投与して、十分な抗体価を示したラットに抗原物質を最終投与した後３〜７日目に、抗体産生細胞として脾臓を摘出する。該脾臓をＭＥＭ培地（日水製薬社製）中で細断し、ピンセットでほぐし、１，２００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、沈殿分画を得る。得られた沈殿画分の脾細胞をＴｒｉｓ−塩化アンモニウム緩衝液（ｐＨ７．６５）で１〜２分間処理し赤血球を除去した後、ＭＥＭ培地で３回洗浄し、得られた脾細胞を抗体産生細胞として用いる。
（ｂ）骨髄腫細胞の調製
骨髄腫細胞としては、マウスまたはラットから由来の株化細胞を使用し、そのような細胞として、例えば、８−アザグアニン耐性マウス（ＢＡＬＢ／ｃ由来）骨髄腫細胞Ｐ３−Ｘ６３Ａｇ８−Ｕ１株（以下、Ｐ３−Ｕ１と略す）（ＣｕｒｒｅｎｔＴｏｐｉｃｓＭｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙｃａｌＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，８１，１（１９７８）．、ＥｕｒｏｐｉａｎＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，６，５１１（１９７６）．）、ＳＰ２／０−Ａｇ１４株（以下、ＳＰ−２と略す）（Ｎａｔｕｒｅ，２７６、２６９（１９７８）．）、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８６５３株（以下、６５３と略す）（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ，１２３，１５４８（１９７９）．）、Ｐ３−Ｘ６３−Ａｇ８（以下、Ｘ６３と略す）（Ｎａｔｕｒｅ，２５６，４９５（１９７５）．）などが用いることができる。これらの細胞株は、８−アザグアニン培地（１５μｇ／ｍｌ８−アザグアニンを含む正常培地（１．５ｍＭグルタミン、５×１０^−５Ｍ２−メルカプトエタノール、１０μｇ／ｍｌジェンタマイシンおよび１０％ＦＣＳ（ＣＳＬ社製）を含むＲＰＭＩ１６４０培地））で継代し、細胞融合を行う３〜４日前に正常培地で培養する。細胞融合には、そのようにして調製した細胞を２×１０^７個以上用いる。
（ｃ）ハイブリドーマの作製
（ａ）で調製した抗体産生細胞と（ｂ）で調製した骨髄腫細胞をＭＥＭ培地またはＰＢＳ（１リットル当たり；１．８３ｇリン酸二ナトリウム、０．２１ｇリン酸一カリウム、７．６５ｇＮａＣｌ、ｐＨ７．２）で洗浄し、骨髄腫細胞の細胞数に対し抗体産生細胞５〜１０倍になるよう混合し、１，２００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、沈殿分画を得る。得られた沈澱画分の細胞群をよくほぐし、該細胞群に対し抗体産生細胞１０^８当たり、ポリエチレングリコール溶液（２ｇポリエチレングリコール−１０００（ＰＥＧ−１０００）、２ｍｌＭＥＭ培地、０．７ｍｌジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ））を０．２〜１ｍｌを３７℃で攪拌しながら添加し、更に１〜２分間毎にＭＥＭ培地１〜２ｍｌを数回添加する。ＭＥＭ培地で全量を５０ｍｌになるように調製し、９００ｒｐｍで５分間遠心分離した後、沈殿分画を得る。沈殿分画にＨＡＴ培地（正常培地、１０^−４Ｍヒポキサンチン、１．５×１０^−５Ｍチミジンおよび４×１０^−７Ｍアミノプテリンを含む）１００ｍｌを添加し、ゆるやかにほぐし懸濁する。
該懸濁液を９６穴培養用プレートの各穴に１００μｌ穴ずつ分注し、３７℃、５％ＣＯ_２存在下で７〜１４日間培養する。酵素免疫測定法（Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ））などに記載の方法で、培養上清に産生された抗体のうち、本発明のポリペプチドに特異的に反応する抗体を産生するハイブリドーマを選択する。
（５）本発明ポリペプチドの免疫学的検出方法
本発明ポリペプチドの免疫学的検出方法としては、該ポリペプチドまたはその部分ペプチドに対する抗体を直接または間接的に酵素、蛍光物質、放射性同位体、ラテックスなどに結合した標識体を用いることにより該ポリペプチドまたはその部分ペプチドを測定する方法が挙げられる。そのような測定方法として、例えば、西洋ワサビペルオキシダーゼやアルカリフォスファターゼなどの酵素標識により検出するＥＬＩＳＡ法や化学発光法、ルミノールやＧＦＰ（ＧｒｅｅｎＦｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅＰｒｏｔｅｉｎ）などの蛍光標識を検出するＦＩＴＣ法、^１２５Ｉなどの放射性同位体標識を検出するＲＩＡ法、ラテックスに結合したラテックス凝集法などが例示される。
また、そのような測定方法として、ウェスタンブロット法および免疫組織染色なども例示される。
さらに、そのような測定方法を用いることにより本発明のポリペプチドまたはその部分ペプチドを定量することもできる。
（６）ｍＲＮＡの定量方法
本発明のポリヌクレオチドより調製したオリゴヌクレオチドを用い、ノーザンハイブリダイゼーション法またはＲＴ−ＰＣＲ法によりｍＲＮＡを定量することで本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡの発現量を定量することができる。
正常あるいは疾患モデル動物、例えば、マウス、ラット、ウサギ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ネコ、イヌ、サルなどでｍＲＮＡを定量する場合、必要によってグルコースを投与し、一定時間経過後に、骨格筋、脳、血液、胃、腎臓などの臓器または組織を単離し、細胞を調製する。得られた細胞から当該分野で周知慣用の常法によりｍＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲ法やノーザンブロットハイブリダイゼーション法などでｍＲＮＡを定量・解析することができる。
本発明のポリペプチドもしくはその部分ペプチドを発現する形質転換体からのｍＲＮＡを定量する場合も、該形質転換体から当該分野で周知慣用の常法によりｍＲＮＡを抽出し、ＲＴ−ＰＣＲ法やノーザンブロットハイブリダイゼーション法などでｍＲＮＡを定量・解析することができる。
（７）遺伝子構造の同定
現在、多くの機能未知のヒト染色体遺伝子の配列がデータベースに登録されている。したがって、本発明のポリヌクレオチド配列と、データベースに登録されてるヒト染色体遺伝子の配列とを比較することにより、本発明のポリペプチドをコードするヒト染色体遺伝子を同定し、該遺伝子の構造を明らかにできる可能性がある。ｃＤＮＡの配列と一致する染色体遺伝子配列が登録されていれば、ｃＤＮＡの配列と染色体遺伝子の配列を比較することにより、本発明のポリペプチドをコードする染色体遺伝子のプロモーター領域、エクソンおよびイントロン構造をスクリーニングすることができる。本発明のポリヌクレオチドをプローブとして、当該分野において周知慣用の常法（東京大学医科学研究所制癌研究部編、新細胞工学実験プロトコール、秀潤社（１９９３年）．）を用いて、該遺伝子のプロモーター領域を取得することができる。
プロモーター領域としては、哺乳動物細胞において本発明のポリペプチドをコードする遺伝子の転写に関与するすべてのプロモーター領域が挙げられる。
（８）糖尿病の検出方法
糖尿病検出方法としては、本発明のポリペプチドの免疫学的検出方法により、本発明のポリペプチドと反応する異なるエピトープを認識する２種類の抗体のうち一方を直接または間接的に酵素で標識したものを用いるサンドイッチＥＬＩＳＡ法や^１２５Ｉなどの放射性同位体で標識した本発明のポリペプチドと該ペプチドを認識する抗体を用いる競合ＲＩＡ法などを挙げることができる。本発明のポリペプチドは、糖尿病モデルラットの骨格筋においてその発現が低下しており、食事制限と運動により病態が改善されると、骨格筋における発現が回復することから、この検出法は糖尿病の検出に利用することができる。
また、本遺伝子の多型を調べることにより、糖尿病の検出や予後の予測に利用できる。
さらに、本遺伝子の多型と、本遺伝子が発現している臓器（脳、骨格筋）における疾患との関連を調べることにより、他の疾患の検出にも利用できる。本遺伝子の多型解析は、本遺伝子の遺伝子配列情報を用いて行うことができる。具体的には、サザンブロット法、ダイレクトシークエンス法、ＰＣＲ法、ＤＮＡチップ法などを用いて遺伝子多型を解析することができる（臨床検査，４２，１５０７−１５１７（１９９８）．、臨床検査，４２，１５６５−１５７０（１９９８）．）。
（９）神経変性疾患検出方法
神経変性疾患検出方法としては、本発明のポリペプチドの免疫学的検出方法により、本発明のポリペプチドと反応する異なるエピトープを認識する２種類の抗体のうち一方を直接または間接的に酵素で標識したものを用いるサンドイッチＥＬＩＳＡ法や^１２５Ｉなどの放射性同位体で標識した本発明のポリペプチドと該ペプチドを認識する抗体を用いる競合ＲＩＡ法などを挙げることができる。本発明のポリペプチドは、アルツハイマー病、パーキンソン病、筋萎縮性側索硬化症などの神経変性疾患の検出に利用することができる。
本発明のポリペプチドは、脳で発現が上昇していること、本遺伝子の多型を調べることにより、神経変性疾患の検出や予後の予測に利用できる。
（１０）検出用キット
本発明のポリヌクレオチドは、ノーザンハイブリダイゼーション法またはＰＣＲ法を用いたそれら神経変性疾患および糖尿病の検出に利用することが可能である。また、本発明の抗体を用いて免疫学的手法によっても神経変性疾患および糖尿病の検出を行なうことができる。従って、ポリヌクレオチドを用いた検出の場合には、キット中には標識された本発明のポリヌクレオチドが含まれる。また、抗体を用いた検出の場合には、本発明の抗体の他に、標準抗原として本発明のポリペプチドが含まれる。更にキット中には標準曲線が含まれていてもよい。
（１１）ＤＮＡの転写抑制およびｍＲＮＡの翻訳抑制方法
本発明のポリヌクレオチドを投与することにより、本発明のポリペプチドの生産を抑制することができる。即ち、本発明のポリヌクレオチドを用いて、本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡの転写の抑制、本発明のポリペプチドをコードするｍＲＮＡの翻訳の抑制を行うことが可能である。
（１２）結合物質のスクリーニング方法
本発明のポリペプチドまたはその部分ペプチドは、本発明のポリペプチドに結合するタンパク質や低分子物質などを探索またはスクリーニングするための試薬として有用である。すなわち、本発明は、本発明のポリペプチドもしくはその塩または本発明の部分ペプチドもしくはその塩と被検物質とを接触させることを特徴とする本発明のポリペプチドに対する結合物質のスクリーニング方法を提供する。被検物質としては、低分子化合物、タンパク質、ヒトまたはマウス、ラット、ブタ、ウシ、ヒツジ、サルなどの哺乳動物の組織抽出物、細胞培養上清などが用いられる。これらの被検物質を本発明のポリペプチドに添加し、結合活性などを測定しながら分画し、最終的に単一のリガンドを得ることができる。
具体的には、本発明の結合物質のスクリーニング方法は、本発明のポリペプチドもしくはその部分ペプチドを用いるか、組換え型ポリペプチドの発現系を構築し、該発現系を用いた結合アッセイ系を用いるか、または本発明のポリペプチドに結合して細胞刺激活性、例えば、ＧＡＰ４３（Ｃｅｌｌ，８３，２６９−２７８（１９９５）．）や神経細胞を用いた軸策伸展などを測定してスクリーニングすることができる。
まず、結合物質のスクリーニング方法に用いるポリペプチドとしては、上記した本発明のポリペプチドまたは本発明の部分ペプチドを含有するものであれば何れのものであってもよいが、動物細胞を用いて大量発現させたポリペプチドが適している。本発明のポリペプチドを製造するには、前述の発現方法が用いられるが、該ポリペプチドをコードするＤＮＡを哺乳動物細胞や昆虫細胞で発現することにより行なうことが好ましい。目的とするタンパク質部分をコードするＤＮＡ断片には、通常、相補ＤＮＡが用いられるが、必ずしもこれに制約されるものではない。例えば、遺伝子断片や合成ＤＮＡを用いてもよい。本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡ断片を宿主動物細胞に導入し、それらを効率よく発現させるためには、該ＤＮＡ断片を昆虫を宿主とするバキュロウイルスに属する核多角体病ウイルス（ｎｕｃｌｅａｒｐｏｌｙｈｅｄｒｏｓｉｓｖｉｒｕｓ；ＮＰＶ）のポリヘドリンプロモーター、ＳＶ４０由来のプロモーター、レトロウイルスのプロモーター、メタロチオネインプロモーター、ヒトヒートショックプロモーター、サイトメガロウイルスプロモーター、ＳＲαプロモーターなどの下流に組み込むのが好ましい。発現したポリペプチドの量と質の検査はそれ自体公知の方法で行うことができる。例えば、ＴｈｅＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｈｅｍｉｓｔｒｙ，２６７，１９５５５〜１９５５９（１９９２）．に記載の方法に従って行うことができる。
従って、本発明の結合物質スクリーニング方法において、本発明のポリペプチドもしくはその部分ペプチドを含有するものとしては、それ自体公知の方法に従って精製したポリペプチドもしくはその部分ペプチドであってもよいし、該ポリペプチドを含有する細胞またはその細胞上清を用いてもよい。本発明の結合物質のスクリーニング方法において、本発明のポリペプチドを含有する細胞を用いる場合、該細胞をグルタルアルデヒド、ホルマリンなどで固定化してもよい。固定化方法はそれ自体公知の方法に従って行なうことができる。本発明のポリペプチドを含有する細胞としては、本発明のポリペプチドを発現した宿主細胞をいうが、該宿主細胞としては、大腸菌、枯草菌、酵母、昆虫細胞、動物細胞などが用いられる。細胞上清画分としては、細胞の培養上清に含まれる画分のことをいう。
本発明のポリペプチドまたはその塩に対する結合物質をスクリーニングするためには、適当なポリペプチド画分と、標識した被験物質が必要である。ポリペプチド画分としては、天然型のポリペプチド画分か、またはそれと同等の活性を有する組換え型ポリペプチド画分などが望ましい。ここで、同等の活性とは、同等のリガンド結合活性、シグナル情報伝達作用などを示す。標識した被験物質としては、^３Ｈ、^１２５Ｉ、^１４Ｃ、^３５Ｓなどで標識したタンパク質や低分子化合物などを挙げることができる。
具体的には、本発明のポリペプチドまたはその塩に対する結合物質のスクリーニング方法を行なうには、まず本発明のポリペプチドを含有する細胞または細胞の膜画分を、スクリーニング方法に適したバッファーに懸濁することによりポリペプチド標品を調製する。バッファーには、ｐＨ４〜１０、好ましくはｐＨ６〜８のリン酸緩衝液、Ｔｒｉｓ−ＨＣｌ緩衝液などのリガンドとポリペプチドとの結合を阻害しない緩衝液であればいずれでもよい。また、非特異的結合を低減させる目的で、ＣＨＡＰＳ、Ｔｗｅｅｎ−８０（花王−アトラス社）、ジギトニン、デオキシコレートなどの界面活性剤やウシ血清アルブミンやゼラチンなどの各種タンパク質を緩衝液に加えるもよい。さらに、プロテアーゼによる結合物質の分解を抑制する目的でＰＭＳＦ、ロイペプチン、Ｅ−６４（ペプチド研究所製）、ペプスタチンなどのプロテアーゼ阻害剤を添加することもできる。０．０１〜１０ｍｌの該ポリペプチド溶液に、一定量、好ましくは、５０００ｃｐｍ〜５０００００ｃｐｍの^３Ｈ、^１２５Ｉ、^１４Ｃ、^３ ^５Ｓなどで標識した被験物質を共存させる。非特異的結合量（ＮＳＢ）を知るために大過剰の未標識の被験物質を加えた反応チューブも用意する。反応は０℃から５０℃、好ましくは４℃から３７℃で、２０分から２４時間、好ましくは３０分から３時間で行なう。反応後、ガラス繊維濾紙などで濾過し、適量の同緩衝液で洗浄した後、ガラス繊維濾紙に残存する放射活性を液体シンチレーションカウンターあるいはγ−カウンターで計測する。全結合量（Ｂ）から非特異的結合量（ＮＳＢ）を引いたカウント（Ｂ−ＮＳＢ）が０ｃｐｍを越える被験物質を本発明のポリペプチドまたはその塩に対する結合物質として選択することができる。
本発明のポリペプチドに対する結合物質をスクリーニングするためには、該ポリペプチドを介する細胞刺激活性、例えば、ＧＡＰ４３や神経細胞を用いた軸策伸展などを公知の方法または市販の測定用キットを用いて測定することができる。具体的には、まず、ポリペプチドを含有する細胞をマルチウェルプレートなどに培養する。結合物質のスクリーニングを行なうにあたっては前もって新鮮な培地あるいは細胞に毒性を示さない適当な緩衝液に交換し、被験物質などを添加して一定時間インキュベートした後、細胞を抽出あるいは上清液を回収して、生成した産物をそれぞれの方法に従って定量する。細胞刺激活性の指標とする物質、例えば、ＧＡＰ４３などの生成が、細胞が含有する分解酵素によって検定困難な場合は、該分解酵素に対する阻害剤を添加してアッセイを行なってもよい。
（１３）結合物質スクリーニング用キット
本発明のポリペプチドまたはその塩に結合する結合物質スクリーニング用キットは、本発明のポリペプチドもしくはその塩、本発明の部分ペプチドもしくはその塩、本発明のポリペプチドを含有する細胞、または本発明のポリペプチドを含有する細胞沈殿画分などを含有するものである。本発明の結合物質スクリーニング用キットの例としては、次のものが挙げられる。
（ｉ）結合物質スクリーニング用試薬
スクリーニング溶液および洗浄溶液としてＨａｎｋ’ｓＢａｌａｎｃｅｄＳａｌｔＳｏｌｕｔｉｏｎ（インビトロジェン社製）に０．０５％のウシ血清アルブミン（シグマアルドリッチ社製）を加えたものを孔径０．４５μｍのフィルターで濾過滅菌し、４℃で保存したものまたは用時調製したもの。
（ａ）本発明のポリペプチドを発現させたＣＨＯ細胞を、１２穴プレートに５×１０^５個／穴で継代し、３７℃、ｓ５％ＣＯ_２で２日間培養したもの。
（ｂ）標識被検物質
市販の^３Ｈ、^１２５Ｉ、^１４Ｃ、^３５Ｓなどで標識した被検物質した溶液を４℃あるいは−２０℃にて保存し、測定用緩衝液にて１μＭに希釈するして用時調製する。水に難溶性を示す被検物質については、ジメチルホルムアミド、ＤＭＳＯ、メタノールなどに溶解する。
（ｃ）非標識被検物質
標識物質と同じものを１００〜１０００倍濃度で調製したもの。
（ｉｉ）測定法
（ａ）１２穴組織培養用プレートにて培養した本発明のポリペプチド発現ＣＨＯ細胞を、測定用緩衝液１ｍｌで２回洗浄した後、４９０μｌの測定用緩衝液を各穴に加える。
（ｂ）標識被検物質を５μｌ加え、室温にて１時間反応させる。非特異的結合量を測定ためには非標識被検物質を５μｌ加える。
（ｃ）反応液を除去し、１ｍｌの洗浄溶液で３回洗浄する。細胞に結合した標識被検物質を０．２ＭＮａＯＨ（１％ＳＤＳを含む）で溶解し、４ｍｌの液体シンチレーターＡ（和光純薬製）と混合する。
（ｄ）液体シンチレーションカウンター（ベックマンコールター社製）を用いて放射活性を測定する。
（１４）結合活性調節物質のスクリーニング方法
本発明のポリペプチドまたはその部分ペプチドは、本発明のポリペプチドに結合する物質の結合活性を調節する物質を探索し、またはスクリーニングするための試薬として有用である。すなわち、本発明は、本発明のポリペプチドもしくはその塩とその結合物質との結合活性を調節する物質と被験物質とを接触させることを特徴とする本発明のポリペプチドとそれに対する結合物質の結合活性を調節する結合活性調節物質のスクリーニング方法を提供する。
被験物質としては、例えば、ヒトまたは哺乳動物、例えば、マウス、ラット、ブタ、ウシ、ヒツジ、サルなどの組織抽出物、細胞培養上清ペプチド、タンパク質、非ペプチド性物質、合成物質、発酵生産物などが用いられる。これらの被験物質を本発明のポリペプチドおよびその結合物質と共に添加し、結合活性などを測定しながら分画し、最終的に単一の結合活性調節物質を得ることができる。
本発明のポリペプチドまたは該ポリペプチドを発現する組換え体発現系を構築し、バイオアッセイ系または結合アッセイ系を用いることによって、結合物質と本発明のポリペプチドとの結合性を変化させる物質、例えば、ペプチド、タンパク質、非ペプチド性物質、合成物質、発酵生産物などまたはその塩を効率よくスクリーニングすることができる。このような物質には、（ａ）結合物質と本発明のポリペプチドとの結合を介する細胞刺激活性、例えば、ＧＡＰ４３や神経細胞を用いた軸策伸展を促進する活性または抑制する活性などの増強あるいは減少させる物質、（ｂ）結合物質と本発明のポリペプチドとの結合力を増強する物質あるいは減少させる物質が挙げられる。
すなわち、本発明は、（ｉ）本発明のポリペプチド、その部分ペプチドまたはそれらの塩と結合物質を接触させた場合および（ｉｉ）本発明のポリペプチド、その部分ペプチドまたはそれらの塩と結合物質および被検物質とを接触させた場合の結合物質の結合量を比較することを特徴とする結合物質と本発明のポリペプチド、その部分ペプチドまたはそれらの塩との結合活性調節物質のスクリーニング方法を提供する。
本発明の結合活性調節物質のスクリーニング方法は、（ｉ）および（ｉｉ）の場合における、例えば、細胞刺激活性あるいは該ポリペプチドと結合物質との結合量などを測定して、比較することを特徴とする。
具体的には、（ａ）標識した結合物質を本発明のポリペプチドなどに接触させた場合と、標識した結合物質および被検物質を本発明のポリペプチドなど接触させた場合における、該ポリペプチドなどに対する標識結合物質の結合量を測定し、比較することを特徴とする結合物質と本発明のポリペプチドなどとの結合性を変化させる物質のスクリーニング方法、（ｂ）標識した結合物質を、本発明のポリペプチドなどを含有する細胞または細胞培養液と接触させた場合および標識結合物質および被検物質を本発明のポリペプチドなどを含有する細胞または本発明の細胞の沈殿画分に接触させた場合における、標識結合物質の本発明の細胞またはその沈殿分画に対する結合量を測定し、比較することを特徴とする結合物質と本発明のポリペプチドなどとの結合性を変化させる結合活性調節物質のスクリーニング方法、（ｃ）本発明のポリヌクレオチドなどを含有する形質転換体を培養することによって細胞培養液に分泌したポリペプチドなどと標識結合物質を接触させた場合および標識結合物質ならびに被検物質を接触させた場合における、該ポリペプチドなどに対する標識結合物質の結合量を測定し、比較することを特徴とする結合物質と本発明のポリペプチドなどとの結合性を変化させる結合活性調節物質のスクリーニング方法などが挙げられる。
（１５）結合活性調節物質のスクリーニング用キット
結合物質と本発明のポリペプチドなどとの結合性を変化させる結合活性調節物質のスクリーニング用キットは、本発明のポリペプチド、本発明のポリペプチドを含有する細胞または本発明のポリペプチドなどを含有する細胞培養液を含有するものなどである。本発明のスクリーニング用キットの例としては、次のものが挙げられる。
（ｉ）結合活性調節物質のスクリーニング用試薬
スクリーニング用溶液および洗浄用溶液としてＨａｎｋ’ｓＢａｌａｎｃｅｄＳａｌｔＳｏｌｕｔｉｏｎ（インビトロジェン社製）に、０．０５％のウシ血清アルブミン（シグマアルドリッチ社製）を加えたものを孔径０．４５μｍのフィルターで濾過滅菌したものを、４℃で保存したものまたは用時調製したもの。
（ａ）本発明のポリペプチド
本発明のポリペプチドを発現させたＣＨＯ細胞を、１２穴プレートに５×１０^５個／穴で継代し、３７℃、５％ＣＯ_２、で２日間培養したもの。
（ｂ）標識結合物質
市販の^３Ｈ、^１２５Ｉ、^１４Ｃ、^３５Ｓなどで標識した結合物質の溶液を４℃あるいは−２０℃にて保存し、測定用緩衝液で希釈して１μＭとなるよう用時調製する。
（ｃ）結合物質
標準結合物質を０．１％ウシ血清アルブミン（シグマアルドリッチ社製）を含むＰＢＳで１ｍＭとなるように溶解し、−２０℃で保存する。
（ｄ）被験物質
水溶液状態のものを４℃あるいは−２０℃にて保存し、測定用緩衝液で希釈して１μＭとなるよう用時調製する。水に難溶性を示す被検物質については、ジメチルホルムアミド、ＤＭＳＯ、メタノールなどに溶解する。
（ｉｉ）測定法
（ａ）１２穴組織培養用プレートにて培養した本発明のポリペプチド発現ＣＨＯ細胞を、測定用緩衝液１ｍｌで２回洗浄した後、４９０μｌの測定用緩衝液を各穴に加える。
（ｂ）１０^−３〜１０^−１０Ｍの被検物質を５μｌ加えた後、標識結合物質を５μｌ加え、室温にて１時間反応させる。非特異的結合量を測定するためには被験物質に代えて非標識結合物質を５μｌ加えて同様の反応を行う。
（ｃ）反応液を除去し、１ｍｌの洗浄溶液で３回洗浄する。細胞に結合した標識結合物質を０．２ＭＮａＯＨ（１％ＳＤＳを含む）で溶解し、４ｍｌの液体シンチレーターＡ（和光純薬製）と混合する。
（ｄ）液体シンチレーションカウンター（ベックマンコールター社製）を用いて放射活性を測定する。
（１６）発現調節物質のスクリーニング方法
本発明のポリヌクレオチドおよび抗体は本発明のポリペプチドの発現を調節する低分子化合物やタンパク質などの物質をスクリーニングするための試薬として有用であり、免疫学的測定方法または分子生物学的測定方法に用いることができる。すなわち、本発明は、本発明のポリペプチドを発現する細胞または組織と被験物質を接触させ、本発明のポリペプチドのｍＲＮＡ量あるいはタンパク質量を測定することで本発明のポリペプチドの発現の増加または減少を測定することを特徴とする本発明のポリペプチドまたは／および本発明のポリヌクレオチドの発現量を変化させる物質に対するスクリーニング方法を提供する。被験物質としては、例えば、ペプチド、タンパク質、非ペプチド性物質、合成物質、発酵生産物などが用いられる。これらの被験物質を、本発明のポリペプチドを発現する細胞または組織、例えば、動物由来の血液、臓器、臓器から単離した組織もしくは細胞、本発明のポリペプチドを発現する組み換え体発現系を構築し、得られる形質転換体などの培養液に添加し、本発明のポリペプチドのｍＲＮＡ量あるいはタンパク質量を測定しながら分画し、最終的に単一な発現調節物質を得ることができる。
（１７）発現調節物質のスクリーニング用キット
本発明のポリペプチドの発現調節物質またはその塩のスクリーニング用キットは、本発明のポリペプチド、本発明のポリペプチドを含有する細胞、または本発明のポリペプチドを含有する細胞の沈殿分画などを含有するものである。本発明のスクリーニング用キットの例としては、次のものが挙げられる。
（１８）免疫学的定量方法に基づくスクリーニング用キット
本発明のポリペプチドの免疫学的定量方法としては、液相中で本発明のポリペプチドに反応しエピトープが異なる２種類の単一特異的な抗体を用いたサンドイッチＥＬＩＳＡ法、本発明のポリペプチドに特異的な抗体と^１２６Ｉなどの放射性同位体で標識した本発明のポリペプチドを用いたラジオイムノアッセイ法などが例示される。このような免疫学的定量方法に基づいたスクリーニング用キットは発現調節物質のスクリーニング用キットとして有用であり、キット中には、本発明の抗体の他に、標準抗原として本発明のポリペプチドが含まれる。更にキット中には標準曲線が含まれていてもよい。
（１９）分子生物学的定量方法に基づくスクリーニング用キット
本発明のポリヌクレオチドの分子生物学的定量方法としては、本発明のポリヌクレオチドあるいはそれから調製したオリゴヌクレオチドを用いたノーザンハイブリダイゼーション法、ＰＣＲ法などが例示され、それらの方法により本発明のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量をｍＲＮＡレベルで定量することができる。このような分子生物学的定量方法に基づいたスクリーニング用キットは発現調節物質のスクリーニングに有用であり、キット中に本発明のポリヌクレオチドあるいはそれらから調製したオリゴヌクレオチドなどが含まれる。
具体的には、（ｉ）正常あるいは疾患モデル非ヒト哺乳動物、例えば、マウス、ラット、ウサギ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ネコ、イヌ、サルなどに対して、薬剤、例えば、抗糖尿病薬などなどを投与し、一定時間経過した後、血液、特定の臓器、例えば、脳、胃、腎臓など、あるいは臓器から単離した組織または細胞を得る。得られた細胞に含まれる本発明のポリペプチドまたはその部分ペプチドのｍＲＮＡは、例えば、当該分野において周知の抽出方法によりｍＲＮＡを抽出し、例えば、ＴａｑＭａｎＰＣＲなどの手法を用いることにより定量することができ、公知の手段によりノザンブロット法を用いることにより解析することもできる。（ｉｉ）本発明のポリペプチドもしくはその部分ペプチドを発現する形質転換体を前述の方法に従い作製し、該形質転換体に含まれる本発明のポリペプチドまたはその部分ペプチドのｍＲＮＡを同様にして定量、解析することができる。さらに、本発明のポリヌクレオチドを用いて、ノザンハイブリダイゼーション法やＰＣＲ法などにより本発明のポリペプチドのｍＲＮＡ発現量の定量を行うことができる。また、ポリヌクレオチドを用いた検出の場合には、キット中には標識された本発明のポリヌクレオチドが含まれる。
（ｉ）スクリーニング用試薬
（ａ）スクリーニング用溶液および洗浄用溶液としてＨａｎｋ’ｓＢａｌａｎｃｅｄＳａｌｔＳｏｌｕｔｉｏｎ（インビトロジェン社製）に、０．０５％のウシ血清アルブミン（シグマアルドリッチ社製）を加えたものを孔径０．４５μｍのフィルターで濾過滅菌したものを、４℃で保存したものまたは用時調製したもの。
（ａ）本発明のポリペプチドを発現する細胞
本発明のポリペプチドを発現させたＣＨＯ細胞を、１２穴プレートに５×１０^５個／穴で継代し、３７℃、５％ＣＯ_２、で２日間培養したもの。
（ｂ）プライマー
本発明のポリヌクレオチドを特異的に増幅するセンスプライマーおよびアンチセンスプライマーをそれぞれ設計し、ＤＮＡ合成機（アプライドバイオシステムズ社製）で合成する。
（ｃ）被験物質
水溶液状態のものを４℃あるいは−２０℃にて保存し、測定用緩衝液で希釈して１μＭとなるよう用時調製する。水に難溶性を示す被検物質については、ジメチルホルムアミド、ＤＭＳＯ、メタノールなどに溶解する。
（ｉｉ）測定法
（ａ）１２穴組織培養用プレートにて培養した本発明のポリペプチド発現ＣＨＯ細胞を、測定用緩衝液１ｍｌで２回洗浄した後、４９０μｌの測定用緩衝液を各穴に加える。
（ｂ）１０^−３〜１０^−１０Ｍの被検物質を５μｌ加え、室温にて１時間反応させる。被験物質によらない発現量を測定するためには被験物質を加えていないもので同様の反応を行う。
（ｃ）反応液を除去し、１ｍｌの洗浄溶液で沈殿を３回洗浄する。細胞からｍＲＮＡを抽出し、プライマーを用いてＴａｑＭａｎＰＣＲ（アプライドバイオシステムズ社製）によりｍＲＮＡ発現量を定量する。
（２０）非ヒトノックアウトおよび非ヒトトランスジェニック動物の作製
本発明のポリヌクレオチドを含むベクターを用い、目的とする非ヒト動物、例えばウシ、ヒツジ、ヤギ、ブタ、ウマ、ニワトリ、マウス、ラットなどの胚性幹細胞（ｅｍｂｒｙｏｎｉｃｓｔｅｍｃｅｌｌ）において染色体上の本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡを、例えば、Ｎａｔｕｒｅ，３２６（６１１０），２９５（１９８７）．、Ｃｅｌｌ，５１（３），５０３（１９８７）．などに記載の公知の相同組換えの手法により、Ｎａｔｕｒｅ、３５０（６３１５），２４３（１９９１）．などに記載のような不活化または任意の配列と置換した変異クローンを作成することができる。
このようにして作成した胚性幹細胞クローンを用い、非ヒト動物の受精卵の胚盤胞（ｂｌａｓｔｃｙｓｔ）への注入キメラ法または集合キメラ法などの手法により胚性幹細胞クローンと正常細胞からなるキメラ個体を作成することができる。該キメラ個体と正常個体の掛け合わせにより、全身の細胞の染色体上の本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡに任意の変異を有する個体を得ることができ、さらにその個体の掛け合わせにより相同染色体の双方に変異が入った、ホモ個体を得ることができる。
このようにして動物個体において、染色体上の本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡの任意の位置へ変異の導入が可能である。例えば、染色体上の本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡの翻訳領域中への塩基の置換、欠失、挿入などの変異を導入することにより、その産物の活性を変化させることができる。
また、その発現制御領域への同様な変異の導入により、発現の程度、時期、組織特異性などを改変させることも可能である。さらに、Ｃｒｅ−ｌｏｘＰ系との組合せにより、より積極的に発現時期、発現部位、発現量等を制御することも可能である。このような例として、脳のある特定の領域で発現されるプロモータを利用して、該領域での目的遺伝子欠失（Ｃｅｌｌ，８７（７），１３１７（１９９６）．）やＣｒｅを発現するアデノウィルスを用いて、目的の時期に臓器特異的な目的遺伝子欠失（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２７８，５３３５（１９９７）．）などが知られている。従って染色体上の本発明のポリペプチドをコードするＤＮＡについてもこのように任意の時期や組織で発現を制御または任意の欠失、置換、付加をその翻訳領域や、発現制御領域に有する非ヒトノックアウトまたは非ヒトトランスジェニック動物を作製することが可能である。
このようなノックアウトおよびトランスジェニック非ヒト動物は任意の時期、任意の程度または任意の部位で、本発明のポリペプチドに起因する種々の疾患の症状を誘導することができる。従って、本発明のノックアウトおよびトランスジェニック非ヒト動物は、本発明のポリペプチドに起因する種々の疾患の治療や予防において極めて有用な動物モデルとなる。特にその治療薬、予防薬などの評価用モデルとして非常に有用である。
（２１）医薬
本発明の抗体、結合物質、結合調節物質または発現調節物質を含有する医薬は、治療薬として該物質単独で投与することも可能ではあるが、通常は薬理学的に許容される一つあるいはそれ以上の担体と一緒に混合し、製剤学の技術分野においてよく知られる任意の方法により製造した医薬製剤として提供するのが望ましい。
投与経路は、治療に際して最も効果的なものを使用するのが望ましく、経口投与、または口腔内、気道内、直腸内、皮下、筋肉内および静脈内等の非経口投与をあげることができる。投与形態としては、噴霧剤、カプセル剤、錠剤、顆粒剤、シロップ剤、乳剤、座剤、注射剤、軟膏、テープ剤などが挙げられる。
経口投与に適当な製剤としては、乳剤、シロップ剤、カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤等があげられる。例えば、乳剤およびシロップ剤のような液体調製物は、水、ショ糖、ソルビトール、果糖などの糖類、ポリエチレングリコール、プロピレングリコールなどのグリコール類、ごま油、オリーブ油、大豆油などの油類、ｐ−ヒドロキシ安息香酸エステル類などの防腐剤、ストロベリーフレーバー、ペパーミントなどのフレーバー類などを添加剤として用いて製造できる。カプセル剤、錠剤、散剤、顆粒剤などは、乳糖、ブドウ糖、ショ糖、マンニトールなどの賦形剤、デンプン、アルギン酸ナトリウムなどの崩壊剤、ステアリン酸マグネシウム、タルクなどの滑沢剤、ポリビニルアルコール、ヒドロキシプロピルセルロース、ゼラチンなどの結合剤、脂肪酸エステルなどの界面活性剤、グリセリンなどの可塑剤などを添加剤として用いて製造できる。
非経口投与に適当な製剤としては、注射剤、座剤、噴霧剤などが挙げられる。例えば、注射剤は、塩溶液、ブドウ糖溶液、あるいは両者の混合物からなる担体などを用いて調製する。座剤はカカオ脂、水素化脂肪またはカルボン酸などの担体を用いて調製される。また、噴霧剤は該物質そのもの、ないしは受容者の口腔および気道粘膜を刺激せず、かつ該物質を微細な粒子として分散させ吸収を容易にさせる担体などを用いて調製する。担体として具体的には、乳糖、グリセリンなどが例示される。該物質および用いる担体の性質により、エアロゾル、ドライパウダーなどの製剤が可能である。また、これらの非経口剤においても経口剤で添加剤として例示した成分を添加することもできる。
本発明のスクリーニング方法またはスクリーニング用キットを用いて得られる物質またはその塩とは、結合物質、結合活性調節物質および発現調節物質であり、具体的には、（ａ）結合物質と本発明のポリペプチドとの結合を介する細胞刺激活性、例えば、ＧＡＰ４３や神経細胞を用いた軸策伸展を増強あるいは減少させる物質、（ｂ）結合物質と本発明のポリペプチドとの結合活性を増強あるいは減少させる物質、あるいは（ｃ）本発明のポリペプチドの発現量を増強あるいは減少させる物質である。
該物質としては、低分子化合物、ペプチド、タンパク、非ペプチド性物質、合成物質、発酵生産物などが挙げられ、これら物質は新規な物質であってもよいし、公知の物質であってもよく、天然物質または非天然物質の何れでもよい。本発明のポリペプチドなどに対するアゴニストは、本発明のポリペプチドなどに対するリガンドが有する生理活性と同様の作用を有しているので、該結合物質活性に応じて安全で低毒性な医薬として有用である。本発明のポリペプチドなどに対するアンタゴニストは、本発明のポリペプチドなどに対するリガンドが有する生理活性を抑制することができるので、該結合物質活性を抑制する安全で低毒性な医薬として有用である。リガンドと本発明のポリペプチドとの結合力を増強する物質は、本発明のポリペプチドなどに対するリガンドが有する生理活性を増強するための安全で低毒性な医薬として有用である。リガンドと本発明のポリペプチドとの結合力を減少させる物質は、本発明のポリペプチドなどに対するリガンドが有する生理活性を減少させるための安全で低毒性な医薬として有用である。
また、本発明のポリペプチドの発現量を変化させる物質を含有する各種疾病の予防および／または治療剤本発明のポリペプチドは前述のとおり、例えば、糖代謝や神経再生など生体内で何らかの重要な役割を果たしていると考えられる。従って、本発明のポリペプチドまたはその部分ペプチドの発現量を変化させる発現調節物質は、本発明のポリペプチドの機能不全に関連する疾患の予防および／または治療剤として用いることができる。該物質を本発明のポリペプチドの機能不全に関連する疾患の予防および／または治療剤として使用する場合は、常套手段に従って製剤化することができる。例えば、該物質は、必要に応じて糖衣を施した錠剤、カプセル剤、エリキシル剤、マイクロカプセル剤などとして経口的に、あるいは水もしくはそれ以外の薬学的に許容し得る液との無菌性溶液、または懸濁液剤などの注射剤の形で非経口的に使用できる。例えば、該物質を生理学的に認められる公知の担体、香味剤、賦形剤、ベヒクル、防腐剤、安定剤、結合剤などとともに一般に認められた製剤実施に要求される単位用量形態で混和することによって製造することができる。これら製剤における有効成分量は指示された範囲の適当な容量が得られるようにするものである。
錠剤、カプセル剤などに混和することができる添加剤としては、例えば、ゼラチン、コーンスターチ、トラガント、アラビアゴムのような結合剤、結晶性セルロースのような賦形剤、コーンスターチ、ゼラチン、アルギン酸などのような膨化剤、ステアリン酸マグネシウムのような潤滑剤、ショ糖、乳糖またはサッカリンのような甘味剤、ペパーミント、アカモノ油またはチェリーのような香味剤などが用いられる。調剤単位形態がカプセルである場合には、上記タイプの材料にさらに油脂のような液状担体を含有することができる。注射のための無菌組成物は注射用水のようなベヒクル中の活性物質、胡麻油、椰子油などのような天然産出植物油などを溶解または懸濁させるなどの通常の製剤実施に従って処方することができる。注射用の水性液としては、例えば、生理食塩水、ブドウ糖や補助薬を含むＤ−ソルビトール、Ｄ−マンニトール、塩化ナトリウムなどの等張液などが用いられ、適当な溶解補助剤、例えば、エタノール、プロピレングリコールやポリエチレングリコールなどのアルコール類、ポリソルベート８０やＨＣＯ−５０など非イオン性界面活性剤などと併用してもよい。油性液としては、例えば、ゴマ油、大豆油などが用いられ、溶解補助剤である安息香酸ベンジル、ベンジルアルコールなどと併用してもよい。
また、上記予防・治療剤は、例えば、リン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液などの緩衝液、塩化ベンザルコニウム、塩酸プロカインなどの無痛化剤、ヒト血清アルブミン、ポリエチレングリコールなどの安定剤、ベンジルアルコール、フェノールなどの保存剤、酸化防止剤などと配合してもよい。調製された注射液は通常、適当なアンプルに充填される。このようにして得られる製剤は安全で低毒性であるので、例えば、ヒトやラット、マウス、ウサギ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ネコ、イヌ、サルなどの哺乳動物に対して投与することができる。該物質またはその塩の１回の投与量は、投与対象、対象臓器、症状、投与方法などにより差異はあるが、経口投与の場合、例えば体重６０ｋｇの糖尿病患者や神経変性症患者においては、一般に一日につき約０．１〜１００ｍｇ、好ましくは約１．０〜５０ｍｇ、より好ましくは約１．０〜２０ｍｇであり、非経口的に投与、例えば、注射剤の場合は、例えば体重６０ｋｇの糖尿病患者や神経変性症患者においては、一般に一日につき約０．０１〜３０ｍｇ程度、好ましくは約０．１〜２０ｍｇ程度、より好ましくは約０．１〜１０ｍｇ程度を静脈注射により投与する。他の動物の場合も、体重ｋｇ当たりに換算した量を投与することができる。投与量または投与回数は、目的とする治療効果、投与方法、治療期間、年齢、体重などにより異なるが、通常成人１日当たり１０μｇ〜８ｍｇ／ｋｇである。

以下実施例を示す。遺伝子操作的手法として、特に断らない限りＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，ＳｅｃｏｎｄＥｄｉｔｉｏｎ（１９８９）（ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ）に記載された方法を用いた。

ＤＮＡチップを用いたＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラットの遺伝子発現解析
ＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラットの脳、骨格筋および肺から、ＴＲＩｚｏｌＲｅａｇｅｎｔ（インビトロジェン社製）を用い、添付のマニュアルに従って全ＲＮＡを調製し、全ＲＮＡ３００μｇを得た。得られた全ＲＮＡをＱｕｉｃｋＰｒｅｐＭｉｃｒｏｍＲＮＡＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎＫｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社製）を用い、添付のマニュアルにしたがってポリ（Ａ）＋ＲＮＡを調製した。ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＣｈｏｉｃｅＳｙｓｔｅｍ（インビトロジェン社製）を用いてポリ（Ａ）＋ＲＮＡからクローニング用ｃＤＮＡ断片を調製した。
ポリ（Ａ）＋ＲＮＡ５μｇをＯｌｉｇｏ（ｄＴ）_{１２−１８}ｐｒｉｍｅｒおよびＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩＲＴを用いてファーストストランドｃＤＮＡを合成し、Ｅ．ｃｏｌｉＤＮＡｐｏｌｙｍｅｒａｓｅおよびＥ．ｃｏｌｉＲＮａｓｅＨを用いてセカンドストランドｃＤＮＡを合成した。得られたｃＤＮＡをＴ４ＤＮＡＰｏｌｙｍｅｒａｓｅで処理し、平滑末端をもつｃＤＮＡを生成した後、ＥｃｏＲＩ（ＮｏｔＩ）ＡｄａｐｔｅｒをＴ４ＤＮＡｌｉｇａｓｅを用いて５’および３’両末端に付加した。アダプターを付加したｃＤＮＡはＴ４ｐｏｌｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｋｉｎａｓｅを用いて５’末端をりん酸化した後、ＳｉｚｅＳｅｐ４００ＳｐｕｎＣｏｌｍｎｓ（アマシャムバイオサイエンス社製）で約４００ｂｐ以上のｃＤＮＡ断片を回収した。ベクターｐｌａｓｍｉｄｐＳｐｏｒｔ１（インビトロジェン社製）を制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で処理し、Ｔ４ｐｏｌｙｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅｋｉｎａｓｅを用いて５’末端をリン酸化した後、Ｔ４ＤＮＡＬｉｇａｓｅを用いて得られたｃＤＮＡ断片を組み込んた。得られた組換えプラスミドＤＮＡをエタノール沈殿後、ＴＥ緩衝液（１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ，ｐＨ８．０、１ｍＭＥＤＴＡ）２０μｌに溶解し、エレクトロポーレーション法（ＮｕｃｌｅｉｃＡｃｉｄＲｅｓｅａｒｃｈ，１６，６１２７（１９８８）．）によりＥｌｅｃｔｒｏＭＡＸＤＨ１０Ｂ（インビトロジェン社製）に導入し形質転換体を作製した。
形質転換体をＳ．Ｏ．Ｃ．培地（インビトロジェン社製）１ｍｌ中、３７℃で１時間培養し、１００μｇ／ｍｌのアンピシリンを含むＬＢ寒天培地に塗布し、３７℃で一晩培養した。その結果、ｃＤＮＡライブラリーとして約１０００万個（挿入率９５％）のアンピシリン耐性を示す形質転換体を取得した。得られた形質転換体のコロニー約２００００個からＰＣＲ法によりｃＤＮＡ断片を調製した。得られたｃＤＮＡ断片はＤＹＥｎａｍｉｃＥＴＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｔｏｒＫｉｔ（ＭｅｇａＢＡＣＥ）（アマシャムバイオサイエンス社製）を用い、添付のマニュアルに従って、ＭｅｇａＢＡＣＥ５００ＤＮＡＡｎａｌｙｓｉｓＳｙｓｔｅｍ（アマシャムバイオサイエンス社製）によりｃＤＮＡ断片の全塩基配列を決定した。ｃＤＮＡの配列情報はＣＨＩＰＳｐａｃｅ（日立ソフトウェアエンジニアリング社製）を用いて解析することにより重複のない５０００種類のｃＤＮＡクローンを選択した。これらのクローンをＤＮＡチップ作製システムＭｉｃｒｏａｒｒａｙＳｙｓｔｅｍＧｅｎｅｒａｔｉｏｎＩＩＩＳｐｏｔｔｅｒ（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｙｎａｍｉｃｓ社製）を用いて、Ｔｙｐｅ７スライドグラス（アマシャムバイオサイエンス社製）にスポットしてＤＮＡチップを作製した。
このＤＮＡチップを用いて、肥満を伴うインスリン抵抗性モデルラットであるＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラット（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＨｅｒｅｄ，５２，２７５−２７８（１９６１）．）での遺伝子発現変動解析を実施した。食餌制限（３０％摂餌量制限処理）および運動（週５日間のトレッドミル処置）を実施したＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラットより骨格筋を摘出してＴＲＩｚｏｌＲｅａｇｅｎｔ（インビトロジェン社製）を用い、添付のマニュアルに従って全ＲＮＡを調製した。得られた全ＲＮＡをＱｕｉｃｋＰｒｅｐＭｉｃｒｏｍＲＮＡＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎＫｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社製）を用い、添付のマニュアルにしたがってｐｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡを調製した。精製したＲＮＡを用いてプローブを作製した。ｐｏｌｙ（Ａ）＋ＲＮＡ０．５μｇをサンプルとし、Ｒａｎｄｏｍ９ｍｅｒ、ｏｌｉｇｏ（ｄＴ）ｐｒｉｍｅｒをアニールさせた後、ＳｕｐｅｒＳｃｒｉｐｔＩＩＲＴ（インビトロジェン社製）を用いてＣｙ−３ｄＣＴＰまたはＣｙ−５ｄＣＴＰ（アマシャムバイオサイエンス社製）を取り込ませｃＤＮＡを蛍光標識した。さらにＧＦＸＰＣＲＤＮＡａｎｄＧｅｌＢａｎｄＰｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎＫｉｔ（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いて標識ｃＤＮＡを精製し、プローブとして用いた。プローブは、ＡｕｔｏｍａｔｅｄＳｌｉｄｅＰｒｏｃｅｓｓｏｒ（アマシャムバイオサイエンス社製）を用いてＤＮＡチップとのハイブリダイゼーションを実施した。ハイブリダイゼーションはＴｙｐｅ７スライドのプロトコールに従い、前処理の後にプローブと４８℃で１２時間行った。バッファーにはＨｙｂｒｉｄｉｚａｔｏｎＢｕｆｆｅｒＶｅｒ．２（アマシャムバイオサインス社製）を用いた。洗浄後、ＭｉｃｒｏａｒｒａｙＳｙｓｔｅｍＧｅｎｅｒａｔｉｏｎＩＩＩＳｃａｎｎｅｒ（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｙｎａｍｉｃｓ社製）により読み取りを行い、解析コンピューターソフトＡｒｒａｙＶｉｓｉｏｎ（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＤｙｎａｍｉｃｓ社製）およびＧｅｎｅＳｐｒｉｎｇ（シリコンジェネテックス社製）を用いてデータ解析を実施した。その結果、コントロールラットと比較して食事制限および運動によりインスリン抵抗性が改善しているラットにおいて発現の上昇が認められたクローンとして３９Ｃ７を見出した。

Ｎｏｇｏ受容体と相同性を有する新規ポリペプチド（３９Ｃ７）をコードするｃＤＮＡのクローニング
実施例１で得られた３９Ｃ７ｃＤＮＡ断片を含むプラスミドを制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で消化し、ＱＩＡｑｕｉｃｋＧｅｌＥｘｔｒａｃｔｉｏｎＫｉｔ（キアゲン社製）を用い添付のマニュアルにしたがってｃＤＮＡ断片を得た。該ｃＤＮＡ断片５０ｎｇをＲｅｄｉｐｒｉｍｅｒＩＩＤＮＡＬａｂｅｌｌｉｎｇＳｙｓｔｅｍ（アマシャムバイオサイエンス社製）を用い添付のマニュアルに従って、［α−^３２Ｐ］ｄＣＴＰ（６０００Ｃｉ／ｍｍｏｌ，２０ｍＣｉ／ｍｌ）（ＮＥＮ社製）で^３２Ｐで標識した。^３２Ｐ標識したｃＤＮＡ断片をプローブとして用いコロニーハイブリダイゼーション解析を行った。ヒト脳ｃＤＮＡライブラリー（クロンテック社製）あるいはラット脳ｃＤＮＡライブラリー（クロンテック社製）を５０枚のＬＢプレートにプレート当たり約１×１０^４コロニーとなるように塗布し、３７℃で一晩培養してコロニーを形成させた。そのようにして得られたコロニーをＤＮＡブロッティング用ナイロン膜Ｈｙｂｏｎｄ−Ｎ（アマシャムバイオサイエンス社製）に転写した後、溶解溶液（１０％ＳＤＳ）、変性溶液（０．５ＮＮａＯＨ、１．５ＭＮａＣｌ）、中和溶液（０．５ＭＴｒｉｓ−ＨＣｌ、ｐＨ７．０（１．５ＭＮａＣｌを含む））および２×ＳＳＣで順次処理し、風乾した。転写したＤＮＡは該ナイロン膜に紫外線照射することにより膜上に固定した。
上記で調製した標識プローブをＥｘｐｒｅｓｓＨｙｂＨｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎＳｏｌｕｔｉｏｎ（クロンテック社製）に添加し、該溶液にＤＮＡを固定したナイロン膜を浸し、６５℃で１６時間ハイブリダイゼーションを行なった。ハイブリダイゼーション後のナイロン膜を２×ＳＳＣ（２０×ＳＳＣ：３ＭＮａＣｌ、０．３Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ７．０）で室温にて５分、１×ＳＳＣで５０℃にて３０分、０．５×ＳＳＣで室温にて５分洗浄後、風乾した。次いで、このナイロン膜をイメージングプレート（富士写真フイルム社製）共にイメージングプレートカセット（富士写真フイルム社製）に装着し、オートラジオグラフィーを行った後、イメージアナライザーＦＬＡ３０００Ｇ（富士写真フイルム社製）で画像解析を行った。シグナルが検出されたコロニーについて単一クローンが得られるまでコロニーハイブリダイゼーションを繰り返し行った。得られた単一クローンコロニーからＱＩＡｐｒｅｐＳｐｉｎＭｉｎｉｐｒｅｐＫｉｔ（キアゲン社製）を用いてプラスミドＤＮＡを調製し、ＤＹＥｎａｍｉｃＥＴＤｙｅＴｅｒｍｉｎａｔｏｒＫｉｔ（ＭｅｇａＢＡＣＥ）（アマシャムバイオサイエンス社製）を用い、添付のマニュアルに従って、ＭｅｇａＢＡＣＥ５００ＤＮＡＡｎａｌｙｓｉｓＳｙｓｔｅｍ（アマシャムバイオサイエンス社製）により全塩基配列を決定した。
その結果、ヒトｃＤＮＡライブラリーより４４１個のアミノ酸よりなるポリペプチド（配列番号２；以下、ｈ３９Ｃ７）をコードするｃＤＮＡ断片（配列番号１）を含むｃＤＮＡを得た。またラットｃＤＮＡライブラリーより４４５個のアミノ酸よりなるポリペプチド（配列番号４；以下、ｒ３９Ｃ７）をコードするｃＤＮＡ断片（配列番号３）を含むｃＤＮＡを得た。ヒトとラットのｃＤＮＡは塩基レベルで８６％、アミノ酸レベルで８６％の類似性を有していた。ｈ３９Ｃ７はアミノ酸配列の第１位から第２１位が、予想されるシグナルペプチド領域（ＳＰ；ＳｉｇｎａｌＰｅｐｔｉｄｅ）、第２３位から第３０５位がＮｏｇｏ受容体のロイシンリッチリピート領域（ＬＲＲ；Ｌｅｕｃｉｎｅ−ｒｉｃｈｒｅｐｅａｔｄｏｍａｉｎ）と類似性を有する９つの領域で、アミノ末端側から順に、ＬＲＲＮＴ（ＬｅｃｉｎｅｒｉｃｈｒｅｐｅａｔＮ−ｔｅｒｍｉｎａｌｄｏｍａｉｎ）、ＬＲＲ−１、ＬＲＲ−２、ＬＲＲ−３、ＬＲＲ−４、ＬＲＲ−５、ＬＲＲ−６、ＬＲＲ−７、およびＬＲＲＣＴ（ＬｅｃｉｎｅｒｉｃｈｒｅｐｅａｔＣ−ｔｅｒｍｉｎａｌｄｏｍａｉｎ）で表しており、カルボキシ末端はＧＰＩ（グルコシルホスファチジルイノシトール）アンカーモチーフ構造を有していた（図１）。ＬＲＲは蛋白質間相互作用に関与する機能がある（ＪｏｕｒｎａｌｏｆＭｏｌｅｃｕｌａｒＢｉｏｌｏｇｙ，２７７，５１９，（１９９８）．）。また、ＧＰＩアンカーモチーフ構造は細胞膜上で、細胞膜との結合に関与する機能がある（蛋白質・核酸・酵素，４４，１３２１（１９９９）．）。以上のことから、ｈ３９Ｃ７は細胞膜受容体として機能していると推定される。既知の遺伝子との類似性を検討したところ、ヒトのＮｏｇｏ受容体と４１％の相同性を有していた。Ｎｏｇｏ受容体とのアミノ酸配列比較のための至適アラインメントは、遺伝子情報処理ソフトウェアであるＧＥＮＥＴＹＸ（ソフトウェア社製）を用いて、Ｌｉｐｍａｎ−Ｐｅａｒｓｏｎ法（Ｓｃｉｅｎｃｅ，２２７，１４３５−１４４１（１９８５）．）により実施した。

ヒト正常組織における３９Ｃ７ｍＲＮＡの発現
実施例２で得られたｈ３９Ｃ７をコードするｃＤＮＡを含むプラスミドを制限酵素ＥｃｏＲＩ（宝酒造社製）で消化し、ＱＩＡｑｕｉｃｋＧｅｌＥｘｔｒａｃｔｉｏｎＫｉｔ（キアゲン社製）を用い添付のマニュアルにしたがってｈ３９Ｃ７を含むｃＤＮＡ断片を得た。得られたｃＤＮＡ断片５０ｎｇをＲｅｄｉｐｒｉｍｅＩＩＤＮＡＬａｂｅｌｌｉｎｇＳｙｓｔｅｍ（アマシャムファルマシアバイオテク社製）を用い添付のマニュアルに従って、［α−^３２Ｐ］ｄＣＴＰ（６０００Ｃｉ／ｍｍｏｌ，２０ｍＣｉ／ｍｌ）（ＮＥＮ社製）で^３２Ｐで標識した。このようにして調製した^３２Ｐ標識ｃＤＮＡ断片をプローブとして用いノーザンブロット解析を行った。
上記で調製した標識プローブをＥｘｐｒｅｓｓＨｙｂＨｙｂｒｉｄｉｚａｔｉｏｎＳｏｌｕｔｉｏｎ（クロンテック社製）に添加し、該溶液にＭＴＮブロットメンブレン（クロンテック社製）を浸漬し、６５℃で１６時間ハイブリダイゼーションを行なった。ハイブリダイゼーション後のナイロン膜を２×ＳＳＣ（２０×ＳＳＣ：３ＭＮａＣｌ、０．３Ｍクエン酸ナトリウム、ｐＨ７．０）で室温にて５分、１×ＳＳＣで５０℃にて３０分、０．５×ＳＳＣで室温にて５分洗浄後、風乾した。次いで、このナイロン膜をイメージングプレート（富士写真フイルム社製）共にイメージングプレートカセット（富士写真フイルム社製）に装着し、オートラジオグラフィーを行った後、イメージアナライザーＦＬＡ３０００Ｇで画像解析を行た。
その結果、ｈ３９Ｃ７のｍＲＮＡは、約５ｋｂの大きさで、脳および骨格筋での発現が観察された（図２）。

ヒト脳における３９Ｃ７ｍＲＮＡの発現
ヒト脳において発現が高いことから、脳内領域における当該遺伝子の発現量の違いについて、ＨｕｍａｎＭｕｌｔｉｐｌｅＴｉｓｓｕｅＥｘｐｒｅｓｓｉｏｎＡｒｒａｙ（クロンテック社）を用いて解析した。このドット・ブロット膜はヒト脳の種々の領域に由来するポリＡ−ＲＮＡをナイロン膜にスポットしたものである。このナイロン膜を、０．５Ｍりん酸バッファー（ｐＨ７．２）、１％ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、で１時間、予備ハイブリダイゼーションを行った。次に、実施例３で取得したｈ３９Ｃ７ｃＤＮＡ断片（配列番号：１）５０ｎｇを、［α−^３２Ｐ］ｄＣＴＰ（６０００Ｃｉ／ｍｍｏｌ，２０ｍＣｉ／ｍｌ）（ＮＥＮ社）を用いてＲｅｄｉｐｒｉｍｅＩＩＤＮＡＬａｂｅｌｌｉｎｇＳｙｓｔｅｍ（アマシャムバイオサイエンス社製）を使用して、その処方に従い^３２Ｐ標識した。^３２Ｐ標識当該遺伝子ｃＤＮＡ断片をプローブとして同バッファーに加えた液にナイロン膜を移し、６５℃で１６時間ハイブリダイゼーションを行った。引続きこのナイロン膜を２ｘＳＳＣで室温で５分濯いだ後、１ｘＳＳＣで５０℃で３０分、０．５ｘＳＳＣで５０℃で３０分洗浄した。風乾後このナイロン膜をフジ写真フィルム社のイメージング・プレートに密着させ、同社イメージ・アナライザーＦＬＡ３０００Ｇで画像解析を行った。各シグナルの強度を解析し定量化した。その結果、脳において高度な精神機能に関与している大脳皮質（側頭葉、頭頂葉など）において強い発現が観察された（図３）。また、図中グラフの縦軸は、全脳の発現量を１とした相対量を示している。

ＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラットにおけるｒ３９Ｃ７ｍＲＮＡの発現
インスリン抵抗性を有するＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラットでの遺伝子発現変動解析を実施した。食餌制限と運動を実施したラットより骨格筋を摘出して、ＴＲＩｚｏｌ試薬（インビトロジェン社）を用いて、その処方に従い全ＲＮＡを抽出し、５０μｇの全ＲＮＡを得た。このＲＮＡ１μｇを用いて、ＡｄｖａｎｔａｇｅＲＴｆｏｒＰＣＲｋｉｔ（クロンテック社製）を用いてｃＤＮＡを合成した。次に、実施例１で取得したｒ３９Ｃ７ｃＤＮＡ断片（配列番号：３）を基に、プライマー設計ソフトウェアＰｒｉｍｅｒＥｘｐｒｅｓｓ（アプライドバイオシステムズ社製）を用いて、ＴａｑＭａｎプライマーおよびプライマーを設計し、アプライドバイオシステムズ社に合成を依頼した。作製したＴａｑＭａｎプライマーおよびプローブを用いて、合成したｃＤＮＡを鋳型としてＰＣＲ反応を行いｍＲＮＡ量を定量した。ＰＣＲ反応試薬にはＰｌａｔｉｎｕｍＱｕａｎｔｉｔａｖｅＰＣＲＳｕｐｅｒＭｉｘ−ＵＤＧ（インビトロジェン社製）を用いて、５０℃で２分、９５℃で２分の反応サイクルを１回行った後、９５℃で２分および６０℃で１分の反応サイクルを４０回行った。その結果、ＺｕｃｋｅｒＦａｔｔｙラット骨格筋において、食餌制限および運動によりインスリン抵抗性が改善されるとｒ３９Ｃ７のｍＲＮＡ発現が増大した（図４）。

ｈ３９Ｃ７発現細胞株の樹立
実施例２で得られたｈ３９Ｃ７の完全長ｃＤＮＡをｐ３ｘＦＬＡＧ−ＣＭＶ−７．１ベクター（シグマ社）へ挿入し発現ベクターとした。この発現ベクターをＬ６細胞に導入し、ｈ３９Ｃ７を安定的に発現する細胞を取得した。発現ベクターを導入した細胞におけるｈ３９Ｃ７の発現は抗ＦＬＡＧ抗体を用いたウェスタンブロット法により検出した（図５）。全細胞抽出液をＳＤＳ−ＰＡＧＥした後、ＩｍｍｏｂｉｌｏｎＴｒａｎｓｆｅｒＭｅｍｂｒａｎｅｓ（ＭＩＬＬＩＰＯＲＥ社）に転写した。このメンブランを５％スキムミルク、ＰＢＳ中で室温、１時間ブロッキング処理した後、Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ−ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄＡｎｔｉ−ＦＬＡＧ抗体（シグマ社）を加え、さらに１時間室温でインキュベートした。インキュベート後、メンブランを０．１％Ｔｗｅｅｎ−ＰＢＳで洗浄しＥＣＬ＋ｐｌｕｓＷｅｓｔｅｒｎＢｌｏｔｔｉｎｇＤｅｔｅｃｔｉｏｎＳｙｓｔｅｍ（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を用いて発色、ＨｙｐｅｒｆｉｌｍＥＣＬ（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）に露光した。

ｈ３９Ｃ７発現細胞株におけるグルコース取りこみ活性の測定
実施例６により得られたｈ３９Ｃ７発現細胞株を用いてグルコース取りこみ活性の測定を行った。ＣｙｔｏＳｔａｒ−Ｔｐｌａｔｅ（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）に細胞を２×１０^４ｃｅｌｌｓ／ｗｅｌｌで捲いた後、ＣＯ_２インキュベターで３７℃、一晩培養した。この細胞を３００μｌのＰＢＳ（−）で３回ｗａｓｈした後、８０μｌのＨＥＰＥＳ−Ｋｒｅｂｓｂｕｆｆｅｒ（１１９ｍＭＮａＣｌ，４．７５ｍＭＫＣｌ，５ｍＭＮａＨＣＯ_３，２．５４ｍＭＣａＣｌ_２・２Ｈ_２Ｏ，１．２ｍＭＭｇＳＯ_４，２０ｍＭＨＥＰＥＳ・７Ｈ_２Ｏ（ｐＨ７．４））を添加した。続いて３μＭのｉｎｓｕｌｉｎを１０μｌ、及び２−ＤＥＯＸＹ−Ｄ−［Ｕ−^１４Ｃ］Ｇｌｕｃｏｓｅ溶液（ＡｍｅｒｓｈａｍＢｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ社）を１０μｌ添加後、軽く混和して、ＣＯ_２インキュベターで３７℃、２０分間インキュベートした。インキュベート後、１００μＭのＣｙｔｏｃｈａｌａｓｉｎＢを１０μｌ添加し、１４５０ＭＩＣＲＯＢＥＴＡＴＲＩＬＵＸ（ＰｅｒｋｉｎＥｌｍｅｒ社）で測定した（図６）。この結果、ｈ３９Ｃ７強制発現細胞では、コントロール細胞と比較してインスリン濃度非依存的にグルコース取りこみ量が増大していることが観察された。アッセイに使用したサンプルは、ＣｙＱＵＡＮＴＣｅｌｌＰｒｏｌｉｆｅｒａｔｉｏｎＡｓｓａｙＫｉｔ（ＭｏｌｅｃｕｌａｒＰｒｏｂｅｓ社）により測定したＤＮＡ量で補正し、その結果を図６に示した。
なお、細胞の培養については、１０％ｆｅｔａｌｂｏｖｉｎｅｓｅｒｕｍと１ｘＡｎｔｉｂｉｏｔｉｃ−Ａｎｔｉｍｙｃｏｔｉｃ（Ｉｎｖｉｔｒｏｇｅｎ社製）を加えたα−ＭＥＭを培地として使用し、７０−８０％コンフルエントに達した時点でトリプシンを使用して細胞を回収、１／１０−２０希釈して継代する条件で行なった。
その結果、図に示すように、ｈ３９Ｃ７の強制発現により、グルコース取り込み能が亢進することがわかった。したがって、ｈ３９Ｃ７の発現の低下が、糖尿病の病態に関連することが示唆された。

本発明により、アルツハイマー病、パーキンソン病、および筋萎縮性側索硬化症などの神経変性疾患のマーカーおよび糖尿病マーカー、ならびに神経変性疾患および糖尿病治療薬であるＮｏｇｏ受容体様新規ポリペプチド、該ポリペプチドをコードするポリヌクレオチド、該ＤＮＡが組み込まれた組換え体ベクター、該組換え体ベクターを保有する形質転換体、該ポリペプチドの製造法、該ポリペプチドを認識する抗体、該抗体を用いる本発明のポリペプチドの定量法および免疫学的検出法、該抗体を含む糖尿病または神経変性疾患検出用キット、該ポリペプチドのｍＲＮＡの定量法、該ポリペプチドに対するリガンドのスクリーニング法、該ポリペプチドとリガンドとの結合性を変化させる物質のスクリーニング法、該ポリペプチドの発現を変動させる物質のスクリーニング法、ノックアウト動物、トランスジェニック動物、本発明の抗体、リガンド、リガンドとの結合性を変化させる物質、または発現を変動させる物質を含有する医薬が提供される。

【配列表】

Claims

配列番号２の２２位のＧｌｙから４４１位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩。
配列番号２の１位のＭｅｔから４４１位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有する請求の範囲第１項記載のポリペプチドまたはその塩。
配列番号４の２２位のＳｅｒから４４５位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有するポリペプチドまたはその塩。
配列番号４の１位のＭｅｔから４４５位のＡｒｇで表わされるアミノ酸配列を含有する請求の範囲第３項記載のポリペプチドまたはその塩。
請求の範囲第１項から第４項のいずれか記載のアミノ酸配列において、１若しくは数個のアミノ酸が欠失、置換または付加から選択される少なくとも１つの変異を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドまたはその塩。
糖尿病マーカー、神経変性疾患マーカー、糖尿病治療薬、あるいは神経変性疾患治療薬として用いることを特徴とする請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチド。
請求の範囲第１項から第６項のいずれか記載のポリペプチドをコードする塩基配列を有するポリヌクレオド。
配列番号１の１７４番目のＧから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有する請求の範囲第７項記載のポリヌクレオチド。
配列番号１の１１１番目のＡから１４３３番目のＣで表わされる塩基配列を含有する請求の範囲第７項記載のポリヌクレオチド。
配列番号３の１７０番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有する請求の範囲第７項記載のポリヌクレオチド。
配列番号３の１０７番目のＡから１４４１番目のＣで表わされる塩基配列を含有する請求の範囲第７項記載のポリヌクレオチド。
請求の範囲第７項から第１１項のいずれか記載のポリヌクレオチドとストリンジェントな条件でハイブリダイズするポリヌクレオチド。
請求の範囲第７項から第１２項のいずれか記載のポリヌクレオチドに相補的な塩基配列を有するポリヌクレオチド。
糖尿病マーカー、神経変性疾患マーカー、糖尿病治療薬あるいは神経変性疾患治療薬として用いることを特徴とする請求の範囲第７項から第１１項および第１３項のいずれか記載のポリヌクレオチド。
配列番号１または第３項記載の塩基配列中の連続した５から６０塩基と同一配列を有するオリゴヌクレオチド、該オリゴヌクレオチドと相補的な配列を有するオリゴヌクレオチドおよびそれらの誘導体オリゴヌクレオチドからなる群より選ばれるポリヌクレオチド。
請求の範囲第７項から第１３項のいずれか記載のポリヌクレオチドを含有する組換えベクター。
請求の範囲第１６項記載の組換えベクターで形質転換させた形質転換体。
請求の範囲第１７項記載の形質転換体を培養する工程、および産生された請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドを培養液から回収する工程、を含有する該ポリペプチドまたはその塩の製造法。
請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドを特異的に認職する抗体。
下記の工程を含む、請求の範囲第１９項記載の抗体を用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドの検出または定量方法、
（ａ）ポリペプチドと該抗体とを接触させる工程および、
（ｂ）ポリペプチドと該抗体との結合を検出する工程。
請求の範囲第２０項記載の方法を用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドが関連する糖尿病または神経変性疾患の検出方法。
請求の範囲第２０項記載の方法を用いることを特徴とする糖尿病または神経変性疾患の検出用キット。
下記の工程を含む請求の範囲第７項から第１３項および第１５項のいずれか記載のポリヌクレオチドを用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドのｍＲＮＡの検出または定量方法、
（ａ）ｍＲＮＡと該ポリヌクレオチドとを接触させる工程および、
（ｂ）ｍＲＮＡと該ポリヌクレオチドとの結合を検出する工程。
請求の範囲第２３項記載の方法を用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドが関連する糖尿病または神経変性疾患の検出方法。
請求の範囲第２３項記載の方法を用いることを特徴とする、糖尿病または神経変性疾患の検出用キット。
請求の範囲第２３項記載の方法を用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項記載のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量の測定方法。
請求の範囲第２３項記載の方法を用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項記載のポリペプチドをコードする遺伝子の発現量の測定キット。
請求の範囲第７項から第１３および第１５項のいずれか記載のポリヌクレオチドを用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドをコードするＤＮＡの転写またはｍＲＮＡの翻訳を促進または抑制する方法。
下記の工程を含む、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドの結合物質のスクリーニング方法、
（ａ）請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドと被検物質を接触させる工程および、
（ｂ）該ポリペプチドと被検物質の結合を検出する工程。
請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドを含むことを特徴とする、該ポリペプチドの結合物質のスクリーニング用キット。
請求の範囲第２９項記載の結合物質のスクリーニング方法により得られることを特徴とする、結合物質。
下記の工程を含む、請求の範囲第３１項記載の結合物質と請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドとの結合活性調節物質のスクリーニング方法、
（ａ）被検物質の存在下または非存在下、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドと請求の範囲第３１項記載の結合物質を接触させる工程および、
（ｂ）該ポリペプチドと該結合物質の結合活性を、被検物質の存在下と非存在下で比較する工程。
請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドおよび請求の範囲第３０項記載の結合物質を含むことを特徴とする、結合活性調節物質のスクリーニング用キット。
請求の範囲第３３項記載のスクリーニング方法により得られることを特徴とする、結合活性調節物質。
下記の工程を含む、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドの発現調節物質のスクリーニング方法、
（ａ）請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドを発現しうる細胞と被検物質を接触させる工程および、
（ｂ）該ポリペプチドの発現量の変化を、請求の範囲第２０項または第２３項のいずれか記載の方法を用いて検出する工程。
請求の範囲第３５項記載の方法を用いることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドの発現調節物質のスクリーニング用キット。
請求の範囲第３５項記載のスクリーニング方法により得られることを特徴とする、請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドの発現調節物質。
請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドをコードするＤＮＡを欠損または変異させた非ヒトノックアウト動物。
請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドをコードするＤＮＡを発現または変異させた非ヒトトランスジェニック動物。
請求の範囲第１９項記載の抗体、第３１項記載の結合物質、第３４項記載の結合活性調節物質または第３７項記載の発現調節物質を含有してなる医薬組成物。
請求の範囲第１項から第５項のいずれか記載のポリペプチドから選ばれる少なくとも１つを含有してなる医薬組成物。
請求の範囲第７項から第１３項および第１５項のいずれか記載のポリヌクレオチドから選ばれる少なくとも１つを含有してなる医薬組成物。
神経変性疾患または糖尿病の治療剤である請求の範囲第４０項から第４２項のいずれか記載の医薬組成物。
請求の範囲第４０項から第４３項のいずれか記載の医薬組成物を投与することを特徴とする神経変性疾患または糖尿病の治療方法。