JPS637798A - α−アミラ−ゼの測定法及び測定用試薬 - Google Patents
α−アミラ−ゼの測定法及び測定用試薬Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
本発明は、1橿又は数種の助酵素の存在で基質それ自体
を分解し、分解生成物を測定することによって、α−ア
ミラーゼを測定するための方法と試薬に関する。
を分解し、分解生成物を測定することによって、α−ア
ミラーゼを測定するための方法と試薬に関する。
従来の技術
α−アミラーゼ及びそのイソ酵素の測定は、それらの結
果が診断目的、特に膵臓病の診断に使用されるので、臨
床化学の特に重要な方法である。従って多数のα−アミ
ラーゼ測定法が開発された。それらは大部分、しばしば
1a[以上の助酵素の存在での、基質の分解及び分解生
成物の測定に基づく。特許、例えは米国特許(tys−
ps)第3879263号及び同第4000042号及
び西ドイツ特許公開(Doll!−08)第27411
92号明細書に記載されている様に、測定可能な基を生
ずる澱粉及びマルトオリイシドが工業的KReである。
果が診断目的、特に膵臓病の診断に使用されるので、臨
床化学の特に重要な方法である。従って多数のα−アミ
ラーゼ測定法が開発された。それらは大部分、しばしば
1a[以上の助酵素の存在での、基質の分解及び分解生
成物の測定に基づく。特許、例えは米国特許(tys−
ps)第3879263号及び同第4000042号及
び西ドイツ特許公開(Doll!−08)第27411
92号明細書に記載されている様に、測定可能な基を生
ずる澱粉及びマルトオリイシドが工業的KReである。
前記マルトオリゴシトは、例えば西ドイツ特許公開(D
I−O8)第2731421号及び第2755803号
明細書に記載されているように光学的に測定可能な基に
よっても誘導することができるか又はエチリデン保護基
t−有していてもよい(欧州特許第135758A1号
明細書)。
I−O8)第2731421号及び第2755803号
明細書に記載されているように光学的に測定可能な基に
よっても誘導することができるか又はエチリデン保護基
t−有していてもよい(欧州特許第135758A1号
明細書)。
これらの測定の一般的な難点は全て、基質がα−アミラ
ーゼによる分解に対し種々の攻撃箇所を有し、従って部
分的には極めて複雑な機構により、異なる分解生成物が
生じることである。
ーゼによる分解に対し種々の攻撃箇所を有し、従って部
分的には極めて複雑な機構により、異なる分解生成物が
生じることである。
これによって活性の正確な計算が著しく困難になり、精
密さが部分的に損われる。例えば基質α−(4−ニトロ
フェニル)−マルトヘプタオースの分解の際には、マル
トオクタオース約60%が生じるが、これは、例えばα
−グルコシダーゼを用いて行われる次の指示薬反応によ
って劣悪に分解されるにすぎない。同様な難点がその他
のマルトオリゴシト基質及びその誘導体の場合に存在す
る。この難点は、マルトトリオース及びマルトースもし
くはそれらの相応する誘導体のみを生成するように基質
の分解を進行させるようにすることができれば、解決さ
れるであろう。
密さが部分的に損われる。例えば基質α−(4−ニトロ
フェニル)−マルトヘプタオースの分解の際には、マル
トオクタオース約60%が生じるが、これは、例えばα
−グルコシダーゼを用いて行われる次の指示薬反応によ
って劣悪に分解されるにすぎない。同様な難点がその他
のマルトオリゴシト基質及びその誘導体の場合に存在す
る。この難点は、マルトトリオース及びマルトースもし
くはそれらの相応する誘導体のみを生成するように基質
の分解を進行させるようにすることができれば、解決さ
れるであろう。
更に、基質の分解速度を高めることができる際にも期待
される。
される。
従って本発明の課題は、従来使用される基質で前記の難
点を除去し、特に基質の分%!型を改良し及び分購率f
:高めることである。
点を除去し、特に基質の分%!型を改良し及び分購率f
:高めることである。
この課題は本発明により、基質を1種以上の助酵累の存
在で分解し、分解生成物を測定することたよるα−アミ
ラーゼの測定法によって暦法され、この方法は、反応を
α−アミラーゼに対するモノクロナール抗体の存在で実
施することを特徴とする。
在で分解し、分解生成物を測定することたよるα−アミ
ラーゼの測定法によって暦法され、この方法は、反応を
α−アミラーゼに対するモノクロナール抗体の存在で実
施することを特徴とする。
基質としては、本発明による方法のためにα−アミラー
ゼの天然の基質及びその誘導体、例えは澱粉銹導体又は
少at類及び多糖類を使用することができる。場合によ
っては発色団によって置換されていて良くかつ/又は少
なくとも1個のエチリデン保護基を有していて良い、分
子中にグルコース単位2〜10個を有するD−マルトオ
リイシドが特に好適であると判明した。
ゼの天然の基質及びその誘導体、例えは澱粉銹導体又は
少at類及び多糖類を使用することができる。場合によ
っては発色団によって置換されていて良くかつ/又は少
なくとも1個のエチリデン保護基を有していて良い、分
子中にグルコース単位2〜10個を有するD−マルトオ
リイシドが特に好適であると判明した。
分子中にグルコース巣位4〜8個を有するようなり一マ
ルトオリゴシドが特に有利である。分解により容易に光
学的に測定しうる好適な発色団h、例、t、ハフェニル
ー、モノニトロフェニル−、ソルビット−又はグルコン
酸基である(西Vイツ特許公開公報第2755803号
明細?)。
ルトオリゴシドが特に有利である。分解により容易に光
学的に測定しうる好適な発色団h、例、t、ハフェニル
ー、モノニトロフェニル−、ソルビット−又はグルコン
酸基である(西Vイツ特許公開公報第2755803号
明細?)。
同様に置換分として、色素又は色素結合成分、例えば螢
光色素又はその前駆物質(これは容易に本来の色素に公
知方法で変えることができる)が挙げられる。保護基の
測定は当業者に公知であり、本明細書で詳説する必要は
ない。本発明の方法で特に好適な基質の代表例は、マル
トテトラオース、マルトペンタオース、マルトヘキサオ
ース、マルトヘプタオース及びマルトオクタオーX、ソ
レラのモノニトロフェニル−及ヒジニトロフェニル誘導
体、前記マルトオリゴオ−スのエチリデン銹導体及びエ
チリデン保獲基もニトロフェニル−又ハシニ)o7z二
/141゜有する相応する化合物である。
光色素又はその前駆物質(これは容易に本来の色素に公
知方法で変えることができる)が挙げられる。保護基の
測定は当業者に公知であり、本明細書で詳説する必要は
ない。本発明の方法で特に好適な基質の代表例は、マル
トテトラオース、マルトペンタオース、マルトヘキサオ
ース、マルトヘプタオース及びマルトオクタオーX、ソ
レラのモノニトロフェニル−及ヒジニトロフェニル誘導
体、前記マルトオリゴオ−スのエチリデン銹導体及びエ
チリデン保獲基もニトロフェニル−又ハシニ)o7z二
/141゜有する相応する化合物である。
例として挙げられる助酵素は、使用される基質の洩類に
左右され、−方では場合によってはα−アミラーゼによ
って生成される分解生成物を更に分解するか又は更に反
応させて測定可能な最終生成物を生成するのに役立つ。
左右され、−方では場合によってはα−アミラーゼによ
って生成される分解生成物を更に分解するか又は更に反
応させて測定可能な最終生成物を生成するのに役立つ。
すなわち、有利にはニトロフェニル基で置換されたグル
コース基2〜10個を有するマルトオリゴシrを使用す
る場合に、助酵素としては、それがα−化合物がである
場合にはα−グルコシダーゼを皐独で、又はそれがβ−
化合物、例えばβ−(p−ニトロフェニル−)マルトヘ
プタサツカリドである場合にはβ−グルコシダーゼと一
緒に使用する。マルトヘプタオースの場合には、α−ア
ミラーゼによる分解が行われてマルトトリオース及びマ
ルトテトラオースが生成するがこれはα−グルコシダー
ゼによって完全にグルコース単位に分解される1次に得
られるグルコースを常用のグルコース測定法により、例
えば助酵累としてヘキソキナーゼ及びグルコース−6−
ホスフェートデヒドロゲナーゼを用いて測定することが
できる。
コース基2〜10個を有するマルトオリゴシrを使用す
る場合に、助酵素としては、それがα−化合物がである
場合にはα−グルコシダーゼを皐独で、又はそれがβ−
化合物、例えばβ−(p−ニトロフェニル−)マルトヘ
プタサツカリドである場合にはβ−グルコシダーゼと一
緒に使用する。マルトヘプタオースの場合には、α−ア
ミラーゼによる分解が行われてマルトトリオース及びマ
ルトテトラオースが生成するがこれはα−グルコシダー
ゼによって完全にグルコース単位に分解される1次に得
られるグルコースを常用のグルコース測定法により、例
えば助酵累としてヘキソキナーゼ及びグルコース−6−
ホスフェートデヒドロゲナーゼを用いて測定することが
できる。
同様にマルトオリゴシト、例えばマルトヘプタオース又
はマルトテトラオース金α−アミラーゼにより分解して
マルトースにし、このマルトースをマルトースホスホリ
ラーゼ、β−ホスホグルコムターゼ及びグルコース−6
−ホスフニートデヒドロデナーゼを用いて同様に公知方
法で測定することができる。前記酵素を本発明の方法で
助′#素として添加する。α−アミラーゼの分解生成物
に関するこれら及びその他の測定方法は当業者に公知で
あるので、ここでは詳説する必要はない。
はマルトテトラオース金α−アミラーゼにより分解して
マルトースにし、このマルトースをマルトースホスホリ
ラーゼ、β−ホスホグルコムターゼ及びグルコース−6
−ホスフニートデヒドロデナーゼを用いて同様に公知方
法で測定することができる。前記酵素を本発明の方法で
助′#素として添加する。α−アミラーゼの分解生成物
に関するこれら及びその他の測定方法は当業者に公知で
あるので、ここでは詳説する必要はない。
モノクロナール抗体としては、本発明では。
有利K、ハイブリッド細胞クローン469A12=IO
AOO86020601又は472G12−KOAOC
! 86020602から生成されるようなものを使用
する。しかし本発明は、α−アミラーゼに対応するその
他のモノクロナール抗体を用いて実施することもできる
。これらのモノクロナール抗体はこの為に常用の方法に
よって、り0ち特に好適な試験生体における免疫原とし
てのα−アミラーゼの使用、この免疫原拠対応する抗体
を生成する白血球の取得及び骨髄肺細胞(Myalom
z ellen )又はその他の永続的な培養可能性を
生じる細胞又は細胞フラグメントとの融合及び培養及び
こうして得た細胞クローンを生じた抗体に対する選択に
よって得ることができる。
AOO86020601又は472G12−KOAOC
! 86020602から生成されるようなものを使用
する。しかし本発明は、α−アミラーゼに対応するその
他のモノクロナール抗体を用いて実施することもできる
。これらのモノクロナール抗体はこの為に常用の方法に
よって、り0ち特に好適な試験生体における免疫原とし
てのα−アミラーゼの使用、この免疫原拠対応する抗体
を生成する白血球の取得及び骨髄肺細胞(Myalom
z ellen )又はその他の永続的な培養可能性を
生じる細胞又は細胞フラグメントとの融合及び培養及び
こうして得た細胞クローンを生じた抗体に対する選択に
よって得ることができる。
この完投法用の実験動物として、例えばバルブ(1’!
alb ) / c−マウスを使用することかでき、こ
の免疫法自体は完全又は不完全な70インドのアジュバ
ントヲ用いてか又は単に生理的食塩水中で実施すること
ができる。免疫化実施の後湾、実験動物の胛体細胞を骨
髄肺細胞と融合させ、血接培誉皿中でか又は腹水として
生長させ、選別する。
alb ) / c−マウスを使用することかでき、こ
の免疫法自体は完全又は不完全な70インドのアジュバ
ントヲ用いてか又は単に生理的食塩水中で実施すること
ができる。免疫化実施の後湾、実験動物の胛体細胞を骨
髄肺細胞と融合させ、血接培誉皿中でか又は腹水として
生長させ、選別する。
α−アミラーゼに対する抗体が不発明に好適であるか否
かは、若干の予備試験により容易に確認することができ
る。その際、本発明による作用を生じるか否かだけを調
べれば良い。しかし、特に簡単なスクリーニング法は、
本発明で有利な作用を全く生じない様な酵素に対する結
合場所を有する特定のモノクロナール抗体が存在する場
合に、評価すべきモノクロナール抗体がこの酵素に結合
するか否かのみを確認することである。このために、有
利にハイブリッド細胞クローンNCACC841113
01、N0AO(:+ F341.22003、NC!
AcC85[)22202及びEOACIC86060
601から生じるモノクロナール抗体を使用する。この
抗体と複合されるα−アミラーゼは、明らかに本発明に
よる作用を生じるような抗体とのみ結合する。
かは、若干の予備試験により容易に確認することができ
る。その際、本発明による作用を生じるか否かだけを調
べれば良い。しかし、特に簡単なスクリーニング法は、
本発明で有利な作用を全く生じない様な酵素に対する結
合場所を有する特定のモノクロナール抗体が存在する場
合に、評価すべきモノクロナール抗体がこの酵素に結合
するか否かのみを確認することである。このために、有
利にハイブリッド細胞クローンNCACC841113
01、N0AO(:+ F341.22003、NC!
AcC85[)22202及びEOACIC86060
601から生じるモノクロナール抗体を使用する。この
抗体と複合されるα−アミラーゼは、明らかに本発明に
よる作用を生じるような抗体とのみ結合する。
本発明によりα−アミラーゼに対するモノクロナール抗
体を添加することによって、意外にも、酵素活性の部分
的な者しい上昇が達成され、しかも、それはα−アミラ
ーゼの両方のイン酵素に関してである。イソ酵素のこの
上昇は、意外にも、他のイソ酵素がこのイン酵素を特異
的に抑制するモノクロナール抗体を添加することによっ
て除かれる場合でも残留する。下記第1表に、腹水から
の種々のモノクロナール抗体の、種々の基質の場合のヒ
トの唾液−(h−8A)及び膵臓−α−アミラーゼ(h
−FA)の活性に対する影響を示す。更に本発明の操作
方法によって、モノクロナール抗体の添加なしの場合よ
りも多量の直接測定可能な分解生成物を生成するように
、基質の分解型が変えられる。このことは、2種類の異
なる基質に圓して本発明により使用されるモノクロナー
ル抗体を使用する場合と使用1.ない場合の各々の活性
及び分解生成物の組成を表わした下記第2表に示される
。
体を添加することによって、意外にも、酵素活性の部分
的な者しい上昇が達成され、しかも、それはα−アミラ
ーゼの両方のイン酵素に関してである。イソ酵素のこの
上昇は、意外にも、他のイソ酵素がこのイン酵素を特異
的に抑制するモノクロナール抗体を添加することによっ
て除かれる場合でも残留する。下記第1表に、腹水から
の種々のモノクロナール抗体の、種々の基質の場合のヒ
トの唾液−(h−8A)及び膵臓−α−アミラーゼ(h
−FA)の活性に対する影響を示す。更に本発明の操作
方法によって、モノクロナール抗体の添加なしの場合よ
りも多量の直接測定可能な分解生成物を生成するように
、基質の分解型が変えられる。このことは、2種類の異
なる基質に圓して本発明により使用されるモノクロナー
ル抗体を使用する場合と使用1.ない場合の各々の活性
及び分解生成物の組成を表わした下記第2表に示される
。
第2表の最初の6つの実験で得られた分解型を添付図面
の第1図〜第6図に図解するが、それにより本発明によ
り得られる著しい効果が明らかに認めることができる。
の第1図〜第6図に図解するが、それにより本発明によ
り得られる著しい効果が明らかに認めることができる。
本発明のもう1つの目的けα−アミラーゼの測定用の試
薬であり、この試薬は基質、1種以上の助酵素及び分牌
生成物の測定用の系を含有し、α−アミラーゼに対する
モノクロナール抗体少なくとも1種を含有すること全特
徴とする。
薬であり、この試薬は基質、1種以上の助酵素及び分牌
生成物の測定用の系を含有し、α−アミラーゼに対する
モノクロナール抗体少なくとも1種を含有すること全特
徴とする。
モノクロナール抗体として有利にはハイブリッド細胞ク
ローンA69AI2−KOAC!086020601又
は/及び472 G 12− FXchac 8602
0602により生成されるモノクロナール抗体を含有す
る。
ローンA69AI2−KOAC!086020601又
は/及び472 G 12− FXchac 8602
0602により生成されるモノクロナール抗体を含有す
る。
好適な基質及び助酵素に関しては前記の方法を行う態様
に記載したものが該当する。試薬をα−アミラーゼのイ
ソ酵素の1つを測定するために使用する場合には、この
試薬は付加的に各々その他のα−アミラーゼイソ酵素に
対する1種以上のモノクロナール抗体を含有する。その
際、膵臓−α−アミラーゼの測定用試薬用には、ハイブ
リッド細胞クローンncAcc 84122003から
生成される唾液−α−アミラーゼに対するモノクロナー
ル抗体の添加及び場合によっては付加的k、ハイブリッ
ド細胞クローンychcc84111301Vcより生
成されるモノクロナール抗体の添加が有利である。
に記載したものが該当する。試薬をα−アミラーゼのイ
ソ酵素の1つを測定するために使用する場合には、この
試薬は付加的に各々その他のα−アミラーゼイソ酵素に
対する1種以上のモノクロナール抗体を含有する。その
際、膵臓−α−アミラーゼの測定用試薬用には、ハイブ
リッド細胞クローンncAcc 84122003から
生成される唾液−α−アミラーゼに対するモノクロナー
ル抗体の添加及び場合によっては付加的k、ハイブリッ
ド細胞クローンychcc84111301Vcより生
成されるモノクロナール抗体の添加が有利である。
本発明によりα−アミラーゼの活性を各々基質により3
0〜100%高め、同時に分解域を改良することができ
る。これによって、総α−アミラーゼ及びイン#素、特
に膵臓アミラーゼに対するより鋭敏な試験が可能となる
。
0〜100%高め、同時に分解域を改良することができ
る。これによって、総α−アミラーゼ及びイン#素、特
に膵臓アミラーゼに対するより鋭敏な試験が可能となる
。
次に実施例につき本発明を詳説する。
例 1
1:ヒトの唾液−α−アミラーゼを用いるマウスの免役
化 材料 一バルプ/C−マウス、雌、年令約6〜8週−ヒトの唾
液−α−アミラーゼ〔シグマ(Sig!n& )、商品
番号AO521)−70インドのアジュバント、完全(
シグマ、Nr、IP5881) 一7aインドのアジュバント、不完全(シグマ、注文用
商品番号?5506) −生理的食塩水(シグマ、Nr、 P 8033 )試
薬 A:フロイントの完全アジュバント中の唾液−α−アミ
ラーゼ(300μ9/11Ll’)Bニア0インドの不
完全アジュバント中の唾液−α−アミラーゼ(150μ
i/m1)C:生理的食塩水中の唾液−α−アミラーゼ
(150all/at ) 実施 パルプ/CマウスをA300μlを用いて免疫化する。
化 材料 一バルプ/C−マウス、雌、年令約6〜8週−ヒトの唾
液−α−アミラーゼ〔シグマ(Sig!n& )、商品
番号AO521)−70インドのアジュバント、完全(
シグマ、Nr、IP5881) 一7aインドのアジュバント、不完全(シグマ、注文用
商品番号?5506) −生理的食塩水(シグマ、Nr、 P 8033 )試
薬 A:フロイントの完全アジュバント中の唾液−α−アミ
ラーゼ(300μ9/11Ll’)Bニア0インドの不
完全アジュバント中の唾液−α−アミラーゼ(150μ
i/m1)C:生理的食塩水中の唾液−α−アミラーゼ
(150all/at ) 実施 パルプ/CマウスをA300μlを用いて免疫化する。
約8週間のリズムで各々B500μノで3〜4回再免疫
化する。融合の4日前に、C!30nμlを用いて(静
脈内)最後の免疫化を行う。
化する。融合の4日前に、C!30nμlを用いて(静
脈内)最後の免疫化を行う。
II:肺臓細胞の融合
肺臓細胞と骨髄腫細胞Ag 8.653 (ATC00
RI11580)又はB P 210 (ATCIC(
:!R工1581)の融合を、1. of工mmun、
Moth、第39巻285〜308頁による標準法に
より行う。胛体細胞対骨髄膝細胞の融合比は5:1であ
る。融合生成物を24−培養皿〔コスタ−(Oogta
r ) ]の20個に接種し、各培養容器当り腹膜の滲
出物細胞5XIQ4で培養する。
RI11580)又はB P 210 (ATCIC(
:!R工1581)の融合を、1. of工mmun、
Moth、第39巻285〜308頁による標準法に
より行う。胛体細胞対骨髄膝細胞の融合比は5:1であ
る。融合生成物を24−培養皿〔コスタ−(Oogta
r ) ]の20個に接種し、各培養容器当り腹膜の滲
出物細胞5XIQ4で培養する。
陽性の一次培養(C参照)を融合後3〜4週間後に螢光
−活性化された細胞al(Zθ1lsortθr)を用
いてクローニングする。細胞を個々に96−コスタ−プ
レートに入れ、腹膜−滲出細胞2X10’個と共に培養
する。培地として、10%の牛胎児血清を有する市販の
RPMニー1640−培地(J、A、M、A、第199
巻(1957)519頁に記載〕を使用する。
−活性化された細胞al(Zθ1lsortθr)を用
いてクローニングする。細胞を個々に96−コスタ−プ
レートに入れ、腹膜−滲出細胞2X10’個と共に培養
する。培地として、10%の牛胎児血清を有する市販の
RPMニー1640−培地(J、A、M、A、第199
巻(1957)519頁に記載〕を使用する。
■:α−アミラーゼ活性活性化用体用クリーニング系
免疫付与されたマウスの血清又はノ1イブリッド細胞の
培養上澄み液又は腹水中のアミラーゼ活性化抗体のき度
を確認するために、スクリーニング評価としてアミラー
ゼ−活性試駿ヲ用いる。その為に96−エリず(ILI
SA )プレート(Nunc、デンマーク)に、a−衝
剤(トリス−HCl50ミリモル/l、1%牛の血清ア
ルブミン、Na+J Q、1モル/1p87.5)中の
膵臓−又は唾液−α−アミラーゼ50μ!(約400
U/7 )を前取って装入し、被検溶液〔例えば培養上
澄み液、(生理的食塩溶液で)1々に希釈した血清、(
生理的食塩溶液で)al々に希釈した腹水〕50μjと
一緒に20分間室温で予め恒温保持する。
培養上澄み液又は腹水中のアミラーゼ活性化抗体のき度
を確認するために、スクリーニング評価としてアミラー
ゼ−活性試駿ヲ用いる。その為に96−エリず(ILI
SA )プレート(Nunc、デンマーク)に、a−衝
剤(トリス−HCl50ミリモル/l、1%牛の血清ア
ルブミン、Na+J Q、1モル/1p87.5)中の
膵臓−又は唾液−α−アミラーゼ50μ!(約400
U/7 )を前取って装入し、被検溶液〔例えば培養上
澄み液、(生理的食塩溶液で)1々に希釈した血清、(
生理的食塩溶液で)al々に希釈した腹水〕50μjと
一緒に20分間室温で予め恒温保持する。
その後アミラーゼ基質〔α−グリコシダーゼtiする4
−ニトロフェニル−マルトへブタオシド;ベーリンガー
マンハイム社(BoehringerMannheim
GmbH) 、商品番号568589)”]50μl
l’ft用いて酵素反応を開始させる。室温で20〜6
0分後に吸光を405 nmで光度計〔エリデーリーダ
ー(ILISA−Reader )、コン) :y (
Konton )、スイス〕で測定する(値■)。
−ニトロフェニル−マルトへブタオシド;ベーリンガー
マンハイム社(BoehringerMannheim
GmbH) 、商品番号568589)”]50μl
l’ft用いて酵素反応を開始させる。室温で20〜6
0分後に吸光を405 nmで光度計〔エリデーリーダ
ー(ILISA−Reader )、コン) :y (
Konton )、スイス〕で測定する(値■)。
次の対照を一緒に測定する:新鮮な培地(値…)。活性
は値…に対する%で記載する:この試験系を用いて下記
の結果が得られる。
は値…に対する%で記載する:この試験系を用いて下記
の結果が得られる。
−次培養の約2%から活性化されたモノクロナール抗体
を見出すことができる。
を見出すことができる。
■:腹水の製造
ハイブリッド維胞(細胞系統(Zell−Linie
)86020601又Fi86020602)1−2X
106を、各々「プリスタン・オイル(Pr1stan
Oll ) J (シグマ、ミュンヘン、部品番号
T 7640 ) 10.5蝉で1〜2回前処理したバ
ルブ/Cマウス(約生後6週間)の腹腔内に注射する。
)86020601又Fi86020602)1−2X
106を、各々「プリスタン・オイル(Pr1stan
Oll ) J (シグマ、ミュンヘン、部品番号
T 7640 ) 10.5蝉で1〜2回前処理したバ
ルブ/Cマウス(約生後6週間)の腹腔内に注射する。
約15〜20日後にマウス1匹当り、−G約10〜/
mlを有する腹水6〜511Llが取出される。
mlを有する腹水6〜511Llが取出される。
例 2
ヒトの唾液−α−アミラーゼ及びヒトの膵臓−α−アミ
ラーゼの活性に対する、活性化MAKxcAcc 86
020602及びECAOC:86020601(MA
K N0ACC! 84122003及びNCACC8
4111301との組合せも含めて)の作用物質ニ ーα−アミラーゼに対するエンズアミルに一チーテスト
(EnzAmyl−に−Test ) CI’デッヶ(
Goedecke ) 、ベルリン;商品番号8、!!
7903:] ;基質−アルトチトラ万一ス(Alto
tetraos )、 −α−アミラーゼ9に対するフェデバスーテスト(Ph
adebas−Test ) (ファルマシア(Pha
rmacia )、フライデルク;簡品番号51−52
21−00/1 );基質=青色に一リンガー マンハ
イム社、m88号 −4−二トロフェニルーα−D−マルトヘンタオシド、
a5−pNp(イーリンガー マンハイム社、商品番号
720496) −4−ニトロフェニル−α−D−マルトヘキサオシド、
G6−pNP (イーリンガー マンハイム社、商品
番号720488) ブ ー4−ニトロフェニル−α−D−マルトヘヘタオシド、
G、−pNP(イーリンガー マンハイム社、商品番号
720.!170) −4,6−エチlJ テン−4−ニトロフェニル−(!
−f) −−r kトヘプタオシ)’、 eth G
7−pNP(西「イツ特許出1@DI−A第33286
16号明細書により)造) 一細胞系統”CACjC86020602、ECACC
8(5020601、Nchca 84122003
、NCACC84111301のマウスからの腹水(例
1、IVと同様にして製造) −ヒトの多液−α−アミラーゼ(シグマ、ミュンヘン、
商品番号AO521”) −ヒトの膵臓−α−アミラーゼ[: D、J、ステイー
フェル< 5tiefrl )及びP、、T、ケラ−(
Keller )著(1973年)バイオケミ力・工O
ビオフイジカ・アクタ(Biochemica atB
iophysica Acta )により製造〕−牛血
撹アルプミン(R8A ) (ベーリンガーマンハイム
社、商品番号238031 )−α−クルコシターセ(
イーリンガー マンハイム社、商品番号750590) 試薬: A : PBS :燐酸緩衝剤100ミリモル、Na0
11 5 0 ミ リ モ ル 、 p)I−7
,1B 、: PBS/R8A:牛血清アルブミン6%
を有するPBS C!:h−8A−溶液: PBS / R8A中のヒト
の唾液−α−アミラーセ′、50口[J/Ic市販の試
薬α−アミラーゼpt+p自動包装(Automate
npacking ) 、ペーリンガー社、商品番号5
68589を用いて25°Cで測定〕 D : h−pA−浴液: PBS / BSA甲のヒ
トの膵臓−α−アミラーセ゛500 U/ l (h−
sA−溶液と同様に測定) E:アミラーゼ−試薬(各々pNP基質を用いて):ペ ヘーメス(Hepes ) −tj、衝剤(p!(7,
1)100ミリモル/1 NaCj? 5 0 ミ リ モル/ 1p
NP基質(基質各1a類)5ミリモル/lα−グルコシ
ダーゼ 30U/J F:腹水希釈物二種々の腹水をPBS / R8Aを用
いて各々1+50に希釈する。
ラーゼの活性に対する、活性化MAKxcAcc 86
020602及びECAOC:86020601(MA
K N0ACC! 84122003及びNCACC8
4111301との組合せも含めて)の作用物質ニ ーα−アミラーゼに対するエンズアミルに一チーテスト
(EnzAmyl−に−Test ) CI’デッヶ(
Goedecke ) 、ベルリン;商品番号8、!!
7903:] ;基質−アルトチトラ万一ス(Alto
tetraos )、 −α−アミラーゼ9に対するフェデバスーテスト(Ph
adebas−Test ) (ファルマシア(Pha
rmacia )、フライデルク;簡品番号51−52
21−00/1 );基質=青色に一リンガー マンハ
イム社、m88号 −4−二トロフェニルーα−D−マルトヘンタオシド、
a5−pNp(イーリンガー マンハイム社、商品番号
720496) −4−ニトロフェニル−α−D−マルトヘキサオシド、
G6−pNP (イーリンガー マンハイム社、商品
番号720488) ブ ー4−ニトロフェニル−α−D−マルトヘヘタオシド、
G、−pNP(イーリンガー マンハイム社、商品番号
720.!170) −4,6−エチlJ テン−4−ニトロフェニル−(!
−f) −−r kトヘプタオシ)’、 eth G
7−pNP(西「イツ特許出1@DI−A第33286
16号明細書により)造) 一細胞系統”CACjC86020602、ECACC
8(5020601、Nchca 84122003
、NCACC84111301のマウスからの腹水(例
1、IVと同様にして製造) −ヒトの多液−α−アミラーゼ(シグマ、ミュンヘン、
商品番号AO521”) −ヒトの膵臓−α−アミラーゼ[: D、J、ステイー
フェル< 5tiefrl )及びP、、T、ケラ−(
Keller )著(1973年)バイオケミ力・工O
ビオフイジカ・アクタ(Biochemica atB
iophysica Acta )により製造〕−牛血
撹アルプミン(R8A ) (ベーリンガーマンハイム
社、商品番号238031 )−α−クルコシターセ(
イーリンガー マンハイム社、商品番号750590) 試薬: A : PBS :燐酸緩衝剤100ミリモル、Na0
11 5 0 ミ リ モ ル 、 p)I−7
,1B 、: PBS/R8A:牛血清アルブミン6%
を有するPBS C!:h−8A−溶液: PBS / R8A中のヒト
の唾液−α−アミラーセ′、50口[J/Ic市販の試
薬α−アミラーゼpt+p自動包装(Automate
npacking ) 、ペーリンガー社、商品番号5
68589を用いて25°Cで測定〕 D : h−pA−浴液: PBS / BSA甲のヒ
トの膵臓−α−アミラーセ゛500 U/ l (h−
sA−溶液と同様に測定) E:アミラーゼ−試薬(各々pNP基質を用いて):ペ ヘーメス(Hepes ) −tj、衝剤(p!(7,
1)100ミリモル/1 NaCj? 5 0 ミ リ モル/ 1p
NP基質(基質各1a類)5ミリモル/lα−グルコシ
ダーゼ 30U/J F:腹水希釈物二種々の腹水をPBS / R8Aを用
いて各々1+50に希釈する。
実施
1、 腹水からのMAK i有するアミラーゼの調製−
アミラーゼ(h−8A又はh−FA)100μlを種々
の腹水希釈物(1a[又は数m)10μノと混合し、P
BS / REIAで200μlにする。
アミラーゼ(h−8A又はh−FA)100μlを種々
の腹水希釈物(1a[又は数m)10μノと混合し、P
BS / REIAで200μlにする。
対照として、PBS / R8Aで増分しただけのアミ
ラーゼを用いる。
ラーゼを用いる。
一混合物を5分間室温で恒温保持する。
2、基質G4ヲ用いるアミラーゼ活性の測定−アミラー
ゼ’ / MAK混合物もしくは相応する対照のアミラ
ーゼ活性の測定は、デデツケ・エンズアミルに一テスト
ヲ用いて25℃でその指示に正確に従って行う。
ゼ’ / MAK混合物もしくは相応する対照のアミラ
ーゼ活性の測定は、デデツケ・エンズアミルに一テスト
ヲ用いて25℃でその指示に正確に従って行う。
3、高分子基質を用いるアミラーゼ活性の測定−アミラ
ーゼ/ MAK混合物又は相応する対照のアミラーゼ活
性測定は、ファルマシア社のファデバスーテストを用い
その指示に正確に従って行う。
ーゼ/ MAK混合物又は相応する対照のアミラーゼ活
性測定は、ファルマシア社のファデバスーテストを用い
その指示に正確に従って行う。
4、 PNP−基質を用いるアミラーゼ活性の測定−
アミラーゼ試薬E1−を半微量キュベツト(Halbm
ikrok’uvetten )中で25°Cの温度に
する。
アミラーゼ試薬E1−を半微量キュベツト(Halbm
ikrok’uvetten )中で25°Cの温度に
する。
−アミラーゼ/ MAK混合物もしくは対照各50μl
をこれに加えて、良く混合する。
をこれに加えて、良く混合する。
分
一吸光度変化ΔE/令の測定をアミラーゼ−MAK−添
加後6〜7隘間の間にA Q 5 nmで行う。
加後6〜7隘間の間にA Q 5 nmで行う。
計算
1、G4−基質及び高分子基質
−17当りの本位(U/l)として得られるアミラーゼ
゛/ MAK混合物のアミラーゼ活性を同じ基質の対照
(MAKなし)の相応するアミラーゼ活性に関連させて
、%値として記載する。
゛/ MAK混合物のアミラーゼ活性を同じ基質の対照
(MAKなし)の相応するアミラーゼ活性に関連させて
、%値として記載する。
物のアミラーゼ活性を、同じpNP基質の対照(MAK
なし)の相応するアミラーゼ活性に関連させて、力値と
して記載する。
なし)の相応するアミラーゼ活性に関連させて、力値と
して記載する。
結果
唾液−及び膵臓アミラーゼの活性に対するモノクロナー
ル抗体の影響を種々の基質におけるMANなしの活性に
対する活性(%値)として第1表に総括する。
ル抗体の影響を種々の基質におけるMANなしの活性に
対する活性(%値)として第1表に総括する。
例 3
モノクロナール抗体EcAcc 86020601及び
kOAOc 86020602含有及び不含のヒトの膵
臓−α−アミラーゼによるG、−pNP及びeth G
7−pNPの分解壓及び反応速度の測定物質 −4,6−エチリデン−4−ニトロフェニル−α−I)
−フルトヘプタオシド、ethG、y−pNP(西Y
イツ荷”F 出Mi D’E−A第3328616号
明細書により製造) −4−二トロフェニルーα−D−マルトヘフタオシド、
a−1−pNP(イーリンガー マンハイムGmbH1
注文用商品番号720470)−細胞系統xchaa
86020601の腹水−細胞系統E(3ACC! 8
6020602の腹水−ヒトの膵臓−α−アミラーゼ(
D、J、ステーフェル及びP、J、ケラー著(1975
年)ビオケミ力 エト ビオフイジカ アクタ第602
巻、345〜661貞により装造〕−十血清アルデミン
(R8A ) (イーリンガーマンハイムGmbH1商
品番号238031 )試薬 A : Hepea緩衝剤150ミリモル、Na0A!
50ミ リ モル 、 NaN31 my /
rnl 、 pH7,1B:*&塩緩衝剤100ミリ
モル、Nac1150ミリモル、6%R8A 、 PH
7,1C:緩衝剤B中のヒトの膵臓−α−アミラーゼ7
56U/J(市販の試薬−α−アミラーゼpNP自動包
装、イーリンガー マンノ−イム社、商品番号5685
89を用い25°Cで測定)、 D=モノクロナール抗体PeAce86020601:
腹水1 +50 (Bで希釈) E:モノクロナール抗体KCACIC! 860206
02 :腹水1+50(Bで希釈) Fニア七トニトリル20部、1モル/ l H3P0゜
3部と混合 G:25ミリモル/ l x2apo、 1部、p)I
糟7.1、アセトニトリル1部と混合 H:A中の5ミリモルのath G−t pNP工:A
中の5ミリモルの07−pNP 実施 1、 アミラーゼとMAKの混合 −MAK溶液り又はE又は緩衝剤B20μl′t−膵臓
アミラーゼC200μlと混合し、5分間室温で恒温保
持する。
kOAOc 86020602含有及び不含のヒトの膵
臓−α−アミラーゼによるG、−pNP及びeth G
7−pNPの分解壓及び反応速度の測定物質 −4,6−エチリデン−4−ニトロフェニル−α−I)
−フルトヘプタオシド、ethG、y−pNP(西Y
イツ荷”F 出Mi D’E−A第3328616号
明細書により製造) −4−二トロフェニルーα−D−マルトヘフタオシド、
a−1−pNP(イーリンガー マンハイムGmbH1
注文用商品番号720470)−細胞系統xchaa
86020601の腹水−細胞系統E(3ACC! 8
6020602の腹水−ヒトの膵臓−α−アミラーゼ(
D、J、ステーフェル及びP、J、ケラー著(1975
年)ビオケミ力 エト ビオフイジカ アクタ第602
巻、345〜661貞により装造〕−十血清アルデミン
(R8A ) (イーリンガーマンハイムGmbH1商
品番号238031 )試薬 A : Hepea緩衝剤150ミリモル、Na0A!
50ミ リ モル 、 NaN31 my /
rnl 、 pH7,1B:*&塩緩衝剤100ミリ
モル、Nac1150ミリモル、6%R8A 、 PH
7,1C:緩衝剤B中のヒトの膵臓−α−アミラーゼ7
56U/J(市販の試薬−α−アミラーゼpNP自動包
装、イーリンガー マンノ−イム社、商品番号5685
89を用い25°Cで測定)、 D=モノクロナール抗体PeAce86020601:
腹水1 +50 (Bで希釈) E:モノクロナール抗体KCACIC! 860206
02 :腹水1+50(Bで希釈) Fニア七トニトリル20部、1モル/ l H3P0゜
3部と混合 G:25ミリモル/ l x2apo、 1部、p)I
糟7.1、アセトニトリル1部と混合 H:A中の5ミリモルのath G−t pNP工:A
中の5ミリモルの07−pNP 実施 1、 アミラーゼとMAKの混合 −MAK溶液り又はE又は緩衝剤B20μl′t−膵臓
アミラーゼC200μlと混合し、5分間室温で恒温保
持する。
2、 アミラー(? / MAKと基質の反応−基質溶
液(H又は工)21R1を前取って装入し、25℃の温
度にする。
液(H又は工)21R1を前取って装入し、25℃の温
度にする。
−i度調整した基質溶液を種々のアミラーゼ/MAK(
緩衝剤)混合物(1から)200μノで反応開始させる
。
緩衝剤)混合物(1から)200μノで反応開始させる
。
一正罹に1.3.5.7,10.20.30分後に、開
始させた基質溶液公告200μjit−取出し、停止試
薬F’130μjに添加する。
始させた基質溶液公告200μjit−取出し、停止試
薬F’130μjに添加する。
−停止させた基質溶液分を溶液1紅で希釈し、−20℃
で保存する。
で保存する。
3、基質及びHPLC!による基質の分解分(Bruc
hstMck )の測定 −2,からの停止させ、希釈した基質溶液分を溶解させ
る。
hstMck )の測定 −2,からの停止させ、希釈した基質溶液分を溶解させ
る。
−GツーpNPもしくはathg7−pNPの金貸、そ
の際pNP及びG1−pNP A−06−pNPの含量
(個々の基質溶液分の)をHPLOによってE、−0,
ヘーデレ(H’agelJ )その他!(1982年)
(’min。
の際pNP及びG1−pNP A−06−pNPの含量
(個々の基質溶液分の)をHPLOによってE、−0,
ヘーデレ(H’agelJ )その他!(1982年)
(’min。
Chem、 28/11巻、2201〜2205頁に記
載されている様にして測定する。
載されている様にして測定する。
結果
・ アミラーゼと基質との反応が進むにつれて、基質の
含量が減少する。第2表にMAK不含の並びにMAK
nahca 86020601及びKOAOO8602
0602含有の両方の基質に関するミリモル/(1分)
を表わす。更に、MAK含有膵臓アミラーゼの活性値を
、MAK不含活性値に対して規格化して表わす。この反
応で遊離pNP、G1−pNP、並びに05−pNI’
及びG6−pNPは生じない。その他の分解分の%数も
第1表にまとめる。
含量が減少する。第2表にMAK不含の並びにMAK
nahca 86020601及びKOAOO8602
0602含有の両方の基質に関するミリモル/(1分)
を表わす。更に、MAK含有膵臓アミラーゼの活性値を
、MAK不含活性値に対して規格化して表わす。この反
応で遊離pNP、G1−pNP、並びに05−pNI’
及びG6−pNPは生じない。その他の分解分の%数も
第1表にまとめる。
第1図〜第6図は、MAKを含有及び不含の基質として
の07−pNPに関する膵臓アミラーゼ反応における基
質の減少速度及び生成物の増加を示している。
の07−pNPに関する膵臓アミラーゼ反応における基
質の減少速度及び生成物の増加を示している。
例 4
基質マルトヘプタオースのfluのMAW EOACO
86020601及び11!0AOO86020602
によるヒトα−アミラーゼの活性化 物質ニ ーモノテスト(Monotest ) a−アミラーゼ
UV(イーリンガー マンハイム社、マンハイム、商品
番号240001 ) 一細胞系統wchcc 86020602又はmcAc
c86020601のマクスからの腹水(例1による) 一ヒトの唾液−α−アミラーゼ(シグマ、ミュンヘン、
商品番号AO521’) −ヒトの膵臓−α−アミラーゼ(D、J、ステー7エル
及びP、J、ケラー著(1973年)ビオケミ力・工・
ビオフイジカゆアクタ第302巻、345〜361頁に
より鞄造) −牛血清アルブミン、 RSA(イーリンガー マンハ
イム社、商品番号238031 ’)試薬 A : PBS /RBA :燐酸塩緩衝剤100ミリ
モル/l、Na(’l 150 ミ リ %
k / l 、 RSA 6 %
、−7,1 B:h−8A−溶液: PBS / RSA中のヒトの
唾液−α−アミラーゼ5000/J(’25℃で市販の
1iit[−α−アミラーゼPNP自動包装、イーリン
ガーマンハイム社、カタログ番号568589を用いて
測定) a:h−PA−溶液: PBB / RSA中のヒトの
膵臓−α−アミラーゼ、500U/J(h−8A−溶液
と同様に測定) D : MAICI!1CAce 86020601の
腹水希釈物:腹水1 + 50(PB8/R8Aで希釈
)x : MAK zchca 86020602の腹
水希釈物:腹水1 +50 (pBs7xshで希釈)
実施 一α−アミラーゼ及びMAKもしくは緩衝剤を下記要領
により混合する: 試料I〜■を10分間室温で恒温保持する。
86020601及び11!0AOO86020602
によるヒトα−アミラーゼの活性化 物質ニ ーモノテスト(Monotest ) a−アミラーゼ
UV(イーリンガー マンハイム社、マンハイム、商品
番号240001 ) 一細胞系統wchcc 86020602又はmcAc
c86020601のマクスからの腹水(例1による) 一ヒトの唾液−α−アミラーゼ(シグマ、ミュンヘン、
商品番号AO521’) −ヒトの膵臓−α−アミラーゼ(D、J、ステー7エル
及びP、J、ケラー著(1973年)ビオケミ力・工・
ビオフイジカゆアクタ第302巻、345〜361頁に
より鞄造) −牛血清アルブミン、 RSA(イーリンガー マンハ
イム社、商品番号238031 ’)試薬 A : PBS /RBA :燐酸塩緩衝剤100ミリ
モル/l、Na(’l 150 ミ リ %
k / l 、 RSA 6 %
、−7,1 B:h−8A−溶液: PBS / RSA中のヒトの
唾液−α−アミラーゼ5000/J(’25℃で市販の
1iit[−α−アミラーゼPNP自動包装、イーリン
ガーマンハイム社、カタログ番号568589を用いて
測定) a:h−PA−溶液: PBB / RSA中のヒトの
膵臓−α−アミラーゼ、500U/J(h−8A−溶液
と同様に測定) D : MAICI!1CAce 86020601の
腹水希釈物:腹水1 + 50(PB8/R8Aで希釈
)x : MAK zchca 86020602の腹
水希釈物:腹水1 +50 (pBs7xshで希釈)
実施 一α−アミラーゼ及びMAKもしくは緩衝剤を下記要領
により混合する: 試料I〜■を10分間室温で恒温保持する。
−試料■〜■の活性を25°Cでモノテスト−α−アミ
ラーゼUVを用いて正確にその指示に従って測定する。
ラーゼUVを用いて正確にその指示に従って測定する。
計算
MAW /アミラーゼ混合物(試料■〜■)の測定活性
をアミラーゼ/M衝剤混合物(試料I及び試料II)の
相応する活性klN達させて、%値として表わす(試料
■及び■は試料Iに関係づけ、試料■及び■け試料■に
関係づける)。
をアミラーゼ/M衝剤混合物(試料I及び試料II)の
相応する活性klN達させて、%値として表わす(試料
■及び■は試料Iに関係づけ、試料■及び■け試料■に
関係づける)。
結果
ヒトの唾液−及び膵臓−α−アミラーゼに対するモノク
ロナール抗体及び緩衝剤の影響?下記表に表わす: 例 5 融合物の培養上澄み液又はマウスの腹水又は血清〔ヒト
のα−アミラーゼNr、l、■、■及びVの工t )
−f (Kpitop )を検出しない〕からのモノク
ロナール抗体のスクリーニング系アミラーゼ−活性化M
AKのスクリーニング用の次の実施例は、検査用にMA
Kの活性化特性を利用する。アミラーゼは少なくとも5
種類のエピトープを有するものと考えられる。これらの
全てのエピトープにMANは同時に結合することができ
、エピトープ■は活性作用及び分解型変形作用を有する
MAKと結合するエピトープである。
ロナール抗体及び緩衝剤の影響?下記表に表わす: 例 5 融合物の培養上澄み液又はマウスの腹水又は血清〔ヒト
のα−アミラーゼNr、l、■、■及びVの工t )
−f (Kpitop )を検出しない〕からのモノク
ロナール抗体のスクリーニング系アミラーゼ−活性化M
AKのスクリーニング用の次の実施例は、検査用にMA
Kの活性化特性を利用する。アミラーゼは少なくとも5
種類のエピトープを有するものと考えられる。これらの
全てのエピトープにMANは同時に結合することができ
、エピトープ■は活性作用及び分解型変形作用を有する
MAKと結合するエピトープである。
物質ニ
ー年からのマウスFc −7−7ラグメントに対するポ
リクロナール抗血清 一牛血消アルデミン(R8A ) (イーリンガーマン
ハイム社、マンハイムH品番号238031 )−ヒト
の唾液−α−アミラーゼ−オランダガラシーペルオキシ
ダーゼ−複合体(h−8A翼POD) ;M、B、ウイ
ルン7 (Wilson )及びP、に、ナカ 。
リクロナール抗血清 一牛血消アルデミン(R8A ) (イーリンガーマン
ハイム社、マンハイムH品番号238031 )−ヒト
の唾液−α−アミラーゼ−オランダガラシーペルオキシ
ダーゼ−複合体(h−8A翼POD) ;M、B、ウイ
ルン7 (Wilson )及びP、に、ナカ 。
ム(Nakam ) Cイムノフルオレッセンス・アン
ド・リレイテツド・ステイニング・テクニークス(工m
munofluorescenaa and Rela
tedStaining Techniques )
W、クナツプ(l1app ) −他、Ed80、
エルセピア/−ノースーホランダΦバイオメゾカル・プ
レス(E:Lseマier /−North −Ho1
land Biomedical Press 。
ド・リレイテツド・ステイニング・テクニークス(工m
munofluorescenaa and Rela
tedStaining Techniques )
W、クナツプ(l1app ) −他、Ed80、
エルセピア/−ノースーホランダΦバイオメゾカル・プ
レス(E:Lseマier /−North −Ho1
land Biomedical Press 。
Amgter改am −New York )、197
8.215〜224頁中〕によりヒトの唾液−α−アミ
ラーゼ(シグマ、ミュンヘン、商品番号AO521)及
びオランダガラシーペルオキシダーゼ(イーリンガーマ
ンハイム社、マンハイム、商品番号238031 ’) −ハイブリッド細胞クローンN0AC!0841113
01の培地上澄み液 一ハイフリツy細胞p ロー ンNaAcc84111
301から製造したモノクロナール抗体のFa’に?−
フラグメント(アミラーゼエピトープIに対するMAK
) 一ハイブリッド細胞クローンNCACCB、ai 22
003により履造したモノクロナール抗体のFab’
−7ラグメント(アミラーゼエピトープIIk対するM
AK) 一/Sイフ+)ツI−”細胞クロー ンNGAOC85
022203によって製造したモノクロナール抗体のF
ab’−フラグメント(アミラーゼエピトープ■に対す
るMAK ) 一ハイブリッド細胞りローンvcAcc8606060
1(11509)によって製造したモノクロナール抗体
のFad−7ラグメント(アミラーゼエf)−fVに対
するMAK ) −KL工S、A−プレート〔ヌンク(Nunc )、ロ
スキルデ(Roski’lde ) 、デンマーク〕−
ABTS■:2,2−アジノージ−〔6−エチルベンズ
チアゾリンスルホネート(6) ) (べ一すンガーマ
ンハイム社、商品番号102946 ”)−メルク(M
erck ) 、 タルムシュタット(Darmsta
dt )又はイーリンガー マンハイム社の高純度の薬
品 −ELISAプレート用の保護シート:フレートφシー
ラーズ(Plate 5earers )商品番号M3
0〔ダイナチック・ドイチュランド社(Dynatec
h Deutschland GmbH) 、デンケン
ドルフ(Denkeqdorf ) 〕種々のモノクロ
ナール抗体のFab’−フラグメントの製造は次のよう
にして行った: 先ず種々のハイブリッド細胞クローンの腹水を(例1/
IVと同様)製造した。腹水から、分別した硫酸アンモ
ニウム沈澱及びジエチルアミノエチルセルロース−カラ
ム〔A、ジョンスト−7(Jobnetone )及び
R,ソーペ(Thorpe )による:イムノケミスト
リーΦイン・プラクテイス(工mmunochemis
try in Practice )、ブラックウェル
・サイアンティフィック・バブリケーションズ(Bla
ckwell 5cientificPublicat
ions )、オツクスフオー(* o yトノ々
ラ ンーエジンズ※爽−ボストンーメルボルン1.(,5! 1982.43〜47頁〕を用いてモノクロナミール抗
体ta製した。抗体t F’ab’−フラグメントに分
解することは、A、二ノノフ(N1aonoff )〔
メソツズ(Methods ) Med−Res、 1
Q巻、164頁以降(1964年)〕により行った。
8.215〜224頁中〕によりヒトの唾液−α−アミ
ラーゼ(シグマ、ミュンヘン、商品番号AO521)及
びオランダガラシーペルオキシダーゼ(イーリンガーマ
ンハイム社、マンハイム、商品番号238031 ’) −ハイブリッド細胞クローンN0AC!0841113
01の培地上澄み液 一ハイフリツy細胞p ロー ンNaAcc84111
301から製造したモノクロナール抗体のFa’に?−
フラグメント(アミラーゼエピトープIに対するMAK
) 一ハイブリッド細胞クローンNCACCB、ai 22
003により履造したモノクロナール抗体のFab’
−7ラグメント(アミラーゼエピトープIIk対するM
AK) 一/Sイフ+)ツI−”細胞クロー ンNGAOC85
022203によって製造したモノクロナール抗体のF
ab’−フラグメント(アミラーゼエピトープ■に対す
るMAK ) 一ハイブリッド細胞りローンvcAcc8606060
1(11509)によって製造したモノクロナール抗体
のFad−7ラグメント(アミラーゼエf)−fVに対
するMAK ) −KL工S、A−プレート〔ヌンク(Nunc )、ロ
スキルデ(Roski’lde ) 、デンマーク〕−
ABTS■:2,2−アジノージ−〔6−エチルベンズ
チアゾリンスルホネート(6) ) (べ一すンガーマ
ンハイム社、商品番号102946 ”)−メルク(M
erck ) 、 タルムシュタット(Darmsta
dt )又はイーリンガー マンハイム社の高純度の薬
品 −ELISAプレート用の保護シート:フレートφシー
ラーズ(Plate 5earers )商品番号M3
0〔ダイナチック・ドイチュランド社(Dynatec
h Deutschland GmbH) 、デンケン
ドルフ(Denkeqdorf ) 〕種々のモノクロ
ナール抗体のFab’−フラグメントの製造は次のよう
にして行った: 先ず種々のハイブリッド細胞クローンの腹水を(例1/
IVと同様)製造した。腹水から、分別した硫酸アンモ
ニウム沈澱及びジエチルアミノエチルセルロース−カラ
ム〔A、ジョンスト−7(Jobnetone )及び
R,ソーペ(Thorpe )による:イムノケミスト
リーΦイン・プラクテイス(工mmunochemis
try in Practice )、ブラックウェル
・サイアンティフィック・バブリケーションズ(Bla
ckwell 5cientificPublicat
ions )、オツクスフオー(* o yトノ々
ラ ンーエジンズ※爽−ボストンーメルボルン1.(,5! 1982.43〜47頁〕を用いてモノクロナミール抗
体ta製した。抗体t F’ab’−フラグメントに分
解することは、A、二ノノフ(N1aonoff )〔
メソツズ(Methods ) Med−Res、 1
Q巻、164頁以降(1964年)〕により行った。
試薬:
A:炭酸ナトリウム緩衝剤、50ミリモル。
p)19.3、マウスFc−γ−7ラグメントに対する
ヒツジのポリクロナール抗体 10μl/IILlk含有する〔ポリクロナール抗血清
から硫酸アンモニウム沈澱及びジエチルアミンエチルセ
ルロースクロマトグラフィーを用いて精製(A、ジョン
ストーン及ヒR,ソーづ:イムノケミストリーーイン・
°−“ プラクテイス、ブラックウェル・サイア
ンティフィック・パブリケーションズ、オツノ々 ラ クスフオードーロンドンーエジン%F % K −tボ
ストンーメルボルン、1982.43〜47貞)〕 B : PBS/R8A : 燐酸塩100ミリモル、
Na0J150ミリモル、−一7.1、ウシ血清アルブ
ミン(R8A ) 1%を含有 0:h−EIA−POD 200工U/l (ペルオ
キシダーゼ単位)及び〔ハイブリッド細胞クローンN0
AC○84111301.84122003.8502
2203及びr=cAcc 86060601(760
B>の) d Fab’−7ラグメント各100μgl
Illを有する試薬B;ig、は使用する1時間前にv
!4表する。
ヒツジのポリクロナール抗体 10μl/IILlk含有する〔ポリクロナール抗血清
から硫酸アンモニウム沈澱及びジエチルアミンエチルセ
ルロースクロマトグラフィーを用いて精製(A、ジョン
ストーン及ヒR,ソーづ:イムノケミストリーーイン・
°−“ プラクテイス、ブラックウェル・サイア
ンティフィック・パブリケーションズ、オツノ々 ラ クスフオードーロンドンーエジン%F % K −tボ
ストンーメルボルン、1982.43〜47貞)〕 B : PBS/R8A : 燐酸塩100ミリモル、
Na0J150ミリモル、−一7.1、ウシ血清アルブ
ミン(R8A ) 1%を含有 0:h−EIA−POD 200工U/l (ペルオ
キシダーゼ単位)及び〔ハイブリッド細胞クローンN0
AC○84111301.84122003.8502
2203及びr=cAcc 86060601(760
B>の) d Fab’−7ラグメント各100μgl
Illを有する試薬B;ig、は使用する1時間前にv
!4表する。
D:ペルオキシダーゼ−基質溶液:燐酸塩−クエン酸塩
−緩衝剤100ミリモル、pH−、i、4、過鈴縁ナト
リウム6.2ミリモル及びABT、■1.9ミリモル。
−緩衝剤100ミリモル、pH−、i、4、過鈴縁ナト
リウム6.2ミリモル及びABT、■1.9ミリモル。
E : PBS:燐酸塩緩衝剤100ミリモル、Na(
Jl 50ミリモル、…=761 実施: 1、 KL工SA−プレートの各斑点に試薬A各10
0μlをピペットで滴加する。プレートを保仰シートで
密封し、18時間4°Cで恒温保持する。
Jl 50ミリモル、…=761 実施: 1、 KL工SA−プレートの各斑点に試薬A各10
0μlをピペットで滴加する。プレートを保仰シートで
密封し、18時間4°Cで恒温保持する。
2、プレートの各斑点を試薬E少なくとも250μlで
3回洗浄する(室温、各々約5分間)。
3回洗浄する(室温、各々約5分間)。
3、 プレートの各斑点を試薬B250μ!と一緒に恒
温保持する(保護シート;室温、1時間)。
温保持する(保護シート;室温、1時間)。
4、 プレートの各斑点を2に記載したようにして洗浄
する。
する。
5. *々のハイブリッド細胞クローンの上澄み又は
免疫処理したマウスの腹水又は血清を、希釈せずに、か
つ/又Fia々の希釈度で(試薬Bで希釈)プレートの
種々の斑点中にピペットで入れる(各々100μl)。
免疫処理したマウスの腹水又は血清を、希釈せずに、か
つ/又Fia々の希釈度で(試薬Bで希釈)プレートの
種々の斑点中にピペットで入れる(各々100μl)。
プレートを゛ど封し、2時間37°C−で恒温保持す石
。盲検値として試薬Bと一緒にのみ恒温保持した斑点を
用いる。堪性の対照としてハイブリッド細胞クローンN
chac 83111301の培養土ザみを用いる。
。盲検値として試薬Bと一緒にのみ恒温保持した斑点を
用いる。堪性の対照としてハイブリッド細胞クローンN
chac 83111301の培養土ザみを用いる。
6、 fレートの各斑点を2に記載したようにして洗
浄する。
浄する。
Z プレートの各斑点を試薬C(アミラーゼ−POD−
複合体+Fab’−フラグメント)100.clと一緒
に恒温保持する(保護シート;67℃、2時間)。
複合体+Fab’−フラグメント)100.clと一緒
に恒温保持する(保護シート;67℃、2時間)。
8、プレートの各斑点を試薬Eで6回洗浄する(少なく
とも250μ!、室温、各々約2分間)。斑点を揚水ポ
ンプ及び微細なガラスカニユーレにより吸引乾燥する。
とも250μ!、室温、各々約2分間)。斑点を揚水ポ
ンプ及び微細なガラスカニユーレにより吸引乾燥する。
9 その後直ちにプレートの各斑点に試薬D100μl
’jr:加える。プレートを保護/−トで密封し、37
°Cで恒温保持する(約15〜60分、検査すべきMA
Kの濃度による)。
’jr:加える。プレートを保護/−トで密封し、37
°Cで恒温保持する(約15〜60分、検査すべきMA
Kの濃度による)。
評価:
EL工SA−プレートの1面々の斑点の吸光度を保護シ
ートを取除いた後にEL工SA −IJ−ダー(コント
ロン、スイス)で測定する。盲検値(試薬Bのみ)の吸
光度をMAKを有するその他の斑点の吸光から引く。
ートを取除いた後にEL工SA −IJ−ダー(コント
ロン、スイス)で測定する。盲検値(試薬Bのみ)の吸
光度をMAKを有するその他の斑点の吸光から引く。
アミラーゼのエピトープ■に対する抗体で被覆した斑点
け、ハイグリッド細胞クローンN0ACIC! 8.i
111301の培養上澄みで被覆した斑点よりも著し
く高い吸光度を示す。吸光度の相違は少なくとも200
mKである。
け、ハイグリッド細胞クローンN0ACIC! 8.i
111301の培養上澄みで被覆した斑点よりも著し
く高い吸光度を示す。吸光度の相違は少なくとも200
mKである。
この様にしてアミラーゼのエピトープlVt−検出する
全てのMAKが確実に見出される。このMAKは意外に
もアミラーゼを活性化しくすなわち分解速度を促進し)
、場合により基質の分触型を変える特性を有する。
全てのMAKが確実に見出される。このMAKは意外に
もアミラーゼを活性化しくすなわち分解速度を促進し)
、場合により基質の分触型を変える特性を有する。
添付図面第1図は第2表におけるMAIIm不含の場合
の基5!i G、−pNPに関する膵臓アミラーゼ反応
における基質の減少速度及び生成物の増加を表わすグラ
フ図であり、第2図はMAK BOAOO/%8602
062を含有する場合の図、第3図はMAX wcAa
c /168602061を含有する場合の図である。 FIG、1 1+、、j’Ill採持!丁、l+44.こつr]FI
G、2 FIG、3
の基5!i G、−pNPに関する膵臓アミラーゼ反応
における基質の減少速度及び生成物の増加を表わすグラ
フ図であり、第2図はMAK BOAOO/%8602
062を含有する場合の図、第3図はMAX wcAa
c /168602061を含有する場合の図である。 FIG、1 1+、、j’Ill採持!丁、l+44.こつr]FI
G、2 FIG、3
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、基質を1種又は数種の助酵素の存在で分解し、分解
生成物を測定することによつてα−アミラーゼを測定す
る方法において、反応をα−アミラーゼに対するモノク
ロナール抗体の存在で行うことを特徴とする、α−アミ
ラーゼの測定法。 2、基質として、場合によつて発色団により置換されて
おりかつ/または少なくとも1個のエチリデン保設基を
有するグルコース単位2〜10個を有するD−マルトオ
リゴシドを使用する、特許請求の範囲第1項に記載の方
法。 3、グルコース単位4〜8個を有するD−マルトオリゴ
シドを使用する、特許請求の範囲第2項に記載の方法。 4、発色団としてニトロフェニル基を有するD−マルト
オリゴシドを使用する、特許請求の範囲第2項又は第3
項のいずれか1項に記載の方法。 5、助酵素としてα−グルコシダーゼを添加する、特許
請求の範囲第2項から第4項までのいずれか1項に記載
の方法。 6、基質としてマルトヘプタオースを、かつ付加的な助
酵素としてα−グルコシダーゼの他になおヘキソキナー
ゼ及びグルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナーゼ
を使用する、特許請求の範囲第5項に記載の方法。 7、その他の助酵素としてα−グルコーシダーゼと並ん
でなおβ−グルコシダーゼを使用する、特許請求の範囲
第4項及び第5項のいずれか1項に記載の方法。 8、基質としてマルトテトラオースを、かつ助酵素とし
てマルトースホスホリラーゼ、β−ホスホグルコムター
ゼ及びグルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナーゼ
を使用する、特許請求の範囲第6項に記載の方法。 9、ハイブリッド細胞クローンECACC 86020601又はECACC86020602から
生成されるモノクロナール抗体を使用する、特許請求の
範囲第1項から第8項までのいずれか1項に記載の方法
。 10、両方のα−アミラーゼイソ酵素の1つを測定する
ために、付加的に、各々その他のα−アミラーゼイソ酵
素を特異的に抑制するモノクローナル抗体を使用する、
特許請求の範囲第1項から第9項までのいずれか1項に
記載の方法。 11、唾液−α−アミラーゼを特異的に抑制するモノク
ローナル抗体としてハイブリッド細胞クローンNCAC
C84122006により生成された抗体を単独で又は
ハイブリッド細胞核NCACC84111601により
生成された抗体と一緒に使用し、膵臓−α−アミラーゼ
を測定する、特許請求の範囲第10項に記載の方法。 12、ハイブリッド細胞クローンNCACC84111
301、RCACC84122003、NCACC85
022202及びECACC86060601から生成
されるモノクローナル抗体の存在で、α−アミラーゼと
結合するモノクローナル抗体を使用する、特許請求の範
囲第1項から第11項までのいずれか1項に記載の方法
。 13、基質、1種以上の助酵素及び分解生成物を測定す
るための系を含有するα−アミラーゼ測定用試薬におい
て、α−アミラーゼに対するモノクロナール抗体少なく
とも1種類を含有することを特徴とする、α−アミラー
ゼ測定用試薬。 14、ハイブリッド細胞クローンECACC86020
601又は/及びECACC86020602によつて
生成されるモノクロナール抗体を含有する、特許請求の
範囲第13項に記載の試薬。 15、基質として、場合により発色団によつて置換され
ておりかつ/又は少なくとも1個のエチリデン保護基を
有する、グルコース単位2〜10個を有するD−マルト
オリゴシドを含有する、特許請求の範囲第16項又は第
14項のいずれか1項に記載の試薬。 16、基質がグルコース単位4〜8個を含有する、特許
請求の範囲第15項に記載の試薬。 17、マルトオリゴシドが発色団としてニトロフェニル
基を含有する、特許請求の範囲第15項又は第16項に
記載の試薬。 18、助酵素としてα−グルコシダーゼを含有する、特
許請求の範囲第15項から第17項に記載の試薬。 19、基質としてマルトヘプタオースを、かつ助酵素と
してα−グルコシダーゼ、ヘキソキナーゼ及びグルコー
ス−6−燐酸脱水素酵素を含有する、特許請求の範囲第
18項に記載の試薬。 20、α−グルコシダーゼ及びβ−グルコシダーゼを含
有する、特許請求の範囲第17項又は第18項のいずれ
か1項に記載の試薬。 21、基質としてマルトテトラオースを、かつ助酵素と
してマルトースホスホリラーゼ、β−ホスホグルコムタ
ーゼ及びグルコース−6−ホスフェートデヒドロゲナー
ゼを使用する、特許請求の範囲第15項に記載の試薬。 22、α−アミラーゼイソ酵素に対するモノクローナル
抗体を含有する、特許請求の範囲 第16項から第21項までのいずれか1項に記載の試薬
。 23、ハイブリッド細胞クローンNCACC84122
006によつて生成される唾液−α−アミラーゼに対す
るモノクロナール抗体を含有する、特許請求の範囲第2
2項に記載の試薬。 24、付加的に、ハイブリッド細胞クローンNCACC
84111301によつて生成される、唾液−α−アミ
ラーゼに対するモノクロナール抗体を含有する、特許請
求の範囲第26項に記載の試薬。 25、付加的にハイブリッド細胞クローンNCACC8
5022203又は/及び ECACC86060601によつて生成される唾液−
α−アミラーゼに対するモノクロナール抗体を含有する
、特許請求の範囲第23項又は第24項のいずれか1項
に記載の試薬。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
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JPH0710238B2 JPH0710238B2 (ja) | 1995-02-08 |
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Family Applications (1)
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---|---|
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EP (1) | EP0251195B1 (ja) |
JP (1) | JPH0710238B2 (ja) |
AT (1) | ATE85363T1 (ja) |
DE (2) | DE3621271A1 (ja) |
ES (1) | ES2053472T3 (ja) |
GR (1) | GR3007698T3 (ja) |
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US5043436A (en) * | 1986-11-20 | 1991-08-27 | Kurita Water Ind., Ltd. | Substrate for measurement of alpha-amylase activity |
DE3903114A1 (de) * | 1989-02-02 | 1990-08-09 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur bestimmung eines enzyms aus einem isoenzymgemisch sowie hierfuer geeigneter testtraeger und dessen verwendung |
DE3929355A1 (de) * | 1989-09-04 | 1991-03-07 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren zur spezifischen bestimmung von pankreas-(alpha)-amylase |
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US20050209121A1 (en) * | 1990-12-05 | 2005-09-22 | Novozymes A/S | Proteins with changed epitopes and methods for the production thereof |
US6967080B1 (en) * | 1990-12-05 | 2005-11-22 | Novozymes A/S | Proteins with changed epitopes and methods for the production thereof |
JP2770891B2 (ja) * | 1991-06-26 | 1998-07-02 | キッコーマン株式会社 | マルトオリゴシド誘導体、これを有効成分とするα‐アミラーゼ活性測定用試薬及びこれを用いたα‐アミラーゼ活性の測定方法 |
US5334502A (en) * | 1991-11-27 | 1994-08-02 | Osborn Laboratories, Inc. | Method of collecting, identifying, and quantifying saliva |
CA2121361C (en) * | 1991-11-27 | 1997-03-04 | Jangbir S. Sangha | Apparatus and method of saliva collection and verification for dried saliva spot drug and hiv antibody testing |
US5914241A (en) * | 1993-01-19 | 1999-06-22 | Biosite Diagnostics, Inc. | Assays and kits for detecting analytes in the presence of cross-reacting substances |
JP3124435B2 (ja) * | 1993-10-20 | 2001-01-15 | キッコーマン株式会社 | α‐アミラーゼアイソザイム活性の分別定量法 |
JPH11299498A (ja) * | 1998-02-19 | 1999-11-02 | Toyobo Co Ltd | アミラ―ゼアイソザイム活性測定用試薬 |
CN110951824B (zh) * | 2019-11-15 | 2023-08-11 | 中山市创艺生化工程有限公司 | 一种复合缓冲体系在制备α-淀粉酶测定试剂盒中的应用 |
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US4493890A (en) * | 1981-03-23 | 1985-01-15 | Miles Laboratories, Inc. | Activated apoglucose oxidase and its use in specific binding assays |
US4446233A (en) * | 1982-05-05 | 1984-05-01 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Homogeneous immunoassay using covalent hybrid antibodies |
DE3328616A1 (de) * | 1983-08-08 | 1985-02-28 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Oligoglucosidderivate |
US4649108A (en) * | 1984-07-26 | 1987-03-10 | Genzyme Corporation | Alpha amylase assay |
DE3500526A1 (de) * | 1985-01-09 | 1986-07-10 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Spezifisch hemmender s-amylase-mak |
DE3508384A1 (de) * | 1985-03-08 | 1986-11-06 | Boehringer Mannheim Gmbh, 6800 Mannheim | Hemmung humaner speichel- und pankreasamylase durch monoklonale antikoerper |
DE3525926A1 (de) * | 1985-07-19 | 1987-01-29 | Boehringer Mannheim Gmbh | Verfahren und reagenz zur spezifischen bestimmung von pankreas-alpha-amylase |
FR2721019B1 (fr) * | 1994-06-14 | 1996-09-06 | Rhone Poulenc Chimie | Procédé de séparation de diacides aliphatiques à partir de leurs mélanges avec l'acide adipique. |
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-
1987
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- 1987-06-24 ES ES87109113T patent/ES2053472T3/es not_active Expired - Lifetime
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-
1993
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ATE85363T1 (de) | 1993-02-15 |
DE3621271A1 (de) | 1988-01-07 |
JPH0710238B2 (ja) | 1995-02-08 |
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EP0251195B1 (de) | 1993-02-03 |
GR3007698T3 (ja) | 1993-08-31 |
US4945043A (en) | 1990-07-31 |
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