JPS6373149A - 細胞の単離方法 - Google Patents
細胞の単離方法Info
- Publication number
- JPS6373149A JPS6373149A JP21728486A JP21728486A JPS6373149A JP S6373149 A JPS6373149 A JP S6373149A JP 21728486 A JP21728486 A JP 21728486A JP 21728486 A JP21728486 A JP 21728486A JP S6373149 A JPS6373149 A JP S6373149A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- cells
- flow path
- cell
- liquid
- flow
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 12
- 238000002955 isolation Methods 0.000 claims abstract description 22
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims abstract description 21
- 238000009826 distribution Methods 0.000 claims abstract description 12
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 4
- 238000010186 staining Methods 0.000 abstract description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 95
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 9
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 238000000684 flow cytometry Methods 0.000 description 4
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 206010035226 Plasma cell myeloma Diseases 0.000 description 2
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 2
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 2
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 2
- 201000000050 myeloid neoplasm Diseases 0.000 description 2
- 239000012488 sample solution Substances 0.000 description 2
- JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 2-[4-(2-hydroxyethyl)piperazin-1-yl]ethanesulfonic acid Chemical compound OCC[NH+]1CCN(CCS([O-])(=O)=O)CC1 JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007995 HEPES buffer Substances 0.000 description 1
- 229920001030 Polyethylene Glycol 4000 Polymers 0.000 description 1
- 210000000628 antibody-producing cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000004820 blood count Methods 0.000 description 1
- 230000007910 cell fusion Effects 0.000 description 1
- 210000000170 cell membrane Anatomy 0.000 description 1
- 239000013553 cell monolayer Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- MTHSVFCYNBDYFN-UHFFFAOYSA-N diethylene glycol Chemical compound OCCOCCO MTHSVFCYNBDYFN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000007850 fluorescent dye Substances 0.000 description 1
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 description 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 1
- QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N mercury Chemical compound [Hg] QSHDDOUJBYECFT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052753 mercury Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000003204 osmotic effect Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000007447 staining method Methods 0.000 description 1
- 239000012128 staining reagent Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〈産業上の利用分野〉
本発明は、生細胞もしくは死細胞を選択的に単離するこ
とができる細胞の単離方法に関する。
とができる細胞の単離方法に関する。
〈従来の技術〉
従来より細胞の単離方法としてはフローサイトメトリー
、コールタ−カウンターの原理を用いた単離方法がある
。
、コールタ−カウンターの原理を用いた単離方法がある
。
フローサイトメトリーの原理を用いた単離方法は、細胞
その他の粒子の懸濁液を水滴1個に細胞2粒子が1個含
まれるように液流を調節してミクロノズルより噴流とし
て流し、各水滴中の試料にレーザー光あるいは水銀光を
照射して励起された蛍光や散乱光を検知し、これを電気
信号に変換して信号を鮮析することにより試料溶液の細
胞2粒子の大きさ及び組成を知るとともに、電気信号に
応じて懸濁流に電荷を与えることにより目的の細胞や粒
子を含んだ水滴を選択的に異なる位置へ落下させるとい
うものである。
その他の粒子の懸濁液を水滴1個に細胞2粒子が1個含
まれるように液流を調節してミクロノズルより噴流とし
て流し、各水滴中の試料にレーザー光あるいは水銀光を
照射して励起された蛍光や散乱光を検知し、これを電気
信号に変換して信号を鮮析することにより試料溶液の細
胞2粒子の大きさ及び組成を知るとともに、電気信号に
応じて懸濁流に電荷を与えることにより目的の細胞や粒
子を含んだ水滴を選択的に異なる位置へ落下させるとい
うものである。
また、コールタ−カウンターの原理を用いた単離方法は
、微小孔であるアパーチャーで連結されろ2つの液槽に
それぞれ電極を設け、アパーチャーに細胞などの粒子を
含む液を流してそのときの両電極間のインピーダンスを
測定し、これにより細胞などの粒子がアパーチャーを通
過したことをインピーダンスの変化として検出し、この
検出に応じて単離・分注を行うものである。
、微小孔であるアパーチャーで連結されろ2つの液槽に
それぞれ電極を設け、アパーチャーに細胞などの粒子を
含む液を流してそのときの両電極間のインピーダンスを
測定し、これにより細胞などの粒子がアパーチャーを通
過したことをインピーダンスの変化として検出し、この
検出に応じて単離・分注を行うものである。
〈発明が解決しようとする問題点〉
ところで、細胞融合後、培養を続けた融合細胞は、ある
時期になるとそれまで培養を続けてきたウェルから他の
培養器に移植して培養を続けていく必要があるが、この
際、ウェル内には融合細胞(生細胞)とともに融合時及
び培養時に死滅していた死細胞が混在している。よって
、このような培養液中より生細胞のみを選択的に単離す
ることは、次の培養を状態よ〈実施するための重要な要
素となる。
時期になるとそれまで培養を続けてきたウェルから他の
培養器に移植して培養を続けていく必要があるが、この
際、ウェル内には融合細胞(生細胞)とともに融合時及
び培養時に死滅していた死細胞が混在している。よって
、このような培養液中より生細胞のみを選択的に単離す
ることは、次の培養を状態よ〈実施するための重要な要
素となる。
ところが、上述した従来の単離方法によって生細胞のみ
を選択的に単離するには問題があった。すなわち、フロ
ーサイトメトリーの原理を用いた方法により生細胞のみ
を分離しようとすると、試料溶液そのものを蛍光色素等
で染色しなくてはならないため、細胞の活性へ影響が出
るという問題がある。また、フローサイトメトリーある
いはコールタ−カウンターの原理を用いtこ方法におい
て、カウントされた死細胞をその信号の大きさによって
判断して生細胞のみを単離しようとすることは可能であ
るが、融合細胞の径及び分布が各ウェルによって異なる
ので、信号の区切すの大きさを適切に決定するのが困難
であるという問題がある。
を選択的に単離するには問題があった。すなわち、フロ
ーサイトメトリーの原理を用いた方法により生細胞のみ
を分離しようとすると、試料溶液そのものを蛍光色素等
で染色しなくてはならないため、細胞の活性へ影響が出
るという問題がある。また、フローサイトメトリーある
いはコールタ−カウンターの原理を用いtこ方法におい
て、カウントされた死細胞をその信号の大きさによって
判断して生細胞のみを単離しようとすることは可能であ
るが、融合細胞の径及び分布が各ウェルによって異なる
ので、信号の区切すの大きさを適切に決定するのが困難
であるという問題がある。
本発明は、このような事情に鑑み、生細胞のみを選択的
に単離することができる細胞の単層方法を提供すること
を目的とする。
に単離することができる細胞の単層方法を提供すること
を目的とする。
く問題点を解決するための手段〉
前記目的を達成する本発明の構成は、ウェル中の細胞を
含む培養液における細胞を検出し、単離する方法におい
て、各ウェル中の培養液の一部を予め採取し、この採取
試料中に染色試料を混入することにより該採取試料中の
細胞の生死を判別してそれぞれの直径あるいは長径の分
布を測定し、この結果より単離する細胞の直径あるいは
長径を限定し、単離・分注することを特徴とする。
含む培養液における細胞を検出し、単離する方法におい
て、各ウェル中の培養液の一部を予め採取し、この採取
試料中に染色試料を混入することにより該採取試料中の
細胞の生死を判別してそれぞれの直径あるいは長径の分
布を測定し、この結果より単離する細胞の直径あるいは
長径を限定し、単離・分注することを特徴とする。
ここで、前記生細胞及び死細胞の直径あるいは長径の測
定は画像処理により行うことが好ましい。また、細胞の
単離は、細胞の流路の細胞が検出される位置より流路後
方の位置に連通ずる第3の流路より液を流して押し流す
ようにするのが好ましい。
定は画像処理により行うことが好ましい。また、細胞の
単離は、細胞の流路の細胞が検出される位置より流路後
方の位置に連通ずる第3の流路より液を流して押し流す
ようにするのが好ましい。
以下に本発明の構成をさらに説明する。
各ウェルからの採取試料中の生死細胞の判別は細胞学実
験で通常行っている染色法により行えばよく、染色試料
としてはエリスロシンB、 !−リパンブルー、ニグ
ロシン等を用いればよい。これらの染色色素は何れも陰
性電荷を持ち、生細胞の細胞膜(通常、負性荷電してい
る)を通過できないため、死細胞だけにとりこまれる。
験で通常行っている染色法により行えばよく、染色試料
としてはエリスロシンB、 !−リパンブルー、ニグ
ロシン等を用いればよい。これらの染色色素は何れも陰
性電荷を持ち、生細胞の細胞膜(通常、負性荷電してい
る)を通過できないため、死細胞だけにとりこまれる。
かくて、死細胞のみが染色きれ、また生細胞は明瞭な像
となる。なお、染色条件は色素によって異なる。
となる。なお、染色条件は色素によって異なる。
このようにして染色した試料をスライドグラスに添加し
、倒立顕微鏡で観察する。そして画像処理により試料中
の生細胞、死細胞ごとの長径あるいは直径を求める。
、倒立顕微鏡で観察する。そして画像処理により試料中
の生細胞、死細胞ごとの長径あるいは直径を求める。
第1図及び第2図は何れもBa1b/cマウスの牌細胞
とBa1b/c由来のミエローマ細胞SP210−Ag
14をPEG4000にて融合し、選択培養を7日間行
い、さらに十数日間の培養を行った際のウェル中の生細
胞及び死細胞の長径分布を示すピストグラムである。両
図より、生細胞及び死細胞の細胞径分布の差異が明らか
である。第1図では生細胞の平均径は15.8μm1死
細胞の平均径は9.6μm1第2図では生細胞の平均径
は21.3μm、死細胞の平均径は14.4μmである
。また、両者とも同一条件で融合、培養を行ったにもか
かわらず両者の径分布は異っている。よって径の大きさ
から生死細胞の判別を行うには各ウェルごとに径分布測
定を行う必要がある。
とBa1b/c由来のミエローマ細胞SP210−Ag
14をPEG4000にて融合し、選択培養を7日間行
い、さらに十数日間の培養を行った際のウェル中の生細
胞及び死細胞の長径分布を示すピストグラムである。両
図より、生細胞及び死細胞の細胞径分布の差異が明らか
である。第1図では生細胞の平均径は15.8μm1死
細胞の平均径は9.6μm1第2図では生細胞の平均径
は21.3μm、死細胞の平均径は14.4μmである
。また、両者とも同一条件で融合、培養を行ったにもか
かわらず両者の径分布は異っている。よって径の大きさ
から生死細胞の判別を行うには各ウェルごとに径分布測
定を行う必要がある。
このような径分布より生細胞のみを単離するには単離す
べき細胞径の閾値を決定しなければならない。この閾値
を決定するアルゴリズムは実施者の任意の方法で決めれ
ばよい。
べき細胞径の閾値を決定しなければならない。この閾値
を決定するアルゴリズムは実施者の任意の方法で決めれ
ばよい。
上記の径分布を見れば明らかなように、確実に生細胞の
みを単離しようとするには閾値を高くしなければならず
、この場合には単離効率は悪くなる。一方、生細胞単離
効率を良くしようとすると死細胞の混入がかなり増える
可能性がある。よって、この閾値は目的に応じて適宜、
定める必要がある。
みを単離しようとするには閾値を高くしなければならず
、この場合には単離効率は悪くなる。一方、生細胞単離
効率を良くしようとすると死細胞の混入がかなり増える
可能性がある。よって、この閾値は目的に応じて適宜、
定める必要がある。
このように決定された閾値以上の細胞径が検出されたと
きに単離するようにすれば生細胞のみ、あるいは生細胞
の多いものが単離できる。
きに単離するようにすれば生細胞のみ、あるいは生細胞
の多いものが単離できる。
ここで、本発明方法に用いて好適な単離分注装置の1例
を第3図を参照しながら説明する。
を第3図を参照しながら説明する。
同図に示すように、この単離分注装置は液槽2、アパー
チャー1及び液槽3を経る細胞6の流路のほかに、第3
の流路8を有している。この装置は電極4及び電極5の
間のインピーダンスの変化を測定する乙とによりアパー
チャー1を通過する細胞6を検出するものであり、第3
の流路8は、細胞6が検出される位置より流路後方に位
置するように設けるようにし、図示の場合は流路後方側
の電極5に関してはそれよりは流路前方に位置している
。また、第3の流路8の途中には弁9が設けられており
、この弁9が開くと第3の流路8から粒子6の流路に対
し所定量の液を流すようになっている。上記弁9の開閉
については、6の検出に応動して行なわれる。また、そ
の場合に第3の流路8から流れ出る液量については、細
胞6と共に流れて来る液量より多く、例えば細胞6と共
に流れる液量が0.01eeの場合、これに対し第30
流路8から流れ出る液量は0.2cc程度とする。さら
に、この例の装置は、液槽3の下部にフレキシブルチュ
ーブ10を備えている。乙のフレキシブルチューブ10
は細胞6の流路の出口部を構成するもので、細胞6が検
出された場合これによって流路出口が新たな容Wi7へ
通ずるように、そして細胞6が検出されないときは流路
出口が常に排液部に通ずるようにフレキシブルチューブ
可動機構11によって出口が移動せしめられるようにな
っている。この可動機構11によるフレキシブルチュー
ブ10の移動は、上述の弁9の場合と同様、細胞6の検
出に応動して行なわれる。
チャー1及び液槽3を経る細胞6の流路のほかに、第3
の流路8を有している。この装置は電極4及び電極5の
間のインピーダンスの変化を測定する乙とによりアパー
チャー1を通過する細胞6を検出するものであり、第3
の流路8は、細胞6が検出される位置より流路後方に位
置するように設けるようにし、図示の場合は流路後方側
の電極5に関してはそれよりは流路前方に位置している
。また、第3の流路8の途中には弁9が設けられており
、この弁9が開くと第3の流路8から粒子6の流路に対
し所定量の液を流すようになっている。上記弁9の開閉
については、6の検出に応動して行なわれる。また、そ
の場合に第3の流路8から流れ出る液量については、細
胞6と共に流れて来る液量より多く、例えば細胞6と共
に流れる液量が0.01eeの場合、これに対し第30
流路8から流れ出る液量は0.2cc程度とする。さら
に、この例の装置は、液槽3の下部にフレキシブルチュ
ーブ10を備えている。乙のフレキシブルチューブ10
は細胞6の流路の出口部を構成するもので、細胞6が検
出された場合これによって流路出口が新たな容Wi7へ
通ずるように、そして細胞6が検出されないときは流路
出口が常に排液部に通ずるようにフレキシブルチューブ
可動機構11によって出口が移動せしめられるようにな
っている。この可動機構11によるフレキシブルチュー
ブ10の移動は、上述の弁9の場合と同様、細胞6の検
出に応動して行なわれる。
したがって、上述のように決定した閾値以上の細胞6を
検出されたときに流路出口は新たな容器7に通じるよう
にし、かつ第3の流路8から所定量の液を流すようにす
ることにより、その流した液に細胞6を含ませて容器7
に分注することができる。
検出されたときに流路出口は新たな容器7に通じるよう
にし、かつ第3の流路8から所定量の液を流すようにす
ることにより、その流した液に細胞6を含ませて容器7
に分注することができる。
く実 施 例〉
試料
Ba1b/c v fp X牌細胞とBa1b/c由来
ミエローマ細胞SP210−Ag14を5= 1でPE
G4000の50%HEPES溶液で融合したもの。
ミエローマ細胞SP210−Ag14を5= 1でPE
G4000の50%HEPES溶液で融合したもの。
培養は20%FC3,DME溶液を使用し、HAT培養
を7日間、HT培養を6日間行った後、通常培地にて1
0日間行った。
を7日間、HT培養を6日間行った後、通常培地にて1
0日間行った。
染色
染色用試薬として0.2%ニグロシン。
DME溶液を用いた。なお、ニグロシンの溶媒としてD
M Eを用いたのは浸透圧の差による細胞の体積変化
を除くためである。
M Eを用いたのは浸透圧の差による細胞の体積変化
を除くためである。
試料となる培養液はウェル内で撹拌を行って細胞を均一
に分散させる。これより50μlを分取し、これに0.
2%ニグロシン溶液を50μl混ぜ、血球算定用スライ
ドに添加した。
に分散させる。これより50μlを分取し、これに0.
2%ニグロシン溶液を50μl混ぜ、血球算定用スライ
ドに添加した。
画像処理
試料添加スライドグラスを倒立wL徴鏡上におき、カメ
ラを介してマイクロコンピュータ(画像処理装置付属)
にその細胞画像を取り込んだ。この取り込み時期は染色
開始から5分段7ある。
ラを介してマイクロコンピュータ(画像処理装置付属)
にその細胞画像を取り込んだ。この取り込み時期は染色
開始から5分段7ある。
処理後のヒストグラムを第2図に示すものであり、その
詳細は下記の通りである。
詳細は下記の通りである。
生細胞: 平均径 21.3μm
不偏分散 ±3.5μm
n = 62
死細胞: 平均径 14.4μm
不偏分散 ±6.2μm
n = 209
閾値決定
閾値は次のようにして決定した。
ヒストグラムの区間幅を2μmとし、各区間ごとに小さ
い区間より、生細胞数/死細胞数を計算した。この値が
初めて4を超えた区間の開始値を閾値とした。
い区間より、生細胞数/死細胞数を計算した。この値が
初めて4を超えた区間の開始値を閾値とした。
この場合の閾値は22μmである。なお同様にして第1
図の場合の閾値を求めると14μmである。
図の場合の閾値を求めると14μmである。
細胞単離
細胞単離には、上述した第3図に示す単離分注装置を用
いた。上述のようにして求めた閾値22μmに対応する
出力信号以上の信号が検出された場合に分注するように
した。
いた。上述のようにして求めた閾値22μmに対応する
出力信号以上の信号が検出された場合に分注するように
した。
結果
このように単離分注した溶wlsoウェルにつき、細胞
が実際に生細胞かどうかを染色法により確認したところ
、38ウエルの細胞が生細胞であった。このときの単離
生細胞率は72%である。元の試料中の生細胞率は21
.9%であるので生細胞が選別単離されているのは明ら
かである。また第2図より22μm以上の生細胞率は7
9.5%であり、上記方法による閾値設定に効果があっ
たことを示している。
が実際に生細胞かどうかを染色法により確認したところ
、38ウエルの細胞が生細胞であった。このときの単離
生細胞率は72%である。元の試料中の生細胞率は21
.9%であるので生細胞が選別単離されているのは明ら
かである。また第2図より22μm以上の生細胞率は7
9.5%であり、上記方法による閾値設定に効果があっ
たことを示している。
(発明の効果〉
以上、実施例とともに具体的に説明したように、本発明
方法によれば、生死細胞それぞれについて測定した直径
あるいCよ長径の分布を後の細胞単離時の信号閾値に反
映させるため、単離された細胞の生細胞率を著しく高め
ろことができ、モノクローナル抗体産生細胞の選別を典
型的な例とする特別な細胞の単離において大きな効果を
発揮することができる。
方法によれば、生死細胞それぞれについて測定した直径
あるいCよ長径の分布を後の細胞単離時の信号閾値に反
映させるため、単離された細胞の生細胞率を著しく高め
ろことができ、モノクローナル抗体産生細胞の選別を典
型的な例とする特別な細胞の単離において大きな効果を
発揮することができる。
第1図及び第2図はそれぞれ本発明の実施例における生
死細胞の長径分布を示すヒストグラム、第3図は細胞の
単離分注装置の1例を示す説明図である。 図 面 中、 1はアパーチャー、 2.3は液槽、 4.5は電極、 6は細胞、 7は容器、 8は第3の流路、 10はフレキシブルチューブである。
死細胞の長径分布を示すヒストグラム、第3図は細胞の
単離分注装置の1例を示す説明図である。 図 面 中、 1はアパーチャー、 2.3は液槽、 4.5は電極、 6は細胞、 7は容器、 8は第3の流路、 10はフレキシブルチューブである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)ウェル中の細胞を含む培養液における細胞を検出し
、単離する方法において、各ウェル中の培養液の一部を
予め採取し、この採取試料中に染色試料を混入すること
により該採取試料中の細胞の生死を判別してそれぞれの
直径あるいは長径の分布を測定し、この結果より単離す
る細胞の直径あるいは長径を限定し、それを単離・分注
することを特徴とする細胞の単離方法。 2)細胞の直径あるいは長径の測定は画像処理により行
う特許請求の範囲第1項記載の細胞の単離方法。 3)細胞を単離・分注するのに、細胞の流路の細胞が検
出される位置より流路後方の位置に連通する第3の流路
より液を流して押し流すようにした特許請求の範囲第1
項あるいは第2項記載の細胞の単離方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21728486A JPS6373149A (ja) | 1986-09-17 | 1986-09-17 | 細胞の単離方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21728486A JPS6373149A (ja) | 1986-09-17 | 1986-09-17 | 細胞の単離方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6373149A true JPS6373149A (ja) | 1988-04-02 |
Family
ID=16701724
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP21728486A Pending JPS6373149A (ja) | 1986-09-17 | 1986-09-17 | 細胞の単離方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6373149A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002273252A (ja) * | 2001-03-23 | 2002-09-24 | Nakabayashi Co Ltd | シュレッダーの細断屑ならし圧縮装置 |
WO2006057444A1 (ja) * | 2004-11-25 | 2006-06-01 | National University Corporation Hokkaido University | 細胞の分化度自動診断方法 |
JP2010181420A (ja) * | 2004-02-13 | 2010-08-19 | James Winkelman | 血液の一定分量内の要素を検査する方法 |
-
1986
- 1986-09-17 JP JP21728486A patent/JPS6373149A/ja active Pending
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2002273252A (ja) * | 2001-03-23 | 2002-09-24 | Nakabayashi Co Ltd | シュレッダーの細断屑ならし圧縮装置 |
JP2010181420A (ja) * | 2004-02-13 | 2010-08-19 | James Winkelman | 血液の一定分量内の要素を検査する方法 |
US9176121B2 (en) | 2004-02-13 | 2015-11-03 | Roche Diagnostics Hematology, Inc. | Identification of blood elements using inverted microscopy |
WO2006057444A1 (ja) * | 2004-11-25 | 2006-06-01 | National University Corporation Hokkaido University | 細胞の分化度自動診断方法 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Olson et al. | An inexpensive flow cytometer for the analysis of fluorescence signals in phytoplankton: chlorophyll and DNA distributions | |
US5585469A (en) | Dyeing agent having at least two dyes for staining a biological sample and staining method employing the dyeing agent | |
US10967296B2 (en) | Method and device for high-throughput solution exchange for cell and particle suspensions | |
US4756427A (en) | Method and apparatus for sorting particles | |
US4847208A (en) | Apparatus for immunohistochemical staining and method of rinsing a plurality of slides | |
JP2004305173A (ja) | 細菌測定方法と装置とプログラム | |
JP6335802B2 (ja) | 液体試料イメージング装置及び方法 | |
US6540895B1 (en) | Microfabricated cell sorter for chemical and biological materials | |
US9429524B2 (en) | Systems and methods for imaging fluid samples | |
JPH04337459A (ja) | 尿中の細胞分析用試薬及び方法 | |
CN206244772U (zh) | 一种用于细胞捕获、荧光染色的微流控芯片 | |
EP4006136A1 (en) | Microfluidic chip suitable for capturing circulating tumour cells | |
JPH04184168A (ja) | フローサイトメトリーによる白血球の分類方法 | |
CN107167356B (zh) | 一种尿液中细胞染色后快速显色的染色剂及其使用方法 | |
US20210170409A1 (en) | Microfluidic chip for circulating tumor cell separation, circulating tumor cell separation method and counting method | |
BRPI0620212A2 (pt) | mÉtodo de discriminaÇço e de contagem de pelo menos duas populaÇÕes de elementos biolàgicos portadoras de caracterÍsticas especÍficas, e, utilizaÇço do mÉtodo | |
JP2008005749A (ja) | 細胞分離チップおよびこれを使用した細胞培養方法 | |
CN106525699A (zh) | 一种外周血淋巴细胞微核的检测试剂盒及其检测方法 | |
JPS6373149A (ja) | 細胞の単離方法 | |
JP3261918B2 (ja) | 粒子分析用校正方法 | |
JPH0843378A (ja) | 磁気的細胞測定のための方法および装置 | |
Kaplan et al. | Single cell fusion events induced by influenza hemagglutinin: studies with rapid-flow, quantitative fluorescence microscopy | |
US11933701B2 (en) | Devices and methods for sample analysis with serial dilution | |
Bao et al. | Microfluidic electroporation for selective release of intracellular molecules at the single‐cell level | |
Tanke et al. | Selection of defined cell types by flow-cytometric cell sorting |