JPS6339577A - 耐熱性/耐酸性グルコアミラ−ゼを生産する嫌気性細菌 - Google Patents
耐熱性/耐酸性グルコアミラ−ゼを生産する嫌気性細菌Info
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Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は新規なグルコアミラーゼの生産に用いられる嫌
気性細菌に係り、さらに詳しくは、ぶとう糖等の製造等
におけるでん粉の糖化反応に好適な酸性条件下でもすぐ
れた耐熱性を有する耐熱性/耐酸性グルコアミラーゼを
生産するクロスツリジウム・エスピーに関する。
気性細菌に係り、さらに詳しくは、ぶとう糖等の製造等
におけるでん粉の糖化反応に好適な酸性条件下でもすぐ
れた耐熱性を有する耐熱性/耐酸性グルコアミラーゼを
生産するクロスツリジウム・エスピーに関する。
酵素は基質特異性が高く、常温、常圧下でも反応を触媒
できる特徴を有するが、−gに加熱やpH変化に対し極
めて不安定である。最近、酵素を固定化してバイオリア
クターに組み込み、異性化糖やL−アミノ酸が生産でき
るようになった。これらのりアクタの運転に際しては、
雑菌の繁殖防止や反応速度をあげるため、常温より高い
60℃以上の温度で行うことが望まれている。このため
、旧来の常温性酵素にかわり、加熱やpH変化にも安定
な、いわゆる耐熱酵素の開発が進められてきた。
できる特徴を有するが、−gに加熱やpH変化に対し極
めて不安定である。最近、酵素を固定化してバイオリア
クターに組み込み、異性化糖やL−アミノ酸が生産でき
るようになった。これらのりアクタの運転に際しては、
雑菌の繁殖防止や反応速度をあげるため、常温より高い
60℃以上の温度で行うことが望まれている。このため
、旧来の常温性酵素にかわり、加熱やpH変化にも安定
な、いわゆる耐熱酵素の開発が進められてきた。
現在、工業的に用いられているグルコアミラーゼは50
℃を越えると急速に酵素活性が失活する常温性酵素であ
り (酵素利用ハンドブック、 p62.他人書かん、
昭和57年)主としてリゾプス(Rh 1zopus)
属およびアスペルギルス(Aspergil is)属
がら生産されている。これらのグルコアミラーゼの作用
好適pHは4〜5である。
℃を越えると急速に酵素活性が失活する常温性酵素であ
り (酵素利用ハンドブック、 p62.他人書かん、
昭和57年)主としてリゾプス(Rh 1zopus)
属およびアスペルギルス(Aspergil is)属
がら生産されている。これらのグルコアミラーゼの作用
好適pHは4〜5である。
耐熱性に優れたグルコアミラーゼについては、V、Ba
saveswara等(Biochem、J、 、 1
93.379.1981年)やカドコシン等(特開昭6
0−54680号)の例があるが、いずれも熱安定性を
発揮するためにはp)16程度の中性条件が必要である
。
saveswara等(Biochem、J、 、 1
93.379.1981年)やカドコシン等(特開昭6
0−54680号)の例があるが、いずれも熱安定性を
発揮するためにはp)16程度の中性条件が必要である
。
ところで、でん扮を原料とするぶとう糖の製造は10〜
40%)溶度のでん粉スラリーをα−アミラーゼにより
液化する液化工程と、この液化でん粉溶液をグルコアミ
ラーゼにより糖化する徳化工程の2工程により行われて
いる。液化工程においては原料でん粉中に含まれる不純
物の有a酸のためにpHは5以下、しばしば4以下を呈
する。このため先に本発明者らは4付近においてもすぐ
れた耐熱性を存する新規なα−アミラーゼを開発しく特
願昭59−236917号)、でん粉スラリーをアルカ
リで中和することなく酸性状態のままで液化することを
可能にした。しかしながら、液化工程にひき続いて行わ
れる糖化工程に使用するグルコアミラーゼに関しては、
pH4〜5の酸性条件下で糖化を行える耐熱性酵素はま
だ未開発である。先に述べたカドコシン等の耐熱性グル
コアミラーゼの作用好適pHは6付近であるため、糖化
工程を行うには液化でん粉溶液にアルカリを加えて中和
しなければならない。その結果、ぶとう糖や異性化糖等
のでん粉加工の最終製品を得る場合には、反応後に中和
剤を除去することが必要となり、イオン交換樹脂を用い
る脱塩工程への負化を著しく増大させている。
40%)溶度のでん粉スラリーをα−アミラーゼにより
液化する液化工程と、この液化でん粉溶液をグルコアミ
ラーゼにより糖化する徳化工程の2工程により行われて
いる。液化工程においては原料でん粉中に含まれる不純
物の有a酸のためにpHは5以下、しばしば4以下を呈
する。このため先に本発明者らは4付近においてもすぐ
れた耐熱性を存する新規なα−アミラーゼを開発しく特
願昭59−236917号)、でん粉スラリーをアルカ
リで中和することなく酸性状態のままで液化することを
可能にした。しかしながら、液化工程にひき続いて行わ
れる糖化工程に使用するグルコアミラーゼに関しては、
pH4〜5の酸性条件下で糖化を行える耐熱性酵素はま
だ未開発である。先に述べたカドコシン等の耐熱性グル
コアミラーゼの作用好適pHは6付近であるため、糖化
工程を行うには液化でん粉溶液にアルカリを加えて中和
しなければならない。その結果、ぶとう糖や異性化糖等
のでん粉加工の最終製品を得る場合には、反応後に中和
剤を除去することが必要となり、イオン交換樹脂を用い
る脱塩工程への負化を著しく増大させている。
本発明の目的は、上記従来技術の問題点を解決し、でん
粉を原料としてぶとう等を製造するにあたりpH4〜5
の酸性条件下、60〜70℃の高温下で作用可能なグル
コアミラーゼ、すなわち耐熱性/耐酸性に優れた新規な
グルコアミラーゼを生産する微生物を提供することにあ
る。
粉を原料としてぶとう等を製造するにあたりpH4〜5
の酸性条件下、60〜70℃の高温下で作用可能なグル
コアミラーゼ、すなわち耐熱性/耐酸性に優れた新規な
グルコアミラーゼを生産する微生物を提供することにあ
る。
本発明者らは耐熱性にすぐれ、かつ耐酸性を有する新規
なグルコアミラーゼを生産する微生物の探索を行った。
なグルコアミラーゼを生産する微生物の探索を行った。
その結果、クロスッリジウムに属する偏性嫌気性細菌で
あるクロスッリジウム・エスピーG−0005(clo
stridium sp G−0005) (微工研菌
寄第8737号)が酵素の特性、特に酸性領域での耐熱
性について従来のグルコアミラーゼと異なる新規なグル
コアミラーゼを生成することを見い出し、本発明に至っ
た。本発明のクロスツリジウム属細菌は、濃厚有機廃液
の高温メタン醗酵スラリーを起源として分離したもので
ある。本菌の分離は次のようにして行った。まずメタン
醗酵スラリーを低速遠心分離(1000rpm、 5
分間)にかけ、粗大粒子を/、を降除去した後、殺閏生
理食塩水で希釈した。
あるクロスッリジウム・エスピーG−0005(clo
stridium sp G−0005) (微工研菌
寄第8737号)が酵素の特性、特に酸性領域での耐熱
性について従来のグルコアミラーゼと異なる新規なグル
コアミラーゼを生成することを見い出し、本発明に至っ
た。本発明のクロスツリジウム属細菌は、濃厚有機廃液
の高温メタン醗酵スラリーを起源として分離したもので
ある。本菌の分離は次のようにして行った。まずメタン
醗酵スラリーを低速遠心分離(1000rpm、 5
分間)にかけ、粗大粒子を/、を降除去した後、殺閏生
理食塩水で希釈した。
これを菌液とし、でん粉粒を炭素源とする寒天平板上に
窒素雰囲気下で塗布し、60℃で嫌気的にでん粉粒を溶
解することなく生育するコロニーを分離した。さらに、
上記コロニーの希釈液か1マイクロマニユプレークによ
り栄養細胞を単離した。
窒素雰囲気下で塗布し、60℃で嫌気的にでん粉粒を溶
解することなく生育するコロニーを分離した。さらに、
上記コロニーの希釈液か1マイクロマニユプレークによ
り栄養細胞を単離した。
寒天平板による分離とマイクロマニュプレークによる分
離とをさらに数回重ね、本発明の菌を得た。
離とをさらに数回重ね、本発明の菌を得た。
本発明のクロスツリジウム属細菌は工業技術院微生物工
業技術研究所に寄託しである(受託番号:微工研菌寄第
8737号(FERM P−8737))。まず、本菌
の菌学的性質の詳細を説明する。なお、以下の記載にお
いて%は特に士旨示しない限り重量%である。
業技術研究所に寄託しである(受託番号:微工研菌寄第
8737号(FERM P−8737))。まず、本菌
の菌学的性質の詳細を説明する。なお、以下の記載にお
いて%は特に士旨示しない限り重量%である。
A、形態的性質
(1)栄養細胞の形態
下記のデキストリン・ペプトン培地の寒天平板上、嫌気
性雰囲気中、60℃で2日間培養した場合、栄養細胞は
0.3〜0.5 X 2〜4μmの大きさの直状の桿菌
である。上記の栄養細胞は単独あるいは連鎖して存在す
る。液体培養においても同様となる。また、細胞の多形
性はみられない。
性雰囲気中、60℃で2日間培養した場合、栄養細胞は
0.3〜0.5 X 2〜4μmの大きさの直状の桿菌
である。上記の栄養細胞は単独あるいは連鎖して存在す
る。液体培養においても同様となる。また、細胞の多形
性はみられない。
なお、この菌の生物形態の顕微鏡写真を第1図に示す。
デキストリン−ペプトン培地の組成
デキストリン 1.5%ペプトン
0.5%酵母エキス
0.5%KHzPOn0.7% NazHPOa O,2%Mg
5O,・7H!0 0.001%寒天
2.0%チオグリコール酸
ナトリウム 0.1%水道水 pH6,0 (2)運動性の有無 運動性は認められない (3)胞子の有無 でん粉−ペプトン培地の寒天平板培養において胞子の形
成が認められる。胞子は栄養細胞内端部に形成され、直
径0.5μm程度の球状をなしている。
0.5%酵母エキス
0.5%KHzPOn0.7% NazHPOa O,2%Mg
5O,・7H!0 0.001%寒天
2.0%チオグリコール酸
ナトリウム 0.1%水道水 pH6,0 (2)運動性の有無 運動性は認められない (3)胞子の有無 でん粉−ペプトン培地の寒天平板培養において胞子の形
成が認められる。胞子は栄養細胞内端部に形成され、直
径0.5μm程度の球状をなしている。
(4)ダラム染色性
陰性
B、各培地における生育状態
(1)コロニーの形態
でん粉−ペプトン培地の寒天平板培養でのコロニーは、
中心部がやや隆起した扁平な円形となり、周縁部は不規
則である。色素は産生ぜず、乳白色半透明である。
中心部がやや隆起した扁平な円形となり、周縁部は不規
則である。色素は産生ぜず、乳白色半透明である。
(2)肉汁寒天平板培養
生育は認められない
肉汁寒天培地組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%寒天
2.0% 蒸留水 pH6,。
1.0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.1%寒天
2.0% 蒸留水 pH6,。
(3)肉汁寒天斜面培養
生育は認められない
(4)肉汁寒天穿刺培養
穿刺線にそってわずかに増殖していることが観察される
。色素の産生は認められない。
。色素の産生は認められない。
(5)肉汁液体培養
生育は認められない
肉汁培地の組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.01%蒸留水 pH6,0 (6)肉汁・ゼラチン培養 生育は認められない。ゼラチンの液化も認められない。
1.0%食塩 0.2% チオグリコール酸ナトリウム 0.01%蒸留水 pH6,0 (6)肉汁・ゼラチン培養 生育は認められない。ゼラチンの液化も認められない。
肉汁ゼラチン培地の組成
肉エキス 1.0%ペプトン
1.0%食塩 0.2% ゼラチン 15.0%チオグリコール
酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (7)リドマスミルク培養 酸を生成して赤変し、固く凝固する。ガスの発生が認め
られる。
1.0%食塩 0.2% ゼラチン 15.0%チオグリコール
酸ナトリウム 0.1%蒸留水 pH6,0 (7)リドマスミルク培養 酸を生成して赤変し、固く凝固する。ガスの発生が認め
られる。
C0生理的性質
(1)生育の温度範囲
49〜64℃で生育する。46℃、69℃では生育は認
められない。57〜61℃付近で良好に生育する。
められない。57〜61℃付近で良好に生育する。
(2)生育のpH範囲
pH4,8〜7.5で生育する。pH6,0付近で良好
に生育する。
に生育する。
(3)酸素に対する態度
゛ 偏性嫌気性
(4)0−Fテスト (Hugh La1fson法)
陰性。空気雰囲気中及び流動パラフィン重層による嫌気
性条件下共にガス生成を伴って生育し、酸の生成により
黄色となる。空気雰囲気中での培養においては、気相境
界部より約10下より、底部にかけて生育した。
陰性。空気雰囲気中及び流動パラフィン重層による嫌気
性条件下共にガス生成を伴って生育し、酸の生成により
黄色となる。空気雰囲気中での培養においては、気相境
界部より約10下より、底部にかけて生育した。
培地組成
ペプトン 0.2%ぶとうt)!
1.o%食塩 0.5% KJPO* 0.03%ブロム
クレゾールパープル 0.002%寒天 0
.3% 蒸留水 p H6,0 (5)硝酸塩の還元 陰性 (6)VPテスト 陰性 (7)MRテスト 陽性。赤変化する。
1.o%食塩 0.5% KJPO* 0.03%ブロム
クレゾールパープル 0.002%寒天 0
.3% 蒸留水 p H6,0 (5)硝酸塩の還元 陰性 (6)VPテスト 陰性 (7)MRテスト 陽性。赤変化する。
(8)インドール生成
ペプトン水に生育しないため測定できない。
(9)硫化水素の生成
陰性(Kligrerの培地使用において)(10)で
ん粉の加水分解 陽性 (11)クエン酸の利用 陽性(Simons培地使用において)(12)アンモ
ニウム塩の利用 ペプトン水に生育せず、測定できない。
ん粉の加水分解 陽性 (11)クエン酸の利用 陽性(Simons培地使用において)(12)アンモ
ニウム塩の利用 ペプトン水に生育せず、測定できない。
(13)色素の菌体外生成
陰性
(!4)ウレアーゼ
陰性
(15)オキシダーゼ
陰性
(16)カタラーゼ
陰性
(17)糖の資化性
糖の資化性及びダーラム管を用いたガス発生有無の観察
結果を第1表に示す。表中、資化性及びガスの生成が認
められた場合には+、認められない場合には−の記号で
示した。
結果を第1表に示す。表中、資化性及びガスの生成が認
められた場合には+、認められない場合には−の記号で
示した。
(木頁以下余白)
第 1 表
糖資化性試験用液体焙地組成
炭素源(糖)1.0%
ペプトン 1.0%NaC!
0.2%チオグリコール酸ナトリウ
ム 0.1%薫留水 pH6,0 (18)無機塩培地への生育 生育は認められない。
0.2%チオグリコール酸ナトリウ
ム 0.1%薫留水 pH6,0 (18)無機塩培地への生育 生育は認められない。
これらの結果よりバージ−の細菌分類マニュアル(Be
rgey’s Manual of Determin
ative Bocteri−ology 8th E
dition)に基づき、クロスツリジウムに属する細
菌と同定した。
rgey’s Manual of Determin
ative Bocteri−ology 8th E
dition)に基づき、クロスツリジウムに属する細
菌と同定した。
次に、本発明の細菌を用いて生産した耐熱性グリコアミ
ラーゼの酵素的特性について記す。
ラーゼの酵素的特性について記す。
なお、グルコアミラーゼ活性の測定は次のように行った
。
。
グルコアミラーゼ活性測定の基質には可溶性でん粉(和
光純薬製、生化学用)を用いた。まず、5%可溶性でん
粉溶液9.5mZ、 pH4,5の0.1M酢酸−酢
酸ナトリウム緩衝液0.5mZ、純水1m!。
光純薬製、生化学用)を用いた。まず、5%可溶性でん
粉溶液9.5mZ、 pH4,5の0.1M酢酸−酢
酸ナトリウム緩衝液0.5mZ、純水1m!。
酵素溶液0.5 mlを混合し、60℃で30分間酵素
反応を行わせた。次いで、反応液中のぶどう糖量をグル
コース分析HC米国、イエロー・スプリングス・インス
ッルメント・カンパニー(Yellow Spring
s Instrument Company)社製、グ
ルコースオキシダーゼ法により測定する。)を用いて測
定した。
反応を行わせた。次いで、反応液中のぶどう糖量をグル
コース分析HC米国、イエロー・スプリングス・インス
ッルメント・カンパニー(Yellow Spring
s Instrument Company)社製、グ
ルコースオキシダーゼ法により測定する。)を用いて測
定した。
グルコアミラーゼ活性の1単位は、上記測定条件下で1
分間に1μmolのぶとう糖を生成する能力と定義した
。
分間に1μmolのぶとう糖を生成する能力と定義した
。
(1)調製方法
デキストリン1.5%、ポリペプトン0.5%、酵母エ
キス0.5%、リン酸第1カリウム0.7%、リン酸第
2ナトリウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物o
、ooi%、チオグリコール酸ナトリウム0.1%及び
水道水を含む液体培地(p H6,0) 32kgを内
容積5Nの培養槽10基に3.15 kgづつ分注し、
120℃で15分間殺菌した。それぞれの培養槽に上記
培地を用いて嫌気的に培養した本発明のクロスツリジウ
ム属細菌G−0005菌の菌体懸濁液0.35kgを添
加した。次いで、ガス出口に水封トラップを付し、培養
槽内気相部をアルゴンガス(酸素濃度lppm以下)で
十分置換後、嫌気条件下で培養した。
キス0.5%、リン酸第1カリウム0.7%、リン酸第
2ナトリウム0.2%、硫酸マグネシウム・7水和物o
、ooi%、チオグリコール酸ナトリウム0.1%及び
水道水を含む液体培地(p H6,0) 32kgを内
容積5Nの培養槽10基に3.15 kgづつ分注し、
120℃で15分間殺菌した。それぞれの培養槽に上記
培地を用いて嫌気的に培養した本発明のクロスツリジウ
ム属細菌G−0005菌の菌体懸濁液0.35kgを添
加した。次いで、ガス出口に水封トラップを付し、培養
槽内気相部をアルゴンガス(酸素濃度lppm以下)で
十分置換後、嫌気条件下で培養した。
培養液のpHは6.0に、培養液の温度は60℃にそれ
ぞれ自動調整した。21時間培養後、培養液を合せ、6
000rpmで遠心分離し、菌体を除去した。回収した
上澄液についてガラス濾紙(東洋科学産業型、 GA−
100及びGC−50)メンブレンフィルタ (東洋科
学産業製、ポアサイズ1μm及び0.45μm)を用い
て加圧濾過し、菌体及びその他の固形物を除去して培養
濾液を得た。この培養濾液より10m1を採取し、純水
にて24時間透析したのち、グルコアミラーゼ活性を測
定したところ、培養濾液1gあたり0.05単位のグル
コアミラーゼが存在していた。
ぞれ自動調整した。21時間培養後、培養液を合せ、6
000rpmで遠心分離し、菌体を除去した。回収した
上澄液についてガラス濾紙(東洋科学産業型、 GA−
100及びGC−50)メンブレンフィルタ (東洋科
学産業製、ポアサイズ1μm及び0.45μm)を用い
て加圧濾過し、菌体及びその他の固形物を除去して培養
濾液を得た。この培養濾液より10m1を採取し、純水
にて24時間透析したのち、グルコアミラーゼ活性を測
定したところ、培養濾液1gあたり0.05単位のグル
コアミラーゼが存在していた。
次に上記培養濾液29kgを中空繊維型モレキュラーシ
ーブ膜(分画分子量10,000. 米国アミコン製
(Amicon Co、)HIPIO−20)で加圧濾
過し、2 kgに濃縮した。上記濃縮液について硫安を
用いた塩析を行い、飽和度(硫安飽和濃度に対す割合、
%で表わす) 20%にて析出せず、飽和度55%にて
析出した固形物を14.00Orpmで遠心分離し回収
した。次いで飽和度55%の硫安溶液で固形物を洗浄し
回収した。次いで、固形物を0.05M )リス−塩酸
緩衝液(pH7,5)に溶解し240gとした。次いで
上記緩衝液101を用いて、24時間透析を2回繰返し
実施した。そののち、透析した液中の固形物を、ガラス
濾紙(東洋濾紙型、 GC−50)を用いた濾過で除去
した。清澄化した透析液は310gであった。
ーブ膜(分画分子量10,000. 米国アミコン製
(Amicon Co、)HIPIO−20)で加圧濾
過し、2 kgに濃縮した。上記濃縮液について硫安を
用いた塩析を行い、飽和度(硫安飽和濃度に対す割合、
%で表わす) 20%にて析出せず、飽和度55%にて
析出した固形物を14.00Orpmで遠心分離し回収
した。次いで飽和度55%の硫安溶液で固形物を洗浄し
回収した。次いで、固形物を0.05M )リス−塩酸
緩衝液(pH7,5)に溶解し240gとした。次いで
上記緩衝液101を用いて、24時間透析を2回繰返し
実施した。そののち、透析した液中の固形物を、ガラス
濾紙(東洋濾紙型、 GC−50)を用いた濾過で除去
した。清澄化した透析液は310gであった。
次に、上記透析液をジエチルアミノエチル化架橋アガロ
ースゲル(フラクション、 DEAεセファロースCL
−6B)を用いたイオン交換クロマト (カラムサイズ
φ44 X 500mm)により精製した。0.05M
トリス−塩酸緩衝液で平衡化したゲルカラムに上記透析
液をチャージし、洗滌した。次いで緩衝液中の塩化ナト
リウム濃度を直線勾配で上昇しつつ展開した。グルコア
ミラーゼの溶出パターンを図6に示す。塩化ナトリウム
濃度0.25Mの溶出位置にグルコアミラーゼ活性を有
するピークが認められた。グルコアミラーゼフラクショ
ンとして360gを回収し、次いでモレキュラーシーブ
膜(分画分子量10,000.米国アミコン製、 PM
−10,)を用い、純水10kgを加えて加圧濾過し、
脱塩、濃縮を行い粗精製グルコアミラーゼ液160gを
得た。本溶液中のグルコアミラーゼ活性は3.3単位7
gであった。
ースゲル(フラクション、 DEAεセファロースCL
−6B)を用いたイオン交換クロマト (カラムサイズ
φ44 X 500mm)により精製した。0.05M
トリス−塩酸緩衝液で平衡化したゲルカラムに上記透析
液をチャージし、洗滌した。次いで緩衝液中の塩化ナト
リウム濃度を直線勾配で上昇しつつ展開した。グルコア
ミラーゼの溶出パターンを図6に示す。塩化ナトリウム
濃度0.25Mの溶出位置にグルコアミラーゼ活性を有
するピークが認められた。グルコアミラーゼフラクショ
ンとして360gを回収し、次いでモレキュラーシーブ
膜(分画分子量10,000.米国アミコン製、 PM
−10,)を用い、純水10kgを加えて加圧濾過し、
脱塩、濃縮を行い粗精製グルコアミラーゼ液160gを
得た。本溶液中のグルコアミラーゼ活性は3.3単位7
gであった。
次に上記粗精製グルコアミラーゼにつきゲル濾過により
精製した。まず、上記ゲルコミラーゼ液100gを0.
04Torrの減圧下で凍結乾燥し、これを0.05M
クエン酸・第2クエン酸緩衝液(pH4,5)4−に溶
解し、固形物を400Orpmの遠心分離で除去した。
精製した。まず、上記ゲルコミラーゼ液100gを0.
04Torrの減圧下で凍結乾燥し、これを0.05M
クエン酸・第2クエン酸緩衝液(pH4,5)4−に溶
解し、固形物を400Orpmの遠心分離で除去した。
次に、上記緩衝液で平衡化した架橋デキストランゲル(
ファルマシア製、セファデックスG−100)を充填し
たクロマトカラム(φ15 X 900mm)に上記グ
ルコアミラーゼ液1−をチャージし同じ緩衝液で展開し
た。その結果を第7図に示した。
ファルマシア製、セファデックスG−100)を充填し
たクロマトカラム(φ15 X 900mm)に上記グ
ルコアミラーゼ液1−をチャージし同じ緩衝液で展開し
た。その結果を第7図に示した。
溶出液i65+nZの位置にグルコアミラーゼ活性のピ
ークが認められた。上記ゲル濾過を残りの粗精製グルコ
アミラーゼについても実施し、精製グルコアミラーゼフ
ラクション40gを得た。本フラクションのグルコアミ
ラーゼ活性は12単位/gであった。
ークが認められた。上記ゲル濾過を残りの粗精製グルコ
アミラーゼについても実施し、精製グルコアミラーゼフ
ラクション40gを得た。本フラクションのグルコアミ
ラーゼ活性は12単位/gであった。
以上の精製操作により、培養濾液基準の比活性は171
倍に向上した。また、培養濾液基準の活性回収率は23
%である。培養濾液を基準とした各工程の標品の比活性
、収量、活性回収率を第2表に示した。
倍に向上した。また、培養濾液基準の活性回収率は23
%である。培養濾液を基準とした各工程の標品の比活性
、収量、活性回収率を第2表に示した。
なお、液体培養における液体培地の炭素源としては、上
記デキストリンに限るものではなく、可溶性でん粉、馬
鈴薯でん粉、コーンスターチ、甘薯でん粉、廃糖みつ等
を用いてもよい。また、その他の栄養成分も上記に限定
するものではなく、コーンステイープリカー、各種アミ
ノ酸、ビタミン、各種塩等を単独もしくは混合して用い
てもよい。
記デキストリンに限るものではなく、可溶性でん粉、馬
鈴薯でん粉、コーンスターチ、甘薯でん粉、廃糖みつ等
を用いてもよい。また、その他の栄養成分も上記に限定
するものではなく、コーンステイープリカー、各種アミ
ノ酸、ビタミン、各種塩等を単独もしくは混合して用い
てもよい。
(2)作用及び基質特異性
本酵素は、馬鈴薯、とうもろこし、甘薯等のでん粉、お
よびこれらを加水分解して得た可溶性でん粉、デキスト
リン、マルトース等をぶとう糖に加水分解するグルコア
ミラーゼである。マルトース基質の場合、ぶどう糖生成
速度は可溶性でん粉基質の約2である。
よびこれらを加水分解して得た可溶性でん粉、デキスト
リン、マルトース等をぶとう糖に加水分解するグルコア
ミラーゼである。マルトース基質の場合、ぶどう糖生成
速度は可溶性でん粉基質の約2である。
(3)至適pH
本酵素の60℃における作用pH曲線を第2図に示す。
本酵素の60℃における最適pH域は4〜5にあり、か
つ、好適pHは(最適pHでの活性の80%を有するp
H域とする)3.8〜5.7にある。
つ、好適pHは(最適pHでの活性の80%を有するp
H域とする)3.8〜5.7にある。
なお、反応の際のp H11衝液としては、塩化カリウ
ム−塩酸(pH2,0)、グリシン−塩酸(pH2,5
〜3.5)、β:β−ジメチルグルグル酸−トリスヒド
ロキシメチルアミノメタン−2−アミノ−2−メチル−
1:3−プロパンジオール(以下「GTAJと略称)(
pH3,5〜9)の0.05M緩衝液を用いた。
ム−塩酸(pH2,0)、グリシン−塩酸(pH2,5
〜3.5)、β:β−ジメチルグルグル酸−トリスヒド
ロキシメチルアミノメタン−2−アミノ−2−メチル−
1:3−プロパンジオール(以下「GTAJと略称)(
pH3,5〜9)の0.05M緩衝液を用いた。
(4)pH安定性
本発明によるグルコアミラーゼをpH2,3゜4、4.
5. 5. 6. 7. 9の各pH下(0,05M塩
化カリウム−塩酸、 0.05Mグリシン−塩酸及び0
゜05MGTA緩衝液を使用)で70℃、30分間イン
キュベートした。そののち、反応液を希釈し、pH4,
5に調整したのち、可溶性でん粉を基質として残存活性
を測定した。その結果を第3図に示した。
5. 5. 6. 7. 9の各pH下(0,05M塩
化カリウム−塩酸、 0.05Mグリシン−塩酸及び0
゜05MGTA緩衝液を使用)で70℃、30分間イン
キュベートした。そののち、反応液を希釈し、pH4,
5に調整したのち、可溶性でん粉を基質として残存活性
を測定した。その結果を第3図に示した。
本発明によるグルコアミラーゼはpH4,5〜5.0の
範囲で完全に活性が保持されていた。したがって、木グ
ルコアミラーゼは酸性領域ですぐれた安定性を有する酵
素であることがわかった。
範囲で完全に活性が保持されていた。したがって、木グ
ルコアミラーゼは酸性領域ですぐれた安定性を有する酵
素であることがわかった。
(5)至適温度
本発明によるグルコアミラーゼの活性をpH4゜5の条
件下、40.50.60.65.70.75℃の温度に
て測定したところ、第4図に示す結果を得た。本結果よ
り、至適温度は70℃付近にある。好適温度(最適温度
での活性の80%を有する温度域とする)は53〜73
℃である。
件下、40.50.60.65.70.75℃の温度に
て測定したところ、第4図に示す結果を得た。本結果よ
り、至適温度は70℃付近にある。好適温度(最適温度
での活性の80%を有する温度域とする)は53〜73
℃である。
(6)グルコアミラーゼ活性に及ぼす金属塩の形容
本発明によるグルコアミラーゼの活性に及ぼす金属塩の
影響を第3表に示す。グルコアミラーゼ活性の測定にお
いて各種の金属塩を5mMになるように添加した。そし
て、金属塩無添加に対する活性を%で表示した。なお、
アンモニウム塩及びEDTA添加の場合についても第3
表に付記した。マグネシウムイオン、カルシウムイオン
、カリウムイオンがグルコアミラーゼ活性作用を有する
ことが認められる。ニッケルイオン、鉄イオンには阻害
作用が認められる。
影響を第3表に示す。グルコアミラーゼ活性の測定にお
いて各種の金属塩を5mMになるように添加した。そし
て、金属塩無添加に対する活性を%で表示した。なお、
アンモニウム塩及びEDTA添加の場合についても第3
表に付記した。マグネシウムイオン、カルシウムイオン
、カリウムイオンがグルコアミラーゼ活性作用を有する
ことが認められる。ニッケルイオン、鉄イオンには阻害
作用が認められる。
第 3 表
活性測定条件
pH5,0(0,1Mクエン酸−第2クエン酸ナトリウ
ム緩衝液)活性測定温度:60℃(7)熱安定性 本発明によるグルコアミラーゼを基質無添加下、pH4
,5にて、60〜80℃の加熱処理を行い、一定時間毎
(20,40秒、 1. 2. 4.10.20.4
0分、1゜2.4,6,8.16時間、1,2,4,7
.10゜15、20日)に処理液の一部を採取し、液中
のグルコアミラーゼ活性を60℃、pH4,5にて測定
した。
ム緩衝液)活性測定温度:60℃(7)熱安定性 本発明によるグルコアミラーゼを基質無添加下、pH4
,5にて、60〜80℃の加熱処理を行い、一定時間毎
(20,40秒、 1. 2. 4.10.20.4
0分、1゜2.4,6,8.16時間、1,2,4,7
.10゜15、20日)に処理液の一部を採取し、液中
のグルコアミラーゼ活性を60℃、pH4,5にて測定
した。
これをもとに各温度における活性半減期を求め、その結
果を第5図に示した。70℃及び75℃における基質無
添加下での活性半減期はそれぞれ、6時間、1分間であ
る。本グルコアミラーゼはこれまで公知のグルコアミラ
ーゼに較べ高度の耐熱性を有している。一方、pH4,
0,4,3,4,5,5,0゜6、0の各pHにおける
基質無添加下、70℃での活性半減期を求め、第4表に
示した。この結果から、本グルコアミラーゼは、クロス
ツリジウム・サーモアミロリデイクム(Clostri
dium thermoamylo−1yticum)
+ サーモマイセス・ラヌギノスス(Thermom
yces lanuginosus)、及びタラロミセ
ス0デュポンティ(Talaromyces dupo
nti)により産生されるグルコアミラーゼよりも特に
、pH4〜5の酸性領域においてすぐれた耐熱性をもつ
ことを示す。
果を第5図に示した。70℃及び75℃における基質無
添加下での活性半減期はそれぞれ、6時間、1分間であ
る。本グルコアミラーゼはこれまで公知のグルコアミラ
ーゼに較べ高度の耐熱性を有している。一方、pH4,
0,4,3,4,5,5,0゜6、0の各pHにおける
基質無添加下、70℃での活性半減期を求め、第4表に
示した。この結果から、本グルコアミラーゼは、クロス
ツリジウム・サーモアミロリデイクム(Clostri
dium thermoamylo−1yticum)
+ サーモマイセス・ラヌギノスス(Thermom
yces lanuginosus)、及びタラロミセ
ス0デュポンティ(Talaromyces dupo
nti)により産生されるグルコアミラーゼよりも特に
、pH4〜5の酸性領域においてすぐれた耐熱性をもつ
ことを示す。
(本頁以下余白)
(8)耐熱性に及ぼす金属塩の影響
本発明によるグルコアミラーゼの耐熱性に及ぼす金属塩
の影響を第5表に示す。グルコアミラーゼの水溶液(0
,05M酢酸−酢酸す) IJウム緩衝液に溶解、pH
4,5)に各種の金属塩を5mM濃度になるように添加
し、70℃、1時間の加熱処理を行ったのち、pH4,
5,60℃でグルコアミラーゼ活性を測定した。そして
、加熱処理前に対する加熱処理後の活性、すなわち残存
活性を%で表示した。
の影響を第5表に示す。グルコアミラーゼの水溶液(0
,05M酢酸−酢酸す) IJウム緩衝液に溶解、pH
4,5)に各種の金属塩を5mM濃度になるように添加
し、70℃、1時間の加熱処理を行ったのち、pH4,
5,60℃でグルコアミラーゼ活性を測定した。そして
、加熱処理前に対する加熱処理後の活性、すなわち残存
活性を%で表示した。
第5表から、ニッケルイオン、マンガンイオン、マグネ
シウムイオンに保護効果のあることが認められる。コバ
ルトイオン、カルシウムイオンについては保護効果は認
められない。亜鉛イオンは耐熱性を著しく低下させる。
シウムイオンに保護効果のあることが認められる。コバ
ルトイオン、カルシウムイオンについては保護効果は認
められない。亜鉛イオンは耐熱性を著しく低下させる。
(本頁以下余白)
第 5 表
(9)分子量
本発明によるグルコアミラーゼの分子量はゲル濾過クロ
マト法(スエーデン、ファルマシア製セファデックスc
Ltooを使用)による溶出パターンから3.8 X
10−’と測定される。
マト法(スエーデン、ファルマシア製セファデックスc
Ltooを使用)による溶出パターンから3.8 X
10−’と測定される。
以上述べたことから明らかなように、本発明細菌より産
生される新しい耐熱性グルコアミラーゼは、特にpH4
〜5の酸性領域での耐熱性において、従来の嫌気性細菌
の産生ずる耐熱性酵素と著しく異なる。
生される新しい耐熱性グルコアミラーゼは、特にpH4
〜5の酸性領域での耐熱性において、従来の嫌気性細菌
の産生ずる耐熱性酵素と著しく異なる。
ところで、ぶどう糖や異性化糖を製造するには、まず、
原料のでん粉をα−アミラーゼで液化し、そのあとグル
コアミラーゼで糖化している。液化の際、原料のでん粉
を20〜40%の高濃度に仕込むため、液の[)Hは酸
性を呈する。このため、従来の耐熱性α−アミラーゼ及
び耐熱性グルコアミラーゼを用いる場合には、作用pH
域が中性域にあるため、アルカリで中和しなければなら
ない。
原料のでん粉をα−アミラーゼで液化し、そのあとグル
コアミラーゼで糖化している。液化の際、原料のでん粉
を20〜40%の高濃度に仕込むため、液の[)Hは酸
性を呈する。このため、従来の耐熱性α−アミラーゼ及
び耐熱性グルコアミラーゼを用いる場合には、作用pH
域が中性域にあるため、アルカリで中和しなければなら
ない。
これに対し、先に本発明者らが見い出した耐熱性・耐酸
性の新規なα−アミラーゼ(特願昭59−236917
号)及び、本発明による新規なグルコアミラーゼを用い
ることにより、液化での中和を行うことなく酸性の状態
のままで液化及び糖化を行うことが可能となり、ひいて
は反応後の脱塩工程への負荷を大幅に軽減できる。
性の新規なα−アミラーゼ(特願昭59−236917
号)及び、本発明による新規なグルコアミラーゼを用い
ることにより、液化での中和を行うことなく酸性の状態
のままで液化及び糖化を行うことが可能となり、ひいて
は反応後の脱塩工程への負荷を大幅に軽減できる。
実施例1
ポリペプトン0.56%、酵素エキス0.56%、リン
酸第1カリウム0.78%、リン酸第2ナトリウム0゜
39%、硫酸マグネシウム・7水和物0.001%、チ
オグリコール酸ナトリウム0.1%、水道水を含む合成
培地(p H6,5)2000g調製し、その270g
を500d容坂ロ振盪フラスコ7個に分注し、それぞれ
を121°C115分間殺菌した。一方、デキストリン
、馬鈴薯でん粉、マルトース、ぶどう糖、ラクトース、
シュークロース及びフラクトースの各炭素源についてそ
れぞれの10%溶液30gを調製し、110’C,15
分間の殺菌を行った。ついで、上記坂ロフラスコに炭素
源溶液をそれぞれ無菌的に添加した。
酸第1カリウム0.78%、リン酸第2ナトリウム0゜
39%、硫酸マグネシウム・7水和物0.001%、チ
オグリコール酸ナトリウム0.1%、水道水を含む合成
培地(p H6,5)2000g調製し、その270g
を500d容坂ロ振盪フラスコ7個に分注し、それぞれ
を121°C115分間殺菌した。一方、デキストリン
、馬鈴薯でん粉、マルトース、ぶどう糖、ラクトース、
シュークロース及びフラクトースの各炭素源についてそ
れぞれの10%溶液30gを調製し、110’C,15
分間の殺菌を行った。ついで、上記坂ロフラスコに炭素
源溶液をそれぞれ無菌的に添加した。
そののち、あらかじめ、デキストリンを炭素源とした上
記液体培地を用いて調製した本発明の嫌気性細菌クロス
ツリジウムG−0005の菌体懸濁液30m1づつを各
振盪フラスコに添加した。次いで、ガス出口に水封トラ
ップを付したのち、フラスコ内に窒素ガスを注入して嫌
気条件とし、60℃で振盪培養した。40時間後、各振
盪フラスコから培養液40gを採取した。次いで、採取
した各培養液試料の半量を分取し、15.OOOrpm
の遠心分離により菌体を除去し、培養上澄液を調製した
。残りの培養液試料については、水冷却下にて超音波破
砕処理を行い、次いで15.00Orpmの遠心分離に
より固形物を除去し菌体破砕培養液上澄液を調製した。
記液体培地を用いて調製した本発明の嫌気性細菌クロス
ツリジウムG−0005の菌体懸濁液30m1づつを各
振盪フラスコに添加した。次いで、ガス出口に水封トラ
ップを付したのち、フラスコ内に窒素ガスを注入して嫌
気条件とし、60℃で振盪培養した。40時間後、各振
盪フラスコから培養液40gを採取した。次いで、採取
した各培養液試料の半量を分取し、15.OOOrpm
の遠心分離により菌体を除去し、培養上澄液を調製した
。残りの培養液試料については、水冷却下にて超音波破
砕処理を行い、次いで15.00Orpmの遠心分離に
より固形物を除去し菌体破砕培養液上澄液を調製した。
次いで、各炭素源毎の培養上澄液及び菌体破砕培養液上
澄液中のグルコアミラーゼ活性を測定した。なお、活性
測定にあたっては、各試料を純水を用いて24時間透析
処理し、次いで70℃、5分間の熱処理を加え、さらに
遠心分離で固形物を除去した試料を用いた。測定の結果
を第6表に示した。
澄液中のグルコアミラーゼ活性を測定した。なお、活性
測定にあたっては、各試料を純水を用いて24時間透析
処理し、次いで70℃、5分間の熱処理を加え、さらに
遠心分離で固形物を除去した試料を用いた。測定の結果
を第6表に示した。
(本頁以下余白)
実施例2
馬鈴薯でん粉1.5%、ふどう糖0.2%、コーンステ
イープリカー0.3%、硫酸アンモニウム0.3%、リ
ン酸第1カリウム0.3%、硫酸マグネシウム0.01
%、硫酸第1鉄0.01%、硫酸マンガン0.01%、
システィン0.1%、水道水を含む液体培地(pH6、
5) 3.15kgを内容積51の培養槽に入れ、次い
で、 121℃、15分間の殺菌を行った。次いで、
60°Cまで冷却したのち、培養槽内の気相部を窒素ガ
スで置換した。次に、あらかじめ、上記液体培地を用い
て調製した本発明の嫌気性細菌クロスツリジウム属細菌
G−0005の菌体懸濁液0.35kgを添加し、次い
で、ガス出口に水封トラップを付したのち、気相部、培
地内に窒素ガスを注入し、嫌気状態となし、培養を開始
した。培養のpHは6.5.温度は60℃に調節した。
イープリカー0.3%、硫酸アンモニウム0.3%、リ
ン酸第1カリウム0.3%、硫酸マグネシウム0.01
%、硫酸第1鉄0.01%、硫酸マンガン0.01%、
システィン0.1%、水道水を含む液体培地(pH6、
5) 3.15kgを内容積51の培養槽に入れ、次い
で、 121℃、15分間の殺菌を行った。次いで、
60°Cまで冷却したのち、培養槽内の気相部を窒素ガ
スで置換した。次に、あらかじめ、上記液体培地を用い
て調製した本発明の嫌気性細菌クロスツリジウム属細菌
G−0005の菌体懸濁液0.35kgを添加し、次い
で、ガス出口に水封トラップを付したのち、気相部、培
地内に窒素ガスを注入し、嫌気状態となし、培養を開始
した。培養のpHは6.5.温度は60℃に調節した。
41時間後、培養を停止し、培養液3.55kgを得た
。次いで、遠心分離により菌体を含む固形物を除去し、
さらにガラス濾紙(東洋濾紙型、 GA−100,GC
−50)及びメンブレンフィルタ(東洋濾紙製、ポアサ
イズ1μm、 0.45μm)を用いて加圧濾過し、
培養濾液3.25kgを得た。培養濾液の一部をとり、
純水に対して24時間透析したのち液中の活性を測定し
たところ、培養濾液1gあたり0.12単位のグルコア
ミラーゼ活性が認められた。
。次いで、遠心分離により菌体を含む固形物を除去し、
さらにガラス濾紙(東洋濾紙型、 GA−100,GC
−50)及びメンブレンフィルタ(東洋濾紙製、ポアサ
イズ1μm、 0.45μm)を用いて加圧濾過し、
培養濾液3.25kgを得た。培養濾液の一部をとり、
純水に対して24時間透析したのち液中の活性を測定し
たところ、培養濾液1gあたり0.12単位のグルコア
ミラーゼ活性が認められた。
本発明の細菌の産生ずる新規な耐熱性/耐酸性グルコア
ミラーゼは、特にpH4〜5の酸性領域下にてすぐれた
耐熱性を有するため、でん粉を原料としてぶどう糖を製
造する際、でん粉溶液を中和することなく酸性状態での
糖化が可能となる。
ミラーゼは、特にpH4〜5の酸性領域下にてすぐれた
耐熱性を有するため、でん粉を原料としてぶどう糖を製
造する際、でん粉溶液を中和することなく酸性状態での
糖化が可能となる。
これに比べ、従来公知の耐熱性グルコアミラーゼを用い
る場合には、でん粉溶液を中性化するためにアルカリを
添加しなければならない。したがって、本発明の細菌の
産生ずるグルコアミラーゼを用いることにより、でん粉
溶液の中和工程が不要となり、かつ反応後の脱塩工程へ
の負荷を大幅に軽減できる。
る場合には、でん粉溶液を中性化するためにアルカリを
添加しなければならない。したがって、本発明の細菌の
産生ずるグルコアミラーゼを用いることにより、でん粉
溶液の中和工程が不要となり、かつ反応後の脱塩工程へ
の負荷を大幅に軽減できる。
第1図は本発明細菌(クロスツリジウム属細菌G−00
05)の生物形態を示す顕微鏡写真、第2図は本発明細
菌により生産されたグルコアミラーゼの活性に及ぼすp
Hの影響を示す特性図、第3図は前記グルコアミラーゼ
の熱安定性に及ぼすpHの影響を示す特性図、第4図は
前記グルコアミラーゼの活性に及ぼす温度の影響を示す
特性図、第5図は前記グルコアミラーゼの耐熱性を示す
特性図、第6図は前記グルコアミラーゼのジエチルアミ
ノエチル架橋アガロースゲルを用いたイオン交換液体ク
ロマトグラフにおけるグルコアミラーゼ活性溶出パター
ン図、第7図は前記グルコアミラーゼの架橋デキストラ
ンゲルを用いたゲル濾過におけるグルコアミラーゼ活性
溶出パターン図である。 特許出願人 株式会社日立製作所 代理人 弁理士 平 木 祐 輔 pH 第3図 pH 温度(−Cン
05)の生物形態を示す顕微鏡写真、第2図は本発明細
菌により生産されたグルコアミラーゼの活性に及ぼすp
Hの影響を示す特性図、第3図は前記グルコアミラーゼ
の熱安定性に及ぼすpHの影響を示す特性図、第4図は
前記グルコアミラーゼの活性に及ぼす温度の影響を示す
特性図、第5図は前記グルコアミラーゼの耐熱性を示す
特性図、第6図は前記グルコアミラーゼのジエチルアミ
ノエチル架橋アガロースゲルを用いたイオン交換液体ク
ロマトグラフにおけるグルコアミラーゼ活性溶出パター
ン図、第7図は前記グルコアミラーゼの架橋デキストラ
ンゲルを用いたゲル濾過におけるグルコアミラーゼ活性
溶出パターン図である。 特許出願人 株式会社日立製作所 代理人 弁理士 平 木 祐 輔 pH 第3図 pH 温度(−Cン
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、温度49℃〜65℃で生育し、且つ、耐熱性/耐酸
性グルコアミラーゼ生産能を有するクロスツリジウム・
エスビー。 2、微生物が微工研菌寄第8737号と同定される性質
を有する特許請求の範囲第1項記載のクロスツリジウム
・エスビー。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18341186A JPS6339577A (ja) | 1986-08-06 | 1986-08-06 | 耐熱性/耐酸性グルコアミラ−ゼを生産する嫌気性細菌 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP18341186A JPS6339577A (ja) | 1986-08-06 | 1986-08-06 | 耐熱性/耐酸性グルコアミラ−ゼを生産する嫌気性細菌 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6339577A true JPS6339577A (ja) | 1988-02-20 |
JPH0425794B2 JPH0425794B2 (ja) | 1992-05-01 |
Family
ID=16135309
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP18341186A Granted JPS6339577A (ja) | 1986-08-06 | 1986-08-06 | 耐熱性/耐酸性グルコアミラ−ゼを生産する嫌気性細菌 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6339577A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0317369A (ja) * | 1989-06-13 | 1991-01-25 | Fujisash Co | 同面引違いサッシ |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4604352A (en) * | 1984-09-18 | 1986-08-05 | Michigan Biotechnology Institute | Co-culture production of thermostable enzymers and ethanol |
-
1986
- 1986-08-06 JP JP18341186A patent/JPS6339577A/ja active Granted
Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4604352A (en) * | 1984-09-18 | 1986-08-05 | Michigan Biotechnology Institute | Co-culture production of thermostable enzymers and ethanol |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0317369A (ja) * | 1989-06-13 | 1991-01-25 | Fujisash Co | 同面引違いサッシ |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0425794B2 (ja) | 1992-05-01 |
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