JPS63255660A - 細胞測定法 - Google Patents
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- JPS63255660A JPS63255660A JP8915387A JP8915387A JPS63255660A JP S63255660 A JPS63255660 A JP S63255660A JP 8915387 A JP8915387 A JP 8915387A JP 8915387 A JP8915387 A JP 8915387A JP S63255660 A JPS63255660 A JP S63255660A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は細胞測定法に係り、特に血液塗沫標本や細胞M
i織標本を用いて細胞を識別するのに好適な細胞測定法
に関するものである。
i織標本を用いて細胞を識別するのに好適な細胞測定法
に関するものである。
従来の免疫分析方法としてラジオイムノアッセイ法やエ
ンザイムイムノアツセイ法などのいろいろな標識物質を
用いて種々の分析法が考えJられている。こ九らの分析
法の多くは、血液中の各種成分の分析に応用されており
、いわゆる体液性免疫に関係していた。これに対して、
リンパ球や赤血球などの血液細胞や組繊細胞などを免疫
学的に調べるいわゆる細胞免疫に関しては、高感度免疫
分析技術の応用が始まったところであるといえる。
ンザイムイムノアツセイ法などのいろいろな標識物質を
用いて種々の分析法が考えJられている。こ九らの分析
法の多くは、血液中の各種成分の分析に応用されており
、いわゆる体液性免疫に関係していた。これに対して、
リンパ球や赤血球などの血液細胞や組繊細胞などを免疫
学的に調べるいわゆる細胞免疫に関しては、高感度免疫
分析技術の応用が始まったところであるといえる。
例えば、リンパ球にばT細胞(Tリンパ球)とB細胞(
Bリンパ球)とがある。両者はともに共通の骨髄幹細胞
から発生したものであるが、互いに協調して機能し、マ
クロファージ、単球、多核白血球らと共同して免疫反応
を起こす。各種免疫疾患において、細胞性免疫に重要な
役割を演するT細胞、液性抗体の産生をつかさどるB細
胞の量的異常を測定することは、診断あるいは疾患の病
態を把握する上で役立つといわれている。これらのT細
胞、B細胞の測定は、現在法のようにされている。すな
わち、T細胞はヒツジ赤血球(SRBC)と試験管内て
ロゼツI−を形成する性質あるいは特異的にT細胞と反
応する抗体(抗T細胞抗体)を用いて膜量光抗体法で染
色する。B細胞は、マウス赤血球(MRBC)と試験管
内でロゼツトを形成する性質あるいは膜表面に免疫グロ
ブリンを保有しているので、蛍光標識抗ヒ1へ免疫グロ
ブリン血清を用いて膜量光抗体法で陽性細胞を観察する
(日本臨床 40巻 第985頁 秋季臨時増刊号
1982年)。
Bリンパ球)とがある。両者はともに共通の骨髄幹細胞
から発生したものであるが、互いに協調して機能し、マ
クロファージ、単球、多核白血球らと共同して免疫反応
を起こす。各種免疫疾患において、細胞性免疫に重要な
役割を演するT細胞、液性抗体の産生をつかさどるB細
胞の量的異常を測定することは、診断あるいは疾患の病
態を把握する上で役立つといわれている。これらのT細
胞、B細胞の測定は、現在法のようにされている。すな
わち、T細胞はヒツジ赤血球(SRBC)と試験管内て
ロゼツI−を形成する性質あるいは特異的にT細胞と反
応する抗体(抗T細胞抗体)を用いて膜量光抗体法で染
色する。B細胞は、マウス赤血球(MRBC)と試験管
内でロゼツトを形成する性質あるいは膜表面に免疫グロ
ブリンを保有しているので、蛍光標識抗ヒ1へ免疫グロ
ブリン血清を用いて膜量光抗体法で陽性細胞を観察する
(日本臨床 40巻 第985頁 秋季臨時増刊号
1982年)。
しかしながら、前述のロゼツト形成反応は、その手技が
比重遠心法の採用など面倒である上にロゼツト形成反応
に長時間を要し、しかもその上血球計算板を使用する検
鏡が必要である。このように、ロゼツト形成反応を利用
したT細胞、B細胞の測定には多大の手間が必要であっ
た。一方、膜量光抗体法は、特異抗体の利用により正確
度が高い便利な方法であるといえる。しかし、抗体1分
子に結合させることのできる標識化合物(蛍光物質)数
には限りがあるため、検出感度の点で問題があった。ま
た、標識化合物として使用することのできる蛍光物質は
、その種類が限られており、しかも蛍光波長が近接する
ものが大部分を占めている。このため、複数種類の細胞
あるいは細胞抗原を光学的に同時に識別するのは困難で
あった。
比重遠心法の採用など面倒である上にロゼツト形成反応
に長時間を要し、しかもその上血球計算板を使用する検
鏡が必要である。このように、ロゼツト形成反応を利用
したT細胞、B細胞の測定には多大の手間が必要であっ
た。一方、膜量光抗体法は、特異抗体の利用により正確
度が高い便利な方法であるといえる。しかし、抗体1分
子に結合させることのできる標識化合物(蛍光物質)数
には限りがあるため、検出感度の点で問題があった。ま
た、標識化合物として使用することのできる蛍光物質は
、その種類が限られており、しかも蛍光波長が近接する
ものが大部分を占めている。このため、複数種類の細胞
あるいは細胞抗原を光学的に同時に識別するのは困難で
あった。
さらに、細胞あるいは細胞抗原の識別に酵素抗体法が利
用されている。これは、抗原と酵素標識抗体を反応させ
た後に酵素反応を起こして発色させる方法である。しか
しながら、このとき、発色反応の結果化じる色素は、細
胞表面に沈着した状態にあることが多く、後染色により
除去されやすいという問題点があった。さらに、使用さ
れ得る酵素は限られており、酵素反応の結果化ずる色調
を基に複数種類の細胞あるいは細胞抗原を光学的に識別
することは困難であった。また、発色まで多段階の反応
を要し、結果を得るまでに長時間を必要とした。
用されている。これは、抗原と酵素標識抗体を反応させ
た後に酵素反応を起こして発色させる方法である。しか
しながら、このとき、発色反応の結果化じる色素は、細
胞表面に沈着した状態にあることが多く、後染色により
除去されやすいという問題点があった。さらに、使用さ
れ得る酵素は限られており、酵素反応の結果化ずる色調
を基に複数種類の細胞あるいは細胞抗原を光学的に識別
することは困難であった。また、発色まで多段階の反応
を要し、結果を得るまでに長時間を必要とした。
近年、金コロイド抗体法により細胞表面抗原の存在が証
明されるようになってきている。しかしながら、金コロ
イドの最大吸収波長は520〜540μmであり、複数
種類の細胞あるいは細胞抗原の同時識別の目的には適し
ていないといえる。
明されるようになってきている。しかしながら、金コロ
イドの最大吸収波長は520〜540μmであり、複数
種類の細胞あるいは細胞抗原の同時識別の目的には適し
ていないといえる。
さらに、近年、細胞を分類するにあたり、種々の細胞に
ついて特異的な染色性、形状などをもとにしてパターン
認識技術を駆使して分類する方法も試みられている。し
かしながら、これらのバタ−ン認識技術による細胞分類
の識別精度は未だ不十分であり、特異性の高い細胞の識
別方法の開発が望まれている。
ついて特異的な染色性、形状などをもとにしてパターン
認識技術を駆使して分類する方法も試みられている。し
かしながら、これらのバタ−ン認識技術による細胞分類
の識別精度は未だ不十分であり、特異性の高い細胞の識
別方法の開発が望まれている。
上記した従来技術の膜量光抗体法は、標識化合物として
使用できる蛍光物質の種類が限られるため、複数種類の
細胞あるいは細胞抗原を光学的に同時に識別することが
困難であり、また、酵素抗体法が利用されているが、発
色反応の結果化する色素は細胞表面に沈着した状態にあ
ることが多く、後染色によって除去されやすく、かつ、
使用し得る酵素は限られており、複数種類の細胞あるい
は細胞抗原を光学的に識別することが困難であり、発色
までに多段階の反応を要し、結果を得るまでに長時間を
必要とした。また、近年、金コロイIく抗体法やパター
ン認識技術を駆使して分類する方法も試みられているが
、細胞分類の識別精度は未だ不十分である。
使用できる蛍光物質の種類が限られるため、複数種類の
細胞あるいは細胞抗原を光学的に同時に識別することが
困難であり、また、酵素抗体法が利用されているが、発
色反応の結果化する色素は細胞表面に沈着した状態にあ
ることが多く、後染色によって除去されやすく、かつ、
使用し得る酵素は限られており、複数種類の細胞あるい
は細胞抗原を光学的に識別することが困難であり、発色
までに多段階の反応を要し、結果を得るまでに長時間を
必要とした。また、近年、金コロイIく抗体法やパター
ン認識技術を駆使して分類する方法も試みられているが
、細胞分類の識別精度は未だ不十分である。
本発明の目的は、T細胞あるいはB細胞に限らず血液細
胞や組繊細胞などの複数種類の細胞あるいは細胞抗原を
簡便、迅速に検出し、識別計測することができる細胞測
定法を提供することにある。
胞や組繊細胞などの複数種類の細胞あるいは細胞抗原を
簡便、迅速に検出し、識別計測することができる細胞測
定法を提供することにある。
上記目的は、複数種類の被検細胞あるいは被検細胞の抗
原と、これらに対して特異的に反応する抗体を結合させ
て光学的に相互に識別し得る複数種類の微細粒子を反応
させ、しかるのちそれぞれの粒子を分別し得る光学的手
段により上記複数種類の被検細胞あるいは被検細胞の抗
原を同時に計測することによって達成するようにした。
原と、これらに対して特異的に反応する抗体を結合させ
て光学的に相互に識別し得る複数種類の微細粒子を反応
させ、しかるのちそれぞれの粒子を分別し得る光学的手
段により上記複数種類の被検細胞あるいは被検細胞の抗
原を同時に計測することによって達成するようにした。
あるいは、複数種類の被検細胞あるいは被検細胞の抗原
と、これらに対して特異的に反応する抗体を反応させた
後に、さらに光学的に相互に識別し得る複数種類の微細
粒子にそれぞれ結合させた上記抗体と特異的に反応する
細胞を反応させ、しかるのちそれぞれの粒子を分別し得
る光学的手段により上記複数種類の被検細胞あるいは被
検細胞の抗原を同時に開側することによって達成するよ
うにした。
と、これらに対して特異的に反応する抗体を反応させた
後に、さらに光学的に相互に識別し得る複数種類の微細
粒子にそれぞれ結合させた上記抗体と特異的に反応する
細胞を反応させ、しかるのちそれぞれの粒子を分別し得
る光学的手段により上記複数種類の被検細胞あるいは被
検細胞の抗原を同時に開側することによって達成するよ
うにした。
微細粒子はラテックス粒子のような合成高分子であって
もよく、あるいは金属粒子であってもよく、さらに小胞
体であってもよく、これらに限度されるものではない。
もよく、あるいは金属粒子であってもよく、さらに小胞
体であってもよく、これらに限度されるものではない。
要するに光学的に検知可能な小粒子であれば、本発明の
細胞測定法に用いることができる。また、微細粒子の大
きさは、10−工Omからコ−0−6m、特に好ましく
は10−7mから]〇−θmのときに細胞の識別に好適
である。
細胞測定法に用いることができる。また、微細粒子の大
きさは、10−工Omからコ−0−6m、特に好ましく
は10−7mから]〇−θmのときに細胞の識別に好適
である。
測定対象である細胞あるいは細胞抗原の種類によって微
細粒子の粒子径を変えることにより、微細粒子の大きさ
の違いを基に複数種類の細胞あるいは細胞抗原の同時計
測が可能となる。また、細胞あるいは細胞抗原の種類に
よって、これと反応させる微細粒子の色調を変えて相互
に識別できるようにすると、微細粒子の色調を検知する
ことにより複数種類の細胞あるいは細胞抗原の同時計測
が可能となる。近年、種々の粒子径の着色粒子(dye
d particl、es)が市販されるようになった
が、これらを本発明の方法に使用することもできる。
細粒子の粒子径を変えることにより、微細粒子の大きさ
の違いを基に複数種類の細胞あるいは細胞抗原の同時計
測が可能となる。また、細胞あるいは細胞抗原の種類に
よって、これと反応させる微細粒子の色調を変えて相互
に識別できるようにすると、微細粒子の色調を検知する
ことにより複数種類の細胞あるいは細胞抗原の同時計測
が可能となる。近年、種々の粒子径の着色粒子(dye
d particl、es)が市販されるようになった
が、これらを本発明の方法に使用することもできる。
従来より汎用されている抗体の標識法を蛍光色素の代表
であるF I T C(fluoresceiniso
thiocyanate)と抗ヒトアルブミン抗体を例
にとって説明する。一定量の抗体に対してFITCを加
えてゆくと、FITC量を増すことによって単位蛋白質
量あたりの蛍光標識量(F/P比)の高い標識抗体が得
られる。通常、F/P二2前2前後光抗体を用いること
が多く、F/P=3程度の標識抗体を調整することもで
きるが、抗体活性はむしろ低下してしまうことが多い。
であるF I T C(fluoresceiniso
thiocyanate)と抗ヒトアルブミン抗体を例
にとって説明する。一定量の抗体に対してFITCを加
えてゆくと、FITC量を増すことによって単位蛋白質
量あたりの蛍光標識量(F/P比)の高い標識抗体が得
られる。通常、F/P二2前2前後光抗体を用いること
が多く、F/P=3程度の標識抗体を調整することもで
きるが、抗体活性はむしろ低下してしまうことが多い。
このように抗体1分子あたりの有効な標識分子数には限
度があり、また、細胞抗原1分子に標識抗体が1分子し
か結合することができないため、十分な検出感度が得ら
れていなかった。
度があり、また、細胞抗原1分子に標識抗体が1分子し
か結合することができないため、十分な検出感度が得ら
れていなかった。
本発明においては、抗体を結合させた微細粒子を光学的
に識別する方法を採用しており、抗体を標識する従来法
と比較して高感度に細胞を検知できることはいうまでも
ない。また、複数種類の細胞あるいは細胞抗原の同時計
測といった点においては、従来法である蛍光抗体法や酵
素抗体法で使用される標識物質の種類は限られており、
標識物質の神頼を基にして識別することのできる細胞あ
るいは細胞抗原の種類には限度があった。これに対して
本発明の方法で使用する微細粒子については、粒子径、
形状あるいは色調を任意に選択することができ、光学的
に相互に識別し得る複数種類の微細粒子を使用すること
ができる。このため、本発明の細胞測定法は、複数種類
の細胞あるいは細胞抗原の識別、計測に適した方法であ
るといえる。
に識別する方法を採用しており、抗体を標識する従来法
と比較して高感度に細胞を検知できることはいうまでも
ない。また、複数種類の細胞あるいは細胞抗原の同時計
測といった点においては、従来法である蛍光抗体法や酵
素抗体法で使用される標識物質の種類は限られており、
標識物質の神頼を基にして識別することのできる細胞あ
るいは細胞抗原の種類には限度があった。これに対して
本発明の方法で使用する微細粒子については、粒子径、
形状あるいは色調を任意に選択することができ、光学的
に相互に識別し得る複数種類の微細粒子を使用すること
ができる。このため、本発明の細胞測定法は、複数種類
の細胞あるいは細胞抗原の識別、計測に適した方法であ
るといえる。
さらに、従来法で必要とされた発色反応は不要となるた
め、測定操作に必要な手間が大幅に省けて、短時間に簡
便な細胞の識別方法を提供するこ標本や細胞組織標本で
あるときに特に好適な方法である。微細粒子の粒子径を
適宜選択することによって、細胞の形状を損うことなく
、目的とする細胞表面抗原の存在部位を明らかにするこ
とができる。このため、抗原の存在を確認すると同時に
1枚の標本を用いて細胞の形状あるいは細胞染色などの
情報をもとに細胞を分類することもできる。
め、測定操作に必要な手間が大幅に省けて、短時間に簡
便な細胞の識別方法を提供するこ標本や細胞組織標本で
あるときに特に好適な方法である。微細粒子の粒子径を
適宜選択することによって、細胞の形状を損うことなく
、目的とする細胞表面抗原の存在部位を明らかにするこ
とができる。このため、抗原の存在を確認すると同時に
1枚の標本を用いて細胞の形状あるいは細胞染色などの
情報をもとに細胞を分類することもできる。
また、複数種類の細胞あるいは細胞抗原の検出のために
、従来、同一検体について複数枚数の標本が必要とされ
たが、本発明の方法により同一標本を用いて、複数種類
の細胞あるいは細胞抗原の同時計測が可能となる。また
、多重染色により最初に染色された色素が脱色するとい
う問題も解決される。
、従来、同一検体について複数枚数の標本が必要とされ
たが、本発明の方法により同一標本を用いて、複数種類
の細胞あるいは細胞抗原の同時計測が可能となる。また
、多重染色により最初に染色された色素が脱色するとい
う問題も解決される。
従来、染色、形状などの種々の情報を基にしてコンピュ
ータでのパターン認識技術によりなされている血球分類
も、それぞれの細胞に特異的な抗微細粒子を光学的に検
知することで血球分類が可能となる。
ータでのパターン認識技術によりなされている血球分類
も、それぞれの細胞に特異的な抗微細粒子を光学的に検
知することで血球分類が可能となる。
次に、従来法の酵素標識抗体法と本発明の複数の細胞抗
原を検出するための方法について、反応を追いながら説
明する。従来法では、例えば、第2図に示すように、ス
ライド1の細胞2の3で示す抗原1と4で示す抗原2の
2種類の細胞抗原の検出のために、発色後の色調の異な
る2種類の酵素をそれぞれの抗体に標識した酵素標識抗
体を準備する。まず、抗原1に対しては、酵素A標識抗
体、主を反応させた後、基質Aを加え、酵素反応を生じ
させて発色(例えば、赤色3′)を見ることにより検出
する。次に、抗M2についても、酵素B標識抗体声を加
えて反応させた後、基質Bを加え、発色(例えば青色4
′)を見ることで抗原2を検出する。従来法においては
、使用する標識酵素が限定されるため、同時検出抗原の
種類に限りがあるほか、後染色による脱色の問題などが
あることは、先に述べた通りである。
原を検出するための方法について、反応を追いながら説
明する。従来法では、例えば、第2図に示すように、ス
ライド1の細胞2の3で示す抗原1と4で示す抗原2の
2種類の細胞抗原の検出のために、発色後の色調の異な
る2種類の酵素をそれぞれの抗体に標識した酵素標識抗
体を準備する。まず、抗原1に対しては、酵素A標識抗
体、主を反応させた後、基質Aを加え、酵素反応を生じ
させて発色(例えば、赤色3′)を見ることにより検出
する。次に、抗M2についても、酵素B標識抗体声を加
えて反応させた後、基質Bを加え、発色(例えば青色4
′)を見ることで抗原2を検出する。従来法においては
、使用する標識酵素が限定されるため、同時検出抗原の
種類に限りがあるほか、後染色による脱色の問題などが
あることは、先に述べた通りである。
の抗体を結合させた光学的に識別し得る微細粒子(例え
ば、抗体、子結合の赤色微細粒子及び抗り結合の青色微
細粒子)を反応させる。こののち、それぞれの粒子を分
別し得る光学的手段、例えば、分光器5によってそれぞ
れの粒子を識別する。これによって抗原1及び抗原2が
同時に検出できる。
ば、抗体、子結合の赤色微細粒子及び抗り結合の青色微
細粒子)を反応させる。こののち、それぞれの粒子を分
別し得る光学的手段、例えば、分光器5によってそれぞ
れの粒子を識別する。これによって抗原1及び抗原2が
同時に検出できる。
なお、第1図には赤色粒子と青色粒子の分光特性の−例
を示しである。
を示しである。
以下本発明の実施例について説明する。
実施例]−
T細胞、B細胞の同時分析
患者血液の薄層塗抹標本を作成して乾燥後、直ちに固定
し、抗B細胞抗体を結合させた粒子径0.03 μmの
青色ラテックス微細粒子溶液と、抗B細胞抗体を結合さ
せた粒子径0.03 μmの赤色ラテックス微細粒子液
を先の固定標本と37℃、30分間反応させる。その後
、1%手血清アルブミン含有の0.1Mリン酸緩衝液(
PH7,4)で十分洗浄して余分の反応液を除去し、そ
の後光学顕微鏡を用いて青色及び赤色のラテックス微細
粒子が付着した細胞を目視計測することによってT細胞
、B細胞の百分率を求める。その結果を第1表に示す。
し、抗B細胞抗体を結合させた粒子径0.03 μmの
青色ラテックス微細粒子溶液と、抗B細胞抗体を結合さ
せた粒子径0.03 μmの赤色ラテックス微細粒子液
を先の固定標本と37℃、30分間反応させる。その後
、1%手血清アルブミン含有の0.1Mリン酸緩衝液(
PH7,4)で十分洗浄して余分の反応液を除去し、そ
の後光学顕微鏡を用いて青色及び赤色のラテックス微細
粒子が付着した細胞を目視計測することによってT細胞
、B細胞の百分率を求める。その結果を第1表に示す。
第 1 表
また、上記と同様の方法によって調製及び反応させた標
本を血液像自動分類装置に供し、赤色及び青色粒子の付
着した細胞を選別することによりT細胞、B細胞の百分
率を求めたところ、従来法と一致する良好な結果を迅速
に得ることができた。
本を血液像自動分類装置に供し、赤色及び青色粒子の付
着した細胞を選別することによりT細胞、B細胞の百分
率を求めたところ、従来法と一致する良好な結果を迅速
に得ることができた。
実施例2
患者血液の薄層塗抹標本を作成して乾燥後、直ちに固定
し、この標本にマウス抗B細胞抗体及びラット抗B細胞
抗体液を滴下して、37°C130分間反応させる。そ
の後、1%アルブミン含有のリン酸緩衝液で洗浄した後
、ラビット抗マウス抗体を結合させた粒子径0.03
μmの青色ラテックス微細粒子溶液とラビット抗ラッ
ト抗体を結合させた粒子径0.03 μmの赤色ラテ
ックス微細粒子を滴下し、37℃、30分間反応させた
後洗浄し、光学顕微鏡で青色及び赤色粒子の付着した細
胞を計測することによってゴ′細胞、B細胞の百分率を
求めた。これによる従来法との一致率は良好であった。
し、この標本にマウス抗B細胞抗体及びラット抗B細胞
抗体液を滴下して、37°C130分間反応させる。そ
の後、1%アルブミン含有のリン酸緩衝液で洗浄した後
、ラビット抗マウス抗体を結合させた粒子径0.03
μmの青色ラテックス微細粒子溶液とラビット抗ラッ
ト抗体を結合させた粒子径0.03 μmの赤色ラテ
ックス微細粒子を滴下し、37℃、30分間反応させた
後洗浄し、光学顕微鏡で青色及び赤色粒子の付着した細
胞を計測することによってゴ′細胞、B細胞の百分率を
求めた。これによる従来法との一致率は良好であった。
実施例3
リンパ球浮遊液(5X106/mff)O,imQとF
ITC標識抗IgM(μ)抗体とを結合させたラテック
ス溶液0.1 mQと、抗B細胞抗体を結合させた粒
子径0.02 μmの赤色ラテックス微細粒子溶液0
.1 mQを混合後、37℃、30分間反応される。
ITC標識抗IgM(μ)抗体とを結合させたラテック
ス溶液0.1 mQと、抗B細胞抗体を結合させた粒
子径0.02 μmの赤色ラテックス微細粒子溶液0
.1 mQを混合後、37℃、30分間反応される。
その後、150 g (1000rpm)10分間の遠
心洗浄を2回行い、沈渣はミキサーでほぐした。最後の
沈渣に数滴のM E M −NaN3を加え、この反応
細胞浮遊液をキャピラリーで再浮遊させ、1滴をスライ
ドガラスに落して、カバーガラスで液を封じた。その後
、光学顕微鏡で観察して赤色粒子の付着したB細胞を確
認後、同一視野を蛍光顕微鏡で観察した。これによって
先に観察したB細胞が蛍光を発生しているかどうかを観
察し、B細胞の形に沿って緑色の蛍光を発する細胞を認
めることができる。この実験によって同一細胞の多重標
識観察が可能であることがわかった。
心洗浄を2回行い、沈渣はミキサーでほぐした。最後の
沈渣に数滴のM E M −NaN3を加え、この反応
細胞浮遊液をキャピラリーで再浮遊させ、1滴をスライ
ドガラスに落して、カバーガラスで液を封じた。その後
、光学顕微鏡で観察して赤色粒子の付着したB細胞を確
認後、同一視野を蛍光顕微鏡で観察した。これによって
先に観察したB細胞が蛍光を発生しているかどうかを観
察し、B細胞の形に沿って緑色の蛍光を発する細胞を認
めることができる。この実験によって同一細胞の多重標
識観察が可能であることがわかった。
実施例4
リンパ球浮遊液50μQと抗ヒ1−トランスフエリンリ
セブター抗体を結合させた粒子径0.01μmの赤色ラ
テックス微細粒子液5oμQと、抗ヒ1〜T細胞抗体を
結合させた青色ラテックス微細粒子液50μQを混合し
て37°C,1時間反応させ、混入赤血球を溶血させた
後に、300gで10分間遠心分離して細胞を洗浄し、
洗浄細胞を標本として光学顕微鏡で赤色及び青色粒子の
付着した細胞を観察することによって活性化T細胞を同
定する。
セブター抗体を結合させた粒子径0.01μmの赤色ラ
テックス微細粒子液5oμQと、抗ヒ1〜T細胞抗体を
結合させた青色ラテックス微細粒子液50μQを混合し
て37°C,1時間反応させ、混入赤血球を溶血させた
後に、300gで10分間遠心分離して細胞を洗浄し、
洗浄細胞を標本として光学顕微鏡で赤色及び青色粒子の
付着した細胞を観察することによって活性化T細胞を同
定する。
実施例5
リンパ球浮遊液20μQとマウス抗B細胞抗体10μQ
と反応させて4℃、15分間インキュベートし、800
g、5分間の遠心分離を2回行い、細胞を洗浄し、さら
に、ボート抗マウス抗体を結合させた直径30nmの金
粒子液20μQを加えて、37°C,30分間インキュ
ベートし、800g+5分間の遠心分離により洗浄し、
次に、ラビット抗B細胞抗体を結合させた粒子径0.8
μmの黄色ラテックス液50μQを加えて37°C
230分間反応させた。細胞を洗浄した後、細胞浮遊液
をスライドグラス」二に滴下して塗抹固定し、このよう
にして作成した標本を光学顕微鏡で観察した。この結果
、細胞の色調とともに、着色粒子の粒子径の違いをもと
にしてリンパ球浮遊液中のT細胞とB′細胞の分別が可
能となる。
と反応させて4℃、15分間インキュベートし、800
g、5分間の遠心分離を2回行い、細胞を洗浄し、さら
に、ボート抗マウス抗体を結合させた直径30nmの金
粒子液20μQを加えて、37°C,30分間インキュ
ベートし、800g+5分間の遠心分離により洗浄し、
次に、ラビット抗B細胞抗体を結合させた粒子径0.8
μmの黄色ラテックス液50μQを加えて37°C
230分間反応させた。細胞を洗浄した後、細胞浮遊液
をスライドグラス」二に滴下して塗抹固定し、このよう
にして作成した標本を光学顕微鏡で観察した。この結果
、細胞の色調とともに、着色粒子の粒子径の違いをもと
にしてリンパ球浮遊液中のT細胞とB′細胞の分別が可
能となる。
以上説明したように、本発明によれば、血液細胞や組繊
細胞などの複数種類の細胞あるいは細胞抗原を簡便、迅
速、高感度に同時に識別計測することができるという効
果がある。
細胞などの複数種類の細胞あるいは細胞抗原を簡便、迅
速、高感度に同時に識別計測することができるという効
果がある。
第1図は本発明の複数の細胞抗原を検出するための方法
の一実施例を説明するための説明図、第2図は従来の複
数の細胞抗原を検出するための方法の説明図である。 トスライ1く、2・・・細胞、3・抗原1.4・・・抗
原2.5・・分光器。
の一実施例を説明するための説明図、第2図は従来の複
数の細胞抗原を検出するための方法の説明図である。 トスライ1く、2・・・細胞、3・抗原1.4・・・抗
原2.5・・分光器。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、試料中の被検細胞と該細胞と特異的に反応する抗体
とを反応させることにより前記被検細胞を識別する方法
において、前記被検細胞が複数種類からなるときにそれ
ぞれの細胞と特異的に反応する抗体を結合させた光学的
に相互に識別し得る複数種類の微細粒子を前記被検細胞
と反応させて、しかるのちそれぞれの前記微細粒子を分
別し得る光学的手段により前記複数種類の被検細胞を同
時に計測することを特徴とする細胞測定法。 2、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の色調
が光学的に相互に識別し得るものである特許請求の範囲
第1項記載の細胞測定法。 3、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の形状
あるいは粒子径が光学的に相互に識別し得るものである
特許請求の範囲第1項記載の細胞測定法。 4、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子が合成
高分子脂質を成分とする小胞体または無機物質のいずれ
かであり、粒子径が10^−^1^0〜10^−^6m
である特許請求の範囲第1項または第2項または第3項
記載の細胞測定法。 5、前記被検細胞を含む試料が血液塗沫標本あるいは細
胞組織標本である特許請求の範囲第1項または第2項ま
たは第3項または第4項記載の細胞測定法。 6、試料中の被検細胞と該細胞と特異的に反応する抗体
とを反応させることにより前記被検細胞を識別する方法
において、複数種類からなる前記被検細胞とそれぞれの
前記細胞と特異的に反応する抗体とを反応させたのちさ
らに光学的に相互に識別し得る複数種類の微細粒子にそ
れぞれ結合させた前記抗体と特異的に反応する抗体を反
応させて、しかるのちそれぞれの前記微細粒子を分別し
得る光学的手段により前記複数種類の被検細胞を同時に
計測することを特徴とする細胞測定法。 7、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の色調
が光学的に相互に識別し得るものである特許請求の範囲
第6項記載の細胞測定法。 8、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の形状
あるいは粒子径が光学的に相互に識別し得るものである
特許請求の範囲第6項記載の細胞測定法。 9、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子が合成
高分子脂質を成分とする小胞体または無機物質のいずれ
かであり、粒子径が10^−^1^0〜10^−^6m
である特許請求の範囲第6項または第7項または第8項
記載の細胞測定法。 10、前記被検細胞を含む試料が血液塗沫標本あるいは
細胞組織標本である特許請求の範囲第6項または第7項
または第8項または第9項記載の細胞測定法。 11、試料中の被検細胞と該細胞と特異的に反応する抗
体とを反応させることにより前記被検細胞を識別する方
法において、複数種類からなる前記被検細胞の抗原とそ
れぞれの前記抗原と特異的に反応する抗体を結合させた
光学的に相互に識別し得る複数種類の微細粒子を反応さ
せ、しかるのちそれぞれの前記微細粒子を分別し得る光
学的手段により前記複数種類の細胞抗原を同時に計測す
ることを特徴とする細胞測定法。 12、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の色
調が光学的に相互に識別し得るものである特許請求の範
囲第11項記載の細胞測定法。 13、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の形
状あるいは粒子径が光学的に相互に識別し得るものであ
る特許請求の範囲第11項記載の細胞測定法。 14、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子が合
成高分子脂質を成分とする小胞体または無機物質のいず
れかであり、粒子径が10^−^1^0〜10^−^6
mである特許請求の範囲第11項または第12項または
第13項記載の細胞測定法。 15、前記被検細胞を含む試料が血液塗沫標本あるいは
細胞組織標本である特許請求の範囲第11項または第1
2項または第13項または第14項記載の細胞測定法。 16、試料中の被検細胞と該細胞と特異的に反応する抗
体とを反応させることにより前記被検細胞を識別する方
法において、複数種類からなる前記被検細胞の抗原とそ
れぞれの前記抗原と特異的に反応する抗体とを反応させ
たのちに、さらに光学的に相互に識別し得る複数種類の
微細粒子にそれぞれ結合させた前記抗体と特異的に反応
する抗体を反応させ、しかるのちそれぞれの前記微細粒
子を分別し得る光学的手段により前記複数種類の細胞抗
原を同時に計測することを特徴とする細胞測定法。 17、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の色
調が光学的に相互に識別し得るものである特許請求の範
囲第16項記載の細胞測定法。 18、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子の形
状あるいは粒子径が光学的に相互に識別し得るものであ
る特許請求の範囲第16項記載の細胞測定法。 19、前記複数種類の被検細胞に対応する微細粒子が合
成高分子脂質を成分とする小胞体または無機物質のいず
れかであり、粒子径が10^−^1^0〜10^−^6
mである特許請求の範囲第16項または第17項または
第18項記載の細胞測定法。 20、前記被検細胞を含む試料が血液塗沫標本あるいは
細胞組織標本である特許請求の範囲第16項または第1
7項または第18項または第19項記載の細胞測定法。
Priority Applications (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62089153A JPH07104349B2 (ja) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | 細胞測定法 |
DE19883811566 DE3811566A1 (de) | 1987-04-11 | 1988-04-06 | Verfahren zur zellmessung |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62089153A JPH07104349B2 (ja) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | 細胞測定法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63255660A true JPS63255660A (ja) | 1988-10-21 |
JPH07104349B2 JPH07104349B2 (ja) | 1995-11-13 |
Family
ID=13962904
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62089153A Expired - Lifetime JPH07104349B2 (ja) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | 細胞測定法 |
Country Status (2)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH07104349B2 (ja) |
DE (1) | DE3811566A1 (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2014104019A1 (ja) * | 2012-12-26 | 2014-07-03 | デンカ生研株式会社 | 尿中ポドサイトの検出方法 |
Families Citing this family (17)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
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FR2638849B1 (fr) * | 1988-11-04 | 1994-03-18 | Chemunex Sa | Procede d'amplification d'un signal fluorescent pour la recherche specifique de la presence eventuelle de particules et application a la detection et a la numeration desdites particules |
GR1000686B (el) * | 1989-11-16 | 1992-10-08 | Ortho Diagnostic Systems Inc | Μεθοδος παραγωγης ενος αντιδραστηριου κολλοειδους μεταλλου που περιεχει κολλοειδη τεμαχιδια μεταλλου με προκαθορισμενο μεγεθος. εθος. |
JPH03225277A (ja) * | 1990-01-31 | 1991-10-04 | Fujirebio Inc | 多項目の免疫化学的測定法 |
JP2690802B2 (ja) * | 1990-04-24 | 1997-12-17 | オリンパス光学工業株式会社 | 免疫学的検査法 |
AU652599B2 (en) * | 1990-11-23 | 1994-09-01 | Coulter International Corporation | Method and apparatus for optically screening microscopic cells |
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FR2695939B1 (fr) * | 1992-09-24 | 1995-03-03 | Prolabo Sa | Cellules transformées, humaines, animales ou végétales encapsulant dans leurs cytoplasmes au moins une particule de latex. |
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US5658745A (en) * | 1995-02-17 | 1997-08-19 | E. I. Du Pont De Nemours And Company | Cell enumeration immunoassay |
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