JPS63211230A - ヘモグロビン含有リポソ−ム - Google Patents
ヘモグロビン含有リポソ−ムInfo
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- JPS63211230A JPS63211230A JP4282687A JP4282687A JPS63211230A JP S63211230 A JPS63211230 A JP S63211230A JP 4282687 A JP4282687 A JP 4282687A JP 4282687 A JP4282687 A JP 4282687A JP S63211230 A JPS63211230 A JP S63211230A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
[産業上の利用分野]
本発明は改良されたヘモグロビン含有リポソーム(以下
ヘモソームという)に関する。さらに詳しくは本発明は
高濃度のヘモグロビン水溶液を含有するヘモソームに関
する。
ヘモソームという)に関する。さらに詳しくは本発明は
高濃度のヘモグロビン水溶液を含有するヘモソームに関
する。
本発明のへモソームは酸素運搬能および安全性が高く、
酸化に対して安定な人工赤血球として利用される。
酸化に対して安定な人工赤血球として利用される。
[従来の技術]
ヘモグロビンを含有するリポソームとして従来いわゆる
薄膜法により製造されたものがミラー(Miller)
らにより報告されている(米国特許第4.133.87
4号)。この方法によればヘモグロビン含有リポソーム
は、リポソーム形成脂質をクロロホルム等の適当な打機
溶媒に溶解し、得られた溶液から溶媒を留去して脂質の
薄膜をつくり、この薄膜に溶血ヘモグロビン水溶液を加
え、激しく撹拌して多重層リポソームを形成し、次にこ
れを超音波処理することによって得られる。この方法に
よれば、ヘモグロビンが酸素に触れる時間が少ないので
ヘモグロビンの変性が比較的少ない利点がある。しかし
ながら保存中にリポソーム中のヘモグロビンのヘム鉄が
徐々に酸化されてメトヘモグロビンに変質して酸素の運
搬機能を失うおそれがある。血球内においてはヘモグロ
ビンはメト型に酸化されても酸素の作用によりもとへ還
元される機構をそなえているが、溶血して血球外へとり
出されるとこのような機構がないため、一旦メト型に変
質すると酸素運搬能を失ってしまう。
薄膜法により製造されたものがミラー(Miller)
らにより報告されている(米国特許第4.133.87
4号)。この方法によればヘモグロビン含有リポソーム
は、リポソーム形成脂質をクロロホルム等の適当な打機
溶媒に溶解し、得られた溶液から溶媒を留去して脂質の
薄膜をつくり、この薄膜に溶血ヘモグロビン水溶液を加
え、激しく撹拌して多重層リポソームを形成し、次にこ
れを超音波処理することによって得られる。この方法に
よれば、ヘモグロビンが酸素に触れる時間が少ないので
ヘモグロビンの変性が比較的少ない利点がある。しかし
ながら保存中にリポソーム中のヘモグロビンのヘム鉄が
徐々に酸化されてメトヘモグロビンに変質して酸素の運
搬機能を失うおそれがある。血球内においてはヘモグロ
ビンはメト型に酸化されても酸素の作用によりもとへ還
元される機構をそなえているが、溶血して血球外へとり
出されるとこのような機構がないため、一旦メト型に変
質すると酸素運搬能を失ってしまう。
さらに、ヘモグロビンは分子ff168,000の高分
子化合物であり、その水溶液は粘度が高い。ところが従
来の方法ではこのような高分子量、高粘度の水溶液を含
有するリポソームを調製することはできず、ヘモグロビ
ン濃度がせいぜい15%程度のリポソームしか得られな
い。天然赤血球中のヘモグロビン濃度が35%前後であ
ることを考慮すると上記濃度では酸素運搬能が低すぎる
。そのため該ヘモソーム自体の濃度を高めざるをえなく
なり、そうすると膜材の構成成分である脂質濃度が高く
なり、安全性の面から問題を生じる。さらにヘモソーム
濃度を高めるとその懸濁液の粘性が高くなり血流循環動
態にとって不利となる。従ってリポソーム内部に高濃度
のヘモグロビンを含Hするヘモソームが望まれる。
子化合物であり、その水溶液は粘度が高い。ところが従
来の方法ではこのような高分子量、高粘度の水溶液を含
有するリポソームを調製することはできず、ヘモグロビ
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い。天然赤血球中のヘモグロビン濃度が35%前後であ
ることを考慮すると上記濃度では酸素運搬能が低すぎる
。そのため該ヘモソーム自体の濃度を高めざるをえなく
なり、そうすると膜材の構成成分である脂質濃度が高く
なり、安全性の面から問題を生じる。さらにヘモソーム
濃度を高めるとその懸濁液の粘性が高くなり血流循環動
態にとって不利となる。従ってリポソーム内部に高濃度
のヘモグロビンを含Hするヘモソームが望まれる。
[発明が解決しようとする問題点]
従って本発明の目的は、ヘモグロビンの酸化を防止した
ヘモソームを提供することにある。
ヘモソームを提供することにある。
さらに本発明の目的はリポソーム内部に取り込まれたヘ
モグロビン水溶液におけるヘモグロビン濃度が赤血球中
のそれと同等またはそれ以上であるヘモソームを提供す
ることにある。
モグロビン水溶液におけるヘモグロビン濃度が赤血球中
のそれと同等またはそれ以上であるヘモソームを提供す
ることにある。
[問題点を解決するための手段]
上記の目的を達成するために本発明は下記の構成を何す
る。
る。
1) リポソーム内にヘモグロビン水溶液を取り込んで
なるヘモグロビン含有リポソームであって、リポソーム
膜が水素添加率50%以上の水素添加リン脂質を主成分
とし、ヘモグロビン水溶液が30〜60%(w/w)の
ヘモグロビン濃度を有することを特徴とするヘモグロビ
ン含有リポソーム。
なるヘモグロビン含有リポソームであって、リポソーム
膜が水素添加率50%以上の水素添加リン脂質を主成分
とし、ヘモグロビン水溶液が30〜60%(w/w)の
ヘモグロビン濃度を有することを特徴とするヘモグロビ
ン含有リポソーム。
2) 水素添加リン脂質が水素添加天然リン脂質である
第1項に記載のヘモグロビン含有リポソーム。
第1項に記載のヘモグロビン含有リポソーム。
3) 水素添加天然リン脂質が水素添加レシチンである
第2項記載のヘモグロビン含有リポソーム。
第2項記載のヘモグロビン含有リポソーム。
4) 水素添加率80%以上の水素添加レシチンである
第3項記載のヘモグロビン含有リポソーム。
第3項記載のヘモグロビン含有リポソーム。
5) 水素添加率80%以上の水素添加ホスファチジル
コリンである第4項記載のヘモグロビン含有リポソーム
。
コリンである第4項記載のヘモグロビン含有リポソーム
。
6) ヘモグロビン濃度が50%(w/w)である第1
項記載のヘモグロビン含有リポソーム。
項記載のヘモグロビン含有リポソーム。
7) リポソーム膜が負電荷を与える物質を含む第1項
乃至第5項のいずれかの項に記載のヘモグロビン含有リ
ポソーム。
乃至第5項のいずれかの項に記載のヘモグロビン含有リ
ポソーム。
8) 負電荷を与える物質がホスファチジン酸またはジ
セチルホスフェートである第6項記載のヘモグロビン含
有リポソーム。
セチルホスフェートである第6項記載のヘモグロビン含
有リポソーム。
本発明のへモソームは膜材が水素添加率50%以上の、
水素添加リン脂質を主成分とする。
水素添加リン脂質を主成分とする。
大豆レシチン、卵黄レシチン等天然のリン脂質は全て不
飽和脂肪酸を分子中に含んでいるが本発明においては上
記天然リン脂質の不飽和脂肪酸の50%以−ヒを水素で
飽和した水素添加リン脂質が好適使用される。
飽和脂肪酸を分子中に含んでいるが本発明においては上
記天然リン脂質の不飽和脂肪酸の50%以−ヒを水素で
飽和した水素添加リン脂質が好適使用される。
合成ジステアロイルレシチンは分子中に不飽和脂肪酸を
含んでいないので酸化に対して安定であるが、ヘモグロ
ビンの捕捉率が水素添加天然レシチンにくらべて劣って
いる。これは水素添加天然リン脂質が異なった種類の脂
肪酸を分子中に含んだリン脂質の混合物であるのに対し
て、合成ジステアロイルレシチンは分子中に脂肪酸とし
てステアリン酸のみを含む単一化合物であることによる
と思われる。
含んでいないので酸化に対して安定であるが、ヘモグロ
ビンの捕捉率が水素添加天然レシチンにくらべて劣って
いる。これは水素添加天然リン脂質が異なった種類の脂
肪酸を分子中に含んだリン脂質の混合物であるのに対し
て、合成ジステアロイルレシチンは分子中に脂肪酸とし
てステアリン酸のみを含む単一化合物であることによる
と思われる。
本発明において用いる水素添加リン脂質の水素添加率は
50%以上、好ましくは80%以上であり、ヨウ素価で
表わして30以下、好ましくは10以下である。水素添
加率が50%より少ないとヘモグロビンの酸化の防止が
不十分である。水素添加リン脂質の例としては、レシチ
ン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジル
イノシトール、ホスファチジルセリン、ホスファチジル
グリセロール、スフィンゴミエリン、カルシオリビン等
を常法に従って水素添加したものがあげられる。特に大
豆レシチン、卵黄レシチン、コーンレシチン、綿実油レ
シチン、ナタネレシチン等を水素添加した水素添加天然
レシチンが好適に使用される。
50%以上、好ましくは80%以上であり、ヨウ素価で
表わして30以下、好ましくは10以下である。水素添
加率が50%より少ないとヘモグロビンの酸化の防止が
不十分である。水素添加リン脂質の例としては、レシチ
ン、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファチジル
イノシトール、ホスファチジルセリン、ホスファチジル
グリセロール、スフィンゴミエリン、カルシオリビン等
を常法に従って水素添加したものがあげられる。特に大
豆レシチン、卵黄レシチン、コーンレシチン、綿実油レ
シチン、ナタネレシチン等を水素添加した水素添加天然
レシチンが好適に使用される。
水素添加率は次の如くして測定される。すなわち、水素
添加リン脂質の脂肪酸部分をJ huo+らの方法[J
、 Am、 Oil Chea+、 Soc、 53.
132 (1982)]によりメチルエステルとした後
GLC分析し、構成脂肪酸からヨウ素価を算出する。同
様にして未水素添加リン脂質のヨウ素価を求め、」1記
水素添加リン脂質のヨウ素価との比率から水素添加率を
算出した。
添加リン脂質の脂肪酸部分をJ huo+らの方法[J
、 Am、 Oil Chea+、 Soc、 53.
132 (1982)]によりメチルエステルとした後
GLC分析し、構成脂肪酸からヨウ素価を算出する。同
様にして未水素添加リン脂質のヨウ素価を求め、」1記
水素添加リン脂質のヨウ素価との比率から水素添加率を
算出した。
本発明のへモソームの膜材には膜の強度を高めるために
、コレステロール、トコフェロール(ビタミンE)等の
ステロールを添加することができ、またリポソームの凝
集を防止するために、負の電荷を与える物質、例えばホ
スファチジン酸、ジセチルホスフェートを添加すること
ができる。さらに、膜材にアスコルビン酸エステルを加
えるとリポソーム膜の酸化が抑制される。
、コレステロール、トコフェロール(ビタミンE)等の
ステロールを添加することができ、またリポソームの凝
集を防止するために、負の電荷を与える物質、例えばホ
スファチジン酸、ジセチルホスフェートを添加すること
ができる。さらに、膜材にアスコルビン酸エステルを加
えるとリポソーム膜の酸化が抑制される。
リポソーム内部に取り込まれるヘモグロビンは赤血球を
常法に従って溶血し分画分子量5万の膜を使用した限外
か過により30%(w/w)以上に濃縮したものが使用
される。ヘモグロビンは水溶液の形態でリポソームに取
り込まれ、その濃度は30〜60%(w/w)であり、
その粘度はおよそ10cP〜3.000cP (4℃
)である。
常法に従って溶血し分画分子量5万の膜を使用した限外
か過により30%(w/w)以上に濃縮したものが使用
される。ヘモグロビンは水溶液の形態でリポソームに取
り込まれ、その濃度は30〜60%(w/w)であり、
その粘度はおよそ10cP〜3.000cP (4℃
)である。
本発明のヘモグロビン水溶液にビタミンCを添加するこ
とはヘモグロビンの酸化を防止するのに有効であり、そ
の添加量はヘモグロビンに対しておよそ2〜10倍モル
である。
とはヘモグロビンの酸化を防止するのに有効であり、そ
の添加量はヘモグロビンに対しておよそ2〜10倍モル
である。
本発明のへモソームは、上記水素添加天然リン脂質を主
成分とするリポソーム膜材を有機溶媒に溶解し、該溶液
から溶媒を留去し、残留物に30〜60w/w (%
)濃度のヘモグロビン水溶液を加え、振盪処理するかま
たは超音波処理することにより均一な懸濁液とし、該懸
濁液を不活性ガスで加圧し、不活性ガスを該懸濁液に十
分浸透させた後読懸濁液を細隙から高圧吐出処理するこ
とによって製造される。
成分とするリポソーム膜材を有機溶媒に溶解し、該溶液
から溶媒を留去し、残留物に30〜60w/w (%
)濃度のヘモグロビン水溶液を加え、振盪処理するかま
たは超音波処理することにより均一な懸濁液とし、該懸
濁液を不活性ガスで加圧し、不活性ガスを該懸濁液に十
分浸透させた後読懸濁液を細隙から高圧吐出処理するこ
とによって製造される。
上記製法において、均一な懸濁液を調製するまでの工程
は、水素添加天然リン脂質を主成分とする膜材を使用す
る以外は、前述した薄膜法として知られるリポソームの
製造方法と同じであり、そ。
は、水素添加天然リン脂質を主成分とする膜材を使用す
る以外は、前述した薄膜法として知られるリポソームの
製造方法と同じであり、そ。
れ自体公知の方法に従って実施される。有機溶媒として
は通常クロロホルム、エタノール等が用いられる。
は通常クロロホルム、エタノール等が用いられる。
かくして得られた懸濁液は細隙ノズル付き加圧容器内で
不活性ガス、例えば窒素ガスまたはアルゴンガス、で加
圧される。加圧はおよそ80〜130kg / c−が
適当である。不活性ガスが懸濁液に十分浸透したのち、
懸濁液をノズルから吐出処理する。
不活性ガス、例えば窒素ガスまたはアルゴンガス、で加
圧される。加圧はおよそ80〜130kg / c−が
適当である。不活性ガスが懸濁液に十分浸透したのち、
懸濁液をノズルから吐出処理する。
懸濁液を高圧吐出処理する工程は、高圧吐出型乳化機、
好ましくはガス加圧式高圧吐出型乳化機(米国パール社
製、商品名二バール細胞破砕機)を用いて懸濁液を上記
の圧力を保持しつつ細隙から1〜数回吐出させることに
よって実施される。
好ましくはガス加圧式高圧吐出型乳化機(米国パール社
製、商品名二バール細胞破砕機)を用いて懸濁液を上記
の圧力を保持しつつ細隙から1〜数回吐出させることに
よって実施される。
この時不活性ガスの浸透した懸濁液は、ガスの急激な圧
力膨張によって激しく乳化され、リポソームが形成され
る。高圧で吐出され′るほどリポソームの粒径は小さく
なる。かくして得られるリポソーム液は常法に従って洗
浄され、超遠心処理等によって採取される。
力膨張によって激しく乳化され、リポソームが形成され
る。高圧で吐出され′るほどリポソームの粒径は小さく
なる。かくして得られるリポソーム液は常法に従って洗
浄され、超遠心処理等によって採取される。
次に実施例および試験例を示して本発明をさらに具体的
に説明する。
に説明する。
実施例
■)赤血球膜除去ヘモグロビン(SFH)の調製抗凝固
剤入りの採血バックを用いて、牛の静脈より牛全血15
Iを採取する。採取全血は無菌的に密閉容器内、4℃に
て運搬保管する。以下工程はすべて無菌的に、4℃低温
下にて行なう。
剤入りの採血バックを用いて、牛の静脈より牛全血15
Iを採取する。採取全血は無菌的に密閉容器内、4℃に
て運搬保管する。以下工程はすべて無菌的に、4℃低温
下にて行なう。
連続遠心機により生理食塩水を用いて遠心洗浄を行ない
血小板、白血球、血漿を取り除いた粗洗浄赤血球5gを
得る。
血小板、白血球、血漿を取り除いた粗洗浄赤血球5gを
得る。
孔径0.45μの血漿分離器により、生理食塩水を用い
てさらに洗浄を行なう。洗浄赤血球5gに対してパイロ
ジエンフリーの蒸留水10.Qを加え溶血させる。孔径
0.45μの血漿分離器および孔径0.1μの血漿成分
分離器を用いて、赤血球膜の除去および濾過無菌化を行
なう。ヘモグロビン濃度8%(w/w)の赤血球膜除去
ヘモグロビン約12gが得られる。
てさらに洗浄を行なう。洗浄赤血球5gに対してパイロ
ジエンフリーの蒸留水10.Qを加え溶血させる。孔径
0.45μの血漿分離器および孔径0.1μの血漿成分
分離器を用いて、赤血球膜の除去および濾過無菌化を行
なう。ヘモグロビン濃度8%(w/w)の赤血球膜除去
ヘモグロビン約12gが得られる。
透析用ダイアライザーTAFIOW(テルモ社製のセル
ロース系中空系ダイアライザー)を用いて限外濾過によ
り濃縮しヘモグロビン濃度50%(w/w)の赤血球膜
除去ヘモグロビン約1.8gが得られる。
ロース系中空系ダイアライザー)を用いて限外濾過によ
り濃縮しヘモグロビン濃度50%(w/w)の赤血球膜
除去ヘモグロビン約1.8gが得られる。
2)リポソーム形成脂質の調製
水素添加率8096の精製ホスファチジルコリン27.
76 f、コレステロール6.96g、水素添加率80
%の精製ホスファチジン酸3.75gをクロロホルムに
溶解する。該脂質溶液をナスフラスコに入れ、エバポレ
ーションを行ないクロロホルムを除去し、ナスフラスコ
の底に脂質膜を形成させる。さらに真空乾燥を16時間
行ないクロロホルムを完全に除去する。
76 f、コレステロール6.96g、水素添加率80
%の精製ホスファチジン酸3.75gをクロロホルムに
溶解する。該脂質溶液をナスフラスコに入れ、エバポレ
ーションを行ないクロロホルムを除去し、ナスフラスコ
の底に脂質膜を形成させる。さらに真空乾燥を16時間
行ないクロロホルムを完全に除去する。
3)、SFH・脂質の懸濁液作成
前記SFH調製工程で得られた50%SFHのうち、3
00 mlを該脂質膜に添加して、振盪または超音波に
より均一な懸濁液とし、これを原料溶液とする。
00 mlを該脂質膜に添加して、振盪または超音波に
より均一な懸濁液とし、これを原料溶液とする。
4)不活性ガスを用いた加圧吐出によるヘモグロビン溶
液を細隙ノズル付きの加圧容器、パール細胞破砕器(米
国PARR社製)に入れ、チッ素ガスを導入し130
kg/cdに加圧する。30分間放置し、チッ素ガスを
十分に原料溶液に浸透させる。
液を細隙ノズル付きの加圧容器、パール細胞破砕器(米
国PARR社製)に入れ、チッ素ガスを導入し130
kg/cdに加圧する。30分間放置し、チッ素ガスを
十分に原料溶液に浸透させる。
次にノズルのバルブを徐々に開放し、130 kg/c
dの圧力を維持しながら原料溶液を吐出させる。
dの圧力を維持しながら原料溶液を吐出させる。
5)ヘモグロビン含有リポソームの精製加圧吐出後の液
を生理食塩水で10倍に希釈し遠心(17,00Orp
m、 30m1n)により、ヘモグロビン自白。
を生理食塩水で10倍に希釈し遠心(17,00Orp
m、 30m1n)により、ヘモグロビン自白。
リポソームの沈殿として分離する。上澄のカプセル化に
関与しなかったヘモグロビン溶液をデカンテーションで
除き、その後生理食塩水でヘモグロビン含有リポソーム
沈殿を懸濁させ、再度遠心を行なう。以下同様の操作を
上澄にヘモグロビンが検出されなくなるまで繰り返す。
関与しなかったヘモグロビン溶液をデカンテーションで
除き、その後生理食塩水でヘモグロビン含有リポソーム
沈殿を懸濁させ、再度遠心を行なう。以下同様の操作を
上澄にヘモグロビンが検出されなくなるまで繰り返す。
6)粗大粒子の除去
精製後のヘモグロビン含有リポソームの懸濁液を0.4
μのニューフリポアメンブレン(材質:ポリカーボネイ
ト)にてン濾過して粗大粒子を取り除く。
μのニューフリポアメンブレン(材質:ポリカーボネイ
ト)にてン濾過して粗大粒子を取り除く。
7)ヘモグロビン濃度調製
最終的に生理食塩水に懸濁し、ヘモグロビン濃度109
6に調製したものが180 ml得られた。
6に調製したものが180 ml得られた。
試験例 1
ヘモグロビンの酸化
実施例で作成された水素添加リン脂質へモソーム(NI
J、1)、未水素添加リン脂質へモソーム(ビタミンE
添加#)[2)および未水素添加リン脂質へモソーム(
ビタミンE添加無’) (No、3)をそれぞれ生理
食塩水に懸濁し、37℃で保持したときのメトヘモグロ
ビン比率(%)を経時的に測定した。結果を第1図に示
す。第1図から明らかに本発明の水素添加リン脂質へモ
ソーム(No、1)には酸化(メト化)抑制の効果がみ
られる。
J、1)、未水素添加リン脂質へモソーム(ビタミンE
添加#)[2)および未水素添加リン脂質へモソーム(
ビタミンE添加無’) (No、3)をそれぞれ生理
食塩水に懸濁し、37℃で保持したときのメトヘモグロ
ビン比率(%)を経時的に測定した。結果を第1図に示
す。第1図から明らかに本発明の水素添加リン脂質へモ
ソーム(No、1)には酸化(メト化)抑制の効果がみ
られる。
試験例 2
濃厚ヘモグロビン水溶液をリポソーム化することによる
ヘモソーム懸濁液中のヘモグロビン濃度に対する脂質濃
度低減化の効果を調べた。
ヘモソーム懸濁液中のヘモグロビン濃度に対する脂質濃
度低減化の効果を調べた。
実施例で作成した50%SFHへモソーム(Nal)、
対照としての30%SFHへモソーム(No、4)およ
び15%SFHヘモソーム(、No、 5 )における
ヘモソーム懸濁液中のヘモグロビン濃度: H(mg/
ml)と脂質濃度: L (mg/ml)の比H/Lを
表1に示す。
対照としての30%SFHへモソーム(No、4)およ
び15%SFHヘモソーム(、No、 5 )における
ヘモソーム懸濁液中のヘモグロビン濃度: H(mg/
ml)と脂質濃度: L (mg/ml)の比H/Lを
表1に示す。
表 1
試 料 )(/LN[Ll
50%SFHのへモソーム 1629賜、430%S
FHヘモソーム 3.48陽、515%SFHへモソ
ーム 6.76表1からSFHの濃度が上昇するにつ
れHb濃度に対する脂質濃度低減化の効果が明らかであ
る。
50%SFHのへモソーム 1629賜、430%S
FHヘモソーム 3.48陽、515%SFHへモソ
ーム 6.76表1からSFHの濃度が上昇するにつ
れHb濃度に対する脂質濃度低減化の効果が明らかであ
る。
試験例 3
濃厚ヘモグロビン水溶液をリポソーム化することによる
ヘモソーム懸濁液の粘度低減効果を調べた。
ヘモソーム懸濁液の粘度低減効果を調べた。
ヘモソーム懸濁液(生理食塩水)中のヘモグロビン濃度
を一定(10%)にしたときの50%SFHへモソーム
懸濁液(No、1)、30%SFHへモソーム懸濁液(
No、4)および15%SFHへモソーム懸濁液(隘5
)のそれぞれの粘度を測定した。結果を第2図に示す。
を一定(10%)にしたときの50%SFHへモソーム
懸濁液(No、1)、30%SFHへモソーム懸濁液(
No、4)および15%SFHへモソーム懸濁液(隘5
)のそれぞれの粘度を測定した。結果を第2図に示す。
第2図から、ヘモソーム懸濁液中のヘモグロビン濃度を
一定にしてその粘度を比較すると、濃厚なSFHを含有
する程へモソーム懸濁液の粘度は低減化することが明ら
かである。
一定にしてその粘度を比較すると、濃厚なSFHを含有
する程へモソーム懸濁液の粘度は低減化することが明ら
かである。
[発明の効果]
本発明のへモソームにおいては膜材が50%以上水素添
加された水素添加天然リン脂質が使用され、酸化に対し
て抵抗性を有するので、ヘモグロビンのメト化が抑制さ
れる。
加された水素添加天然リン脂質が使用され、酸化に対し
て抵抗性を有するので、ヘモグロビンのメト化が抑制さ
れる。
ざらに本発明のへモソームにおいてはヘモグロビンが濃
厚な水溶液としてリポソーム内部に取り込まれているの
で、膜材であるリン脂質の使用量をヘモグロビン量に対
して相対的に低減化することができ、それだけ安全性を
高めることができる。
厚な水溶液としてリポソーム内部に取り込まれているの
で、膜材であるリン脂質の使用量をヘモグロビン量に対
して相対的に低減化することができ、それだけ安全性を
高めることができる。
さらに、ヘモソームの懸濁液の濃度を低めることができ
るので、その粘度が低減化され、血流循環動態にとって
有利である。
るので、その粘度が低減化され、血流循環動態にとって
有利である。
第1図はへモソーム中のメトヘモグロビン比率(%)の
経時変化を示すグラフである。 第2図はへモソーム懸濁液の粘度を示すグラフである。
経時変化を示すグラフである。 第2図はへモソーム懸濁液の粘度を示すグラフである。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1)リポソーム内にヘモグロビン水溶液を取り込んでな
るヘモグロビン含有リポソームであって、リポソーム膜
が水素添加率50%以上の水素添加リン脂質を主成分と
し、ヘモグロビン水溶液が30〜60%(w/w)のヘ
モグロビン濃度を有することを特徴とするヘモグロビン
含有リポソーム。 2)水素添加リン脂質が水素添加天然リン脂質である特
許請求の範囲第1項に記載のヘモグロビン含有リポソー
ム。 3)水素添加天然リン脂質が水素添加レシチンである特
許請求の範囲第2項記載のヘモグロビン含有リポソーム
。 4)水素添加率80%以上の水素添加レシチンである特
許請求の範囲第3項記載のヘモグロビン含有リポソーム
。 5)水素添加率80%以上の水素添加ホスファチジルコ
リンである特許請求の範囲第4項記載のヘモグロビン含
有リポソーム。 6)ヘモグロビン濃度が50%(w/w)である特許請
求の範囲第1項記載のヘモグロビン含有リポソーム。 7)リポソーム膜が負電荷を与える物質を含む特許請求
の範囲第1項乃至第5項のいずれかの項に記載のヘモグ
ロビン含有リポソーム。 8)負電荷を与える物質がホスファチジン酸またはジセ
チルホスフェートである特許請求の範囲第6項記載のヘ
モグロビン含有リポソーム。
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4282687A JPS63211230A (ja) | 1987-02-27 | 1987-02-27 | ヘモグロビン含有リポソ−ム |
DE8888902213T DE3872875T2 (de) | 1987-02-27 | 1988-02-26 | Verfahren zur herstellung von liposomen. |
US07/408,485 US5049391A (en) | 1987-02-27 | 1988-02-26 | Liposome encapsulated hemoglobin |
AU13648/88A AU608304B2 (en) | 1987-02-27 | 1988-02-26 | Process for preparing liposome |
PCT/JP1988/000208 WO1988006437A1 (en) | 1987-02-27 | 1988-02-26 | Process for preparing liposome |
EP88902213A EP0357773B1 (en) | 1987-02-27 | 1988-02-26 | Process for preparing liposomes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP4282687A JPS63211230A (ja) | 1987-02-27 | 1987-02-27 | ヘモグロビン含有リポソ−ム |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63211230A true JPS63211230A (ja) | 1988-09-02 |
Family
ID=12646764
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP4282687A Pending JPS63211230A (ja) | 1987-02-27 | 1987-02-27 | ヘモグロビン含有リポソ−ム |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63211230A (ja) |
Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS52151718A (en) * | 1976-06-10 | 1977-12-16 | Univ Illinois | Production of capsulated hemoglobin |
JPS59222410A (ja) * | 1983-06-01 | 1984-12-14 | Terumo Corp | 薬物保持リポソ−ム製剤 |
JPS60260511A (ja) * | 1984-06-08 | 1985-12-23 | Asahi Chem Ind Co Ltd | 安定なエマルジヨン製剤 |
JPS6137735A (ja) * | 1984-07-31 | 1986-02-22 | Terumo Corp | ヘモグロビン含有リポソ−ムおよびその製造方法 |
-
1987
- 1987-02-27 JP JP4282687A patent/JPS63211230A/ja active Pending
Patent Citations (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
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