JPS63207379A - 植物カルス細胞分化剤の製造法 - Google Patents
植物カルス細胞分化剤の製造法Info
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- JPS63207379A JPS63207379A JP62037529A JP3752987A JPS63207379A JP S63207379 A JPS63207379 A JP S63207379A JP 62037529 A JP62037529 A JP 62037529A JP 3752987 A JP3752987 A JP 3752987A JP S63207379 A JPS63207379 A JP S63207379A
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- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、植物カルス細胞分化剤の製造法に関する。更
に詳しくは、微生物を培養して植物カルス細胞分化剤を
製造する方法に関する。
に詳しくは、微生物を培養して植物カルス細胞分化剤を
製造する方法に関する。
分化した植物組織の一部(外植片)を適当な培地に移し
て培養すると脱分化が起り、細胞分裂をくり返して無定
形の組織塊である植物カルスを生ずる。外植片からカル
メを誘導し、増殖するには、一般に基本培地に植物ホル
モンであるサイトカイニン類(カイネチンなど)または
オーキシン類(2,4−ジクロル酢酸、インドール酢酸
、インドール酪酸など)が添加されて用いられる。
て培養すると脱分化が起り、細胞分裂をくり返して無定
形の組織塊である植物カルスを生ずる。外植片からカル
メを誘導し、増殖するには、一般に基本培地に植物ホル
モンであるサイトカイニン類(カイネチンなど)または
オーキシン類(2,4−ジクロル酢酸、インドール酢酸
、インドール酪酸など)が添加されて用いられる。
このように、現在植物カルス細胞の再分化には種々の植
物ホルモンが使用されているが、その際厳密な濃度のコ
ントロールが要求され、そのため多くの実験例を必要と
し、また培地の選択が難かしいなどの難点がみられる。
物ホルモンが使用されているが、その際厳密な濃度のコ
ントロールが要求され、そのため多くの実験例を必要と
し、また培地の選択が難かしいなどの難点がみられる。
そこで1本発明者はかかる芝点のみられない植物カルス
細胞分化剤を求めて種々検討を重ねた結果、先に本発明
者によって見出されたエンターバクター属に属する微生
物(特願昭61−186.228号参照)の培養液が有
効な植物カルス細胞分裂促進効果を有することを見出し
た。
細胞分化剤を求めて種々検討を重ねた結果、先に本発明
者によって見出されたエンターバクター属に属する微生
物(特願昭61−186.228号参照)の培養液が有
効な植物カルス細胞分裂促進効果を有することを見出し
た。
従って、本発明はかかる植物カルス細胞分化剤の製造法
に係り、植物カルス細胞分化剤の製造は。
に係り、植物カルス細胞分化剤の製造は。
エンターバクター属に属する微生物
Enterobactar sp No、111−5(
FERP−8884)を培養し、好ましくはトリプトフ
ァンの存在下において培養し、培養液中の菌を死滅させ
た後、植物カルス細胞分化剤を採取することにより行わ
れる。
FERP−8884)を培養し、好ましくはトリプトフ
ァンの存在下において培養し、培養液中の菌を死滅させ
た後、植物カルス細胞分化剤を採取することにより行わ
れる。
本発明において使用される微生物Enterobact
ersp No、111−5(FERP−8884)は
1本発明者によって兵庫県域崎郡竹野町の土壌から、昭
和61年1月下記の方法により分離されたものである。
ersp No、111−5(FERP−8884)は
1本発明者によって兵庫県域崎郡竹野町の土壌から、昭
和61年1月下記の方法により分離されたものである。
即ち、L−ブイヨン(トリプトン1%、酵母エキス0.
5%、NaC10,5%、殺菌前のpH7,2)5mj
lを試験管に入れ、これに上記土壌1gを添加して、3
7℃で24時時間上う培養した。
5%、NaC10,5%、殺菌前のpH7,2)5mj
lを試験管に入れ、これに上記土壌1gを添加して、3
7℃で24時時間上う培養した。
Enterobacter SP No、11−5は、
下記の菌学的性質を有する。
下記の菌学的性質を有する。
A、形態
(1)細胞の形、大きさニゲラム陰性杆菌、1.5〜2
μmX1μm (2)細胞の多形性:なし く3)運動性:なし く4)胞子:なし く5)ダラム染色性:陰性 (6)抗菌性:不明 B、培地における成育状態 (1)肉汁寒天平板培養:茶色、光沢あり、拡散性なし く2)肉汁寒天斜面培養:茶色、光沢あり、拡散性なし く3)肉汁液体培養:茶色、光沢あり、拡散性なしC0
生理学的性質 (1)硝酸塩の還元:陽性 (2)脱窒反応:不明 (3) MRテスト:陰性 (4) VPテスト:陽性 (5)インドールの生成:陰性 (6)硫化水素の生成:陰性 (7)でん粉の加水分解:陰性 (8)クエン酸の利用:陽性 (9)無機窒素源の利用:陽性 (10)色素の生成:陰性 (11)ウレアーゼ:陽性 (12)オキシダーゼ:陰性 (13)カタラーゼ:不明 (14)生育の範囲: pH4〜10、温度15〜45
℃(15)酸素に対する態度:通性嫌気性(16)O−
Fテスト:発酵 (17)糖類からの酸の生成 培地:ペブトン2g、 NaCQ 5g、 K、HPo
、 0.3g。
μmX1μm (2)細胞の多形性:なし く3)運動性:なし く4)胞子:なし く5)ダラム染色性:陰性 (6)抗菌性:不明 B、培地における成育状態 (1)肉汁寒天平板培養:茶色、光沢あり、拡散性なし く2)肉汁寒天斜面培養:茶色、光沢あり、拡散性なし く3)肉汁液体培養:茶色、光沢あり、拡散性なしC0
生理学的性質 (1)硝酸塩の還元:陽性 (2)脱窒反応:不明 (3) MRテスト:陰性 (4) VPテスト:陽性 (5)インドールの生成:陰性 (6)硫化水素の生成:陰性 (7)でん粉の加水分解:陰性 (8)クエン酸の利用:陽性 (9)無機窒素源の利用:陽性 (10)色素の生成:陰性 (11)ウレアーゼ:陽性 (12)オキシダーゼ:陰性 (13)カタラーゼ:不明 (14)生育の範囲: pH4〜10、温度15〜45
℃(15)酸素に対する態度:通性嫌気性(16)O−
Fテスト:発酵 (17)糖類からの酸の生成 培地:ペブトン2g、 NaCQ 5g、 K、HPo
、 0.3g。
炭水化物10g、ブロムチモールブルー0.08g、寒
天15g、蒸留水10001IQ (pH7,1)添加
濃度:1% L−アラビノーズ − D−キシロース (不明) D−グルコース + D−マンノース (不明) D−フラクトース (不明) D−ガラクトース (不明) 麦芽糖 十 しよ糖 十 乳糖 十 トレハロース (不明) D−ソルビット + D−マンニット − イノシット + グリセリン (不明) でん粉 − 以上の菌学的性質に基いて、本菌をBergey’ s
Mannual of Determinative
Bacteriology第8版およびその他の文献に
より検索した結果、エンターバクター属に属する菌であ
ることが確認された。
天15g、蒸留水10001IQ (pH7,1)添加
濃度:1% L−アラビノーズ − D−キシロース (不明) D−グルコース + D−マンノース (不明) D−フラクトース (不明) D−ガラクトース (不明) 麦芽糖 十 しよ糖 十 乳糖 十 トレハロース (不明) D−ソルビット + D−マンニット − イノシット + グリセリン (不明) でん粉 − 以上の菌学的性質に基いて、本菌をBergey’ s
Mannual of Determinative
Bacteriology第8版およびその他の文献に
より検索した結果、エンターバクター属に属する菌であ
ることが確認された。
本菌Enterobacter sp No、11−5
の培養は、任意の培地を用い、振とう条件下で37℃で
約72〜90時間程度行われる。その際、培地1α当り
約1〜4B程度のトリプトファンを添加しておくと、そ
れから得られる植物カルス細胞分化剤の再分化作用は一
層高められる。培養後は、培養液に塩酸によって代表さ
れる無機酸などを加えて菌を死滅させ、その上澄液を細
胞分化剤として採取する。
の培養は、任意の培地を用い、振とう条件下で37℃で
約72〜90時間程度行われる。その際、培地1α当り
約1〜4B程度のトリプトファンを添加しておくと、そ
れから得られる植物カルス細胞分化剤の再分化作用は一
層高められる。培養後は、培養液に塩酸によって代表さ
れる無機酸などを加えて菌を死滅させ、その上澄液を細
胞分化剤として採取する。
かかる植物カルス細胞分化剤を用いての植物カルス細胞
の再分化は、Nurashiga & Skoog培地
(1962)などを基本培地に用い、これに上記細胞分
化剤を基本培地IQ当り約4〜1’6m (l添加した
ものに。
の再分化は、Nurashiga & Skoog培地
(1962)などを基本培地に用い、これに上記細胞分
化剤を基本培地IQ当り約4〜1’6m (l添加した
ものに。
イネカルス細胞、レッドキャベツカルス細胞などの植物
カルス細胞をビンセットなどで移し、光の照射下または
遮光下に、25〜30℃で1〜2週間培養することによ
り行われる。
カルス細胞をビンセットなどで移し、光の照射下または
遮光下に、25〜30℃で1〜2週間培養することによ
り行われる。
本発明により、植物カルス細胞分化剤として有効な、植
物ホルモン様の活性を有する物質が、微生物の培養物か
ら得られる。この細胞分化剤は、その濃度のコントロー
ルおよび培地の選択の点において従来の植物ホルモンの
場合程厳格さを要せず、またその活性も大である。
物ホルモン様の活性を有する物質が、微生物の培養物か
ら得られる。この細胞分化剤は、その濃度のコントロー
ルおよび培地の選択の点において従来の植物ホルモンの
場合程厳格さを要せず、またその活性も大である。
次に、実施例について本発明を説明する。
実施例1
Enterobactar sp No、111−5(
FERP−8884)を、次の組成を有する培地(Mi
neral Medium)を用いて、振とう回数10
0rp■で振とうさせながら37℃で90時間培養した
。
FERP−8884)を、次の組成を有する培地(Mi
neral Medium)を用いて、振とう回数10
0rp■で振とうさせながら37℃で90時間培養した
。
(NHJ*SO* 1.0 (g)
KH,PG、 10.0KOH1,
94 MgSO4・7H,OO,1 クエン酸ナトリウム 0.5 蒸留水(pH7,0) 1000 (■B
)この培養液に、 IN塩−500μ巴を加えて菌を死
滅させ、遠心機(700rpi+、15分間、室温)で
集菌し。
KH,PG、 10.0KOH1,
94 MgSO4・7H,OO,1 クエン酸ナトリウム 0.5 蒸留水(pH7,0) 1000 (■B
)この培養液に、 IN塩−500μ巴を加えて菌を死
滅させ、遠心機(700rpi+、15分間、室温)で
集菌し。
上澄液を採取して細胞分化剤■とした。
実施例2
実施例1において、最終濃度が3mg/議進となる量の
トリプトファンが培地成分として更に添加されて用いら
れ、細胞分化剤■を得た。
トリプトファンが培地成分として更に添加されて用いら
れ、細胞分化剤■を得た。
比較例 、
細胞分化剤■として、それぞれ濃度IIIg/mfiの
2,4−ジクロルフェノキシ酢酸およびカイネチン(6
−フルフリルアミノプリン)の等景況合物が用いられた
。
2,4−ジクロルフェノキシ酢酸およびカイネチン(6
−フルフリルアミノプリン)の等景況合物が用いられた
。
以上の各細胞分化剤を、Murashiga & Sk
oog培地(培地El当り更にイノシトール100■g
、 L/よ糖30g、チアミン・塩酸塩0.4mgおよ
び緩衝液159■gを添加したちの:GIBCO社製品
)lffi当り、それぞれ次の表1に示されるような量
で添加し、イネカルス細胞の再分化テストを行なった。
oog培地(培地El当り更にイノシトール100■g
、 L/よ糖30g、チアミン・塩酸塩0.4mgおよ
び緩衝液159■gを添加したちの:GIBCO社製品
)lffi当り、それぞれ次の表1に示されるような量
で添加し、イネカルス細胞の再分化テストを行なった。
再分化テストは、約100+sgのイネカルス細胞を用
い、25℃、10日間、200ルツクスのライトを連続
的に照射しながら行ない、4サンプル中何個のサンプル
が分化したかをSt察することによって行われ1次のよ
うな結果を得た。
い、25℃、10日間、200ルツクスのライトを連続
的に照射しながら行ない、4サンプル中何個のサンプル
が分化したかをSt察することによって行われ1次のよ
うな結果を得た。
(以下余白)
表1
2# 8 3 3
3#16 1 2
5# 8 3 3
6#16 3 4
7m 2 0 0
8 なし 0 2 2また。イネカ
ルス細胞の代わりにレッドキャベツカルス細胞を用いる
と、次のような結果が得られた。
ルス細胞の代わりにレッドキャベツカルス細胞を用いる
と、次のような結果が得られた。
(以下余白)
表2
2# 8 1 4
3#16 2 4
4n 4 2 4
6#16 0 4
7II[200
8なし 0 0 4
なお、Murashige A Skoog培地のみを
用い、細胞分化剤を用いない場合(表1〜2のNo。8
)には、分化したサンプルは、イネ、レッドキャベツ共
ある程度は生育がみられるものの、一定のところで生育
を停止してしまった。
用い、細胞分化剤を用いない場合(表1〜2のNo。8
)には、分化したサンプルは、イネ、レッドキャベツ共
ある程度は生育がみられるものの、一定のところで生育
を停止してしまった。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、エンターバクター属に属する微生物 Enterobacter sp No.11−5(F
ERM P−8884)を培養し、培養液中の菌を死滅
させた後、植物カルス細胞分化剤を採取することを特徴
とする植物カルス細胞分化剤の製造法。 2、エンターバクター属に属する微生物 Enterobacter sp No.11−5(F
ERM P−8884)をトリプトファンの存在下にお
いて培養し、培養液中の菌を死滅させた後、植物カルス
細胞分化剤を採取することを特徴とする植物カルス細胞
分化剤の製造法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62037529A JPH0797985B2 (ja) | 1987-02-20 | 1987-02-20 | 植物カルス細胞分化剤の製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP62037529A JPH0797985B2 (ja) | 1987-02-20 | 1987-02-20 | 植物カルス細胞分化剤の製造法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63207379A true JPS63207379A (ja) | 1988-08-26 |
JPH0797985B2 JPH0797985B2 (ja) | 1995-10-25 |
Family
ID=12500067
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62037529A Expired - Lifetime JPH0797985B2 (ja) | 1987-02-20 | 1987-02-20 | 植物カルス細胞分化剤の製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPH0797985B2 (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH0549470A (ja) * | 1991-08-28 | 1993-03-02 | Nok Corp | 植物カルス細胞分化剤の製造法 |
US5336766A (en) * | 1990-02-28 | 1994-08-09 | Meiji Seika Kaisha, Ltd. | Indoleacetic acid synthetase-encoding gene |
-
1987
- 1987-02-20 JP JP62037529A patent/JPH0797985B2/ja not_active Expired - Lifetime
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5336766A (en) * | 1990-02-28 | 1994-08-09 | Meiji Seika Kaisha, Ltd. | Indoleacetic acid synthetase-encoding gene |
JPH0549470A (ja) * | 1991-08-28 | 1993-03-02 | Nok Corp | 植物カルス細胞分化剤の製造法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0797985B2 (ja) | 1995-10-25 |
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