JPS63164879A - 気泡塔型潅流培養方法及びその装置 - Google Patents
気泡塔型潅流培養方法及びその装置Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
産業上の利用分野
本発明は動物、植物の細胞、組織、器官など、及び微生
物の培養、特に使用する培地より比重の重い細胞を培養
するに適した気泡塔型灌流培養方法及びそのための装置
に関する。
物の培養、特に使用する培地より比重の重い細胞を培養
するに適した気泡塔型灌流培養方法及びそのための装置
に関する。
従来の技術
従来、動物、植物の細胞や器官の培養、微生物の培養に
おいて用いられる装置のほとんどは、回分式のものであ
る。かかる回分式の装置を用いる場合には培養槽に投入
した培地中の栄養源が細胞増殖等に利用され枯渇すると
培養は終了する。従って、多くの細胞を入手するために
は、大型の装置が必要となる。
おいて用いられる装置のほとんどは、回分式のものであ
る。かかる回分式の装置を用いる場合には培養槽に投入
した培地中の栄養源が細胞増殖等に利用され枯渇すると
培養は終了する。従って、多くの細胞を入手するために
は、大型の装置が必要となる。
回分培養の場合、通気攪拌培養が一般的でインペラーと
スパージャ−により攪拌と通気を行う方法と、気泡によ
って回転運動を起し攪拌する気泡方式が知られており、
それぞれに適した培養装置が知られている。このうち気
泡塔培養装置とは培養装置の下部より空気等を通気する
ことにより通気ならびに攪拌を行う方式の培養装置であ
る〔遺伝38 (8)、 72−79 (1984)
)。
スパージャ−により攪拌と通気を行う方法と、気泡によ
って回転運動を起し攪拌する気泡方式が知られており、
それぞれに適した培養装置が知られている。このうち気
泡塔培養装置とは培養装置の下部より空気等を通気する
ことにより通気ならびに攪拌を行う方式の培養装置であ
る〔遺伝38 (8)、 72−79 (1984)
)。
しかしながら回分式培養法では培養系内でのpHの低下
、代謝産物による生育阻害、栄養源の枯渇などの要因か
らある程度以上の生育細胞密度とすることは困難である
。最近、回分培養より高い細胞密度の得られる潅流培養
装置が開発されている。潅流培養装置とは培地の供給と
培養上清の抜出しとを連続的に行う培養装置をいう。こ
の型式の培養装置には回転するフィルターによって細胞
と上清とを分離し、上清を排出し、新鮮培地を加える回
転濾過塔型、インペラー型回分培養槽に細胞沈殿管を設
けることによって細胞と上滑とを分離する細胞沈殿管型
、及び中空繊維(ホロファイバー)中に通気するか培地
を通すホロファイバー型とがある〔遺伝38 (8)
、 72−79 (1984))。
、代謝産物による生育阻害、栄養源の枯渇などの要因か
らある程度以上の生育細胞密度とすることは困難である
。最近、回分培養より高い細胞密度の得られる潅流培養
装置が開発されている。潅流培養装置とは培地の供給と
培養上清の抜出しとを連続的に行う培養装置をいう。こ
の型式の培養装置には回転するフィルターによって細胞
と上清とを分離し、上清を排出し、新鮮培地を加える回
転濾過塔型、インペラー型回分培養槽に細胞沈殿管を設
けることによって細胞と上滑とを分離する細胞沈殿管型
、及び中空繊維(ホロファイバー)中に通気するか培地
を通すホロファイバー型とがある〔遺伝38 (8)
、 72−79 (1984))。
又、特公昭61−36915には少なくとも一部の培養
液中の細胞を沈降させて得られる培養上清を培養装置外
に排出しながら新鮮培地を加えて培養する浮遊細胞の高
濃度培養法が記載されており、そのための装置の一例と
して上記細胞沈殿管型の培養装置が記載されている。
液中の細胞を沈降させて得られる培養上清を培養装置外
に排出しながら新鮮培地を加えて培養する浮遊細胞の高
濃度培養法が記載されており、そのための装置の一例と
して上記細胞沈殿管型の培養装置が記載されている。
発明が解決しようとする問題点
上記潅流培養装置中、回転濾過塔型及び細胞沈殿管型は
インペラーにより攪拌を行う型式のものである。ところ
が動物細胞のような剪断力に感受性の細胞に対しては、
インペラーによる攪拌は好ましくなく気泡塔方式の攪拌
が優れていると考えられている。又、ホロファイバー型
は大型化が困難と考えられる。一方、気泡塔方式では大
型化は容易にできる。
インペラーにより攪拌を行う型式のものである。ところ
が動物細胞のような剪断力に感受性の細胞に対しては、
インペラーによる攪拌は好ましくなく気泡塔方式の攪拌
が優れていると考えられている。又、ホロファイバー型
は大型化が困難と考えられる。一方、気泡塔方式では大
型化は容易にできる。
本発明の気泡塔型灌流培養方法及び装置では従来の潅流
培養装置におけるかかる問題点を回避できる。
培養装置におけるかかる問題点を回避できる。
問題点を解決するための手段
本発明は気泡塔による細胞の浮遊培養において少なくと
も一部の培養液中の細胞を沈降させて得られる培養上清
を培養装置外に排出しながら新鮮培地を加えて培養する
ことを特徴とする浮遊細胞の灌流培養方法及び気泡塔型
培養装置において、気泡により培養液を攪拌循環させる
培養空間(以下、該空間を培養槽という)と隔壁により
隔てられ、隔壁上部は培養槽とは連通せず、隔壁下部は
培養槽と連通した空間(以下、該空間を上清分離槽とい
う)を設け、かつ培養槽への培地の供給及び上清分離槽
からの培養上清の抜出しを可能にした気泡塔型灌流培養
装置に関する。
も一部の培養液中の細胞を沈降させて得られる培養上清
を培養装置外に排出しながら新鮮培地を加えて培養する
ことを特徴とする浮遊細胞の灌流培養方法及び気泡塔型
培養装置において、気泡により培養液を攪拌循環させる
培養空間(以下、該空間を培養槽という)と隔壁により
隔てられ、隔壁上部は培養槽とは連通せず、隔壁下部は
培養槽と連通した空間(以下、該空間を上清分離槽とい
う)を設け、かつ培養槽への培地の供給及び上清分離槽
からの培養上清の抜出しを可能にした気泡塔型灌流培養
装置に関する。
気泡塔培養装置には種々の型式があるが、いずれの型式
においても気体の上昇に伴って上部に流動する部分と、
上端から下に向って流動する隔壁によって隔てられた下
降部分との2つの部分からなっている。上昇流は、気泡
の発生に伴って生じ、隔壁の上端に達し、あふれ出し下
降流となることで槽内での回転運動を生じ攪拌される。
においても気体の上昇に伴って上部に流動する部分と、
上端から下に向って流動する隔壁によって隔てられた下
降部分との2つの部分からなっている。上昇流は、気泡
の発生に伴って生じ、隔壁の上端に達し、あふれ出し下
降流となることで槽内での回転運動を生じ攪拌される。
細胞等はこの対流によって分散し、均一な溶存酸素及び
栄養分の補給を受ける。この2つの槽に上端を閉鎖し、
下端を開放したもう一つの部屋、すなわち上清分離槽を
つくると、この槽内は攪拌の影響をほとんど受けること
がなく静置されたと同様の状態になる。この攪拌の影響
の乏しい槽の上端は、比重の重い細胞粒子が下部へ沈降
し気泡槽内の攪拌部分へもどって行くため清澄な液とな
る。従って、この清澄な上滑をゆっくりとした速度で系
外に排出してもその清澄度は、はとんど変らない。系外
に排出する速度と培養槽部分に添加する速度とを同じに
すると一定量の連続培養が進行することになる。
栄養分の補給を受ける。この2つの槽に上端を閉鎖し、
下端を開放したもう一つの部屋、すなわち上清分離槽を
つくると、この槽内は攪拌の影響をほとんど受けること
がなく静置されたと同様の状態になる。この攪拌の影響
の乏しい槽の上端は、比重の重い細胞粒子が下部へ沈降
し気泡槽内の攪拌部分へもどって行くため清澄な液とな
る。従って、この清澄な上滑をゆっくりとした速度で系
外に排出してもその清澄度は、はとんど変らない。系外
に排出する速度と培養槽部分に添加する速度とを同じに
すると一定量の連続培養が進行することになる。
上清分離槽下端に沈降する比重の重い細胞粒子が効率よ
く培養槽中へもどるようにするために培養槽と上清分離
槽との間の隔壁の下端を培養槽下端の上昇流と下降流の
分岐点より上に設けることが好ましい。
く培養槽中へもどるようにするために培養槽と上清分離
槽との間の隔壁の下端を培養槽下端の上昇流と下降流の
分岐点より上に設けることが好ましい。
気泡培養槽でこのような上清分離槽を付加できる形状と
しては、その機能を満足するものであれば、いかなる形
状でもよく、第1図及び第2−1及び2−2に示した型
が好ましいものとして例示される。
しては、その機能を満足するものであれば、いかなる形
状でもよく、第1図及び第2−1及び2−2に示した型
が好ましいものとして例示される。
第1図は、気泡塔の形状を二重円筒管とし、中心の内円
筒下部より気体を発し、上昇流を引き起す。その外側の
部分は内円部上端よりあふれた培養液が下降流となる部
分である。さらにその外側に、ジャケット様の上清分離
槽をもうけた。
筒下部より気体を発し、上昇流を引き起す。その外側の
部分は内円部上端よりあふれた培養液が下降流となる部
分である。さらにその外側に、ジャケット様の上清分離
槽をもうけた。
第2−2図は、第1図と異なり、上清分離槽を中心に設
けた場合である。第3図に培養液の流れの方向を矢印で
示した。第3−3図に示したように培養槽の底を中心を
高く盛り上げその2番目の槽の下より気体を発生させる
と太い矢印のように流動する。一部細胞は、中心へも押
し出されるが、下部突起の下へともどり再び上昇流にま
き込まれることになる。
けた場合である。第3図に培養液の流れの方向を矢印で
示した。第3−3図に示したように培養槽の底を中心を
高く盛り上げその2番目の槽の下より気体を発生させる
と太い矢印のように流動する。一部細胞は、中心へも押
し出されるが、下部突起の下へともどり再び上昇流にま
き込まれることになる。
第2−1図は、円筒である必要はなく、箱形でもよく、
分離板で3つの部屋を造ればよい。
分離板で3つの部屋を造ればよい。
第3−2図に示すように下端中央の穴より気体を発生さ
せると太い矢印のように流動する。上清は、細い矢印で
示したように外部へ排出されている。
せると太い矢印のように流動する。上清は、細い矢印で
示したように外部へ排出されている。
以上のように、隔壁に隔てられ下部を開放した上清分離
槽を通常の培養槽につけることによって細胞を含まない
上清を分離することができる。
槽を通常の培養槽につけることによって細胞を含まない
上清を分離することができる。
第1図に記載した装置を例に示すと、培養債2βの装置
の場合、上清分離槽は1βの容量が適当である。上清分
離槽の内径110mm、培養槽13の内径80陥、内円
筒5の内径57mmとした。装置の高さは、培養槽13
が560胴、内円筒5が370雅、上清分離槽10が5
00mmとしたものを示した。
の場合、上清分離槽は1βの容量が適当である。上清分
離槽の内径110mm、培養槽13の内径80陥、内円
筒5の内径57mmとした。装置の高さは、培養槽13
が560胴、内円筒5が370雅、上清分離槽10が5
00mmとしたものを示した。
これらの培養装置は第1図、第2図に示したように、コ
ンデンサー1、接種口2、培地添加口3、サンプリング
ライン4、内円筒5又は分離板16、接続金具6、バッ
キング7、通気口8、通気ライン9、排液ライン11、
固定部品12などの他、温度制御のための温度センサー
、ヒーター、pH測 定や溶存酸素測定用のセンサー類
、気体流量制御のための流量計などを取付けることがで
きる。
ンデンサー1、接種口2、培地添加口3、サンプリング
ライン4、内円筒5又は分離板16、接続金具6、バッ
キング7、通気口8、通気ライン9、排液ライン11、
固定部品12などの他、温度制御のための温度センサー
、ヒーター、pH測 定や溶存酸素測定用のセンサー類
、気体流量制御のための流量計などを取付けることがで
きる。
一般的には、清澄な上清液を得るために培養槽容量2に
対し、上清分離槽容量を0.5〜2とすることが好まし
い。
対し、上清分離槽容量を0.5〜2とすることが好まし
い。
実施例
実施例1
第1図に示した気泡塔型灌流培養装置を用い、ヒ) I
Jンバ芽球細胞であるナマルバ細胞を用いて培養を行っ
た。
Jンバ芽球細胞であるナマルバ細胞を用いて培養を行っ
た。
ナマルバ細胞は、RP M l−1640培地に3河/
m1のトランスフマリン、5g/mlのインスリン、5
m Mピルビン酸ソーダ、1.25X10−8M亜セ
レン酸、1mg/mlガラクトース、4mMグルタミン
、10mMへベス、25 u /mlペニシリンG、2
5■/m1ストレプトマイシン、0.1g/J重曹を加
えた無血清培地で培養した。
m1のトランスフマリン、5g/mlのインスリン、5
m Mピルビン酸ソーダ、1.25X10−8M亜セ
レン酸、1mg/mlガラクトース、4mMグルタミン
、10mMへベス、25 u /mlペニシリンG、2
5■/m1ストレプトマイシン、0.1g/J重曹を加
えた無血清培地で培養した。
2β培養槽に上記培地1.91を仕込み、1.3X 1
06cells/ mflのナマルバ細胞を接種し、空
気及び5%CO2を含む空気を流量比を適宜調節しなが
ら1.2〜2.4f/hrの流量で通気した。
06cells/ mflのナマルバ細胞を接種し、空
気及び5%CO2を含む空気を流量比を適宜調節しなが
ら1.2〜2.4f/hrの流量で通気した。
1日目500ml/day 、 2日目から8日目まで
142/day8日目より後2 f! /dayの流速
で培地添加口より添加し、上清分離槽上端の排液口より
上清を排出させた。
142/day8日目より後2 f! /dayの流速
で培地添加口より添加し、上清分離槽上端の排液口より
上清を排出させた。
細胞密度は5日目で4. I X I O”cells
/m+、8日目で7 x l Q”cells/ml
、144日目1×107cells/ml、以後徐々に
細胞数が増加し18日後には1.2 X 10 ’ce
lls /mlに達した。
/m+、8日目で7 x l Q”cells/ml
、144日目1×107cells/ml、以後徐々に
細胞数が増加し18日後には1.2 X 10 ’ce
lls /mlに達した。
実施例2
ナマルバ細胞を第1図に示した装置を用い培養した。培
地として実施例1に示した培地に0.1g/Jとなるよ
うにpluronic F1aを加えた培地を用いた。
地として実施例1に示した培地に0.1g/Jとなるよ
うにpluronic F1aを加えた培地を用いた。
21培養槽に上記培地2βを仕込み、ナマルバ細胞をl
、 3 x l Q ”cells /mlとなるよう
に接種した。通気は空気及び596C○2を含む空気を
流量比を適宜調節しながら1.2〜2.4j!/hrの
流量で行った。
、 3 x l Q ”cells /mlとなるよう
に接種した。通気は空気及び596C○2を含む空気を
流量比を適宜調節しながら1.2〜2.4j!/hrの
流量で行った。
潅流する培地里は、24時間後より10100O/da
yで3日目まで通気し、3日後より100日目で20
Qmlずつ増やし、10日後までに2ji!/day
とした。その後、2日ごとに200m1ずつ流量を増加
させ200日目41/dayとした。細胞数は8日目で
8 X 1.06cells/ml。
yで3日目まで通気し、3日後より100日目で20
Qmlずつ増やし、10日後までに2ji!/day
とした。その後、2日ごとに200m1ずつ流量を増加
させ200日目41/dayとした。細胞数は8日目で
8 X 1.06cells/ml。
155日目1.l x l Q ’cells/ml、
20日目で1、5 x l Q ’cells/ml
となった。
20日目で1、5 x l Q ’cells/ml
となった。
発明の効果
本発明方法及び装置により剪断力に感受性の細胞の培養
及び大量培養が可能となる。
及び大量培養が可能となる。
第1図及び第2図は本発明の気泡塔型灌流培養装置の好
ましい具体例を示す。 第3図は本装置中の培養液及び培養上清の動きを示す。 特許出願人 (114)工業技術院長飯 塚 幸
三 第1図 4サンプリングライン 5内円閤 6接続金具
7パツキング 8通気口 9通気ライン1
0上清分離檀 11 排液ライン 12固定部品
13培蓑檀 第2図 第2−1図 第2−2図 1 コンデンサー 2 接種口 3 培
地添加口8a気口 9通気ライン 10
上清分悶槽13培豐槽 14 排液口
15 排気口16分剛板 第3図 !!!養上清の流れ
ましい具体例を示す。 第3図は本装置中の培養液及び培養上清の動きを示す。 特許出願人 (114)工業技術院長飯 塚 幸
三 第1図 4サンプリングライン 5内円閤 6接続金具
7パツキング 8通気口 9通気ライン1
0上清分離檀 11 排液ライン 12固定部品
13培蓑檀 第2図 第2−1図 第2−2図 1 コンデンサー 2 接種口 3 培
地添加口8a気口 9通気ライン 10
上清分悶槽13培豐槽 14 排液口
15 排気口16分剛板 第3図 !!!養上清の流れ
Claims (3)
- (1)気泡塔による細胞の浮遊培養において少なくとも
一部の培養液中の細胞を沈降させて得られる培養上清を
培養装置外に排出しながら新鮮培地を加えて培養するこ
とを特徴とする浮遊細胞の灌流培養方法。 - (2)気泡塔型培養装置において、気泡により培養液を
攪拌循環させる培養空間(以下、該空間を培養槽という
)と隔壁により隔てられ、隔壁上部は培養槽とは連通せ
ず、隔壁下部は培養槽と連通した空間(以下、該空間を
上清分離槽という)を設け、かつ培養槽への培地の供給
及び上清分離槽からの培養上清の抜出しを可能にした気
泡塔型灌流培養装置。 - (3)該隔壁の下端を培養槽下端の上昇流と下降流の分
岐点より上に設けた特許請求の範囲第1項記載の気泡塔
型灌流培養装置。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61309081A JPS63164879A (ja) | 1986-12-27 | 1986-12-27 | 気泡塔型潅流培養方法及びその装置 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61309081A JPS63164879A (ja) | 1986-12-27 | 1986-12-27 | 気泡塔型潅流培養方法及びその装置 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63164879A true JPS63164879A (ja) | 1988-07-08 |
JPH0240318B2 JPH0240318B2 (ja) | 1990-09-11 |
Family
ID=17988656
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61309081A Granted JPS63164879A (ja) | 1986-12-27 | 1986-12-27 | 気泡塔型潅流培養方法及びその装置 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63164879A (ja) |
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0567738A2 (en) * | 1992-05-01 | 1993-11-03 | American Cyanamid Company | Controlling perfusion rates in continuous bioreactor culture of animal cells |
US5443985A (en) * | 1993-07-22 | 1995-08-22 | Alberta Research Council | Cell culture bioreactor |
KR100420784B1 (ko) * | 2001-02-09 | 2004-03-02 | (주)에스티알바이오텍 | 고정화된 미생물을 이용한 세포외 분비 유용물질의연속생산을 위한 개량된 고정화세포 분리장치 |
WO2020189417A1 (ja) * | 2019-03-15 | 2020-09-24 | エイブル株式会社 | 培養システム及び培養方法 |
-
1986
- 1986-12-27 JP JP61309081A patent/JPS63164879A/ja active Granted
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
EP0567738A2 (en) * | 1992-05-01 | 1993-11-03 | American Cyanamid Company | Controlling perfusion rates in continuous bioreactor culture of animal cells |
EP0567738A3 (en) * | 1992-05-01 | 1995-09-06 | American Cyanamid Co | Controlling perfusion rates in continuous bioreactor culture of animal cells |
US5443985A (en) * | 1993-07-22 | 1995-08-22 | Alberta Research Council | Cell culture bioreactor |
KR100420784B1 (ko) * | 2001-02-09 | 2004-03-02 | (주)에스티알바이오텍 | 고정화된 미생물을 이용한 세포외 분비 유용물질의연속생산을 위한 개량된 고정화세포 분리장치 |
WO2020189417A1 (ja) * | 2019-03-15 | 2020-09-24 | エイブル株式会社 | 培養システム及び培養方法 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPH0240318B2 (ja) | 1990-09-11 |
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Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
EXPY | Cancellation because of completion of term |