JPS63156597A - 廃水処理方法 - Google Patents
廃水処理方法Info
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- JPS63156597A JPS63156597A JP30135086A JP30135086A JPS63156597A JP S63156597 A JPS63156597 A JP S63156597A JP 30135086 A JP30135086 A JP 30135086A JP 30135086 A JP30135086 A JP 30135086A JP S63156597 A JPS63156597 A JP S63156597A
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Links
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Landscapes
- Purification Treatments By Anaerobic Or Anaerobic And Aerobic Bacteria Or Animals (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
発明者らは、酵母による食品製造廃水の新しい処理方式
を開発し[吉澤 :層化、55,705〜711(19
81)] 、更に、本処理方法をより効率的に実施する
ために、凝集性酵母を自然界から分離選択し、分離した
凝集性酵母を用いる廃水処理法を発明した(特願昭59
−272738号)。
を開発し[吉澤 :層化、55,705〜711(19
81)] 、更に、本処理方法をより効率的に実施する
ために、凝集性酵母を自然界から分離選択し、分離した
凝集性酵母を用いる廃水処理法を発明した(特願昭59
−272738号)。
発明者らは、既に各種廃水の性質にそれぞれ適した酵母
の菌株を分離、保存している。これちの菌株は廃水処理
能は高いがいずれも非凝集性である。そこでこれら非凝
集性廃水処理用酵母に凝集性を付与できれば、改めて各
種廃水の性質に適した凝集性酵母を自然界から分離選択
しなくてもよいと考え、非凝集性廃水処理用酵母から凝
集性変異株を取得する方法を鋭意研究した。その結果、
非凝集性酵母である親株に対し紫外線照射等の突然変異
誘発処理を行った後に、変異株を継代培養により濃縮す
る方法により凝集性変異株を取得することに成功した。
の菌株を分離、保存している。これちの菌株は廃水処理
能は高いがいずれも非凝集性である。そこでこれら非凝
集性廃水処理用酵母に凝集性を付与できれば、改めて各
種廃水の性質に適した凝集性酵母を自然界から分離選択
しなくてもよいと考え、非凝集性廃水処理用酵母から凝
集性変異株を取得する方法を鋭意研究した。その結果、
非凝集性酵母である親株に対し紫外線照射等の突然変異
誘発処理を行った後に、変異株を継代培養により濃縮す
る方法により凝集性変異株を取得することに成功した。
得られた凝集性変異株は廃水処理能力において親株の非
;!集性廃水処理用酵母と同等以上であり、前発明によ
り自然界より分離した凝集性酵母よりも優れていた。本
凝集性変異株を用いれば、高い酵母密度が維持でき、効
率的に廃水中の有機物を分解できるばかりでなく、廃水
中の窒素やリンも除去できること、更に、本凝集性変異
株は活性炭、ポリスレン粒及び円板等の担体に良く付着
する性質があるので、これら担体に凝集性変異株を付着
させ、効率的に廃水処理を行うことができる。また、本
凝集性変異株は凝集の核となり、他の微生物とも安定な
凝集体を形成し、それらの全生物とともに廃水処理を行
なうことを見出し、本発明を完成した。
;!集性廃水処理用酵母と同等以上であり、前発明によ
り自然界より分離した凝集性酵母よりも優れていた。本
凝集性変異株を用いれば、高い酵母密度が維持でき、効
率的に廃水中の有機物を分解できるばかりでなく、廃水
中の窒素やリンも除去できること、更に、本凝集性変異
株は活性炭、ポリスレン粒及び円板等の担体に良く付着
する性質があるので、これら担体に凝集性変異株を付着
させ、効率的に廃水処理を行うことができる。また、本
凝集性変異株は凝集の核となり、他の微生物とも安定な
凝集体を形成し、それらの全生物とともに廃水処理を行
なうことを見出し、本発明を完成した。
以下、本発明の詳細な説明する。
本発明において使用される酵母は廃水処理能があれぽい
ずれでもよい。例えば、非凝集性の洗米廃水処理用酵母
ハンゼヌラ・アノマラ(tlansenula ano
mala) J 45−0や非凝集性のウィスキー蒸留
廃液処理層酵母ハンゼヌラ・7Tビア= −(Hans
enula fabianii) J 640を親株と
して使用する。
ずれでもよい。例えば、非凝集性の洗米廃水処理用酵母
ハンゼヌラ・アノマラ(tlansenula ano
mala) J 45−0や非凝集性のウィスキー蒸留
廃液処理層酵母ハンゼヌラ・7Tビア= −(Hans
enula fabianii) J 640を親株と
して使用する。
突然変異誘発処理としては常法どおり、紫外線照射、エ
チルメタンスルフォネート、 N−メチル−N−ニトロ
−N−ニトロングアニジン処理等を用いることができる
。
チルメタンスルフォネート、 N−メチル−N−ニトロ
−N−ニトロングアニジン処理等を用いることができる
。
紫外線照射の例を以下に示す。各親株をY M培地(ペ
プトン0.5%、酵母エキス0.3%、麦芽エキス0.
3%、ブドウ糖1%)に接種し、30℃で2日間振とう
培養した後、遠沈により集菌し、殺菌水て・2回洗浄後
、660.nm、10mmセルにおける吸光度OD6?
%が約1となるように菌体を生理的食塩水に恩濁し、そ
の懸濁液5mlを内径5cmのシャーレに入れ、マグネ
チックスクーラーで攪拌しながら、15Wの紫外線ラン
プで、30c111の高さから1分30秒間照射した。
プトン0.5%、酵母エキス0.3%、麦芽エキス0.
3%、ブドウ糖1%)に接種し、30℃で2日間振とう
培養した後、遠沈により集菌し、殺菌水て・2回洗浄後
、660.nm、10mmセルにおける吸光度OD6?
%が約1となるように菌体を生理的食塩水に恩濁し、そ
の懸濁液5mlを内径5cmのシャーレに入れ、マグネ
チックスクーラーで攪拌しながら、15Wの紫外線ラン
プで、30c111の高さから1分30秒間照射した。
照射及び非照射の菌体懸濁液200μmを新しいY M
培地5mlに接種し、L字管中で30 ’C″C−2日
間振とう日間上た。培養終了後り字管を30分間静置し
、その沈澱部又はL字管壁に付着した菌体を新しい培地
に植継いだ。この操作を次式で示される凝集率が最大に
なるまで続けた。
培地5mlに接種し、L字管中で30 ’C″C−2日
間振とう日間上た。培養終了後り字管を30分間静置し
、その沈澱部又はL字管壁に付着した菌体を新しい培地
に植継いだ。この操作を次式で示される凝集率が最大に
なるまで続けた。
ここで、
○D(T): 酵母懸濁液を0.02M)リス−塩酸
緩衝液(PH7,6)中で プロナーゼE (5mg/ 20 ml)により、37
℃1時間処理してデ フロックさせた後660nm、 10+a+aセルで測定した吸光度 ○D(S): 酵母懸濁液を30’Orpm 5分間
遠沈した後の上澄液の660 nIll、10mn+セルで測定した吸光度 このような方法により、第1図に示すように紫外線(U
V)照射を行った場合、植継回数が5〜6回頃から凝集
率は上昇始め、ハンゼヌラ・7アビアニーでは7回、ハ
ンセ゛ヌラ・アノマラでは18回の植継ぎで凝集率が最
大となったが、紫外線非照射では植m回数6〜10回で
わずかに凝集率が上昇したにすぎなかった。
緩衝液(PH7,6)中で プロナーゼE (5mg/ 20 ml)により、37
℃1時間処理してデ フロックさせた後660nm、 10+a+aセルで測定した吸光度 ○D(S): 酵母懸濁液を30’Orpm 5分間
遠沈した後の上澄液の660 nIll、10mn+セルで測定した吸光度 このような方法により、第1図に示すように紫外線(U
V)照射を行った場合、植継回数が5〜6回頃から凝集
率は上昇始め、ハンゼヌラ・7アビアニーでは7回、ハ
ンセ゛ヌラ・アノマラでは18回の植継ぎで凝集率が最
大となったが、紫外線非照射では植m回数6〜10回で
わずかに凝集率が上昇したにすぎなかった。
凝集率が最大となった時にY M寒天培地(寒天濃度2
%)により単コロニーを分離し、各コロニーより得た菌
株について、凝集性を有し、廃水処理能の高い菌株を選
択した結果、紫外線照射を行った系列から、60%以上
の確立で目的の性質を有する菌株を得たが、そのうち最
も成績の良い菌株として、ハンゼヌラ・アノマラJ 4
5−0−N’−5(微工研菌寄第9066号)及びハン
ゼヌラ・77ビアニーJ640−4−1(微工研菌寄@
9067号)を得た。なお、紫外線照射を行わなかった
系列からは凝集性変異株を得ることができなかった。
%)により単コロニーを分離し、各コロニーより得た菌
株について、凝集性を有し、廃水処理能の高い菌株を選
択した結果、紫外線照射を行った系列から、60%以上
の確立で目的の性質を有する菌株を得たが、そのうち最
も成績の良い菌株として、ハンゼヌラ・アノマラJ 4
5−0−N’−5(微工研菌寄第9066号)及びハン
ゼヌラ・77ビアニーJ640−4−1(微工研菌寄@
9067号)を得た。なお、紫外線照射を行わなかった
系列からは凝集性変異株を得ることができなかった。
これら凝集性変異株及びそれらの親株の菌学的性質はす
べて一致した。
べて一致した。
なお、以上の菌学的性質は、N、J、W、クレーガー・
ヴ7ン・リッジ編[す′・イー又ト、ア・タクソミック
スタディ、第3版」及び飯塚廣。
ヴ7ン・リッジ編[す′・イー又ト、ア・タクソミック
スタディ、第3版」及び飯塚廣。
後藤昭二共著「酵母の分類同定法jによった。
+W:弱い十
凝集性変異株と親株との細胞表面の疎水度を菌体のベン
ゼン層への移行割合で調べると$2表に示すとおり凝集
性変異株は親株よりも疎水度が上昇し、自然界から分離
した凝集性廃水処理用酵母ハンゼヌラ・7ノマラJ22
4(微工研菌寄第7671号)とほぼ同程度の疎水度と
゛なった。疎水度の上昇により活性炭やポリス
チレン等の担体への付着性が増加する結果となり、一種
の固定化菌体を容易に調製することができるようになる
とともに、他の微生物との凝集体が形成しやすくなる。
ゼン層への移行割合で調べると$2表に示すとおり凝集
性変異株は親株よりも疎水度が上昇し、自然界から分離
した凝集性廃水処理用酵母ハンゼヌラ・7ノマラJ22
4(微工研菌寄第7671号)とほぼ同程度の疎水度と
゛なった。疎水度の上昇により活性炭やポリス
チレン等の担体への付着性が増加する結果となり、一種
の固定化菌体を容易に調製することができるようになる
とともに、他の微生物との凝集体が形成しやすくなる。
ユニで
I: 0.01M酢酸緩衝液(pH5,0)中に懸濁
した酵母による660nm、 110ll1セルで測定した吸光度 R: 酵母懸濁液と等量のベンゼンと 振どう後の水層を660口m、10 m1l!セルにより測定した吸光度 以下の実施例は本発明を更に例証するものであり、本発
明は、これらの実施例に限定されないことを理解された
い。
した酵母による660nm、 110ll1セルで測定した吸光度 R: 酵母懸濁液と等量のベンゼンと 振どう後の水層を660口m、10 m1l!セルにより測定した吸光度 以下の実施例は本発明を更に例証するものであり、本発
明は、これらの実施例に限定されないことを理解された
い。
実施例1
各種廃水に各酵母を0D(T)=2になるように添加し
、L字管中で2日間振とうした結果、第3表に示すとお
り、凝集性変異株の全有機炭素(TOC)除去率はそれ
ぞれの親株にほぼ等しいか、かえって親株を上回る結果
を示した。
、L字管中で2日間振とうした結果、第3表に示すとお
り、凝集性変異株の全有機炭素(TOC)除去率はそれ
ぞれの親株にほぼ等しいか、かえって親株を上回る結果
を示した。
また、凝集性変異株は自然界から分離した凝集株よりも
優れたTOC除去率を示した。
優れたTOC除去率を示した。
a 全有機炭素
b 1時間静置上澄
c 3,00Orpm、io分間遠沈上澄d 親
株 e 凝集性変異株 r 自然界より分離した凝集株 実施例2 21容のジャー7アーメンターに精米歩合80〜75%
の区分の白糠懸濁液(モデル洗米廃水)11を入れ、こ
れに凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ45−0−N
−5を0D(T)=1.6になるように添加し、20’
Cで1 1/minの通気と300 rpmの攪拌を行
った。処理開始後1日間で酵母菌体は液面に接したジャ
ー7アーメンターのガラス壁や邪魔板等に付着し、通気
攪拌停止後1時間の静置でほとんど透明になった。処理
開始後23日後までは、1時開静置後の上澄液の500
m1を新しいモデル廃水と交換し、それ以後から66日
後までは750m1を、その後は全量を新しいモデル洗
米廃水と交換した。
株 e 凝集性変異株 r 自然界より分離した凝集株 実施例2 21容のジャー7アーメンターに精米歩合80〜75%
の区分の白糠懸濁液(モデル洗米廃水)11を入れ、こ
れに凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ45−0−N
−5を0D(T)=1.6になるように添加し、20’
Cで1 1/minの通気と300 rpmの攪拌を行
った。処理開始後1日間で酵母菌体は液面に接したジャ
ー7アーメンターのガラス壁や邪魔板等に付着し、通気
攪拌停止後1時間の静置でほとんど透明になった。処理
開始後23日後までは、1時開静置後の上澄液の500
m1を新しいモデル廃水と交換し、それ以後から66日
後までは750m1を、その後は全量を新しいモデル洗
米廃水と交換した。
本連続処理におけるTOCの残存量の状況を第2図に示
す。定常的な処理が行なわれ始めた43日以降は1時間
の静置上澄で7S〜95%、300Orpm、 10分
間の遠沈上澄では90%以上のTOC除去率を示した。
す。定常的な処理が行なわれ始めた43日以降は1時間
の静置上澄で7S〜95%、300Orpm、 10分
間の遠沈上澄では90%以上のTOC除去率を示した。
なお処理開始後20日前後にTOCの除去が悪化したが
、これは粘質物を生産するピンク色の細菌の汚染による
[斎藤ら:醸協、 81.661〜664(1986)
]もので40ppI11になるようにメタカリを添加す
ることにより本細菌を駆除でき、以後の処理は順調とな
った。
、これは粘質物を生産するピンク色の細菌の汚染による
[斎藤ら:醸協、 81.661〜664(1986)
]もので40ppI11になるようにメタカリを添加す
ることにより本細菌を駆除でき、以後の処理は順調とな
った。
実施例3
洗米廃水を塩酸でPH4、0とし、−夜放置後、大部分
のデンプンを沈澱させ、その上澄を原水とし、凝集性変
異株ハンゼヌラ・アノマラ J45−0−N−5を0D
(T)=2になるように添加し、実施例2と同様にして
処理した。この結果、第3図に示すように処理水のTO
Cは処理開始2日後を除き15分開扉置でも3..00
0rpm、10分遠沈上澄でもほとんど変らず、100
ppm以下となり、この値はCOD換算で80ppm
以下となるので、総理府令に基づく排水基準に適合する
有機物濃度にすることかできだ。
のデンプンを沈澱させ、その上澄を原水とし、凝集性変
異株ハンゼヌラ・アノマラ J45−0−N−5を0D
(T)=2になるように添加し、実施例2と同様にして
処理した。この結果、第3図に示すように処理水のTO
Cは処理開始2日後を除き15分開扉置でも3..00
0rpm、10分遠沈上澄でもほとんど変らず、100
ppm以下となり、この値はCOD換算で80ppm
以下となるので、総理府令に基づく排水基準に適合する
有機物濃度にすることかできだ。
実施例4
モデル洗米廃水としてTOCが 760ρρmになるよ
うに精米歩合80〜75%の区分の白糠懸濁液をつくり
、これに凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ−45−
0−N−5をOD (T )=0.5 になるように加
え、L字管中で30℃で2日間振とうした。酵母処理前
後の窒素及びリンの濃度を昭和57年12月25日付環
境庁告示第140号に従って測定した。その結果、第4
表に示すようにTOCと同時に窒素及びリンも除去する
ことができた。
うに精米歩合80〜75%の区分の白糠懸濁液をつくり
、これに凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ−45−
0−N−5をOD (T )=0.5 になるように加
え、L字管中で30℃で2日間振とうした。酵母処理前
後の窒素及びリンの濃度を昭和57年12月25日付環
境庁告示第140号に従って測定した。その結果、第4
表に示すようにTOCと同時に窒素及びリンも除去する
ことができた。
第4表
a 3,00Orpm、10分間
b 除去率
実施例5
凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ45−0−N−5
を0D(T)=1になるように洗米廃水(T OC=
242 ppm)に添加したもの、凝集性変異株と51
の洗米廃水に対し粒状炭30mgを添加したもの及び粒
状炭のみを洗米廃水に添加したものをL字管中i′″3
0’Cで2日問振とうした。その結果、第5表に示すよ
うに凝集性変異株と粒状炭との組合せにより処理後のT
OCは27ppm以下となった。また、凝集性変異株は
粒状炭の表面に完全に付着するのが観察された。
を0D(T)=1になるように洗米廃水(T OC=
242 ppm)に添加したもの、凝集性変異株と51
の洗米廃水に対し粒状炭30mgを添加したもの及び粒
状炭のみを洗米廃水に添加したものをL字管中i′″3
0’Cで2日問振とうした。その結果、第5表に示すよ
うに凝集性変異株と粒状炭との組合せにより処理後のT
OCは27ppm以下となった。また、凝集性変異株は
粒状炭の表面に完全に付着するのが観察された。
第5表
a 3.OOOrpm、10分間
b TOC除去率
実施例6
洗米廃水を実施例3と同様にPII4,0とじた上澄に
次亜塩素酸ナトリウムを有効塩素として50ppmにな
るように添加し、凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ
45−0−N−5を0D(T)=2になるように添加し
、L字管中で30°Cで2日間振とう後15分静置し、
その上澄の半量を新しい洗米廃水のPH4、Oの上澄と
交換した。
次亜塩素酸ナトリウムを有効塩素として50ppmにな
るように添加し、凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ
45−0−N−5を0D(T)=2になるように添加し
、L字管中で30°Cで2日間振とう後15分静置し、
その上澄の半量を新しい洗米廃水のPH4、Oの上澄と
交換した。
この操作を30日間続けたところ、第4図に示すように
゛凝集性変異株と細菌及び糸状性菌類が安定な凝集体を
形成した。
゛凝集性変異株と細菌及び糸状性菌類が安定な凝集体を
形成した。
処理液を15分間静置した後上澄液と凝集体について微
生物の分布状況を調べた。対照として凝集性変異株ハン
ゼヌラ・アノマラJ45−0−N−5を添加せずに振と
うした廃液についても微生物の分布を調べた。酵母の計
測にはストレプトマイシン 100 ppmを含むYM
寒天培地、細菌類はブイヨン寒天培地及び1%白糠抽出
液寒天培地を用いた。その結果、第6表に示すとおり廃
水1ml当たり、酵母及び細菌とも10億以上のオーダ
ーで含まれており、1%白糠抽出液寒天上にヨード・ヨ
ードカリ溶液を重層すると、培地全面が青紫色に変化す
る中で、コロニーの周囲はすべてヨード・デンプン反応
を示さず、白く抜け、デンプン分解力の強い細菌であっ
た。また、糸状性菌類もその巨大コロニーの形態や細胞
の形態等からトリコスポロン属などの不完全菌であり、
同じくデンプン分解力を示した。
生物の分布状況を調べた。対照として凝集性変異株ハン
ゼヌラ・アノマラJ45−0−N−5を添加せずに振と
うした廃液についても微生物の分布を調べた。酵母の計
測にはストレプトマイシン 100 ppmを含むYM
寒天培地、細菌類はブイヨン寒天培地及び1%白糠抽出
液寒天培地を用いた。その結果、第6表に示すとおり廃
水1ml当たり、酵母及び細菌とも10億以上のオーダ
ーで含まれており、1%白糠抽出液寒天上にヨード・ヨ
ードカリ溶液を重層すると、培地全面が青紫色に変化す
る中で、コロニーの周囲はすべてヨード・デンプン反応
を示さず、白く抜け、デンプン分解力の強い細菌であっ
た。また、糸状性菌類もその巨大コロニーの形態や細胞
の形態等からトリコスポロン属などの不完全菌であり、
同じくデンプン分解力を示した。
a 凝集性変異株ハンゼヌラ・アノマラJ45−0−
N−5[115分開扉置上澄 C凝集体を殺菌水で原容量に戻し、0.02M)+7ス
・塩酸緩衝液(pH7,6)中でプロナーゼE(5mg
/ 20m1)により、37℃1時間処理してデフ0ツ
ク後寒天培地に塗布して計測d 不検出 上澄液中と凝集体中の微生物の分布を調べると凝集性変
異株を添加したものは、細菌も上澄液より・も凝集体中
に約3倍多く、凝集性変異株を添加しないものは上澄液
に分布する細菌の方が多くなった。
N−5[115分開扉置上澄 C凝集体を殺菌水で原容量に戻し、0.02M)+7ス
・塩酸緩衝液(pH7,6)中でプロナーゼE(5mg
/ 20m1)により、37℃1時間処理してデフ0ツ
ク後寒天培地に塗布して計測d 不検出 上澄液中と凝集体中の微生物の分布を調べると凝集性変
異株を添加したものは、細菌も上澄液より・も凝集体中
に約3倍多く、凝集性変異株を添加しないものは上澄液
に分布する細菌の方が多くなった。
この上うな面相は連続処理期間生変らず、凝集性変異株
を中心にこれら細菌等とが安定した凝集体を形成し、こ
れらが共同して洗米廃水を効率よく処理していることを
見出した。
を中心にこれら細菌等とが安定した凝集体を形成し、こ
れらが共同して洗米廃水を効率よく処理していることを
見出した。
なお、この期間中のTOC除去率はおおむね82%程度
であった。
であった。
第1図は、稙継回数と凝集性変異株の濃縮の程度を示す
図、第2図及び第3図は、モデル洗米廃水及び洗米廃水
の酸沈澱の上澄液をそれぞれ凝集性変異株ハンゼヌラ・
アノマラJ45−0−N−5で連続して処理した結果を
示す図である。第4図は凝集性酵母ハンゼヌラ・アノマ
ラJ45−0−N−5と他の微生物との安定な凝集体の
顕微鏡写真である。
図、第2図及び第3図は、モデル洗米廃水及び洗米廃水
の酸沈澱の上澄液をそれぞれ凝集性変異株ハンゼヌラ・
アノマラJ45−0−N−5で連続して処理した結果を
示す図である。第4図は凝集性酵母ハンゼヌラ・アノマ
ラJ45−0−N−5と他の微生物との安定な凝集体の
顕微鏡写真である。
Claims (3)
- (1)非凝集性廃水処理用酵母に変異誘導処理を施した
後に、培養を行い、自然沈降により速やかに沈澱した菌
体又は試験管壁に付着した菌体を新しい培地に接種培養
する培養操作を繰返し行って、濃縮された凝集性変異株
を分離・育成し、この凝集性変異株で廃水を処理するこ
とを特徴とする廃水処理方法。 - (2)特許請求の範囲第1項に記載の凝集性変異株を担
体に付着させ、この付着物で廃水を処理することを特徴
とする廃水処理方法。 - (3)特許請求の範囲第1項に記載の凝集性変異株と他
の微生物とから安定な凝集物を形成させ、この凝集物に
より廃水を処理することを特徴とする廃水処理方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30135086A JPS63156597A (ja) | 1986-12-19 | 1986-12-19 | 廃水処理方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP30135086A JPS63156597A (ja) | 1986-12-19 | 1986-12-19 | 廃水処理方法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS63156597A true JPS63156597A (ja) | 1988-06-29 |
Family
ID=17895807
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP30135086A Pending JPS63156597A (ja) | 1986-12-19 | 1986-12-19 | 廃水処理方法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS63156597A (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH11319882A (ja) * | 1998-05-11 | 1999-11-24 | Oppenheimer Technology Japan:Kk | 油含有排水の処理方法および処理装置 |
JP2010119323A (ja) * | 2008-11-18 | 2010-06-03 | Ihi Corp | 微生物濃縮装置 |
JP2011200128A (ja) * | 2010-03-24 | 2011-10-13 | Ihi Corp | 微生物濃縮装置 |
Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61108384A (ja) * | 1984-10-31 | 1986-05-27 | Hitachi Zosen Corp | 新規凝集性酵母 |
JPS61153197A (ja) * | 1984-12-26 | 1986-07-11 | Tax Adm Agency | 廃水の処理方法 |
-
1986
- 1986-12-19 JP JP30135086A patent/JPS63156597A/ja active Pending
Patent Citations (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS61108384A (ja) * | 1984-10-31 | 1986-05-27 | Hitachi Zosen Corp | 新規凝集性酵母 |
JPS61153197A (ja) * | 1984-12-26 | 1986-07-11 | Tax Adm Agency | 廃水の処理方法 |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH11319882A (ja) * | 1998-05-11 | 1999-11-24 | Oppenheimer Technology Japan:Kk | 油含有排水の処理方法および処理装置 |
JP2010119323A (ja) * | 2008-11-18 | 2010-06-03 | Ihi Corp | 微生物濃縮装置 |
JP2011200128A (ja) * | 2010-03-24 | 2011-10-13 | Ihi Corp | 微生物濃縮装置 |
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