JPS6310733A - 癌細胞傷害活性物質及びその製法 - Google Patents
癌細胞傷害活性物質及びその製法Info
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- JPS6310733A JPS6310733A JP62004995A JP499587A JPS6310733A JP S6310733 A JPS6310733 A JP S6310733A JP 62004995 A JP62004995 A JP 62004995A JP 499587 A JP499587 A JP 499587A JP S6310733 A JPS6310733 A JP S6310733A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
(産業上の利用分野)
本発明は、新たに発見されたタツナミ貝に含まれる癌細
胞傷害活性物質と、その抽出、精製方法に関する。尚、
本明細四では、アミノ酸を以下のように略記する。
胞傷害活性物質と、その抽出、精製方法に関する。尚、
本明細四では、アミノ酸を以下のように略記する。
Arg :アルギニン; Asn”アスパラギン
Asp:アスパラギン酸; CysニジスティンGl
n :グルタミン: Glu :グルタミン酸
Gly ニゲリシン; Hls ’ヒスチジン
11c:インロイシン; Leu :ロイシンLy
s:リジン: Pro ニブロリンScr
:セリン; Thr :スレオニンTyr
:チロシン: Ala :アラニンMet
:メチオ二ン; Phe:フェニルアラニンTr
p: トリプトフアン; Val:バリン(従来の技
術) 近年、癌治療の分野において癌細胞傷害活性物質の発見
が各種動物又は各種臓器よりなされている。その代表的
な物質は当初ウサギより発見きれたINF、インターロ
イキン2(工L−2)及び癌破壊因子(CBF)等があ
る。
Asp:アスパラギン酸; CysニジスティンGl
n :グルタミン: Glu :グルタミン酸
Gly ニゲリシン; Hls ’ヒスチジン
11c:インロイシン; Leu :ロイシンLy
s:リジン: Pro ニブロリンScr
:セリン; Thr :スレオニンTyr
:チロシン: Ala :アラニンMet
:メチオ二ン; Phe:フェニルアラニンTr
p: トリプトフアン; Val:バリン(従来の技
術) 近年、癌治療の分野において癌細胞傷害活性物質の発見
が各種動物又は各種臓器よりなされている。その代表的
な物質は当初ウサギより発見きれたINF、インターロ
イキン2(工L−2)及び癌破壊因子(CBF)等があ
る。
(発明の構成)
本発明者は、癌細胞を特異的に壊死損傷許せ正常細胞に
は作用しない生理活性物質を探求する一連の研究中にタ
ツナミ貝(Dolabella auriculari
a)の各種臓器(分泌物も含む)より得られる物質が特
異的に癌細胞を傷害し正常細胞に作用を及ぼさない事実
を発見し、かつその有効な抽出、精製方法を見出し本発
明を完成させるに至った。
は作用しない生理活性物質を探求する一連の研究中にタ
ツナミ貝(Dolabella auriculari
a)の各種臓器(分泌物も含む)より得られる物質が特
異的に癌細胞を傷害し正常細胞に作用を及ぼさない事実
を発見し、かつその有効な抽出、精製方法を見出し本発
明を完成させるに至った。
本発明の要旨は、タツナミ只の臓器、即ちタツナミ貝の
粘液線、卵白腺、体腔液、葉汁液、1偲等の臓器の1種
又は2種以上から、水、生理食塩水、燐酸緩衝液などの
水性系溶媒を用いて抽出精製して得られる癌細胞傷害活
性を有する抽出物質と、タツナミ貝臓器から前記水性系
溶媒を用いて得られる粗抽出物をゲル濾過剤を充填剤と
するカラムクロマトグラフィーによって分画し、癌細胞
傷害活性を有する画分を分取することを内容とする分離
精製方法とにある。
粘液線、卵白腺、体腔液、葉汁液、1偲等の臓器の1種
又は2種以上から、水、生理食塩水、燐酸緩衝液などの
水性系溶媒を用いて抽出精製して得られる癌細胞傷害活
性を有する抽出物質と、タツナミ貝臓器から前記水性系
溶媒を用いて得られる粗抽出物をゲル濾過剤を充填剤と
するカラムクロマトグラフィーによって分画し、癌細胞
傷害活性を有する画分を分取することを内容とする分離
精製方法とにある。
抽出方法は、好ましくは0〜5℃の低温下で、タツナミ
只の臓器に生理食塩水などの抽出溶媒を加えてホモジナ
イズし、濾過、遠心分離等の操作により固形分を除去す
る。この場合、臓器は、一種類のみを用いたものでも、
肥、体腔液、卵白腺その他の複数の臓器の混合物を用い
て得た抽出物でも、顕著なP!tfa胞への傷害活性を
示す、このようにして得られた抽出物は、更に分子篩型
充填剤を用いたカラムクロマトグラフィーによって複数
の画分に分画し、各画分について癌細胞傷害活性をテス
トして、その活性を有する画分を分取すること、或いは
分取したその活性画分について、同様の分画操作を繰り
返すことによって精製される。
只の臓器に生理食塩水などの抽出溶媒を加えてホモジナ
イズし、濾過、遠心分離等の操作により固形分を除去す
る。この場合、臓器は、一種類のみを用いたものでも、
肥、体腔液、卵白腺その他の複数の臓器の混合物を用い
て得た抽出物でも、顕著なP!tfa胞への傷害活性を
示す、このようにして得られた抽出物は、更に分子篩型
充填剤を用いたカラムクロマトグラフィーによって複数
の画分に分画し、各画分について癌細胞傷害活性をテス
トして、その活性を有する画分を分取すること、或いは
分取したその活性画分について、同様の分画操作を繰り
返すことによって精製される。
かくして得られた本願抽出物は、癌細胞に対して特異的
な傷害作用を有するにも拘らず、正常細胞には、同等傷
害作用を及ぼさず、その上、すでに発見されている癌細
胞傷害性活性を有する生理活性物質、例えばINFが傷
害を及ぼし得なかったA349細胞(lung car
cinoma)や、X−241m胞(bladderc
arcinoma)などの癌細胞にも傷害活性を備えて
おり、従来にない幅広い抗癌スペクトルを有する物質で
ある。特に、本願抽出物中、主として、卵白線及び粘液
線の粗抽出物からゲル濾過剤を用いたカラムクロマトグ
ラフィーによって極めて高純度で分離精製される糖蛋白
質を主体とする画分は、2ng/m1という低濃度でも
有効で、極めて強い癌細胞傷害活性を有している。これ
は、癌細胞膜上に、本願物質に対する特異的受容体が存
在しておリ、本願物質の癌細胞傷害機構は、本願物質が
、この受容体を介して癌細胞のDNA合成、RNA合成
、蛋白質合成を阻害するものと考えられる。
な傷害作用を有するにも拘らず、正常細胞には、同等傷
害作用を及ぼさず、その上、すでに発見されている癌細
胞傷害性活性を有する生理活性物質、例えばINFが傷
害を及ぼし得なかったA349細胞(lung car
cinoma)や、X−241m胞(bladderc
arcinoma)などの癌細胞にも傷害活性を備えて
おり、従来にない幅広い抗癌スペクトルを有する物質で
ある。特に、本願抽出物中、主として、卵白線及び粘液
線の粗抽出物からゲル濾過剤を用いたカラムクロマトグ
ラフィーによって極めて高純度で分離精製される糖蛋白
質を主体とする画分は、2ng/m1という低濃度でも
有効で、極めて強い癌細胞傷害活性を有している。これ
は、癌細胞膜上に、本願物質に対する特異的受容体が存
在しておリ、本願物質の癌細胞傷害機構は、本願物質が
、この受容体を介して癌細胞のDNA合成、RNA合成
、蛋白質合成を阻害するものと考えられる。
本願抽出物は、これを抗腫瘍剤として、後記実施例にお
いて得られる抽出物を、成人−人当り100μg〜30
0mgを、経口又は非経口で投与することにより、その
効果が期待されるものである。
いて得られる抽出物を、成人−人当り100μg〜30
0mgを、経口又は非経口で投与することにより、その
効果が期待されるものである。
本発明をより詳細に説明するため、以下に製造実施例及
び薬理試験例を掲げる。
び薬理試験例を掲げる。
[実施例1コ
タツナミ只の臓器として、(a)体腔液、(b)紫汁液
、(e)誌、(d)粘液腺及び卵白腺の夫々を約Log
ずつとり、水冷下において各々にリン酸緩衝生理食塩水
(PBS(−))30mj2ずっを加え、ブレンダーに
て10分間ホモジネートして抽出する。次に、各懸濁液
を4℃、10.000r、 p、 m、で30分間遠心
分離し、上清釜25m lを目的抽出物として得る。
、(e)誌、(d)粘液腺及び卵白腺の夫々を約Log
ずつとり、水冷下において各々にリン酸緩衝生理食塩水
(PBS(−))30mj2ずっを加え、ブレンダーに
て10分間ホモジネートして抽出する。次に、各懸濁液
を4℃、10.000r、 p、 m、で30分間遠心
分離し、上清釜25m lを目的抽出物として得る。
[試験例1]
殺癌細胞活性の検定
11(rで8I識したマウス乳癌細胞MM46及び正常
細胞としてマウス胸腺細胞各々5X103個に、上記実
施例1において得た各抽出液を、生理食塩水で様々に希
釈して得られた検体各20μpずつを加え、5%牛脂児
血清含有RPM11640培地中、37°C−C12〜
24時間培養後、死滅細胞より遊離した6 1(rの放
射活性を測定し殺癌細胞活性として全細胞が死滅したと
した時の値を100%として夫々の値を2≦で表わした
0図1はその結果を示す。最も高い殺細胞効果を示した
検体はタツナミ貝粘液腺及び卵白腺より得られた検体で
あり、10.000倍に希釈された検体においてもMM
46細胞を100%死滅させている(図−1中、一)。
細胞としてマウス胸腺細胞各々5X103個に、上記実
施例1において得た各抽出液を、生理食塩水で様々に希
釈して得られた検体各20μpずつを加え、5%牛脂児
血清含有RPM11640培地中、37°C−C12〜
24時間培養後、死滅細胞より遊離した6 1(rの放
射活性を測定し殺癌細胞活性として全細胞が死滅したと
した時の値を100%として夫々の値を2≦で表わした
0図1はその結果を示す。最も高い殺細胞効果を示した
検体はタツナミ貝粘液腺及び卵白腺より得られた検体で
あり、10.000倍に希釈された検体においてもMM
46細胞を100%死滅させている(図−1中、一)。
一方この検体は、正常細胞であるマウス胸腺細胞に対し
ては、同一希釈のto、 ooo倍検体で同等殺細胞作
用を示さず、更に高濃度の300倍希釈検体においても
この正常細胞に何等影唇を与えなかった。各種臓器抽出
物の間での作用の強さの順は、卵白線+粘液腺抽出物〉
肥抽出物〉紫汁液抽出物〉体腔液抽出物の順であった。
ては、同一希釈のto、 ooo倍検体で同等殺細胞作
用を示さず、更に高濃度の300倍希釈検体においても
この正常細胞に何等影唇を与えなかった。各種臓器抽出
物の間での作用の強さの順は、卵白線+粘液腺抽出物〉
肥抽出物〉紫汁液抽出物〉体腔液抽出物の順であった。
[実施例2コ
次いでこれらの活性物質を精製し、又は大略の分子量を
求める目的で各抽出液(上清)を5epha−cryl
S−300<1<6 x30cm)(スウx−fン
、 Pharmacia製)又はG−3000SWカラ
ム(0,7φx60cm)(東洋曹達株式会社製)にか
けゲル濾過分間を行ない、得られた各分画について試験
例1に準じて殺癌細胞活性をテストすることにより、各
活性物質の分離精製を行ない、その結果から分子サイズ
を推定した。以下、各臓器に含まれる活性物質の分離精
製の結果を示す。
求める目的で各抽出液(上清)を5epha−cryl
S−300<1<6 x30cm)(スウx−fン
、 Pharmacia製)又はG−3000SWカラ
ム(0,7φx60cm)(東洋曹達株式会社製)にか
けゲル濾過分間を行ない、得られた各分画について試験
例1に準じて殺癌細胞活性をテストすることにより、各
活性物質の分離精製を行ない、その結果から分子サイズ
を推定した。以下、各臓器に含まれる活性物質の分離精
製の結果を示す。
(a)体腔液抽出液中活性物質
体腔液をG−3000SWカラムを用い、高速液体クロ
マトグラフィー(HPLC)にかけた。この時、溶出溶
媒として燐酸を含む生理食塩水(PBS(−))を用い
た。その結果、保持時間約17分のフラクションに殺細
胞活性が見られ、この分子量は約3万〜7万であると推
定された。
マトグラフィー(HPLC)にかけた。この時、溶出溶
媒として燐酸を含む生理食塩水(PBS(−))を用い
た。その結果、保持時間約17分のフラクションに殺細
胞活性が見られ、この分子量は約3万〜7万であると推
定された。
(b)紫汁液抽出液中活性物質
紫汁液を5ephacryl S −300カラムにか
け分離精製した各フラクションの殺細胞活性を調べると
、分子量1万〜6万の間に2つの活性ピークが認められ
た(図−2)。
け分離精製した各フラクションの殺細胞活性を調べると
、分子量1万〜6万の間に2つの活性ピークが認められ
た(図−2)。
(c)け抽出液中活性物質
誌のホモジネートの上清を5ephacryl S −
300カラムにかけ分離精製すると、分子量2万〜5万
に活性のピークが見られた(図−3)。
300カラムにかけ分離精製すると、分子量2万〜5万
に活性のピークが見られた(図−3)。
(d)粘液腺及び卵白腺抽出液中活性物質卵白腺・粘液
腺のホモジネートの上清を5epha−cryl S
−300カラムで分画すると、活性ピークは、分子サイ
ズ約20〜30万付近に認められた(図−4参照)。
腺のホモジネートの上清を5epha−cryl S
−300カラムで分画すると、活性ピークは、分子サイ
ズ約20〜30万付近に認められた(図−4参照)。
[実施例3]
本願抽出物の精製方法を、卵白腺・粘液腺抽出物につい
て、以下にその詳細を示す。
て、以下にその詳細を示す。
卵白腺・粘液腺を合わせて1gとり、これに20m1の
PBS(−)を加えて水冷下で、ポリトロン(商品名K
INE MATICA社製ホモジナイザー)を用いて、
100分間ホモジナイズ、得られたホモジネートを10
.000r、p、m、 、 4℃で30分間遠心分離し
、その上清をとる。この上清を10mM燐酸緩衝液(p
H7,4)に対して透析後、DE−52カラム(Wha
tman社V)に吸若させ、150mM NaC1を含
む10mM燐酸緩衝液(pH7,4)を用いて溶出させ
た。得られた各画分について、前記試験例1の方法に準
じて殺癌細胞活性を検定して活性画分を分取し、これを
分子サイズ1万カツトの限外”濾過により濃縮し5ep
harose 6Bカラム(Pharmacia Fi
ne Chemicals社製)でゲル濾過クロマトグ
ラフィーを行ない、同様に殺癌m胞活性をテストしてそ
の活性分画を得る。活性分画を5ephacryl S
−300にて再度クロマトグラフィーを行ない、同様に
溶出画分の活性をテストして活性画分を分取する。この
活性分画を10mM燐酸緩衝液(pH7,4)に対して
透析後、DE−52カラムに再吸着きぜ、0−200m
M NaC1を含む10mM燐酸緩衝液(pH7,4)
にて連続濃度勾配溶離にかけ、活性物質を溶出させた。
PBS(−)を加えて水冷下で、ポリトロン(商品名K
INE MATICA社製ホモジナイザー)を用いて、
100分間ホモジナイズ、得られたホモジネートを10
.000r、p、m、 、 4℃で30分間遠心分離し
、その上清をとる。この上清を10mM燐酸緩衝液(p
H7,4)に対して透析後、DE−52カラム(Wha
tman社V)に吸若させ、150mM NaC1を含
む10mM燐酸緩衝液(pH7,4)を用いて溶出させ
た。得られた各画分について、前記試験例1の方法に準
じて殺癌細胞活性を検定して活性画分を分取し、これを
分子サイズ1万カツトの限外”濾過により濃縮し5ep
harose 6Bカラム(Pharmacia Fi
ne Chemicals社製)でゲル濾過クロマトグ
ラフィーを行ない、同様に殺癌m胞活性をテストしてそ
の活性分画を得る。活性分画を5ephacryl S
−300にて再度クロマトグラフィーを行ない、同様に
溶出画分の活性をテストして活性画分を分取する。この
活性分画を10mM燐酸緩衝液(pH7,4)に対して
透析後、DE−52カラムに再吸着きぜ、0−200m
M NaC1を含む10mM燐酸緩衝液(pH7,4)
にて連続濃度勾配溶離にかけ、活性物質を溶出させた。
ここで得られた活性分画をG−3000SWカラムのH
PLCにかけ、精製を確認したところ、保持時間12分
台にニービークで蛋白質の波長280nmにおける吸収
と殺癌細胞活性を得た(図−5)。尚、図−5中ED、
。Uは50%殺癌細胞活性を示す希釈倍率を1000で
除した値を示す。又、本精製物はドデシル硫酸ナトリウ
ム−ポリアクリルアミド電気泳動においても単一バンド
を得た。上記から本精製物の分子量は、6〜30万の範
囲にあるものと推定きれた。
PLCにかけ、精製を確認したところ、保持時間12分
台にニービークで蛋白質の波長280nmにおける吸収
と殺癌細胞活性を得た(図−5)。尚、図−5中ED、
。Uは50%殺癌細胞活性を示す希釈倍率を1000で
除した値を示す。又、本精製物はドデシル硫酸ナトリウ
ム−ポリアクリルアミド電気泳動においても単一バンド
を得た。上記から本精製物の分子量は、6〜30万の範
囲にあるものと推定きれた。
本精製物を等電点電気泳動にかけたところp14.5〜
5.0に複数バンドで検出されたく図−7)。複数バン
ドは、本精製物が有する糖鎖(約10%:フェノール硫
酸法により測定)の多相性に由来するものと推定された
。この様にして得られた本精製物(タツナミ只卵白線・
粘液線由来ガン細胞傷害物質)を用いて、下記の試験を
行なった。
5.0に複数バンドで検出されたく図−7)。複数バン
ドは、本精製物が有する糖鎖(約10%:フェノール硫
酸法により測定)の多相性に由来するものと推定された
。この様にして得られた本精製物(タツナミ只卵白線・
粘液線由来ガン細胞傷害物質)を用いて、下記の試験を
行なった。
[試験例2]
本精製物のアミノ酸組成をダブジルクロライドを使った
プレカラムラベル法(J、Y、Chang、 R。
プレカラムラベル法(J、Y、Chang、 R。
Knecht and D、G、Draum:Bioc
hem、J、199.547−555(1981))に
て測定した。結果を下表に示す。数値は分析値を四捨五
入した整数値を表わす。
hem、J、199.547−555(1981))に
て測定した。結果を下表に示す。数値は分析値を四捨五
入した整数値を表わす。
[試験例3]
実施例3により得られた精製物について気相式シーケン
サ−によってEdoman分解を行ない、得られたフェ
ニルチオヒダントイン−アミノ酸をHPLCにより同定
分析しアミノ酸配列を決定した。その結果3ケ所を除い
てアミン末端より下式のとおり同定できた。
サ−によってEdoman分解を行ない、得られたフェ
ニルチオヒダントイン−アミノ酸をHPLCにより同定
分析しアミノ酸配列を決定した。その結果3ケ所を除い
てアミン末端より下式のとおり同定できた。
NHI ()−Lys−5er−Gly−Arg−1
1e−() −14目 Set −Thr −Pro −Gln −Asp −
(Ser) −Asp −Thr −I!
1も 21Glu −Thr −()
−Asp −(Ser) −Asn −(Thr o
rLCu)−Aspll・・・ 図−4 [尚、上式において()は、構造不明箇所で、アミノ酸
若しくは@鎖で修飾されたアミノ酸を、(5er)はS
crである可能性を、又、(Ihr or Leu)は
Thrか又はLeuである可能性が極めて高いことを、
夫々表わす、] [試験例4] 本精製物と同様に殺癌細胞活性を有する生体由来生理活
性物質であるTNF(Genentech社)と各種癌
細胞に対する効果を比−較検討した。標的細胞としてT
−24細胞(bladder carcinoma)、
WiDr細胞(colon carcinoma)、L
S174T(colon carcinoma)、A5
49(lung carcinoma)を用いた。いず
れのM5胞に対しても本願精製物は2ng、7m1以下
の低濃度で1゜0%の殺癌活性を示したが、TNFは5
0ng/m 1以上の’aJfiでも殺癌活性を示さな
かった。代表例としてT−24細胞を用いた実験の結果
を図−6に示した。
1e−() −14目 Set −Thr −Pro −Gln −Asp −
(Ser) −Asp −Thr −I!
1も 21Glu −Thr −()
−Asp −(Ser) −Asn −(Thr o
rLCu)−Aspll・・・ 図−4 [尚、上式において()は、構造不明箇所で、アミノ酸
若しくは@鎖で修飾されたアミノ酸を、(5er)はS
crである可能性を、又、(Ihr or Leu)は
Thrか又はLeuである可能性が極めて高いことを、
夫々表わす、] [試験例4] 本精製物と同様に殺癌細胞活性を有する生体由来生理活
性物質であるTNF(Genentech社)と各種癌
細胞に対する効果を比−較検討した。標的細胞としてT
−24細胞(bladder carcinoma)、
WiDr細胞(colon carcinoma)、L
S174T(colon carcinoma)、A5
49(lung carcinoma)を用いた。いず
れのM5胞に対しても本願精製物は2ng、7m1以下
の低濃度で1゜0%の殺癌活性を示したが、TNFは5
0ng/m 1以上の’aJfiでも殺癌活性を示さな
かった。代表例としてT−24細胞を用いた実験の結果
を図−6に示した。
[試験例5]
癌細胞膜上の本癌m胞傷害活性物質特異的受容体の検索
受容体検索には、エンザイム・リンクド・イムノ・ソル
ベント・アッセイ(ELISA ; Methods
inEnzymology 70 p、419 (19
80>)を応用した。
ベント・アッセイ(ELISA ; Methods
inEnzymology 70 p、419 (19
80>)を応用した。
細胞膜はN、キャビテーション(E、 Feber e
t、 al、 ;Biochem、Biophys−A
cta 266 p、494 (1972))によって
可溶化膜画分を調整した。この可溶化膜画分をポリビニ
ルクロライドのプレートにコートし、その後、タツナミ
貝由来癌細胞傷害活性物質、マウス抗タツナミ貝由来癌
細胞傷害活性物質血清、アルカリホスファターゼ結合、
抗マウスエgG抗体、p−ニトロフェニルホスフェート
の順にプレートを処置してその発色の吸光度を測定する
ことにより、受容体の存在を確認した。
t、 al、 ;Biochem、Biophys−A
cta 266 p、494 (1972))によって
可溶化膜画分を調整した。この可溶化膜画分をポリビニ
ルクロライドのプレートにコートし、その後、タツナミ
貝由来癌細胞傷害活性物質、マウス抗タツナミ貝由来癌
細胞傷害活性物質血清、アルカリホスファターゼ結合、
抗マウスエgG抗体、p−ニトロフェニルホスフェート
の順にプレートを処置してその発色の吸光度を測定する
ことにより、受容体の存在を確認した。
[試験例6コ
癌細胞傷害活性の作用機序の検討
本精製物が、殺癌活性を示す際の機序をDNA合成、R
NA合成、蛋白質合成について検討した。
NA合成、蛋白質合成について検討した。
本精製物は、MM46細胞に対して3H標識したチミジ
ン、ウリジン、Leuの取り込みを950ng/m j
2の濃度で完全に阻害していた事から、DNA合成から
蛋白質合成に至る一連の反応を阻害しているものと結論
した。
ン、ウリジン、Leuの取り込みを950ng/m j
2の濃度で完全に阻害していた事から、DNA合成から
蛋白質合成に至る一連の反応を阻害しているものと結論
した。
図−1は、本願物質の殺癌細胞効果を示すグラフである
。図−2、図−3、゛図−4は夫々、紫汁液抽出物、誌
抽出物及び粘液線+卵白線抽出物のゲル濾過分離におけ
る溶出パターンと殺癌細胞活性との関連を示すグラフで
ある。図−5は、粘液線・卵白線抽出物の精製物のG−
30QO5WカラムによるHPLCのクロマトグラムで
ある0図−6は、実施例3の精製物とINFとの、T−
24細胞に対する殺癌細胞効果を示すグラフである。図
−7は、本願精製物の等電点電気泳動パターンである。
。図−2、図−3、゛図−4は夫々、紫汁液抽出物、誌
抽出物及び粘液線+卵白線抽出物のゲル濾過分離におけ
る溶出パターンと殺癌細胞活性との関連を示すグラフで
ある。図−5は、粘液線・卵白線抽出物の精製物のG−
30QO5WカラムによるHPLCのクロマトグラムで
ある0図−6は、実施例3の精製物とINFとの、T−
24細胞に対する殺癌細胞効果を示すグラフである。図
−7は、本願精製物の等電点電気泳動パターンである。
Claims (6)
- (1)タツナミ貝(Dolabella auricu
laria)の臓器抽出物から成る癌細胞傷害活性物質
。 - (2)臓器抽出物が、タツナミ貝体腔液抽出物であって
、ゲル濾過剤を用いたカラムクロマトグラフィーによる
推定分子量が約3万〜7万の範囲にある特許請求の範囲
第1項記載の癌細胞傷害活性物質。 - (3)臓器抽出物が、タツナミ貝紫汁液及び/又は紫汁
腺の抽出物であって、ゲル濾過剤を用いたカラムクロマ
トグラフィーによる推定分子量が約1万〜6万の範囲に
ある特許請求の範囲第1項記載の癌細胞傷害活性物質。 - (4)臓器抽出物がタツナミ貝腮抽出物であって、ゲル
濾過剤を用いたカラムクロマトグラフィーによる推定分
子量が約2万〜5万の範囲にある特許請求の範囲第1項
に記載の癌細胞傷害活性物質。 - (5)臓器抽出物が、主としてタツナミ貝の卵白腺及び
/又は粘液線の抽出物であって、ゲル濾過剤を用いたカ
ラムクロマトグラフィーによる推定分子量が約6万〜3
0万の範囲にあり、紫外部波長280nm付近に吸収極
大を有し、タツナミ貝卵白線及び/又は粘液線の水、生
理食塩水、各種緩衝液等の水性系溶媒への可溶物質をゲ
ル濾過剤を用いたカラムクロマトグラフィーによって分
画し、癌細胞障害活性の最も強い画分を分取することを
繰り返して得られる物質であって、ポリアクリルアミド
電気泳動によって単一バンドを与え、その組成の一部に
、式: NH_2−(α)−Lys−Ser−Gly−Arg−
Ile−(β)−Scr−Thr−Pro−Gln−A
sp−(γ)−Asp−Thr−Glu−Thr−(δ
)−Asp−(ε)−Asp−(Thr又はLcu)−
[但し式中、α、β、γ、s及びεは、夫々、アミノ酸
若しくは糖鎖で修飾されたアミノ酸を表わす。] で示されるアミノ酸配列を有する糖蛋白質を含有してい
る特許請求の範囲第1項記載の癌細胞傷害活性物質。 - (6)タツナミ貝(Dolabella auricu
laria)の臓器に水、生理食塩水、各種緩衝液等の
水性系溶媒を加えてホモジナイズした後、固形分を除去
して得られる抽出液を、分子篩効果を有するゲル濾過剤
を用いたカラムクロマトグラフィーにかけて分画し、癌
細胞傷害活性を有する画分を分取することを特徴とする
タツナミ貝臓器からの癌細胞傷害活性物質の分離精製方
法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP61-45799 | 1986-03-03 | ||
JP4579986 | 1986-03-03 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6310733A true JPS6310733A (ja) | 1988-01-18 |
Family
ID=12729317
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP62004995A Pending JPS6310733A (ja) | 1986-03-03 | 1987-01-14 | 癌細胞傷害活性物質及びその製法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6310733A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2008136303A (ja) * | 2006-11-28 | 2008-06-12 | Otowa Denki Kogyo Kk | 雷サージ防護装置 |
CN107126941A (zh) * | 2017-06-07 | 2017-09-05 | 中山大学 | 基于金属卟啉微孔聚合物的固相微萃取涂层、制备及应用 |
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1987
- 1987-01-14 JP JP62004995A patent/JPS6310733A/ja active Pending
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2008136303A (ja) * | 2006-11-28 | 2008-06-12 | Otowa Denki Kogyo Kk | 雷サージ防護装置 |
CN107126941A (zh) * | 2017-06-07 | 2017-09-05 | 中山大学 | 基于金属卟啉微孔聚合物的固相微萃取涂层、制备及应用 |
CN107126941B (zh) * | 2017-06-07 | 2019-07-16 | 中山大学 | 基于金属卟啉微孔聚合物的固相微萃取涂层、制备及应用 |
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