JPS6293238A - コロニ−形成刺激因子の製造方法 - Google Patents
コロニ−形成刺激因子の製造方法Info
- Publication number
- JPS6293238A JPS6293238A JP60234335A JP23433585A JPS6293238A JP S6293238 A JPS6293238 A JP S6293238A JP 60234335 A JP60234335 A JP 60234335A JP 23433585 A JP23433585 A JP 23433585A JP S6293238 A JPS6293238 A JP S6293238A
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- JP
- Japan
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- stimulating factor
- cartridge
- solution
- anion
- molecular weight
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07K—PEPTIDES
- C07K9/00—Peptides having up to 20 amino acids, containing saccharide radicals and having a fully defined sequence; Derivatives thereof
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- Organic Chemistry (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Biophysics (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Separation Using Semi-Permeable Membranes (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
本発明はヒト尿由来コロニー形成刺激因子(以下、C5
Fという)含有液から高純度がっ高収率でC3Fを回収
する方法に関する。
Fという)含有液から高純度がっ高収率でC3Fを回収
する方法に関する。
C従来技術〕
C3Fは、ヒト尿中に極めて微量に存在する生理活性物
質で、骨髄中前駆細胞に作用して白血球構成細胞である
ところの顆粒球および単球−マクロファージの分化、増
殖を促進する糖蛋白であり、白血球減少症治療剤として
の薬効が期待されている。
質で、骨髄中前駆細胞に作用して白血球構成細胞である
ところの顆粒球および単球−マクロファージの分化、増
殖を促進する糖蛋白であり、白血球減少症治療剤として
の薬効が期待されている。
C3Fの精製方法としては、吸着体を用いる方法、陰イ
オン交換体を用いる方法、限外濾過膜を用いる方法など
がある。
オン交換体を用いる方法、限外濾過膜を用いる方法など
がある。
C発明が解決しようとする問題点〕
ところで、ヒト尿中にはC5Fがごく微量にしか含まれ
ていないので、効率よ<C5Fを分離、濃縮、精製する
ことが困難である。たとえば、従来から繁用されている
珪酸塩、珪藻土などの鉱物を尿自体に接触させてC5F
を吸着、溶出する方法、fffi々の陰イオン交換クロ
マトグラフィーによって回収する方法においては操作性
が繁雑であり、一度に処理できる尿も限られているため
、i[を成分であるC3Fを多量に回収するにはコスト
高になるという欠点がある。
ていないので、効率よ<C5Fを分離、濃縮、精製する
ことが困難である。たとえば、従来から繁用されている
珪酸塩、珪藻土などの鉱物を尿自体に接触させてC5F
を吸着、溶出する方法、fffi々の陰イオン交換クロ
マトグラフィーによって回収する方法においては操作性
が繁雑であり、一度に処理できる尿も限られているため
、i[を成分であるC3Fを多量に回収するにはコスト
高になるという欠点がある。
すなわち、例えば種々の陰イオン交換体によるクロマト
グラフィーにおいて、カラム法におけるカラムへの吸着
剤の充填やハツチ法における濾過または遠心等による吸
着剤の回収など操作性が繁雑となり、工業的規模におい
て効率よ<C3Fを得る方法としては不利な面がある。
グラフィーにおいて、カラム法におけるカラムへの吸着
剤の充填やハツチ法における濾過または遠心等による吸
着剤の回収など操作性が繁雑となり、工業的規模におい
て効率よ<C3Fを得る方法としては不利な面がある。
また、尿中には多量の不純物が存在するが、従来法では
、これらがC5Fと共に回収されやすいため、後の精製
において不利な面があった。
、これらがC5Fと共に回収されやすいため、後の精製
において不利な面があった。
従って、本発明は尿などのC3Fを微量にしか含有せず
、かつ多量の不純物をも含む溶液から高収率、高純度、
低コストで、しかも簡単な操作でC3Fを回収、製造す
る方法を提供することを目的とするものである。
、かつ多量の不純物をも含む溶液から高収率、高純度、
低コストで、しかも簡単な操作でC3Fを回収、製造す
る方法を提供することを目的とするものである。
本発明の目的は、ヒト尿由来コロニー形成刺激因子を含
有する溶液に対して、セルロースを母体としたソート状
素材を渦巻状に巻いた構造物でカートリッジ形式とした
陰イオン交換体を用いて処理することを特徴とする、ヒ
ト尿由来コロニー形成刺激因子の精製方法によって達成
される。
有する溶液に対して、セルロースを母体としたソート状
素材を渦巻状に巻いた構造物でカートリッジ形式とした
陰イオン交換体を用いて処理することを特徴とする、ヒ
ト尿由来コロニー形成刺激因子の精製方法によって達成
される。
本発明にて使用されるC3Fを含有する溶液は、C3F
の水溶液であれば特に限定されることはなく、たとえば
尿などのようにC3Fの含量が微量で、かつ、多量の不
純物を含むものであってもよい。
の水溶液であれば特に限定されることはなく、たとえば
尿などのようにC3Fの含量が微量で、かつ、多量の不
純物を含むものであってもよい。
陰イオン交換体としては、たとえばDEAE−セファデ
ックス、QAE−セファデックス、DEAE−セルロー
ス、QAE−セルロース、DEAE−セファロース、D
EAE−セファセル、スルフェロシル−DEAなどがあ
げられるが、好適には陰イオン交換基を存するセルロー
スを母体としたシート状素材を渦巻状に巻いた構造物で
カートリッジ形式としたものが有fりである。
ックス、QAE−セファデックス、DEAE−セルロー
ス、QAE−セルロース、DEAE−セファロース、D
EAE−セファセル、スルフェロシル−DEAなどがあ
げられるが、好適には陰イオン交換基を存するセルロー
スを母体としたシート状素材を渦巻状に巻いた構造物で
カートリッジ形式としたものが有fりである。
当該構造物は、通常担体(たとえば、セルロース)をビ
ニルポリマーで架橋し、これにイオン交換基として、Q
AE−基、DEAE−基等を導入したもの(イオン交換
マトリックス、第1図参照)を渦巻状としたものである
。その好ましい一態様は第2図に示した通りであり、第
2図においてlはイオン交10マトリックスを、2は水
透過性支持体を示す。当該支持体は、たとえば格子状、
織物状であることが好ましく、その材料としては、たと
えばポリスチレン、ナイロン、ポリカーボネートポリア
セクール、テフロン、ステンレス等が用いられる。
ニルポリマーで架橋し、これにイオン交換基として、Q
AE−基、DEAE−基等を導入したもの(イオン交換
マトリックス、第1図参照)を渦巻状としたものである
。その好ましい一態様は第2図に示した通りであり、第
2図においてlはイオン交10マトリックスを、2は水
透過性支持体を示す。当該支持体は、たとえば格子状、
織物状であることが好ましく、その材料としては、たと
えばポリスチレン、ナイロン、ポリカーボネートポリア
セクール、テフロン、ステンレス等が用いられる。
第3図は、当該構造物を使用する精製方法の一実施例の
断面図であり、入口3から入ったC3F液は、外周から
内側へ向かい中央のコア4に集められ、出口5より出る
。矢印はC3Fi’&の流れを示すものである。6はヘ
ントを、7はドレインを示す。第4図は横断面図であり
、外周から入ったC3F液がコアに集められている状態
を示すものである。
断面図であり、入口3から入ったC3F液は、外周から
内側へ向かい中央のコア4に集められ、出口5より出る
。矢印はC3Fi’&の流れを示すものである。6はヘ
ントを、7はドレインを示す。第4図は横断面図であり
、外周から入ったC3F液がコアに集められている状態
を示すものである。
これを使用する条件としては、たとえばC3F含有iW
?(1,をpl+5〜7、電導度20 mS/ cm
(25℃)以下でカートリッジに通してC,S Fを
吸着させるのが好ましく、この条件でC5Fは吸着され
、大部分の不純物は吸着されずにそのまま1JTl過す
る。
?(1,をpl+5〜7、電導度20 mS/ cm
(25℃)以下でカートリッジに通してC,S Fを
吸着させるのが好ましく、この条件でC5Fは吸着され
、大部分の不純物は吸着されずにそのまま1JTl過す
る。
次いで、pH5〜7の希薄塩溶液〔例えば、電導度20
sS/cs (25℃)以下のリン酸緩衝液〕で洗浄す
る。この洗浄操作によりさらに不純物は除かれるが、C
3Fは吸着されたまま残る。
sS/cs (25℃)以下のリン酸緩衝液〕で洗浄す
る。この洗浄操作によりさらに不純物は除かれるが、C
3Fは吸着されたまま残る。
吸着しているC3Fを溶出させるには、pH5〜9の製
塩溶液〔例えば、電導度30mS/a++ (25℃)
以上のリン酸緩衝液、食塩78液〕を通しることによっ
て容易に行うことができる。
塩溶液〔例えば、電導度30mS/a++ (25℃)
以上のリン酸緩衝液、食塩78液〕を通しることによっ
て容易に行うことができる。
本発明においては、さらに限外a過膜による処理を組合
わせることが好ましい。この限外濾過膜による処理は前
記陰イオン交換体による処理の前に行われる。
わせることが好ましい。この限外濾過膜による処理は前
記陰イオン交換体による処理の前に行われる。
限外濾過膜としては、C3Fより低分子物質を除去する
もの(即ち、低分子側分子量分画用)とC3Fより高分
子物質を除去するもの(即ち、高分子側分子量分画用)
の一方または双方を用いればよく、低分子側分子量分画
用としては、通常lX104〜4X104ダルトンの限
外濾過膜が、また高分子側分子量分画用としては、通常
、105〜106ダルトンの限外濾過膜が使用される。
もの(即ち、低分子側分子量分画用)とC3Fより高分
子物質を除去するもの(即ち、高分子側分子量分画用)
の一方または双方を用いればよく、低分子側分子量分画
用としては、通常lX104〜4X104ダルトンの限
外濾過膜が、また高分子側分子量分画用としては、通常
、105〜106ダルトンの限外濾過膜が使用される。
限外濾過膜としては、ポリアクリロニトリル系限外濾過
膜、ポリスルホン系限外濾過膜などがあげられる。
膜、ポリスルホン系限外濾過膜などがあげられる。
C3F含有溶液を限外濾過膜に通じる際の条件は、一般
に次の通りである: 処理溶液のpl(:5〜8 操作圧 =1〜5kg/cd 本発明に関する限外濾過膜による処理はC3Fの回収、
製造の任意の工程にて行えばよいが、まず低分子側分子
量分画用の濾過膜による処理を行い、後に高分子側分子
量分画用の濾過膜による処理を行うことが好ましい。
に次の通りである: 処理溶液のpl(:5〜8 操作圧 =1〜5kg/cd 本発明に関する限外濾過膜による処理はC3Fの回収、
製造の任意の工程にて行えばよいが、まず低分子側分子
量分画用の濾過膜による処理を行い、後に高分子側分子
量分画用の濾過膜による処理を行うことが好ましい。
かくして回収されたC5Fは、好ましくはさらに自体既
知の高度精製手段(例えば、アフィニティークロマトグ
ラフィー、ゲル濾過など)、加熱(例えば、50〜80
℃、1〜lOO時間)滅菌処理などに付した後、凍結乾
燥することによって医療用C3F製剤とすることができ
る。もちろん凍結乾燥することなく、既知の手段にて単
離、精製することができる。
知の高度精製手段(例えば、アフィニティークロマトグ
ラフィー、ゲル濾過など)、加熱(例えば、50〜80
℃、1〜lOO時間)滅菌処理などに付した後、凍結乾
燥することによって医療用C3F製剤とすることができ
る。もちろん凍結乾燥することなく、既知の手段にて単
離、精製することができる。
C発明の効果〕
本発明によりC3Fを高純度かつ高収率で回収すること
ができる。しかも、比活性が高く、発熱性物質を除去し
たC3Fを得ることができる。また、従来法に比べて容
易に、かつ、効率的に優れた操作性、経済性を有してい
る。
ができる。しかも、比活性が高く、発熱性物質を除去し
たC3Fを得ることができる。また、従来法に比べて容
易に、かつ、効率的に優れた操作性、経済性を有してい
る。
本発明をより詳しく説明するために以下に実施例を挙げ
るが、本発明は、これらによって何等限定されるもので
はない。
るが、本発明は、これらによって何等限定されるもので
はない。
実施例1
新鮮尿5(lをポリアクリロニトリル系限外濾過膜(分
画分子量20,000カツト)を用いて、低分子側不純
物を除去するとともに、l/まで濃縮した。
画分子量20,000カツト)を用いて、低分子側不純
物を除去するとともに、l/まで濃縮した。
次にこの71)縮液を、予め0.05 M−リン酸緩衝
液(pH6,5) (電導度8.5mS/口(25℃
)に相当〕で平衡化したAMF社製Zetaprep
Q A E −カートリッジR250に通じ、C5Fを
吸着させる。
液(pH6,5) (電導度8.5mS/口(25℃
)に相当〕で平衡化したAMF社製Zetaprep
Q A E −カートリッジR250に通じ、C5Fを
吸着させる。
次いで、このQAE−カートリッジを0.05M−リン
酸緩衝液(pH6,5)で十分洗浄した後、1.0M−
NaCA含有0.05M−リン酸緩衝液(pH6,5)
〔電導度5tmS/an (25℃)に相当〕で溶出さ
せ、C3Fを含む溶出液を得た。またこれとは別に、比
較対照として、新鮮尿50I2を4倍希釈した後、0.
05M−リン酸緩衝液(pH6,5)で平衡化させたD
EAE−セルロース100gを添加し、1時間攪拌吸着
させ、前記と同様に洗浄、溶出を行い、C3Fを含む溶
出液を得た。
酸緩衝液(pH6,5)で十分洗浄した後、1.0M−
NaCA含有0.05M−リン酸緩衝液(pH6,5)
〔電導度5tmS/an (25℃)に相当〕で溶出さ
せ、C3Fを含む溶出液を得た。またこれとは別に、比
較対照として、新鮮尿50I2を4倍希釈した後、0.
05M−リン酸緩衝液(pH6,5)で平衡化させたD
EAE−セルロース100gを添加し、1時間攪拌吸着
させ、前記と同様に洗浄、溶出を行い、C3Fを含む溶
出液を得た。
これらの溶出液について、それぞれC3F活性を測定し
、比活性および回収率を求め、表1−1および表1−2
に示した。
、比活性および回収率を求め、表1−1および表1−2
に示した。
なお、C3F活性は、C57BL/6Nマウス骨髄細胞
を用いる単層寒天平板法によるコロニー形成法で測定し
た。すなわち、試料を2%(V/V)生血清を含有する
蒸留水で適宜希釈して、除菌濾過(0,45μメンブレ
ンフイルター)した後、3枚のシャーレへ0.1ml宛
分注し、これに0.3%(W/W)寒天、20%(V/
V)牛胎児血清およびC57BL/6Nマウス骨髄細胞
10個を含有するMcCoy’ s 5 A培地1ml
を加えて十分混和した後、37℃、7.5%(V/V)
炭酸ガス通気下のふらん器で7日間培養した。墳養後、
顕微鏡視野下で50個以上の細胞からなる集塊をコロニ
ーとして、形成されたコロニー数を計測し、形成された
コロニー数(単位)でC3F活性を表わした。
を用いる単層寒天平板法によるコロニー形成法で測定し
た。すなわち、試料を2%(V/V)生血清を含有する
蒸留水で適宜希釈して、除菌濾過(0,45μメンブレ
ンフイルター)した後、3枚のシャーレへ0.1ml宛
分注し、これに0.3%(W/W)寒天、20%(V/
V)牛胎児血清およびC57BL/6Nマウス骨髄細胞
10個を含有するMcCoy’ s 5 A培地1ml
を加えて十分混和した後、37℃、7.5%(V/V)
炭酸ガス通気下のふらん器で7日間培養した。墳養後、
顕微鏡視野下で50個以上の細胞からなる集塊をコロニ
ーとして、形成されたコロニー数を計測し、形成された
コロニー数(単位)でC3F活性を表わした。
すなわち、C5F活性、1単位はl形成コロニーとした
。
。
表1−1および表1−2に示すように、本発明法は従来
法に比べ、回収率は同程度であるが、比活性(純度)は
限外濾過膜による精製を導入し、不純物をあらかじめ除
去したことにより十数倍上昇した。
法に比べ、回収率は同程度であるが、比活性(純度)は
限外濾過膜による精製を導入し、不純物をあらかじめ除
去したことにより十数倍上昇した。
また、従来法が吸着時、希釈による電導度調整のために
液量が増加するのに反して、本発明法は前処理として限
外濾過膜による精製を導入したことにより、液量が少量
化されるとともに電導度調整も簡単に行え、後の陰イオ
ン交換体による処理も操作性が向上し、作業効率も改善
することができた。また、カートリッジ形式のものを導
入することで、さらに陰イオン交換体によるクロマトグ
ラフィ一時の作業性をアンプすることができた。
液量が増加するのに反して、本発明法は前処理として限
外濾過膜による精製を導入したことにより、液量が少量
化されるとともに電導度調整も簡単に行え、後の陰イオ
ン交換体による処理も操作性が向上し、作業効率も改善
することができた。また、カートリッジ形式のものを導
入することで、さらに陰イオン交換体によるクロマトグ
ラフィ一時の作業性をアンプすることができた。
表1−1=本発明
(以下余白)
表1−2;従来法
実施例2
C3F含有溶液4.OOO+n+を、ポリスルホン系限
外濾過膜(分画分子量1,000,000カツト)の平
膜状のものを用い、膜による分離を行った。′/8液4
.000 mlを循環濾過するのに要した時間は30分
であった。
外濾過膜(分画分子量1,000,000カツト)の平
膜状のものを用い、膜による分離を行った。′/8液4
.000 mlを循環濾過するのに要した時間は30分
であった。
その後、実施例1と同様にしてQAE−カート’J 7
ジによるイオン交換クロマトグラフィーを行つた・ 濾過前液、IIt過後液、QAE−カートリッジ溶出液
について、実施例1の方法にてC3F活性を測定し、比
活性、比活性、回収率を求めた。さらに第9改正日本薬
局方に従って、ウサギによる発熱性物質除去効果を測定
した。これらの測定結果は表2に示した。
ジによるイオン交換クロマトグラフィーを行つた・ 濾過前液、IIt過後液、QAE−カートリッジ溶出液
について、実施例1の方法にてC3F活性を測定し、比
活性、比活性、回収率を求めた。さらに第9改正日本薬
局方に従って、ウサギによる発熱性物質除去効果を測定
した。これらの測定結果は表2に示した。
表2に示すように高回収率でC5Fが回収でき、比活性
(純度)も上昇した。また、C5Fに関しては、限外濾
過膜によって阻害物質が除去でき、活性が上昇した。
(純度)も上昇した。また、C5Fに関しては、限外濾
過膜によって阻害物質が除去でき、活性が上昇した。
さらに、発熱性物質の除去においても顕著な効果があっ
たや (以下余白) 表2
たや (以下余白) 表2
第1図は、陰イオン交IA基を有するシート状素材を渦
巻状に巻いた構造物の概略図を、第2図は当該構造物の
横断面図を、第3図はシート状素材を渦巻状に巻いた態
様の陰イオン交換体の一実施例の垂直断面図であり、第
4図はその横断面図である。 C・・担体 P・・ビニルポリマー Q・・QAE−またはDEAE基 ■・・イオン交換マトリックス
巻状に巻いた構造物の概略図を、第2図は当該構造物の
横断面図を、第3図はシート状素材を渦巻状に巻いた態
様の陰イオン交換体の一実施例の垂直断面図であり、第
4図はその横断面図である。 C・・担体 P・・ビニルポリマー Q・・QAE−またはDEAE基 ■・・イオン交換マトリックス
Claims (2)
- (1)ヒト尿由来コロニー形成刺激因子を含有する溶液
に対して、セルロースを母体としたシート状素材を渦巻
状に巻いた構造物でカートリッジ形式とした陰イオン交
換体を用いて処理することを特徴とする、ヒト尿由来コ
ロニー形成刺激因子の精製方法。 - (2)さらに該コロニー形成刺激因子より低分子物質お
よび高分子物質の少なくとも一方を排除できる限外濾過
膜による処理を組合わせた特許請求の範囲第(1)項記
載のヒト尿由来コロニー形成刺激因子の精製方法。
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP60234335A JPS6293238A (ja) | 1985-10-18 | 1985-10-18 | コロニ−形成刺激因子の製造方法 |
KR1019860008679A KR930008097B1 (ko) | 1985-10-18 | 1986-10-16 | 콜로니 형성 자극 인자의 정제방법 |
CN198686107102A CN86107102A (zh) | 1985-10-18 | 1986-10-17 | 集落形成刺激因子的制造方法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP60234335A JPS6293238A (ja) | 1985-10-18 | 1985-10-18 | コロニ−形成刺激因子の製造方法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS6293238A true JPS6293238A (ja) | 1987-04-28 |
JPH0535160B2 JPH0535160B2 (ja) | 1993-05-25 |
Family
ID=16969380
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP60234335A Granted JPS6293238A (ja) | 1985-10-18 | 1985-10-18 | コロニ−形成刺激因子の製造方法 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS6293238A (ja) |
KR (1) | KR930008097B1 (ja) |
CN (1) | CN86107102A (ja) |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1083488C (zh) * | 1996-06-05 | 2002-04-24 | 杭州九源基因工程有限公司 | 一种重组人粒细胞集落刺激因子的生产方法 |
-
1985
- 1985-10-18 JP JP60234335A patent/JPS6293238A/ja active Granted
-
1986
- 1986-10-16 KR KR1019860008679A patent/KR930008097B1/ko not_active IP Right Cessation
- 1986-10-17 CN CN198686107102A patent/CN86107102A/zh active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
KR930008097B1 (ko) | 1993-08-25 |
KR870004055A (ko) | 1987-05-07 |
CN86107102A (zh) | 1987-08-12 |
JPH0535160B2 (ja) | 1993-05-25 |
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