JPS6210155B2 - - Google Patents
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- JPS6210155B2 JPS6210155B2 JP20836582A JP20836582A JPS6210155B2 JP S6210155 B2 JPS6210155 B2 JP S6210155B2 JP 20836582 A JP20836582 A JP 20836582A JP 20836582 A JP20836582 A JP 20836582A JP S6210155 B2 JPS6210155 B2 JP S6210155B2
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Landscapes
- Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
- Investigating Or Analyzing Materials By The Use Of Electric Means (AREA)
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は微生物の増殖を検定する装置に関し、
とくに微生物増殖時における培地の導電率の時間
的変化を測定することによつて、短時間に微生物
を検定する装置に関する。
とくに微生物増殖時における培地の導電率の時間
的変化を測定することによつて、短時間に微生物
を検定する装置に関する。
微生物の存否、同定および存在範囲の決定は、
生物学、医学、食品、土壌、廃液などの多くの分
野における分析、判断、処理にとつて極めて重要
である。食品の品質管理、廃液処理、医療、医薬
品製造などは、すべて存在する微生物の質的およ
び量的決定によつて左右される。従来このため
に、もとのサンプルを各種の培地中で充分に生長
させることにより、はつきりしたコロニー群を作
り、これを視覚的に測定する必要があつたので、
長時間を要した。微生物のサンプルが測定や同定
に充分なように正長するには、何日もかかるのが
常であり、数週間かかることもある。従来法は、
このように遅く、費用と時間がかかる。また視覚
的には、割合に大きい増殖面が必要であり、計数
装置を用いて多くの培地を処理すると、非常に手
数がかかる。しかし、もつとも重量なことは、医
療の場合、長時間かかるために、問題の微生物を
正しく同定しないで治療を始めなければならない
ことである。病状が悪化すると、効果の有無を見
きわめずに、抗生物質のような不適当な医薬が投
与されることもある。つまり従来の実験的方法に
よつて、正確に短時間に同定することが困難であ
つた。
生物学、医学、食品、土壌、廃液などの多くの分
野における分析、判断、処理にとつて極めて重要
である。食品の品質管理、廃液処理、医療、医薬
品製造などは、すべて存在する微生物の質的およ
び量的決定によつて左右される。従来このため
に、もとのサンプルを各種の培地中で充分に生長
させることにより、はつきりしたコロニー群を作
り、これを視覚的に測定する必要があつたので、
長時間を要した。微生物のサンプルが測定や同定
に充分なように正長するには、何日もかかるのが
常であり、数週間かかることもある。従来法は、
このように遅く、費用と時間がかかる。また視覚
的には、割合に大きい増殖面が必要であり、計数
装置を用いて多くの培地を処理すると、非常に手
数がかかる。しかし、もつとも重量なことは、医
療の場合、長時間かかるために、問題の微生物を
正しく同定しないで治療を始めなければならない
ことである。病状が悪化すると、効果の有無を見
きわめずに、抗生物質のような不適当な医薬が投
与されることもある。つまり従来の実験的方法に
よつて、正確に短時間に同定することが困難であ
つた。
本発明による装置により、培地に微生物を植え
てから数時間以内に増殖を検定することができ、
しかも微生物の種類、抗生物質の効果およびサン
プルの濃度を、初めてから数時間以内に検定する
ことができる。微生物の検知、同定および特徴づ
けが可能であり、その上、極少量の培地と簡単な
扱いやすい装置とで行なうことができる。さら
に、多数のサンプルを測定し固定するのに必要な
場所を、従来方法よりも非常に小さくできる。
てから数時間以内に増殖を検定することができ、
しかも微生物の種類、抗生物質の効果およびサン
プルの濃度を、初めてから数時間以内に検定する
ことができる。微生物の検知、同定および特徴づ
けが可能であり、その上、極少量の培地と簡単な
扱いやすい装置とで行なうことができる。さら
に、多数のサンプルを測定し固定するのに必要な
場所を、従来方法よりも非常に小さくできる。
本発明により、密封された滅菌培地を有する培
養室(セル)が供給され、その中にたとえば接種
によつて微生物を含む液体を入れ、培養時の培地
の導電率を測定する。導電率の変化を経時的に記
録し、類似のセルに公知の微生物を植えたときの
既知の記録と比較する。後者の微生物濃度に対す
る導電率の変化はわかつているので、未知の微生
物の増殖率や濃度を検定することができる。また
各種の増殖防止剤を加えたセルの培地に、未知微
生物を植え、導電率の変化の有無や状態を調査す
ることにより、未知微生物の種類と抗生物質に対
する耐性を決定することができる。この種の質的
および量的決定の方法は、後に詳しく述べる。
養室(セル)が供給され、その中にたとえば接種
によつて微生物を含む液体を入れ、培養時の培地
の導電率を測定する。導電率の変化を経時的に記
録し、類似のセルに公知の微生物を植えたときの
既知の記録と比較する。後者の微生物濃度に対す
る導電率の変化はわかつているので、未知の微生
物の増殖率や濃度を検定することができる。また
各種の増殖防止剤を加えたセルの培地に、未知微
生物を植え、導電率の変化の有無や状態を調査す
ることにより、未知微生物の種類と抗生物質に対
する耐性を決定することができる。この種の質的
および量的決定の方法は、後に詳しく述べる。
従つて本発明の第1の目的は、従来方法の数分
の一の時間で、未知の微生物を同定する装置を供
することにある。本発明の第2の目的は、従来方
法では数日ないし数週間かかつた微生物の種類と
量との決定を、数時間以内にする装置を供するこ
とにある。本発明の第3の目的は、所要の多数の
培地に微生物を供給した後、微生物の増殖によつ
て生じる培地の導電率の変化を検定する装置を供
することにある。本発明の第4の目的は、微生物
を培養する場所として使用できる独特の培養室
(セル)と、このセル中の培地の導電率の変化を
測定する手段を供することにある。
の一の時間で、未知の微生物を同定する装置を供
することにある。本発明の第2の目的は、従来方
法では数日ないし数週間かかつた微生物の種類と
量との決定を、数時間以内にする装置を供するこ
とにある。本発明の第3の目的は、所要の多数の
培地に微生物を供給した後、微生物の増殖によつ
て生じる培地の導電率の変化を検定する装置を供
することにある。本発明の第4の目的は、微生物
を培養する場所として使用できる独特の培養室
(セル)と、このセル中の培地の導電率の変化を
測定する手段を供することにある。
本発明は微生物の増殖を検定する装置に関す
る。その際、検定されるべき微生物で汚染された
試料と微生物学的培地に接種し、これを培養す
る。この装置により、培地の最初の導電率を測定
し、その時間的変化を測定し、物質交代作用によ
つて微生物から培地中に排出された産物によつて
生じる培地の導電率の変化を観察し、これによつ
て微生物の増殖を検定する。
る。その際、検定されるべき微生物で汚染された
試料と微生物学的培地に接種し、これを培養す
る。この装置により、培地の最初の導電率を測定
し、その時間的変化を測定し、物質交代作用によ
つて微生物から培地中に排出された産物によつて
生じる培地の導電率の変化を観察し、これによつ
て微生物の増殖を検定する。
本発明により、培地の導電率を測定するため
に、零位法による交流ブリツジを使用する。この
ブリツジは増殖用培地と同じ組成を有する汚染さ
れない培地を基準腕として用いている。この場
合、導電率測定のために、各種の複数のセルを用
いてもよい。個々のセルには、未知微生物の増殖
用培地(以下増殖培地という)と、これに対応す
る基準培地とがそれぞれ入れられる。すべての増
殖培地に検定されるべき微生物で汚染された試料
を接種し、これらの増殖培地の導電率の経時変化
をグラフとして記録する。そして得られたグラフ
を、同種の培地で公知の微生物を培養して得られ
たグラフの既知のデータと比較し、これによつ
て、未知微生物を質的、量的に検定する。
に、零位法による交流ブリツジを使用する。この
ブリツジは増殖用培地と同じ組成を有する汚染さ
れない培地を基準腕として用いている。この場
合、導電率測定のために、各種の複数のセルを用
いてもよい。個々のセルには、未知微生物の増殖
用培地(以下増殖培地という)と、これに対応す
る基準培地とがそれぞれ入れられる。すべての増
殖培地に検定されるべき微生物で汚染された試料
を接種し、これらの増殖培地の導電率の経時変化
をグラフとして記録する。そして得られたグラフ
を、同種の培地で公知の微生物を培養して得られ
たグラフの既知のデータと比較し、これによつ
て、未知微生物を質的、量的に検定する。
本発明により、微生物の増殖を検定するために
使用される培養室(セル)中で微生物を培養し、
微生物の増殖によつて得られた培地の導電率の変
化を測定し、微生物を検定する。本発明による培
養室(セル)は、滅菌できる電気的不導体からな
る容器、この容器に固定されかつ中応に開口を有
する上板またはカバー、この開口を封じるための
弾性材料からなる栓、容器内に互いに離れて設け
られた電導性の1対の電極、電極を外部に接続す
るために、電極から容器を通つて外に伸びかつ封
じられたリード線からなることを特徴とする。
使用される培養室(セル)中で微生物を培養し、
微生物の増殖によつて得られた培地の導電率の変
化を測定し、微生物を検定する。本発明による培
養室(セル)は、滅菌できる電気的不導体からな
る容器、この容器に固定されかつ中応に開口を有
する上板またはカバー、この開口を封じるための
弾性材料からなる栓、容器内に互いに離れて設け
られた電導性の1対の電極、電極を外部に接続す
るために、電極から容器を通つて外に伸びかつ封
じられたリード線からなることを特徴とする。
本発明により、セルの容器の少なくとも一部に
未知微生物を含む培地を入れ、たとえばステンレ
ス鋼からなる電極と電源とを接続する。
未知微生物を含む培地を入れ、たとえばステンレ
ス鋼からなる電極と電源とを接続する。
本発明により、未知微生物を接種した特定の培
地を有するセルの導電率を測定することにより、
微生物の増殖を短時間に検定することができる。
培地を適当に選べば、任意のサンプルにおけるバ
クテリアなどの微生物の有無、種類、抗生物質耐
性の検知や定量をすることができる。また導電率
測定のときに複数のセルを用いると、異種の微生
物を検定することもできる。
地を有するセルの導電率を測定することにより、
微生物の増殖を短時間に検定することができる。
培地を適当に選べば、任意のサンプルにおけるバ
クテリアなどの微生物の有無、種類、抗生物質耐
性の検知や定量をすることができる。また導電率
測定のときに複数のセルを用いると、異種の微生
物を検定することもできる。
本発明によるセルを改良して、次のように構成
することができる。これによつて、プリント配線
を応用して安価に容易に大量生産することがで
き、しかも得られる検定の結果は良好である。こ
の場合、セルは透水性のない電気的不導体からな
る板状のベース、このベースにプリントされた第
1電極、第1電極に接続されたリード線、非透水
性の電気的不導体からなる板状のベースカバー、
第1電極と一致するようにカバーにプリントされ
た第2電極、ベースとカバーとの間に挿入された
非透水性の電気的不導体からなるスペーサー、お
よび第1、第2電極に接するようにセルに入れら
れた半液体状の培地および第1、第2電極からの
リード線からなり、その際スペーサーは第1、第
2電極と同じ外延をもつ窓を有し、これによつて
窓と電極の間のセルを限定する。
することができる。これによつて、プリント配線
を応用して安価に容易に大量生産することがで
き、しかも得られる検定の結果は良好である。こ
の場合、セルは透水性のない電気的不導体からな
る板状のベース、このベースにプリントされた第
1電極、第1電極に接続されたリード線、非透水
性の電気的不導体からなる板状のベースカバー、
第1電極と一致するようにカバーにプリントされ
た第2電極、ベースとカバーとの間に挿入された
非透水性の電気的不導体からなるスペーサー、お
よび第1、第2電極に接するようにセルに入れら
れた半液体状の培地および第1、第2電極からの
リード線からなり、その際スペーサーは第1、第
2電極と同じ外延をもつ窓を有し、これによつて
窓と電極の間のセルを限定する。
一つのベース板と一つのカバー板の間に多数の
セルを設けることもできる。またベース板やカバ
ー板をプラスチツク板で構成することもできる。
セルを設けることもできる。またベース板やカバ
ー板をプラスチツク板で構成することもできる。
本発明は次の知見に基いている。すべての生物
は、増殖するために栄養分を取り、廃物を排出す
る。この作用は物質交代とよばれる。これについ
ては、微生物も他の生物と変りがなく、特定の栄
養分を消化し、特定の廃物を排出する。通常の栄
養分は、蛋白質、炭水化物、アミノ酸、脂肪など
の、むしろ複雑な有機物であるが、排出物は概し
てかなり簡単な物質で、その多くは導電性のイオ
ン化された物質を含んでいる。これらのイオン性
廃物が培地に排出されると、その導電率は変化す
るであろう。つまり培地の導電率は、培地中の微
生物の増殖から生じるイオン化された廃物の培地
への排出によつて変化する。イオン化された排出
物の量は、微生物の増殖率と、そのときの物質交
代作用と直接に依存する。そして、特定の微生物
に関しては、増殖が盛んであればそれだけイオン
化された排出物も盛んに増加し、これによつて培
地の導電率もそれだけ増大または加速される。イ
オン化された排出物の量と導電率の相対的な差と
は各種の微生物にとつて特有であるから、同じ増
殖率をもつ別の微生物によつて、培地に排出され
る廃物のイオン濃度も導電率も異なる。つまり培
地中で増殖する微生物は、その増殖率とこの種類
に特有の排出物としてのイオン化された混合物の
性質とによつて、培地の導電率を変化させる。
は、増殖するために栄養分を取り、廃物を排出す
る。この作用は物質交代とよばれる。これについ
ては、微生物も他の生物と変りがなく、特定の栄
養分を消化し、特定の廃物を排出する。通常の栄
養分は、蛋白質、炭水化物、アミノ酸、脂肪など
の、むしろ複雑な有機物であるが、排出物は概し
てかなり簡単な物質で、その多くは導電性のイオ
ン化された物質を含んでいる。これらのイオン性
廃物が培地に排出されると、その導電率は変化す
るであろう。つまり培地の導電率は、培地中の微
生物の増殖から生じるイオン化された廃物の培地
への排出によつて変化する。イオン化された排出
物の量は、微生物の増殖率と、そのときの物質交
代作用と直接に依存する。そして、特定の微生物
に関しては、増殖が盛んであればそれだけイオン
化された排出物も盛んに増加し、これによつて培
地の導電率もそれだけ増大または加速される。イ
オン化された排出物の量と導電率の相対的な差と
は各種の微生物にとつて特有であるから、同じ増
殖率をもつ別の微生物によつて、培地に排出され
る廃物のイオン濃度も導電率も異なる。つまり培
地中で増殖する微生物は、その増殖率とこの種類
に特有の排出物としてのイオン化された混合物の
性質とによつて、培地の導電率を変化させる。
本発明の目的を効果的に達成するために、標準
的な培地の組成を変え、導電率を最大にすること
ができる。このとき、塩濃度と緩衝力とが重要で
ある。微生物の良好な増殖ができる範囲におい
て、培地の塩濃度をできるだけ低くした。これに
よつて導電率も低下するが、微生物の増殖による
培地の導電率の変化も増大する。緩衝力が低いと
微生物の増殖によるPHの変化が増大し、従つて、
導電率の変化も増大する。本発明は、以上の現象
を利用して特殊の微生物を同定し、かつ汚染物質
中の未知微生物の量を測定するのである。本発明
により、培地を含む導電性セルを作り、これに微
生物を接種し、セルの導電率を記録する。そして
導電率の変化を、同じ組成を有する汚染されてい
ない培地と比較することによつて、サンプル中の
未知の微生物の性質とその存在量とを検定する。
このように、セルの導電率の変化によつて、数時
間以内に微生物を検定することができる。
的な培地の組成を変え、導電率を最大にすること
ができる。このとき、塩濃度と緩衝力とが重要で
ある。微生物の良好な増殖ができる範囲におい
て、培地の塩濃度をできるだけ低くした。これに
よつて導電率も低下するが、微生物の増殖による
培地の導電率の変化も増大する。緩衝力が低いと
微生物の増殖によるPHの変化が増大し、従つて、
導電率の変化も増大する。本発明は、以上の現象
を利用して特殊の微生物を同定し、かつ汚染物質
中の未知微生物の量を測定するのである。本発明
により、培地を含む導電性セルを作り、これに微
生物を接種し、セルの導電率を記録する。そして
導電率の変化を、同じ組成を有する汚染されてい
ない培地と比較することによつて、サンプル中の
未知の微生物の性質とその存在量とを検定する。
このように、セルの導電率の変化によつて、数時
間以内に微生物を検定することができる。
本発明による検定装置の実施例を示す添付図面
により本発明を次に詳記する。第1図の導電性培
養室(セル)10は一般に立方体で、内部に空所
があり、側壁11と底部12とは一体であり、上
板13は接着剤の類で底部12に結合されてい
る。その際、セル10が可塑性材料からなるとき
は、融接してもよい。上板13の中央の開口14
は、ゴムなどの弾性材料からなる栓16で封じら
れている。セル10の下半分の対向する側には、
二つの電極17が封じられ、その各接点18が側
壁11を通つて外に伸びる部分は封じられてい
る。電極17は、ステンレス鋼のような化学的に
不活性な導体金属の類からなる。底部12、側壁
11および上板13を有するセル10を、ポリエ
チレン、ポリプロピレン、ポリスチレンの類の不
活性で滅菌できる材料で構成するとよい。底部1
2とそこに封じられた電極17とを同時に成形す
ることもできる。上板13も封じてもよい。
により本発明を次に詳記する。第1図の導電性培
養室(セル)10は一般に立方体で、内部に空所
があり、側壁11と底部12とは一体であり、上
板13は接着剤の類で底部12に結合されてい
る。その際、セル10が可塑性材料からなるとき
は、融接してもよい。上板13の中央の開口14
は、ゴムなどの弾性材料からなる栓16で封じら
れている。セル10の下半分の対向する側には、
二つの電極17が封じられ、その各接点18が側
壁11を通つて外に伸びる部分は封じられてい
る。電極17は、ステンレス鋼のような化学的に
不活性な導体金属の類からなる。底部12、側壁
11および上板13を有するセル10を、ポリエ
チレン、ポリプロピレン、ポリスチレンの類の不
活性で滅菌できる材料で構成するとよい。底部1
2とそこに封じられた電極17とを同時に成形す
ることもできる。上板13も封じてもよい。
セル10を滅菌し、内部容量の約半分位の滅菌
培地を入れ、栓16で封じて使用する。セル10
を大量生産するときは、滅菌室で連続的に作業
し、特定の培地を入れた後に滅菌包装する。この
ようにすると、使用者は必要な培地を入れたセル
を選ぶだけでよい。
培地を入れ、栓16で封じて使用する。セル10
を大量生産するときは、滅菌室で連続的に作業
し、特定の培地を入れた後に滅菌包装する。この
ようにすると、使用者は必要な培地を入れたセル
を選ぶだけでよい。
所要の培地19を有するセル10に栓16をを
通して注射器などにより培養されるべき試料を植
え、他の所要のセルと共に培養容器21に入れ
る。すべてのセル10の接点18を培養器21の
電気ソケツト22に接続し、多芯ケーブル23で
ソケツト22を検出回路24(第3図)に接続す
る。回路24は、電流零位調節用のホイートスト
ン型ブリツジ回路26を有し、ブリツジの一方の
腕は、植えられたセル10に接続され、他の腕は
標準セル10′に接続されている。後者はセル1
0と同じ構成と培地とを有するが、未知の微生物
が植えられていない。ブリツジの第3の腕は適当
な値たとえば10000Ωの固定抵抗27を有し、第
4の腕は精密な十進抵抗器28を有する。交流信
号をブリツジ回路26に供給するために、回路2
6は交流信号源と同期検出器29の端子31とに
接続されているので、ブリツジ回路26の零端子
は、同期検知器29の信号入力端子32に接続さ
れたことになる。プリンストン・アブライト・リ
サーチ・インコーポレイテツド製ブロツクイン・
アンブリフアイヤー、JB−4型のような市販の
適当な信号発生および同期検出器を利用すること
ができる。この種の装置は、ブリツジ回路26の
信号入力端子に交流信号を供給し、ブリツジ回路
の零端子を経て発生された交流信号の増幅度を指
示することができる。
通して注射器などにより培養されるべき試料を植
え、他の所要のセルと共に培養容器21に入れ
る。すべてのセル10の接点18を培養器21の
電気ソケツト22に接続し、多芯ケーブル23で
ソケツト22を検出回路24(第3図)に接続す
る。回路24は、電流零位調節用のホイートスト
ン型ブリツジ回路26を有し、ブリツジの一方の
腕は、植えられたセル10に接続され、他の腕は
標準セル10′に接続されている。後者はセル1
0と同じ構成と培地とを有するが、未知の微生物
が植えられていない。ブリツジの第3の腕は適当
な値たとえば10000Ωの固定抵抗27を有し、第
4の腕は精密な十進抵抗器28を有する。交流信
号をブリツジ回路26に供給するために、回路2
6は交流信号源と同期検出器29の端子31とに
接続されているので、ブリツジ回路26の零端子
は、同期検知器29の信号入力端子32に接続さ
れたことになる。プリンストン・アブライト・リ
サーチ・インコーポレイテツド製ブロツクイン・
アンブリフアイヤー、JB−4型のような市販の
適当な信号発生および同期検出器を利用すること
ができる。この種の装置は、ブリツジ回路26の
信号入力端子に交流信号を供給し、ブリツジ回路
の零端子を経て発生された交流信号の増幅度を指
示することができる。
植えられたセル10の導電率つまり抵抗を測定
する作業は次の通りである。培養器21にセル1
0と標準セル10′とを入れ、接点18を培養器
のソケツト22に接続し、所要のセルをロータリ
ースイツチ(図示しない)でブリツジ回路26に
接続し、信号発生器29からの信号を回路26に
加え、十進抵抗器28を調整して同期検出器29
の目盛を零に合わせ、ブリツジ回路をバランスさ
せる。植種されたセル10と標準セル10′との
抵抗の比は、固定抵抗27と十進抵抗器28との
抵抗の比に相当する。この回路で、セル10の抵
抗(および導電率)を10万または100万分の1の
誤差で測定することができる。高感度のため、公
知の培地における微生物の発育を短時間に検定す
ることができる。接種されたセル10の導電率を
いつでも測定することができる。同様にして他の
セルも測定し、結果を記録する。導電率の時間的
変化をプロツトして得られたカーブは、特定培地
中の特定微生物の特性を示すので、時間、増殖
率、導電率のデータから微生物を短時間に同定す
ることができる。各種微生物の抵抗と時間のカー
ブを示す第4図は、同じ培地を用いて得られたも
ので、シユードモナス、E.コリ、プロテウスお
よびアースロバクタをペプトン1%およびデイフ
コ製デキストリン1%の培地で培養したものであ
る。植えた後300分以内の抵抗の変化を検出回路
24を用いて測定した結果は、次の通りであつ
た。
する作業は次の通りである。培養器21にセル1
0と標準セル10′とを入れ、接点18を培養器
のソケツト22に接続し、所要のセルをロータリ
ースイツチ(図示しない)でブリツジ回路26に
接続し、信号発生器29からの信号を回路26に
加え、十進抵抗器28を調整して同期検出器29
の目盛を零に合わせ、ブリツジ回路をバランスさ
せる。植種されたセル10と標準セル10′との
抵抗の比は、固定抵抗27と十進抵抗器28との
抵抗の比に相当する。この回路で、セル10の抵
抗(および導電率)を10万または100万分の1の
誤差で測定することができる。高感度のため、公
知の培地における微生物の発育を短時間に検定す
ることができる。接種されたセル10の導電率を
いつでも測定することができる。同様にして他の
セルも測定し、結果を記録する。導電率の時間的
変化をプロツトして得られたカーブは、特定培地
中の特定微生物の特性を示すので、時間、増殖
率、導電率のデータから微生物を短時間に同定す
ることができる。各種微生物の抵抗と時間のカー
ブを示す第4図は、同じ培地を用いて得られたも
ので、シユードモナス、E.コリ、プロテウスお
よびアースロバクタをペプトン1%およびデイフ
コ製デキストリン1%の培地で培養したものであ
る。植えた後300分以内の抵抗の変化を検出回路
24を用いて測定した結果は、次の通りであつ
た。
シユードモナスの場合、セルの抵抗は初めに約
10300Ωでとくに変化がなく、300分後にごく緩や
かに約10500Ωになつた。プロテウスのセルの抵
抗は、初めに約10300Ω、300分後に約9000Ωであ
つた。アースロバクタのセルの抵抗は、初めに
10300Ωで、300分後に約8550Ωであつた。このよ
うに、同じ導電率のセルと培地とを用いて培養し
ても、菌種によつて導電率カーブは異なる。また
第5図に示すように、培地が異なると同じ微生物
の導電率が変化する。このことを利用して、未知
の汚染微生物の特性を知ることができる。第5図
は、セルと培地とを変えて培養したプロテウスの
例である。
10300Ωでとくに変化がなく、300分後にごく緩や
かに約10500Ωになつた。プロテウスのセルの抵
抗は、初めに約10300Ω、300分後に約9000Ωであ
つた。アースロバクタのセルの抵抗は、初めに
10300Ωで、300分後に約8550Ωであつた。このよ
うに、同じ導電率のセルと培地とを用いて培養し
ても、菌種によつて導電率カーブは異なる。また
第5図に示すように、培地が異なると同じ微生物
の導電率が変化する。このことを利用して、未知
の汚染微生物の特性を知ることができる。第5図
は、セルと培地とを変えて培養したプロテウスの
例である。
標準Koser培地の20%にうすめた塩とバツフア
ーとを有するクエン酸塩培地では、植えた後30分
後の抵抗は10300Ωで、培養がすんだとき(450分
後)には10330Ωであつた。これに対して、1
当り尿素20g、燐酸カリウム1.82g、燐酸ナトリ
ウム1.9g、イーストエキス0.02g、フエノール
レツド0.002gを含む尿素培地で培養した同じセ
ルの抵抗は、30分後には10300Ω、375分後には
8610Ωであつた。標準メチールレツドVoges−
Proskauer培地で培養したプロテウスの抵抗は、
30分後には10300Ω、450分後には9900Ωであつ
た。プロテウスをラクトーゼ培地(ラクトーゼ1
%、デイフコペプトン1%)で培養したときの抵
抗は、30分後には10300Ω、450分後には9920Ωで
あつた。
ーとを有するクエン酸塩培地では、植えた後30分
後の抵抗は10300Ωで、培養がすんだとき(450分
後)には10330Ωであつた。これに対して、1
当り尿素20g、燐酸カリウム1.82g、燐酸ナトリ
ウム1.9g、イーストエキス0.02g、フエノール
レツド0.002gを含む尿素培地で培養した同じセ
ルの抵抗は、30分後には10300Ω、375分後には
8610Ωであつた。標準メチールレツドVoges−
Proskauer培地で培養したプロテウスの抵抗は、
30分後には10300Ω、450分後には9900Ωであつ
た。プロテウスをラクトーゼ培地(ラクトーゼ1
%、デイフコペプトン1%)で培養したときの抵
抗は、30分後には10300Ω、450分後には9920Ωで
あつた。
このように各微生物は、それぞれ固有の抵抗カ
ーブを有するので、各種培地中での公知微生物の
抵抗カーブと同じ培地中での未知の微生物のカー
ブとを比較することによつて、後者を識別するこ
とができる。
ーブを有するので、各種培地中での公知微生物の
抵抗カーブと同じ培地中での未知の微生物のカー
ブとを比較することによつて、後者を識別するこ
とができる。
本発明によるセルの感度の例として、濃度
350、3500および35000のE.コリを植えたセルの
導電率を測定したところ、著しい変化が生じたの
は、最低濃度のとき340分、中濃度のとき240分、
最高濃度のとき175分後であつた。これによつ
て、バクテリアの数が10倍に増えるためには、約
60−100分を要することがわかつたが、これは世
代時間20−30分に相当し、他の方法で測定した結
果と一致している。またこの結果、三つのバクテ
リアを600分以内に検定できることもわかつた。
つまり血液培地および脊髄液培地の導電率で増殖
を検定すると、10時間以下でよいが、従来方法で
は5−15日かかる。
350、3500および35000のE.コリを植えたセルの
導電率を測定したところ、著しい変化が生じたの
は、最低濃度のとき340分、中濃度のとき240分、
最高濃度のとき175分後であつた。これによつ
て、バクテリアの数が10倍に増えるためには、約
60−100分を要することがわかつたが、これは世
代時間20−30分に相当し、他の方法で測定した結
果と一致している。またこの結果、三つのバクテ
リアを600分以内に検定できることもわかつた。
つまり血液培地および脊髄液培地の導電率で増殖
を検定すると、10時間以下でよいが、従来方法で
は5−15日かかる。
各種の培地を有するセルを用いる病院や微生物
培養と導電率測定を連続的に行なう時などには、
培養器内にセルを積重ねたり、または50個ほどの
セルを受皿に並べ、受皿の中央に設けられたソケ
ツトにセルのプラグを接続するとよい。
培養と導電率測定を連続的に行なう時などには、
培養器内にセルを積重ねたり、または50個ほどの
セルを受皿に並べ、受皿の中央に設けられたソケ
ツトにセルのプラグを接続するとよい。
また各微生物の特性の研究が、各種培地中での
増殖の研究ばかりでなく、増殖阻止作用を有する
抗血清の研究のためにも要求されることがある。
この場合、豊富な栄養分を含み、所望の多数の各
種微生物を充分に増殖させることのできる培地、
たとえば大豆のトリプシン分解物に、特定の抗血
清を加えるとよい。また増殖阻止が要求される微
生物のみに有効な抗血清を加えることによつて、
未知の微生物を容易に固定することができる。た
とえば特定種の微生物のみに有効な16種の抗血清
を用いた場合、そのうちの1種以上が未知の微生
物に有効であるならば、第6−10図からわかる
ように、抗血清を四つのセルに加えるだけで、微
生物を同定することができる。第6図の抗血清は
0から15号までの番号をもつている。培地を含む
第1のセルに少量の抗血清0から7号までを加え
(第7図)第2のセルに0、1、4、5、8、
9、12、13号(第8図)、第3のセルに0、1、
2、3、8、9、10、11号(第9図)、第4のセ
ルに0、2、4、6、8、10、12、14号(第10
図)を加える。四つのセルのすべてに未知の微生
物を植え、培養、測定する。導電率の時間的変化
によつて、1号セルで微生物が増殖したことがわ
かれば、この物は0から7号までの抗血清によつ
て阻止されないことになる。また3号セルで増殖
すれば、抗血清0、1、2、3、8、9、10、11
号によつて阻止されないことになる。各セル中で
の増殖を1、阻止を0の数で示すと、四つのセル
のすべての結果を、次のように二進法であらわす
ことができる。全部のセルでの増殖は1111、セル
1、3号での増殖と、2、4号での阻止は1010、
セル1、2、3号での増殖と、4号での阻止は
1110である。増殖を阻止とを示すためにセルに与
えた二進法の数値は、特定の抗血清に与えられた
番号に相当する値である。つまり二進法による
1111は十進法の15で、0101は十進法の5である。
以上の抗血清の番号は、その抗血清によつて阻止
された微生物の種類に対応する。同じように64種
の抗血清を6個のセルで試験することができる。
増殖の研究ばかりでなく、増殖阻止作用を有する
抗血清の研究のためにも要求されることがある。
この場合、豊富な栄養分を含み、所望の多数の各
種微生物を充分に増殖させることのできる培地、
たとえば大豆のトリプシン分解物に、特定の抗血
清を加えるとよい。また増殖阻止が要求される微
生物のみに有効な抗血清を加えることによつて、
未知の微生物を容易に固定することができる。た
とえば特定種の微生物のみに有効な16種の抗血清
を用いた場合、そのうちの1種以上が未知の微生
物に有効であるならば、第6−10図からわかる
ように、抗血清を四つのセルに加えるだけで、微
生物を同定することができる。第6図の抗血清は
0から15号までの番号をもつている。培地を含む
第1のセルに少量の抗血清0から7号までを加え
(第7図)第2のセルに0、1、4、5、8、
9、12、13号(第8図)、第3のセルに0、1、
2、3、8、9、10、11号(第9図)、第4のセ
ルに0、2、4、6、8、10、12、14号(第10
図)を加える。四つのセルのすべてに未知の微生
物を植え、培養、測定する。導電率の時間的変化
によつて、1号セルで微生物が増殖したことがわ
かれば、この物は0から7号までの抗血清によつ
て阻止されないことになる。また3号セルで増殖
すれば、抗血清0、1、2、3、8、9、10、11
号によつて阻止されないことになる。各セル中で
の増殖を1、阻止を0の数で示すと、四つのセル
のすべての結果を、次のように二進法であらわす
ことができる。全部のセルでの増殖は1111、セル
1、3号での増殖と、2、4号での阻止は1010、
セル1、2、3号での増殖と、4号での阻止は
1110である。増殖を阻止とを示すためにセルに与
えた二進法の数値は、特定の抗血清に与えられた
番号に相当する値である。つまり二進法による
1111は十進法の15で、0101は十進法の5である。
以上の抗血清の番号は、その抗血清によつて阻止
された微生物の種類に対応する。同じように64種
の抗血清を6個のセルで試験することができる。
第11,12図は他の実施例で、プリント配線
によつて、多数のセルを短時間に安く作ることが
できる。セルの構成は簡単であるが、その性能は
第1実施例のものと同じである。プリントされた
セルは、マイラーのようなプラスチツクベースの
薄層41上に、アルミニウムのような導電性金属
からなる当て板42をプリントしたものである。
当て板のリード線43も同じ金属をプリントした
もので、ベース41の縁部のピン44に接続され
ている。ベース41上に設けられたスペーサー4
6は、マイラーのようなプラスチツク板からな
り、当て板42に一致する窓を有するので、当て
板42は上向きに開放されているが、隣りの当て
板から絶縁されている。半固形物の培地47で当
て板42を覆う。その分量は、当て板42とスペ
ーサー46によつて限定されたセル全部を満たす
のに充分な量とする。各セルに同一または他の培
地を入れることができ、また所要の阻止剤、増殖
促進剤または抗生物質などをセルの培地47に加
えることもできる。
によつて、多数のセルを短時間に安く作ることが
できる。セルの構成は簡単であるが、その性能は
第1実施例のものと同じである。プリントされた
セルは、マイラーのようなプラスチツクベースの
薄層41上に、アルミニウムのような導電性金属
からなる当て板42をプリントしたものである。
当て板のリード線43も同じ金属をプリントした
もので、ベース41の縁部のピン44に接続され
ている。ベース41上に設けられたスペーサー4
6は、マイラーのようなプラスチツク板からな
り、当て板42に一致する窓を有するので、当て
板42は上向きに開放されているが、隣りの当て
板から絶縁されている。半固形物の培地47で当
て板42を覆う。その分量は、当て板42とスペ
ーサー46によつて限定されたセル全部を満たす
のに充分な量とする。各セルに同一または他の培
地を入れることができ、また所要の阻止剤、増殖
促進剤または抗生物質などをセルの培地47に加
えることもできる。
同様のプラスチツク材料からなる上板48でセ
ルをカバーする。上板の下面の全部には、アルミ
ミニウムのような導体金属がプリントされ、ベー
ス41上のすべてのセルに対する共通電極49を
なしている。このために上板48の一端にピン
(図示しない)が設けてある。
ルをカバーする。上板の下面の全部には、アルミ
ミニウムのような導体金属がプリントされ、ベー
ス41上のすべてのセルに対する共通電極49を
なしている。このために上板48の一端にピン
(図示しない)が設けてある。
この種のシート状セルは滅菌的に作られ、使用
まで封じられている。使用時に滅菌された上板4
8を除去し、対象微生物を含む液の薄層51を、
露出されたセルの全部の培地にスプレーまたは塗
付ける。微生物の液が、培地47に吸収された
後、再び上板48をベース41上に載せる。こう
して得られた小型セルは、ベースまたは底部4
1、電極42、培地47、微生物液51、上板の
共通電極49および上板48からなる。
まで封じられている。使用時に滅菌された上板4
8を除去し、対象微生物を含む液の薄層51を、
露出されたセルの全部の培地にスプレーまたは塗
付ける。微生物の液が、培地47に吸収された
後、再び上板48をベース41上に載せる。こう
して得られた小型セルは、ベースまたは底部4
1、電極42、培地47、微生物液51、上板の
共通電極49および上板48からなる。
次にピン44と上板の共通電極用ピンとを導電
率測定装置に接続し、板状セルを培養器に入れ
る。導電率の測定のことはすでに記載した。
率測定装置に接続し、板状セルを培養器に入れ
る。導電率の測定のことはすでに記載した。
プリントされたセルは、たとえば厚み125ミク
ロンのベース41をもち、スペーサー46と培地
の厚みは、約200ミクロンである。各当て板42
中の培地の量は約0.2mlで、約21.59×27.94cmのシ
ートは約50のセルを有する。各セルは約0.05mlの
微生物液を受容する。
ロンのベース41をもち、スペーサー46と培地
の厚みは、約200ミクロンである。各当て板42
中の培地の量は約0.2mlで、約21.59×27.94cmのシ
ートは約50のセルを有する。各セルは約0.05mlの
微生物液を受容する。
本発明の実施例を示す添付図面において、第1
図は本発明による導電性セルの一部切欠斜視図、
第2図は培養器に数個のセルを入れ導電率測定装
置に接続した状態を示す一部切欠斜視図、第3図
はセルの導電率を検定記録する装置の回路図、第
4図は各種の微生物を同じ培地で培養したときの
導電率の時間的変化を示すグラフ、第5図は同じ
微生物を各種培地で培養したときの第4図と同様
のグラフ、第6−10図は特定微生物を同定する
ために16種の抗血清を四つのセルに加える装置の
説明図、第11図は第2実施例によるセルの縦断
面図、第12図は第11図と同様のセルの上板を
除いた平面図である。 10,10′……培養室(セル)、11……側
壁、12……底部、13……上板、14……開
口、16……栓、17……電極、18……接点、
19……培地、21……培養器、22……電気ソ
ケツト、23……多芯ケーブル、24……回路、
26……ブリツジ回路、27……固定抵抗、28
……十進抵抗器、29……同期検知器(信号発生
器)、31……端子、32……入力端子、41…
…層(ベース)、42……当て板、43……リー
ド線、44……ピン、46……スペーサー、47
……培地、48……上板、49……共通電極、5
1……微生物液、A……シユードモナス、B……
E.コリ、C……プロテウス、D……アースロバ
クタ、E……クエン酸、F……メチールレツド
Voges−Proskauer、G……ラクトーゼ、H……
尿素。
図は本発明による導電性セルの一部切欠斜視図、
第2図は培養器に数個のセルを入れ導電率測定装
置に接続した状態を示す一部切欠斜視図、第3図
はセルの導電率を検定記録する装置の回路図、第
4図は各種の微生物を同じ培地で培養したときの
導電率の時間的変化を示すグラフ、第5図は同じ
微生物を各種培地で培養したときの第4図と同様
のグラフ、第6−10図は特定微生物を同定する
ために16種の抗血清を四つのセルに加える装置の
説明図、第11図は第2実施例によるセルの縦断
面図、第12図は第11図と同様のセルの上板を
除いた平面図である。 10,10′……培養室(セル)、11……側
壁、12……底部、13……上板、14……開
口、16……栓、17……電極、18……接点、
19……培地、21……培養器、22……電気ソ
ケツト、23……多芯ケーブル、24……回路、
26……ブリツジ回路、27……固定抵抗、28
……十進抵抗器、29……同期検知器(信号発生
器)、31……端子、32……入力端子、41…
…層(ベース)、42……当て板、43……リー
ド線、44……ピン、46……スペーサー、47
……培地、48……上板、49……共通電極、5
1……微生物液、A……シユードモナス、B……
E.コリ、C……プロテウス、D……アースロバ
クタ、E……クエン酸、F……メチールレツド
Voges−Proskauer、G……ラクトーゼ、H……
尿素。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 微生物が培地中に排出する代謝産物によつて
生じる培地中の導電率の変化を測定するための密
封された微生物培養室において、 電気的不導体の不侵透性膜からなる基板41、
上記基板にプリントされた第1電極42、第1電
極に接続されたリード線43、電気的不導体の不
侵透性膜からなり、かつ上記基板を覆うカバー板
48、第1電極と重なるようにカバー板にプリン
トされた第2電極49、第2電極に接続されたリ
ード線43、基板41とカバー板48との間に挿
入されたスペーサー46からなり、その際、スペ
ーサー46は上記電極と同じ外延を有する開口を
有し、これによつて基板とカバー板との間に培養
室を規定し、この培養室は第1、第2電極と接触
する半液体状培地を含有し、かつスペーサーとカ
バー板とによつて封じられている構成を有する培
養室。 2 微生物が培地中に排出する代謝産物によつて
生じる培地中の導電率の変化を測定することによ
つて、微生物の増殖を質的または量的に検定する
装置において、 電気的不導体の不侵透性膜からなる基板41、
上記基板にプリントされた第1電極42、第1電
極に接続されたリード線43、電気的不導体の不
侵透性膜からなり、かつ上記基板を覆うカバー板
48、第1電極と重なるようにカバー板にプリン
トされた第2電極49、第2電極に接続されたリ
ード線43、基板とカバー板48との間に挿入さ
れたスペーサー46からなり、その際、スペーサ
ー46は上記電極と同じ外延を有する開口を有
し、これによつて基板とカバー板との間に培養室
を規定し、この培養室は第1、第2電極と接触す
る半液体状培地を含有し、かつスペーサーとカバ
ー板とによつて封じられている構成を有する、微
生物培養用の多数の密封された培養室と、微生物
が排出する代謝産物によつて生じた培地中の導電
率の経時的変化をグラフとして記録する手段とか
らなり、微生物の増殖を質的または量的に検定す
る装置。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20836582A JPS58162289A (ja) | 1982-11-26 | 1982-11-26 | 微生物学的検定装置 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP20836582A JPS58162289A (ja) | 1982-11-26 | 1982-11-26 | 微生物学的検定装置 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58162289A JPS58162289A (ja) | 1983-09-26 |
JPS6210155B2 true JPS6210155B2 (ja) | 1987-03-04 |
Family
ID=16555081
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP20836582A Granted JPS58162289A (ja) | 1982-11-26 | 1982-11-26 | 微生物学的検定装置 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS58162289A (ja) |
Families Citing this family (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH07117511B2 (ja) * | 1987-02-04 | 1995-12-18 | 株式会社神戸製鋼所 | 菌体量の計測方法 |
JP2002330752A (ja) * | 2001-05-08 | 2002-11-19 | Sanden Corp | 微生物数測定装置 |
WO2006071800A1 (en) * | 2004-12-27 | 2006-07-06 | Becton, Dickinson And Company | Detection method and apparatus for detecting microbial growth |
JP4835384B2 (ja) * | 2006-10-26 | 2011-12-14 | ダイキン工業株式会社 | 圧縮機 |
-
1982
- 1982-11-26 JP JP20836582A patent/JPS58162289A/ja active Granted
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS58162289A (ja) | 1983-09-26 |
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