JPS61257195A - アリ−ルグリシジルエ−テル及び3−置換1−アルキルアミノ−2−プロパノ−ルの製造法 - Google Patents
アリ−ルグリシジルエ−テル及び3−置換1−アルキルアミノ−2−プロパノ−ルの製造法Info
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- JPS61257195A JPS61257195A JP61029839A JP2983986A JPS61257195A JP S61257195 A JPS61257195 A JP S61257195A JP 61029839 A JP61029839 A JP 61029839A JP 2983986 A JP2983986 A JP 2983986A JP S61257195 A JPS61257195 A JP S61257195A
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- Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、式
%式%(1)
の立体特異的な形の医薬的に活性な化合物又はその酸付
加塩のような医薬的に許容される塩、及び/又は式 の立体特異的な形の化合物(ここでR,は、場合により
ヘテロ環系に含まれるフェニル又はナフチル基を包含す
る置換又は非置換アリール基であり、又は炭素原子の他
に窒素、硫黄及び酸素から選ばれた一以上の原子を含む
ヘテロ芳香族5又は6員環であり、但しこの環は置換さ
れていてもよく、R,は2〜6個の炭素原子のアルキル
基であり、但しこのアルキル基は置換されていてもよい
)を作る方法において、式 %式%([) の化合物を少くとも80重量%がS立体配置を持つ化合
物(■)へと立体選択的にエポキシ化する能力を持つ微
生物の作用に化合物(I[[)を付すこと、化合物(I
I)を少くとも部分的に分離すること、及び/又は化合
物(II)を置換又は非置換C2〜Chアルキルアミン
基と反応させること及び化合物(I)を少くとも部分的
に分離すること及び/又は化合物(I)をその医薬的に
許容される塩へと転化することを含む方法に関する。
加塩のような医薬的に許容される塩、及び/又は式 の立体特異的な形の化合物(ここでR,は、場合により
ヘテロ環系に含まれるフェニル又はナフチル基を包含す
る置換又は非置換アリール基であり、又は炭素原子の他
に窒素、硫黄及び酸素から選ばれた一以上の原子を含む
ヘテロ芳香族5又は6員環であり、但しこの環は置換さ
れていてもよく、R,は2〜6個の炭素原子のアルキル
基であり、但しこのアルキル基は置換されていてもよい
)を作る方法において、式 %式%([) の化合物を少くとも80重量%がS立体配置を持つ化合
物(■)へと立体選択的にエポキシ化する能力を持つ微
生物の作用に化合物(I[[)を付すこと、化合物(I
I)を少くとも部分的に分離すること、及び/又は化合
物(II)を置換又は非置換C2〜Chアルキルアミン
基と反応させること及び化合物(I)を少くとも部分的
に分離すること及び/又は化合物(I)をその医薬的に
許容される塩へと転化することを含む方法に関する。
多くの生物活性化合物が立体異性体の混合物として存在
することが一般に知られている。しばしばこれら混合物
は、そのままで農業及び医薬用途に用いられる。その大
きな理由は、分離コストが活性増加の潜在的利点をなお
越えることである。
することが一般に知られている。しばしばこれら混合物
は、そのままで農業及び医薬用途に用いられる。その大
きな理由は、分離コストが活性増加の潜在的利点をなお
越えることである。
通常、必要とされる生物活性は一つの立体異性体にあり
、混合物の能力は良くても半分に低減される。しかし、
−又は二辺上の立体異性体が、望む治療効果を持たずし
かし毒性を含む他の望ましくない生理的作用を持ちうる
不純物と見られるところの混合物を投与することの意味
に、近年の薬学者はだんだん気付くようになっている。
、混合物の能力は良くても半分に低減される。しかし、
−又は二辺上の立体異性体が、望む治療効果を持たずし
かし毒性を含む他の望ましくない生理的作用を持ちうる
不純物と見られるところの混合物を投与することの意味
に、近年の薬学者はだんだん気付くようになっている。
生物活性と単一の立体異性体との関係を例示するために
、いくつかの例が挙げられる。
、いくつかの例が挙げられる。
医薬分野において、β−アドレナリン遮断剤の多くは、
活性が一つの立体異性体にあるけれど、混合物として売
られている。一つの例として、ラベタロールとして知ら
れる薬は、四つの異性体の混合物からの二つの異性体の
ベアに帰されることが判っている一緒にされたα−アド
レナリ遮断及びβ−アドレナリン遮断作用を持つ。N、
トダらは、J、 Pharmacol、 Rxp、 T
her、 207 (1978)311で、(=)−
メトプロロールがイソプロテレノール(β−アドレルセ
プター刺激物)に対するラビット房室及び気管筋肉の応
答を低下させるにおいて(+)−メトプロロールより2
70〜380倍強いことを報告した。
活性が一つの立体異性体にあるけれど、混合物として売
られている。一つの例として、ラベタロールとして知ら
れる薬は、四つの異性体の混合物からの二つの異性体の
ベアに帰されることが判っている一緒にされたα−アド
レナリ遮断及びβ−アドレナリン遮断作用を持つ。N、
トダらは、J、 Pharmacol、 Rxp、 T
her、 207 (1978)311で、(=)−
メトプロロールがイソプロテレノール(β−アドレルセ
プター刺激物)に対するラビット房室及び気管筋肉の応
答を低下させるにおいて(+)−メトプロロールより2
70〜380倍強いことを報告した。
単一の立体異性体β−遮断剤への現在の経路は一般に、
化学的分割又は立体異性活性前駆体からのかなり長たら
しい化学的合成を含み、これはたとえば米国特許第4.
408,063号明細書及びジャーナル オブ オーガ
ニック ケミトスリー(J、Org。
化学的分割又は立体異性活性前駆体からのかなり長たら
しい化学的合成を含み、これはたとえば米国特許第4.
408,063号明細書及びジャーナル オブ オーガ
ニック ケミトスリー(J、Org。
Ches+)41 (1976)3121にり、 M
、ワインストック(Weinstok)らにより記載さ
れている。
、ワインストック(Weinstok)らにより記載さ
れている。
従って、メトプロロールの基エナンチオマー(光学活性
異性体)を同様に作るこれら記載されたプロセスは、産
業的適用において経済的に有利でない。従って、本発明
の目的は、経済的に魅力ある方法で工業的規模で実施し
うるそのような立体異性体の製造のための効果的方法を
提供することである。
異性体)を同様に作るこれら記載されたプロセスは、産
業的適用において経済的に有利でない。従って、本発明
の目的は、経済的に魅力ある方法で工業的規模で実施し
うるそのような立体異性体の製造のための効果的方法を
提供することである。
気/固又は二液相バイオリアクターにおいて短鎖アルケ
ン(C3〜C4)をその対応するエポキシアルカンに立
体特異的に転化する微生物の能力が、J、l−ランペス
(Traapes )ら(バイオテクノロジーについて
の第三回ヨーロッパ会i!1(3rdEuropean
Congress on Biotechnolog
y) %ミュンヘン、9月10〜14日、1984年)
により示されている。エポキシアルカンの微生物的製造
の別の例は、米国特許第4.106.986号明細書に
開示され、それは直鎖1−アルケン(C+〜C2゜)の
1.2−エポキシアルカンへの転化を記載する。
ン(C3〜C4)をその対応するエポキシアルカンに立
体特異的に転化する微生物の能力が、J、l−ランペス
(Traapes )ら(バイオテクノロジーについて
の第三回ヨーロッパ会i!1(3rdEuropean
Congress on Biotechnolog
y) %ミュンヘン、9月10〜14日、1984年)
により示されている。エポキシアルカンの微生物的製造
の別の例は、米国特許第4.106.986号明細書に
開示され、それは直鎖1−アルケン(C+〜C2゜)の
1.2−エポキシアルカンへの転化を記載する。
ヨーロッパ特許出願第0099609号明細書には、プ
ロペン及び1−オクテンをそれらの対応するエポキシア
ルカンへ転化する例が示されている。
ロペン及び1−オクテンをそれらの対応するエポキシア
ルカンへ転化する例が示されている。
しかし、置換アルケンたとえばエーテル化合物(III
)の転化は、直鎖又はあるときは分枝のアルケンにのみ
適用できるこれら公知法からは決して推論されない。
)の転化は、直鎖又はあるときは分枝のアルケンにのみ
適用できるこれら公知法からは決して推論されない。
幅広い研究及び実験の結果、本発明者は驚ろくべきこと
に、化合物(III)から出発してとくに化合物(、I
)の基エナンチオマー及び化合物(II)の基エナン
チオマーを作る改善された合成法であって、化合物(I
II)のエポキシ化の活性を持つバクテリアを用いて、
少くとも80重量%の旦立体配置を示す化合物(n)を
作り、その後化合物(n)を少くとも部分的に分離し、
及び/又は該化合物(II)をアルキルアミンと反応さ
せて化合物(1)を作る合成法を見い出した。
に、化合物(III)から出発してとくに化合物(、I
)の基エナンチオマー及び化合物(II)の基エナン
チオマーを作る改善された合成法であって、化合物(I
II)のエポキシ化の活性を持つバクテリアを用いて、
少くとも80重量%の旦立体配置を示す化合物(n)を
作り、その後化合物(n)を少くとも部分的に分離し、
及び/又は該化合物(II)をアルキルアミンと反応さ
せて化合物(1)を作る合成法を見い出した。
より詳しくは本発明は、式(1)の立体特異的な形の医
薬的に活性な化合物又はその酸付加塩のような医薬的に
許容される塩、及び/又は式(11)の立体特異的な形
の化合物(ここでR3,は、場合によりヘテロ環系に含
まれるフェニル又はナフチル基を包含する置換又は非置
換アリール基であり、又は炭素原子の他に窒素、硫黄及
び酸素から選ばれた一以上の原子を含むヘテロ芳香族5
又は6員環であり、但しこの環は置換されていてもよく
、R2は2〜6個の炭素原子のアルキル基であり、但し
このアルキル基は置換されていてもよい)を作る方法に
おいて、式(I[[)の化合物を少くとも80重景%が
盈立体配置を持つ化合物(n)へと立体選択的にエポキ
シ化する能力を持つ微生物の作用に化合物(III)を
付すこと、化合物(II)を少くとも部分的に分離する
こと、及び/又は化合物(I[)を置換又は非置換02
〜C,アルキルアミン基と反応させること及び化合物(
1)を少くとも部分的に分離すること及び/又は化合物
CI>をその医薬的に許容される塩へと転化することを
含む方法に関する。好ましくは、アルキルアミンはイソ
プロピルアミン又は、第三ブチルアミンである。
薬的に活性な化合物又はその酸付加塩のような医薬的に
許容される塩、及び/又は式(11)の立体特異的な形
の化合物(ここでR3,は、場合によりヘテロ環系に含
まれるフェニル又はナフチル基を包含する置換又は非置
換アリール基であり、又は炭素原子の他に窒素、硫黄及
び酸素から選ばれた一以上の原子を含むヘテロ芳香族5
又は6員環であり、但しこの環は置換されていてもよく
、R2は2〜6個の炭素原子のアルキル基であり、但し
このアルキル基は置換されていてもよい)を作る方法に
おいて、式(I[[)の化合物を少くとも80重景%が
盈立体配置を持つ化合物(n)へと立体選択的にエポキ
シ化する能力を持つ微生物の作用に化合物(III)を
付すこと、化合物(II)を少くとも部分的に分離する
こと、及び/又は化合物(I[)を置換又は非置換02
〜C,アルキルアミン基と反応させること及び化合物(
1)を少くとも部分的に分離すること及び/又は化合物
CI>をその医薬的に許容される塩へと転化することを
含む方法に関する。好ましくは、アルキルアミンはイソ
プロピルアミン又は、第三ブチルアミンである。
より好ましくはR9は、2−トリル、3−トリル、2.
3−ジメチルフェニル、2−クロル−5−メチルフェニ
ル、2−アリルフェニル、2−アリルオキシフェニル、
2−シクロプロピルフェニル、2−シクロへキシルフェ
ニル、2−シクロペンチルフェニル、2〜シアノフエニ
ル、2−メトキシフェニル、2−メチルチオフェニル、
2−(テトラヒドロフラン−2−イル)−メトキシフェ
ニル、4−アセトアミドフェニル、4−カルバゾリル、
4−カルバモイルメチルフェニル、4−[2−(メチル
ホルミルアミノ)−エチル]フェニル、2−アセチル−
4−ブチルアミドフェニル、1−ナフチル、フェニル、
4− (3−シクロへキシルウレイド)−フェニル、5
.6−ジヒドロ−1−ナフチル、5.8−ジヒドロ−1
−ナフチル、5.6,7.8−テトラヒドロ−5−オキ
ソ−1−ナフチル、5.8−エタノ−5,6,7,8−
テトラヒドロ−1−ナフチル、2.3−ジヒドロ−LH
−インデン−4−イル、1H−インデン−4−イル、1
H−インデン−7−イル、1H−インドール−4−イル
、5−メチル−8−クマリニル、8−チオクロマニル、
4−モルホリノ−1゜2.5−チアジオゾール−3−イ
ル、5.6.7゜8−テトラヒドロ−シス−6,7−ジ
ヒドロキシ−1−ナフチル、4−(2−メトキシエチル
)−フェニル、4− (2−メトキシエトキシ)−フェ
ニル、(2−アセチル)−ベンゾフラン−7−イル、2
.5−ジクロルフェニル、2−(2−プロペニルオキシ
)−フェニル、3.4−ジヒドロカルボスチリル−5−
イル、2−アセチル−4−(3,3−ジエチルウレイド
)−フェニル、4−[2−(シクロプロピルメトキシ)
−エチルコ −フェニル、2−メチル−1H−インドー
ル−4−イル、(4−アセトキシ−2,3,5−)ジメ
チル)−フェニル、2−フェノキシ−フェニル、2−チ
アゾリルオキシ、2.2.5.7.8−ペンタメチルク
ロマン−6−イル、2−(N−β−ヒドロキシエチルカ
ルバモイルメトキシ)−フェール又は2−(N−メチル
−カルバモイルメトキシ)−フェニル基である。
3−ジメチルフェニル、2−クロル−5−メチルフェニ
ル、2−アリルフェニル、2−アリルオキシフェニル、
2−シクロプロピルフェニル、2−シクロへキシルフェ
ニル、2−シクロペンチルフェニル、2〜シアノフエニ
ル、2−メトキシフェニル、2−メチルチオフェニル、
2−(テトラヒドロフラン−2−イル)−メトキシフェ
ニル、4−アセトアミドフェニル、4−カルバゾリル、
4−カルバモイルメチルフェニル、4−[2−(メチル
ホルミルアミノ)−エチル]フェニル、2−アセチル−
4−ブチルアミドフェニル、1−ナフチル、フェニル、
4− (3−シクロへキシルウレイド)−フェニル、5
.6−ジヒドロ−1−ナフチル、5.8−ジヒドロ−1
−ナフチル、5.6,7.8−テトラヒドロ−5−オキ
ソ−1−ナフチル、5.8−エタノ−5,6,7,8−
テトラヒドロ−1−ナフチル、2.3−ジヒドロ−LH
−インデン−4−イル、1H−インデン−4−イル、1
H−インデン−7−イル、1H−インドール−4−イル
、5−メチル−8−クマリニル、8−チオクロマニル、
4−モルホリノ−1゜2.5−チアジオゾール−3−イ
ル、5.6.7゜8−テトラヒドロ−シス−6,7−ジ
ヒドロキシ−1−ナフチル、4−(2−メトキシエチル
)−フェニル、4− (2−メトキシエトキシ)−フェ
ニル、(2−アセチル)−ベンゾフラン−7−イル、2
.5−ジクロルフェニル、2−(2−プロペニルオキシ
)−フェニル、3.4−ジヒドロカルボスチリル−5−
イル、2−アセチル−4−(3,3−ジエチルウレイド
)−フェニル、4−[2−(シクロプロピルメトキシ)
−エチルコ −フェニル、2−メチル−1H−インドー
ル−4−イル、(4−アセトキシ−2,3,5−)ジメ
チル)−フェニル、2−フェノキシ−フェニル、2−チ
アゾリルオキシ、2.2.5.7.8−ペンタメチルク
ロマン−6−イル、2−(N−β−ヒドロキシエチルカ
ルバモイルメトキシ)−フェール又は2−(N−メチル
−カルバモイルメトキシ)−フェニル基である。
好ましくは、本発明の方法は、R5が4−(2−メトキ
シエチル)−フェニル、2−アリルオキシフェニル、4
−カルバモイルメチルフェニル、1−ナフチル、−フェ
ニルである化合物(■)、より好ましくはR1が4−(
2−メトキシエチル)−フェニルである化合物から出発
して実施される。
シエチル)−フェニル、2−アリルオキシフェニル、4
−カルバモイルメチルフェニル、1−ナフチル、−フェ
ニルである化合物(■)、より好ましくはR1が4−(
2−メトキシエチル)−フェニルである化合物から出発
して実施される。
好ましい実施態様において、本方法は、少くとも90重
量%の−5−立体配置が形成される適当な微生物を選択
するやり方で実施される。
量%の−5−立体配置が形成される適当な微生物を選択
するやり方で実施される。
適当な微生物はいう言葉は、たとえばロードコツカス(
Rhodococcus ) 、マイコバクテリウム(
Mycobacterium ) 、ノカルディア(N
ocardia)及びシュードモナス(Pseudom
onas )属に属するバクテリアを意味する。微生物
は、場合によりポリマーゲルによって固定化される。4
−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエーテルの
エポキシ化のための微生物として、下記の株が挙げられ
る: ノカルディア コラリナ(Nocardia cora
llina)種(たとえばATCC寄託番号31338
で寄託される種)、 ロードコツカスsp、 (Rhodococcus s
p、 )種(たとえばNCIB寄託番号11277で寄
託される種)、 マイコバクテリウム ロードクロウス (Mycobacteriun+ rhodochro
us )種(たとえばNCIB寄託番号9703で寄託
される種)、コードコツカス エクイ (Rhodoc
occus equi)種(たとえばNCIB寄託番号
12035で寄託される種)、 シュードモナス アエルギノサ(Pseudomona
saeruginosa)種(たとえばNCIB寄託番
号12036で寄託される種)、 シュードモナス オレオボラシス(Pseudomon
asoleovorans)種(たとえばATCC寄託
番号29347で寄託される種)、 シュードモナス プチダ(Pseudomonas p
utida)種(たとえばNCIB寄託番号9571で
寄託される種)、及び シュードモナス アエルギノサ種(たとえばNCIB寄
託番号8704で寄託される種)。
Rhodococcus ) 、マイコバクテリウム(
Mycobacterium ) 、ノカルディア(N
ocardia)及びシュードモナス(Pseudom
onas )属に属するバクテリアを意味する。微生物
は、場合によりポリマーゲルによって固定化される。4
−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエーテルの
エポキシ化のための微生物として、下記の株が挙げられ
る: ノカルディア コラリナ(Nocardia cora
llina)種(たとえばATCC寄託番号31338
で寄託される種)、 ロードコツカスsp、 (Rhodococcus s
p、 )種(たとえばNCIB寄託番号11277で寄
託される種)、 マイコバクテリウム ロードクロウス (Mycobacteriun+ rhodochro
us )種(たとえばNCIB寄託番号9703で寄託
される種)、コードコツカス エクイ (Rhodoc
occus equi)種(たとえばNCIB寄託番号
12035で寄託される種)、 シュードモナス アエルギノサ(Pseudomona
saeruginosa)種(たとえばNCIB寄託番
号12036で寄託される種)、 シュードモナス オレオボラシス(Pseudomon
asoleovorans)種(たとえばATCC寄託
番号29347で寄託される種)、 シュードモナス プチダ(Pseudomonas p
utida)種(たとえばNCIB寄託番号9571で
寄託される種)、及び シュードモナス アエルギノサ種(たとえばNCIB寄
託番号8704で寄託される種)。
フェニルアリルエーテルのエポキシ化のための微生物と
しては、マイコバクテリウム WMI(たとえばNGI
B寄託番号11626で寄託される種)の培養物が挙げ
られる。
しては、マイコバクテリウム WMI(たとえばNGI
B寄託番号11626で寄託される種)の培養物が挙げ
られる。
4−アリルオキシフェニルアセトアミドのエポキシ化の
ための微生物としては、シュードモナスオレオボランス
(たとえばATCC寄託番号29347で寄託される種
)の培養物が挙げられる。
ための微生物としては、シュードモナスオレオボランス
(たとえばATCC寄託番号29347で寄託される種
)の培養物が挙げられる。
本発明方法の好ましい実施態様の実施において、4−(
2−メトキシエチル)−フェニルアリルエーテルを、少
くとも90重量%が盈立体配置を持つ4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテルへと転化する
能力を特徴生物が上述の微生物から選択され、0.5〜
10日間培養されねばならず、その後、バクテリア細胞
は培養液から集められねばならず、細胞は液状栄養培養
基に懸濁され、そして4−(2−メトキシエチル)−フ
ェニルアリルエーテルが細胞の作用に付される。
2−メトキシエチル)−フェニルアリルエーテルを、少
くとも90重量%が盈立体配置を持つ4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテルへと転化する
能力を特徴生物が上述の微生物から選択され、0.5〜
10日間培養されねばならず、その後、バクテリア細胞
は培養液から集められねばならず、細胞は液状栄養培養
基に懸濁され、そして4−(2−メトキシエチル)−フ
ェニルアリルエーテルが細胞の作用に付される。
エポキシ化活性を示す本発明で用いられる微生物は、約
0.5〜lO日間培養されねばならず、その後に細胞は
液状栄養培養基好ましくは最少液状栄養培養基に懸濁さ
れ、そして化合物(III)が細胞の作用に付される。
0.5〜lO日間培養されねばならず、その後に細胞は
液状栄養培養基好ましくは最少液状栄養培養基に懸濁さ
れ、そして化合物(III)が細胞の作用に付される。
約0.5〜10日間の上述の培養の後に細胞は、最少液
状栄養培養基に細胞を懸濁する前に培養培地から単離さ
れてもよい。化合物(III)の立体選択的エポキシ化
のために用いられる微生物を育てるために、同化しうる
炭素源(たとえばグルコース、ラクトース、テトラデカ
ン(C14)のような炭化水素など)、窒素源(たとえ
ば硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニ
ウムなど)を有機栄養源のための剤(たとえば酵母エキ
ス、麦芽エキス、ペプトン、小麦エキスなど)及び無機
栄養源(たとえばリン酸塩、マグネシウム、カリウム、
亜鉛、鉄及び他の金属の微量)と共に含む通常の培養培
地が用いられる。任意的に、誘導物!(たとえばジェト
キシメタン)が培養培地に加えられる。0〜45℃の温
度及び3,5〜9pHが、微生物の成長の間維持される
。好ましくは微生物は、20〜37℃の温度でかつ5〜
8pHで成長される。
状栄養培養基に細胞を懸濁する前に培養培地から単離さ
れてもよい。化合物(III)の立体選択的エポキシ化
のために用いられる微生物を育てるために、同化しうる
炭素源(たとえばグルコース、ラクトース、テトラデカ
ン(C14)のような炭化水素など)、窒素源(たとえ
ば硫酸アンモニウム、硝酸アンモニウム、塩化アンモニ
ウムなど)を有機栄養源のための剤(たとえば酵母エキ
ス、麦芽エキス、ペプトン、小麦エキスなど)及び無機
栄養源(たとえばリン酸塩、マグネシウム、カリウム、
亜鉛、鉄及び他の金属の微量)と共に含む通常の培養培
地が用いられる。任意的に、誘導物!(たとえばジェト
キシメタン)が培養培地に加えられる。0〜45℃の温
度及び3,5〜9pHが、微生物の成長の間維持される
。好ましくは微生物は、20〜37℃の温度でかつ5〜
8pHで成長される。
微生物の成長の間に要求される好気性条件は、よく確立
された方法のいずれにとってでも提供されることができ
、但し酸素の供給が微生物の代謝要求を満すのに十分で
なければならない。このことは、気体酸素を好ましくは
空気の形で供給することにより最も便宜に達成される。
された方法のいずれにとってでも提供されることができ
、但し酸素の供給が微生物の代謝要求を満すのに十分で
なければならない。このことは、気体酸素を好ましくは
空気の形で供給することにより最も便宜に達成される。
化合物(III)の化合物(II)への転化の間、微生
物は上述の通常の培養培地を用いて成長段階にあっても
よい。
物は上述の通常の培養培地を用いて成長段階にあっても
よい。
微生物は、共基質を補われてもよい。
好ましくは化合物(I[[)の化合物(II)への転化
の間に、微生物は最少培養培地を用いて実質上非成長段
階に保たれうる。最少培養培地として、必要なときは同
化しうる炭素源(たとえばグルコース、ラクトース、テ
トラデカン(C14)のような炭化水素など)、必要な
ときは窒素源(たとえば硫酸アンモニウム、硝酸アンモ
ニウム、塩化アンモニウムなど)を、必要なときは有機
栄養源のための剤(たとえば酵母エキス、麦芽エキス、
ペプトン、肉エキスなど)及び必要なときは無機栄養源
(たとえばリン酸塩、マグネシウム、カリウム、亜鉛、
鉄及び他の金属の微量)と共に含む通常の培養培地を用
いることができる。微生物は、たとえば同化しうる炭素
源除外下または窒素源除外下で非成長段階に保たれうる
。0〜45℃の温度及び3.5〜9のpiがこの段階の
間維持される。
の間に、微生物は最少培養培地を用いて実質上非成長段
階に保たれうる。最少培養培地として、必要なときは同
化しうる炭素源(たとえばグルコース、ラクトース、テ
トラデカン(C14)のような炭化水素など)、必要な
ときは窒素源(たとえば硫酸アンモニウム、硝酸アンモ
ニウム、塩化アンモニウムなど)を、必要なときは有機
栄養源のための剤(たとえば酵母エキス、麦芽エキス、
ペプトン、肉エキスなど)及び必要なときは無機栄養源
(たとえばリン酸塩、マグネシウム、カリウム、亜鉛、
鉄及び他の金属の微量)と共に含む通常の培養培地を用
いることができる。微生物は、たとえば同化しうる炭素
源除外下または窒素源除外下で非成長段階に保たれうる
。0〜45℃の温度及び3.5〜9のpiがこの段階の
間維持される。
好ましくは、微生物は20〜37℃の温度、5〜8のp
Hに保たれる。この段階の間に必要な好気性条件は、上
述の方法により提供されることができるが、但し酸素の
供給は、微生物の代謝要求を満し、しかしまた化合物(
II[)を化合物(If)へと転化させるのに十分でな
ければならない。上述のように微生物により作られた化
合物(II)は、回収され、そして良く確立された方法
のいずれかに従って精製されることができる。
Hに保たれる。この段階の間に必要な好気性条件は、上
述の方法により提供されることができるが、但し酸素の
供給は、微生物の代謝要求を満し、しかしまた化合物(
II[)を化合物(If)へと転化させるのに十分でな
ければならない。上述のように微生物により作られた化
合物(II)は、回収され、そして良く確立された方法
のいずれかに従って精製されることができる。
本発明に従って作られた (−)−R+ −0−C1h
−Cl−CHzイソプロピルアミン又は第三ブチルアミ
ンとの化学反応により各々(+)−R+−0−C11□
−CHoII−C1h−Nil−Rz 。
−Cl−CHzイソプロピルアミン又は第三ブチルアミ
ンとの化学反応により各々(+)−R+−0−C11□
−CHoII−C1h−Nil−Rz 。
(−)−R+−0−CTo−CHOH−CHz−NH−
Rz 、又はこれらの混合物に転化されることができる
。完全な(S)立体配置を持つアリールグリシジルエー
テルから完全な(S)立体配置を持つβアドレナリン
レセプター遮断剤を形成する反応の例が、西独国特許出
願第2453324号明細書に記載される。
Rz 、又はこれらの混合物に転化されることができる
。完全な(S)立体配置を持つアリールグリシジルエー
テルから完全な(S)立体配置を持つβアドレナリン
レセプター遮断剤を形成する反応の例が、西独国特許出
願第2453324号明細書に記載される。
化合物(−)−R+−0−CHz−CHOH−CIl□
−Nll−Rzが主である混合物は、医薬製品において
特に有利に使用できる。好ましくは少くとも80重量%
、より好ましくは少くとも90重量%が−5−立体配置
であるこれら化合物は、医薬製品において用いられうる
。
−Nll−Rzが主である混合物は、医薬製品において
特に有利に使用できる。好ましくは少くとも80重量%
、より好ましくは少くとも90重量%が−5−立体配置
であるこれら化合物は、医薬製品において用いられうる
。
式R,−0−C11□−CIIOR−CH2−Nll−
1hの化合物としては、βアドレナリン レセプター遮
断特性をもつ化合物、たとえばTolamolol、
Toliprolol、ロー32゜Bupranolo
l+ Alprenolol、 0xprenolol
、 ProcinololExaprolol+ Pe
nbutolol、 Bunitrolol、 Mop
rolol16Triprenolo1. Bufe、
tolol、 Practolol、 Carazol
ol+Atenolol、 Acebutolol、
Propranolol、 Pamatolol。
1hの化合物としては、βアドレナリン レセプター遮
断特性をもつ化合物、たとえばTolamolol、
Toliprolol、ロー32゜Bupranolo
l+ Alprenolol、 0xprenolol
、 ProcinololExaprolol+ Pe
nbutolol、 Bunitrolol、 Mop
rolol16Triprenolo1. Bufe、
tolol、 Practolol、 Carazol
ol+Atenolol、 Acebutolol、
Propranolol、 Pamatolol。
Ta1inolo1. Idropranolol、
Dropranolol、Bunolol。
Dropranolol、Bunolol。
K 4423+ USVC6524,Indeno
lol+ Pindolol、Bucus+olol
+S 2395+ Timolol、 Nadolol
、 Metoprolol、II 87107+C1a
ranololt Pargolol、 Carteo
lol、 Ce1iprolol。
lol+ Pindolol、Bucus+olol
+S 2395+ Timolol、 Nadolol
、 Metoprolol、II 87107+C1a
ranololt Pargolol、 Carteo
lol、 Ce1iprolol。
Betaxolol+ Mepindolol、 Me
tipranolol、PHQA 33+Tazolo
l及びCromipranol又はこれらの医薬的に許
容される塩たとえば酸付加塩が挙げられる。医薬的に許
容される塩の例は、メトプロロールとL−酒石酸から作
られるメトプロロール酒石酸塩、及び1−イソプロピル
アミノ−3−フェノキシ−2−プロパツールと塩化水素
から作られる1−イソプロピルアミノ−3−フェノキシ
−2−プロツマノール塩酸塩である。好ましくは、これ
らβ−アドレナリンレセプター遮断化合物は、本発明に
従って作られ、少くとも80%、より好ましくは少くと
も90%旦立体配置で形成される。
tipranolol、PHQA 33+Tazolo
l及びCromipranol又はこれらの医薬的に許
容される塩たとえば酸付加塩が挙げられる。医薬的に許
容される塩の例は、メトプロロールとL−酒石酸から作
られるメトプロロール酒石酸塩、及び1−イソプロピル
アミノ−3−フェノキシ−2−プロパツールと塩化水素
から作られる1−イソプロピルアミノ−3−フェノキシ
−2−プロツマノール塩酸塩である。好ましくは、これ
らβ−アドレナリンレセプター遮断化合物は、本発明に
従って作られ、少くとも80%、より好ましくは少くと
も90%旦立体配置で形成される。
本明細書で述べる光学純度は、エナンチオマー過剰パー
セントS−R/S+Rとして表される。
セントS−R/S+Rとして表される。
本発明を、添付図面を引用しながら実施例に関して更に
説明するが、これは本発明の範囲を実施例に限定するも
のではない。
説明するが、これは本発明の範囲を実施例に限定するも
のではない。
実施例■
ロードコツカス エクイ NClB12035による(
+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジ
ルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニル
アリルエーテルの転化酵母エキス(0,02%)を含む
、ASM鉱物塩培養基(100mjり中のテトラデカン
(1mjlりで30℃で成長されたロードコツカス エ
クイNClB12035の72時間培養物からの生物体
量の約半分を、ASM (50m1)酵母エキス(0,
02%へ)、テトラデカン(0,15mjり、オクタ7
(1mjり 、Tween 80 (0,05m1
)及び4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエ
ーテル(0,05mjりを含むコニカルフラスコ(25
0ml容量)に移した。内容物を30℃で旋回振とう機
上でインキュベートし、Varian3700 (カ
ラム:WHFloo−120上の3%OVI、50 a
m X 2 龍内径、10℃/分で100゛’C−20
0℃、30cc/分でのN、)でのガスクロマトグラフ
ィによる分析の前にメチレンクロライド中にサンプルを
抽出した。ASMは、NH2O1(0,535g/ l
> 、KHzPO4,(0,531g/l)、NazH
POt(0,866g / l ) 、KzSO4(0
,174g/ Il )、MgSO4・711zO(0
,037g / 1)、CaCj? t ・2HtO(
0,00735g / 1 ) 、7th微量元素(1
,Om l / 1 )、及びFeSO4・7HzO(
1,0mlの0.1M溶液)を含む。
+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジ
ルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニル
アリルエーテルの転化酵母エキス(0,02%)を含む
、ASM鉱物塩培養基(100mjり中のテトラデカン
(1mjlりで30℃で成長されたロードコツカス エ
クイNClB12035の72時間培養物からの生物体
量の約半分を、ASM (50m1)酵母エキス(0,
02%へ)、テトラデカン(0,15mjり、オクタ7
(1mjり 、Tween 80 (0,05m1
)及び4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエ
ーテル(0,05mjりを含むコニカルフラスコ(25
0ml容量)に移した。内容物を30℃で旋回振とう機
上でインキュベートし、Varian3700 (カ
ラム:WHFloo−120上の3%OVI、50 a
m X 2 龍内径、10℃/分で100゛’C−20
0℃、30cc/分でのN、)でのガスクロマトグラフ
ィによる分析の前にメチレンクロライド中にサンプルを
抽出した。ASMは、NH2O1(0,535g/ l
> 、KHzPO4,(0,531g/l)、NazH
POt(0,866g / l ) 、KzSO4(0
,174g/ Il )、MgSO4・711zO(0
,037g / 1)、CaCj? t ・2HtO(
0,00735g / 1 ) 、7th微量元素(1
,Om l / 1 )、及びFeSO4・7HzO(
1,0mlの0.1M溶液)を含む。
TK3は、ZnSO4・7)1zO(0,2888/
l ) 、Mn5Oa 44HzO(0,224g /
1 ) 、H+BOi(0,0618g / 12
)、CuSO4−5HzO(0,1248g / l
) 、NazMo04・21(t。
l ) 、Mn5Oa 44HzO(0,224g /
1 ) 、H+BOi(0,0618g / 12
)、CuSO4−5HzO(0,1248g / l
) 、NazMo04・21(t。
(0,0484g / l ) 、CoC1z ・61
1tO(0,0476g八〇、Kへ(0,083g/
l) 、I M HzSOt(1m l Il”)をp
H7,0で含む。
1tO(0,0476g八〇、Kへ(0,083g/
l) 、I M HzSOt(1m l Il”)をp
H7,0で含む。
生成物(+)−4−(2−メ“トキシエチル)−フェニ
ルグリシジルエーテルは、48時間インキュベーション
後に現われ、96時間まで増加した。
ルグリシジルエーテルは、48時間インキュベーション
後に現われ、96時間まで増加した。
このときエポキシドのレベルは、残る4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルアリルエーテルの約15%であっ
た。
シエチル)−フェニルアリルエーテルの約15%であっ
た。
十分な量の(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェ
ニルグリシジルエーテルを蓄積するために、1010X
50及び5X500mlインキュベーション(上述の条
件)からの培養物プロスを、メチレンクロライド(35
0m1)で抽出した。抽出物をNa、SO4で乾燥し、
溶媒を気化し、ヘキサン/エーテル勾配を用いてシリカ
ゲル上でエポキシドを精製して(エポキシドは30%エ
ーテルで溶離された) 、l α10zS=+8.11
° (c =0.95、エタノール)を持つ(+)−4
−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテ
ル(353■)が得られた。
ニルグリシジルエーテルを蓄積するために、1010X
50及び5X500mlインキュベーション(上述の条
件)からの培養物プロスを、メチレンクロライド(35
0m1)で抽出した。抽出物をNa、SO4で乾燥し、
溶媒を気化し、ヘキサン/エーテル勾配を用いてシリカ
ゲル上でエポキシドを精製して(エポキシドは30%エ
ーテルで溶離された) 、l α10zS=+8.11
° (c =0.95、エタノール)を持つ(+)−4
−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテ
ル(353■)が得られた。
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルの光学純度は、ユーロピウムシフト剤Eu
(hfc)+の存在下でparを用いて調べられた(第
1図)。シフト剤を添加すると、化学的に合成された(
±) −4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルにおける双子プロトン((a)及び(b)と示され
る)の各々からのシグナルの包絡線(第1図の)は下手
にシフトし、各々は同じ強度のシグナルの二つの包絡線
にスプリットされた(第1図b 、 (a) +(b)
)。しかし、同じ条件下で、微生物的に作られ(+)−
4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエー
テルにおける双子プロトンの各々から、シグナルの僅か
一つの包絡線が検出された(第1図C、(a) + (
b))。すなわち、微生物的エポキシ化により得られた
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルの光学純度は、pmr測定の実験誤差内で
100%であると測定された。
ジルエーテルの光学純度は、ユーロピウムシフト剤Eu
(hfc)+の存在下でparを用いて調べられた(第
1図)。シフト剤を添加すると、化学的に合成された(
±) −4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルにおける双子プロトン((a)及び(b)と示され
る)の各々からのシグナルの包絡線(第1図の)は下手
にシフトし、各々は同じ強度のシグナルの二つの包絡線
にスプリットされた(第1図b 、 (a) +(b)
)。しかし、同じ条件下で、微生物的に作られ(+)−
4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエー
テルにおける双子プロトンの各々から、シグナルの僅か
一つの包絡線が検出された(第1図C、(a) + (
b))。すなわち、微生物的エポキシ化により得られた
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルの光学純度は、pmr測定の実験誤差内で
100%であると測定された。
実施例■
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルの(−)−メトプロロールへの転化 イソプロピルアミン(1,84m1)を含む乾燥エタノ
ール(6,2m l )中の(+)−4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテル(290■、
実施例I参照)の溶液を還流下で3時間加熱し、その後
溶媒を気化により除去した。
ジルエーテルの(−)−メトプロロールへの転化 イソプロピルアミン(1,84m1)を含む乾燥エタノ
ール(6,2m l )中の(+)−4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテル(290■、
実施例I参照)の溶液を還流下で3時間加熱し、その後
溶媒を気化により除去した。
得た油状物をメチレンクロライド(10mjりに溶解し
、0.2N HCl(10mf)中に抽出し、これは
次にメチレンクロライド(2X 10mIt)で洗われ
た。酸性層を2N NaOH(3mjりで塩基性にし
、生成物をメチレンクロライド(10ml)中に抽出し
た。メチレンクロライド抽出物をNa、SO,上で乾燥
し、溶媒を気化して、粘着性の固体を得た。生成物をヘ
キサンから再結晶して、l Cl to”= 5.4
6° (c=1.01.エタノール)及び融点42−4
5℃を示す(−)−メトプロロール(260111r)
を得た。化学的に作られた(±)−メトプロロール(融
点49−51’C)は、予想通り光学的に不活性であっ
た。(−)−メトプロロール(第2.3図)及び(±)
−メトプロロール(図示せず)のpmr及びマススペク
トルは、要求される構造と一致し、メトプロロール酒石
酸塩の市販サンプルから抽出された(±)−メトプロロ
ール(融点48.5−50.5℃)のpIlrスペクト
ルから区別できなかった。
、0.2N HCl(10mf)中に抽出し、これは
次にメチレンクロライド(2X 10mIt)で洗われ
た。酸性層を2N NaOH(3mjりで塩基性にし
、生成物をメチレンクロライド(10ml)中に抽出し
た。メチレンクロライド抽出物をNa、SO,上で乾燥
し、溶媒を気化して、粘着性の固体を得た。生成物をヘ
キサンから再結晶して、l Cl to”= 5.4
6° (c=1.01.エタノール)及び融点42−4
5℃を示す(−)−メトプロロール(260111r)
を得た。化学的に作られた(±)−メトプロロール(融
点49−51’C)は、予想通り光学的に不活性であっ
た。(−)−メトプロロール(第2.3図)及び(±)
−メトプロロール(図示せず)のpmr及びマススペク
トルは、要求される構造と一致し、メトプロロール酒石
酸塩の市販サンプルから抽出された(±)−メトプロロ
ール(融点48.5−50.5℃)のpIlrスペクト
ルから区別できなかった。
(−)−メトプロロールの光学的純度は、逆相HPLC
カラム(Lichrosorb RP 8 (10#
m)25cmX%″外径、4.9鰭内径、移動相:2
.5m11分での0.1 Mリン酸ナトリウム緩衝液中
の40%アセトニトリル、UV検出)上でのその旦−ロ
イシルジアステレオマーアミド誘導体の分離により決定
された。誘導体化は、J、バーマンソン()lerma
nsson)とC,J、フォノ バール(Van Ba
hr)により、J、 Chrom、 227.113
(1982)に記載されるように、メトプロロールを第
三ブトキシカルボニル−8−ロイシンの(BOC−3−
ロイシン)対称無水物と反応させ、次にトリフルオル酢
酸によりBOC基を除去することにより達成された。(
±)−メトプロロールから誘導されたサンプルの分析は
、ラセミ体について予期されるように、同じ強さの二つ
のピークを結果した。
カラム(Lichrosorb RP 8 (10#
m)25cmX%″外径、4.9鰭内径、移動相:2
.5m11分での0.1 Mリン酸ナトリウム緩衝液中
の40%アセトニトリル、UV検出)上でのその旦−ロ
イシルジアステレオマーアミド誘導体の分離により決定
された。誘導体化は、J、バーマンソン()lerma
nsson)とC,J、フォノ バール(Van Ba
hr)により、J、 Chrom、 227.113
(1982)に記載されるように、メトプロロールを第
三ブトキシカルボニル−8−ロイシンの(BOC−3−
ロイシン)対称無水物と反応させ、次にトリフルオル酢
酸によりBOC基を除去することにより達成された。(
±)−メトプロロールから誘導されたサンプルの分析は
、ラセミ体について予期されるように、同じ強さの二つ
のピークを結果した。
(−)−メトプロロールから誘導されたサンプルは、9
7.9:2.3の強度比(95,4%の光学純度に相当
)を持つ二つのピークを与えた。
7.9:2.3の強度比(95,4%の光学純度に相当
)を持つ二つのピークを与えた。
実施例■
シュードモナス アエルギノサN CI B 1203
6による(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ルグリシジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)
−フェニルアリルエーテルの転化及び引続((−)−メ
トプロロールへのその転化シュードモナス アエルギノ
サN CI B 1203Gの懸濁物は、細胞(0,7
5%乳酸ナトリウム及び0.05%ジェトキシメタンを
含むASM鉱物塩培養基中で30℃で24時間成長され
た)をASM中に、元の培養基体積の十分の1に等しい
体積まで再懸濁することによりiJl製した。
6による(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ルグリシジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)
−フェニルアリルエーテルの転化及び引続((−)−メ
トプロロールへのその転化シュードモナス アエルギノ
サN CI B 1203Gの懸濁物は、細胞(0,7
5%乳酸ナトリウム及び0.05%ジェトキシメタンを
含むASM鉱物塩培養基中で30℃で24時間成長され
た)をASM中に、元の培養基体積の十分の1に等しい
体積まで再懸濁することによりiJl製した。
細胞懸濁物(1100mjりを4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルアリルエーテル(3,3g)と共に30
℃、220 rpo+でインキエベートした。
ル)−フェニルアリルエーテル(3,3g)と共に30
℃、220 rpo+でインキエベートした。
24時間後に、反応混合物をメチレンクロライド(50
0mjりで抽出し、抽出物をNazSO4で乾燥し、そ
して溶媒を気化して油状物(2,67g)を得た。シリ
ガゲル上での精製(実施例Iと同様)は、1αIn”=
+8.21° (C=0.943、エタノール)を持つ
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテル(930nt)を与えた。
0mjりで抽出し、抽出物をNazSO4で乾燥し、そ
して溶媒を気化して油状物(2,67g)を得た。シリ
ガゲル上での精製(実施例Iと同様)は、1αIn”=
+8.21° (C=0.943、エタノール)を持つ
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテル(930nt)を与えた。
ユーロピウム シフト剤ll!u(hfc)sの存在下
でpIIIrにより測定される(実施例Iと同様に)光
学純度は、pmr測定の実験誤差内で100%であると
決定された。
でpIIIrにより測定される(実施例Iと同様に)光
学純度は、pmr測定の実験誤差内で100%であると
決定された。
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテル(694■)が、1αl D24−−5.
49° (c=1.029)エタノール)、融点44−
46℃を持つ(−)−メトプロロール(579■)を作
るために用いられた(実施例■と同様の方法)。光学純
度は、98%であると測定された(実施例■の方法)。
ジルエーテル(694■)が、1αl D24−−5.
49° (c=1.029)エタノール)、融点44−
46℃を持つ(−)−メトプロロール(579■)を作
るために用いられた(実施例■と同様の方法)。光学純
度は、98%であると測定された(実施例■の方法)。
母液は再結晶されて、96%の光学純度を持つ(−)−
メトプロロール(113■)を与えた。
メトプロロール(113■)を与えた。
実施例■
シェードモナス アエルギノサNCI B 8704に
よる(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグ
リシジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フ
ェニルアリルエーテルの転化及ヒ引続<(−)−メトプ
ロロールへのその転化シェードモナス アエルギノサN
CI B 8704の細胞懸濁物(200ml)(実施
例■に記載のように調製)を、4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルアリルエーテル(2g)と共に30℃で
24時間インキュベートし、その後懸濁物を抽出及び精
製しく実施例■と同様に)、(+)−4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテル(91■)を
得た。ユーロピウム シフト剤Eu (hfc) 3の
存在下でpmrにより測定(実施例夏と同様)されたエ
ポキシドの光学純度は、par測定の誤差内で100%
であると測定された。
よる(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグ
リシジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フ
ェニルアリルエーテルの転化及ヒ引続<(−)−メトプ
ロロールへのその転化シェードモナス アエルギノサN
CI B 8704の細胞懸濁物(200ml)(実施
例■に記載のように調製)を、4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルアリルエーテル(2g)と共に30℃で
24時間インキュベートし、その後懸濁物を抽出及び精
製しく実施例■と同様に)、(+)−4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテル(91■)を
得た。ユーロピウム シフト剤Eu (hfc) 3の
存在下でpmrにより測定(実施例夏と同様)されたエ
ポキシドの光学純度は、par測定の誤差内で100%
であると測定された。
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテル(76■)が、S−ロイシルジアステレオ
マー誘導体のHPLCにより測定して(実施例■と同様
)98.8%の光学純度を持つ、融点42−45℃、1
αLtS−−4,93゜(c−0,944、エタノール
)の(−)−メトプロロール(55■)を作るために用
いられた(実施例■と同様の方法)、母液の気化は、9
5.2%光学純度の(−)−メトプロロール(17■)
を与えた。
ジルエーテル(76■)が、S−ロイシルジアステレオ
マー誘導体のHPLCにより測定して(実施例■と同様
)98.8%の光学純度を持つ、融点42−45℃、1
αLtS−−4,93゜(c−0,944、エタノール
)の(−)−メトプロロール(55■)を作るために用
いられた(実施例■と同様の方法)、母液の気化は、9
5.2%光学純度の(−)−メトプロロール(17■)
を与えた。
実施例■
シュードモナス プチダ NCIB9571による(+
)−4−(2−メトキシエチル)−フェニ・ルグリシジ
ルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニル
アリルエーテルの転化及び引!<()−メトプロロール
へのその転化シュードモナス プチダ NCIB957
1の細胞懸濁物(200mN)(実施例■のように調製
)を、4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエ
ーテル(1g)と共に30℃で24時間インキュベート
し、その後メチレンクロライドに抽出し、精製して(実
施例■と同様に)、1αL”=+6.42° (c=0
.88、エタノール)を持つ(+)−4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテル(324■)
を得た。ユーロピウム シフト剤f!u(hfc)3の
存在下でpIIlrにより測定(実施例Iと同様)した
光学純度は、pmr測定の実験誤差内で100%であっ
た。
)−4−(2−メトキシエチル)−フェニ・ルグリシジ
ルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニル
アリルエーテルの転化及び引!<()−メトプロロール
へのその転化シュードモナス プチダ NCIB957
1の細胞懸濁物(200mN)(実施例■のように調製
)を、4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエ
ーテル(1g)と共に30℃で24時間インキュベート
し、その後メチレンクロライドに抽出し、精製して(実
施例■と同様に)、1αL”=+6.42° (c=0
.88、エタノール)を持つ(+)−4−(2−メトキ
シエチル)−フェニルグリシジルエーテル(324■)
を得た。ユーロピウム シフト剤f!u(hfc)3の
存在下でpIIlrにより測定(実施例Iと同様)した
光学純度は、pmr測定の実験誤差内で100%であっ
た。
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテル(214mg)をイソプロピルアミンと縮
合させて(実施例■と同様)、融点44−46℃、Iα
lo””’ 5.00” (c=t、oi、エタノ
ール)の(−)−メトプロロール(146′■)を得た
。光学純度(実施例■と同様の方法)は、98%である
と測定された。母液の気化は、97.5%光学密度の(
−)−メトプロロール(9N)を与えた。
ジルエーテル(214mg)をイソプロピルアミンと縮
合させて(実施例■と同様)、融点44−46℃、Iα
lo””’ 5.00” (c=t、oi、エタノ
ール)の(−)−メトプロロール(146′■)を得た
。光学純度(実施例■と同様の方法)は、98%である
と測定された。母液の気化は、97.5%光学密度の(
−)−メトプロロール(9N)を与えた。
実施例■
シュードモナス オレオボランス ATCC29347
による(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニル
グリシジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−
フェニルアリルエーテルの転化及び引!< (−)−
メトプロロールへのその転化 シュードモナス オレオボランス ATCC29347
の細胞懸濁物(200mjり (実施例■と同様に調
製)を、4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリル
エーテル(2g)と共に30℃で5時間インキュベート
した。メチレンクロライドへの抽出及びシリカゲル上で
の精製(実施例■と同様)は、1ff1otS=+8.
02° (c−1,16、エタノール)の(+)−4−
(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテル
(289■)を与えた。ユーロピウムシフト剤Eu(h
fc)+の存在下でparにより測定した(実施例■と
同様)光学純度は、pIllr測定の実験誤差内で10
0%であると決定された。
による(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニル
グリシジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−
フェニルアリルエーテルの転化及び引!< (−)−
メトプロロールへのその転化 シュードモナス オレオボランス ATCC29347
の細胞懸濁物(200mjり (実施例■と同様に調
製)を、4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリル
エーテル(2g)と共に30℃で5時間インキュベート
した。メチレンクロライドへの抽出及びシリカゲル上で
の精製(実施例■と同様)は、1ff1otS=+8.
02° (c−1,16、エタノール)の(+)−4−
(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテル
(289■)を与えた。ユーロピウムシフト剤Eu(h
fc)+の存在下でparにより測定した(実施例■と
同様)光学純度は、pIllr測定の実験誤差内で10
0%であると決定された。
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテル(171■)は、イソプロピルアミンと反
応させられ(実施例■と同じ方法)、融点44−45℃
、1αI o”= 5.27° (C=0.967、
エタノール)を持つ(−)−メトプロロール(154■
)を与えた。光学純度は、S−ロンシルジアステレオマ
ー誘導体のHPLCに基づき98.4%であると測定さ
れた。母液の気化は、92.2%光学純度の(−)−メ
トプロロール(6■)を与えた。
ジルエーテル(171■)は、イソプロピルアミンと反
応させられ(実施例■と同じ方法)、融点44−45℃
、1αI o”= 5.27° (C=0.967、
エタノール)を持つ(−)−メトプロロール(154■
)を与えた。光学純度は、S−ロンシルジアステレオマ
ー誘導体のHPLCに基づき98.4%であると測定さ
れた。母液の気化は、92.2%光学純度の(−)−メ
トプロロール(6■)を与えた。
実施例■
(+)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ルアリルエーテルの微生物的転化Tween 80
(0,05m1)、テトラデカン(0,05m1)及
び4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエーテ
ル(0,05mjりを含む鉱物塩培養基(50mjりを
、ノカルディア コラリナATCC31338、ロード
コツカスsp。
ジルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ルアリルエーテルの微生物的転化Tween 80
(0,05m1)、テトラデカン(0,05m1)及
び4−(2−メトキシエチル)−フェニルアリルエーテ
ル(0,05mjりを含む鉱物塩培養基(50mjりを
、ノカルディア コラリナATCC31338、ロード
コツカスsp。
NClB11277又はマイコバクテリウム コードク
ロウスNCIB9703(すべて0.5%テトラデカン
で72時間予め成長させた)と共にインキュベートした
。サンプルを24時間及び96時間に採り、メチレンク
ロライドに抽出し、ガスクロマトグラフ(G C)で分
析した。
ロウスNCIB9703(すべて0.5%テトラデカン
で72時間予め成長させた)と共にインキュベートした
。サンプルを24時間及び96時間に採り、メチレンク
ロライドに抽出し、ガスクロマトグラフ(G C)で分
析した。
各場合において、4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ルグリシジルエーテルに対応するピークが、下記の転化
率で検出された:マイコバクテリウム ロードクロウス
、24時間後2%;ロードコツカスsp、 、96時間
後1%;ノカルディアコラリナ、96時間後に5%。ノ
カルディア コラリナを用いたスケールアップ実験(5
t) Omj培養、上述の条件)の内容物をメチレンク
ロライドに抽出し、シリカゲル上での精製及びp酊分析
を行ったとき、構造の一層の確認が得られた。4−(2
−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテルのp
mrユーロピウムシフトスペクトルは100%の純度を
示唆し、ロードコツカス エクイから得られた(+)−
4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエー
テルのユーロピウム pmrスペクトルと同じであった
。
ルグリシジルエーテルに対応するピークが、下記の転化
率で検出された:マイコバクテリウム ロードクロウス
、24時間後2%;ロードコツカスsp、 、96時間
後1%;ノカルディアコラリナ、96時間後に5%。ノ
カルディア コラリナを用いたスケールアップ実験(5
t) Omj培養、上述の条件)の内容物をメチレンク
ロライドに抽出し、シリカゲル上での精製及びp酊分析
を行ったとき、構造の一層の確認が得られた。4−(2
−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテルのp
mrユーロピウムシフトスペクトルは100%の純度を
示唆し、ロードコツカス エクイから得られた(+)−
4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエー
テルのユーロピウム pmrスペクトルと同じであった
。
実施例■
マイコバクテリウム NClB11626による(+)
−フェニルグリシジルエーテルへのフェニルアリルエー
テルの転化及び続くそれの(−)−イソプロピルアミノ
−3−フェノキシ−2−プロパツールの転化 連続培養条件:培養体積2,11.培養基;八M2((
NFI4)!S04 (1,45g / l ) 、H
3PO4(1,0g / ff1Mg5Oa ・7gg
O(0,099g / j! )、CaCj! t ・
2HtO(0,015g / l ) 、Tlh微量元
素溶液(2ml/jり0、I M Fe50* ・7
HtO(1m/ Il )を含む)。炭素源;エチレン
25m11分、空気300mj!/分、攪拌速度:28
Orpm、温度28℃、pH6,8、希釈速度0.02
h〜’ (μmax =約0.03h−1)。これら
の条件は、約3.2 g / l乾燥重量の生物体量5
を維持する。細胞は、使用前に一般に濃縮される(
遠心分離により。次に使用ずみ培養基に再懸濁される)
。
−フェニルグリシジルエーテルへのフェニルアリルエー
テルの転化及び続くそれの(−)−イソプロピルアミノ
−3−フェノキシ−2−プロパツールの転化 連続培養条件:培養体積2,11.培養基;八M2((
NFI4)!S04 (1,45g / l ) 、H
3PO4(1,0g / ff1Mg5Oa ・7gg
O(0,099g / j! )、CaCj! t ・
2HtO(0,015g / l ) 、Tlh微量元
素溶液(2ml/jり0、I M Fe50* ・7
HtO(1m/ Il )を含む)。炭素源;エチレン
25m11分、空気300mj!/分、攪拌速度:28
Orpm、温度28℃、pH6,8、希釈速度0.02
h〜’ (μmax =約0.03h−1)。これら
の条件は、約3.2 g / l乾燥重量の生物体量5
を維持する。細胞は、使用前に一般に濃縮される(
遠心分離により。次に使用ずみ培養基に再懸濁される)
。
フェニルグリシジルエーテルはGCにより分析されたく
温度プログラムが10℃/分で5′0−100℃である
ことを除いて先の実施例と同じカラム及び条件)。
温度プログラムが10℃/分で5′0−100℃である
ことを除いて先の実施例と同じカラム及び条件)。
フェニルグリシジルエーテルを作るために、29)25
7!バツチニ相系を用いた。転化は、750m2細胞懸
濁物(6,9g/ff乾燥重量)、及び2.5%V /
Vフェニルアリルエーテルを含む1500mlのイソ
オクタンを含む醗酵器中で行われた。
7!バツチニ相系を用いた。転化は、750m2細胞懸
濁物(6,9g/ff乾燥重量)、及び2.5%V /
Vフェニルアリルエーテルを含む1500mlのイソ
オクタンを含む醗酵器中で行われた。
) エポキシドは193gモル/h/g乾燥重量(0
,3g/h/g乾燥重量)の速度で作られ1、 10時
間後にシリカゲル上のクロマトグラフィにより分離され
、次に蒸留により精製されて(+)−フェニルグリシジ
ルエーテル(750■)ヲ与えた。
,3g/h/g乾燥重量)の速度で作られ1、 10時
間後にシリカゲル上のクロマトグラフィにより分離され
、次に蒸留により精製されて(+)−フェニルグリシジ
ルエーテル(750■)ヲ与えた。
微生物的に作られた(+) −フェニルグリシジルエー
テルのpairスペクトル及びマススペクトルは、要求
される構造と一致し、フェニルアリルエーテルとm−ク
ロル過安息香酸の反応により化学的に作られた(±)−
フェニルグリシジルエーテルのそれと同一であった。(
+)−フェニルグリシジルエーテルはl cr’l D
”=’+ 11.38° (C−1,09、エタノール
)の比旋光を与えた。
テルのpairスペクトル及びマススペクトルは、要求
される構造と一致し、フェニルアリルエーテルとm−ク
ロル過安息香酸の反応により化学的に作られた(±)−
フェニルグリシジルエーテルのそれと同一であった。(
+)−フェニルグリシジルエーテルはl cr’l D
”=’+ 11.38° (C−1,09、エタノール
)の比旋光を与えた。
光学純度は、実施例Iと同様にユーロピウムシフト剤ε
u(hfc)sの存在下でpair’を用いて調べられ
た。シフト剤を加えると、化学的に合成された(±)−
フェニルグリシジルエーテル中の双子プロトンの各々か
らのシグナルの包絡線が下手にシフトし、各々が等しい
強度のシグナルの二つの包絡線にスプリットされた。一
方、微生物的に作られた(+)−フェニルグリシジルエ
ーテル中の双子プロトンからのシグナルの包絡線は、6
.7:1の比でスプリットされた。この結果は、分子の
87%が一つのエナンチオマー形であることを示し、こ
れは74%の光学純度を表わす。微生物及び化学の源か
らのエポキシドの混合物の分析は、(+)−フェニルグ
リシジルエーテルの90%が一つのエナンチオマー形(
80%の光学純度に相当)にあったことを確認するシグ
ナル比を与えた。
u(hfc)sの存在下でpair’を用いて調べられ
た。シフト剤を加えると、化学的に合成された(±)−
フェニルグリシジルエーテル中の双子プロトンの各々か
らのシグナルの包絡線が下手にシフトし、各々が等しい
強度のシグナルの二つの包絡線にスプリットされた。一
方、微生物的に作られた(+)−フェニルグリシジルエ
ーテル中の双子プロトンからのシグナルの包絡線は、6
.7:1の比でスプリットされた。この結果は、分子の
87%が一つのエナンチオマー形であることを示し、こ
れは74%の光学純度を表わす。微生物及び化学の源か
らのエポキシドの混合物の分析は、(+)−フェニルグ
リシジルエーテルの90%が一つのエナンチオマー形(
80%の光学純度に相当)にあったことを確認するシグ
ナル比を与えた。
(+)−フェニルグリシジルエーテルの光学純度の別の
確認は、その(−)−1−イソプロピルアミノ−3−フ
ェノキシ−2−プロパツールへの転化の後に確立された
。(+)−フェニルグリシジルエーテル(300■)が
イソプロピルアミンと反応され(実施例■と同様)、1
α1 、zS.、−6,51” (c=0.984、
エタノール)、融点42−44℃の(−)、+ 1−イ
ソプロピルアミノ−3−フェノキシ−2−プロパツール
(125■)を与えた。(±)−1−イソプロピルアミ
ノ−3=フェノキシ−2−プロパツールが、(±)−フ
ェニルグリシジルエーテルから同様に合成された。
確認は、その(−)−1−イソプロピルアミノ−3−フ
ェノキシ−2−プロパツールへの転化の後に確立された
。(+)−フェニルグリシジルエーテル(300■)が
イソプロピルアミンと反応され(実施例■と同様)、1
α1 、zS.、−6,51” (c=0.984、
エタノール)、融点42−44℃の(−)、+ 1−イ
ソプロピルアミノ−3−フェノキシ−2−プロパツール
(125■)を与えた。(±)−1−イソプロピルアミ
ノ−3=フェノキシ−2−プロパツールが、(±)−フ
ェニルグリシジルエーテルから同様に合成された。
(−)=1−イソプロピルアミノ−3−フェノキ′シー
2−プロパツール(第5〜6図)及び(±)−1−イソ
プロピルアミノ−3−フェノキシ−2−プロパツール(
図示せず)のpmr 及びマススペクトルは、要求され
る構造と一致した。光学純度は、対応するS−ロイシル
ジアステレオマー誘導体のHPLCにより(実施例■と
同様)測定され、80%であると決定された。
2−プロパツール(第5〜6図)及び(±)−1−イソ
プロピルアミノ−3−フェノキシ−2−プロパツール(
図示せず)のpmr 及びマススペクトルは、要求され
る構造と一致した。光学純度は、対応するS−ロイシル
ジアステレオマー誘導体のHPLCにより(実施例■と
同様)測定され、80%であると決定された。
実施例■
シュードモナス オレオボランス ATCC29347
による(+)−4−(2,3−エポキシプロピルオキシ
)−フェニルアセトアミドへの4−アリルオキシ−フェ
ニルアセトアミドの転化及び!< (−)−1−p−
カルバモイルメチルフェノキシ−3−イソプロピルアミ
ノ−2−プロパツール((−)−アテノロール)へのそ
れの転化シュードモナス オレオボランス ATCC2
9347の懸濁物は、細胞(0,75%乳酸ナトリウム
及び0.05%ジェトキシメタンを含むpH7のpsx
鉱物塩培養基中で30℃で24時間成長されたもの)を
PSX中にpi(7,5で、元の培養物体積の10分の
1に等しい体積まで再懸濁することにより調製した。P
SXは下記のものを含む:KIIzPQa (8,92
g / f ’)、NazHPO4(2,94g /
1 )、(NIIa、)gllP04. (1,0g
/ 1 ) 、(Ni(4)zsOn (0,2g/
l )KCj! (0,2g / j!! ) 、クエ
ン酸ナトリウム(0,294g/ f) 、Ca5Oa
・2HzO(0,005g/ 1)、MgSO4・
711□0 (0,2g/l) 、及びPSII微量元
素溶液(10mf/J)。
による(+)−4−(2,3−エポキシプロピルオキシ
)−フェニルアセトアミドへの4−アリルオキシ−フェ
ニルアセトアミドの転化及び!< (−)−1−p−
カルバモイルメチルフェノキシ−3−イソプロピルアミ
ノ−2−プロパツール((−)−アテノロール)へのそ
れの転化シュードモナス オレオボランス ATCC2
9347の懸濁物は、細胞(0,75%乳酸ナトリウム
及び0.05%ジェトキシメタンを含むpH7のpsx
鉱物塩培養基中で30℃で24時間成長されたもの)を
PSX中にpi(7,5で、元の培養物体積の10分の
1に等しい体積まで再懸濁することにより調製した。P
SXは下記のものを含む:KIIzPQa (8,92
g / f ’)、NazHPO4(2,94g /
1 )、(NIIa、)gllP04. (1,0g
/ 1 ) 、(Ni(4)zsOn (0,2g/
l )KCj! (0,2g / j!! ) 、クエ
ン酸ナトリウム(0,294g/ f) 、Ca5Oa
・2HzO(0,005g/ 1)、MgSO4・
711□0 (0,2g/l) 、及びPSII微量元
素溶液(10mf/J)。
ps微量元素溶液は下記のものを含む:(NH4)!S
O4・Fesom ・6HtO(0,25g / l
) 、Zn5O(10)7HzO(0,05g/ l
) 、MnCj!z ・41120 (0,03g/
1> 、CLISO4・5HzO(0,015g/
i’) 、CoC1z・68zO(0,015g /
J) 、HsBOa (0,005g / 1 )、N
a2MoOn ・28zO(0,0055g / j
り 、Kl (0,01g/l) 、HCj! (p
)13まで))。
O4・Fesom ・6HtO(0,25g / l
) 、Zn5O(10)7HzO(0,05g/ l
) 、MnCj!z ・41120 (0,03g/
1> 、CLISO4・5HzO(0,015g/
i’) 、CoC1z・68zO(0,015g /
J) 、HsBOa (0,005g / 1 )、N
a2MoOn ・28zO(0,0055g / j
り 、Kl (0,01g/l) 、HCj! (p
)13まで))。
細胞懸濁物(1100mjりは、旋回振とう機上の11
個の2.5Eコニカルフラスコ中で30℃で、水中の1
0%のボールミルされた懸濁物として加えられた4−ア
リルオキシフェニルアセトアミド(3,2g)と共にイ
ンキエベートされた。
個の2.5Eコニカルフラスコ中で30℃で、水中の1
0%のボールミルされた懸濁物として加えられた4−ア
リルオキシフェニルアセトアミド(3,2g)と共にイ
ンキエベートされた。
72時間後に、インキュベーション混合物をメチレンク
ロライド(1000mIl)で抽出し、溶媒を乾燥気化
され、その後残渣をア七トンから再結晶して2.27
gの白色結晶状物質を得た。その組成は、)(PLC(
カラム: Lichrosorb RP 8(l O
μm) 25cmX ’A ’外径、4.9鶴内径、移
動相2mm!/分の水中40%アセトニトリル、UV検
出)により測定して、90%4−アリルオキシ−フェニ
ルアセトアミド及び10%4− (2゜3−エポキシプ
ロピルオキシ)−フェニルアセトアミドであった。
ロライド(1000mIl)で抽出し、溶媒を乾燥気化
され、その後残渣をア七トンから再結晶して2.27
gの白色結晶状物質を得た。その組成は、)(PLC(
カラム: Lichrosorb RP 8(l O
μm) 25cmX ’A ’外径、4.9鶴内径、移
動相2mm!/分の水中40%アセトニトリル、UV検
出)により測定して、90%4−アリルオキシ−フェニ
ルアセトアミド及び10%4− (2゜3−エポキシプ
ロピルオキシ)−フェニルアセトアミドであった。
約230■の4−(2,3−エポキシプロピルオキシ)
−フェニルアセトアミドを含む結晶化した抽出物を乾い
たエタノール(40mjりに溶解し、次に還流下でイソ
プロピルアミン(2,5mmりと共に5時間加熱し、そ
の後過剰の溶媒を気化した。残渣をメチレンクロライド
(50ml1)に溶解し、3 X 50mff1の0.
2N )icm!で抽出した。
−フェニルアセトアミドを含む結晶化した抽出物を乾い
たエタノール(40mjりに溶解し、次に還流下でイソ
プロピルアミン(2,5mmりと共に5時間加熱し、そ
の後過剰の溶媒を気化した。残渣をメチレンクロライド
(50ml1)に溶解し、3 X 50mff1の0.
2N )icm!で抽出した。
酸層を一緒にし、メチレンクロライドで洗い、5N
NaOHで塩基性にした。形成された白色沈澱をメチレ
ンクロライド(3X 100mmりに抽出し、抽出物を
Na2SO2で乾燥し、溶媒を気化して白色固体を得た
。これをヘキサン/酢酸エチルから再結晶して(−)−
アテノロール(^tenolol)(76■)を得た。
NaOHで塩基性にした。形成された白色沈澱をメチレ
ンクロライド(3X 100mmりに抽出し、抽出物を
Na2SO2で乾燥し、溶媒を気化して白色固体を得た
。これをヘキサン/酢酸エチルから再結晶して(−)−
アテノロール(^tenolol)(76■)を得た。
1αl D”−−3,9° (c=1、01 、EtO
H) 、融点146°−148℃、’II NMR(C
HCl s ) 360 MHzスペクトル:61.1
(d。
H) 、融点146°−148℃、’II NMR(C
HCl s ) 360 MHzスペクトル:61.1
(d。
6+1. C113) 、61.5−2.5ブロード(
s’+ 28 、川。
s’+ 28 、川。
011) 、62.82 (m、 18.N1(C1l
) 、δ2.75/2.95 (m。
) 、δ2.75/2.95 (m。
2H,CHJH)、δ3.53 (s、’ 2H,GO
−CHt ) 、63.98(+a、 3B、 −0
−CL−CI−)、65.35ブロード(s、 211
゜u2)、66.9 (d、 211. ハラ置換芳香
族)、67.2(d、 211.パラ置換芳香族)。化
学イオン化(Nlh)マススペクトルは、分子イオン(
M+H)” m/e267を与え、これは266の分子
量を示しており・、予想されたマスと一致する。per
及びマススペクトルは、化学的に合成された(±)−ア
テノロールのそれと同じであった。
−CHt ) 、63.98(+a、 3B、 −0
−CL−CI−)、65.35ブロード(s、 211
゜u2)、66.9 (d、 211. ハラ置換芳香
族)、67.2(d、 211.パラ置換芳香族)。化
学イオン化(Nlh)マススペクトルは、分子イオン(
M+H)” m/e267を与え、これは266の分子
量を示しており・、予想されたマスと一致する。per
及びマススペクトルは、化学的に合成された(±)−ア
テノロールのそれと同じであった。
(−)−アテノロールの光学純度は、逆相)IPLCカ
ラム(Lichrosorb RP 8 (10/J
m) 25cm×騒“外径、4.9fl内径、移動相1
.5 m l /分の2%酢酸(NH3でpH3,7に
)50:メタノール50)上でのそのジベンゾイル−酒
石酸モノエステルジアステレオマー誘導体の分離により
測定された。誘導体化は、何、リング−(Linder
)ら、J。
ラム(Lichrosorb RP 8 (10/J
m) 25cm×騒“外径、4.9fl内径、移動相1
.5 m l /分の2%酢酸(NH3でpH3,7に
)50:メタノール50)上でのそのジベンゾイル−酒
石酸モノエステルジアステレオマー誘導体の分離により
測定された。誘導体化は、何、リング−(Linder
)ら、J。
Chrom、 316、p605−616 (1984
)に記述されるように、(±)−又は(−)−アテノロ
ールを(R,R)−0,O−ジベンゾイル無水酒石酸と
反応させることにより達成された。(±−アテノロール
から誘導されたサンプルの分析はほぼ同じ強度の二つの
ジアステレオマーピークの形成を結果、一方、(−)
−アテノロールから誘導されたサンプルは、1.5:9
8.5の強度比(97,0%の光学純度に相当)の二つ
のピークの形成を結果した。
)に記述されるように、(±)−又は(−)−アテノロ
ールを(R,R)−0,O−ジベンゾイル無水酒石酸と
反応させることにより達成された。(±−アテノロール
から誘導されたサンプルの分析はほぼ同じ強度の二つの
ジアステレオマーピークの形成を結果、一方、(−)
−アテノロールから誘導されたサンプルは、1.5:9
8.5の強度比(97,0%の光学純度に相当)の二つ
のピークの形成を結果した。
実施例X
シュードモナス オレオボランス ATCC29347
による4−(2,3−エポキシプロピルオキシ)−フェ
ニルアセトアミドへの4−アリルオキシ−フェニルアセ
トアミドの転化シュードモナス オレオボランス AT
CC29347の懸濁物は、細胞(0,75%グリセロ
ール及び0,05%ジェトキシメタンを含むpH7のp
sx鉱物塩培養基中で30℃で24時間成長されたもの
)をpH7,5のPSXに、元の培養物体積の10分の
1に等しい体積に再懸濁することにより調製された。
による4−(2,3−エポキシプロピルオキシ)−フェ
ニルアセトアミドへの4−アリルオキシ−フェニルアセ
トアミドの転化シュードモナス オレオボランス AT
CC29347の懸濁物は、細胞(0,75%グリセロ
ール及び0,05%ジェトキシメタンを含むpH7のp
sx鉱物塩培養基中で30℃で24時間成長されたもの
)をpH7,5のPSXに、元の培養物体積の10分の
1に等しい体積に再懸濁することにより調製された。
細胞懸濁物(10ml、12.6g/I!乾燥重量))
を、旋回インキュベーター上で250mA!のスト
・ フパー付コニカルフラスコ中で、90■/ m
jtのボールミルされ音波処理された4−アリルオキシ
−フェニルアセトアミドの懸濁物(これも50■/ml
のTween 80を含む)のQ、 5 m Itと共
に30℃でインキユベートした。サンプル(1ml)を
メチレンクロライド(2ml)中に抽出し、溶媒を気化
し、残渣をHPLC(実施例■での4−(2,3−エポ
キシプロピルオキシ)−フェニルアセトアミドの分析と
同じ条件)による分析の前にジメチルホルムアミドに再
溶解した。インキュベーション混合物中の4− (2,
3−エポキシプロピルオキシ)−フェニルアセトアミド
の濃度は、3時間後及び24時間後に各々0.9 g
/ l及び1゜3 g/I!に達した。
を、旋回インキュベーター上で250mA!のスト
・ フパー付コニカルフラスコ中で、90■/ m
jtのボールミルされ音波処理された4−アリルオキシ
−フェニルアセトアミドの懸濁物(これも50■/ml
のTween 80を含む)のQ、 5 m Itと共
に30℃でインキユベートした。サンプル(1ml)を
メチレンクロライド(2ml)中に抽出し、溶媒を気化
し、残渣をHPLC(実施例■での4−(2,3−エポ
キシプロピルオキシ)−フェニルアセトアミドの分析と
同じ条件)による分析の前にジメチルホルムアミドに再
溶解した。インキュベーション混合物中の4− (2,
3−エポキシプロピルオキシ)−フェニルアセトアミド
の濃度は、3時間後及び24時間後に各々0.9 g
/ l及び1゜3 g/I!に達した。
実施例XI
シェードモナス アエルギノサ MCl812036、
シェードモナス アエルギノサ NCI B 8704
及びシュードモナス プチダ NCIB9571による
4−(2,3−エポキシプロピルオキシ)−フェニルア
セトアミドへの4−アリルオキシ−フェニルアセトアミ
ドの転化 シュードモナス アエルギノサ NCl312036、
シュードモナス アエルギノサ NCI B 8704
及びシュードモナス プチダ NCIB9571の細胞
懸濁物は、細胞(0,75%酢蔽ナトリウム及び0.0
5%ジェトキシメタンを含むpfl?のPSに鉱物塩培
養基中で30℃で24時間成長されたもの)をpf17
.5のpsxに、元の培養物体積の10分の1に等しい
体積に再懸濁することにより調製された。
シェードモナス アエルギノサ NCI B 8704
及びシュードモナス プチダ NCIB9571による
4−(2,3−エポキシプロピルオキシ)−フェニルア
セトアミドへの4−アリルオキシ−フェニルアセトアミ
ドの転化 シュードモナス アエルギノサ NCl312036、
シュードモナス アエルギノサ NCI B 8704
及びシュードモナス プチダ NCIB9571の細胞
懸濁物は、細胞(0,75%酢蔽ナトリウム及び0.0
5%ジェトキシメタンを含むpfl?のPSに鉱物塩培
養基中で30℃で24時間成長されたもの)をpf17
.5のpsxに、元の培養物体積の10分の1に等しい
体積に再懸濁することにより調製された。
細胞懸濁物(10mN)を、旋回インキュベーションの
ストッパー付250mj!コニカルフラスコ中で30℃
で、10%のボールミルされた4−7リルオキシーフエ
ニルアセトアミド水性懸濁物(これも5%Tweenを
含む)の0.5 m jtと共にインキユベートした。
ストッパー付250mj!コニカルフラスコ中で30℃
で、10%のボールミルされた4−7リルオキシーフエ
ニルアセトアミド水性懸濁物(これも5%Tweenを
含む)の0.5 m jtと共にインキユベートした。
24時間後に、インキュベーション混合物をメチレンク
ロライド中に抽出し、下記の濃度で4− (2,3−エ
ポキシプロピルオキシ)−フェニルアセトアミドを含む
ことが判ったニジエートモナス アエルギノサ NCr
B 12036.0.07g/j!ニジエートモナス
アエルギノサNCIB8704.0.08g/lシュー
ドモナス プチダ NCrB9571,0.19g/j
!(上述の実施例と同じ< HPLCにて分析)。
ロライド中に抽出し、下記の濃度で4− (2,3−エ
ポキシプロピルオキシ)−フェニルアセトアミドを含む
ことが判ったニジエートモナス アエルギノサ NCr
B 12036.0.07g/j!ニジエートモナス
アエルギノサNCIB8704.0.08g/lシュー
ドモナス プチダ NCrB9571,0.19g/j
!(上述の実施例と同じ< HPLCにて分析)。
実施例xn
シェードモナス オレオボランス ATCC29347
による4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジ
ルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニル
アリルエーテルの転化シェードモナス オレiボランス
ATCC29347の懸濁物は、細胞(0,75%グ
リセロール及び0.05%ジェトキシメタンを含むpH
7のpsx鉱物塩培養中で定常相まで30℃で成長させ
た)を、元の培養基体積の十分の−に等しい体積までF
SX(pH7,5)に再懸濁することにより調製された
。
による4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシジ
ルエーテルへの4−(2−メトキシエチル)−フェニル
アリルエーテルの転化シェードモナス オレiボランス
ATCC29347の懸濁物は、細胞(0,75%グ
リセロール及び0.05%ジェトキシメタンを含むpH
7のpsx鉱物塩培養中で定常相まで30℃で成長させ
た)を、元の培養基体積の十分の−に等しい体積までF
SX(pH7,5)に再懸濁することにより調製された
。
細胞懸濁物(250ml1コニカルフラスコに入れられ
た10m!、乾燥重量12.6g/j!りを4−(2−
メトキシエチル)−フェニルアリルエーテル(250μ
l)及びグルコース(50■)と共に37℃で旋回振と
う機上でインキュベートした。4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルグリシジルエーテルの形成は、メチレン
クロライドへの抽出後にガスクロマトグラフによりモニ
ターされた(条件は上述の実施例と同じ)。インキュベ
ーション混合物中の4−(2−メトキシエチル)−フェ
ニルグリシジルエーテルのレベルは、6時間後に7.3
0g/βであった。
た10m!、乾燥重量12.6g/j!りを4−(2−
メトキシエチル)−フェニルアリルエーテル(250μ
l)及びグルコース(50■)と共に37℃で旋回振と
う機上でインキュベートした。4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルグリシジルエーテルの形成は、メチレン
クロライドへの抽出後にガスクロマトグラフによりモニ
ターされた(条件は上述の実施例と同じ)。インキュベ
ーション混合物中の4−(2−メトキシエチル)−フェ
ニルグリシジルエーテルのレベルは、6時間後に7.3
0g/βであった。
第1図は、ユーピウムシフト剤の存在下での(+)及び
(±)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルの部分的pairスペクトルを示す。 第1図ミニシフト剤なしの(±)又は(+)−4−(2
−メi・キシエチル)−フェニルグリシジルエーテル、 第1図b : Eu(hfc)sありの(±)−4−(
2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテル;
Eu(hfc)s/ (±”)−4−(2−メトキシエ
チル)−フェニルグリシジルエーテルの比=0.10、
第1図c : Eu(hfc)*ありの(+)−4−(
2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテル;
Eu(hfc)s/ (±)−4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルグリシジルエーテルの比=0.12゜第
2図は、(−)−メトプロロールのparスペクトルを
示す。 第3図は、(−)−メトプロロールのC,I 、 (C
114)により測定されたマススペクトルを示す。 第4図は、二相系<2.251スケール) (750
mll細胞(6,98/l乾燥重′!!k)+2.5%
フェニルアリルエーテルを含む1500mlイソオクタ
ン)中でのマイコバクテリウムWMIによるフェニルグ
リシジルエーテルのバッチ製造を示す。 第5図は、(−) −イソプロピルアミノ−3−フェノ
キシ−2−プロパツールのp■rスペクトルを示す。 第6図は、(−) −イソプロピルアミノ−3−フェノ
キシ−2−プロパツールのC,1,(C114)スペク
トルを示す。 ■出 願 人 シェル インターナシ オランダ国
ヨナーレ リサーチ ツクス 162マーチヤツピ
ー ベス ローテン フェンノー トチャツプ 2501 ア エヌ テン ハーグ ペーオーボカー
レル ファン ビーラントラーン 30手続補正書(方
式) 特許庁長官 宇 賀 道 部 殿 !ゝ1
、事件の表示 昭和61年特許願第29839号3
、補正をする者 事件との関係 出願人 名 称 ギスト ブロ力デス ナームローゼ(氏
名) フェンノートチャツプ外1名 4、代理人
(±)−4−(2−メトキシエチル)−フェニルグリシ
ジルエーテルの部分的pairスペクトルを示す。 第1図ミニシフト剤なしの(±)又は(+)−4−(2
−メi・キシエチル)−フェニルグリシジルエーテル、 第1図b : Eu(hfc)sありの(±)−4−(
2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテル;
Eu(hfc)s/ (±”)−4−(2−メトキシエ
チル)−フェニルグリシジルエーテルの比=0.10、
第1図c : Eu(hfc)*ありの(+)−4−(
2−メトキシエチル)−フェニルグリシジルエーテル;
Eu(hfc)s/ (±)−4−(2−メトキシエチ
ル)−フェニルグリシジルエーテルの比=0.12゜第
2図は、(−)−メトプロロールのparスペクトルを
示す。 第3図は、(−)−メトプロロールのC,I 、 (C
114)により測定されたマススペクトルを示す。 第4図は、二相系<2.251スケール) (750
mll細胞(6,98/l乾燥重′!!k)+2.5%
フェニルアリルエーテルを含む1500mlイソオクタ
ン)中でのマイコバクテリウムWMIによるフェニルグ
リシジルエーテルのバッチ製造を示す。 第5図は、(−) −イソプロピルアミノ−3−フェノ
キシ−2−プロパツールのp■rスペクトルを示す。 第6図は、(−) −イソプロピルアミノ−3−フェノ
キシ−2−プロパツールのC,1,(C114)スペク
トルを示す。 ■出 願 人 シェル インターナシ オランダ国
ヨナーレ リサーチ ツクス 162マーチヤツピ
ー ベス ローテン フェンノー トチャツプ 2501 ア エヌ テン ハーグ ペーオーボカー
レル ファン ビーラントラーン 30手続補正書(方
式) 特許庁長官 宇 賀 道 部 殿 !ゝ1
、事件の表示 昭和61年特許願第29839号3
、補正をする者 事件との関係 出願人 名 称 ギスト ブロ力デス ナームローゼ(氏
名) フェンノートチャツプ外1名 4、代理人
Claims (29)
- (1)式 R_1−O−CH_2−COOH−CH_2−NH−R
_2( I )の立体特異的な形の医薬的に活性な化合物
又はその酸付加塩その他の医薬的に許容される塩、及び
/又は式 ▲数式、化学式、表等があります▼(II) の立体特異的な形の化合物(ここでR_1は、場合によ
りヘテロ環系に含まれるフェニル又はナフチル基を包含
する置換又は非置換アリール基であり、又は炭素原子の
他に窒素、硫黄及び酸素から選ばれた一以上の原子を含
むヘテロ芳香族5又は6員環であり、但しこの環は置換
されていてもよく、R_2は2〜6個の炭素原子のアル
キル基であり、但しこのアルキル基は置換されていても
よい)を作る方法において、式 R_1−O−CH_2−CH=CH_2(III)の化合
物を少くとも80重量%が¥S¥立体配置を持つ化合物
(II)へと立体選択的にエポキシ化する能力を持つ微生
物の作用に化合物(III)を付すこと、化合物(II)を
少くとも部分的に分離すること、及び/又は化合物(I
I)を置換又は非置換C_2〜C_6アルキルアミン基
と反応させること及び化合物( I )を少くとも部分的
に分離すること及び/又は化合物( I )をその医薬的
に許容される塩へと転化することを含む方法。 - (2)イソプロピルアミン又は第三ブチルアミンが用い
られる特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (3)R_1が2−トリル、3−トリル、2,3−ジメ
チルフェニル、2−クロル−5−メチルフェニル、2−
アリルフェニル、2−アリルオキシフェニル、2−シク
ロプロピルフェニル、2−シクロヘキシルフェニル、2
−シクロペンチルフェニル、2−シアノフェニル、2−
メトキシフェニル、2−メチルチオフェニル、2−(テ
トラヒドロフラン−2−イル)−メトキシフェニル、4
−アセトアミドフェニル、4−カルバゾリル、4−カル
バモイルメチルフェニル、4−[2−(メチルホルミル
アミノ)−エチル]フェニル、2−アセチル−4−ブチ
ルアミドフェニル、1−ナフチル、フェニル、4−(3
−シクロヘキシルウレイド)−フェニル、5,6−ジヒ
ドロ−1−ナフチル、5,8−ジヒドロ−1−ナフチル
、5,6,7,8−テトラヒドロ−5−オキソ−1−ナ
フチル、5,8−エタノ−5,6,7,8−テトラヒド
ロ−1−ナフチル、2,3−ジヒドロ−1H−インデン
−4−イル、1H−インデン−4−イル、1H−インデ
ン−7−イル、1H−インドール−4−イル、5−メチ
ル−8−クマリニル、8−チオクロマニル、4−モルホ
リノ−1,2,5−チアジオゾール−3−イル、5,6
,7,8−テトラヒドロ−シス−6,7−ジヒドロキシ
−1−ナフチル、4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル、4−(2−メトキシエトキシ)−フェニル、(2−
アセチル)−ベンゾフラン−7−イル、2,5−ジクロ
ルフェニル、2−(2−プロペニルオキシ)−フェニル
、3,4−ジヒドロカルボスチリル−5−イル、2−ア
セチル−4−(3,3−ジエチルウレイド)−フェニル
、4−[2−(シクロプロピルメトキシ)−エチル]−
フェニル、2−メチル−1H−インドール−4−イル、
(4−アセトキシ−2,3,5−トリメチル)−フェニ
ル、2−フェノキシ−フェニル、2−チアゾリルオキシ
、2,2,5,7,8−ペンタメチルクロマン−6−イ
ル、2−(N−β−ヒドロキシエチルカルバモイルメト
キシ)−フェニル又は2−(N−メチル−カルバモイル
メトキシ)−フェニル基である特許請求の範囲第1項又
は第2項記載の方法。 - (4)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニル
、2−アリルオキシフェニル、4−カルバモイルメチル
フェニル、1−ナフチル又はフェニル基である特許請求
の範囲第1〜3項のいずれか一項に記載の方法。 - (5)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニル
基である特許請求の範囲第1〜4項のいずれか一項に記
載の方法。 - (6)R_1が4−カルバモイルメチルフェニル基であ
る特許請求の範囲第1〜4項のいずれか一項に記載の方
法。 - (7)R_1がフェニル基である特許請求の範囲第1〜
4項のいずれか一項に記載の方法。 - (8)微生物が、化合物(III)を少くとも90重量%
がS立体配置を持つ化合物(II)へと転化することがで
きる特許請求の範囲第1〜7項のいずれか一項に記載の
方法。 - (9)微生物がロードコッカス(Rhodococcu
s)属、マイコバクテリウム(Mycobacteri
um)属、ノカルディア(Nocardia)属又はシ
ュードモナス(Pseudomonas)属に属するバ
クテリアである特許請求の範囲第1〜8項のいずれか一
項に記載の方法。 - (10)バクテリアがロードコッカス属である特許請求
の範囲第9項記載の方法。 - (11)バクテリアがマイコバクテリウム属である特許
請求の範囲第9項記載の方法。 - (12)バクテリアがノカルディア属である特許請求の
範囲第9項記載の方法。 - (13)バクテリアがシュードモナス属である特許請求
の範囲第9項記載の方法。 - (14)バクテリアがポリマーゲルにより固定化されて
いる特許請求の範囲第1項〜第13項のいずれか一項に
記載の方法。 - (15)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
ノカルディアコラリナ(Nocardia coral
lina)好ましくはノカルディアコラリナATCC3
1338である特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (16)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
ロードコッカスsp.、好ましくはロードコッカスsp
.NCIB11277である特許請求の範囲第1項記載
の方法。 - (17)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
マイコバクテリウムロードクロウス (Mycobacterium rhodochrou
s)、好ましくはマイコバクテリウムロードクロウスN
CIB9703である特許請求の範囲第1項記載の方法
。 - (18)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
ロードコッカスエクイ(Rhodococcus eq
ui)、好ましロードコッカスエクイNCIB1203
5である特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (19)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
シュードモナスアエルギノサ(Pseudomonas
aeruginosa)、好ましくはシュードモナス
アエルギノサNCIB12036である特許請求の範囲
第1項記載の方法。 - (20)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
シュードモナスオレオボランス (Pseudomonas oleovorans)、
好ましくはシュードモナス オレオボランスATCC2
9347である特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (21)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
シュードモナスプチダ(Pseudomonas pu
tida)、好ましくはシュードモナスプチダNCIB
9571である特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (22)R_1が4−(2−メトキシエチル)−フェニ
ル基であり、R_2がイソプロピル基であり、微生物が
シュードモナスアエルギノサ、好ましくはシュードモナ
スアエルギノサNCIB8704である特許請求の範囲
第1項記載の方法。 - (23)R_1がフェニル基であり、R_2がイソプロ
ピル基であり、微生物がマイコバクテリウムWM1、好
ましくはマイコバクテリウムWM1NCIB11626
である特許請求の範囲第1項記載の方法。 - (24)R_1が4−カルバモイルメチルフェニル基で
あり、R_2がイソプロピル基であり、微生物がシュー
ドモナスオレオボランス、好ましくはシュードモナスオ
レオボランスATCC29347である特許請求の範囲
第1項記載の方法。 - (25)作られた化合物(II)をイソプロピルアミン又
は第三ブチルアミンと反応させて化合物( I )を作る
特許請求の範囲第1〜7項記載の方法。 - (26)上記特許請求の範囲のいずれかに従う方法によ
り作られた化合物( I )及び/又は化合物(II)。 - (27)少くとも80重量%が¥S¥立体配置を持つ特
許請求の範囲第26項記載の化合物。 - (28)少くとも90重量%が¥S¥立体配置を持つ特
許請求の範囲第26項又は第27項記載の化合物。 - (29)特許請求の範囲第26項〜第28項のいずれか
一つに記載の少くとも一つの化合物を含む医薬。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
GB8503665 | 1985-02-13 | ||
GB858503665A GB8503665D0 (en) | 1985-02-13 | 1985-02-13 | Producing arylglycidyl ether |
GB8525456 | 1985-10-16 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61257195A true JPS61257195A (ja) | 1986-11-14 |
Family
ID=10574402
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP61029839A Pending JPS61257195A (ja) | 1985-02-13 | 1986-02-13 | アリ−ルグリシジルエ−テル及び3−置換1−アルキルアミノ−2−プロパノ−ルの製造法 |
Country Status (3)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61257195A (ja) |
GB (1) | GB8503665D0 (ja) |
ZA (1) | ZA86739B (ja) |
-
1985
- 1985-02-13 GB GB858503665A patent/GB8503665D0/en active Pending
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1986
- 1986-01-31 ZA ZA86739A patent/ZA86739B/xx unknown
- 1986-02-13 JP JP61029839A patent/JPS61257195A/ja active Pending
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ZA86739B (en) | 1986-10-29 |
GB8503665D0 (en) | 1985-03-13 |
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