JPS61162177A - セルラ−ゼの生産法 - Google Patents
セルラ−ゼの生産法Info
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- JPS61162177A JPS61162177A JP58185A JP58185A JPS61162177A JP S61162177 A JPS61162177 A JP S61162177A JP 58185 A JP58185 A JP 58185A JP 58185 A JP58185 A JP 58185A JP S61162177 A JPS61162177 A JP S61162177A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
〔技術分野〕
本発明は、トルナフテートに対し耐性をもつアクレモニ
ウム・セルロリティカスTN (Acre■oniu鵬
cellulolyticus TN)株によるセルラ
ーゼの製造方法に関するものである。
ウム・セルロリティカスTN (Acre■oniu鵬
cellulolyticus TN)株によるセルラ
ーゼの製造方法に関するものである。
セルラーゼはセルロースをグルコース、セロビオースや
セロオリゴ糖に加水分解する酵素反応系を触媒する酵素
群の総称であり、その作用株式によりC1酵素(アビセ
ラーゼ、セロビオヒドロラーゼ、FPアーゼ、エキソ−
β−グルカナーゼなどともいう)、Cx酵素(CMCア
ーゼ、エンド−β−グルカナーゼともいう)とβ−グル
コシダーゼ(セロビオースともいう)など種々の名称で
呼ばれる酵素が存在する。セルラーゼはこれら複数の酵
素が調和のとれた相互作用をすることによりセルロース
を、最終的にその構成糖であるグルコースにまで分解す
る。
セロオリゴ糖に加水分解する酵素反応系を触媒する酵素
群の総称であり、その作用株式によりC1酵素(アビセ
ラーゼ、セロビオヒドロラーゼ、FPアーゼ、エキソ−
β−グルカナーゼなどともいう)、Cx酵素(CMCア
ーゼ、エンド−β−グルカナーゼともいう)とβ−グル
コシダーゼ(セロビオースともいう)など種々の名称で
呼ばれる酵素が存在する。セルラーゼはこれら複数の酵
素が調和のとれた相互作用をすることによりセルロース
を、最終的にその構成糖であるグルコースにまで分解す
る。
近年、セルラーゼはバイオマス資源の有効利用の観点か
ら注目され、盛んに研究されているが。
ら注目され、盛んに研究されているが。
従来、よく研究されてきた、トリコデルマ・レーゼイ(
Trichoder+ma reesei)、トリコデ
ルマ・ビリデ(Trichoderma viride
)やアスペルギルス(Aspergillus)属、ペ
ニシリウム(Penicillium)属などの微生物
によるセルラーゼの生産は、その生産能力が充分でなく
、また、セルラーゼ自体の分解力も充分でないため、セ
ルロースを完全にグルコースまで分解することができず
、セロビオースやセロオリゴ糖を多量に生成残存するな
どの問題があった。
Trichoder+ma reesei)、トリコデ
ルマ・ビリデ(Trichoderma viride
)やアスペルギルス(Aspergillus)属、ペ
ニシリウム(Penicillium)属などの微生物
によるセルラーゼの生産は、その生産能力が充分でなく
、また、セルラーゼ自体の分解力も充分でないため、セ
ルロースを完全にグルコースまで分解することができず
、セロビオースやセロオリゴ糖を多量に生成残存するな
どの問題があった。
本発明者らは、先に結晶性セルロースに対する分解力が
優れ、且つグルコースの糖化能力の優れたセルラーゼ生
産菌を求めて、広く自然界から微生物の検索を行ってき
た結果、土壌中より分離し。
優れ、且つグルコースの糖化能力の優れたセルラーゼ生
産菌を求めて、広く自然界から微生物の検索を行ってき
た結果、土壌中より分離し。
アクレモニウム・セルロリティカス(Acremoni
umcellulolyticus)と同定した糸状菌
の生産するセルラーゼが、結晶性セルロースに対する分
解力が強いこと、またこの酵素はβ−グルコシダーゼ活
性が、従来よく知られているセルラーゼ生産菌に怖べ著
しく強いため、セルロースを、殆んど完全番こグルコー
スにまで分解できる、極めて糖化性の−れた酵素である
ことを認め、特許出願した(特酢出願番号昭58−38
432)。
umcellulolyticus)と同定した糸状菌
の生産するセルラーゼが、結晶性セルロースに対する分
解力が強いこと、またこの酵素はβ−グルコシダーゼ活
性が、従来よく知られているセルラーゼ生産菌に怖べ著
しく強いため、セルロースを、殆んど完全番こグルコー
スにまで分解できる、極めて糖化性の−れた酵素である
ことを認め、特許出願した(特酢出願番号昭58−38
432)。
〔目 的〕
更に、この微生物によるセルラーゼの生産能を高めるた
め、本微生物の改良について種々検討を加えてきた結果
、トルナフテート(Tolnaftate(m、N−D
imethyl thiocarbanilic
acid 0−2−naphthylest、er)
)に対して耐性を示す突然変異株(AcreIIlo
niumcellulolyt、1cus TNと命名
)がセルラーゼ生産能を顕著に増大していることを認め
た。第1表は、Acremonium cellulo
lyticusの親株とTN株によるセルラーゼ生産能
の一例を示している。
め、本微生物の改良について種々検討を加えてきた結果
、トルナフテート(Tolnaftate(m、N−D
imethyl thiocarbanilic
acid 0−2−naphthylest、er)
)に対して耐性を示す突然変異株(AcreIIlo
niumcellulolyt、1cus TNと命名
)がセルラーゼ生産能を顕著に増大していることを認め
た。第1表は、Acremonium cellulo
lyticusの親株とTN株によるセルラーゼ生産能
の一例を示している。
第1表
・表から明らかなように、トルナフテート耐性突潰・変
異TN株のセルラーゼ生産能は、!5!株に比ペアビセ
ラーゼとCMCアーゼで約3倍、そしてβ−グルコシダ
ーゼは約2倍になり、これらいずれのセルラーゼ成分も
著しく増強されたものであった。
異TN株のセルラーゼ生産能は、!5!株に比ペアビセ
ラーゼとCMCアーゼで約3倍、そしてβ−グルコシダ
ーゼは約2倍になり、これらいずれのセルラーゼ成分も
著しく増強されたものであった。
本発明以前に、トルナフテート耐性をマーカーとして耐
性変異株を造成し、セルラーゼはもとより、微生物生産
物の生産を増強した例は知られておらず、本発明はその
最初のものである。
性変異株を造成し、セルラーゼはもとより、微生物生産
物の生産を増強した例は知られておらず、本発明はその
最初のものである。
本発明は、セルラーゼ生産能の増強されたトルナフテー
ト耐性をもつアクレモニウム・セルロリティカス(Ac
remonium cellulolyticusTN
)株によるセルラーゼの製造方法に関するものである。
ト耐性をもつアクレモニウム・セルロリティカス(Ac
remonium cellulolyticusTN
)株によるセルラーゼの製造方法に関するものである。
以下に、本発明の内容を更に具体的に示す。
本発明のトルナフテート耐性株は以下のようにして造成
される。
される。
アクレモニウム・セルロリティカス(FEBMP −6
867)をツアペック(Czapek)培地(NaNo
30.3%、に2HPO40,1%、MgSO4・7
H205X10− ”%、 KCΩ5X10−’%。
867)をツアペック(Czapek)培地(NaNo
30.3%、に2HPO40,1%、MgSO4・7
H205X10− ”%、 KCΩ5X10−’%。
FaSO4・7H201X 10− ’ %、グルコー
ス1%)に懸濁し、これにNTGにトロソグアニジン)
をθ〜3X10−”勇一度となるように加え、室温で0
.5〜3時間イン−vhベート後、遠心分離して菌体を
回収し、 Czapek培地で1充分洗滌後、同培地に
懸濁した。該菌懸濁物の・部を4×10″″2〜2X1
0−’ %トルナフテートを含むCzapek平板培地
(NaNO30,3%、K 2 HPO40,1%、M
g504・7H2o 5X10− ”%、KCQ 5X
10−”%。
ス1%)に懸濁し、これにNTGにトロソグアニジン)
をθ〜3X10−”勇一度となるように加え、室温で0
.5〜3時間イン−vhベート後、遠心分離して菌体を
回収し、 Czapek培地で1充分洗滌後、同培地に
懸濁した。該菌懸濁物の・部を4×10″″2〜2X1
0−’ %トルナフテートを含むCzapek平板培地
(NaNO30,3%、K 2 HPO40,1%、M
g504・7H2o 5X10− ”%、KCQ 5X
10−”%。
FeSO4・7H201XIO−”%、グルコース1%
、寒天1.5%、ストレプトマイシン2.5X10−”
%、ペニシリンG2.5X10−”%、PH5,6)
に散布し、30℃でインキュベートした。生育してくる
トルナフテート耐性株を上記同組成の斜面培地に釣菌し
保存した。このようにして得られたトルナフテート耐性
株中に、高頻度でセルラーゼ生産増強株が認められた。
、寒天1.5%、ストレプトマイシン2.5X10−”
%、ペニシリンG2.5X10−”%、PH5,6)
に散布し、30℃でインキュベートした。生育してくる
トルナフテート耐性株を上記同組成の斜面培地に釣菌し
保存した。このようにして得られたトルナフテート耐性
株中に、高頻度でセルラーゼ生産増強株が認められた。
なお、 4X10− ”〜lXl0−”%のトルナフテ
ートを含むCzapeck平板培地上に親株および耐性
株の菌体懸濁液を散布して、30℃で培養したところ、
耐性菌は比較的良好に生育するが、親株は全く生育、席
作められなかった。
ートを含むCzapeck平板培地上に親株および耐性
株の菌体懸濁液を散布して、30℃で培養したところ、
耐性菌は比較的良好に生育するが、親株は全く生育、席
作められなかった。
1菌の菌学的性質は親株に対して認識できるはm−4差
異は認めら札ないが、以下にTN株の菌学的仕置の概要
を記載する。
異は認めら札ないが、以下にTN株の菌学的仕置の概要
を記載する。
生育:麦芽エキス寒天培地上では生育は速く、30℃7
日で直径70+*mに達する。集落は最初白色で後にや
や黄色味をおびる。気生菌糸はゆるく盛り上がり羊毛状
を呈し、時に編状の菌糸束を形成する。培養後期には集
落裏面は桃褐色ないし赤褐色を呈する。ツアペック寒天
培地上でもほぼ同様の生育を示すが気生菌糸の盛り上が
りはより少い。
日で直径70+*mに達する。集落は最初白色で後にや
や黄色味をおびる。気生菌糸はゆるく盛り上がり羊毛状
を呈し、時に編状の菌糸束を形成する。培養後期には集
落裏面は桃褐色ないし赤褐色を呈する。ツアペック寒天
培地上でもほぼ同様の生育を示すが気生菌糸の盛り上が
りはより少い。
生育pH範II !t、3.5〜6.0テji適pHI
t4付近、生育温度範囲は15℃〜43℃で、最適生育
温度は30℃付近である。
t4付近、生育温度範囲は15℃〜43℃で、最適生育
温度は30℃付近である。
形態:菌糸の直径は0.5〜2.5μ■、無色で菌糸に
は隔壁が認められる。また、菌糸表面は滑面である。
は隔壁が認められる。また、菌糸表面は滑面である。
分生子二分生子形成能は非常に不安定でツアペック寒天
および麦芽エキス寒天培地による継代培養により容易に
消失した。分離時における観察では、分生子柄は気生菌
糸側面より突出し、無色である。
および麦芽エキス寒天培地による継代培養により容易に
消失した。分離時における観察では、分生子柄は気生菌
糸側面より突出し、無色である。
分生子は亜球形(2,5〜5×2〜4.5μm)で滑面
、無色で連鎖は非常にゆるく分散しやすい。
、無色で連鎖は非常にゆるく分散しやすい。
ネ菌株はアクレモニウム・セルロリティカス(!m、)
e+monium cellulolyticus)T
N株(微工研条寄第:<c崗$とじて寄託されている。
e+monium cellulolyticus)T
N株(微工研条寄第:<c崗$とじて寄託されている。
4菌により生産されるセルラーゼの酵素的性質を以下に
記載する。
記載する。
(A)アビセラーゼの酵素的性質
(1)作用
セルロース末、アビセル、脱脂綿など結晶性の高い不溶
性セルロースに対し作用してグルコース。
性セルロースに対し作用してグルコース。
セロビオース等の還元糖を生成する。
(2)作用pH範囲及び最適作用pH
本酵素の作用pH範囲は2〜8.最適作用pHは約4.
5に認められた。
5に認められた。
(3)安定pH
クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間放置
したときの安定pH範囲は約3.5〜約6であった。
したときの安定pH範囲は約3.5〜約6であった。
(4)作用温度範囲及び最適作用pH
本酵素は約90℃までの高温に作用するが、1%−4”
Ft Iセル、0.05M酢酸緩衝液(P旧、5)の下
で1o分間迩苔1させたときの最適作用温度は約65℃
に認めら一杯1シ。
Ft Iセル、0.05M酢酸緩衝液(P旧、5)の下
で1o分間迩苔1させたときの最適作用温度は約65℃
に認めら一杯1シ。
(5)熱安定性
本酵素を0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で、
各温度で10分間加熱処理した結果、本酵素は約60℃
までの温度ではほとんど失活せず、65℃、10分間の
加熱で約50%、そして70℃、10分間の加熱で約8
0%失活した。
各温度で10分間加熱処理した結果、本酵素は約60℃
までの温度ではほとんど失活せず、65℃、10分間の
加熱で約50%、そして70℃、10分間の加熱で約8
0%失活した。
(6)阻害剤
各種重金属イオンのうちで1mM以上の水銀イオンおよ
び銅イオンにより強く阻害される。また、SH阻害剤で
あるパラクロルマーキュリ−ベンゾエイトによっても1
mMで80%の阻害を受ける。
び銅イオンにより強く阻害される。また、SH阻害剤で
あるパラクロルマーキュリ−ベンゾエイトによっても1
mMで80%の阻害を受ける。
(7)精製法
本酵素は培養濾液からホロファイバー(アミコンHI
−P5)により脱塩濃縮してのち、DEAR−セファロ
ース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィー
(NaCffi O→IMグラジェント)と同カラムに
よる再クロマトグラフィー(NaCQ O→0.6N)
により、より精製することができる。
−P5)により脱塩濃縮してのち、DEAR−セファロ
ース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィー
(NaCffi O→IMグラジェント)と同カラムに
よる再クロマトグラフィー(NaCQ O→0.6N)
により、より精製することができる。
(8)分子量
Ajo−gel(A 0.5m)カラムによるゲル濾過
法によJψ緬定した分子量は約140,000であった
。
法によJψ緬定した分子量は約140,000であった
。
・“I!−I#b活性測定法
、ct、tM酢酸緩衝液に0.5%濃度のアビセル懸濁
物(pH4,5)0.5m Qに適量の酵素液を加え、
蒸留水で全量1.0爾12とし、 50℃で反応を行っ
た。そして生成する還元糖はソモギー・ネルフン法によ
り測定した。
物(pH4,5)0.5m Qに適量の酵素液を加え、
蒸留水で全量1.0爾12とし、 50℃で反応を行っ
た。そして生成する還元糖はソモギー・ネルフン法によ
り測定した。
この条件で、1分間に1μmolのグルコースに相当す
る還元力を生成する酵素量を1単位とした。
る還元力を生成する酵素量を1単位とした。
(B)CMCアーゼの酵素的性質
(1)CMCアーゼの多成分性
CMCアーゼはディスク電気泳動的に少くとも4成分に
分離され、それぞれは分子量と等電点により区別される
。CMCアーゼ■は分子量約160,000で等1−勺
5.08.以下同様に■は約160,000.4.95
. m″!祠120,000.4.60. IVは約1
20,000.4.48であり、魂Nらアイソザイムの
複合物よりCMCアーゼは成っ−1−一る。
分離され、それぞれは分子量と等電点により区別される
。CMCアーゼ■は分子量約160,000で等1−勺
5.08.以下同様に■は約160,000.4.95
. m″!祠120,000.4.60. IVは約1
20,000.4.48であり、魂Nらアイソザイムの
複合物よりCMCアーゼは成っ−1−一る。
(2)カルボキシメチルセルロース(CMC)等の可溶
性セルロース誘導体に作用し、これをグルコース及びセ
ロビオース等に分解する成分(CMCアーゼ■および■
)とグルコースを極くわずかしか生成せずセロビオース
以上のセロオリゴ糖に分解する作用を持つ成分(CMC
アーゼ■、■)が存在する。
性セルロース誘導体に作用し、これをグルコース及びセ
ロビオース等に分解する成分(CMCアーゼ■および■
)とグルコースを極くわずかしか生成せずセロビオース
以上のセロオリゴ糖に分解する作用を持つ成分(CMC
アーゼ■、■)が存在する。
(3)作用pH範囲及び最適作用pH
CMCアーゼ複合体の作用pH範囲は、はぼ2〜8にわ
たり最適作用pHは約4.5に認められた。
たり最適作用pHは約4.5に認められた。
(4)安定pH
クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間放置
したときのCMCアーゼ複合体の安定pH範囲は約3.
5〜約6であった。
したときのCMCアーゼ複合体の安定pH範囲は約3.
5〜約6であった。
(5)作用温度範囲及び最適作用温度
このCMCアーゼ複合体は約90℃までの高温に作用す
るが、1%CMC,0,05M酢酸緩衝液(pH4,5
)の下で10分間反応させたときの最適作用温度は約6
5℃に認められた。
るが、1%CMC,0,05M酢酸緩衝液(pH4,5
)の下で10分間反応させたときの最適作用温度は約6
5℃に認められた。
(6)熱安定性
軸素を0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で、各
温層辿ル分間加熱処理した結果、本酵素は約60℃ま亡
゛一度ではほとんど失活せず、65℃、10分間の萼穐
涛約40%、そして70℃、10分間の加熱で約70・
%失活した。
温層辿ル分間加熱処理した結果、本酵素は約60℃ま亡
゛一度ではほとんど失活せず、65℃、10分間の萼穐
涛約40%、そして70℃、10分間の加熱で約70・
%失活した。
(7)阻害剤
各種金属イオンのうちで1mM以上の水銀イオンおよび
銅イオンにより強く阻害される。
銅イオンにより強く阻害される。
(8)精製法
本酵素は培養濾液からホロファイバー(アミコンHI
−P5)により脱塩濃縮してのち、 DEAE−セファ
ロース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィ
ー(NaCQO→IMグラジェント)と同カラムによる
再クロマトグラフィー及びクロマトフオーカシングによ
り各成分に精製できる。
−P5)により脱塩濃縮してのち、 DEAE−セファ
ロース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィ
ー(NaCQO→IMグラジェント)と同カラムによる
再クロマトグラフィー及びクロマトフオーカシングによ
り各成分に精製できる。
(9)活性測定法
0、1M酢酸緩衝液に溶解させた1%CMC溶液(pH
4,5)−−tに、適量の酵素液を加え、蒸留水で全量
1xukとし、50℃で反応を行った。そして、生成す
テ上元糖はソモギー・ネルラン法により測定しE。
4,5)−−tに、適量の酵素液を加え、蒸留水で全量
1xukとし、50℃で反応を行った。そして、生成す
テ上元糖はソモギー・ネルラン法により測定しE。
この条件で、1分間に1μmolのグルコースに相当す
る還元力を生成する酵素量を1雫位とした。
る還元力を生成する酵素量を1雫位とした。
(C) β−グルコシダーゼの酵素的性質(1)作用
サリシン、セロビオース、セロトリオース、セロテトラ
オース、セロペンタオース、セロヘキサオースのような
セロオリゴ糖に作用して、これをグルコースに分解する
。また1本酵素はアビセルのような高分子セルロースに
も作用するがCMCやHlIC(ヒドロキシエチルセル
ロース)にはほとんど作用しない。サリシン、セロビオ
ース、セロトリオース、セロテトラオース、セロペンタ
オース及びセロヘキサオースに対するKm値は、それぞ
れ3.40.2.26.1.19.0.82.0.52
そして0.51℃阿であった。
オース、セロペンタオース、セロヘキサオースのような
セロオリゴ糖に作用して、これをグルコースに分解する
。また1本酵素はアビセルのような高分子セルロースに
も作用するがCMCやHlIC(ヒドロキシエチルセル
ロース)にはほとんど作用しない。サリシン、セロビオ
ース、セロトリオース、セロテトラオース、セロペンタ
オース及びセロヘキサオースに対するKm値は、それぞ
れ3.40.2.26.1.19.0.82.0.52
そして0.51℃阿であった。
(2)作用pH範囲及び最適作用pH
本酵素の作用pH範囲は2〜8、最適作用pHは約4.
5に認められた。
5に認められた。
(3)安定pH
クエン酸−リン酸塩緩衝液の下で45℃で20時間ノ#
イしたときの安定pH範囲は約3.5〜約5であった。
イしたときの安定pH範囲は約3.5〜約5であった。
0B作用温度範囲及び最適作用pH
本酵素は約90℃までの高温に作用するが、1%サリシ
ン、0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で10分
間反応させたときの最適作用温度は約65℃に認められ
た。
ン、0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で10分
間反応させたときの最適作用温度は約65℃に認められ
た。
(5)熱安定性
0.05M酢酸緩衝液(pH4,5)の下で、各温度で
10分間加熱処理した結果、本酵素は約65℃までの高
温ではほとんど失活せず、70℃、10分間の加熱で約
40%失活し、そして80℃、 10分間の加熱で90
%以上失活した。
10分間加熱処理した結果、本酵素は約65℃までの高
温ではほとんど失活せず、70℃、10分間の加熱で約
40%失活し、そして80℃、 10分間の加熱で90
%以上失活した。
(6)阻害剤
各種重金属イオンのうち1+sM以上の水銀イオンおよ
び銅イオンにより強く阻害される。また、グルコース−
δ−ラクトンは基質に対して拮抗阻害剤として作用する
。
び銅イオンにより強く阻害される。また、グルコース−
δ−ラクトンは基質に対して拮抗阻害剤として作用する
。
(、;7) 精製法
本酵素は培養濾液からホロファイバー(アミコ°シHI
−P5)により脱塩濃縮したのち、DEAE−セファ
ロース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィ
ー(NaCQO→IMグラジェント)とクロマトフオー
カシング(pH6→4)とBio−gel(A 0.5
m)によるゲル濾過により、電気泳動的に均一なまでに
精製することができる。
−P5)により脱塩濃縮したのち、DEAE−セファ
ロース(CL −6B)によるカラムクロマトグラフィ
ー(NaCQO→IMグラジェント)とクロマトフオー
カシング(pH6→4)とBio−gel(A 0.5
m)によるゲル濾過により、電気泳動的に均一なまでに
精製することができる。
(8)分子量
Bio−gel(A O,5m)を用いるゲル濾過法に
より測定した分子量は約240,000であった。
より測定した分子量は約240,000であった。
(9)活性測定法
0.1M酢酸緩衝液に溶解させた1%サリシン溶液(p
H4,5)0.5m Qに適量の酵素液を加え、蒸留水
で全量1.OmΩとし、50℃で反応を行った。そして
生成するグルコースをソモギー・ネルラン法により測定
した。
H4,5)0.5m Qに適量の酵素液を加え、蒸留水
で全量1.OmΩとし、50℃で反応を行った。そして
生成するグルコースをソモギー・ネルラン法により測定
した。
この条件で、1分間にlμsolのグルコースに相当す
る還元力を生成する酵素量を1単位とした。
る還元力を生成する酵素量を1単位とした。
トルナフテート耐性をもつアクレモニウム・セルロリテ
ィカスTN株の培養は、炭素源として、セルロース、ア
ビセル、綿、バガス、小変動のような純セルロースまた
はセルロース含有物が使用さ卑、これに窒素源として、
硝酸塩、アンモニウム導、尿素のような無機窒素または
ペプトン、酵母エキス、肉エキス、大豆粕のような有機
窒素源のいずれか、または併用して使用する。更に、こ
れに補足する培地原料として、マンガン、亜鉛などの金
属塩などが添加された培地で行われるが、この培地に対
し、ベタインを0.01〜1%程度添加する。培養は固
体培養または液体培養のいずれでもよいが通常、20〜
40℃で2〜15日間好気的に培養される。
ィカスTN株の培養は、炭素源として、セルロース、ア
ビセル、綿、バガス、小変動のような純セルロースまた
はセルロース含有物が使用さ卑、これに窒素源として、
硝酸塩、アンモニウム導、尿素のような無機窒素または
ペプトン、酵母エキス、肉エキス、大豆粕のような有機
窒素源のいずれか、または併用して使用する。更に、こ
れに補足する培地原料として、マンガン、亜鉛などの金
属塩などが添加された培地で行われるが、この培地に対
し、ベタインを0.01〜1%程度添加する。培養は固
体培養または液体培養のいずれでもよいが通常、20〜
40℃で2〜15日間好気的に培養される。
セルラーゼは菌体外に生産される酵素であるので、液体
培養の場合、培養後、濾過または遠心分離して得た除菌
液について、また、固体培養の場合は、培養後、水また
は適当な塩類溶液で抽出した酵素液について、硫安また
は硫酸ナトリウムなどで沈澱させるか、あるいはアセト
ン、アルコールのような有機溶媒を添加してセルラーゼ
を沈澱へせ、分離、乾燥して酵素粉末を得る。
培養の場合、培養後、濾過または遠心分離して得た除菌
液について、また、固体培養の場合は、培養後、水また
は適当な塩類溶液で抽出した酵素液について、硫安また
は硫酸ナトリウムなどで沈澱させるか、あるいはアセト
ン、アルコールのような有機溶媒を添加してセルラーゼ
を沈澱へせ、分離、乾燥して酵素粉末を得る。
次に、実施例により本発明の詳細な説明する。
実施例1
セルロース4%、に2)IPO41,2%、バクトペプ
トン1%、 KNO30,6%、尿素0.2%、KCQ
O,16%、Mg504−78200.12%、Zn
SO4・7H201XIO−3%、MnSO4・7H2
0txto−’%、CuSO4・5)+ 20 txi
o−3し、30℃で10日間好気的に培養した。培養後
、暮心分離して得た上澄液について生産されたセルラー
ゼのアビセラーゼ、CMCアーゼ及びβ−グルコシダー
ゼ活性を測定した。結果は第2表に示す通りであった。
トン1%、 KNO30,6%、尿素0.2%、KCQ
O,16%、Mg504−78200.12%、Zn
SO4・7H201XIO−3%、MnSO4・7H2
0txto−’%、CuSO4・5)+ 20 txi
o−3し、30℃で10日間好気的に培養した。培養後
、暮心分離して得た上澄液について生産されたセルラー
ゼのアビセラーゼ、CMCアーゼ及びβ−グルコシダー
ゼ活性を測定した。結果は第2表に示す通りであった。
第2表
表から明らかなように、トルナフテート耐性株(TN株
)のセルラーゼ生産能は親株に比べ、CMCアーゼが約
3倍に、そしてアビセラーゼとβ−グルコシダーゼは約
2倍に増大したものであった。
)のセルラーゼ生産能は親株に比べ、CMCアーゼが約
3倍に、そしてアビセラーゼとβ−グルコシダーゼは約
2倍に増大したものであった。
Claims (1)
- (1)トルナフテート耐性をもつアクレモニウム・セル
ロリティカスTN(Acremonium cellu
lolyticusTN)を炭素源と窒素源を含む培地
に培養し、培養物からセルラーゼを採取することを特徴
とするセルラーゼの製造法。
Priority Applications (6)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58185A JPS61162177A (ja) | 1985-01-07 | 1985-01-07 | セルラ−ゼの生産法 |
US06/720,416 US4742005A (en) | 1985-01-07 | 1985-04-05 | Method for production of cellulolytic enzymes and method for saccharification of cellulosic materials therewith |
EP85302505A EP0188050B1 (en) | 1985-01-07 | 1985-04-10 | Method for production of cellulolytic enzymes |
DE8585302505T DE3583603D1 (de) | 1985-01-07 | 1985-04-10 | Verfahren zur produktion von zellulolytischen enzymen. |
DK166685A DK164070C (da) | 1985-01-07 | 1985-04-12 | Fremgangsmaade til fremstilling af et sammensat cellulase/xylanase-enzympraeparat |
US07/011,043 US4956291A (en) | 1985-01-07 | 1987-02-05 | Method for production of cellulolytic enzymes and method for saccharification of cellulosic materials therewith |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP58185A JPS61162177A (ja) | 1985-01-07 | 1985-01-07 | セルラ−ゼの生産法 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61162177A true JPS61162177A (ja) | 1986-07-22 |
JPS6363197B2 JPS6363197B2 (ja) | 1988-12-06 |
Family
ID=11477678
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP58185A Granted JPS61162177A (ja) | 1985-01-07 | 1985-01-07 | セルラ−ゼの生産法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61162177A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2008139641A1 (en) * | 2007-05-07 | 2008-11-20 | National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology | Method for producing cellulase and hemicellulase having high hydrolytic activity |
Families Citing this family (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH04131492U (ja) * | 1991-05-21 | 1992-12-03 | 松下電工株式会社 | 汚水処理槽 |
-
1985
- 1985-01-07 JP JP58185A patent/JPS61162177A/ja active Granted
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2008139641A1 (en) * | 2007-05-07 | 2008-11-20 | National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology | Method for producing cellulase and hemicellulase having high hydrolytic activity |
US8034596B2 (en) | 2007-05-07 | 2011-10-11 | National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology | Method for producing cellulase and hemicellulase having high hydrolytic activity |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
JPS6363197B2 (ja) | 1988-12-06 |
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Legal Events
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EXPY | Cancellation because of completion of term |