JPS5923794B2 - Manufacturing method of dihydroxyacetone - Google Patents

Manufacturing method of dihydroxyacetone

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JPS5923794B2
JPS5923794B2 JP9566077A JP9566077A JPS5923794B2 JP S5923794 B2 JPS5923794 B2 JP S5923794B2 JP 9566077 A JP9566077 A JP 9566077A JP 9566077 A JP9566077 A JP 9566077A JP S5923794 B2 JPS5923794 B2 JP S5923794B2
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dihydroxyacetone
bacterial cells
glycerol
gluconobacter
acetobacter
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Description

【発明の詳細な説明】 本発明はアセトバクター属またはグルコノバクタ−属に
属する微生物菌体を用いて、酵素的にジヒドロキシアセ
トンを製造する方法に関する。
DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION The present invention relates to a method for enzymatically producing dihydroxyacetone using microorganisms belonging to the genus Acetobacter or Gluconobacter.

従来、微生物を用いてジヒドロキシアセトンを製造する
方法としては、グリセロール、酵母エキス、リン酸カリ
ウム等を含む培地にアセトバクター属に属する微生物を
培養して培地中にジヒドロキシアセトンを生成蓄積させ
る方法〔インダストリアル・マイクロバイオロジー;S
、C,プレスコト、C,G、ダン著、P、459〜46
0(1959年)〕、或いは該方法の改良法として、グ
リセロール、コーンスチープリカー、酵母エキス、リン
酸カリウム、炭酸カルシウム等より成る培地を用いる方
法(米国特許第2948658号)、グリセロール、コ
ーンスチープリカー、尿素のみから成る培地を使用する
方法(西独特許第1136994号)、グリセロール、
コーンスチープリカー、炭酸カルシウム、有機酸アンモ
ニウム塩等より成る培地を使用する方法(特開昭48−
44485号)などが知られている。
Conventional methods for producing dihydroxyacetone using microorganisms include culturing microorganisms belonging to the genus Acetobacter in a medium containing glycerol, yeast extract, potassium phosphate, etc., and producing and accumulating dihydroxyacetone in the medium [Industrial・Microbiology;S
, C. Prescott, C.G. Dunn, P., 459-46.
0 (1959)], or as an improvement of the method, a method using a medium consisting of glycerol, corn steep liquor, yeast extract, potassium phosphate, calcium carbonate, etc. (US Pat. No. 2,948,658), glycerol, corn steep liquor, etc. , a method using a medium consisting only of urea (West German Patent No. 1136994), glycerol,
A method using a medium consisting of corn steep liquor, calcium carbonate, organic acid ammonium salt, etc.
No. 44485), etc. are known.

上記公知方法はいずれも発酵法によるジヒドロキシアセ
トンの製造法であるが、発酵法による場合は本来的に次
の如き難点がある。
All of the above-mentioned known methods are methods for producing dihydroxyacetone by fermentation, but the fermentation method inherently has the following drawbacks.

すなわち、発酵終了液中には必然的に培地成分や副生成
物などの夾雑物が混在してくるため、発酵終了液よりジ
ヒドロキシアセトンを単離、精製するに当っては、これ
ら夾雑物を除去しなければならず、そのためには非常に
煩雑な操作が必要であり、多大な経費と労力を必要とす
る。
In other words, since the fermentation-finished liquid inevitably contains impurities such as medium components and by-products, these impurities must be removed when dihydroxyacetone is isolated and purified from the fermentation-finished liquid. This requires very complicated operations and requires a great deal of expense and effort.

本発明者らは発酵法が本来的に有する上記の如き難点を
克服し、工業的有利なジヒドロキシアセトンの製造法に
ついて種々研究を重ねた結果、アセトバクター属または
グルコノバクタ−属に属する微生物を炭素源として従来
用いられていたグリセロールに代えてソルビトール、マ
ンニトール、グルコースまたはデキストリンを用いて培
養すれば、菌体の保有するグリセロールよりジヒドロキ
シアセトンへの転換能が顕著に増大することを見い出す
と共に、上記培養により得られた菌体もしくはその処理
物を塩類濃度0.1%以下の実質的にグリセロールのみ
の水溶液に好気的に作用させれば、高濃度のグリセロー
ルをほぼ定量的にジヒドロキシアセトンに転換せしめる
ことができ、かつその際補酵素類を始め如何なる添加物
をも必要としないことを見い出し、本発明を完成するに
至った。
The present inventors overcame the above-mentioned difficulties inherent in the fermentation method and conducted various studies on an industrially advantageous method for producing dihydroxyacetone. It has been found that when cultured using sorbitol, mannitol, glucose, or dextrin instead of glycerol, which has been conventionally used, the conversion ability of the bacterial cells to dihydroxyacetone from glycerol is significantly increased. If the obtained bacterial cells or their processed product are aerobically applied to an aqueous solution containing substantially only glycerol with a salt concentration of 0.1% or less, high-concentration glycerol can be almost quantitatively converted to dihydroxyacetone. The present inventors have discovered that the present invention can be carried out without requiring any additives including coenzymes.

すなわち、本発明はアセトバクター属またはグルコノバ
クタ−属に属し、グリセロールをジヒドロキシアセトン
に転換せしめる能′力を有する微生物を炭素源としてソ
ルビトール、マンニトール、グルコースまたはデキスト
リンを含有する培地に培養し、次いで該培養液から分離
した菌体または該菌体の処理物を塩類濃度0.1%以下
の実質的にグリセロールのみの水溶液に好気的に作用さ
せ、生成したジヒドロキシアセトンを採取することから
なるジヒドロキシアセトンの製造法である。
That is, the present invention involves culturing a microorganism belonging to the genus Acetobacter or Gluconobacter and having the ability to convert glycerol into dihydroxyacetone in a medium containing sorbitol, mannitol, glucose, or dextrin as a carbon source, and then culturing the microorganism in a medium containing sorbitol, mannitol, glucose, or dextrin as a carbon source. A process for producing dihydroxyacetone, which involves aerobically acting on bacterial cells separated from a liquid or a processed product of the bacterial cells on an aqueous solution containing essentially only glycerol with a salt concentration of 0.1% or less, and collecting the dihydroxyacetone produced. It is a manufacturing method.

本発明において使用される微生物としては、アセトバク
ター属またはグルコノバクタ−属に属し、グリセロール
をジヒドロキシアセトンに転換せしめる能力を有するも
のであればいずれも使用でき、例えばアセトバクター・
サブオキシダンスATCC621、アセトバクター・サ
ブオキシダンスIFO3254、アセトバクター・サブ
オキシダンスIFO3255、グルコノバククー・セリ
ナスIAM1832、グルコノバククー・メラノゲナス
IF03294などが好適に挙げられる。
As the microorganism used in the present invention, any microorganism that belongs to the genus Acetobacter or the genus Gluconobacter and has the ability to convert glycerol to dihydroxyacetone can be used. For example, Acetobacter spp.
Preferred examples include Acetobacter suboxidans ATCC621, Acetobacter suboxidans IFO3254, Acetobacter suboxidans IFO3255, Gluconobacter selinus IAM1832, and Gluconobacter melanogenus IF03294.

上記の如き微生物を培養するための培地組成としては、
炭素源、窒素源、有機栄養源、無機物質などを適宜含有
したものが使用されるが、炭素源としてはソルビトール
、マンニトール、グルコースまたはデキストリンを使用
する必要がある。
The medium composition for culturing the above microorganisms is as follows:
A carbon source containing a carbon source, a nitrogen source, an organic nutrient source, an inorganic substance, etc. is used as appropriate, but it is necessary to use sorbitol, mannitol, glucose, or dextrin as the carbon source.

窒素源としては無機窒素源を始め有機酸アンモニウム塩
等使用菌株が資化できる物質であればいずれも使用でき
る。
As the nitrogen source, any substance can be used as long as it can be assimilated by the strain used, such as inorganic nitrogen sources and organic acid ammonium salts.

有機栄養源としては酵母エキス、コーンスチープリカー
、肉エキス、ポリペプトンなどが使用でき、特に前二者
が好ましい。
As an organic nutrient source, yeast extract, corn steep liquor, meat extract, polypeptone, etc. can be used, and the first two are particularly preferred.

また無機物質としては通常の無機塩類が使用される。Moreover, ordinary inorganic salts are used as the inorganic substance.

上記微生物の培養は常法によればよく、例えば培地をp
H5〜8とし、菌株を接種後25〜30℃にて1〜3日
間好気的に培養するのが好ましい。
The above-mentioned microorganisms may be cultured by a conventional method, for example, the culture medium is
It is preferable to set the strain to H5-8 and culture the strain aerobically at 25-30°C for 1-3 days after inoculation.

尚、培養に当って、培地中に炭酸カルシウムを添加して
おくことによって、培養液のpH低下による菌株の酵素
活性の低下を防止することができる。
In addition, by adding calcium carbonate to the culture medium during culturing, it is possible to prevent the enzyme activity of the strain from decreasing due to a decrease in the pH of the culture solution.

培地組成の炭素源は前述の如くソルビトール、マンニト
ール、グルコースまたはデキストリンを使用する必要が
あるが、かかる炭素源を用いることにより、炭素源とし
てグリセロールを用いる場合に比して菌体のグリセロー
ルよりジヒドロキシアセトンへの転換能が顕著に増大す
る。
As mentioned above, it is necessary to use sorbitol, mannitol, glucose, or dextrin as a carbon source in the culture medium composition, but by using such a carbon source, dihydroxyacetone is more abundant than glycerol in bacterial cells, compared to when glycerol is used as a carbon source. The conversion ability to is significantly increased.

この点を明らかにするため、各種炭素源を含む培地に菌
株を培養した場合における菌体のジヒドロキシアセトン
転換能について検討した結果を下記第1表に示す。
In order to clarify this point, Table 1 below shows the results of an investigation of the ability of the bacterial cells to convert dihydroxyacetone when the strains were cultured in media containing various carbon sources.

注1)培地: 炭素源8%、コーンスチープリカ−2 %、炭酸カルシウム0.3%(但し、炭 素源としてグルコースまたはデキスト リンを用いる場合は2%) 注2)使用菌株: アセトバクター・サブオキシダンス ATCC621 注3)培養条件: 30℃、48時間振とう培養 注4)反応条件: 菌体を10%グリセロール水溶液にけ ん濁し、30℃で1時間振とう反応 性5)活性(単位): 1単位は1分間当り1μモルのジヒド ロキシアセトンを生成する活性 前記の如くして得られた培養液から遠心分離等により分
離した菌体または該菌体の処理物(例えば洗浄菌体、乾
燥菌体、菌体をアクリルアミドゲル法などにより固定化
した固定化菌体)を塩類濃度0.1%以下の実質的にグ
リセロールのみの水溶液に好気的゛に作用させることに
よりジヒドロキシアセトンを生成させることができる。
Note 1) Medium: 8% carbon source, 2% corn steep liquor, 0.3% calcium carbonate (2% if glucose or dextrin is used as the carbon source) Note 2) Strain used: Acetobacter suboxy Dance ATCC621 Note 3) Culture conditions: Shaking culture at 30°C for 48 hours Note 4) Reaction conditions: Suspend the bacterial cells in a 10% glycerol aqueous solution and shake at 30°C for 1 hour Reactivity 5) Activity (unit): 1 The unit is the activity of producing 1 μmol of dihydroxyacetone per minute, or the bacterial cells separated by centrifugation from the culture solution obtained as described above, or the processed product of the bacterial cells (e.g., washed bacterial cells, dried bacterial cells, etc.). Dihydroxyacetone can be produced by aerobically reacting immobilized bacterial cells (immobilized bacterial cells by an acrylamide gel method, etc.) with an aqueous solution containing essentially only glycerol with a salt concentration of 0.1% or less. .

グリセロール水溶液の濃度は通常10〜30%程度が好
ましい。
The concentration of the glycerol aqueous solution is usually preferably about 10 to 30%.

反応温度は20〜50℃、とくに30〜40℃程度が好
ましい。
The reaction temperature is preferably about 20 to 50°C, particularly about 30 to 40°C.

反応液のpHは4〜7、とくに5〜6程度が好ましい。The pH of the reaction solution is preferably about 4 to 7, particularly about 5 to 6.

尚、培養液より得られた菌体をグリセロール水溶液にけ
ん濁せしめた反応液のpHは通常pH4〜7の範囲にあ
り、特にpHを調整する必要はないが、必要ならば酸ま
たはアルカリの添加によりpHを調整することができる
The pH of the reaction solution obtained by suspending the bacterial cells obtained from the culture solution in an aqueous glycerol solution is usually in the range of pH 4 to 7, and there is no need to particularly adjust the pH, but if necessary, acid or alkali may be added. pH can be adjusted by

この際、酸またはアルカリの添加量はできるだけ少くす
べきである。
At this time, the amount of acid or alkali added should be as small as possible.

グリセロール水溶液は前述の如く、塩類濃度0.1%以
下の実質的にグリセロールのみの水溶液を用いるべきで
あるが、塩類濃度が0.2%以上になると菌体のグリセ
ロールよりジヒドロキシアセトンへの転換能が低下し好
ましくない。
As mentioned above, an aqueous glycerol solution containing essentially only glycerol with a salt concentration of 0.1% or less should be used; however, if the salt concentration exceeds 0.2%, the ability of bacterial cells to convert glycerol into dihydroxyacetone will decrease. decreases, which is not desirable.

この点を明らかにするため、グリセロール水溶液中に各
種塩類を各種濃度で添加した場合における菌体のジヒド
ロキシアセトン転換能について検討した結果を下記第2
表に示す。
In order to clarify this point, we investigated the ability of bacterial cells to convert dihydroxyacetone when various salts were added to a glycerol aqueous solution at various concentrations.
Shown in the table.

注1)培地: ソルビトール20%、コーンスチ ーブリカー2%、炭酸カルシウム 0.3% 注2)使用菌株: アセトバククー・サブオキシダン スATCC621 注3)培養条件: 30℃、48時間振とう培養 注4)反応条件: 10%グリセロール水溶液に塩類 を添加したものに菌体をけん濁し、 30℃で1時間振とう反応 注5)活性: 塩類無添加の場合の活性を100 とした場合の相対活性 反応完結後、反応液中には実質的に菌体もしくは菌体処
理物とジヒドロキシアセトンしか含まれておらないため
、反応液より菌体もしくは菌体処理物を除いた後、濃縮
等の手段により容易にジヒドロキシアセトンの結晶を取
得することができる。
Note 1) Medium: Sorbitol 20%, corn steep liquor 2%, calcium carbonate 0.3% Note 2) Bacterial strain used: Acetobaccu suboxidans ATCC621 Note 3) Culture conditions: 30°C, shaking culture for 48 hours Note 4) Reaction conditions: Suspend the bacterial cells in a 10% aqueous glycerol solution to which salts have been added, and shake at 30°C for 1 hour. Activity: Relative activity when the activity without the addition of salts is set as 100. Completion of the reaction. After that, since the reaction solution contains essentially only the bacterial cells or the treated bacterial cells and dihydroxyacetone, after removing the bacterial cells or the treated bacterial cells from the reaction liquid, it can be easily removed by means such as concentration. Crystals of dihydroxyacetone can be obtained.

また、イオン交換樹脂操作などの精製手段を行わなけれ
ばならない場合でも、夾雑物の混在が少ないため、イオ
ン交換樹脂の使用量が少なくて済む。
Moreover, even if purification means such as ion exchange resin operation must be performed, the amount of ion exchange resin used can be reduced because there are few contaminants mixed in.

以上の説明から明らかな如く、本発明方法によれば次の
如き利点が得られる。
As is clear from the above description, the method of the present invention provides the following advantages.

■ 炭素源としてソルビトール、マンニトール、グルコ
ースまたはデキストリンを使用することにより、グリセ
ロールよりジヒドロキシアセトンへの転換能の極めて優
れた菌体が得られる。
(2) By using sorbitol, mannitol, glucose, or dextrin as a carbon source, bacterial cells with an extremely superior ability to convert glycerol to dihydroxyacetone can be obtained.

■ 菌体もしくは菌体処理物を実質的にグリセロールの
みの水溶液に作用させることにより、高濃度のグリセロ
ールをほぼ定量的にジヒドロキシアセトンに転換させる
ことができる。
(2) Highly concentrated glycerol can be almost quantitatively converted to dihydroxyacetone by allowing the bacterial cells or the treated bacterial cells to act on an aqueous solution containing essentially only glycerol.

■ 反応後、菌体もしくは菌体処理物を除去するだけで
殆んど純粋なジヒドロキシアセトン水溶液が得られ、反
応液よりのジヒドロキシアセトンの取り出し精製操作が
極めて簡略化される。
(2) After the reaction, an almost pure dihydroxyacetone aqueous solution can be obtained by simply removing the bacterial cells or the treated bacterial cells, and the purification operation for extracting dihydroxyacetone from the reaction solution is extremely simplified.

以下実施例を挙げて本発明方法を具体的に説明するが、
実施例中ジヒドロキシアセトンの確認及び定量はペーパ
ークロマトグラフィーによるジニトロフェニルヒドラジ
ン呈色位置、薄層クロマトグラフィーによるp−アニシ
ジン呈色位置及びW、S、ホフマンの変法(J、 Bi
o#、 Chem、 t120.51(1937))に
より行った。
The method of the present invention will be specifically explained below with reference to Examples.
In the examples, dihydroxyacetone was confirmed and quantified using the dinitrophenylhydrazine coloring position by paper chromatography, the p-anisidine coloring position by thin layer chromatography, and the modified method of W, S, Hoffman (J, Bi
o#, Chem, t120.51 (1937)).

実施例 1 アセトバクター・サブオキシダンスATCC621を下
記組成の培地(100TL11500ml容坂ロフラス
コ)に接種し、30℃にて20時間振とう培養した。
Example 1 Acetobacter suboxidans ATCC621 was inoculated into a medium having the following composition (100 TL, 11,500 ml volume Sakaro flask), and cultured with shaking at 30°C for 20 hours.

培地組成(100′ml中) ソルビトール 20g コーンスチープリ力− 2g 炭酸カルシウム 0.3gかくして得ら
れた培養液100rIllから遠心分離により菌体を集
め、15%グリセロール水溶液100m1にけん濁しく
pHは5.5で調整の必要はなかった)、30’Cに
て40時間振とうしながら反応させた。
Medium composition (in 100ml): Sorbitol 20g Corn steeple strength - 2g Calcium carbonate 0.3g Cells were collected by centrifugation from 100ml of the culture solution obtained in this way, and suspended in 100ml of 15% glycerol aqueous solution, pH: 5. 5), and the reaction was carried out at 30'C for 40 hours with shaking.

その結果、反応液中にジヒドロキシアセトンが149g
生成蓄積した。
As a result, 149g of dihydroxyacetone was found in the reaction solution.
Generated and accumulated.

この反応液から遠心分離により菌体を除去し、上澄液を
脱色後濃縮し、エタノール添加をくり返すことによりジ
ヒドロキシアセトンの粗結晶10.2gを得た。
The bacterial cells were removed from this reaction solution by centrifugation, the supernatant was decolorized and concentrated, and ethanol was repeatedly added to obtain 10.2 g of crude crystals of dihydroxyacetone.

実施例 2 グルコノバクタ−・メラノゲネスIFO3294を実施
例1と同一組成の培地に同一条件で培養した。
Example 2 Gluconobacter melanogenes IFO3294 was cultured in a medium having the same composition as in Example 1 under the same conditions.

得られた培養液100m1から遠心分離により菌体を集
め、20%グリセロール水溶液100m1にけん濁し、
30℃にて66時間振とうしながら反応させた。
The bacterial cells were collected from 100 ml of the obtained culture solution by centrifugation, and suspended in 100 ml of a 20% glycerol aqueous solution.
The reaction was allowed to proceed at 30°C for 66 hours with shaking.

その結果、反応液中にジヒドロキシアセトンが19.3
.p生成蓄積した。
As a result, 19.3% of dihydroxyacetone was present in the reaction solution.
.. p production and accumulation.

この反応液から遠心分離により菌体を除去し、上澄液を
濃縮することにより粗ジヒドロキシアセトン17.5g
を得た。
The bacterial cells were removed from this reaction solution by centrifugation, and the supernatant was concentrated to yield 17.5 g of crude dihydroxyacetone.
I got it.

実施例 3 アセトバクター・サブオキシダンスIFO3254、ア
セトバクター・サブオキシダンスIFO3255及びグ
ルコノバクタ−・セリナスIAM1852をそれぞれ下
記組成の培地(100ml/ 500 rul容坂ロフ
ラスコ)に接種し、30℃にて24時間振とう培養した
Example 3 Acetobacter suboxidans IFO3254, Acetobacter suboxidans IFO3255, and Gluconobacter selinus IAM1852 were each inoculated into a medium with the following composition (100 ml/500 rul Sakaro flask) and shaken at 30°C for 24 hours. It was cultivated for a long time.

培地組成(100ml中) マンニトール 8g 酵母抽出物 2g 炭酸カルシウム 0.3gかくして得ら
れた培養液100m1から遠心分離により菌体を集め、
15%グリセロール水溶液にけん濁し、30℃にて40
時間振とうしながら反応させた。
Medium composition (in 100 ml) Mannitol 8 g Yeast extract 2 g Calcium carbonate 0.3 g From 100 ml of the thus obtained culture solution, collect bacterial cells by centrifugation.
Suspend in 15% glycerol aqueous solution and incubate at 30℃ for 40 minutes.
The reaction was allowed to take place while shaking for hours.

その結果、反応液中に生成蓄積したジヒドロキシアセト
ン(DHA )量は下記第3表の通りであった。
As a result, the amount of dihydroxyacetone (DHA) produced and accumulated in the reaction solution was as shown in Table 3 below.

実施例 4 アセトバクター・サブオキシダンスATCC621を実
施例1と同一組成の培地に同一条件で培養した。
Example 4 Acetobacter suboxidans ATCC621 was cultured in a medium with the same composition as in Example 1 under the same conditions.

得られた培養液100m1から遠心分離により菌体を集
め、これを純水にけん濁して5mlとした。
Bacterial cells were collected from 100 ml of the obtained culture solution by centrifugation and suspended in pure water to make 5 ml.

これにアクリル酸アミド0.94&、N 、 N’−メ
チレンビスアクリル酸アミド0.05g、5%β−(ジ
メチルアミノ)プロピオニトリル0.6ml及び1%過
硫酸カリウム0.6 mlを加え、室温にて10分間静
置した。
To this were added 0.94 g of acrylamide, 0.05 g of N,N'-methylenebisacrylic acid amide, 0.6 ml of 5% β-(dimethylamino)propionitrile, and 0.6 ml of 1% potassium persulfate. It was left standing at room temperature for 10 minutes.

次いで生成ゲルを粉砕し、純水で洗浄することにより固
定化菌体7.5Iを得た。
Next, the resulting gel was crushed and washed with pure water to obtain immobilized bacterial cells 7.5I.

この固定化菌体7.5Iを10%グリセロール水溶液1
00m1に添加し、30°Cにて40時間振とうしなが
ら反応させた。
7.5I of these immobilized bacterial cells were added to 10% glycerol aqueous solution.
00ml and reacted at 30°C for 40 hours with shaking.

その結果、反応液中にジヒドロキシアセトン8gが生成
蓄積した。
As a result, 8 g of dihydroxyacetone was produced and accumulated in the reaction solution.

Claims (1)

【特許請求の範囲】 1 アセトバクター属またはグルコノバククー属に属し
、グリセロールをジヒドロキシアセトンに転換せしめる
能力を有する微生物を炭素源としてソルビトール、マン
ニトール、グルコースまたはデキストリンを含有する培
地に培養し、次いで該培養液より分離した菌体もしくは
該菌体の処理物を塩類濃度0.1%以下の実質的にグリ
セロールのみの水溶液に好気的に作用させ、生成したジ
ヒドロキシアセトンを採取することを特徴とするジヒド
ロキシアセトンの製造法。 2 微生物がグリセロールをジヒドロキシアセトンに転
換せしめる能力を有するアセトバクター・サブオキシダ
ンス、グルコノバクタ−・セリナス、またはグルコノバ
ククー・メラノゲネスである特許請求の範囲第1項記載
の製造法。
[Scope of Claims] 1. A microorganism belonging to the genus Acetobacter or Gluconobacter and having the ability to convert glycerol to dihydroxyacetone is cultured in a medium containing sorbitol, mannitol, glucose or dextrin as a carbon source, and then the culture solution dihydroxyacetone, which is characterized in that the bacterial cells isolated from the bacterial cells or the processed product of the bacterial cells are allowed to act aerobically on an aqueous solution containing essentially only glycerol with a salt concentration of 0.1% or less, and the generated dihydroxyacetone is collected. manufacturing method. 2. The production method according to claim 1, wherein the microorganism is Acetobacter suboxidans, Gluconobacter serinus, or Gluconobacter melanogenes, which have the ability to convert glycerol into dihydroxyacetone.
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* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS596647U (en) * 1982-07-06 1984-01-17 三輪精機株式会社 gear transmission
US4676115A (en) * 1985-05-13 1987-06-30 Eaton Corporation Semi-automatic transmission
JP2003039960A (en) 2001-07-25 2003-02-13 Jatco Ltd Manual transmission and gear shift controller therefor
EP1519084A3 (en) 2003-09-26 2012-05-02 NTN Corporation Vehicle transmission
JP5713333B2 (en) * 2010-01-20 2015-05-07 独立行政法人産業技術総合研究所 Method for producing dihydroxyacetone

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