JP2901458B2 - Method for producing gentianose - Google Patents
Method for producing gentianoseInfo
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Description
【発明の詳細な説明】DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
【0001】[0001]
【産業上の利用分野】本発明は、ゲンチアノースを収率
よく、簡便に製造する方法に関するものである。BACKGROUND OF THE INVENTION 1. Field of the Invention The present invention relates to a method for easily producing gentianose with good yield.
【0002】[0002]
【従来の技術】ゲンチアノースは南部ヨーロッパ産のゲ
ンチアナなどのリンドウ科植物の根茎などに含まれる、
O−β−D−グルコピラノシル−(1→6)−α−D−
グルコピラノシル−(1→2)−β−D−フラクトフラ
ノシドという構造を持つ非還元三糖であり天然に少量存
在するのみであるが、ニトロソ尿素誘導体に合成して、
抗白血病剤、抗腫瘍剤として、医薬品としての用途を有
するものである(特公昭60-41078号公報)。しかし、従
来、原料となるゲンチアノースを得るためには、天然物
からの抽出あるいは、多段階の化学合成法によるしかな
く、前者は、夾雑物が多く、ゲンチアノースを単離する
事が困難である等の欠点があり、後者は、、反応工程が
複雑、多段階であり、ゲンチアノースの最終的収率が低
い等の欠点があった。BACKGROUND ART Gentianose is contained in rhizomes of Gentian plants such as gentian from southern Europe,
O-β-D-glucopyranosyl- (1 → 6) -α-D-
It is a non-reducing trisaccharide having a structure of glucopyranosyl- (1 → 2) -β-D-fructofuranoside, which exists only in a small amount in nature, but is synthesized into a nitrosourea derivative,
It has application as a pharmaceutical as an anti-leukemic agent and an anti-tumor agent (Japanese Patent Publication No. 60-41078). However, conventionally, to obtain gentianose as a raw material, extraction from a natural product or a multi-step chemical synthesis method is only available. In the former case, it is difficult to isolate gentianose because there are many impurities and the like. The latter has the disadvantage that the reaction process is complicated and multi-step, and the final yield of gentianose is low.
【0003】[0003]
【発明が解決しようとする課題】そこで、本発明者ら
は、上述した問題点を微生物学的手法により解決すべ
く、鋭意研究した結果、製造工程を大幅に簡略化し、そ
のことによってゲンチアノースの最終的収率を高めるこ
とができることを見いだし本発明を完成するに至った。
従って、本発明の目的はゲンチアノースを収率よく、簡
便に製造する方法を提供することにある。The inventors of the present invention have conducted intensive studies in order to solve the above-mentioned problems by a microbiological technique, and as a result, have greatly simplified the production process, thereby contributing to the final production of gentianose. It has been found that the target yield can be increased, and the present invention has been completed.
Therefore, an object of the present invention is to provide a method for easily producing gentianose with good yield.
【0004】[0004]
【課題を解決するための手段】本発明者の目的は、β−
グルコシド結合を持つ多糖あるいはその一部分解物とシ
ョ糖とを含有する溶液に、β−グルコシル転移活性を有
する特定の微生物またはその微生物由来の酵素を反応さ
せることにより達成される。The object of the present inventors is to provide a β-
It is achieved by reacting a solution containing a polysaccharide having a glucoside bond or a partially degraded product thereof and sucrose with a specific microorganism having β-glucosyltransferring activity or an enzyme derived from the microorganism.
【0005】以下に発明の詳細を説明する。本発明にお
いて用いられるβ−グルコシド結合を持つ多糖とは、基
本的には、β−グルコシル転移反応が進行するものであ
れば特に限定されるものではなく、入手しやすく、低価
格などの点から、実用的なパキマン、カードラン、ラミ
ナリンが好ましい。β−グルコシド結合を持つ多糖の分
解物は、上記の糖などを、それぞれの分解酵素で適当に
分解し、オリゴ糖にしたものや、少糖類にしたもののい
ずれを用いても良い。またショ糖については、精製度は
特に問題でなく、工業用のものでも十分に利用できる。The details of the present invention will be described below. The polysaccharide having a β-glucoside bond used in the present invention is not particularly limited as long as the β-glucosyltransfer reaction proceeds, and it is easily available and low in price. Practical, practical Pakiman, curdlan and laminarin are preferred. As the decomposed product of the polysaccharide having a β-glucoside bond, any of those obtained by appropriately decomposing the above-mentioned saccharide or the like with each decomposing enzyme to form oligosaccharides or oligosaccharides may be used. Regarding sucrose, the degree of purification is not particularly problematic, and industrial sucrose can be used sufficiently.
【0006】本発明で使用する微生物は、徳島県小松島
市で採集された土壌より得られたものであり、単一の炭
素源としてラミナリンを含む寒天培地に生育したものの
中から選択されたものである。The microorganism used in the present invention is obtained from soil collected in Komatsushima City, Tokushima Prefecture, and is selected from those grown on an agar medium containing laminarin as a single carbon source. is there.
【0007】なお、本発明に使用するこの微生物の菌学
的性質は以下の通りである。 A.形態学的特徴 細胞の形及び大きさ:桿菌、大きさは 0.5μm× 1.0〜
3.0 μm 細胞の多形成:なし 運動性:なし 胞子形成能:なし グラム染色性:陰性 抗酸性:なしThe microbiological properties of the microorganism used in the present invention are as follows. A. Morphological characteristics Cell shape and size: Bacillus, size 0.5μm × 1.0 ~
3.0 μm Cell polyplasia: none Motility: none Sporulation ability: none Gram stain: negative Acid resistance: none
【0008】B.培養学的性質 次の各培地における生育状況 肉汁寒天培地:生育良。コロニーの色は培養初期は淡黄
色であるが、日数の経過にともなって、深黄色になる。
コロニーの形は、完全な円形、光沢があり盛り上がって
いて、粘張性がある。普通寒天培地上で2日間培養後の
コロニーの直径は2〜3ミリメートル。果実様芳香を発
する。 肉汁斜面培地:生育程度は普通。黄色で透明がかってい
て粘張性がある。湿った感じで光沢がある。 肉汁液体培地:生育程度普通から良。濁り、沈殿あり。
不完全なリング形成。 肉汁ゼラチン穿刺培養:20℃にて2日後液化開始。層状
液化。 リトマスミルク:酸により凝固B. Cultural properties Growth status in the following media Broth agar: good growth. The color of the colony is pale yellow at the beginning of the culture, but becomes deep yellow with the passage of days.
The colony is perfectly round, shiny, raised and sticky. The diameter of a colony after culturing on a normal agar medium for 2 days is 2 to 3 mm. It emits a fruity aroma. Gravy slant medium: Normal growth. Yellow, transparent and sticky. It is shiny and wet. Broth liquid medium: Growth is normal to good. Turbid, with precipitation.
Incomplete ring formation. Broth gelatin stab culture: liquefaction started after 2 days at 20 ° C. Layered liquefaction. Litmus milk: coagulated by acid
【0009】C.生理学的性質 硝酸塩の還元:− 脱窒反応:− MRテスト:− VPテスト:− インドールの生成:+ 硫化水素の生成:± 澱粉の加水分解:+ クエン酸の利用:クリステンセン培地には少し生育する
がコーザーの培地には生育しない。 無機窒素の利用:アンモニウム塩も硝酸塩もほとんど利
用しない。 色素の生成:非水溶性の黄色の色素を生成する。 ウレアーゼ:+ オキシダーゼ:+ カタラーゼ:+ 生育の範囲:pH5.0 〜pH9.0 で生育し、4℃〜40℃
で生育する。 酸素に対する態度:通性嫌気性 O−Fテスト* :発酵的(パラフィン封入下では酸化反
応が非常に遅い。) * OFテストの嫌気条件は、パラフィンでスラントを封
入して行った。C. Physiological properties Nitrate reduction:-Denitrification:-MR test:-VP test:-Indole formation: + Hydrogen sulphide formation: + Starch hydrolysis: + Use of citric acid: Grow slightly in Christensen medium Does not grow in the medium of Coser. Utilization of inorganic nitrogen: Almost no ammonium salt or nitrate is used. Dye formation: Produces a water-insoluble yellow dye. Urease: + Oxidase: + Catalase: + Growth range: Growing at pH 5.0 to pH 9.0, 4 ° C to 40 ° C
Grows in. Attitude to oxygen: facultative anaerobic OF test * : fermentative (oxidation reaction is very slow under paraffin inclusion) * The anaerobic condition of the OF test was performed by enclosing slant with paraffin.
【0010】D.その他の生理学的性質 エスクリンの分解:+ マロン酸の利用:− アルギニンの分解:− リジンの脱炭酸反応:− オルニチンの脱炭酸反応:− フェニルアラニンの脱アミノ反応:− β−ガラクトシダーゼ:+ 塩化ナトリウムの耐性:塩化ナトリウム濃度2%までは
生育する。 マッコンキー培地での生育:− リゾチーム耐性:+ レシチナーゼ(Egg-york反応):+ カゼインの分解:+ チロシンの分解:+ チロシン培地での色素の生成:+ ジオキシアセトンの生成:+ グルコン酸の酸化:− セルロースの分解:− 溶血性(羊血寒天):+(7日目に溶血する) ツイーン80の分解:+D. Other physiological properties Degradation of esculin: + Utilization of malonic acid:-Degradation of arginine:-Decarboxylation of lysine:-Decarboxylation of ornithine:-Deamination of phenylalanine:-β-galactosidase: + of sodium chloride Tolerance: grows up to 2% sodium chloride concentration. Growth on MacConkey medium:-Lysozyme resistance: + Lecithinase (Egg-york reaction): + Degradation of casein: + Degradation of tyrosine: + Formation of pigment in tyrosine medium: + Formation of dioxyacetone: + Oxidation of gluconic acid :-Decomposition of cellulose:-Hemolytic (sheep blood agar): + (haemolysis on the 7th day) Decomposition of Tween 80: +
【0011】以上の菌学的性質に基づき、本発明に使用
する微生物を、バージェイズ・マニュアル・オブ・シス
テマチック・バクテリオロジー第2巻(Bergey's Manua
l ofsystematic Bacteriology Volume 2)の記載及びそ
の他の研究(岐阜大医学部記要,Vol.38,P380(1990) 、
Microbiol. Immunol.,Vol.34,P73(1990)、Ann. Rev.Mic
robiol., Vol.37,P233(1983) 、J. Gen. Appl. micro-b
iol.,Vol.27,P57(1981))の記載と比較したところ、フ
ラボバクテリウム属に属する細菌であり、フラボバクテ
リウム・インドロゲネスに近い種であると推定される
が、糖の資化性、ウレアーゼ、β−ガラクトシダーゼの
産生及びマロン酸の利用等で違いがあった。また、イン
ドロゲネスは臨床からの分離菌であるのに対し、本発明
で用いる菌は土壌からの分離菌である。以上のような生
育環境の大幅な違い、生理学的性質の違いから、インド
ロゲネスと本菌は類縁ではあるが、同一種ではないと考
えられた。そこで、本菌をフラボバクテリウム・エスピ
ーSKP4001と命名し、平成5年3月22日「微工研
菌寄13537号(FERM P−13537)」とし
て寄託されている。Based on the mycological properties described above, the microorganism used in the present invention was prepared using the method described in Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, Vol.
l Description of ofsystematic Bacteriology Volume 2) and other research (Gifu University School of Medicine, Vol. 38, P380 (1990),
Microbiol. Immunol., Vol. 34, P73 (1990), Ann. Rev. Mic
robiol., Vol. 37, P233 (1983), J. Gen. Appl. micro-b
iol., Vol. 27, p. 57 (1981)), it is a bacterium belonging to the genus Flavobacterium and is presumed to be a species close to Flavobacterium indologenes. , Urease, β-galactosidase and the use of malonic acid. Indologenes is a bacterium isolated from a clinic, whereas the bacterium used in the present invention is a bacterium isolated from soil. Based on the significant differences in growth environment and physiological characteristics as described above, it was considered that Indrogens and this fungus were related but not the same species. Therefore, this bacterium was named Flavobacterium sp. SKP4001 and deposited on March 22, 1993 as "Microtechnical Laboratories No. 13537 (FERM P-13537)".
【0012】本発明の実施に際しては、上記した微生物
の通気攪拌培養により得られた菌体培養液を遠心分離し
て培養上清液を除いた菌体を使用するか、あるいは菌体
から調整した粗酵素液、その粗酵素を各種カラムクロマ
トグラフィーにより精製し、比活性を高めたもの等を使
用することができる。In practicing the present invention, the bacterial cell culture obtained by aeration and agitation culture of the above-mentioned microorganisms is centrifuged to remove cells from the culture supernatant, or the cells are prepared from the cells. A crude enzyme solution, a solution obtained by purifying the crude enzyme by various column chromatography, and increasing the specific activity can be used.
【0013】また、本発明で使用する酵素は、フラボバ
クテリウム属に属する微生物SKP4001または当該
微生物SKP4001由来の酵素である。[0013] The enzyme used in the present invention is a microorganism SKP4001 belonging to the genus Flavobacterium or an enzyme derived from the microorganism SKP4001.
【0014】これらの酵素は、菌体膜結合あるいは菌体
内酵素であるので、超音波破砕、フレンチプレス処理、
細菌壁溶解酵素処理等公知の方法により菌体を破砕し、
遠心分離によって菌体残さを除いた後、さらに各種クロ
マトグラフィー、例えばDEAE−セルロースカラム、ゲル
濾過カラム等の公知の方法を使用して精製すると比活性
の高い酵素が得られる。Since these enzymes are cell membrane-bound or intracellular enzymes, they are subjected to ultrasonic crushing, French press treatment,
Crush cells by a known method such as bacterial wall lysis enzyme treatment,
After removing bacterial cell residues by centrifugation, the enzyme is purified by various chromatography, for example, using a known method such as a DEAE-cellulose column or a gel filtration column to obtain an enzyme having a high specific activity.
【0015】本発明で使用する微生物あるいはその微生
物由来の酵素は、ゲンチアノースの生産のみでなく、そ
のβ−グルコシル転移活性を用いて、他の二糖類、例え
ばマルトース、セロビオースや、少糖類、オリゴ糖類、
糖類類似物質例えばアスコルビン酸、リボフラビン、ま
たは配糖体例えばステビオサイド等に、β−グルコシル
転移することもできる。The microorganism used in the present invention or the enzyme derived from the microorganism not only produces gentianose, but also uses its β-glucosyltransferase activity to produce other disaccharides such as maltose, cellobiose, oligosaccharides and oligosaccharides. ,
Beta-glucosyl transfer to saccharide analogs such as ascorbic acid, riboflavin, or glycosides such as stevioside can also be performed.
【0016】次に本発明の転移反応条件について説明す
る。本発明における転移反応に使用するショ糖とβ−グ
ルコシル結合を持つ多糖または、その分解物は、まず水
に溶解させ、その濃度をショ糖は 0.1〜15W/V%、β−グ
ルコシル結合を持つ多糖または分解物は、 0.1〜50W/V%
程度として使用する。転移反応において、β−グルコシ
ル結合を持つ多糖とその分解物の挙動は同じであるの
で、どちらを用いても同様に目的は達成しうるが、グル
コシル結合を持つ多糖の中には、水溶性の低いものがあ
るので、その場合は、水溶性の高い分解物を使用し、反
応操作を容易にすることができる。Next, the transfer reaction conditions of the present invention will be described. The polysaccharide having sucrose and β-glucosyl bond used for the transfer reaction in the present invention or its decomposed product is first dissolved in water, and the concentration of sucrose is 0.1 to 15 W / V%, which has β-glucosyl bond. 0.1 ~ 50W / V% for polysaccharide or decomposed product
Use as a degree. In the transfer reaction, since the behavior of the polysaccharide having a β-glucosyl bond and the decomposition product thereof are the same, the same purpose can be achieved by using either of them. In some cases, a low water-soluble decomposed product is used to facilitate the reaction operation.
【0017】転移反応における、転移酵素の添加量は、
菌体を用いる場合には、基質1gに対して、培養液とし
て5ml以上、好ましくは20〜50ml、菌由来の酵素を用い
る場合には、基質に対して、タンパク質量として 0.5%
以上、好ましくは 2.0〜5.0%である。In the transfer reaction, the amount of transferase added is
When cells are used, 5 ml or more, preferably 20 to 50 ml, of the culture solution is used for 1 g of the substrate. When enzymes derived from bacteria are used, the amount of protein is 0.5% relative to the substrate.
As described above, the content is preferably 2.0 to 5.0%.
【0018】転移反応における反応液のpHと温度は、
β−グルコシル転移活性を有する酵素が反応してゲンチ
アノースを生成させ得る条件であれば良いが、そのpH
としては通常pH4〜10、好ましくはpH5〜8、反応
温度としては20〜85℃、好ましくは30〜75℃が適当であ
る。反応時間は10分以上であれば良く、好ましくは2〜
48時間である。The pH and temperature of the reaction solution in the transfer reaction are as follows:
Any condition can be used as long as the enzyme having β-glucosyl transfer activity can react and produce gentianose,
The pH is usually from 4 to 10, preferably from 5 to 8, and the reaction temperature is from 20 to 85 ° C, preferably from 30 to 75 ° C. The reaction time may be 10 minutes or more, preferably 2 to
48 hours.
【0019】なお、転移酵素が最適に反応する条件下で
は、使用したショ糖のうち、40%がゲンチアノースに変
換していた。Under the conditions under which the transferase reacts optimally, 40% of the sucrose used was converted to gentianose.
【0020】また転移反応方式としては、バッチ方式の
他、公知の方法により菌体、もしくはその酵素を固定化
して連続変換反応による方法等を使用することができ
る。As the transfer reaction method, besides the batch method, a method of immobilizing cells or their enzymes by a known method and performing a continuous conversion reaction can be used.
【0021】以上の転移反応条件により得たゲンチアノ
ース生成溶液は、公知の方法により、各種のカラムクロ
マトグラフィーを組み合わせて、ショ糖、残存したβ−
グルコシル糖化合物と分離することができる。The gentianose-producing solution obtained under the above-mentioned transfer reaction conditions was subjected to sucrose and remaining β-
It can be separated from glucosyl sugar compounds.
【0022】[0022]
(1)菌体の調整 フラボバクテリウム・エスピーSKP4001をラミナ
リン 0.5W/V%,KH2 PO4 0.5W/V%,(NH4 )2 S
O4 0.3W/V%,MgSO4 ・7H2 O0.05W/V%,ポリペ
プトン 0.1W/V%,メタルソルーション(FeSO4 ・7
H2 O0.01g,MnCl2 ・4H2 O 0.01g,ZnS
O4 ・7H2 O 0.01gを脱イオン水に溶解し、 100ml
にフィルアップした溶液) 0.5V/V%からなる培地1リッ
トルに植菌し、30℃で48時間通気攪拌培養した。得られ
た菌体培養液を遠心分離し、培養上清を除いた菌体を使
用菌体とした。(1) The adjustment Flavobacterium sp SKP4001 of bacteria laminarin 0.5W / V%, KH 2 PO 4 0.5W / V%, (NH 4) 2 S
O 4 0.3W / V%, MgSO 4 · 7H 2 O0.05W / V%, polypeptone 0.1 W / V%, metal solutions (FeSO 4 · 7
H 2 O0.01g, MnCl 2 · 4H 2 O 0.01g, ZnS
The O 4 · 7H 2 O 0.01g dissolved in deionized water, 100 ml
The solution was inoculated into 1 liter of a medium containing 0.5 V / V%, and cultured with aeration and agitation at 30 ° C. for 48 hours. The obtained cell culture solution was centrifuged, and the cells from which the culture supernatant was removed were used as cells.
【0023】(2)転移反応 ショ糖(市販グラニュー糖、純度98%)5g、ラミナリ
ン20g、先に調整した菌体を50mMリン酸バッファー(p
H 7.0)100ml に溶解し、70℃で24時間反応後、温度95
℃で10分間加熱し酵素を失活させた。(2) Transfer reaction 5 g of sucrose (commercially available granulated sugar, purity 98%), 20 g of laminarin, and the above-prepared cells were added to a 50 mM phosphate buffer (p
H7.0) dissolved in 100 ml and reacted at 70 ° C for 24 hours.
The enzyme was inactivated by heating at 10 ° C for 10 minutes.
【0024】(3)ゲンチアノースの分離 得られた反応液をゲル濾過カラムクロマトグラフィー
(ファルマシア(株)製Sephadex LH−20)に供
し、水で溶出し、ラミナリンとショ糖・反応生成物混合
液を分離した。ショ糖・反応生成物混合液は、減圧濃縮
し、さらにシリカゲル(MERCK製シリカゲル60)
カラムクロマトグラフィー(溶媒;クロロホルム:メタ
ノール:水=6:4:1)に供し、反応生成物 1.7gを
得た。(3) Separation of Gentianose The obtained reaction solution was subjected to gel filtration column chromatography (Sephadex LH-20, manufactured by Pharmacia Co.), eluted with water, and a mixture of laminarin and sucrose / reaction product was obtained. separated. The sucrose / reaction product mixture is concentrated under reduced pressure, and further silica gel (silica gel 60 manufactured by MERCK)
The residue was subjected to column chromatography (solvent; chloroform: methanol: water = 6: 4: 1) to obtain 1.7 g of a reaction product.
【0025】(4)ゲンチアノースの確認 前記反応生成液を高速液体クロマトグラフィー(株式会
社島津製作所製LC−10A)にて以下の条件で測定し
たところ、酵素を失活させて反応させた対照と比較する
と、保持時間17分のところと29分のところに新しいピー
クを確認した。(図1及び図2) (HPLCによる分析条件) カラム:順相シリカゲル系カラム(東ソー(株)製 Ami
do−80) 移動相:アセトニトリル:水=70:30 流量: 1.0ml/min 温度:30℃ 検出:RI検出器(4) Confirmation of Gentianose The reaction product was measured by high performance liquid chromatography (LC-10A, manufactured by Shimadzu Corporation) under the following conditions, and compared with a control in which the enzyme was inactivated and reacted. Then, new peaks were confirmed at the retention times of 17 minutes and 29 minutes. (Figures 1 and 2) (Analysis conditions by HPLC) Column: Normal phase silica gel column (Ami manufactured by Tosoh Corporation)
do-80) Mobile phase: acetonitrile: water = 70:30 Flow rate: 1.0 ml / min Temperature: 30 ° C Detection: RI detector
【0026】ついで、保持時間17分の生成物について、
起伝導核磁気共鳴装置(株式会社日本電子製GX−27
0型)と、核磁気共鳴装置(株式会社日本電子製GX−
68型)にて、以下の条件によりその構造の確認を行っ
たところ、ゲンチアノースであることが判明した。(図
3及び図4) (H−NMRによる分析条件) 測定溶媒:重水 標準物質:Tsp−d6 270KHz ,20℃ (C−NMRによる分析条件) 測定溶媒:重水 標準物質:Tsp−d6 68KHz ,20℃Next, for the product having a retention time of 17 minutes,
Nuclear magnetic resonance apparatus (GX-27 manufactured by JEOL Ltd.)
0 type) and a nuclear magnetic resonance apparatus (GX-
The structure was confirmed by the following conditions under the following conditions. As a result, it was found to be gentianose. (FIGS. 3 and 4) (Analysis conditions by H-NMR) Measurement solvent: heavy water Standard substance: Tsp-d6 270 KHz, 20 ° C. (Analysis conditions by C-NMR) Measurement solvent: heavy water Standard substance: Tsp-d6 68 KHz, 20 ° C
【0027】以上のH−NMR,C−NMRによる解析
結果から、本発明により得られた生成物はゲンチアノー
スであることを確認した。なお、もう一方の保持時間29
分のピークは、ゲンチアノースにグルコースが一個付加
した物質であると推定される。From the results of the above analysis by H-NMR and C-NMR, it was confirmed that the product obtained by the present invention was gentianose. The other holding time 29
The minute peak is presumed to be a substance obtained by adding one glucose to gentianose.
【0028】[0028]
【発明の効果】本発明によれば、ゲンチアノースを、従
来の天然からの抽出、あるいは化学合成法によって製造
していたのに比べて、収率よく、簡便に生産でき、工業
的に優れた方法である。Industrial Applicability According to the present invention, gentianose can be easily produced at a high yield and is industrially superior to those produced by conventional extraction from natural or chemical synthesis methods. It is.
【図1】実施例で得られた反応生成物のクロマトグラフ
ィーを示す図である。FIG. 1 is a diagram showing chromatography of a reaction product obtained in an example.
【図2】実施例の転移反応のブランクのクロマトグラフ
ィーを示す図である。FIG. 2 is a diagram showing chromatography of a blank of a transfer reaction of an example.
【図3】実施例で得られた反応生成物のH−NMRスペ
クトル線図である。FIG. 3 is an H-NMR spectrum diagram of a reaction product obtained in an example.
【図4】実施例で得られた反応生成物のC−NMRのス
ペクトル線図である。FIG. 4 is a C-NMR spectrum diagram of a reaction product obtained in an example.
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (58)調査した分野(Int.Cl.6,DB名) C12P 19/00 C12P 19/18 CA(STN)──────────────────────────────────────────────────続 き Continued on the front page (58) Field surveyed (Int. Cl. 6 , DB name) C12P 19/00 C12P 19/18 CA (STN)
Claims (3)
その分解物とショ糖とを含有する溶液に、β−グルコシ
ル転移活性を有するフラボバクテリウム属に属する微生
物SKP4001または当該微生物SKP4001由来
の酵素を反応させることを特徴とするゲンチアノースの
製造方法。1. A beta-glucoside polysaccharide having a coupling or in a solution containing a degradation product thereof and sucrose, beta-glucosyltransferase activity Flavobacterium genus microorganism belonging SKP4001 or reaction of the enzyme derived from the microorganism SKP4001 having A method for producing gentianose.
その分解物とフラボバクテリウム属に属する微生物SK
P4001または当該微生物SKP4001由来の酵素
とを用いて、ショ糖にβ−グルコシル転移を行う方法。2. A polysaccharide having a β-glucoside bond or a decomposition product thereof and a microorganism SK belonging to the genus Flavobacterium.
A method of performing β-glucosyl transfer to sucrose using P4001 or an enzyme derived from the microorganism SKP4001.
ン、カードラン、ラミナリンである請求項1または2記
載の方法。3. The method according to claim 1, wherein the polysaccharide having a β-glucoside bond is pakiman, curdlan, or laminarin.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP5141545A JP2901458B2 (en) | 1993-05-20 | 1993-05-20 | Method for producing gentianose |
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JP5141545A JP2901458B2 (en) | 1993-05-20 | 1993-05-20 | Method for producing gentianose |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
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JPH06327485A JPH06327485A (en) | 1994-11-29 |
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