JPS5889120A - 稚仔魚の生産方法 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 本発明は、魚介類稚仔の大量生産方法、さらに詳しくい
えばアルコール発酵の際の残液を利用して海洋微生物を
培養し、その培養物を海洋プランクトンの１種であるワ
ムシに投与し、とのワムシを餌料として稚仔魚を生産す
る方法に関するものである。

近年、漁獲可能海域が制限されるとともに、自然環境下
で繁殖、成長した魚介類をそのまま採取するこれまでの
漁業に代わるものとして、人為的に魚介類を繁殖、成長
させ、大量に安定供給する養殖漁業が注目されるように
なってきた。

ところで、一般に魚介類を養殖するには、魚介類のふ化
稚仔魚に対して、適当な手段で人工的に増殖させた動物
プランクトンの中で最も小さいものを投与して成長させ
、その後は成長の程度に応じて次第に大きいプランクト
ンを投与するようにし、最後に魚肉ミンチ又は練餌等を
投与して成魚になるまで成長させるという方法がとられ
ている。

この際に用いられるプランクトンとしては、通常、輪形
動物に属するシオミズツボワムシ（Ｂｒａｃｈｉ−ｏｎ
ｕｓ　ｓｐ、　）いわゆるワムシや、節足動物、撓脚類
に属するアカルチャ（Ａｃ４ｒｔｉａ　ｓｐ、）、オイ
トす（０ｉｔｈｏｎａ　ｓｐ、　）、チグリオプス（Ｔ
ｉｇｒｉｏｐｕｓθｐ、）などの動物プランクトンがあ
る。

このような動物プランクトンを人工的に増殖させる方法
としては、これまで海産クロレラを用いる方法、パン酵
母を用いる方法などが知られているが、海産クロレラは
天候により収量が左右され安定供給が困難であるし、ま
たパン酵母を用いる方法は動物プランクトンの増殖が不
安定であり、培養中に急激な数の減少を生じることがら
シ、時には全滅するなどの欠点があるため、いずれも実
用的な方法として満足できるものとはいえない。

他方、ワムシの増殖方法としては、海水中でグルコース
を主栄養源として培養した海洋微生物を投与する方法が
提案されているが、培養液中のｐＨの変動が著しく、結
果が不安定になるため、大量の稚仔魚養殖用としては不
適当である。したがって、養殖漁業の分野において、安
価に入手しうる栄養源を用い、魚介類稚仔が摂餌しうる
動物プランクトンを安定に供給しうる方法を開発するこ
とが、最も重要な課題となっている。

本発明者らは、このような事情のもとで、魚介類稚仔が
摂餌しうる動物プランクトン、特にワムシの大量生産法
を開発すべく鋭意研究を重ねた結果、アルコール発酵終
了時に生じる発酵残液を主栄養源として用い培養した海
洋微生物のフロックが、ワムシの増殖用餌料として好適
であることを見出し、この知見に基づいて本発明をなす
に至った。

すなわち、本発明は海洋微生物を海水中においてアルコ
ール発酵残液を主栄養源として培養し、フロック状培養
物を生成させ、次いでこのフロック状培養物をワムシに
投与してこれを増殖させたのち、このワムシを回収して
稚仔魚に投与することを特徴とする稚仔魚の生産方法を
提供するものである。

本発明において用いる海洋微生物とは、海洋酵母及び海
洋バクテリアのような海中に生存する微生物のことであ
シ、通常、天然の海水に所要の栄養源を加え通気培養す
ることによって得られる。

また、本発明において主栄養源として用いるアルコール
発酵残液とは、ショ糖、ブドウ糖、糖蜜、ビート糖蜜の
ような糖類や甘藷、とうもろこし、きびのようなデンプ
ン類の糖化液に、アルコール酵母を接種して発酵させ、
生成した一アルコールを分離した後の残液のことであシ
、このものは原料中の非発酵性糖類、多価アルコール゛
、有機酸などのほか、メラノイジン、カロチノイドのよ
うな高分子物質、ビタミン類、菌体及びその分解物であ
るアミノ酸、核酸、ペプチド類を含んでいる。このアル
コール発酵残液は、その原料、発酵条件４どによシ、そ
の組成、性質を若干具にするが、そのいずれも同様に用
いることができる。このアルコール発酵残液には、必要
に応じリン酸塩、窒素源、有機酸などの補助成分を添加
することができる。

本発明方法における海洋微生物の培養は例えば次のよう
にして行うことができる。

すなわち、無殺菌の生海水にアルコール発酵残液及び必
要量の第＝リン酸カリウムを添加して仕込培地とし、開
放槽中で通気しかきまぜながら培養を開始し、十分に微
生物を繁殖させたのち、所定時間ごとに所定量の培地を
抜き取り、同量の新しい仕込培地を補給する操作を繰シ
返えすことによって、連続的に培養を行うことができる
◎この際の、微生物培養液中の固形分濃度は、乾燥重量
換算で０．９６〜１．５０％、ＣＯＤは５，６００〜８
，７００ｐｐｍである。また培養条件としては、温度２
５〜３５℃、通気量３０〜１０（１／？Ｆｌ”・ｍｉｎ
　、かきまぜ速度０〜９０　ｒｐｍの範囲が適当である
。この微生物の培養において特に重要なのは、ｐＨを４
〜５、好ましくは４．５〜４．７の範囲に制御すること
である。本発明においては、前記したようにアルコール
発酵残液を用いることにより、容易に所望のｐＨ範囲の
制御を行うことができるが、これはアルコール発酵残液
中に含まれる有機酸等がバッファーの役割を果している
ためであると思われる。

この海洋微生物の培養により、フロック状培養物が生成
するが、本発明においてはこのフロックの径が５０〜１
００ミクロン程度になるまで培養を続行するのが有利で
ある。このフロックは壜＝凍海洋酵母と海洋バクテリ アが混合凝集して形成されたものである。ワムシは、通
常小型のもので１５０〜２００ミクロン、大型のもので
２００〜３００ミクロンの体長を有し、その口の大きさ
は体長の約μ程度である。そして、このものは、はぼそ
の口の大きさていどの餌料を摂取しうるので、上記の範
囲の大きさのフロックを形成させることによシ、非常に
好適な餌料効果が得られる。

このようにして得られるフロック状培養物は、そのまま
で、あるいは、遠心分離等で菌体を分離回収して、これ
をワムシに投与する。

なお、微生物フロック培養槽中で増殖生成したフロック
がワムシ槽に投与された後にも凝集は行われ、上記のよ
うにワムシの餌料として好適な大きさとなって分散する
ことが観察される。

本発明で用いるワムシは、普通、シオミズツボワムシ（
Ｂｒａｃｈｉｏｎｕｓ　ｓｐ、　）を意味するが、この
類縁微小生物も用いることができる。また、稚仔魚はそ
の成長の程ｉに応じて次第に大きいプランクトンを摂取
する傾向があるので、場合によっては、母液を用いワム
シと同様条件下で増殖させたより大型のプランクトンの
チグリオブス（Ｔｉｇｒｉ−ｏｐｕｓ　ｓｐ、　）など
を生産しこれを餌料として併用することもできる。

槽に附設したが所期の効果を示し、研究の達成に大きく
貢献した。

一般に、動物プランクトンを安定に大量生産することは
非常に困難であるが、本発明に従い、アルコール発酵残
液から得られた微生物培養液を用いると、きわめて安定
した動物プランクトンの大量生産を行うことができる。

本発明における微生物培養、ワムシの増殖は、前記した
ように半連続式又は連続式で行うのが設備費の節約、装
置の縮小、効率の向上の点で有利であるが、所望ならば
回分式で行うこともできる。

本発明方法により大量生産しうる稚仔魚としては、例え
ばマダイ、クロダイ、アイナメ、イシガレイ、カレイ、
アユなどを挙げることができる。

これらの稚仔魚の養殖は、公知方法に従い、例えば適当
な手段で採卵した卵を、ｍふ化させたのち、飼育槽に移
し、摂餌開始時よシ前記のようにして培養したワムシを
初期餌料として投与し、至適温度のもとて通気しながら
一次飼育する。

ワムシの投与は、ふ化後日令４日〜１２日までは１〜２
回／日、以後日令１３日〜２１日は２〜３回／日程度で
あシ、稚魚の摂餌量の数倍になるよう投与量を調節する
。稚仔魚の飼育条件は、魚種によって異なるが、マダイ
、クロダイの例を示せば、水温１８℃〜２５℃、通気量
２００〜３００　ｄ／ｍｉｎ　−ｍ”　（飼育水量）、
換水けふ化後日令５日頃までは止水とし、日令６日〜１
２日頃は換水率１回７日、日令１２日〜２２日は換水率
２回７日と徐々に変化させる。

給餌は、日令３０日前後までは、ワムシのみで′あるが
、それ以後はチグリオプス、ミンチ魚肉、配合飼料を併
用するのが望ましい。

飼育槽としては、−次飼育には陸上水槽を用いるが稚魚
期日令３０日以降の二次飼育では、網生簀を用いるのが
通常である。

本発明に従うと、海産クロレラやグルコース培養物の場
合と異なり・、ワムシに摂餌させる微生物の生産がきわ
めて円滑に、かつ高能率で行われるので、稚仔魚の大量
生産が可能になり、しか、もコストを下げることができ
るという利点がある。例えば、従来、稚仔魚生産に用い
る水槽の容積比は、稚仔魚飼育槽：ワムシ槽：海産クロ
レラ槽の対比でみると、ｌ：　ｔ、ｓ　：　６．ｊであ
り、ノくン酵母−を併用したとしても、１　：　２．４
　：　２．１であって海産クロレラ槽は少なくとも稚魚
飼育槽と同等、もしくは、その数倍の容積を必要とした
のに対し、本発明によると、動物プランクトンの摂餌で
きる微生物の生産槽は、稚仔魚飼育槽の十分の一以下、
実績では６．０憾の容量で−よいことになり、クロレラ
水槽に比べると容積的に一以下でよいことになる。

０ さらに海産クロレラが光を必要とし、天候、気象に支配
されるのに比べ、本発明では、動物プランクトンに摂餌
させる微生物の生産槽は光を要せず、容量が小さく形状
も自由なので、温度調節を人工的に施すことも容易であ
り、外界温度に支配されず、周年安定したワムシなどの
動物プランクトンの生産を果すことができる。

次に実施例によシ本発明をさらに詳細に説明する。

実施例１ ワムシに与える微生物培養液は、合成樹脂製水槽に、ア
ルコール発酵残液濃縮液（固形分４５憾）７．５〜と第
一リン酸カリウム１９２ｆ及び、種菌２０１を入れ海水
で５００．、ｅとし連続培養で製造した。

培養条件は、水温３０℃、通気量１０〜２０！／ｍｉｎ
％　ｐＨ４，５〜５．０である。この液から５０．１３
７日抜き取り、その減量分はアルコール発酵残液が３係
（重量）になるように調整し、かつ３８．４１の第一リ
ン酸カリウムを含む海水を添加して補うようにした。一
方、抜き取った培養液は熟成槽に移し、温度３０℃で２
４時間通気によってかきまぜて熟成させ供試用微生物培
養液とした。このときのフロックの大きさは５０〜１０
０μであった。

ワムシ培養は合成樹脂製水槽を用いて行った。

１ｍｍの海水を張り込み、ワムシをあらかじめ１０〜５
０個体／ゴ接種し、これに供試用微生物培養液を１０〜
２０Ａの割合で給餌して培養を開始した。開始翌日から
１日１回、１００〜２００１のワムシ培養液を抜き取シ
、１０〜２（ｌの微生物培養液を投与し減量分は海水を
補給して一定に調整したＯ 培養条件は、水温１９〜２３℃、３０Ｊ３／ｍｉｎで、
通気によってかきまぜた。培養液の海水比重は１．０１
７５〜１．０２４８、ｐＨは７．４〜１０．２の範囲で
、溶存酸素は飽和量の６０〜９０％にまで低下すること
があったが、全体を通じほぼ１００係であった。

この操作を約１週間継続すると抜き取った培養液は、２
０〜３０個体／ｌｎｌのワムシを含み、それ以後長期安
定し、２〜３週間半連続培養方式でワムシの生産ができ
た。

実施例２ ワムシに与える微生物培養液は、１　、０００　／槽に
生海水を張り込みアルコール発酵残液濃縮液（固形分４
５４）、第一リン酸カリウムを海水に対して、それぞれ
重量で１．３５係（乾重量）、１９０ｆ／槽になるよう
に添加し、２５〜３０１３／ｍｉｎの通気、９０ｒｐｍ
でかきまぜを行い、かつ、培養液を容積で１日３０係ず
つ抜き出し、ワムシ槽に供給する微生物培養液とし、一
方等量の３優アルコ一ル発酵残液濃縮物（リン酸カリ強
化）含有の生海水を供給して連続培養した。この際の、
微生物培養槽のｐＨは４．５〜５．０でほぼ一定し、微
生物等の湿固形分（ＰＯＶ値）は１．３５４でほぼ一定
であった。

このようにして、径５０〜１００μのフロック状培養物
が得られた。

次に、ワムシは容量１０ビの水槽に、７ｍ８の生海水を
張シ込み、水槽底部より汲み上げ循環するポンプを設備
し、水槽上部に４００−ｅの濾過槽を設け、との濾過槽
中には炉材として玉砂利（平均体ｆｉ３．２６ｄの尿石
ｔＳＯ，，＃）を敷き、ポンプで汲み上げた海水を濾過
槽内の炉材を通過して、水槽に戻るように循環させ、水
温２５℃±１℃で槽底部よシェアストーンを介して毎分
１５０〜ｔｓｏＡノ空気を通気しながら、飼育を行った
０ ワムシは試験開始時に１０〜３０個体／−を接種し、上
記微生物培養液を１３０〜２６０　Ａ　／槽・日になる
ように、ワムシ培養槽−に連続供給した。ワムシは、培
養開始後約１週間で１００〜２００個体／−に達し、以
後３０日間にわたり、連日ワムシ槽から１０〜２０係の
ワムシ個体を海水と共に抜き取り、回収し得た。なお、
この間ワムシ槽の水位は海水を補給して同一に保つよう
にした。その結果ワムシ槽内のワムシは、１００個体／
ｍＩ！以上を維持し、一方１日当９１〜２億個体のワム
シを回収することができた。

実施例３ はフく性コペポーダであるチグリオプスを、アルコール
発酵残液によって生成せしめた微生物フロックを餌料と
して増殖させた。屋外７ｍｍのコンクリート水槽を使用
し、これに３ｍ１の海産クロレラ海水を張り込み、その
中に７０ｆ（Ｗｅｔ）のチグリオプスを接種して培養を
開始した。水温は自然水温、通気はエアーストーン１コ
による通気かきまぜ、通気量は１０−ｅ／　３７Ｆｌ“
−ｍｉｎ　（０，３％４ｍ１ｎ）である。アルコール発
酵残液によって培養生成せしめた微生物フロック培養液
を、チグリオブス培養日令１６日までは１日１回１０沼
、日令２０〜５０日は３日に１回１０！投与を継続し、
培養日令１８日以後、ナイロンネット（穴径約５００ミ
外て増殖したチグリオプスを採集し、クロダイ稚仔魚へ
の投餌に継続使用した。

全培養期間を通じて収穫量は７２０ｆであシ、これは初
発接種量（７０１Ｆ）の約１０倍量である。

分析結果からチグリオプス体の栄養価は稚仔魚飼育に対
し満足なものであった。

実施例４ １ｍ５水槽２槽にそれぞれ２５　、０００粒づつのマダ
イの受精卵を入れ、１槽当ｊｊ）　１８，０００尾のふ
化稚仔魚を得た。

上記２槽のうち１槽のマダイふ化稚仔魚には、実施例１
で生産したワムシを投餌し、他の１槽には海産クロレラ
を餌料として培養したワムシを投与し稚仔魚の養成をは
かった。飼育期間中のワムシ投与量は、各稚仔魚槽に対
して１日当り５００Ｘ１０４〜１８００　Ｘ　１０’個
で２２日間、毎朝ワムシ残存個数を計数して投与量を決
定した。

マダイの飼育結果は、第１表に示すとおシであった。生
残率、成長、芦開腔率、活力テスト（健康判定）のいず
れの項目においても、対照区であるクロレラワムシ投餌
区とほぼ同様の結果が得られた。

第　　　　　　１　　　　　　表 実施例５ １♂水槽、７槽にそれぞれ２７　、０００粒づつの自然
産卵したクロダイ受精卵を入れ、１槽当９１７　、００
０〜２３．．０００尾のふ化稚仔魚を得た。

上記７槽のうち６槽のクロダイふ化稚仔魚には、実施例
２で生産したワムシを投餌し、他の１槽には海産クロレ
ラを餌料として培養したワムシを投餌し仔魚の養成をは
かった。

飼育水温は、ふ化後日令０〜４５日は１６〜２３℃、日
令４６〜６５日は１７〜２３℃、日令６５〜７２日は１
５〜２４℃とした。

通気量は、卵収容直後からふ化後日令４５日までａｏｏ
ｖ／♂・ｍｉｎ　、換水率は、ふ化後日令θ〜５日まで
止水とし、日令５〜９日は３０％／日、日令９〜２２日
は６０％／日、日令２２〜３０日は１００％／日、日令
３０〜３８日は２００％／日、５００％／日、大型槽系
で２００％／日とした。

飼育期間中のワムシ投餌量は、ふ化後日令４〜４５日の
間、ｘ！Ｍ、！ｙｔ日５００　Ｘ　１０４〜４　、００
０　Ｘ１０４とし、日令４５日以降は魚肉ミンチを投与
したが、両餌料の切替え時期として、日令３２〜４０日
には、実施例３に示したチグリオプスを１槽当シ約１０
　ｆ　（ｗｅｔ）７日、日令２５〜４４日では、ｌ槽当
り１日アルテミア幼央、３０Ｘ１０４〜２３０　Ｘ　ｉ
０４、及びアサリ又はアミの磨砕ジュース、１７〜１５
０ｆをワムシと併用投餌した。

結果は、第２表及び第３表に示すとおシである。

成長、生残率とも対照区のクロレラワムシ区とほぼ同等
の結果が得られた。生残率１９チ以上の値は稚魚生産現
場での平均的生残率１ｏＩ％に比べてかなシ良好な成績
であった・ 第２表 第　　　　３　　　　表　　　　　　”実施例６ れ２１，０００粒づつ入れ、該′受精卵よ、！７１４日
後に１槽当シ約１１，０００尾、計４４，０００尾のふ
化稚仔魚を得た。

上記４槽のうち２槽のアユふ化稚仔魚には実施例２とほ
ぼ同様の方法で（ワムシ培養温度を１８℃に下げた点の
み異なる）生産したワムシを投餌し、他の２槽には海産
クロレラを餌料として培養したワムシを投餌し稚仔魚の
養成をはかった。ワムシは投餌前に清浄海水で十分洗浄
して投餌した。

餌育水温は、ふ化後日令Ｏ〜３０日は１７〜１８℃、日
令３１日以降は、１５℃±１℃とした。

通気量は、日令０〜１５日は２００　ｍｌ／　ｒｒ？−
ｍｉｎ　。

日令１６日以降は１．　ｏｏｏ　ｙｎｔ／♂・ｍｉｎと
した〇換水率は、ふ化後日令θ〜２日まで止水とし、日
令２〜１６日は２０チ／日、日令１６〜３１日は６０％
／日、日令３１〜６０日は２００チ／日、日令６０〜９
０日は５００％／日とした〇飼育期間中は、ふ化後日令
２〜７０日まではワムシのみを投餌し、日令２０日以降
は、アユ用配合飼料を日令３０日以降はボイルした鶏卵
卵黄、及びアルテミア幼虫を、ワムシと併用して７０日
間飼育した。

結果は第４表及び第５表に示すとおりであった。

成長については、アルコール発酵残液ワムシ投餌区とク
ロレラワムシ投餌区の間でほとんど差は認められず、ま
た生残率については、アルコール発酵残液ワムシ投餌区
の方がかなシ良好であった。

第　　　　４　　　　表 第　　　　５　　　　表

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 ｌ　海洋微生物を海水中においてアルコール発酵残液を
   主栄養源として培養し、フロック状培養物を生成させ、
   次いでこのフロック状培養物をワムシに投与してこれを
   増殖させたのち、とのワムシを回収して稚仔魚に投与す
   ることを特徴とする稚仔魚の生産方法。 ２　海洋微生物の培養をｐＨ４〜５の条件下で行う特許
   請求の範囲第１項記載の方法。 ３　海洋微生物の培養を行いフロック状培養物の径を５
   ０〜１００ミクロンにする特許請求の範囲第１項記載の
   方法。