JPS58111753A - β−トロンボグロブリンの高感度測定法 - Google Patents
β−トロンボグロブリンの高感度測定法Info
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- JPS58111753A JPS58111753A JP21455781A JP21455781A JPS58111753A JP S58111753 A JPS58111753 A JP S58111753A JP 21455781 A JP21455781 A JP 21455781A JP 21455781 A JP21455781 A JP 21455781A JP S58111753 A JPS58111753 A JP S58111753A
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- thromboglobulin
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- enzyme
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- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
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- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
本発明は検体中のβ−トロンボグロブリンの高感度測定
法に関する0β−トロンボグロブリン(以下[β−T
G jという。)は、血小板第四因子、血小板由来成長
因子などとともに、a顆粒中にある高分子の血小板特異
蛋白であるot975年、ムー(2) ル(Moore)らによって、その精製法が発表され、
同年ルドハム(Ludham )らにより、β−TGの
ラジオイムノアッセイ(以下rRIAIという。)が報
告されて以来、血漿中濃度の測定が可能とな、 リ、血
小板のirN/iVOにおける凝集および放出反応を反
映する指標として、広く利用されるに至った。
法に関する0β−トロンボグロブリン(以下[β−T
G jという。)は、血小板第四因子、血小板由来成長
因子などとともに、a顆粒中にある高分子の血小板特異
蛋白であるot975年、ムー(2) ル(Moore)らによって、その精製法が発表され、
同年ルドハム(Ludham )らにより、β−TGの
ラジオイムノアッセイ(以下rRIAIという。)が報
告されて以来、血漿中濃度の測定が可能とな、 リ、血
小板のirN/iVOにおける凝集および放出反応を反
映する指標として、広く利用されるに至った。
しかし、β−TGをRIAにより測定することは使用す
るアイソトープ(I)の半減期が短いために安定した測
定系が維持できないこと及びアイソトープ使用のため取
り扱いが難しいことなどの問題がある。
るアイソトープ(I)の半減期が短いために安定した測
定系が維持できないこと及びアイソトープ使用のため取
り扱いが難しいことなどの問題がある。
そこで本発明者らはβ−TGの微量測定における上記の
如き問題点を克服するために鋭意検討を試みたものであ
る。
如き問題点を克服するために鋭意検討を試みたものであ
る。
近年RIAと同じ微量測定法としてラジオアイソトープ
の代わりに酵素を標識として使う酵素免疫測定法が開発
されてきた。
の代わりに酵素を標識として使う酵素免疫測定法が開発
されてきた。
本発明者らはβ−TGの微量測定に酵素免疫測定法を応
用したところ、意外にも検体中の10pfの微量のβ−
TGが測定でき、従来報告されてい(3) るRIAのi’ll!i定感度としてo、7ngが限度
であるのに比して70倍の高感度でしかも安定したn(
す定が可能であることが判明した。
用したところ、意外にも検体中の10pfの微量のβ−
TGが測定でき、従来報告されてい(3) るRIAのi’ll!i定感度としてo、7ngが限度
であるのに比して70倍の高感度でしかも安定したn(
す定が可能であることが判明した。
高感度測定のために血漿中のβ−TGのみならず尿中の
β−TGをも6(IJ定できることを知り、本発明を完
成したものである。
β−TGをも6(IJ定できることを知り、本発明を完
成したものである。
即ち、本発明は抗β−TG抗体結合固相に検体中のβ−
TGを反応せしめて得られる反応物に酵素標識抗β−T
G抗体を作用せしめるか又は検体中のβ−TGと酵素標
識抗β−TG抗体を反応せしめて得られる反応物を抗β
−TG抗体結合固相に作用せしめることによって抗β−
TG抗体を介してβ−TG及び酵素標識抗β−TG抗体
を固相に固定化せしめた後、同相に結合した該標識酵素
活性を測定することにより検体中のβ−TG量を求める
ことを特徴とするβ−TGの高感度測定法である。
TGを反応せしめて得られる反応物に酵素標識抗β−T
G抗体を作用せしめるか又は検体中のβ−TGと酵素標
識抗β−TG抗体を反応せしめて得られる反応物を抗β
−TG抗体結合固相に作用せしめることによって抗β−
TG抗体を介してβ−TG及び酵素標識抗β−TG抗体
を固相に固定化せしめた後、同相に結合した該標識酵素
活性を測定することにより検体中のβ−TG量を求める
ことを特徴とするβ−TGの高感度測定法である。
本発明に使用される標識酵素としてはβ−D−ガラクト
シダーゼ、アルカリホスファターゼ、パーオキシダーゼ
、グルコースオキシターゼ、リン(4) ゴ酸脱水素酵素等通常用いられる酵素であればいずれで
もよいが、特にβ−D−ガラクトシダーゼが測定感度が
高いので高感度測定のためには好ましい。
シダーゼ、アルカリホスファターゼ、パーオキシダーゼ
、グルコースオキシターゼ、リン(4) ゴ酸脱水素酵素等通常用いられる酵素であればいずれで
もよいが、特にβ−D−ガラクトシダーゼが測定感度が
高いので高感度測定のためには好ましい。
酵素標識抗β−TG抗体の調製に際して用いられる酵素
と抗β−TG抗体との結合法は、酵素、抗β−TG抗体
の各々の活性(触媒活性、抗体結合能)が失なわれない
ような方法であればどのような方法でもよい。
と抗β−TG抗体との結合法は、酵素、抗β−TG抗体
の各々の活性(触媒活性、抗体結合能)が失なわれない
ような方法であればどのような方法でもよい。
具体的にはグルタルアルデヒド、カルボジイミド、N、
N−0−フェニレンジマレイミド、m−マレイミドベン
ゾイル−N−ハイドロキシサクシニミドエステル(m−
Maleimidobenzoyl −N −Hydr
oxysuccinimido Ester)等の既知
の二官能性試薬が使用できる。
N−0−フェニレンジマレイミド、m−マレイミドベン
ゾイル−N−ハイドロキシサクシニミドエステル(m−
Maleimidobenzoyl −N −Hydr
oxysuccinimido Ester)等の既知
の二官能性試薬が使用できる。
同相(不溶性担体)としてはアガロース、デキストラン
、セルロースなどの多糖類、ポリスチレン等の合成樹脂
、あるいは、ガラス、ポリアクリルアミド等が用いられ
、形態としてはビーズ状、繊維状であることが好ましい
。
、セルロースなどの多糖類、ポリスチレン等の合成樹脂
、あるいは、ガラス、ポリアクリルアミド等が用いられ
、形態としてはビーズ状、繊維状であることが好ましい
。
抗β−TG抗体と同相との結合は物理的吸着を利用して
もよいが、通常蛋白質あるいは酵素等を不溶化するのに
用いられる方法を利用してもよい。
もよいが、通常蛋白質あるいは酵素等を不溶化するのに
用いられる方法を利用してもよい。
例えば不溶性多糖を用いる場合があれば不溶性多糖ヲ臭
化シアン、過沃素酸ナトリウム、エピクロルヒドリン、
■、1′−カルボニルジイミダゾール、P−トルエンス
ルフォニルクロリド等で活性化シて結合反応を行なわせ
る。
化シアン、過沃素酸ナトリウム、エピクロルヒドリン、
■、1′−カルボニルジイミダゾール、P−トルエンス
ルフォニルクロリド等で活性化シて結合反応を行なわせ
る。
また、固相に適当なスペーサーを導入した後、スペーサ
ーを介して抗β−TG抗体を結合させてもよい。
ーを介して抗β−TG抗体を結合させてもよい。
更に抗β−TG抗体と固相の結合を可逆的な結合、例え
ばS、−S結合にした場合には、測定径固相に結合した
免疫反応物を同相より切断、除去しく例えばS−S結合
の場合還元剤により切断される。)、固相をくり返し使
用することもできる。
ばS、−S結合にした場合には、測定径固相に結合した
免疫反応物を同相より切断、除去しく例えばS−S結合
の場合還元剤により切断される。)、固相をくり返し使
用することもできる。
カラムを用いる場合には、同相に不溶化する抗体の量は
不m性担体1me当り0.5〜2.0 m9が適当であ
るが、可能ならば更に多量の抗β−TG抗体を不溶化す
ることによって測定感度、測定精度を向−]〕させるこ
とが可能である。
不m性担体1me当り0.5〜2.0 m9が適当であ
るが、可能ならば更に多量の抗β−TG抗体を不溶化す
ることによって測定感度、測定精度を向−]〕させるこ
とが可能である。
ここで使用される抗β−TG抗体はそのままでもよいが
、測定感度の上昇及び生体体液成分による1ijll定
系の干渉作用を軽減する目的で抗原結合部位のみを分離
したものでもよい。例えば、パパイン、ペプシンなどの
プロテアーゼで処理して得られるFab’部分、F(a
b’)2部分などを使用することもできる。Fab’部
分の調製法については、E、I−l−5hikaらの報
告がある〔スカンジナビアン、ジャーナル、オブ、ザ、
イムノロジー(Sc、and、 J 。
、測定感度の上昇及び生体体液成分による1ijll定
系の干渉作用を軽減する目的で抗原結合部位のみを分離
したものでもよい。例えば、パパイン、ペプシンなどの
プロテアーゼで処理して得られるFab’部分、F(a
b’)2部分などを使用することもできる。Fab’部
分の調製法については、E、I−l−5hikaらの報
告がある〔スカンジナビアン、ジャーナル、オブ、ザ、
イムノロジー(Sc、and、 J 。
Immunol、) 8巻、43頁、(1978)〕。
生体体液成分による干渉作用を抑制あるいは除去するた
めに用いる疎水性蛋白質としてはゼラチンなど、塩類と
しては、食塩などが用いられる。
めに用いる疎水性蛋白質としてはゼラチンなど、塩類と
しては、食塩などが用いられる。
本発明によれば、このように測定しようとするβ−TG
を生体体液成分による影響も受けず、高感度で精度の高
い測定が可能となり、更に自動測定系への応用も容易と
なるt吏Cと又、本発明において尿中β−TGをも測定
できることは、血漿β−TGの7111定が、時として
採血時の不注意により(7) 血小板がこわれたりして異常に高い値いとなるが、尿β
−TGの測定においては、そのようなことはないので翁
゛用である。
を生体体液成分による影響も受けず、高感度で精度の高
い測定が可能となり、更に自動測定系への応用も容易と
なるt吏Cと又、本発明において尿中β−TGをも測定
できることは、血漿β−TGの7111定が、時として
採血時の不注意により(7) 血小板がこわれたりして異常に高い値いとなるが、尿β
−TGの測定においては、そのようなことはないので翁
゛用である。
以下実施例について述べる。
実施例1
(1)血小板からβ−TGの精製法
ムール(Moore)の方法に沿って全血より血小板を
分離し、0.35%(W//V)のウシ血清アルブミン
と、411月vmlのアビラーゼ(シグマ社製)を含む
水溶液で血小板を2回洗滌した。最終的に、血小板を4
X 109/mgとなるように調整して、2里位厘の
ウシトロンビン(パークデービス社製)を加え、37°
Cで15分間インキュベートして、血小板を凝集させた
。凝集させた血小板を遠心分離によって沈澱後、その」
二清を56°Cで30分加熱して、フィブリノーゲンを
除いた。得られた血小板放出物質を限外ろ過にて濃縮後
、セファローズ4Bカラム< 1.9 X 4ocm)
にかけて、低分子物質と高分子物質は、再び限外ろ過に
より濃縮後、0.15MNa C6を含む0.1Mリン
酸緩衝M(pE−47,5)で辺(8) 析シた。ヘパリン−セファロースカラム(ファルマシア
製)(0−90−9X10に低分子血小板放出物質(4
0ml、蛋白として40〜50mN?)をかけ、0−1
5 M NaCl、 0.1 Mリン酸緩衝液(pH7
,5)でカラムを充分洗滌して、ヘパリンに吸着しない
物質を溶出させてから、0−15〜1.0 M NaC
lを含む0、1 M IJン酸緩衝液でNa Ceの濃
度勾配を利用してβ−TGを溶出した。
分離し、0.35%(W//V)のウシ血清アルブミン
と、411月vmlのアビラーゼ(シグマ社製)を含む
水溶液で血小板を2回洗滌した。最終的に、血小板を4
X 109/mgとなるように調整して、2里位厘の
ウシトロンビン(パークデービス社製)を加え、37°
Cで15分間インキュベートして、血小板を凝集させた
。凝集させた血小板を遠心分離によって沈澱後、その」
二清を56°Cで30分加熱して、フィブリノーゲンを
除いた。得られた血小板放出物質を限外ろ過にて濃縮後
、セファローズ4Bカラム< 1.9 X 4ocm)
にかけて、低分子物質と高分子物質は、再び限外ろ過に
より濃縮後、0.15MNa C6を含む0.1Mリン
酸緩衝M(pE−47,5)で辺(8) 析シた。ヘパリン−セファロースカラム(ファルマシア
製)(0−90−9X10に低分子血小板放出物質(4
0ml、蛋白として40〜50mN?)をかけ、0−1
5 M NaCl、 0.1 Mリン酸緩衝液(pH7
,5)でカラムを充分洗滌して、ヘパリンに吸着しない
物質を溶出させてから、0−15〜1.0 M NaC
lを含む0、1 M IJン酸緩衝液でNa Ceの濃
度勾配を利用してβ−TGを溶出した。
β−TGは0,2M、0.25MおよびQ、 5 M
NaCeで、それぞれ溶出された。4×10 の血小板
から最終的に0.8〜1.0myのβ−TGが得られた
。得られたβ−TGは、5DS−ポリアクリルアミド電
気泳動にて、単一のバンドを形成した。
NaCeで、それぞれ溶出された。4×10 の血小板
から最終的に0.8〜1.0myのβ−TGが得られた
。得られたβ−TGは、5DS−ポリアクリルアミド電
気泳動にて、単一のバンドを形成した。
■抗β−TG血清の作成
抗β−TG血清をウサギにて作成するため、100μg
のβ−T Gと等量の完全フロインドアジュバントμ城
和して、ウサギの皮下に注射し、それを毎週7週間くり
返した。8週日にウサギから採血して血清を得た。精製
抗体を得るため、得られた抗血清100m1から硫安沈
澱法によってグロブリン(9)
リ^r分画を作成し、さらにβ−T
G績合セファローズ6Bのアフィニティークロマトグラ
フィーによって特異的抗β−TG抗体(蛋白として40
〜9)を作成した。この抗体は精製β−TGとまた血小
板放出物質と寒天ゲル内拡散法で単一の沈降線を形成し
た。
のβ−T Gと等量の完全フロインドアジュバントμ城
和して、ウサギの皮下に注射し、それを毎週7週間くり
返した。8週日にウサギから採血して血清を得た。精製
抗体を得るため、得られた抗血清100m1から硫安沈
澱法によってグロブリン(9)
リ^r分画を作成し、さらにβ−T
G績合セファローズ6Bのアフィニティークロマトグラ
フィーによって特異的抗β−TG抗体(蛋白として40
〜9)を作成した。この抗体は精製β−TGとまた血小
板放出物質と寒天ゲル内拡散法で単一の沈降線を形成し
た。
(3)不溶化抗体結合同相の調整
精製抗β−TG抗体(IgG)をペプシンにて処理して
F(ab’)2フラグメントを得て、それをポリスチレ
ン球(直径3.2111m)、(プレシソンプラスチッ
ク(Precison Plastic)社製)に結合
させた。
F(ab’)2フラグメントを得て、それをポリスチレ
ン球(直径3.2111m)、(プレシソンプラスチッ
ク(Precison Plastic)社製)に結合
させた。
(4)β−D−カラクトシダーゼ標識−抗体Fab’フ
ラグメント 」二連した抗体F(ab’)2フラグメントをN 、N
’−0−Phenylenedimaleimideを
架橋剤として大腸菌白米のβ−D−ガラクトシターゼと
結合させた。
ラグメント 」二連した抗体F(ab’)2フラグメントをN 、N
’−0−Phenylenedimaleimideを
架橋剤として大腸菌白米のβ−D−ガラクトシターゼと
結合させた。
(5翔(り定方性
第−反応として、不溶化抗体F(ab’)2を結合させ
たポリスチレン球を、最終容積0.5mlのG液(10
) (Q、 Q I MNa−リン酸緩衝液(pH7−0)
、0.3MNa(J’、0.1%牛血清アルブミン、0
.5%ゼラチン、l rrNiMg CI! 2.0.
1%NaN5)の中で、2.5 μlの血漿又は尿のサ
ンプルもしくは種々の量の標準β−TGと30’Cでイ
ンキュベートした。2時間後、反応液を吸引によって除
去し、ポリスチレン球を1mlのG液で2回試験管内で
洗滌した。
たポリスチレン球を、最終容積0.5mlのG液(10
) (Q、 Q I MNa−リン酸緩衝液(pH7−0)
、0.3MNa(J’、0.1%牛血清アルブミン、0
.5%ゼラチン、l rrNiMg CI! 2.0.
1%NaN5)の中で、2.5 μlの血漿又は尿のサ
ンプルもしくは種々の量の標準β−TGと30’Cでイ
ンキュベートした。2時間後、反応液を吸引によって除
去し、ポリスチレン球を1mlのG液で2回試験管内で
洗滌した。
第二反応は」1記のポリスチレン球をβ−D−ガラクト
シダーゼ標識抗体Fab’フラグメント(1mun i
tlo−1mll’)と4°Cで16時間インキュベ
ートした。第二反応終了後、前回と同様にポリスチレン
球をG液で2回洗滌した。
シダーゼ標識抗体Fab’フラグメント(1mun i
tlo−1mll’)と4°Cで16時間インキュベ
ートした。第二反応終了後、前回と同様にポリスチレン
球をG液で2回洗滌した。
第三反応はポリスチレン球に結合したβ−D−ガラクト
シダーゼの活性を測定するため、ポリスチレン球をQ、
l mM 4−methylumbellifery
l −β−D −galactosideを含む150
μlのA11ll(0,01Mリン酸緩衝液(pH7,
0)、Q、 l MNaCJ? 11 rrlAMll
cJ!2.0.1%ウシ血清アルブミン、0,1%Na
N5)の中で30°C10分間反応させた。
シダーゼの活性を測定するため、ポリスチレン球をQ、
l mM 4−methylumbellifery
l −β−D −galactosideを含む150
μlのA11ll(0,01Mリン酸緩衝液(pH7,
0)、Q、 l MNaCJ? 11 rrlAMll
cJ!2.0.1%ウシ血清アルブミン、0,1%Na
N5)の中で30°C10分間反応させた。
反応は、2.5mlの0.1MグリシンNaOH緩衝液
(PH10,3)を加えて停止した。生成された4−m
elthylumbelliferoneを標qq 4
−melthyl −umbe l l i f e
roneを基準として蛍光光度計で測定したところ第1
図に示す検量曲線を得た。
(PH10,3)を加えて停止した。生成された4−m
elthylumbelliferoneを標qq 4
−melthyl −umbe l l i f e
roneを基準として蛍光光度計で測定したところ第1
図に示す検量曲線を得た。
実施PA2
検体として以下のものを用いた。
■正常対象者
それぞれ12例の正常男子と女子(年令20〜50才)
から採血した。
から採血した。
■DIC患者
DICの生じるような基礎疾患を有し、FDP(フィブ
リノーゲン分解産物)、プロトロンビン時間、部分トロ
ンボプラスチン時間、及びフィブリノーゲン値からDI
Cと考えられる患者6例から採血した。
リノーゲン分解産物)、プロトロンビン時間、部分トロ
ンボプラスチン時間、及びフィブリノーゲン値からDI
Cと考えられる患者6例から採血した。
■骨髄増殖性疾患患者
Chronic Myelogenous Leuke
mia(慢性骨髄性白血病)5例、Polycythe
mia Vera (真性多血球血症)4例、Es5e
ntial Thrombocythemia(真性血
小板血病)1例の計10例から採血した。
mia(慢性骨髄性白血病)5例、Polycythe
mia Vera (真性多血球血症)4例、Es5e
ntial Thrombocythemia(真性血
小板血病)1例の計10例から採血した。
各々の検体について実施例1に準じて血漿中のβ−TG
濃度を測定したところ、正常人24例(男子12例、女
子12例)の血漿のβ−TG濃度及びDIC患者と慢性
骨髄増殖性疾患患者の血漿β−TG濃度はそれぞれ表1
に示す結果であった。即ち、DICでは血小板が著減し
ているにかかわらず、血管的破壊のため、β−TG濃度
は著しく増加している。慢性骨髄増殖疾患でも正常の3
〜8倍の範囲でβ−TG濃度は増加していることがわか
った。
濃度を測定したところ、正常人24例(男子12例、女
子12例)の血漿のβ−TG濃度及びDIC患者と慢性
骨髄増殖性疾患患者の血漿β−TG濃度はそれぞれ表1
に示す結果であった。即ち、DICでは血小板が著減し
ているにかかわらず、血管的破壊のため、β−TG濃度
は著しく増加している。慢性骨髄増殖疾患でも正常の3
〜8倍の範囲でβ−TG濃度は増加していることがわか
った。
表−1
備考、表−1中のCMLは慢性骨髄性白血病(Chro
nic Myelogenous Leukemia
)、ETは、真性血小板血症(Essential T
hrombocyjhe −mia)、PVは、真性多
血球面症(Po l ycy the −mia Ve
ra )の略である。
nic Myelogenous Leukemia
)、ETは、真性血小板血症(Essential T
hrombocyjhe −mia)、PVは、真性多
血球面症(Po l ycy the −mia Ve
ra )の略である。
実施例3
検体として以下のものを用いた。
■正常対象者
それぞれ12例の正常男子と女子(年令20〜50才)
から採血及び採尿した。
から採血及び採尿した。
■骨髄増殖性疾患々者
慢性骨髄性白面病(CML)7例、真性血小板血症(E
s5ential Thrombocythemia)
1例、真性多血球面症(PV)8例、骨髄線維症(My
el−ofibrosis) 3例、の計19例から採
血及び採尿した。
s5ential Thrombocythemia)
1例、真性多血球面症(PV)8例、骨髄線維症(My
el−ofibrosis) 3例、の計19例から採
血及び採尿した。
各々の検体について実施例1に準じて血漿中及び尿中の
β−TGa度を測定したところ、正常人24例(男子1
2例、女子12例)の血、、WTG濃度及び慢性骨髄増
殖性疾患患者の血漿及び尿中β−TG濃度はそれぞれ表
2に示す結果であった。即ち、慢性骨髄増殖疾患におい
て血漿及び尿中のいずれにおいてもβ−TG濃度が著し
く増加していることがわかり、かつ又、血漿中のβ−T
G量と尿中のβ−TG量との間に比例関係がみられるこ
とがわかる。
β−TGa度を測定したところ、正常人24例(男子1
2例、女子12例)の血、、WTG濃度及び慢性骨髄増
殖性疾患患者の血漿及び尿中β−TG濃度はそれぞれ表
2に示す結果であった。即ち、慢性骨髄増殖疾患におい
て血漿及び尿中のいずれにおいてもβ−TG濃度が著し
く増加していることがわかり、かつ又、血漿中のβ−T
G量と尿中のβ−TG量との間に比例関係がみられるこ
とがわかる。
表−2
備考:表−2中のCMLは慢性骨髄性白血病、ETは真
性血小板血症(Essential Thro −mb
ocythemia)、pvは真性多血球面症、MFは
骨髄線維症(Myelof 1brosis)の略であ
る。
性血小板血症(Essential Thro −mb
ocythemia)、pvは真性多血球面症、MFは
骨髄線維症(Myelof 1brosis)の略であ
る。
実施例4
24例の正常男女と12例のDIC患者【二ついて血漿
β−TG濃度を実施例1に準し測定し、かつRIAにて
も測定し両者の相関を調べた。
β−TG濃度を実施例1に準し測定し、かつRIAにて
も測定し両者の相関を調べた。
RIAは、アマジャム(Ame r s h am2ジ
ャパン社製のキットを用いた。その結果は第2図に示さ
れるが、両者の相関係数0.94 (n = 30、Y
= 0.83x十14.6 ’)とよく一致した。図
中白丸は正常人の場合であり、黒丸はDIC患者の場合
を示す。
ャパン社製のキットを用いた。その結果は第2図に示さ
れるが、両者の相関係数0.94 (n = 30、Y
= 0.83x十14.6 ’)とよく一致した。図
中白丸は正常人の場合であり、黒丸はDIC患者の場合
を示す。
第1図は血漿及び尿中β−TGの標準曲線であり、第2
図は血漿β−TGの酵素免疫測定法(EIA)及びRI
Aとの相関を示す図である。 特許出願人 天野製薬株式会社
図は血漿β−TGの酵素免疫測定法(EIA)及びRI
Aとの相関を示す図である。 特許出願人 天野製薬株式会社
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1 抗β−トロンボグロブリン抗体結合同相に検体中の
β−トロンボグロブリンを反応せしめて得られる反応物
に酵素標識抗β−トロンボグロブリン抗体を作用せしめ
るか又は検体中のβ−トロンボグロブリンと酵素標識抗
β−トロンボグロブリン抗体を反応せしめて得られる反
応物を抗β−トロンボグロブリン抗体結合同相に作用せ
しめることによって抗β−トロンボグロブリン抗体を介
してβ−トロンボグロブリン及び酵素標識抗β−トロン
ボグロブリン抗体を固相に固定化せしめた後、同相に結
合した該標識酵素活性を測定することにより検体中のβ
−トロンボグロブリン量を求めることを特徴とするβ−
トロンボグロブリンの高感度測定法。 2 抗β−トロンボグロブリン抗体結合固相が微粒状ま
たは繊維状であり、カラムに充填されて使用され、免疫
反応終了後、カラム内をこて酵素活性を測定することを
特徴とする特許請求の範囲第1項記載のβ−トロンボグ
ロブリンの高感度測定法。 3 抗β−トロンボグロブリン抗体をプロテアーゼ処理
して得られるF (ab’)2フラグメントまたはFa
b’フラグメントを使用することを特徴とする特許請求
の範囲第1項又は第2項記載のβ−トロンボグロブリン
の高感度測定法。 4 反応時に高濃度の塩類と疎水性蛋白質を添加するこ
とにより検体中の干渉物質の影響を除去することを特徴
とする特許請求の範囲第1項、第2項又は第3項記載の
β−トロンボグロブリンの高感度測定法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21455781A JPS58111753A (ja) | 1981-12-25 | 1981-12-25 | β−トロンボグロブリンの高感度測定法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP21455781A JPS58111753A (ja) | 1981-12-25 | 1981-12-25 | β−トロンボグロブリンの高感度測定法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS58111753A true JPS58111753A (ja) | 1983-07-02 |
Family
ID=16657691
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP21455781A Pending JPS58111753A (ja) | 1981-12-25 | 1981-12-25 | β−トロンボグロブリンの高感度測定法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS58111753A (ja) |
-
1981
- 1981-12-25 JP JP21455781A patent/JPS58111753A/ja active Pending
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