JPH10203969A - 抗腫瘍剤 - Google Patents

抗腫瘍剤

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JPH10203969A
JPH10203969A JP9085461A JP8546197A JPH10203969A JP H10203969 A JPH10203969 A JP H10203969A JP 9085461 A JP9085461 A JP 9085461A JP 8546197 A JP8546197 A JP 8546197A JP H10203969 A JPH10203969 A JP H10203969A
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JP
Japan
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topoisomerase
anthraquinone derivative
garcinia
antitumor agent
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Munekazu Iinuma
宗和 飯沼
Hiroshi Nozaki
浩 野崎
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Abstract

(57)【要約】 【解決手段】 アントラキノン誘導体およびその薬学的
に許容される塩を有効成分とする抗腫瘍剤。 【効果】 優れたトポイソメラーゼIおよびII阻害作
用を示し、抗腫瘍剤として有用である。

Description

【発明の詳細な説明】
【0001】
【発明の属する技術分野】本発明は、トポイソメラーゼ
IおよびII阻害活性を有し、抗腫瘍剤として有用なア
ントラキノン誘導体およびその薬学的に許容される塩に
関する。
【0002】
【従来の技術】細胞の分裂・増殖の時に見られる細胞の
生活環は細胞周期といわれ細胞の増殖と分化の調節に深
く関わっている。従って、その制御機構の解明は、癌、
老化、細胞死等の生理現象、病理現象の分子機構の解明
につながるのみならず、細胞周期をターゲットとした抗
腫瘍剤等の医薬品の開発に大きな手がかりを与えるもの
と期待される。これまで開発されてきた数多くの抗腫瘍
剤についてその作用メカニズムが研究されてきた結果、
その多くが細胞周期にそれぞれ特徴的な阻害作用をもつ
ことが明らかとなった。例えば、5−フルオロウラシ
ル、6−メルカプトプリン、メトトリキセレートなどの
代謝拮抗剤は、DNA合成に必須な前駆体を阻害するの
で細胞周期はS期で停止する。また、植物由来のビンプ
ラスチンやビンクリスチンなどのアルカロイド類、コル
ヒチン類縁体のコルセミド、カビ由来のリゾキシンなど
はM期に阻害点を持つ。また、アドレアマイシン、エト
ポシド、エリプテシンなどはトポイソメラーゼIIに作
用して複製の終了したDNAの分配(M期)を阻害す
る。さらにまた、植物アルカロイドであるカンプトテシ
ン誘導体CPT−11は、トポイソメラーゼI型を阻害
する世界ではじめてのタイプで細胞周期をG2期で停止
させる。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】本発明は、トポイソメ
ラーゼIおよびトポイソメラーゼIIの阻害作用を持つ
新規な抗腫瘍剤を提供することを目的とする。
【0004】
【課題を解決するための手段】本発明者らは、上記課題
を解決するために鋭意検討した結果、一般式(1)で表
されるアントラキノン誘導体およびその塩が、優れたト
ポイソメラーゼIおよびII阻害活性を持つことを見い
出し、本発明を完成した。
【0005】すなわち、本発明は、次の一般式(1)
【0006】
【化3】
【0007】(式中、R、R、R、R、R
、RおよびRは、それぞれ水素原子、アルキル
基、アルケニル基、アルコキシ基、ヒドロキシ基、ヒド
ロキシアルキル基、ホルミル基、ハロゲン原子またはア
ミノ基を示す)で表されるアントラキノン誘導体および
その薬学的に許容される塩を有効成分とする抗腫瘍剤を
提供する。
【0008】
【発明の実施の形態】一般式(1)で表されるアントラ
キノン誘導体およびその塩は、フクギ(Garcini
a subelliptica)、ガルシニアプルプレ
ア(Garcinia purpurea)、マンゴス
チン(Garcinia mangostana Li
nn.)、または、ガルシニアディオイカ(Garci
niadioica Bl.)、カロフィルムイノフィ
ルム(Calophyllum inophyllu
m)・ネオナウクレアカリシナ(Neonauclea
calytcina)を抽出し、単離することにより得
られる。
【0009】一般式(1)においてR〜Rはそれぞ
れ水素原子、アルキル基、アルケニル基、アルコキシ
基、ヒドロキシ基、ヒドロキシアルキル基、ホルミル
基、ハロゲン原子またはアミノ基を示す。ここでアルキ
ル基としては、メチル基、エチル基、n−プロピル基、
イソプロピル基、n−ブチル基、イソブチル基、t−ブ
チル基、n−ペンチル基、n−ヘキシル基等の炭素数1
〜8の直鎖または分岐鎖のアルキル基が挙げられる。本
発明においては、このうち、炭素数1〜6のアルキル基
が好ましい。
【0010】アルケニル基としては、ビニル基、アリル
基、クロチル基、α−ペンテニル基、2−ヘキセニル
基、3−メチル−2−ブテニル基、1、1−ジメチル−
2−プロペニル基、イソプレニル基、ゲラニル基、ラバ
ンドリル基等の炭素数2〜14の直鎖または分岐鎖の二
重結合を1〜3個有するアルケニル基が挙げられる。
【0011】アルコキシ基としては、メトキシ基、エト
キシ基、プロポキシ基等の炭素数1〜6の直鎖または分
岐鎖のアルコキシ基が挙げられ、本発明においてはこの
うちメトキシ基が好ましい。
【0012】ヒドロキシアルキル基としては、ヒドロキ
シメチル基、ヒドロキシエチル基、プロポキシ基等の炭
素数1〜6の直鎖または分岐鎖のアルコキシ基が挙げら
れる。
【0013】ハロゲン原子としては、フッ素、塩素、臭
素、ヨウ素が挙げられる。
【0014】さらに本発明における好ましい化合物とし
ては一般式(1)において、R、R、R、R
およびRはそれぞれ水素原子またはヒドロキシ
基、RおよびRはそれぞれ水素原子またはアルケニ
ル基が好ましい。
【0015】アントラキノン誘導体(1)の塩として
は、塩酸塩、臭化水素酸塩、硫酸塩、過塩素酸塩等の無
機酸塩、ナトリウム塩、カリウム塩等が挙げられる。本
発明においてはこのうちナトリウム塩が好ましい。
【0016】アントラキノン誘導体(1)は、フクギ
(Garcinia subelliptica)、ガ
ルシニアプルプレア(Garcinia purpur
ea)、マンゴスチン(Garcinia mango
stana Linn.)、または、ガルシニアディオ
イカ(Garcinia dioica Bl.)、カ
ロフィルムイノフィルム(Calophyllum i
nophyllum)、ネオナウクレアカリシナ(Ne
onauclea calytcina)の果実、果
皮、樹皮、根皮、葉、根材等のうち1または2以上の箇
所(以下「原体」という)から溶剤により抽出し、単離
することにより得ることができる。すなわち原体を細片
に切断し、乾燥・粉砕し、これをベンゼン、酢酸エチ
ル、メタノール、アセトン等の有機溶媒で抽出し、減圧
下溶媒を濃縮してエキスを得る。得られたエキスを再結
晶、シリカゲルカラムクロマトグラフィー等により精製
し成分を単離することができる。
【0017】このようにして得られるアントラキノン誘
導体は、トポイソメラーゼIおよびII阻害活性を示す
ことから、抗腫瘍剤として有用である。
【0018】本発明のトポイソメラーゼ阻害剤の有効成
分であるアントラキノン誘導体を人体用の医薬として使
用する場合、投与量は成人1日当たり0.01〜100
0mg、好ましくは0.1〜100mgの範囲である。
【0019】また、動物用としての投与量は、処置すべ
き動物の体重1kg当たり0.001〜1000mg、
好ましくは0.1〜100mgの範囲である。
【0020】この1日量を1日1回、あるいは2〜4回
に分けて投与する。
【0021】本発明の有効成分として使用できるアント
ラキノン誘導体からなるトポイソメラーゼ阻害剤は投与
法に応じ適当な製剤を選択し、通常用いられている各種
製剤の調整法にて調整できる。本発明抗腫瘍剤の剤形と
しては例えば錠剤、散剤、顆粒剤、カプセル剤や、溶液
剤、シロップ剤、エリキシル剤、油性ないし水性の懸濁
液等経口用製剤として例示できる。
【0022】注射剤としては、製剤中に安定剤、防腐
剤、溶解補助剤を使用することもあり、これらの補助剤
を含むこともある溶液を容器に収納後、凍結乾燥等によ
って固形製剤として用時調整の製剤としても良い。また
一投与量を容器に収納しても良く、また多投与量を同一
の容器に収納しても良い。
【0023】
【実施例】以下、実施例を挙げて本発明を説明するが、
本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
【0024】実施例1 インドネシア、バリ島で採取したNeonauclea
calycina(Rubiaceae)の乾燥心材
(1Kg)を粉砕した後、ジクロロメタン(3L)、ア
セトン(3L)、70%メタノール(3L)を用いて1
2時間3回室温にて順次抽出を行い、ジクロロメタン抽
出液を減圧下濃縮した。得られた残渣(20g)より析
出した混合物を濾過した後、その混合物をシリカケルカ
ラムクロマトグラフィー(クロロホルム系)に付し、2
−ホルミル−3−ヒドロキシ−1−メトキシアントラキ
ノン(ダムナカントール)(damnacantha
l)(80mg)を得た。
【0025】
【化4】
【0026】黄色非晶質 紫外線吸収スペクトル(以下 UV) UV λ(nm,MeOH)(log ε):248,
258sh,279,308sh,371. プロトン核磁気共鳴スペクトル(以下 H NMR) H NMR(270MHz,DHSO−d)δ:
3.98(3H,s),7.49(1H,s),7.8
7(1H,dt,J=8.0,2.0Hz),7.93
(1H,dt,J=8.0,2.0Hz),8.14
(1H,dd,J=8.0,2.0Hz),8.18
(1H,dd,J=8.0,2.0Hz),10.38
(1H,s),12.12(1H,brs). 電子衝撃イオン化質量分析スペクトル(以下EIMS) EIMS m/s:282(M,40),264(1
4),254(100),255(22),208(1
8),196(16),168(18),139(2
3).
【0027】実施例2 実施例1と同様にして6−メチル−1,2,5−トリヒ
ドロキシアントラキノン(モリンドン)(morind
one)(10mg)を得た。
【0028】
【化5】
【0029】橙色非晶質 UV λ(nm,MeOH)(log ε):211,
245sh,263,299. H NMR(400MHz,acetone−d
δ:2.36(3H,s),7.31(1H,d,J=
8.5Hz),7.67(1H,d,J=7.7H
z),7.75(1H,d,J=7.7Hz),7.8
2(1H,d,J=8.5Hz),9.51(1H,b
rs),12.89,13.29(1H,each
s). EIMS m/s:270(M,100),242
(15),135(16).
【0030】試験例1 トポイソメラーゼ I型阻害活
性測定 トポイソメラーゼ I(6 unit/ml)[宝酒造
(株)]を緩衝液(1×TopoisomeraseI
buffer/0.01%BSA)で1/5倍希釈を
行ったものを測定に用いた。
【0035】エッペンドルフチューブに実施例1および
2で得られた各濃度のアントラキノン誘導体を1μl、
必要量のMilli Q、10×Topoisomer
ase I buffer(350 mM Tris−
HCl<pH 8.0〉/720 mM KCl/50
mM DTT/50 mMスペルミジン/50 mM
MgCl)、0.1%BSA、supercoil
DNA(pUC 19)の順に混ぜたものを12μl
各チューブに加えた後、ボルテックスと軽い遠心を行っ
た。次に、希釈したトポイソメラーゼIを2μlずつチ
ューブに加えた後、ボルテックスと軽い遠心を行った
(ただし、対照の反応系として作製した酵素とアントラ
キノン誘導体を含まない反応系にはHilli Q 2
μlと50% DMSO 1μlを、アントラキノン誘
導体を含まない反応系には50%DMSO 1μlを代
わりに加えた)。
【0036】上記のエッペンドルフチューブを37℃で
30分間放置した後に、氷中でSDS/PK/BJ
(0.66% SDS/0.33 mg/ml Pro
teinase K/0.88×BJ<20% fic
oll/0.25%BPB>)を3μlずつ各チューブ
に加え、50℃で5分間放置してからボルテックスと遠
心を行ない、再び50℃30分間放置しボルテックスと
遠心を行なった。
【0037】試験例2 トポイソメラーゼII型阻害活
性測定 A,Rat Infant Brain Nuclei
(IBN)から粗トポイソメラーゼIIの抽出IBN
(11.98 mg/ml in 50% グリセロー
ル)を4.2μl分取し、遠心(3,000×g,1
分)によりグリセロールを取り除いた。ペレットをNu
clear extraction buffer(2
0 mM Tris−HCl<pH7.5〉,0.3
M NaCl,140 mM b−Me,50ml/m
l BSA,20 mH PHSF)10μlで懸濁
し、氷中で30分インキュベートした。つぎに、遠心
(10,000×g,10分)により上清を分取し粗ト
ポイソメラーゼIIを得た。これを活性に応じて希釈し
た。
【0038】B,精製トポイソメラーゼII(Top
GEN,Inc)の希釈 トポイソメラーゼII(Top GEN,Inc)を、
0.75 unit/mlになるようにNuclear
extration bufferで希釈した。
【0039】エッペンドルフチューブに各濃度のアント
ラキノン誘導体を1μl、必要量のMilli Q、4
×Topoisomerase II buffer
(250mM Tris−HCl<pH 7.9>,6
00 mM KCI,50mMHgCl,0.5 m
M EDTA,2.5 mM ATP,150 mg/
ml BSA)、k DNA(312 ng/ml)を
混合したbuffer18μlを加え、ボルテックスと
軽い遠心を行った。次に、希釈した粗トポイソメラーゼ
IIもしくは希釈した精製トポイソメラーゼII1μl
を加え、再びボルテックスと軽い遠心を行った(ただ
し、対照の反応系として作製した酵素とアントラキノン
誘導体を含まない反応系にはMilli Q 1μlと
50%DMSO 1μlを、アントラキノン誘導体を含
まない反応系には50% DHSO 1μlを代わりに
加えた)。
【0040】上記のエペンドルフチューブを粗トポイソ
メラーゼIIの場合は30℃、精製トポイソメラーゼI
Iの場合は37℃で30分間放置した後、氷中でSDS
/PK/BJを4μlずつ入れた。その後、どちらの場
合も50℃で5分間放置してからボルテックス・軽い遠
心を行ない、再度50℃で30分間放置してからボルテ
ックス・軽い遠心を行なった。
【0041】C,アガロースゲル電気泳動とデンシトメ
トリー 泳動用1×TBE緩衝液(89 mM Tris Ba
se/89 mM ホウ酸/2mM EDTA2Na)
を用いたアガロースゲル電気泳動(−EtBr50
V)を行い、泳動後に1×TBE(0.1ml/ml
EtBr)でゲル染色を行い、ゲルの脱色後、UV照射
を行い、バンドを観察した。トポイソメラーゼ I型阻
害活性測定ではアガロースゲルの濃度を1.2%、II
型活性測定では0.8%とした。
【0042】酵素の反応量はアガロースゲルのバンドの
濃さをコンピューター<NIH Imageに付属して
いるマクロス(Gel Plotting Hacro
s)>を用いて数値化し、定量した。I型活性測定では
supercoil DNAのバンドを、II型活性測
定ではミニサークルDNAのバンドをコンピューターに
取り込ませて数値化、算出により残存活性率を得た。そ
の値からグラフを作成し、トポイソメラーゼIおよびI
Iの活性を50%阻害するアントラキノン誘導体濃度
(IC50)として表わした。結果を表1に示す。
【0043】
【表1】
【0044】表1から、本発明のアントラキノン誘導体
は、トポイソメラーゼIおよびIIの阻害活性を有して
いることが明らかである。
【0045】
【発明の効果】本発明のアントラキノン誘導体は、すぐ
れたトポイソメラーゼIおよびII阻害活性を示し、抗
腫瘍剤として有用である。

Claims (2)

    【特許請求の範囲】
  1. 【請求項1】一般式(1) 【化1】 (式中、R、R、R、R、R、R、R
    よびRは、それぞれ水素原子、アルキル基、アルケニ
    ル基、アルコキシ基、ヒドロキシ基、ヒドロキシアルキ
    ル基、ホルミル基、ハロゲン原子またはアミノ基を示
    す)で表されるアントラキノン誘導体およびその薬学的
    に許容される塩を有効成分とする抗腫瘍剤。
  2. 【請求項2】一般式(1) 【化2】 (式中、Rは、水素原子、アルコキシ基またはヒドロ
    キシ基、Rは、水素原子、ホルミル基またはアルキル
    基、R、RおよびRは、それぞれ水素原子または
    ヒドロキシ基を示す)で表されるアントラキノン誘導体
    およびその薬学的に許容される塩を有効成分とする抗腫
    瘍剤。
JP9085461A 1997-01-27 1997-01-27 抗腫瘍剤 Pending JPH10203969A (ja)

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Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109134295A (zh) * 2018-10-19 2019-01-04 山东大学 蒽二酮衍生物及其制备方法和应用
WO2023068921A1 (en) * 2021-10-18 2023-04-27 Universiti Malaya A medicament to suppress the expression of mutated kras and mutated p53 in colorectal cancer cell

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