JPH087188B2 - 膜上での毛細電気泳動留分の収集のための装置 - Google Patents
膜上での毛細電気泳動留分の収集のための装置Info
- Publication number
- JPH087188B2 JPH087188B2 JP3240239A JP24023991A JPH087188B2 JP H087188 B2 JPH087188 B2 JP H087188B2 JP 3240239 A JP3240239 A JP 3240239A JP 24023991 A JP24023991 A JP 24023991A JP H087188 B2 JPH087188 B2 JP H087188B2
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- sample
- capillary
- electrode
- electrolyte
- membrane
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- Expired - Lifetime
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Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N27/00—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
- G01N27/26—Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
- G01N27/416—Systems
- G01N27/447—Systems using electrophoresis
- G01N27/44704—Details; Accessories
- G01N27/44717—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones
- G01N27/4473—Arrangements for investigating the separated zones, e.g. localising zones by electric means
Description
【発明の詳細な説明】
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は多孔質基材上への留分収
集を伴う毛細電気泳動のための装置に関し、詳しくは、
毛細電気泳動による溶質分離の後、この溶質を溶液から
多孔質基材上へと分離可能とする改良毛細電気泳動のた
めの装置に関する。
集を伴う毛細電気泳動のための装置に関し、詳しくは、
毛細電気泳動による溶質分離の後、この溶質を溶液から
多孔質基材上へと分離可能とする改良毛細電気泳動のた
めの装置に関する。
【０００２】
【従来技術】毛細電気泳動（以下ＣＥと称する）は微量
サンプルを分析するための有効な分析分離技法である。
ＣＥによる分離は、キャリヤー電解質と称される導電性
媒体を充填した小直径の毛細管に於て為される。毛細管
の２つの端部間に電界が適用されそれにより、サンプル
中のスペシーズ（ｓｐｅｃｉｅｓ）が一方の電極から他
方の電極へと移動する。この移動の速度は各々のスペシ
ーズの電気泳動運動性並びに毛細管における全流体移動
速度に依存する。ＣＥは、毛細管内におけるゲル或いは
液体を使用して為され得る。ある液体使用モードはフリ
ーゾーン電気泳動分離として知られ、サンプルスペシー
ズの拘束されない溶液運動性の差が利用される。他の液
体使用モードでは疎水性の差に基く分離を為すためにミ
セルが使用される。これはＭｉｃｅｌｌａｒ Ｅｌｅｃ
ｔｒｏｋｉｎｅｔｉｃＣａｐｉｌｌａｒｙ Ｃｈｒｏｍ
ａｔｏｇｒａｐｈｙとして知られる。毛細ゲル電気泳動
に於ては毛細管には液体電解質では無くむしろ導電性ゲ
ルが充填される。この導電性ゲルはサンプルの帯状拡散
を最小限とするための抗−対流性支持体として作用す
る。フリーゾーン毛細電気泳動では、導電性ゲルによっ
て提供されるそれと類似のセイヴィング（ｓｅｉｖｉｎ
ｇ）効果を提供させるべく、酸化ポリエチレン或いはハ
イドロキシメチルセルロースの如き高分子重量溶質を追
加し得る。
サンプルを分析するための有効な分析分離技法である。
ＣＥによる分離は、キャリヤー電解質と称される導電性
媒体を充填した小直径の毛細管に於て為される。毛細管
の２つの端部間に電界が適用されそれにより、サンプル
中のスペシーズ（ｓｐｅｃｉｅｓ）が一方の電極から他
方の電極へと移動する。この移動の速度は各々のスペシ
ーズの電気泳動運動性並びに毛細管における全流体移動
速度に依存する。ＣＥは、毛細管内におけるゲル或いは
液体を使用して為され得る。ある液体使用モードはフリ
ーゾーン電気泳動分離として知られ、サンプルスペシー
ズの拘束されない溶液運動性の差が利用される。他の液
体使用モードでは疎水性の差に基く分離を為すためにミ
セルが使用される。これはＭｉｃｅｌｌａｒ Ｅｌｅｃ
ｔｒｏｋｉｎｅｔｉｃＣａｐｉｌｌａｒｙ Ｃｈｒｏｍ
ａｔｏｇｒａｐｈｙとして知られる。毛細ゲル電気泳動
に於ては毛細管には液体電解質では無くむしろ導電性ゲ
ルが充填される。この導電性ゲルはサンプルの帯状拡散
を最小限とするための抗−対流性支持体として作用す
る。フリーゾーン毛細電気泳動では、導電性ゲルによっ
て提供されるそれと類似のセイヴィング（ｓｅｉｖｉｎ
ｇ）効果を提供させるべく、酸化ポリエチレン或いはハ
イドロキシメチルセルロースの如き高分子重量溶質を追
加し得る。
【０００３】ＣＥは幾つかの理由から有益である。それ
らの理由には、分析速度が早いこと、分解能が高く且つ
サンプルサイズが小さいことが含まれる。例えば、ＣＥ
を使用しての分析速度は従来からのゲル電気泳動の１０
倍から２０倍は早い。部分的には高分解能は、毛細管に
よる熱の拡散が早いことから高電圧を使用することによ
り得られる。更には、対流による帯状拡散は毛細管の内
径が狭小であることによって最小限化される。ＣＥの大
抵の形態に於て、抗−対流性ゲル媒体が無いことによ
り、帯状拡散によって生じるものとしての曲折する種々
のサンプル通路が排除される。電気泳動に於ては電気浸
透或いは電気浸透性流れ（ＥＯＦ）現象が生じる。これ
は、毛細管内部をどの方向にも移動しそれによって電荷
に関わらずサンプル分子の全てに影響を及ぼし得る液体
の塊状流れである。ＥＯＦはフリーゾーンＣＥにおける
改良分解能或いは分離に貢献し得る。
らの理由には、分析速度が早いこと、分解能が高く且つ
サンプルサイズが小さいことが含まれる。例えば、ＣＥ
を使用しての分析速度は従来からのゲル電気泳動の１０
倍から２０倍は早い。部分的には高分解能は、毛細管に
よる熱の拡散が早いことから高電圧を使用することによ
り得られる。更には、対流による帯状拡散は毛細管の内
径が狭小であることによって最小限化される。ＣＥの大
抵の形態に於て、抗−対流性ゲル媒体が無いことによ
り、帯状拡散によって生じるものとしての曲折する種々
のサンプル通路が排除される。電気泳動に於ては電気浸
透或いは電気浸透性流れ（ＥＯＦ）現象が生じる。これ
は、毛細管内部をどの方向にも移動しそれによって電荷
に関わらずサンプル分子の全てに影響を及ぼし得る液体
の塊状流れである。ＥＯＦはフリーゾーンＣＥにおける
改良分解能或いは分離に貢献し得る。
【０００４】現時点では、ＣＥのための留分収集は一般
に、毛細管の出口端を電解質溶液を入れたバイアルに挿
入することによって為される。バイアルには電極もまた
挿入され、分離電圧が加えられて溶質が毛細管からバイ
アルへと移動される。一定時間経過の後、毛細管は別の
バイアルに移されプロセスが反復される。このプロセス
はサンプルがバイアル中の電解質によって希釈されるこ
とから望ましく無い。加えて、一般的に、特にサンプル
の帯が近接状態で離間している場合は、サンプル部分が
完全に毛細管から排出し終ったことを監視し得ないこと
から、毛細管出口端を別のバイアルに移す時点の判断が
難しい。この問題を解決するための一つの方策が１９９
０年１月の高性能毛細電気泳動シンポジウムに於てＨｕ
ａｎｇ及びＺａｒｅによって報告された。それによれ
ば、毛細管の出口端は毛細管壁を孔開けし、この孔を多
孔質フリット化し、この多孔質フリットを電解質を充填
したリザーバで包囲する改変が為される。このリザーバ
内の電極により、多孔質フリット化された孔を介して毛
細管の電気的接触が為される。毛細管の出口端はろ紙で
カバーした回転ドラムと接触される。毛細管内の殆どの
液体はろ紙への電界浸透流れにより多孔質フリットを通
して搬送される。この方策は、フリット孔形成が困難で
あり且つ時間浪費的であることから望ましく無い。しか
も、サンプルの一部が多孔質フリットを介して失われ、
またリザーバへと失われてしまう。また、この方策は毛
細管出口に向けて電界浸透流れが生じた場合にだけ機能
する。
に、毛細管の出口端を電解質溶液を入れたバイアルに挿
入することによって為される。バイアルには電極もまた
挿入され、分離電圧が加えられて溶質が毛細管からバイ
アルへと移動される。一定時間経過の後、毛細管は別の
バイアルに移されプロセスが反復される。このプロセス
はサンプルがバイアル中の電解質によって希釈されるこ
とから望ましく無い。加えて、一般的に、特にサンプル
の帯が近接状態で離間している場合は、サンプル部分が
完全に毛細管から排出し終ったことを監視し得ないこと
から、毛細管出口端を別のバイアルに移す時点の判断が
難しい。この問題を解決するための一つの方策が１９９
０年１月の高性能毛細電気泳動シンポジウムに於てＨｕ
ａｎｇ及びＺａｒｅによって報告された。それによれ
ば、毛細管の出口端は毛細管壁を孔開けし、この孔を多
孔質フリット化し、この多孔質フリットを電解質を充填
したリザーバで包囲する改変が為される。このリザーバ
内の電極により、多孔質フリット化された孔を介して毛
細管の電気的接触が為される。毛細管の出口端はろ紙で
カバーした回転ドラムと接触される。毛細管内の殆どの
液体はろ紙への電界浸透流れにより多孔質フリットを通
して搬送される。この方策は、フリット孔形成が困難で
あり且つ時間浪費的であることから望ましく無い。しか
も、サンプルの一部が多孔質フリットを介して失われ、
またリザーバへと失われてしまう。また、この方策は毛
細管出口に向けて電界浸透流れが生じた場合にだけ機能
する。
【０００５】米国特許第４６３１１２０号及び第４６３
１１２２号にはゲル或いは紙の如き多孔質基材を通して
電気泳動を実施するための方法及び装置が記載される。
液体ではない多孔質基材は抗−対流媒体であることが要
求される。あるモードでは多孔質基材は縦方向に位置決
めされ、１つの液体電解質リザーバが多孔質基材の上方
に位置決めされそして第２の液体電解質リザーバが多孔
質基材の下方に位置決めされる。このモードでは、媒体
は電極を差込む電解質と混合してしまうことから、液体
搬送媒体を使用出来ない。この方法及び装置の欠点は毛
細管を使用しないゲル電気泳動に於て遭遇されるそれと
同じである。即ち、電気泳動プロセス中に発生される熱
放出量が少ないこと、分離拡散の速度が遅いこと、ゲル
内部のサンプル通路が曲がりくねっていることによって
帯状拡散が生じること、そしてサンプル装填を手動で行
なう必要があることである。加えて、何れの場合にも液
体搬送媒体は電解質中に浸されそれにより、収集膜に移
動するサンプルの一部が電解質中に失われてしまう。更
には、検出手段はオフライン式でありしかも通常は非定
量的である。
１１２２号にはゲル或いは紙の如き多孔質基材を通して
電気泳動を実施するための方法及び装置が記載される。
液体ではない多孔質基材は抗−対流媒体であることが要
求される。あるモードでは多孔質基材は縦方向に位置決
めされ、１つの液体電解質リザーバが多孔質基材の上方
に位置決めされそして第２の液体電解質リザーバが多孔
質基材の下方に位置決めされる。このモードでは、媒体
は電極を差込む電解質と混合してしまうことから、液体
搬送媒体を使用出来ない。この方法及び装置の欠点は毛
細管を使用しないゲル電気泳動に於て遭遇されるそれと
同じである。即ち、電気泳動プロセス中に発生される熱
放出量が少ないこと、分離拡散の速度が遅いこと、ゲル
内部のサンプル通路が曲がりくねっていることによって
帯状拡散が生じること、そしてサンプル装填を手動で行
なう必要があることである。加えて、何れの場合にも液
体搬送媒体は電解質中に浸されそれにより、収集膜に移
動するサンプルの一部が電解質中に失われてしまう。更
には、検出手段はオフライン式でありしかも通常は非定
量的である。
【０００６】米国特許第４７３５６９７号には、プロテ
イン或いは核酸の如き生物分子の複雑な混合物を２ステ
ージに於て分離するための方法及び装置が記載される。
第１のステージでは混合物は高性能液体クロマトグラフ
ィー（ＨＰＬＣ）によって分離される。このＨＰＬＣス
テージからの流出物は、洗浄剤と接触させるなどにより
成分が均一な表面電荷を提示するよう処理される。その
ように処理された流出物は次いで電気的に帯電された分
離ゲルの表面上に沈殿される。このシステムは、分離ゲ
ル内の電界がＨＰＬＣ塔出口に集中されないことから、
サンプルを高分解能下で空間収集することが出来ない。
イン或いは核酸の如き生物分子の複雑な混合物を２ステ
ージに於て分離するための方法及び装置が記載される。
第１のステージでは混合物は高性能液体クロマトグラフ
ィー（ＨＰＬＣ）によって分離される。このＨＰＬＣス
テージからの流出物は、洗浄剤と接触させるなどにより
成分が均一な表面電荷を提示するよう処理される。その
ように処理された流出物は次いで電気的に帯電された分
離ゲルの表面上に沈殿される。このシステムは、分離ゲ
ル内の電界がＨＰＬＣ塔出口に集中されないことから、
サンプルを高分解能下で空間収集することが出来ない。
【０００７】ウエスタンブロッティング（Ｗｅｓｔｅｒ
ｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）法は、従来通りの電気泳動段階
中にゲル内で分離されたサンプルが膜に移送される技法
である。膜及びゲルは２枚のプレート間に位置決めさ
れ、また膜は膜と接触状態に位置決めされた湿った吸着
層の如き電解質で湿らされる。ゲル中のサンプルは２枚
のプレートの電極に印加された電圧により膜に移動せし
められる。
ｎ ｂｌｏｔｔｉｎｇ）法は、従来通りの電気泳動段階
中にゲル内で分離されたサンプルが膜に移送される技法
である。膜及びゲルは２枚のプレート間に位置決めさ
れ、また膜は膜と接触状態に位置決めされた湿った吸着
層の如き電解質で湿らされる。ゲル中のサンプルは２枚
のプレートの電極に印加された電圧により膜に移動せし
められる。
【０００８】
【発明が解決しようとする課題】サンプルを希釈せずし
かもサンプルの損失を回避する、毛細電気泳動プロセス
から分離されたサンプルを回収するための手段を提供す
ることであり、製造及び操作の簡単なそうした手段を提
供することであり、アミノ酸シーケンシング、放射性免
疫学的検定方法、ＥＬＩＳＡその他のような現在の分析
技法と比較し得るフォーマットに於てサンプルを収集す
るための手段を提供することであり、そして、回収した
分離サンプルスペシーズにおけるＣＥプロセスの空間分
解能を保持する手段を提供することである。
かもサンプルの損失を回避する、毛細電気泳動プロセス
から分離されたサンプルを回収するための手段を提供す
ることであり、製造及び操作の簡単なそうした手段を提
供することであり、アミノ酸シーケンシング、放射性免
疫学的検定方法、ＥＬＩＳＡその他のような現在の分析
技法と比較し得るフォーマットに於てサンプルを収集す
るための手段を提供することであり、そして、回収した
分離サンプルスペシーズにおけるＣＥプロセスの空間分
解能を保持する手段を提供することである。
【０００９】
【課題を解決するための手段】本発明に従えば、現在入
手し得る任意のＣＥ移送媒体を使用するＣＥを使用可能
なＣＥ収集方法及び装置が提供される。そうしたＣＥ移
送媒体には、分離されたサンプルを現在の収集技法にお
ける濃度よりもずっと高い濃度に於て多孔質基材上に収
集可能とする、サンプル分析のための液体或いはゲルが
含まれる。中実表面を含む電極構造部が設けられる。該
中実表面は、非多孔質表面或いはスクリーンの如き多孔
質表面であり得る。電極構造部にはまた、前記中実表面
と接触状態に位置決めされた水性或いは非水性の電解質
溶液によって湿らされた多孔質基材と、多孔質基材と接
触状態とされた電気泳動毛細管の出口端部とを含んでい
る。導電性電解質溶液によって湿潤化された吸着材層を
多孔質基材及び導電性手段間に介在させ、もって多孔質
基材への溶液中のイオンの供給源とし得る。別様には、
イオンを含む溶液をスプレーの如き任意の従来手段によ
って多孔質基材に直接塗布可能である。導電性の中実表
面及び毛細管の入り口端部位置或いはそこに隣り合う位
置間に電気的電圧を加えるための手段が設けられる。使
用に際し、電極構造部は毛細電気泳動チューブの出口端
部に位置決めされる。本発明の電極構造部は、毛細管出
口が浸されるキャリヤー電解質溶液を含む現在使用され
る容器に代替されるものである。毛細電気泳動チューブ
の入り口端部は一般に、電解質溶液並びに第２の電極を
収容する容器の内部に位置決めされる。ＣＥ分析を実行
するためにある量のサンプルが毛細管入り口内部に導入
される。これは毛細管の入り口端部をサンプル溶液を収
容する容器内に移動し、そして、差、即ちサンプル溶液
と接する電極によって創生された電界或いは静水圧の差
を使用してサンプル分子を毛細管内部に移動させる。毛
細管の入り口端部は次いで電解質溶液及び第２の電極を
収容する容器に戻され、この容器の毛細管の入り口端部
位置における第２の電極から毛細管の出口端部に位置決
めされた電極構造部へと高電圧が印加される。サンプル
分子は、各電極に加えられた電圧によって創生された電
界の影響下に毛細管を貫いて移動する。毛細管を出るに
際しサンプルは電極構造部の多孔質基材部分に保持され
る。本発明を使用することによりサンプルは多孔質基材
上に直接沈殿されつつサンプル損失を生じ得る環境が回
避されることから、毛細電気泳動後にその全てを回収可
能である。加うるに、サンプルが多孔質基材上に沈殿さ
れることからアミノ酸シーケンシング、放射性免疫学的
検定方法、ＥＬＩＳＡ、複合物分析に伴う加水分解、化
学ルミネッセンス、酵素汚水分解、生物検定その他を含
む、現在入手し得る種々の技法による爾後の分析を可能
とする形態にある。
手し得る任意のＣＥ移送媒体を使用するＣＥを使用可能
なＣＥ収集方法及び装置が提供される。そうしたＣＥ移
送媒体には、分離されたサンプルを現在の収集技法にお
ける濃度よりもずっと高い濃度に於て多孔質基材上に収
集可能とする、サンプル分析のための液体或いはゲルが
含まれる。中実表面を含む電極構造部が設けられる。該
中実表面は、非多孔質表面或いはスクリーンの如き多孔
質表面であり得る。電極構造部にはまた、前記中実表面
と接触状態に位置決めされた水性或いは非水性の電解質
溶液によって湿らされた多孔質基材と、多孔質基材と接
触状態とされた電気泳動毛細管の出口端部とを含んでい
る。導電性電解質溶液によって湿潤化された吸着材層を
多孔質基材及び導電性手段間に介在させ、もって多孔質
基材への溶液中のイオンの供給源とし得る。別様には、
イオンを含む溶液をスプレーの如き任意の従来手段によ
って多孔質基材に直接塗布可能である。導電性の中実表
面及び毛細管の入り口端部位置或いはそこに隣り合う位
置間に電気的電圧を加えるための手段が設けられる。使
用に際し、電極構造部は毛細電気泳動チューブの出口端
部に位置決めされる。本発明の電極構造部は、毛細管出
口が浸されるキャリヤー電解質溶液を含む現在使用され
る容器に代替されるものである。毛細電気泳動チューブ
の入り口端部は一般に、電解質溶液並びに第２の電極を
収容する容器の内部に位置決めされる。ＣＥ分析を実行
するためにある量のサンプルが毛細管入り口内部に導入
される。これは毛細管の入り口端部をサンプル溶液を収
容する容器内に移動し、そして、差、即ちサンプル溶液
と接する電極によって創生された電界或いは静水圧の差
を使用してサンプル分子を毛細管内部に移動させる。毛
細管の入り口端部は次いで電解質溶液及び第２の電極を
収容する容器に戻され、この容器の毛細管の入り口端部
位置における第２の電極から毛細管の出口端部に位置決
めされた電極構造部へと高電圧が印加される。サンプル
分子は、各電極に加えられた電圧によって創生された電
界の影響下に毛細管を貫いて移動する。毛細管を出るに
際しサンプルは電極構造部の多孔質基材部分に保持され
る。本発明を使用することによりサンプルは多孔質基材
上に直接沈殿されつつサンプル損失を生じ得る環境が回
避されることから、毛細電気泳動後にその全てを回収可
能である。加うるに、サンプルが多孔質基材上に沈殿さ
れることからアミノ酸シーケンシング、放射性免疫学的
検定方法、ＥＬＩＳＡ、複合物分析に伴う加水分解、化
学ルミネッセンス、酵素汚水分解、生物検定その他を含
む、現在入手し得る種々の技法による爾後の分析を可能
とする形態にある。
【００１０】
【実施例】”毛細管”とは内径が約１及び５００マイク
ロメーターのものを言う。本発明の装置は入り口端部及
び出口端部を具備する毛細管を含む。電極が毛細管の各
端部に隣り合って位置決めされる。毛細管に導入されそ
して毛細管を貫いて通過する溶質サンプルを収集するた
めに、出口端部に電極構造部が設けられる。該電極構造
部は溶質サンプルを保持し且つ溶質サンプルのための溶
媒がそこを通過可能とする多孔質層を具備する。出口端
部の電極構造部は、電気エネルギー源に電気的に接続さ
れた導電層とこの導電層及び毛細管の出口端部間に位置
決めされた多孔質層とを含んでいる。多孔質層は導電層
に直接接触させ得或いは塩橋或いは電解質の溶液による
等して導電層と電気的に接続し得る。別態様に於ては、
電解質溶液を含んだ吸収層が導電層及び多孔質層間に介
在され、サンプル溶液を保持するために使用される。こ
の吸収層は多孔質層に対する水性或いは非水性の電解質
供給源を提供しそれにより、導電層及び毛細管の出口端
部間に導電性のブリッジを提供する。吸収層は、その材
料が電解質を吸収し多孔質層内の導電性を維持しつつサ
ンプルを収集するための電解質の供給源を提供すること
が可能な限りに於て、限外ろ過膜或いは微孔質膜、フィ
ルターペーパー、ファイバーグラス、織った繊維その他
とし得る。
ロメーターのものを言う。本発明の装置は入り口端部及
び出口端部を具備する毛細管を含む。電極が毛細管の各
端部に隣り合って位置決めされる。毛細管に導入されそ
して毛細管を貫いて通過する溶質サンプルを収集するた
めに、出口端部に電極構造部が設けられる。該電極構造
部は溶質サンプルを保持し且つ溶質サンプルのための溶
媒がそこを通過可能とする多孔質層を具備する。出口端
部の電極構造部は、電気エネルギー源に電気的に接続さ
れた導電層とこの導電層及び毛細管の出口端部間に位置
決めされた多孔質層とを含んでいる。多孔質層は導電層
に直接接触させ得或いは塩橋或いは電解質の溶液による
等して導電層と電気的に接続し得る。別態様に於ては、
電解質溶液を含んだ吸収層が導電層及び多孔質層間に介
在され、サンプル溶液を保持するために使用される。こ
の吸収層は多孔質層に対する水性或いは非水性の電解質
供給源を提供しそれにより、導電層及び毛細管の出口端
部間に導電性のブリッジを提供する。吸収層は、その材
料が電解質を吸収し多孔質層内の導電性を維持しつつサ
ンプルを収集するための電解質の供給源を提供すること
が可能な限りに於て、限外ろ過膜或いは微孔質膜、フィ
ルターペーパー、ファイバーグラス、織った繊維その他
とし得る。
【００１１】多孔質層は親水性或いは疎水性の、微孔質
膜或いは限外ろ過膜を具備し得、或いはポリアクリルア
ミド或いは水性ゲル膜の如きゲルを含み得る。乾燥時に
疎水性の膜であって、湿潤化させるとその厚みを通して
水性液体を移送し得る様になる膜を使用することが、そ
うした膜はプロテインの如き分子を結合し得ることから
有益であり得る。別様には、プロテインを結合するため
に好ましい膜として親水性ポリアミド或いは親水性ニト
ロセルロースがある。一般に、水性の電解質と共に使用
するためには疎水性膜は、エタノール、メタノール、ア
セトン、アセトニトリルその他の如き水混和性有機溶媒
と接触させ、そして引き続き水性液体と接触させること
によって湿潤化させ得る。代表的な膜には、ポリエチレ
ン、ポリプロピレン、ポリメチルペンテンその他の如き
ポリオレフィン；ポリスチレン或いは置換されたポリス
チレン；ポリ（テトラフルオロエチレン）、ポリビニリ
デンフルオライト、その他を含むフッ素化ポリマー；ポ
リスルホン、ポリエチルスルホンその他；ポリエチレン
テレフタレート、ポリブチレンテレフタレートその他を
含むポリエステル；ポリアミドニトロセルロース、ポリ
塩化ビニルの如きビニルポリマー及びポリアクリロニト
リルから形成したものが含まれる。ブタジエン及びスチ
レンのコポリマー、フッ素化エチレン−プロピレンコポ
リマー、エチレン−クロロトリ−フルオロエチレンコポ
リマーその他をも使用出来る。一般に、微孔質膜は約
０．００１及び１０ミクロン間、そしてもっと通常的に
は約０．１及び５．０ミクロン間の平均孔寸法を有す
る。限外ろ過膜は、斯界に知られるように、比較的開い
た多孔質の下部構造及び小径孔を具備する薄皮を有する
膜を含む。
膜或いは限外ろ過膜を具備し得、或いはポリアクリルア
ミド或いは水性ゲル膜の如きゲルを含み得る。乾燥時に
疎水性の膜であって、湿潤化させるとその厚みを通して
水性液体を移送し得る様になる膜を使用することが、そ
うした膜はプロテインの如き分子を結合し得ることから
有益であり得る。別様には、プロテインを結合するため
に好ましい膜として親水性ポリアミド或いは親水性ニト
ロセルロースがある。一般に、水性の電解質と共に使用
するためには疎水性膜は、エタノール、メタノール、ア
セトン、アセトニトリルその他の如き水混和性有機溶媒
と接触させ、そして引き続き水性液体と接触させること
によって湿潤化させ得る。代表的な膜には、ポリエチレ
ン、ポリプロピレン、ポリメチルペンテンその他の如き
ポリオレフィン；ポリスチレン或いは置換されたポリス
チレン；ポリ（テトラフルオロエチレン）、ポリビニリ
デンフルオライト、その他を含むフッ素化ポリマー；ポ
リスルホン、ポリエチルスルホンその他；ポリエチレン
テレフタレート、ポリブチレンテレフタレートその他を
含むポリエステル；ポリアミドニトロセルロース、ポリ
塩化ビニルの如きビニルポリマー及びポリアクリロニト
リルから形成したものが含まれる。ブタジエン及びスチ
レンのコポリマー、フッ素化エチレン−プロピレンコポ
リマー、エチレン−クロロトリ−フルオロエチレンコポ
リマーその他をも使用出来る。一般に、微孔質膜は約
０．００１及び１０ミクロン間、そしてもっと通常的に
は約０．１及び５．０ミクロン間の平均孔寸法を有す
る。限外ろ過膜は、斯界に知られるように、比較的開い
た多孔質の下部構造及び小径孔を具備する薄皮を有する
膜を含む。
【００１２】導電層は金属或いは導電性グラファイト或
いはカーボンその他から形成したスクリーンの如き、非
多孔質或いは多孔質の中実層を含み得る。図１を参照す
るに、電極構造部が本発明におけるサンプル収集に使用
されている。電極構造部８は、電線１２に接続された導
電性プレート１０と、液体吸収層１４及び溶質サンプル
を保持するようになっている多孔質層１６とを含んでい
る。毛細管１５の出口端部１３は多孔質層１６と接触さ
れる。液体吸収層１４は重力によって導電性プレート１
０に対して保持される。液体吸収層は導電性電解質を含
む液体によって湿潤化されている。多孔質層１６は液体
吸収層と接触されそれによりその内部に含まれる液体に
よって湿った状態に保たれる。
いはカーボンその他から形成したスクリーンの如き、非
多孔質或いは多孔質の中実層を含み得る。図１を参照す
るに、電極構造部が本発明におけるサンプル収集に使用
されている。電極構造部８は、電線１２に接続された導
電性プレート１０と、液体吸収層１４及び溶質サンプル
を保持するようになっている多孔質層１６とを含んでい
る。毛細管１５の出口端部１３は多孔質層１６と接触さ
れる。液体吸収層１４は重力によって導電性プレート１
０に対して保持される。液体吸収層は導電性電解質を含
む液体によって湿潤化されている。多孔質層１６は液体
吸収層と接触されそれによりその内部に含まれる液体に
よって湿った状態に保たれる。
【００１３】図２を参照するに、電極構造部１８は筒形
態を有し、電線２２に接続された中実或いは中空の筒状
導電性プレート２０と、吸収層２４とそして多孔質層２
６とを含んでいる。多孔質層２６は毛細管２１の出口端
部１９と接触している。図３を参照するに、フリーゾー
ン毛細電気泳動、毛細ゲル電気泳動或いはミセラー動電
学的毛細クロマトグラフィーに於て使用し得る基本的シ
ステムが示されている。図３に例示されるように、毛細
管３０はその一端がキャリヤー電解質を含むリザーバ３
２内に位置決めされ、他端が電極構造部８と接触され
る。電源３６からの電圧がリザーバ３２内の電極３１及
び電極構造部８間に加えられる。サンプルは毛細管３０
内を検出器４２を通過して電極構造部８へと移動する。
電極構造部８は支持体４４上に配置される。この支持体
４４は電極構造部８を、分離されたサンプルのパターン
が多孔質層の露出表面上に形成されるよう並進的に移動
させ或いは回転状態で移動させることが出来る。図１に
示されるへん平な電極構造部は図２に示される筒状構造
と代替し得る。その場合には筒状構造を、毛細管３０の
出口端部と接触させた状態で軸方向に回転させ及び或い
は並進させる。検出体４２は、ＵＶ吸収検出器、蛍光検
出器、導電性検出器その他の如き、サンプルを分析し得
る任意のもので良い。サンプルを毛細管に導入するため
に、毛細管３０の入り口端部４０及び電極３１が、サン
プル溶液３８を収容する容器３５内部に配置される。次
いで電極及び電極構造部８に短時間電圧が印加されサン
プルが毛細管の入り口端部４０に移動される。別様に
は、サンプル溶液を毛細管の入り口端部４０に移動させ
るために静水学的圧力或いはガス差圧を容器３５に加え
得る。
態を有し、電線２２に接続された中実或いは中空の筒状
導電性プレート２０と、吸収層２４とそして多孔質層２
６とを含んでいる。多孔質層２６は毛細管２１の出口端
部１９と接触している。図３を参照するに、フリーゾー
ン毛細電気泳動、毛細ゲル電気泳動或いはミセラー動電
学的毛細クロマトグラフィーに於て使用し得る基本的シ
ステムが示されている。図３に例示されるように、毛細
管３０はその一端がキャリヤー電解質を含むリザーバ３
２内に位置決めされ、他端が電極構造部８と接触され
る。電源３６からの電圧がリザーバ３２内の電極３１及
び電極構造部８間に加えられる。サンプルは毛細管３０
内を検出器４２を通過して電極構造部８へと移動する。
電極構造部８は支持体４４上に配置される。この支持体
４４は電極構造部８を、分離されたサンプルのパターン
が多孔質層の露出表面上に形成されるよう並進的に移動
させ或いは回転状態で移動させることが出来る。図１に
示されるへん平な電極構造部は図２に示される筒状構造
と代替し得る。その場合には筒状構造を、毛細管３０の
出口端部と接触させた状態で軸方向に回転させ及び或い
は並進させる。検出体４２は、ＵＶ吸収検出器、蛍光検
出器、導電性検出器その他の如き、サンプルを分析し得
る任意のもので良い。サンプルを毛細管に導入するため
に、毛細管３０の入り口端部４０及び電極３１が、サン
プル溶液３８を収容する容器３５内部に配置される。次
いで電極及び電極構造部８に短時間電圧が印加されサン
プルが毛細管の入り口端部４０に移動される。別様に
は、サンプル溶液を毛細管の入り口端部４０に移動させ
るために静水学的圧力或いはガス差圧を容器３５に加え
得る。
【００１４】図５を参照するに、別態様の方法の配列構
成が示される。金属化された可撓性の層５６及び膜５８
をロール６０及び毛細管６２間で移動させるために送給
ロール５２及びテークアップロール５４が使用される。
スポンジ６３が、膜５８を湿潤化せ、また電気的コネク
ター６４を介してのロール６０との間の電気的接続を提
供するための水性電解質のためのリザーバとして、そし
て先に説明した如き毛細管の入り口端部位置の溶質リザ
ーバ（図示せず）として作用する。電解質で膜を湿潤化
させるための、電解質リザーバその他と接触させたスプ
レー手段を含む任意の手段を使用し得る。図６を参照す
るに、膜５８が送給ロール５２からテークアップロール
５４にかけて、毛細管６２及びスポンジ６５間を送通さ
れている。スポンジ６５は電線７０に接続された金属プ
レート６８上に位置決めされている。電圧が、先に説明
された態様で毛細管６２に加えられる。
成が示される。金属化された可撓性の層５６及び膜５８
をロール６０及び毛細管６２間で移動させるために送給
ロール５２及びテークアップロール５４が使用される。
スポンジ６３が、膜５８を湿潤化せ、また電気的コネク
ター６４を介してのロール６０との間の電気的接続を提
供するための水性電解質のためのリザーバとして、そし
て先に説明した如き毛細管の入り口端部位置の溶質リザ
ーバ（図示せず）として作用する。電解質で膜を湿潤化
させるための、電解質リザーバその他と接触させたスプ
レー手段を含む任意の手段を使用し得る。図６を参照す
るに、膜５８が送給ロール５２からテークアップロール
５４にかけて、毛細管６２及びスポンジ６５間を送通さ
れている。スポンジ６５は電線７０に接続された金属プ
レート６８上に位置決めされている。電圧が、先に説明
された態様で毛細管６２に加えられる。
【００１５】図７を参照するに、膜シート７２が送給ロ
ール７４からテークアップロール７６へと送通され、毛
細管７８及び容器８２内の電解質８０との接触状態とさ
れ電極８４は電解質８０内部に位置決めされている。サ
ンプルは毛細管７８から出、そして先に説明した態様に
於て膜７２上に保持される。図８を参照するに、電解質
を収容する吸収層４３が支持体４５上に位置決めされて
いる。電解質によって湿潤化された膜４７が吸収層４３
上に位置決めされ、且つ毛細管５３の出口端部５１との
接触状態とされ且つ電極５５とも接触されている。サン
プルを膜上に沈殿させるのに引き続き、サンプルは入手
し得るアッシー或いは検出技術に於て使用される従来通
りの試薬と反応させ得る。そうした試薬の例には、抗原
或いは抗体の如き放射線同位体置換試薬或いは蛍光同位
体置換試薬；Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｂｌｕｅ、Ａｍｉｄ
ｏ Ｂｌａｃｋ、 ＳｉｌｖｅｒＳｔａｉｎ或いはＸｙ
ｌｅｎｅ Ｃｙｎａｉｄｅ 或いはｏｒｔｈｏｐｈｔｈ
ａｌｄｅｈｙｄｅの如き染料試薬が含まれる。以下の例
は本発明を例示するものであり、これに限定するもので
はない。
ール７４からテークアップロール７６へと送通され、毛
細管７８及び容器８２内の電解質８０との接触状態とさ
れ電極８４は電解質８０内部に位置決めされている。サ
ンプルは毛細管７８から出、そして先に説明した態様に
於て膜７２上に保持される。図８を参照するに、電解質
を収容する吸収層４３が支持体４５上に位置決めされて
いる。電解質によって湿潤化された膜４７が吸収層４３
上に位置決めされ、且つ毛細管５３の出口端部５１との
接触状態とされ且つ電極５５とも接触されている。サン
プルを膜上に沈殿させるのに引き続き、サンプルは入手
し得るアッシー或いは検出技術に於て使用される従来通
りの試薬と反応させ得る。そうした試薬の例には、抗原
或いは抗体の如き放射線同位体置換試薬或いは蛍光同位
体置換試薬；Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｂｌｕｅ、Ａｍｉｄ
ｏ Ｂｌａｃｋ、 ＳｉｌｖｅｒＳｔａｉｎ或いはＸｙ
ｌｅｎｅ Ｃｙｎａｉｄｅ 或いはｏｒｔｈｏｐｈｔｈ
ａｌｄｅｈｙｄｅの如き染料試薬が含まれる。以下の例
は本発明を例示するものであり、これに限定するもので
はない。
【００１６】例１ この実験のために、図３に示される実験装置を使用して
連続的に移動する表面上への流出物の直接的収集が為さ
れた。毛細管は内径が１００マイクロメーター、外径が
３６０マイクロメーター、そして長さが８０センチメー
トルであった。２１０ナノメーターの波長に於てＵＶ検
出器が使用された。検出領域は毛細管の出口端部から２
０センチメートルのところであった。この検出器のため
の減衰は０．０５ＡＵＦＳに調整された。ストリップチ
ャートレコーダー速度が毎分０．２５センチメートルに
設定された。図１に示されるへん平な電極構造部を含む
収集カルーセルが２．２５４ＲＰＭ（毎時回転数）で旋
回された。表面速度は収集カルーセルの中心から２．８
センチメートルの位置で毎分０．５５ミリメートルであ
ることが算出された。１ｍｇ／ｍｌのミオグロビン貯蔵
液及び１ｍｇ／ｍｌのβ−ラクトグロブリン貯蔵液が２
５ｍＭのｐＨ７．１４のリン酸塩緩衝溶液内で調整され
た。等容積のこれら２つのプロテイン溶液がＣＥのため
の電気泳動注入に先立って混合された。
連続的に移動する表面上への流出物の直接的収集が為さ
れた。毛細管は内径が１００マイクロメーター、外径が
３６０マイクロメーター、そして長さが８０センチメー
トルであった。２１０ナノメーターの波長に於てＵＶ検
出器が使用された。検出領域は毛細管の出口端部から２
０センチメートルのところであった。この検出器のため
の減衰は０．０５ＡＵＦＳに調整された。ストリップチ
ャートレコーダー速度が毎分０．２５センチメートルに
設定された。図１に示されるへん平な電極構造部を含む
収集カルーセルが２．２５４ＲＰＭ（毎時回転数）で旋
回された。表面速度は収集カルーセルの中心から２．８
センチメートルの位置で毎分０．５５ミリメートルであ
ることが算出された。１ｍｇ／ｍｌのミオグロビン貯蔵
液及び１ｍｇ／ｍｌのβ−ラクトグロブリン貯蔵液が２
５ｍＭのｐＨ７．１４のリン酸塩緩衝溶液内で調整され
た。等容積のこれら２つのプロテイン溶液がＣＥのため
の電気泳動注入に先立って混合された。
【００１７】染料試薬が、１．２５ｇのブリリアントブ
ルーＲ２５０（ Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｂｒｉｌｌｉａ
ｎｔ Ｂｌｕｅ Ｒ、 Ｂ ０６３０ Ｓｉｇｍａ ）
を５００ｍｌのフィクサチブ溶液（ ２００ｍｌのメタ
ノール、３５ｍｌの氷酢酸、及び２６５ｍｌの逆浸透性
処理水）内に溶解させることによって調整された。この
溶液は室温できつく蓋を締めた茶色の瓶内に貯蔵され
た。ＣｏｏｍａｓｓｉｅＢｒｉｌｌｉａｎｔ Ｂｌｕｅ
はＮＨ+3グループとの静電結合を形成し、プロテイン内
の非−極性領域との非−共有結合を形成する。９０％
（ｖ／ｖ）メタノール溶液が染料除去溶液として水中で
調整された。
ルーＲ２５０（ Ｃｏｏｍａｓｓｉｅ Ｂｒｉｌｌｉａ
ｎｔ Ｂｌｕｅ Ｒ、 Ｂ ０６３０ Ｓｉｇｍａ ）
を５００ｍｌのフィクサチブ溶液（ ２００ｍｌのメタ
ノール、３５ｍｌの氷酢酸、及び２６５ｍｌの逆浸透性
処理水）内に溶解させることによって調整された。この
溶液は室温できつく蓋を締めた茶色の瓶内に貯蔵され
た。ＣｏｏｍａｓｓｉｅＢｒｉｌｌｉａｎｔ Ｂｌｕｅ
はＮＨ+3グループとの静電結合を形成し、プロテイン内
の非−極性領域との非−共有結合を形成する。９０％
（ｖ／ｖ）メタノール溶液が染料除去溶液として水中で
調整された。
【００１８】ポリビニリデンジフルオライデ疎水性膜
（マサチューセッツ州ベドフォードのミリポア社から入
手し得るＩｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐ ）が留分収集媒体と
して使用された。ホワットマンろ紙（３ＭＭ Ｃｈｒ）
が、膜及びステンレススチール製の電極間の吸収層とし
て使用された。この吸収層は２５ｍＭ ｐｈ７．１４の
リン酸塩緩衝剤を含みそれにより緩衝材リザーバとして
作用する。電極構造部は以下のように組み立てられた。
先ず第１に、２層のホワットマンろ紙が緩衝材溶液中に
沈められ、そして第２に、湿潤化されたろ紙が回転カル
ーセルとしても作用するスチール製の電極の上部に組み
付けられた。そして第３にｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐが約
５秒間緩衝材溶液中に沈められた。そして第４に、こう
して処理された膜が緩衝材リザーバ上にアセンブリー中
に空気が捕捉されないことを補償する態様に於て載置さ
れた。第５に、組み立てられた膜収集装置が起立され毛
細管の出口端部と接触された。第６に、サンプル溶液が
非−導電性容器から８ｋｖを１５秒間加えることによっ
て毛細管の入口端部内に導入された。次で、サンプルを
入れた容器が緩衝材溶液を満たした別の容器と代替さ
れ、１８ｋｖの電圧が印加され、約３０分間電気泳動分
離が為された。最後に、膜が染料試薬内で約１５分間染
色され次で染料除去溶液中で２度染料除去された。Ｃｏ
ｏｍａｓｓｉｅＢｒｉｌｌｉａｎｔ Ｂｌｕｅ を使用
しての染色の後、２本の細長いスポットが観察された。
一方のスポットはミオグロビンのそして他方はβ−ラク
トグロブリンによるものであった。各々のスポットはこ
れらプロテインのナノグラム数の数十倍量に相当した。
（マサチューセッツ州ベドフォードのミリポア社から入
手し得るＩｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐ ）が留分収集媒体と
して使用された。ホワットマンろ紙（３ＭＭ Ｃｈｒ）
が、膜及びステンレススチール製の電極間の吸収層とし
て使用された。この吸収層は２５ｍＭ ｐｈ７．１４の
リン酸塩緩衝剤を含みそれにより緩衝材リザーバとして
作用する。電極構造部は以下のように組み立てられた。
先ず第１に、２層のホワットマンろ紙が緩衝材溶液中に
沈められ、そして第２に、湿潤化されたろ紙が回転カル
ーセルとしても作用するスチール製の電極の上部に組み
付けられた。そして第３にｉｍｍｏｂｉｌｏｎ−Ｐが約
５秒間緩衝材溶液中に沈められた。そして第４に、こう
して処理された膜が緩衝材リザーバ上にアセンブリー中
に空気が捕捉されないことを補償する態様に於て載置さ
れた。第５に、組み立てられた膜収集装置が起立され毛
細管の出口端部と接触された。第６に、サンプル溶液が
非−導電性容器から８ｋｖを１５秒間加えることによっ
て毛細管の入口端部内に導入された。次で、サンプルを
入れた容器が緩衝材溶液を満たした別の容器と代替さ
れ、１８ｋｖの電圧が印加され、約３０分間電気泳動分
離が為された。最後に、膜が染料試薬内で約１５分間染
色され次で染料除去溶液中で２度染料除去された。Ｃｏ
ｏｍａｓｓｉｅＢｒｉｌｌｉａｎｔ Ｂｌｕｅ を使用
しての染色の後、２本の細長いスポットが観察された。
一方のスポットはミオグロビンのそして他方はβ−ラク
トグロブリンによるものであった。各々のスポットはこ
れらプロテインのナノグラム数の数十倍量に相当した。
【００１９】追加的実験が、基準ＣＥ状況（完全な回路
を形成するための容器を毛細管の両端に具備する状況）
下で、留分収集電極構造の無い状況に於て実施された。
図４は、ミオグロビン（０．５ｍｇ／ｍｌ）及びβ−ラ
クトグロブリン（０．５ｍｇ／ｍｌ）を含む２成分混合
物の注入の基準ＣＥから得られた電気泳動図である。ピ
ークＡはミオグロビンであり、ピークＢはβ−ラクトグ
ロブリンである。観察された電流は規定ＣＥ並びに膜収
集における電気泳動分離中は９６マイクロアンペアで一
定していた。
を形成するための容器を毛細管の両端に具備する状況）
下で、留分収集電極構造の無い状況に於て実施された。
図４は、ミオグロビン（０．５ｍｇ／ｍｌ）及びβ−ラ
クトグロブリン（０．５ｍｇ／ｍｌ）を含む２成分混合
物の注入の基準ＣＥから得られた電気泳動図である。ピ
ークＡはミオグロビンであり、ピークＢはβ−ラクトグ
ロブリンである。観察された電流は規定ＣＥ並びに膜収
集における電気泳動分離中は９６マイクロアンペアで一
定していた。
【００２０】
【発明の効果】サンプルを希釈せずしかもサンプルの損
失を回避する、毛細電気泳動プロセスから分離されたサ
ンプルを回収するための手段が提供され、製造及び操作
の簡単なそうした手段が提供され、アミノ酸シーケンシ
ング、放射性免疫学的検定方法、ＥＬＩＳＡその他のよ
うな現在の分析技法と比較し得るフォーマットに於てサ
ンプルを収集するための手段が提供され、そして、回収
した分離サンプルスペシーズにおけるＣＥプロセスにお
ける間隔を置いての分離を保持する手段が提供される。
失を回避する、毛細電気泳動プロセスから分離されたサ
ンプルを回収するための手段が提供され、製造及び操作
の簡単なそうした手段が提供され、アミノ酸シーケンシ
ング、放射性免疫学的検定方法、ＥＬＩＳＡその他のよ
うな現在の分析技法と比較し得るフォーマットに於てサ
ンプルを収集するための手段が提供され、そして、回収
した分離サンプルスペシーズにおけるＣＥプロセスにお
ける間隔を置いての分離を保持する手段が提供される。
【図１】本発明に使用される電極構造部の斜視図であ
る。
る。
【図２】本発明に於て使用される電極構造部の別態様の
斜視図である。
斜視図である。
【図３】本発明で使用する毛細電気泳動方法の該略図で
ある。
ある。
【図４】例１のプロセスによるサンプルの電気泳動図で
ある。
ある。
【図５】連続する多孔質基材を使用する本発明の毛細電
気泳動方法の該略図である。
気泳動方法の該略図である。
【図６】連続する多孔質器材を使用する本発明の毛細電
気泳動方法の別態様の該略図である。
気泳動方法の別態様の該略図である。
【図７】沈めた電極を使用する本発明の方法の別態様の
該略図である。
該略図である。
【図８】本発明の装置の別態様の該略図である。
【符号の説明】 ８：電極構造部 １０：導電性プレート １３：出口端部 １４：液体吸収層 １５：毛細管 １６：多孔質層
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.6 識別記号 庁内整理番号 ＦＩ 技術表示箇所 ３３１ Ｚ (72)発明者 マルティン・フクス 米国マサチューセッツ州アクスブリジ、チ ェリー・ストリート３ (56)参考文献 特開 平１−112147（ＪＰ，Ａ)
Claims (7)
- 【請求項１】 入口端部及び出口端部を具備し、前記入
口端部を試料溶液を含む液体中に位置することができる
ように設けられている毛細管であって、サンプルがそこ
を通り抜けし得るようになっている導電性複合物を含む
前記毛細管と、 前記入口端部に隣り合う第１の電極にして、前記毛細管
内の導電性複合物と電気的接触状態にある前記第１の電
極と、 前記サンプル溶質を保持するようになっている多孔質層
と接触状態にある前記出口端部と、 液体電解質を含んでいるが電解質溶液用容器中には浸漬
されていない前記多孔質層、および 該多孔質層と電気的接触状態にある第２の電極 とから構成されるサンプル収集用装置。 - 【請求項２】 多孔質層は微孔質膜である請求項１の装
置。 - 【請求項３】 多孔質層は限外ろ過膜である請求項２の
装置。 - 【請求項４】 第２の電極は中実の金属層である請求項
１、２或いは３の何れかに記載の装置。 - 【請求項５】 第２の電極は金属スクリーンによって多
孔質層と電気的に接触される請求項１、２或いは３の何
れかに記載の装置。 - 【請求項６】 電解質によって湿潤化された吸収層が多
孔質層と接触される請求項１、２或いは３の何れかに記
載の装置。 - 【請求項７】 第２の電極はグラファイトである請求項
１の装置。
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US07/575,111 US5126025A (en) | 1990-08-30 | 1990-08-30 | Method and apparatus for effecting capillary electrophoresis fraction collection on a membrane |
| US575111 | 1995-12-19 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04264253A JPH04264253A (ja) | 1992-09-21 |
| JPH087188B2 true JPH087188B2 (ja) | 1996-01-29 |
Family
ID=24298999
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP3240239A Expired - Lifetime JPH087188B2 (ja) | 1990-08-30 | 1991-08-28 | 膜上での毛細電気泳動留分の収集のための装置 |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US5126025A (ja) |
| EP (1) | EP0477541B1 (ja) |
| JP (1) | JPH087188B2 (ja) |
| DE (1) | DE69124897T2 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US9055621B2 (en) | 2009-07-15 | 2015-06-09 | Koninklijke Philips N.V. | Activity adapted automation of lighting |
Families Citing this family (30)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH04213056A (ja) * | 1990-12-06 | 1992-08-04 | Sumitomo Electric Ind Ltd | 物質分画法および分画装置 |
| WO1993017321A1 (en) * | 1992-02-25 | 1993-09-02 | Unisearch Limited | Electrothermal atomic absorption and preconcentration device |
| US5384024A (en) * | 1992-03-13 | 1995-01-24 | Applied Biosystems, Inc. | Capillary electrophoresis |
| JPH0674937A (ja) * | 1992-06-26 | 1994-03-18 | Nakano Vinegar Co Ltd | 細管式電気泳動方法およびその装置並びにこれらに用いられるカラム |
| US5338427A (en) * | 1993-02-26 | 1994-08-16 | Biometric Imaging Inc. | Single use separation cartridge for a capillary electrophoresis instrument |
| US5571398A (en) * | 1994-12-23 | 1996-11-05 | Northeastern University | Precise capillary electrophoretic interface for sample collection or analysis |
| US5800692A (en) * | 1995-04-17 | 1998-09-01 | Mayo Foundation For Medical Education And Research | Preseparation processor for use in capillary electrophoresis |
| US5630925A (en) * | 1995-07-13 | 1997-05-20 | Beckman Instruments, Inc. | Capillary electrophoresis using a conductive capillary tube |
| US6068749A (en) * | 1996-01-19 | 2000-05-30 | Northeastern University | Subatmospheric, variable pressure sample delivery chamber for electrospray ionization/mass spectrometry and other applications |
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