JPH08509961A - 低密度リポタンパク質および細胞毒性物質の使用 - Google Patents

Abstract

(57)【要約】 細胞毒性物質は、低密度リポタンパク質が細胞毒性物質の活性を高めるため、リポタンパク質中に配合されると、癌、特に白血病及びリンパ腫の治療に有用である。細胞毒性物質は、ＬＤＬを使用せずに投与した際には細胞毒性薬剤に耐性のある癌および無毒性溶剤に不溶である薬剤の投与に対して特に有効である。

Description

【発明の詳細な説明】 低密度リポタンパク質および細胞毒性物質の使用 本発明は、癌の化学療法を目的とした活性の高い薬剤の調製における細胞毒性 物質（cytotoxic substance）の使用に関するものである。 癌は、主に、迅速にかつ制御されずに成長し、侵襲性であることが多い以外は 正常組織細胞と区別のつかない異常細胞の発達を記載するのに用いられる言葉で ある。生体器官への侵襲は、しばしば患者を死に至らしめる。 癌は非常にはびこっており、約３０％の人々が彼等の寿命のうちある時点で癌 になっていると考えられ、癌が約２０％の割合で死の原因となっていると考えら れている。癌の伝統的な治療法としては手術および放射線療法があるが、より最 近では、癌細胞を損傷するあるいは殺すことができる化学治療または細胞毒性薬 剤の開発に注意が向いてきた。しかしながら、癌の化学療法は、上記細胞毒性物 質の選択性が低く癌細胞と共に正常細胞をも殺してしまうため、問題がある。こ のような低い選択性によって、多くの場合、心臓、肝臓、肺及び胃腸管等の器官 、さらには、骨髄や毛包の損傷などの許容できないような副作用が生じ、これに より心臓や呼吸系の問題、感染に対する感応性、悪心、嘔吐、下痢及び毛髪の抜 けが起こる。 抗癌剤の選択性を上げることによって副作用を抑制する多くの試みがなされて きており、近年の方法は溶解性の乏しい薬剤用の賦形剤として作用し、さらに重 要なことでは、薬剤を標的とする悪性細胞に向かわせる担体の開発が集中的に行 なわれてきた。担体と薬剤との間で形成される複合体は、必然的に、標的細胞に 遭遇できるように身体中に効率的に分布していなければならず、さらに、悪性細 胞中にのみ選択的に入り込まむものでなければならない。細胞毒性薬剤の複合体 は、また、患者への投与前後および標的細胞に到達するまで、安定でなければな らない。 多くの様々なタイプの細胞毒性物質用の担体が報告されており、例えば、抗体 、ホルモン及びリポソームが挙げられる。しかしながら、それぞれの上記タイプ の担体は癌の化学療法への使用が制限されるという限度がある。ＷＯ−Ａ−８６ ０７５４０号には、低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）からなる生物学的に活性の ある物質に対する代わりの担体および親油性の生物学的に活性のある物質をのせ たＬＤＬ担体の調製方法が記載されている。 リポタンパク質は、トリグリセリド及びコレステロールの輸送において生理学 的な役割を有する血漿中に発見された粒子群からなる。ＬＤＬは、細胞膜を合成 するためにおよびステロイドホルモンを製造するための基質として活発に分割す る細胞にコレステロールを輸送する。ＬＤＬ粒子は７５％の脂質および２５％の コレステロールの極性外皮 として組織化されたタンパク質、リン脂質及びコレステリルエステルの無極性コ アを取り巻くタンパク質から構成される。タンパク質成分はアポリポタンパク質 Ｂ（アポＢ）の単分子として存在する。アポＢは、「被覆された小窩(coated pi t)」中の多くのタイプの細胞の膜表面上に担持されたＬＤＬレセプターと特異的 に結合する。これらは、連続して挟み取られ、ＬＤＬが成分部分に分解する細胞 内に賦形剤を形成する。したがって、コレステロールは、細胞内部に運ばれ、細 胞の代謝プロセスに利用可能になる。 インビトロで試験された、白血病の白血球等の多くの癌は、正常な組織と比較 すると高いＬＤＬレセプター活性を有することが示された（ブラッド(Blood)、 ６３巻、ページ１１８６〜１１９３（１９８４年））。また、肺癌から得られた 細胞は正常な肺組織より放射性¹⁴Ｃスクロースで標識されたＬＤＬを２００〜３ ００％多く蓄積することも示された（カンサー リサーチ(Cancer Research)、 ５２巻、ページ１〜４（１９９２年））。同様の発見が胃腸管の癌においても得 られた。 ＷＯ−Ａ−８６０７５４０号に記載されているように、薬剤の担体は、ＬＤＬ 粒子のコア中に親油性薬剤を添加することによってＬＤＬより調製できる。ビン クリスチン等の薬剤によっては、ＬＤＬ粒子のコアからコレステリルエステルを 除去しないことが好ましいが、コレステリルエステルを除去して全部または一部 を親油性の薬剤と置換する ことが好ましい場合もある。好ましい親油性の薬剤としては、癌の化学療法に使 用されるタイプの細胞毒性剤が挙げられる。ＷＯ−Ａ−８６０７５４０号には、 また、身体によって拒絶されるようなＬＤＬの性質には影響を与えずに上記ＬＤ Ｌ薬剤担体を調製する方法が記載されている。したがって、上記公報に記載され たＬＤＬ−薬剤複合体は、他の方法によって調製されたものに比べて長期間、精 製はされたが修飾はされないＬＤＬと同等のレベルで、血漿中に存在できる。こ のため、薬剤にＬＤＬを担体として使用することは非常に好ましいと考えられる 。 我々の以前の研究（カンサー ケモテル ファーマコル(Cancer Chemother．P harmacol.)、２９巻、ページ３９６〜４００（１９９２年））には、ＬＤＬ担体 中に加えられたビンクリスチン（ＶＣ）の癌患者への投与が記載されている。Ｖ Ｃは、癌の化学療法に広く使用されるが治療を中断しなければならないような重 篤な副作用を有する細胞毒性物質である。副作用としては、感覚異常、筋肉の麻 痺、便秘、麻痺性イレウス及び脱毛が挙げられる。しかしながら、上記した文献 には、ＶＣをＬＤＬ中に配合すると、多くの副作用が消え、これによって薬剤の 使用が増加するであろうと示されている。 しかしながら、癌の治療に用いられる細胞毒性物質の一つの問題としては、多 くの癌が細胞毒性物質に対して耐性があるまたは耐性がでてくることである。こ の耐性は、腫 瘍が細胞毒性物質による治療に応答しないという１次耐性、または細胞毒性物質 による処置時には腫瘍が初期的に抑制された後、腫瘍が再度成長し始めるという ２次耐性である。ベラパミール、タモキシフェン（tamoxifen）及びシクロスポ リンＡ等の様々な無毒性の薬剤を用いることによって耐性の発展を逆転する試み がなされてきた。例えば、ベラパミールは、カルシウムチャンネルの遮断剤であ り、薬剤耐性の卵巣腫瘍細胞からのドキソルビシン（doxorubicin）の高い流出 を抑制し、理論的には、細胞毒性剤に対する耐性を防止するのを補助するはずで ある。しかしながら、この方法は限られた範囲でしか成功せず、結果的には、あ る種の細胞毒性剤に耐性のある腫瘍を有する患者は、上記物質によっては効果的 に治療できない。 ＶＣ及び多くの他の細胞毒性物質の使用によるさらなる問題としては、治療窓 （therapeutic window）が小さい、即ち、癌の治療に活性のある投与量が患者に 毒な投与量と大きくは相違しないということがある。 しかしながら、我々は、予期せずに、細胞毒性物質をＬＤＬ中に混ぜると、組 成物は単独で使用した際の細胞毒性物質より高い細胞毒性活性を有することを発 見し、これにより、細胞毒性物質の活性がＬＤＬの非存在下の活性より大きい、 ＬＤＬと共に配合された細胞毒性物質を有効量患者に投与することからなる癌の 治療方法を開発する手段が得られた。 したがって、本発明の第一の概念によると、細胞毒性物質の活性がＬＤＬの非 存在下の活性より大きいことを特徴とする、親油性の細胞毒性物質及び低密度リ ポタンパク質（ＬＤＬ）の癌の治療を目的とする薬剤の調製における使用を提供 するものである。 通常、複合体は細胞毒性物質とＬＤＬとの間に形成され、癌治療剤を調製する のに用いられる。 本明細書において、「癌(cancer)」という言葉は、癌腫（carcinoma）、白血 病（leukaemia）、リンパ腫（lymphoma）、芽細胞腫（blastoma）及び肉腫（sar coma）を意味する。 「細胞毒性物質−ＬＤＬ複合体」という言葉は、細胞毒性物質の全部または一 部がＬＤＬ粒子中のコレステリルエステルと置換するものを意味する。 細胞毒性物質は、ＬＤＬと複合体を形成すると、遊離酸若しくは遊離塩基の形 態になるまたは硫酸塩若しくは塩酸塩等の生理学上使用できる塩として用いられ る。ＶＣの場合には、薬剤の遊離の形態が好ましく使用される。 細胞毒性物質の活性はＬＤＬと共に投与しない場合の細胞毒性物質の活性より 少なくとも１０％、好ましくは１５％、より好ましくは２０％高いことが望まし い。 物質の活性の増加は、細胞毒性物質単独でおよびＬＤＬの存在下で細胞毒性物 質でそれぞれ処理されたサンプル中に残存する腫瘍細胞の数を比較することによ って測定される。なお、上記測定方法を実施例においてさらに詳細に説 明する。 細胞毒性物質の活性の上記したような向上の１つの長所としては、癌患者に投 与された細胞毒性物質の投与量をかなり減少することができることが考えられる 。この場合、我々の従前の仕事から予想されるより副作用をかなり減少すること さえでき、これにより、ＬＤＬ粒子中の細胞毒性物質の被包により薬剤の同等の 投与量で観察される副作用を抑制できるばかりでなく、さらに、ＬＤＬ中に配合 する際にはより少ない量の薬剤を投与すればよく、これにより、当然、好ましく ない副作用をさらに抑制することができる。さらに、癌患者を治療するのに必要 な細胞毒性薬剤の量を減らすことによって、当然、患者が受ける治療費を軽減す ることができる。 しかしながら、より高い細胞毒性効果が必要であるため、細胞毒性の投与量を 減少するのが望ましくない場合もある。場合によっては、臨床医が、複合体を形 成した治療用物質をこの物質に関する標準投与量より高い投与量で投与すること が有用であることを発見する場合もある。 ＬＤＬと共に投与した際の細胞毒性物質の活性が向上する理由は明らかではな いが、上記によって本発明の有効性が制限されることはない。 本発明の複合体を使用する他の長所としては、細胞毒性物質の活性の上昇が、 単独で投与した際には細胞毒性物質に耐性のある癌の場合により大きいことであ る。したがっ て、複合体は、有効量のＬＤＬ中に配合された細胞毒性物質を患者に投与するこ とからなる、薬剤耐性腫瘍の治療方法に使用するのに特に有用である。 さらなる長所としては、ＬＤＬ−細胞毒性物質複合体が、タクソール（taxol ）等のある種の細胞毒性物質を使用するために患者に上記薬剤を投与するのに使 用する溶剤であるジメチルスルスルフォキシドやクレモフォール イーエル（Cr emophor EL）等の有毒な溶剤を使用する必要性を排除することである。繰り返す が、このことは、溶剤の有毒な副作用をもはや処理する必要がないため、薬剤の 量を増やすことが可能になることを意味する。 本発明の第二の概念によると、ＬＤＬを使用せずに投与した際には細胞毒性物 質に耐性のある癌の治療を目的とした薬剤の調製における親油性の細胞毒性物質 および低密度リポタンパク質（ＬＤＬ）の使用を提供するものである。 再度繰り返すが、複合体は、通常、細胞毒性物質とＬＤＬとの間に形成され、 癌治療剤を調製するのに使用される。 明らかに、本発明は、癌がある種の薬剤に耐性がでてきてた時でさえ、薬剤が ＬＤＬと共に投与されていればその薬剤を用いて患者を治療することが可能であ るため、癌を治療するのに非常に有用であることが分かった。 単独で投与した際には薬剤に耐性のある細胞の処理におけるＬＤＬと複合体を 形成する細胞毒性物質の有効性に関する１つの可能な説明としては、薬剤が細胞 に入る機構が 変化したことが考えられる。細胞毒性物質は一般的に拡散プロセスを経て細胞に 入るが、薬剤に対する耐性が薬剤が癌細胞に入るのを防ぐ透過障害によって生じ る場合があると考えられる。しかしながら、細胞毒性物質がＬＤＬ粒子中に被包 されると、細胞毒性物質は、拡散によらずＬＤＬレセプターを通じて細胞に入る ため、細胞毒性物質に対する細胞の耐性が克服される。 他の説明としては、細胞毒性物質に耐性のある癌細胞が細胞に入った後実際に この物質を放出することが挙げられる。しかしながら、この細胞毒性物質がＬＤ Ｌ粒子中に被包されると、十分初期に当該物質が放出されることは細胞によって 認められない。 しかしながら、上記２つの説明はもっともらしいものの、本発明の上記概念の 有効性が上記説明が正しいことによらないことを強調しておくべきである。 本発明において使用できる細胞毒性物質としては、ドキソルビシン（doxorubi cin）及びその親油性誘導体であるＡＤ３２及びＡＤ３１２、クロラムブシル、 プレドニムスチン（prednimustine）、ＷＢ４２９１、アクラシノマイシン（acl acinomycin）、ニトロソウレア（nitrosoureas）、ＶＣ、タクソール（taxol） 及びその類似体および他の親油性薬剤が挙げられる。しかしながら、ＶＣは癌の 化学療法に広範に使用されるため、ＶＣが特に好ましく、さらに、上記したよう に、ＶＣをＬＤＬと共に配合することによって副作 用が抑制され、これにより、ＶＣを用いた治療が長期間継続できる。 細胞毒性物質は、ＷＯ−Ａ−８６０７５４０号に記載されているように、通常 、ＬＤＬと複合体を形成する。ＬＤＬ粒子は、コアが親油性の細胞毒性物質のみ を含むように再構築できる、または、ＬＤＬ粒子のコアから抽出されたコレステ リルエステルによっては細胞毒性物質と共に粒子中に再導入できるものもある。 第三の可能性としては、これはＶＣ及びタクソールの場合に好ましいが、コレス テリルエステルを除去せずに治療物質をＬＤＬ粒子のコア中に取り込むことであ る。 本発明において使用されるＬＤＬは、化学的に合成されたものであっても、あ るいは動物源、特に哺乳動物若しくは鳥源由来のものであってもよい。ＬＤＬの 好ましい鳥源としては卵黄が挙げられ、また、ＬＤＬの好ましい哺乳動物源とし てはヒツジ、ウシ、ブタ、ウマまたはヒトが挙げられ、これらのうち、ヒトＬＤ Ｌが特に好ましい。 本発明はいずれのタイプの癌の治療にも使用できるが、白血病及びリンパ腫の 治療に特に使用できる。 細胞毒性物質−ＬＤＬ複合体は、いずれの経路による投与を目的として配合さ れてもよい。従来は、多くの細胞毒性薬剤が侵食性であるため、管外遊出を防止 するために静脈内に巨丸剤を注射する等の方法によってＶＣ等の細胞毒性物質を 投与することが一般的であった。細胞毒性物質− ＬＤＬ複合体は、様々な経路によって投与できるが、非経口的な経路が特に好ま しい。特に好ましい経路は静脈内投与であるが、経口、経鼻、眼内及び腹腔内投 与もまた使用できる。 患者への細胞毒性物質の投与量は、当然、個々の患者や治療する癌の性質によ って変化するが、開業医が適当な量を決定できる。 ＬＤＬを用いずに単独で投与する際のＶＣの具体的な投与量は、１ｍ²の体表 面積当たり１．４ｍｇの硫酸ビンクリスチンであり、等価量がＬＤＬ−ＶＣ複合 体では適当である。ＬＤＬと複合体を形成するとＶＣの活性が向上するため、Ｖ ＣがＬＤＬと複合体を形成する際には、より低い投与量レベルを用いることが可 能であるが、勿論、より高い細胞毒性が必要である際には上記は適当ではない。 複合体を非経口経路で投与する際には、滅菌溶液として、例えば、リン酸緩衝 液（ＰＢＳ）中に配合され、おおよそ生理学的なｐＨであることが好ましい。ｐ Ｈは、６〜８．５の範囲内であることが好ましく、より好ましくは７〜８であり 、最も好ましくは７．２〜７．６であり、ｐＨ７．４が最適値である。最終配合 物における細胞毒性薬剤の濃度は、使用する薬剤によって変化するが、ＶＣに関 しては、適当な濃度は、２０μｇ〜２ｍｇ／ｍｌの範囲内であり、好ましくは１ ００〜５００μｇ／ｍｌであり、約２００μｇ／ｍｌが特に好ましい。ＬＤＬタ ンパク質の濃度は、一 般的には、０．１〜１０ｍｇ／ｍｌの範囲内であり、好ましくは０．５〜５．０ ｍｇ／ｍｌ、最も好ましくは１．０〜２．０ｍｇ／ｍｌであり、約１．５ｍｇ／ ｍｌが特に好ましい。 本発明を、以下の実施例及び図面を参照しながら、さらに詳細に説明する： 図１は、ＶＣ及びＬＤＬ−ＶＣで処理した非ホドキン病リンパ腫（non-Hodgki n's lymphoma）（ＮＨＬ）患者の細胞に関するＶＣ濃度に対する腫瘍細胞の生存 率を示すプロットである； 図２は、ＶＣ及びＬＤＬ−ＶＣで処理した急性骨髄性白血病（acute myeloid leukaemia）（ＡＭＬ）患者の細胞に関するＶＣ濃度に対する腫瘍細胞の生存率 を示すプロットである； 図３は、以前に化学療法を受けていない慢性リンパ性白血病（chronic lympho cytic leukaemia）患者（ＣＬＬ−）の細胞に関するＶＣ濃度に対する腫瘍細胞 の生存率を示すプロットである； 図４は、以前に化学療法を受けた慢性リンパ性白血病（chronic lymphocytic leukaemia）患者（ＣＬＬ＋）の細胞に関するＶＣ濃度に対する腫瘍細胞の生存 率を示すプロットである； 図５は、ＶＣ及びＬＤＬ−ＶＣで処理した際の以前に処理された（ＰＴ）及び 以前に処理されていない（ｎｏ Ｐ Ｔ）ＡＭＬ患者の細胞におけるＶＣ濃度に対する腫瘍細胞の生存率を示すプロッ トである； 図６は、ＶＣ ＬＣ₅₀に対するＬＤＬ−ＶＣの治療指数（ＶＣ ＬＣ₅₀／ＬＤ Ｌ−ＶＣ ＬＣ₅₀）を示すプロットである； 図７から４２は、ＶＣおよびＬＤＬ−ＶＣ間の相違を示す、３６患者のそれぞ れに関するＶＣ濃度に対する腫瘍細胞の生存率を示す一連のプロットである； 図７から１５はＡＭＬ患者に関するものである； 図１６から２４はＮＨＬ患者に関するものである； 図２５から３３はＣＬＬ−患者に関するものである； 図３４から４２はＣＬＬ＋患者に関するものである；および 図４３は、ＤＭＳＯ中で配合されたタクソールと比較したＬＤＬ／タクソール 複合体の細胞毒性効果を示すプロットである。実施例１ ＬＤＬ／ＶＣ複合体の調製： ＬＤＬ／ＶＣ複合体を調製するにあたって、ＷＯ−Ａ−８６０７５４０号に記 載された一般的な方法に従った。すなわち、２０ｍｇのビンクリスチンを、２ｍ ｌの水及び４ｍｌの炭酸塩緩衝液（ｐＨ ９．６；１ｍｌの水当たり０．５９ｇ 炭酸水素ナトリウム及び０．３１ｇ 炭酸ナトリ ウムを含む）に溶解した。沈殿したビンクリスチンを４ｍｌの塩化メチレン中に 溶かし、遠心によって水層から分離した。２ｍｌ容の塩化メチレンを用いて２回 抽出を行った。３ｇの無水硫酸ナトリウムを添加し、過剰な水を除去し、液体を 濾過して固体材料を除去した。塩化メチレンを窒素下で蒸発させることによって 、乾燥を終了した。 残存したビンクリスチンを４ｍｌの塩化メチレン中に溶解し、それぞれに２０ ０ｍｇのスクロースを保護剤として含む５ｍｌの水溶液から予め凍結乾燥させた ２０ｍｇのＬＤＬを含む、４個のフラスコに分けた。塩化メチレンを窒素下の蒸 発によって除去した。 各フラスコにおける乾燥ＬＤＬ／ビンクリスチン複合体を５ｍｌのＰＢＳに溶 解し、濾過することによって不溶なビンクリスチンを除去し、ＶＣが２００μｇ ／ｍｌの濃度になるように希釈した。実施例２ 実験癌細胞に関するＬＤＬ／ＶＣまたは硫酸ＶＣの効果 鑑別染色細胞毒性（Differential Staining Cytotoxicity）（ＤｉＳＣ）アッ セイを用いて、ＬＤＬ−ビンクリスチン（ＬＤＬ−ＶＣ）及びビンクリスチン（ ＶＣ）に対する新鮮なヒト腫瘍細胞の感受性を測定した。材料および方法 培地 ＲＰＭＩ １６４０培地を用いてこれに２ｍＭのグルタミン及び８０ μｇ／ｍｌのゲンタシンを加え、 「洗浄培地」を作製した。２ｍＭのグルタミン及び８０μｇ／ｍｌのゲンタシン を加えたＲＰＭＩ １６４０培地に１０％ウシ胎児血清（foetal bovine serum ）を添加することによって、「完全培地」を作製した。薬剤 実施例１から得られたＬＤＬ−ＶＣを実験期間中４℃で貯蔵した。硫 酸ビンクリスチンをリン酸緩衝溶液（ＰＢＳ）に溶解し、試験システムにおいて 必要である最終濃度の１０倍にまで希釈し（最終濃度＝２０μｇ／ｍｌ＝２１． ６７μＭ）、必要となるまで凍結貯蔵（−７０℃）した。薬剤を、５種類の４倍 希釈（２０、５、１．２５μｇ／ｍｌ等）で２連で試験した。試料 慢性リンパ性白血病（chronic lymphocytic leukaemia）（ＣＬＬ） 、急性骨髄性白血病（acute myeloid leukaemia）（ＡＭＬ）及び非ホドキン病 リンパ腫（non-Hodgkin's lymphoma）（ＮＨＬ）の患者からの試料を、イギリス 国の病院から一晩輸送した後受けとった。血液試料はＥＤＴＡ中に収集し；骨髄 試料は保存薬を含まないヘパリン中に収集した。試験システム 単核細胞を、フィコール−ハイパクー（ficoll-hypaque）で 試料を遠心することによって単離した。細胞を洗浄培地で洗浄した後、１００μ ｌの完全培地中で８×１０⁵個／ｍｌの密度で薬剤と共にインキュベートした。 また、コントロールは、薬剤をリン酸緩衝溶液（ＰＢＳ）またはＬＤＬ賦形剤と 置換して行なった。３７℃で４ 日間インキュベートした後、細胞を顕微鏡用のスライド上に遠心し、染色した。 生きている腫瘍細胞の損失を、ＰＢＳのコントロールの割合（％）として測定し 、２連のスライドの結果をバード（Bird）ら（ロイコ レス(Leuk，Res.)、１０ 巻、（１９８６年）ページ４４５〜４４９）およびボサンクェット（Bosanquet ）（ランセット(Lancet)、３３１巻、（１９９１年）ページ７１１〜７１４）に よって記載された方法を用いて平均した。データの取扱い 腫瘍細胞の生存率（コントロールの割合（％））を、コン ピューター プログラム フィグピー（computer program Fig P）（バイオソフ ト(Biosoft)製、ケンブリッジ(Cambridge)）を用いてＶＣ濃度に対してプロット した。また、このプログラムを用いて下記の一般式を用いた曲線にデータを合わ せることによって、ＬＣ₅₀値（５０％の腫瘍細胞を殺すのに必要なＶＣ濃度）を 決定した： 腫瘍細胞の生存率（％） ＝１００／［１＋（［ＶＣ］／ＬＣ₅₀）^-F］ 但し、［ＶＣ］はＶＣ濃度であり、Ｆは傾斜度（slope factor）である。 相関係数（ｒ）及び有意値（Ｐ）もまたフィグ ピー（Fig P）を用いて算出 した。結果 表において、以前に化学療法を受けたＣＬＬ患者をＣＬ Ｌ＋と称し、また、以前に化学療法を受けなかった患者をＣＬＬ−と称する。試 験した３６試料の特性を表１に示す。ＡＭＬ試料のうち５試料は以前に化学療法 を受けていた（但し、ＶＣによるものはなかった）；８ＮＨＬ試料は以前に化学 療法を受けていた（うち、６試料は以前にＶＣによる治療を受けていた）；およ びＣＬＬ＋のうち３個はＶＣによる治療を受けていた。 生の結果を表２および図７〜４２に示す。これらの図には、コンピューターに よって算出された最適な曲線をも表わした。ＬＤＬコントロールの生存率は、す べての試料において１００％であった。ほとんどすべての場合において、ＬＤＬ −ＶＣがＶＣより活性が高いことが分かった。 表３及び図１〜４では、各病気群に関する平均結果（±ＳＥＭ）を示し、図５ では、ＡＭＬの結果を以前に処理されたもの（ｎ＝５）と以前に処理されなかっ たもの（ｎ＝４）に分けた。これらの図から、ＬＤＬ／ＶＣはＶＣよりも細胞毒 性効果が高く、また、ＮＨＬ及びＣＬＬの試料において最も高い効果が得られた 。 上記結果は、スチューデントの２−テイルド ｔ−検定（Student's 2-tailed t-test）によって０．０７８μｇ／ｍｌのＶＣにおける腫瘍細胞の生存率の結 果を分析することによって確認した（表４）。ＮＨＬ試料による結果が最も興味 深かった。これらの患者のうち６人がすでにＶＣを投与されており、彼等はＶＣ に耐性があったが、ＬＤＬ−ＶＣによって０．０７８μｇ／ｍｌ濃度でイン ビ トロでは腫瘍細胞が有意により多く殺された（Ｐ＜０．０２）。 表５に、ＶＣ及びＬＤＬ−ＶＣに関する算出されたＬＣ₅₀、および各試料に関 するＬＤＬ−ＶＣの治療指数（ＶＣ ＬＣ₅₀／ＬＤＬ−ＶＣ ＬＣ₅₀）を示す。 ほとんどすべての試料が１を超える治療指数を示すことから、ＶＣよりもＬＤＬ −ＶＣの方が高い効果を有することが示される。したがって、３６試料中２試料 （番号：１７６８及び１８５６）がＬＤＬ−ＶＣによる効果がより低いのみであ った。図６は、ＬＤＬ−ＶＣの治療指数をＶＣ ＬＣ₅₀に対してプロットしたも のである（ｎ＝２３）。これから、有意差があるとはいえないものの感受性のあ る試料に関する治療指数がより大きくなる傾向にあることが分かる。 多くの場合においてＶＣの曲線がＬＤＬ−ＶＣのものに比べて傾斜がきついこ とは興味深いことである。このことは、ＬＤＬ−ＶＣは、特に最も低いＶＣ濃度 において、有効性がより高いことを示唆するものである。 したがって、ＬＤＬ−ＶＣは、３６個の試験した試料のほとんど全てにおいて ＶＣよりもイン ビトロではより高い活性を示した。上記結果は、以前に化学療 法を受けており、以前に化学療法により処置されていない患者に比べてＶＣ耐性 が非常に高いＡＭＬ患者からの試料に関して特にいえる。また、ＮＨＬ患者から の試料に関しては、ＶＣによって以前処置された６人の患者のうち４人において 細胞毒性が高められいていた。実施例３ ＬＤＬ／タクソール複合体の調製 ＬＤＬ／タクソール複合体を調製するにあたって、ＷＯ−Ａ−８６０７５４０ 号に記載された一般的な方法に従った。すなわち、５．５ｍｇのタクソールを、 ２ｍｌの塩化メチレンに溶解し、これを２００ｍｇのスクロースを保護剤として 含む５ｍｌの水溶液から予め凍結乾燥させた２０ｍｇのＬＤＬを含むフラスコに 添加した。塩化メチレンを窒素下で蒸発することによって除去した。 薬剤 ＬＤＬ／タクソール複合体を１０ｍｌのＰＢＳに溶解し、０．２μｍの 濾過膜に通した。濾液をゲル濾過カラムに通すことによって不溶なタクソールを 除去し、タク ソールが１０μｇ／ｍｌの濃度になるようにＰＢＳで希釈した。この液を再度０ ．２μｍの濾過膜に通した。実施例４ 実験癌細胞に関するＬＤＬ／タクソールまたはタクソールの効果 メチルテトラゾリウム（methyl tetrazolium）（ＭＴＴ）アッセイを用いてＬ ＤＬ／タクソール及びＤＭＳＯ中に溶かしたタクソールに対するマウスの骨髄単 球性白血病細胞系（ＷＥＨＩ−３Ｂ）の感受性を測定した。材料および方法 培地 「完全ＲＰＭＩ １６４０」培地は、１０％ウシ胎児血清（foetal b ovine serum）、１μＭ ピルビン酸ナトリウム（sodium pyruvate）、５０ｉｕ ／ｍｌのペニシリン、５０μｇ／ｍｌのストレプトマシン及び２ｍＭのグルタミ ンを添加したＲＰＭＩ １６４０培地から構成される。薬剤 実施例３から得られたＬＤＬ／タクソールを、９６穴プレートにおい て「完全ＲＰＭＩ １６４０」培地で最終希釈率が１、０．８、０．６、０．４ 、０．２、０．１、０．０１及び０．００１μｇ／ｍｌになるように希釈した。 タクソールは、ＤＭＳＯに溶解して２０μｇ／ｍｌの濃度でストック溶液（stoc k solution）を作製し、これをさらに９６穴プレート中の最終希釈率が２、１． ６、１．２、０．８、０．４、０．２、０．０２及び０．００２μ ｇ／ｍｌになるように希釈した。細胞 ＷＥＨＩ−２Ｂ細胞を指数的成長相で集め、２．８×１０⁵細胞／ｍ ｌ「完全ＲＰＭＩ １６４０」培地の濃度で９６穴プレートにまいた。薬剤感受性試験 薬剤調製物の希釈液を、上記した最終薬剤濃度になるよう に、９６穴プレートの細胞懸濁液に添加した。 細胞を、５％ＣＯ₂及び９５％空気の雰囲気下で３７℃で４日間インキュベー トした。ＭＴＴアッセイを、古い増殖培地を新しい培地と交換しＭＴＴ溶液を最 終濃度が１ｍｇ／ｍｌになるように加えることによって、行った。３７℃で４時 間インキュベートした後、増殖培地をウェルから除去し、ＭＴＴ基質のホルマザ ン結晶をＤＭＳＯに溶解した。得られた溶液の吸光度を５５０ｎｍで読み、薬剤 の不存在下でインキュベートしたコントロール細胞から得られた値を用いて細胞 の生存率（％）を算出した。結果 各薬剤濃度における細胞の生存率（％）を図４３にプロットするが、これから ＬＤＬ／タクソール調製物はＤＭＳＯに溶解したタクソールよりも毒性が強く、 ＩＣ₅₀値（細胞増殖を５０％阻害するのに必要な濃度）はそれぞれ０．０４５及 び０．２μｇ／ｍｌであることが示された。興味深いことに、ＤＭＳＯ自身はか なり毒性を有するがＬＤＬ自身は毒性を有さない。

Claims (1)

1. 【特許請求の範囲】 １．癌の治療を目的とする薬剤の調製における、細胞毒性物質の活性がＬＤＬの 非存在下の活性より大きい、親油性の細胞毒性物質及び低密度リポタンパク質（ ＬＤＬ）の使用。 ２．物質の細胞毒性活性は少なくとも１０％増加する、請求の範囲第１項に記載 の使用。 ３．ＬＤＬを使用せずに投与した際には細胞毒性物質に耐性のある癌の治療を目 的とした薬剤の調製における親油性の細胞毒性物質および低密度リポタンパク質 （ＬＤＬ）の使用。 ４．該細胞毒性物質はＬＤＬと複合体を形成する、請求の範囲第１項から第３項 のいずれかに記載の使用。 ５．該細胞毒性物質はビンクリスチン、ドキソルビシン、ＡＤ３２、ＡＤ３１２ 、クロラムブシル、プレドニムスチン、ＷＢ４２９１、アクラシノマイシン、ニ トロソウレア、タクソール及びその類似体および他の親油性薬剤である、請求の 範囲第１項から第４項のいずれかに記載の使用。 ６．コレステリルエステルはＬＤＬ粒子中に細胞毒性物質と共に存在しない、請 求の範囲第１項から第５項のいずれかに記載の使用。 ７．ＬＤＬ粒子は、細胞毒性物質に加えて、コレステリルエステルを含む、請求 の範囲第１項から第５項のいずれか に記載の使用。 ８．癌は白血病またはリンパ腫である、請求の範囲第１項から第７項のいずれか に記載の使用。 ９．該薬剤は非経口投与を目的として配合された、請求の範囲第１項から第８項 のいずれかに記載の使用。 １０．該薬剤は静脈内投与を目的として配合された、請求の範囲第９項に記載の 使用。 １１．細胞毒性物質の有効量がＬＤＬを共に配合しない場合の細胞毒性物質の有 効量の８０％以下であることを特徴とする、有効量のＬＤＬと共に配合された細 胞毒性物質を患者に投与することからなる癌の治療方法。 １２．有効量のＬＤＬ中に配合された細胞毒性物質を患者に投与することからな る、薬剤耐性腫瘍の治療方法。 １３．細胞毒性物質が無毒性溶剤に不溶である、有効量のＬＤＬ中に配合された 細胞毒性物質を患者に投与することからなる癌の治療方法。