JPH0741494A - デオキシリボ核酸の固定化方法 - Google Patents
デオキシリボ核酸の固定化方法Info
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- JPH0741494A JPH0741494A JP20560693A JP20560693A JPH0741494A JP H0741494 A JPH0741494 A JP H0741494A JP 20560693 A JP20560693 A JP 20560693A JP 20560693 A JP20560693 A JP 20560693A JP H0741494 A JPH0741494 A JP H0741494A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 デオキシリボ核酸（以下、ＤＮＡと称す）の
機能性を変化させずにＤＮＡを水不溶化にする、すなわ
ちＤＮＡを固定化する。 【構成】 ＤＮＡのアルカリ金属塩とアルギン酸のアル
カリ金属塩との混合水溶液を塩化カルシウムで凝固させ
ることによりＤＮＡ−アルギン酸の複合体を得てＤＮＡ
を固定化する。
機能性を変化させずにＤＮＡを水不溶化にする、すなわ
ちＤＮＡを固定化する。 【構成】 ＤＮＡのアルカリ金属塩とアルギン酸のアル
カリ金属塩との混合水溶液を塩化カルシウムで凝固させ
ることによりＤＮＡ−アルギン酸の複合体を得てＤＮＡ
を固定化する。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、デオキシリボ核酸（以
下、ＤＮＡと称す）の固定化方法に関する。
下、ＤＮＡと称す）の固定化方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】従来よりＤＮＡは生体内で遺伝情報を保
存する役割を担っており生命現象にとって最も重要な物
質の一つであり、また、他の化合物と高度に特異的・選
択的な相互作用をしたり、紫外線吸収能を有するなどの
高機能性高分子であることが知られている。しかしこの
ＤＮＡはフイルム状に成形加工できる特性を有するが、
このものは水に容易に溶解するため、水の存在下ではＤ
ＮＡの機能性は十分利用できず、そのためＤＮＡの利用
分野が限られるという問題点があった。
存する役割を担っており生命現象にとって最も重要な物
質の一つであり、また、他の化合物と高度に特異的・選
択的な相互作用をしたり、紫外線吸収能を有するなどの
高機能性高分子であることが知られている。しかしこの
ＤＮＡはフイルム状に成形加工できる特性を有するが、
このものは水に容易に溶解するため、水の存在下ではＤ
ＮＡの機能性は十分利用できず、そのためＤＮＡの利用
分野が限られるという問題点があった。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】本発明は上記したＤＮ
Ａを利用する際の妨げとなっている問題点を解決し、Ｄ
ＮＡの機能性を変化させずに水不溶化にする方法、すな
わち、ＤＮＡの固定化方法を提供することを課題とする
ものである。本発明によって、ＤＮＡの固定化を容易に
行うことが可能となり、水の存在下においてもＤＮＡの
機能性を利用することができ、例えば、変異原性物質な
どのＤＮＡと親和性を有する物質を選択的に取り込むこ
とが可能となり、医療用の診断材料、治療材料などとし
ての用途が図られることになる。
Ａを利用する際の妨げとなっている問題点を解決し、Ｄ
ＮＡの機能性を変化させずに水不溶化にする方法、すな
わち、ＤＮＡの固定化方法を提供することを課題とする
ものである。本発明によって、ＤＮＡの固定化を容易に
行うことが可能となり、水の存在下においてもＤＮＡの
機能性を利用することができ、例えば、変異原性物質な
どのＤＮＡと親和性を有する物質を選択的に取り込むこ
とが可能となり、医療用の診断材料、治療材料などとし
ての用途が図られることになる。
【０００４】
【課題を解決するための手段】そこで、本発明者らはＤ
ＮＡの機能性を変化させずに水不溶性のＤＮＡを得る方
法を鋭意検討を重ねた結果、極めて簡単な操作で容易に
ＤＮＡを固定化する方法を見いだし、本発明を完成した
ものである。すなわち、本発明は、ＤＮＡのアルカリ金
属塩とアルギン酸のアルカリ金属塩との混合水溶液を２
価の金属含有化合物で凝固させることによりＤＮＡを固
定化することを特徴とするＤＮＡの固定化方法である。
ＮＡの機能性を変化させずに水不溶性のＤＮＡを得る方
法を鋭意検討を重ねた結果、極めて簡単な操作で容易に
ＤＮＡを固定化する方法を見いだし、本発明を完成した
ものである。すなわち、本発明は、ＤＮＡのアルカリ金
属塩とアルギン酸のアルカリ金属塩との混合水溶液を２
価の金属含有化合物で凝固させることによりＤＮＡを固
定化することを特徴とするＤＮＡの固定化方法である。
【０００５】以下、本発明を詳しく述べる。ＤＮＡを固
定化する担体として、多糖類又はその誘導体ほか各種高
分子化合物を検討した。すなわち、アルギン酸、ペクチ
ン酸、カラゲナン、寒天、カルボキシメチルセルロー
ス、カルボキシメチルキチン、ポリアクリル酸、ポリア
クリルアミド、光硬化性樹脂、ポリエチレングリコール
などを検討した。その結果、アルギン酸、ペクチン酸、
カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルキチン
などのカルボキシル基及び水酸基を含有する高分子化合
物を担体として用いたものが２価の金属含有化合物との
凝固性において適しており、その中で最も好ましいのは
アルギン酸であった。
定化する担体として、多糖類又はその誘導体ほか各種高
分子化合物を検討した。すなわち、アルギン酸、ペクチ
ン酸、カラゲナン、寒天、カルボキシメチルセルロー
ス、カルボキシメチルキチン、ポリアクリル酸、ポリア
クリルアミド、光硬化性樹脂、ポリエチレングリコール
などを検討した。その結果、アルギン酸、ペクチン酸、
カルボキシメチルセルロース、カルボキシメチルキチン
などのカルボキシル基及び水酸基を含有する高分子化合
物を担体として用いたものが２価の金属含有化合物との
凝固性において適しており、その中で最も好ましいのは
アルギン酸であった。
【０００６】アルギン酸は、グルロン酸とマンヌロン酸
を構成成分とする高分子の多糖であり、アルギン酸残基
（グルロン酸残基又はマンヌロン酸残基）にはカルボキ
シル基及び水酸基を含有している。また、アルギン酸
は、常温で２価の金属とのキレートによって容易に凝固
し、グルロン酸残基の含量の多いものはエッグボックス
と呼ばれる特殊な構造を有しており、２価の金属を取り
除いても水に不溶である。したがって、本発明における
アルギン酸のアルカリ金属塩はグルロン酸残基の含有量
が多いものを使用することが更に好ましい。
を構成成分とする高分子の多糖であり、アルギン酸残基
（グルロン酸残基又はマンヌロン酸残基）にはカルボキ
シル基及び水酸基を含有している。また、アルギン酸
は、常温で２価の金属とのキレートによって容易に凝固
し、グルロン酸残基の含量の多いものはエッグボックス
と呼ばれる特殊な構造を有しており、２価の金属を取り
除いても水に不溶である。したがって、本発明における
アルギン酸のアルカリ金属塩はグルロン酸残基の含有量
が多いものを使用することが更に好ましい。
【０００７】ＤＮＡナトリウム塩、ＤＮＡカリウム塩な
どのＤＮＡのアルカリ金属塩と、アルギン酸ナトリウム
塩、アルギン酸カリウム塩などのアルギン酸のアルカリ
金属塩との混合水溶液を作成する。この際に使用するＤ
ＮＡのアルカリ金属塩とアルギン酸のアルカリ金属塩と
の量比は、ＤＮＡのヌクレオチド残基とアルギン酸残基
との比で換算すると、ＤＮＡのヌクレオチド残基が１に
対してアルギン酸残基が１以上の場合、ＤＮＡの溶出が
起こりにくい状態で固定化される。アルギン酸残基に対
してＤＮＡのヌクレオチド残基比が２以上と大きくなる
ほどＤＮＡが溶出しやすく好ましくない。ＤＮＡのヌク
レオチド残基に対してアルギン酸残基比が１より更に増
大しても、固定化されたＤＮＡの機能性が失われるもの
ではない。最後の使用目的、形態によって、その量比を
１以上で適宜決定すればよい。
どのＤＮＡのアルカリ金属塩と、アルギン酸ナトリウム
塩、アルギン酸カリウム塩などのアルギン酸のアルカリ
金属塩との混合水溶液を作成する。この際に使用するＤ
ＮＡのアルカリ金属塩とアルギン酸のアルカリ金属塩と
の量比は、ＤＮＡのヌクレオチド残基とアルギン酸残基
との比で換算すると、ＤＮＡのヌクレオチド残基が１に
対してアルギン酸残基が１以上の場合、ＤＮＡの溶出が
起こりにくい状態で固定化される。アルギン酸残基に対
してＤＮＡのヌクレオチド残基比が２以上と大きくなる
ほどＤＮＡが溶出しやすく好ましくない。ＤＮＡのヌク
レオチド残基に対してアルギン酸残基比が１より更に増
大しても、固定化されたＤＮＡの機能性が失われるもの
ではない。最後の使用目的、形態によって、その量比を
１以上で適宜決定すればよい。
【０００８】ＤＮＡのアルカリ金属塩とアルギン酸のア
ルカリ金属塩との混合水溶液を２価の金属含有化合物に
より凝固させる際には、例えば、ペレット、ガラス板な
どの器具上で容易に操作することができる。本発明にお
ける２価の金属含有化合物は、例えば、塩化カルシウ
ム、炭酸カルシウム、硫酸銅、酢酸鉛などが挙げられる
が、好ましくはカルシウム含有化合物であり、最も好ま
しくは塩化カルシウムである。凝固剤として用いる２価
の金属含有化合物の形態は、例えば、２〜３％以上の２
価の金属含有化合物の水溶液を用いて行えば十分であ
り、室温で１０〜２０分程度で凝固は容易に進行して終
了する。
ルカリ金属塩との混合水溶液を２価の金属含有化合物に
より凝固させる際には、例えば、ペレット、ガラス板な
どの器具上で容易に操作することができる。本発明にお
ける２価の金属含有化合物は、例えば、塩化カルシウ
ム、炭酸カルシウム、硫酸銅、酢酸鉛などが挙げられる
が、好ましくはカルシウム含有化合物であり、最も好ま
しくは塩化カルシウムである。凝固剤として用いる２価
の金属含有化合物の形態は、例えば、２〜３％以上の２
価の金属含有化合物の水溶液を用いて行えば十分であ
り、室温で１０〜２０分程度で凝固は容易に進行して終
了する。
【０００９】以上により、ＤＮＡ−アルギン酸の複合体
を得てＤＮＡを固定化することができる。すなわち、Ｄ
ＮＡの機能性を損なわずにかつ水不溶性のＤＮＡである
特徴を有するＤＮＡ−アルギン酸の複合体を得ることが
できる。なお、ＤＮＡ−アルギン酸の複合体は、２価の
金属によって凝固したアルギン酸とＤＮＡとが相互にか
らみ合い多くの水素結合などでお互いに安定な構造を形
成して、その結果ＤＮＡが水不溶性になっているものと
考えられる。
を得てＤＮＡを固定化することができる。すなわち、Ｄ
ＮＡの機能性を損なわずにかつ水不溶性のＤＮＡである
特徴を有するＤＮＡ−アルギン酸の複合体を得ることが
できる。なお、ＤＮＡ−アルギン酸の複合体は、２価の
金属によって凝固したアルギン酸とＤＮＡとが相互にか
らみ合い多くの水素結合などでお互いに安定な構造を形
成して、その結果ＤＮＡが水不溶性になっているものと
考えられる。
【００１０】固定化したＤＮＡは極めて安定であり、取
り扱いやすい性質を有する。すなわち、ｐＨ領域におい
てｐＨ４〜１１の範囲で安定であり、塩化ナトリウムの
存在下では塩化ナトリウム濃度５モル以下では安定であ
り、また、温度条件では３０℃以下の場合に安定であ
る。すなわち、ＤＮＡの溶出はほとんど起こらない。な
お、ＤＮＡを固定化する際、２価の金属含有化合物で凝
固させるときに用いる器具の形状によって、ＤＮＡ−ア
ルギン酸の複合体は、平板状（フイルム）、球状、棒状
など様々な形状に変化させることができる。
り扱いやすい性質を有する。すなわち、ｐＨ領域におい
てｐＨ４〜１１の範囲で安定であり、塩化ナトリウムの
存在下では塩化ナトリウム濃度５モル以下では安定であ
り、また、温度条件では３０℃以下の場合に安定であ
る。すなわち、ＤＮＡの溶出はほとんど起こらない。な
お、ＤＮＡを固定化する際、２価の金属含有化合物で凝
固させるときに用いる器具の形状によって、ＤＮＡ−ア
ルギン酸の複合体は、平板状（フイルム）、球状、棒状
など様々な形状に変化させることができる。
【００１１】
【実施例】次に、実施例にて本発明を更に説明する。
【００１２】実施例１ ＤＮＡのヌクレオチド残基とアルギン酸残基との比が１
対１になるようにＤＮＡの固定化を行った。ＤＮＡとア
ルギン酸との量比は、ＤＮＡナトリウム塩の水溶液にお
ける２６０ｎｍでの吸光度からＤＮＡ濃度を算出し、ア
ルギン酸ナトリウム塩の水溶液をナフトレゾルシノール
による比色法で５８０ｎｍでの吸光度からアルギン酸濃
度を算出した。すなわち、ＤＮＡナトリウム塩（ユーキ
ファインズ社製、二重らせん構造を有する）１６０ｍｇ
とアルギン酸ナトリウム塩（プロタン社製、４−ＬＶ
Ｇ）１９９ｍｇとを水５ｍｌに溶解させた。次に、溶解
液の一部をガラス板（４ｃｍ×４ｃｍ）上にキャストし
た後、１０％塩化カルシウム水溶液中で室温２０分にて
凝固させた。次いで、メタノールで洗浄した後に乾燥す
ることにより、ＤＮＡの固定化した透明なフイルム状の
ＤＮＡ−アルギン酸の複合体を得た。
対１になるようにＤＮＡの固定化を行った。ＤＮＡとア
ルギン酸との量比は、ＤＮＡナトリウム塩の水溶液にお
ける２６０ｎｍでの吸光度からＤＮＡ濃度を算出し、ア
ルギン酸ナトリウム塩の水溶液をナフトレゾルシノール
による比色法で５８０ｎｍでの吸光度からアルギン酸濃
度を算出した。すなわち、ＤＮＡナトリウム塩（ユーキ
ファインズ社製、二重らせん構造を有する）１６０ｍｇ
とアルギン酸ナトリウム塩（プロタン社製、４−ＬＶ
Ｇ）１９９ｍｇとを水５ｍｌに溶解させた。次に、溶解
液の一部をガラス板（４ｃｍ×４ｃｍ）上にキャストし
た後、１０％塩化カルシウム水溶液中で室温２０分にて
凝固させた。次いで、メタノールで洗浄した後に乾燥す
ることにより、ＤＮＡの固定化した透明なフイルム状の
ＤＮＡ−アルギン酸の複合体を得た。
【００１３】実施例２ ＤＮＡのヌクレオチド残基とアルギン酸残基との比を１
対１のほか、２対１、１対２となるようにＤＮＡナトリ
ウム塩とアルギン酸ナトリウム塩との混合比を変えて、
実施例１で行った操作に従ってＤＮＡ−アルギン酸フイ
ルムを調製した。比較として、６０％が一重らせん構造
となったＤＮＡを用いた１対１のＤＮＡ−アルギン酸フ
イルムを、また、ＤＮＡを用いないアルギン酸のみから
なるフイルムも調製した。これらの各種フイルムに対す
る、ＤＮＡにインターカレーションする色素であるエチ
ジウムブロミドの２０℃水溶液における吸着量の経時的
変化を測定した。エチジウムブロミドは２００マイクロ
モル水溶液を調製して使用した。その結果を図１に示
す。
対１のほか、２対１、１対２となるようにＤＮＡナトリ
ウム塩とアルギン酸ナトリウム塩との混合比を変えて、
実施例１で行った操作に従ってＤＮＡ−アルギン酸フイ
ルムを調製した。比較として、６０％が一重らせん構造
となったＤＮＡを用いた１対１のＤＮＡ−アルギン酸フ
イルムを、また、ＤＮＡを用いないアルギン酸のみから
なるフイルムも調製した。これらの各種フイルムに対す
る、ＤＮＡにインターカレーションする色素であるエチ
ジウムブロミドの２０℃水溶液における吸着量の経時的
変化を測定した。エチジウムブロミドは２００マイクロ
モル水溶液を調製して使用した。その結果を図１に示
す。
【００１４】塩化カルシウムで凝固させたアルギン酸の
みのフイルムでは、エチジウムブロミドがごく微量にし
か吸着しなかった。ＤＮＡが一重らせん構造となってい
ると、同じ１対１のＤＮＡ−アルギン酸フイルムと比べ
てエチジウムブロミドの吸着量が少ない。これに対し
て、２対１、１対１、１対２のＤＮＡ−アルギン酸フイ
ルムでは、それぞれＤＮＡ含量当たりのエチジウムブロ
ミドの吸着量がＤＮＡ５ベースペア当たり約１分子でほ
ぼ一致した。これはＤＮＡの水溶液中での吸着のおよそ
２分の１に当たる。このことは、ＤＮＡ−アルギン酸フ
イルムになってもＤＮＡは二重らせん構造が保たれてい
てＤＮＡのエチジウムブロミドなどに対する親和力は損
なわれずに残存していることを示している。
みのフイルムでは、エチジウムブロミドがごく微量にし
か吸着しなかった。ＤＮＡが一重らせん構造となってい
ると、同じ１対１のＤＮＡ−アルギン酸フイルムと比べ
てエチジウムブロミドの吸着量が少ない。これに対し
て、２対１、１対１、１対２のＤＮＡ−アルギン酸フイ
ルムでは、それぞれＤＮＡ含量当たりのエチジウムブロ
ミドの吸着量がＤＮＡ５ベースペア当たり約１分子でほ
ぼ一致した。これはＤＮＡの水溶液中での吸着のおよそ
２分の１に当たる。このことは、ＤＮＡ−アルギン酸フ
イルムになってもＤＮＡは二重らせん構造が保たれてい
てＤＮＡのエチジウムブロミドなどに対する親和力は損
なわれずに残存していることを示している。
【００１５】実施例３ ＤＮＡナトリウム塩とアルギン酸ナトリウム塩との混合
比を変えて実施例１に従って調製した各種ＤＮＡ−アル
ギン酸フイルムを用いて、該フイルムからのＤＮＡの水
中への溶出を２０℃、ｐＨ７で経時的に測定した。その
結果を図２に示す。ＤＮＡのヌクレオチド残基とアルギ
ン酸残基との比が、８対１、４対１ではＤＮＡがかなり
溶出してくるのに対して、１対１ではほとんど溶出しな
かった。図２にはないが、１対２のＤＮＡ−アルギン酸
フイルムの場合では４８時間経過した後でもまったく溶
出しなかった。このことから、アルギン酸残基に対する
ＤＮＡのヌクレオチド残基比が大きいと不溶化していな
いＤＮＡが溶出してくるものと考えられる。
比を変えて実施例１に従って調製した各種ＤＮＡ−アル
ギン酸フイルムを用いて、該フイルムからのＤＮＡの水
中への溶出を２０℃、ｐＨ７で経時的に測定した。その
結果を図２に示す。ＤＮＡのヌクレオチド残基とアルギ
ン酸残基との比が、８対１、４対１ではＤＮＡがかなり
溶出してくるのに対して、１対１ではほとんど溶出しな
かった。図２にはないが、１対２のＤＮＡ−アルギン酸
フイルムの場合では４８時間経過した後でもまったく溶
出しなかった。このことから、アルギン酸残基に対する
ＤＮＡのヌクレオチド残基比が大きいと不溶化していな
いＤＮＡが溶出してくるものと考えられる。
【００１６】実施例４ 実施例１で調製したＤＮＡ−アルギン酸フイルム（１対
１）を使用して、各種ｐＨにおける該フイルムからのＤ
ＮＡの水中への溶出を２０℃、２４時間後に測定した。
なお各種ｐＨは１Ｎ塩酸及び１Ｎ水酸化ナトリウムを用
いて調整した。その結果を図３に示す。ｐＨ４〜１１で
はＤＮＡの溶出は見られず安定である。ｐＨ３ではＤＮ
Ａの溶出が若干起こり、ｐＨ２ではかなり溶出する。ま
た、ｐＨ１２以上ではＤＮＡの溶出が容易に起こる。
１）を使用して、各種ｐＨにおける該フイルムからのＤ
ＮＡの水中への溶出を２０℃、２４時間後に測定した。
なお各種ｐＨは１Ｎ塩酸及び１Ｎ水酸化ナトリウムを用
いて調整した。その結果を図３に示す。ｐＨ４〜１１で
はＤＮＡの溶出は見られず安定である。ｐＨ３ではＤＮ
Ａの溶出が若干起こり、ｐＨ２ではかなり溶出する。ま
た、ｐＨ１２以上ではＤＮＡの溶出が容易に起こる。
【００１７】実施例５ 実施例１で調製したＤＮＡ−アルギン酸フイルム（１対
１）を使用して、各種濃度の塩化ナトリウム水溶液にお
ける該フイルムからのＤＮＡの水中への溶出を２０℃で
測定した。その結果を図４に示す。５モル以下の塩濃度
では５日経過した後でもＤＮＡがほとんど溶出していな
い。
１）を使用して、各種濃度の塩化ナトリウム水溶液にお
ける該フイルムからのＤＮＡの水中への溶出を２０℃で
測定した。その結果を図４に示す。５モル以下の塩濃度
では５日経過した後でもＤＮＡがほとんど溶出していな
い。
【００１８】実施例６ 実施例１で調製したＤＮＡ−アルギン酸フイルム（１対
１）を使用して、各種温度における該フイルムからのＤ
ＮＡの水中への溶出を測定した。その結果を図５に示
す。３０℃以下であればＤＮＡは安定であり溶出しな
い。４０℃では少し溶出し、５０℃ではかなり溶出す
る。
１）を使用して、各種温度における該フイルムからのＤ
ＮＡの水中への溶出を測定した。その結果を図５に示
す。３０℃以下であればＤＮＡは安定であり溶出しな
い。４０℃では少し溶出し、５０℃ではかなり溶出す
る。
【００１９】
【発明の効果】本発明によれば、ＤＮＡの固定化が簡単
な操作で容易に行うことができる。ＤＮＡの機能性を利
用することにより、エチジウムブロミドのようなＤＮＡ
と親和性を有する変異原性物質などを水の存在下でも選
択的に取り込むことが可能となり、医療用の診断材料、
治療材料などとしての用途が図られる。
な操作で容易に行うことができる。ＤＮＡの機能性を利
用することにより、エチジウムブロミドのようなＤＮＡ
と親和性を有する変異原性物質などを水の存在下でも選
択的に取り込むことが可能となり、医療用の診断材料、
治療材料などとしての用途が図られる。
【図１】各種ＤＮＡ−アルギン酸フイルムに対するエチ
ジウムブロミドの吸着（２０℃）を示すグラフである。
ジウムブロミドの吸着（２０℃）を示すグラフである。
【図２】各種ＤＮＡ−アルギン酸フイルムからのＤＮＡ
溶出の経時変化（２０℃、ｐＨ７）を示すグラフであ
る。
溶出の経時変化（２０℃、ｐＨ７）を示すグラフであ
る。
【図３】各種ｐＨにおけるＤＮＡ−アルギン酸フイルム
（１対１）からのＤＮＡ溶出（２０℃、２４時間後）を
示すグラフである。
（１対１）からのＤＮＡ溶出（２０℃、２４時間後）を
示すグラフである。
【図４】各種濃度の塩化ナトリウム水溶液におけるＤＮ
Ａ−アルギン酸フイルム（１対１）からのＤＮＡ溶出の
経時変化（２０℃）を示すグラフである。
Ａ−アルギン酸フイルム（１対１）からのＤＮＡ溶出の
経時変化（２０℃）を示すグラフである。
【図５】各種温度の水中におけるＤＮＡ−アルギン酸フ
イルム（１対１）からのＤＮＡ溶出の経時変化（ｐＨ
７）を示すグラフである。
イルム（１対１）からのＤＮＡ溶出の経時変化（ｐＨ
７）を示すグラフである。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (72)発明者 西村 紳一郎 札幌市西区八軒３条西４丁目３番10−37号 (72)発明者 戸倉 清一 札幌市西区八軒５条西４丁目１番13号
Claims (4)
- 【請求項１】 デオキシリボ核酸のアルカリ金属塩とア
ルギン酸のアルカリ金属塩との混合水溶液を２価の金属
含有化合物で凝固させることによりデオキシリボ核酸を
固定化することを特徴とするデオキシリボ核酸の固定化
方法。 - 【請求項２】 デオキシリボ核酸のアルカリ金属塩とア
ルギン酸のアルカリ金属塩との量比が、デオキシリボ核
酸のヌクレオチド残基が１に対してアルギン酸残基が１
以上である請求項１記載のデオキシリボ核酸の固定化方
法。 - 【請求項３】 ２価の金属含有化合物が塩化カルシウム
である請求項１記載のデオキシリボ核酸の固定化方法。 - 【請求項４】 デオキシリボ核酸のアルカリ金属塩とア
ルギン酸のアルカリ金属塩との混合水溶液を２価の金属
含有化合物で凝固させて得た固定化デオキシリボ核酸。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP20560693A JPH0741494A (ja) | 1993-07-29 | 1993-07-29 | デオキシリボ核酸の固定化方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP20560693A JPH0741494A (ja) | 1993-07-29 | 1993-07-29 | デオキシリボ核酸の固定化方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH0741494A true JPH0741494A (ja) | 1995-02-10 |
Family
ID=16509654
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP20560693A Pending JPH0741494A (ja) | 1993-07-29 | 1993-07-29 | デオキシリボ核酸の固定化方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH0741494A (ja) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2006028059A (ja) * | 2004-07-14 | 2006-02-02 | Canon Inc | Ｄｎａ固定体、この製造方法及びこれを用いた捕集システム |
| JP2006298830A (ja) * | 2005-04-21 | 2006-11-02 | Canon Inc | Ｄｎａ複合体およびその製造方法 |
| US8402713B2 (en) | 2009-10-30 | 2013-03-26 | Mitsubishi Heavy Industries, Ltd. | Foundation for building in nuclear facilities and method for building foundation |
| US8674163B2 (en) | 2003-05-29 | 2014-03-18 | Canon Kabushiki Kaisha | DNA hybrids and environment cleaning system employing DNA hybrids |
-
1993
- 1993-07-29 JP JP20560693A patent/JPH0741494A/ja active Pending
Cited By (4)
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