JPH07264944A - 多肉植物の組織培養方法 - Google Patents
多肉植物の組織培養方法Info
- Publication number
- JPH07264944A JPH07264944A JP5854394A JP5854394A JPH07264944A JP H07264944 A JPH07264944 A JP H07264944A JP 5854394 A JP5854394 A JP 5854394A JP 5854394 A JP5854394 A JP 5854394A JP H07264944 A JPH07264944 A JP H07264944A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- plant
- tissue culture
- succulent
- culture
- cut
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Abstract
(57)【要約】 （修正有）
【目的】 多肉植物の組織培養方法を提供する。
【構成】 多肉植物Ｘの任意の箇所から、組織培養用の
植物体を採取して裁断し、該裁断した植物体を超音波洗
浄器９で表面殺菌した後、殺菌剤で処理し、さらに滅菌
水ｄで洗浄し、該滅菌操作をした植物体を置床し、該置
床した植物体を２０〜３５℃の温度、および３，０００
〜１０，０００ルクスの照度で、一日あたり１４〜１８
時間培養し、培養後の前記植物体の根を少し残る程度に
切断し、鉢上げを行なう。
植物体を採取して裁断し、該裁断した植物体を超音波洗
浄器９で表面殺菌した後、殺菌剤で処理し、さらに滅菌
水ｄで洗浄し、該滅菌操作をした植物体を置床し、該置
床した植物体を２０〜３５℃の温度、および３，０００
〜１０，０００ルクスの照度で、一日あたり１４〜１８
時間培養し、培養後の前記植物体の根を少し残る程度に
切断し、鉢上げを行なう。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、多肉植物の組織培養の
方法に関する。
方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】多肉植物とは、肥厚した葉や茎に多量の
水を貯えている植物をいい、観賞用植物として用いられ
ることが多い。例えば、金のなる木として人気のあるカ
ゲツなどは、古くから盆栽の材料として用いられてい
る。近年、さまざまな種類の多肉植物が、園芸店などで
高価な商品として販売されている。現在、多肉植物の生
産方法としては、図５に示すように、植物体Ｘから切り
出した芽を培養土１５にさし芽して増やす増殖法が行わ
れている。一方、突然変異体選抜による新種開発も行わ
れている。しかしながら、多肉植物に関しては、他の植
物で行われている組織培養を試みて商品化された例がな
い。
水を貯えている植物をいい、観賞用植物として用いられ
ることが多い。例えば、金のなる木として人気のあるカ
ゲツなどは、古くから盆栽の材料として用いられてい
る。近年、さまざまな種類の多肉植物が、園芸店などで
高価な商品として販売されている。現在、多肉植物の生
産方法としては、図５に示すように、植物体Ｘから切り
出した芽を培養土１５にさし芽して増やす増殖法が行わ
れている。一方、突然変異体選抜による新種開発も行わ
れている。しかしながら、多肉植物に関しては、他の植
物で行われている組織培養を試みて商品化された例がな
い。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】上記のように、多肉植
物の生産方法として、さし芽が一般的であるため、人気
のある品種の大量増殖ができない。また、さし芽による
と、生命力が比較的弱い斑入り植物（植物の葉などに地
色と異なる色がまだらに入っている植物）が生育し難い
という欠点がある。かかる課題を解決するために、本発
明者は、多肉植物に対し、他の種類の植物でさかんに行
われている従来の組織培養を試みた。図１、図２の各図
の下段に、従来の組織培養の方法を示す。従来の培養
は、９つの過程、すなわち、材料植物の選定Ａ、材料の
採取・裁断Ｂ、滅菌操作Ｃ、調整操作Ｄ、置床Ｅ、培養
Ｆ、発根操作Ｇ、馴化Ｈ、鉢上げＩから構成される。ま
た、滅菌操作Ｃは、表面殺菌、殺菌、洗浄から構成され
る。
物の生産方法として、さし芽が一般的であるため、人気
のある品種の大量増殖ができない。また、さし芽による
と、生命力が比較的弱い斑入り植物（植物の葉などに地
色と異なる色がまだらに入っている植物）が生育し難い
という欠点がある。かかる課題を解決するために、本発
明者は、多肉植物に対し、他の種類の植物でさかんに行
われている従来の組織培養を試みた。図１、図２の各図
の下段に、従来の組織培養の方法を示す。従来の培養
は、９つの過程、すなわち、材料植物の選定Ａ、材料の
採取・裁断Ｂ、滅菌操作Ｃ、調整操作Ｄ、置床Ｅ、培養
Ｆ、発根操作Ｇ、馴化Ｈ、鉢上げＩから構成される。ま
た、滅菌操作Ｃは、表面殺菌、殺菌、洗浄から構成され
る。
【０００４】しかし、従来の組織培養方法を用いた場
合、以下のような問題点がある。第一に、多肉植物は、
植物体内部の含水量が多いため、滅菌操作Ｃを行なうと
植物片１がぶよぶよになってしまい、生長できなくな
る。すなわち、７０％エタノール溶液ａで表面殺菌し、
１％次亜塩素酸ナトリウム溶液ｃで３０分以上処理する
間に、もはや生長できない状態となってしまう。第二
に、培養Ｆにおいて照度２，０００〜３，０００ルクス
では、光が弱すぎて、植物体は、生長が止まるか、もし
くは腐ってしまう。第三に、従来技術における発根操作
Ｇから鉢上げＩに至る操作を多肉植物に適用することが
できない。すなわち、発根操作Ｇに用いる発根用培地に
添加されている植物ホルモンによって、多肉植物のほと
んどの個体について枯死や形態の奇形が生じる。
合、以下のような問題点がある。第一に、多肉植物は、
植物体内部の含水量が多いため、滅菌操作Ｃを行なうと
植物片１がぶよぶよになってしまい、生長できなくな
る。すなわち、７０％エタノール溶液ａで表面殺菌し、
１％次亜塩素酸ナトリウム溶液ｃで３０分以上処理する
間に、もはや生長できない状態となってしまう。第二
に、培養Ｆにおいて照度２，０００〜３，０００ルクス
では、光が弱すぎて、植物体は、生長が止まるか、もし
くは腐ってしまう。第三に、従来技術における発根操作
Ｇから鉢上げＩに至る操作を多肉植物に適用することが
できない。すなわち、発根操作Ｇに用いる発根用培地に
添加されている植物ホルモンによって、多肉植物のほと
んどの個体について枯死や形態の奇形が生じる。
【０００５】上記の問題点の他、従来の組織培養におい
ては、植物体中、組織培養できる部分が限られており、
しかもその部分の調整が困難であるという欠点があっ
た。すなわち、図４中、茎頂４、えき芽５は組織培養が
可能であるが、若い葉６、茎７、根３は部分的に可能で
あり、古い葉８は不可能である。
ては、植物体中、組織培養できる部分が限られており、
しかもその部分の調整が困難であるという欠点があっ
た。すなわち、図４中、茎頂４、えき芽５は組織培養が
可能であるが、若い葉６、茎７、根３は部分的に可能で
あり、古い葉８は不可能である。
【０００６】
【課題を解決するための手段】本発明は、多肉植物の組
織培養において、（１）多肉植物の任意の箇所から、組
織培養用の植物体を採取して裁断し、（２）該裁断した
植物体を超音波洗浄器で表面殺菌した後、殺菌剤で処理
し、さらに滅菌水で洗浄し、（３）該滅菌操作をした植
物体を置床し、（４）該置床した植物体を２０〜３５℃
の温度、および３，０００〜１０，０００ルクスの照度
で、一日あたり１４〜１８時間培養し、（５）培養後の
上記植物体の根を少し残る程度に切断し、（６）鉢上げ
を行なうことからなる組織培養方法を提供する。
織培養において、（１）多肉植物の任意の箇所から、組
織培養用の植物体を採取して裁断し、（２）該裁断した
植物体を超音波洗浄器で表面殺菌した後、殺菌剤で処理
し、さらに滅菌水で洗浄し、（３）該滅菌操作をした植
物体を置床し、（４）該置床した植物体を２０〜３５℃
の温度、および３，０００〜１０，０００ルクスの照度
で、一日あたり１４〜１８時間培養し、（５）培養後の
上記植物体の根を少し残る程度に切断し、（６）鉢上げ
を行なうことからなる組織培養方法を提供する。
【０００７】図１、図２に本発明の植物組織培養方法を
示す。これらの図を参照しながら各ステップを説明す
る。材料植物の選定Ａ 植物の選定Ａに際しては、虹の玉やゴーラムなどの多肉
植物であって、色が濃く、元気のよいものを選定するの
が望ましい。組織培養に用いる部分は、植物体Ｘ中、任
意の部分である。従来の技術では、古い葉などを組織培
養することができなかったが、本発明においては、植物
体Ｘの全部分が培養の対象となる。材料の採取・裁断Ｂ 材料を採取し、裁断する。
示す。これらの図を参照しながら各ステップを説明す
る。材料植物の選定Ａ 植物の選定Ａに際しては、虹の玉やゴーラムなどの多肉
植物であって、色が濃く、元気のよいものを選定するの
が望ましい。組織培養に用いる部分は、植物体Ｘ中、任
意の部分である。従来の技術では、古い葉などを組織培
養することができなかったが、本発明においては、植物
体Ｘの全部分が培養の対象となる。材料の採取・裁断Ｂ 材料を採取し、裁断する。
【０００８】滅菌操作Ｃ 滅菌操作Ｃは、以下の３つの段階に分けて行う。第一段
階として、超音波洗浄器９を用いて１０〜３０秒間、表
面殺菌をする。第二段階として、界面活性剤（例えば、
Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎ（２０）Ｓｏｒｂｉｔａ
ｎ Ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ；和光製薬）をごく少量
（１滴程度）添加した１％次亜塩素酸ナトリウム溶液ｂ
を用いて１０〜２０分間攪拌処理をする。次亜塩素酸ナ
トリウム溶液の代わりにアンチホルミン等を用いてもよ
い。第三段階として、滅菌水ｄを用いて数回洗浄する。置床Ｅ 滅菌操作Ｃの後、置床Ｅをする。従来は、図１中に示す
ような植物体の調整操作Ｄが必要であったが、本発明に
おいては、不要である。調整操作Ｄを行なっても行なわ
なくても、植物体１の生長に差が認められないからであ
る。置床する際、培養容器内の培地１１は、容器の総量
の１／１０〜１／２（好ましくは１／５程度）に調整し
ておく。
階として、超音波洗浄器９を用いて１０〜３０秒間、表
面殺菌をする。第二段階として、界面活性剤（例えば、
Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎ（２０）Ｓｏｒｂｉｔａ
ｎ Ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ；和光製薬）をごく少量
（１滴程度）添加した１％次亜塩素酸ナトリウム溶液ｂ
を用いて１０〜２０分間攪拌処理をする。次亜塩素酸ナ
トリウム溶液の代わりにアンチホルミン等を用いてもよ
い。第三段階として、滅菌水ｄを用いて数回洗浄する。置床Ｅ 滅菌操作Ｃの後、置床Ｅをする。従来は、図１中に示す
ような植物体の調整操作Ｄが必要であったが、本発明に
おいては、不要である。調整操作Ｄを行なっても行なわ
なくても、植物体１の生長に差が認められないからであ
る。置床する際、培養容器内の培地１１は、容器の総量
の１／１０〜１／２（好ましくは１／５程度）に調整し
ておく。
【０００９】培地としては、ＭＳ培地（Ｍｕｒａｓｉｇ
ｅ ａｎｄ Ｓｋｏｏｇ，１９６２）、Ｂ５培地（Ｇａ
ｍｂｏｒｇ，１９６８）、Ｗｈｉｔｅ培地（Ｐ．Ｒ．Ｗ
ｈｉｔｅ，１９６３）などを用いる。これらの培地に
は、無機成分、ビタミン、アミノ酸類、糖類、ｐＨ調節
剤、固形化剤などが含まれる。無機成分としては、窒
素、リン、カリウム、カルシウム、マグネシウム、イオ
ウ、鉄、マンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、
ヨウ素、コバルト、ニッケル、アルミニウム、キレート
（ＥＤＴＡ）などが挙げられる。特に、無機窒素源とし
ての硝酸アンモニウム、硝酸カリウムなどを多量に含む
のが好ましい。例えば、ＭＳ培地である。ビタミンとし
ては、チアミン、ピリドキシン、ニコチン酸、ビオチ
ン、葉酸などが挙げられる。糖類としては、シュークロ
ース、グルコース、マンニトールなどを培地に０．１〜
１０重量％含ませる。特にシュークロースを３〜５重量
％添加すると生長が良くなる。ｐＨ調節剤としては、Ｍ
ＥＳなどが挙げられる。また、１０ＮのＫＯＨ、ＮａＯ
Ｈ、ＨＣｌを用いて、ｐＨを調節することもできる。こ
れらを用いて培地のｐＨを５．５〜６．５に調整する。
固形化剤としては、寒天（ａｇａｒ）、ゲランガム（ｇ
ｅｌｌａｎ ｇｕｍ，ゲルライト：Ｇｅｌｒｉｔｅ）な
どが挙げられる。寒天を用いる場合、寒天濃度は０．８
〜１．２重量％とする。ゲランガムを用いる場合、その
濃度は０．２〜０．４重量％とする。
ｅ ａｎｄ Ｓｋｏｏｇ，１９６２）、Ｂ５培地（Ｇａ
ｍｂｏｒｇ，１９６８）、Ｗｈｉｔｅ培地（Ｐ．Ｒ．Ｗ
ｈｉｔｅ，１９６３）などを用いる。これらの培地に
は、無機成分、ビタミン、アミノ酸類、糖類、ｐＨ調節
剤、固形化剤などが含まれる。無機成分としては、窒
素、リン、カリウム、カルシウム、マグネシウム、イオ
ウ、鉄、マンガン、亜鉛、ホウ素、モリブデン、塩素、
ヨウ素、コバルト、ニッケル、アルミニウム、キレート
（ＥＤＴＡ）などが挙げられる。特に、無機窒素源とし
ての硝酸アンモニウム、硝酸カリウムなどを多量に含む
のが好ましい。例えば、ＭＳ培地である。ビタミンとし
ては、チアミン、ピリドキシン、ニコチン酸、ビオチ
ン、葉酸などが挙げられる。糖類としては、シュークロ
ース、グルコース、マンニトールなどを培地に０．１〜
１０重量％含ませる。特にシュークロースを３〜５重量
％添加すると生長が良くなる。ｐＨ調節剤としては、Ｍ
ＥＳなどが挙げられる。また、１０ＮのＫＯＨ、ＮａＯ
Ｈ、ＨＣｌを用いて、ｐＨを調節することもできる。こ
れらを用いて培地のｐＨを５．５〜６．５に調整する。
固形化剤としては、寒天（ａｇａｒ）、ゲランガム（ｇ
ｅｌｌａｎ ｇｕｍ，ゲルライト：Ｇｅｌｒｉｔｅ）な
どが挙げられる。寒天を用いる場合、寒天濃度は０．８
〜１．２重量％とする。ゲランガムを用いる場合、その
濃度は０．２〜０．４重量％とする。
【００１０】ＭＳ培地（Ｍｕｒａｓｈｉｇｅ ＆ Ｓｋ
ｏｏｇ（１９６２）培地）の組成は、次の通りである。ＭＳ培地の成分表 （ｍｇ／Ｌ） ［無機塩類］ ＮＨ4 ＮＯ3 １６５０ ＫＮＯ3 １９００ ＣａＣｌ2 ・２Ｈ2 Ｏ ４４０ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ３７０ ＫＨ2 ＰＯ4 １７０ Ｎａ2 −ＥＤＴＡ ３７．３ ＦｅＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ２７．８ Ｈ3 ＢＯ3 ６．２ ＭｎＳＯ4 ・４Ｈ2 Ｏ ２２．３ ＺｎＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ８．６ ＫＩ ０．８３ Ｎａ2 ＭｏＯ4 ・２Ｈ2 Ｏ ０．２５ ＣｕＳＯ4 ・５Ｈ2 Ｏ ０．０２５ ＣｏＣｌ2 ・６Ｈ2 Ｏ ０．０２５ ［有機物組成］ ミオイノシトール １００ ニコチン酸 ０．５ ピリドキシン塩酸 ０．５ チアミン塩酸 ０．１ グリシン ２
ｏｏｇ（１９６２）培地）の組成は、次の通りである。ＭＳ培地の成分表 （ｍｇ／Ｌ） ［無機塩類］ ＮＨ4 ＮＯ3 １６５０ ＫＮＯ3 １９００ ＣａＣｌ2 ・２Ｈ2 Ｏ ４４０ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ３７０ ＫＨ2 ＰＯ4 １７０ Ｎａ2 −ＥＤＴＡ ３７．３ ＦｅＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ２７．８ Ｈ3 ＢＯ3 ６．２ ＭｎＳＯ4 ・４Ｈ2 Ｏ ２２．３ ＺｎＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ８．６ ＫＩ ０．８３ Ｎａ2 ＭｏＯ4 ・２Ｈ2 Ｏ ０．２５ ＣｕＳＯ4 ・５Ｈ2 Ｏ ０．０２５ ＣｏＣｌ2 ・６Ｈ2 Ｏ ０．０２５ ［有機物組成］ ミオイノシトール １００ ニコチン酸 ０．５ ピリドキシン塩酸 ０．５ チアミン塩酸 ０．１ グリシン ２
【００１１】次に、Ｂ５培地（Ｇａｍｂｏｒｇら（１９
６８））の組成を示す。Ｂ５培地の成分表 （ｍｇ／Ｌ） ［無機塩類］ ＮａＨ2 ＰＯ4 ・Ｈ2 Ｏ １５０ ＫＮＯ3 ２５００ （ＮＨ4 ）2 ＳＯ4 １３４ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ２５０ ＣａＣｌ2 ・２Ｈ2 Ｏ １５０ Ｆｅ−ＥＤＴＡ ２８ ＭｎＳＯ4 ・Ｈ2 Ｏ １０ Ｈ3 ＢＯ3 ３ ＺｎＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ２ Ｎａ2 ＭｏＯ4 ・２Ｈ2 Ｏ ０．２５ ＣｕＳＯ4 ０．０２５ ＣｏＣｌ2 ・６Ｈ2 Ｏ ０．０２５ ＫＩ ０．７５ ［有機物組成］ ニコチン酸 １ チアミン塩酸 １０ ピリドキシン塩酸 １ ミオイノシトール １００
６８））の組成を示す。Ｂ５培地の成分表 （ｍｇ／Ｌ） ［無機塩類］ ＮａＨ2 ＰＯ4 ・Ｈ2 Ｏ １５０ ＫＮＯ3 ２５００ （ＮＨ4 ）2 ＳＯ4 １３４ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ２５０ ＣａＣｌ2 ・２Ｈ2 Ｏ １５０ Ｆｅ−ＥＤＴＡ ２８ ＭｎＳＯ4 ・Ｈ2 Ｏ １０ Ｈ3 ＢＯ3 ３ ＺｎＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ２ Ｎａ2 ＭｏＯ4 ・２Ｈ2 Ｏ ０．２５ ＣｕＳＯ4 ０．０２５ ＣｏＣｌ2 ・６Ｈ2 Ｏ ０．０２５ ＫＩ ０．７５ ［有機物組成］ ニコチン酸 １ チアミン塩酸 １０ ピリドキシン塩酸 １ ミオイノシトール １００
【００１２】次に、Ｗｈｉｔｅ培地（１９６３）の組成
を示す。Ｗｈｉｔｅ培地の成分表 （ｍｇ／Ｌ） ［無機塩類］ Ｃａ（ＮＯ3 ）2 ・４Ｈ2 Ｏ ３００ ＫＮＯ3 ８０ ＫＣｌ ６５ ＮａＨ2 ＰＯ4 ・Ｈ2 Ｏ １６．５ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ７２０ Ｎａ2 ＳＯ4 ２００ Ｆｅ2 （ＳＯ4 ）3 ２．５ ＭｎＳＯ4 ・４Ｈ2 Ｏ ７ Ｈ3 ＢＯ3 １．５ ＺｎＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ３ ＫＩ ０．７５ ［有機物組成］ グリシン ３．０ ニコチン酸 ０．５ ピリドキシン塩酸 ０．１ チアミン塩酸 ０．１ システイン塩酸 １．０ パントテン酸カルシウム １．０
を示す。Ｗｈｉｔｅ培地の成分表 （ｍｇ／Ｌ） ［無機塩類］ Ｃａ（ＮＯ3 ）2 ・４Ｈ2 Ｏ ３００ ＫＮＯ3 ８０ ＫＣｌ ６５ ＮａＨ2 ＰＯ4 ・Ｈ2 Ｏ １６．５ ＭｇＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ７２０ Ｎａ2 ＳＯ4 ２００ Ｆｅ2 （ＳＯ4 ）3 ２．５ ＭｎＳＯ4 ・４Ｈ2 Ｏ ７ Ｈ3 ＢＯ3 １．５ ＺｎＳＯ4 ・７Ｈ2 Ｏ ３ ＫＩ ０．７５ ［有機物組成］ グリシン ３．０ ニコチン酸 ０．５ ピリドキシン塩酸 ０．１ チアミン塩酸 ０．１ システイン塩酸 １．０ パントテン酸カルシウム １．０
【００１３】培養Ｆ 次に、照度と温度を調整した条件下で、置床した材料を
培養Ｆする。多肉植物は、比較的高温を好む傾向がある
ため、温度を２０〜３５℃、好ましくは２５〜３０℃と
し、３，０００〜１０，０００ルクスの照度で一日あた
り１４〜１８時間照射して、静置培養を行なう。照射時
間が１４時間未満であると、生長速度が遅くなったり停
止したりし、１８時間を越えると、培養容器内が過湿と
なり、水滴が付き、生長阻害が生じる。馴化Ｈ 培養容器内で十分に生長した植物体Ｘ′を容器から取り
出し、外部環境に慣らしていく。従来技術では、発根を
促す発根操作Ｇを行なった後、高湿度下で馴化Ｈを行な
うが、本発明においては、多肉植物の根１３を少し残る
程度（約５〜１０ｍｍ程度）に切ってしまう。根を切る
ことによって、無処理のものに比べて外部環境に適した
強い根がはえやすくなる。このように発根操作を省略す
ることによって、鉢上げするまでの期間が２週間〜１ヶ
月程度短くなる。鉢上げＩ 最後に、鉢上げＩを行なう。すなわち、バーミキュライ
ト、パーライトなどを入れた鉢に植物体を植え付ける。
この際、植物体は、培養土中に深く植え込まずに、軽く
さす程度（植物体が立つ程度）に植える必要がある。深
植えすると、植物体が腐ったり、発根阻害を起こすから
である。
培養Ｆする。多肉植物は、比較的高温を好む傾向がある
ため、温度を２０〜３５℃、好ましくは２５〜３０℃と
し、３，０００〜１０，０００ルクスの照度で一日あた
り１４〜１８時間照射して、静置培養を行なう。照射時
間が１４時間未満であると、生長速度が遅くなったり停
止したりし、１８時間を越えると、培養容器内が過湿と
なり、水滴が付き、生長阻害が生じる。馴化Ｈ 培養容器内で十分に生長した植物体Ｘ′を容器から取り
出し、外部環境に慣らしていく。従来技術では、発根を
促す発根操作Ｇを行なった後、高湿度下で馴化Ｈを行な
うが、本発明においては、多肉植物の根１３を少し残る
程度（約５〜１０ｍｍ程度）に切ってしまう。根を切る
ことによって、無処理のものに比べて外部環境に適した
強い根がはえやすくなる。このように発根操作を省略す
ることによって、鉢上げするまでの期間が２週間〜１ヶ
月程度短くなる。鉢上げＩ 最後に、鉢上げＩを行なう。すなわち、バーミキュライ
ト、パーライトなどを入れた鉢に植物体を植え付ける。
この際、植物体は、培養土中に深く植え込まずに、軽く
さす程度（植物体が立つ程度）に植える必要がある。深
植えすると、植物体が腐ったり、発根阻害を起こすから
である。
【００１４】
【実施例】実施例１ 材料植物として、「虹の玉」および「ゴーラム」を選定
Ａした。植物体Ｘより葉１を採取Ｂした。次に、滅菌操
作Ｃの第一段階として、超音波洗浄器を用いて１０〜３
０秒間、表面殺菌をした。第二段階として、界面活性剤
（Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎ（２０）Ｓｏｒｂｉｔ
ａｎ Ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ；和光製薬）をごく少量
（１滴）添加した１％次亜塩素酸ナトリウム溶液１０〜
１００ｍＬ（滅菌する個体の数に応じて定めた）を用い
て１０〜２０分間攪拌処理をした。第三段階として、滅
菌水ｄを用いて数回洗浄した。滅菌操作Ｃの後、置床Ｅ
をした。置床の際、培養容器内の培地を、容器の総量の
１／５程度に調整した。培地としてＭＳ培地を用いた。
次に、温度を２５℃とし、３０００〜５０００ルクスの
照度で一日あたり１６時間照射して、４〜１５週間静置
培養を行なった。その後、培養容器内で十分に生長した
植物体Ｘ′を容器から取り出し、根を約５〜１０ｍｍ残
して切断した。次に、根を切断した植物体Ｘ′を培養土
に差して馴化Ｈを行なった。最後に、バーミキュライト
を入れた鉢に植物体を植え付けることによって、鉢上げ
を行なった。鉢上げするまでの期間は、４〜１５週間で
あり、従来と比べて２〜５週間程度短くなった。
Ａした。植物体Ｘより葉１を採取Ｂした。次に、滅菌操
作Ｃの第一段階として、超音波洗浄器を用いて１０〜３
０秒間、表面殺菌をした。第二段階として、界面活性剤
（Ｐｏｌｙｏｘｙｅｔｈｙｌｅｎ（２０）Ｓｏｒｂｉｔ
ａｎ Ｍｏｎｏｌａｕｒａｔｅ；和光製薬）をごく少量
（１滴）添加した１％次亜塩素酸ナトリウム溶液１０〜
１００ｍＬ（滅菌する個体の数に応じて定めた）を用い
て１０〜２０分間攪拌処理をした。第三段階として、滅
菌水ｄを用いて数回洗浄した。滅菌操作Ｃの後、置床Ｅ
をした。置床の際、培養容器内の培地を、容器の総量の
１／５程度に調整した。培地としてＭＳ培地を用いた。
次に、温度を２５℃とし、３０００〜５０００ルクスの
照度で一日あたり１６時間照射して、４〜１５週間静置
培養を行なった。その後、培養容器内で十分に生長した
植物体Ｘ′を容器から取り出し、根を約５〜１０ｍｍ残
して切断した。次に、根を切断した植物体Ｘ′を培養土
に差して馴化Ｈを行なった。最後に、バーミキュライト
を入れた鉢に植物体を植え付けることによって、鉢上げ
を行なった。鉢上げするまでの期間は、４〜１５週間で
あり、従来と比べて２〜５週間程度短くなった。
【００１５】比較例１ 実施例１と同様な植物体を用い、滅菌操作として、７０
％エタノール溶液で表面殺菌し、１％次亜塩素酸ナトリ
ウム溶液で３０分処理したところ、植物体がぶよぶよに
なり、培養作業の継続ができなくなった。比較例２ 照度を２０００ルクスとした他は、実施例１と同様にし
て培養したところ、生長が止まり、増殖しなかった。比較例３ 従来技術と同様な発根操作Ｇ〜鉢上げＩをした他は、実
施例１と同様にして培養したところ、枯死や形態奇形が
生じた。
％エタノール溶液で表面殺菌し、１％次亜塩素酸ナトリ
ウム溶液で３０分処理したところ、植物体がぶよぶよに
なり、培養作業の継続ができなくなった。比較例２ 照度を２０００ルクスとした他は、実施例１と同様にし
て培養したところ、生長が止まり、増殖しなかった。比較例３ 従来技術と同様な発根操作Ｇ〜鉢上げＩをした他は、実
施例１と同様にして培養したところ、枯死や形態奇形が
生じた。
【００１６】
【発明の効果】本発明によって、多肉植物の植物体の全
部分を対象にした組織培養が可能となる。また、図１お
よび図２に示すように、従来技術では９過程の処理が必
要であるが、本発明では、滅菌操作Ｃ後の調整操作Ｄお
よび発根操作Ｇが不要となり、７過程で済む。すなわ
ち、実体顕微鏡下での培養可能な部分の摘出という調整
操作Ｄが不要であるため、作業負担が軽減され、また、
発根操作Ｇが不要であるため、培養期間が２週間〜５週
間短縮される。さらに、滅菌操作Ｃの時間が短縮される
ため、殺菌剤による植物体への悪影響を最小限に抑える
ことができる。
部分を対象にした組織培養が可能となる。また、図１お
よび図２に示すように、従来技術では９過程の処理が必
要であるが、本発明では、滅菌操作Ｃ後の調整操作Ｄお
よび発根操作Ｇが不要となり、７過程で済む。すなわ
ち、実体顕微鏡下での培養可能な部分の摘出という調整
操作Ｄが不要であるため、作業負担が軽減され、また、
発根操作Ｇが不要であるため、培養期間が２週間〜５週
間短縮される。さらに、滅菌操作Ｃの時間が短縮される
ため、殺菌剤による植物体への悪影響を最小限に抑える
ことができる。
【図１】図１は、本発明および従来技術の培養方法（材
料植物の選定〜調整操作）を対比させて示す工程図であ
る。
料植物の選定〜調整操作）を対比させて示す工程図であ
る。
【図２】図２は、本発明および従来技術の培養方法（置
床〜鉢上げ）を対比させて示す工程図である。
床〜鉢上げ）を対比させて示す工程図である。
【図３】図３は、多肉植物の各部分を示す概念図であ
る。
る。
【図４】図４は、一般植物の各部分を示す概念図であ
る。
る。
【図５】図５は、さし芽をした状態を示す概念的断面図
である。
である。
Ｘ 材料植物（多肉植物） Ｘ′ 本発明によって得られる植物体 Ｙ 材料植物（一般植物） Ｙ′ 従来技術で得られる植物体 ａ ７０％エタノール溶液 ｂ １％次亜塩素酸ナトリウム溶液＋界面活性剤 ｃ １％次亜塩素酸ナトリウム溶液 ｄ 滅菌水 １ 葉（多肉植物） ２、７ 茎 ３、１４ 根 ４ 茎頂 ５ えき芽 ６ 葉（一般植物） ８ 古い葉 ９ 超音波洗浄器 １０、２１ 培養容器 １１ 培地（多肉植物） １２ 培地（一般植物） １３ 蛍光灯 １５ ビーカー １６ バーミキュライトまたはパーライト １７ ゴロ土 １８ ピンセット １９ メス ２０ シャーレ ２２ はさみ ２３、２４ 鉢
Claims (1)
- 【請求項１】 多肉植物の組織培養において、（１）多
肉植物の任意の箇所から、組織培養用の植物体を採取し
て裁断し、（２）該裁断した植物体を超音波洗浄器で表
面殺菌した後、殺菌剤で処理し、さらに滅菌水で洗浄
し、（３）該滅菌操作をした植物体を置床し、（４）該
置床した植物体を２０〜３５℃の温度、および３，００
０〜１０，０００ルクスの照度で、一日あたり１４〜１
８時間培養し、（５）培養後の上記植物体の根を少し残
る程度に切断し、（６）鉢上げを行なうことを特徴とす
る組織培養方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5854394A JPH07264944A (ja) | 1994-03-29 | 1994-03-29 | 多肉植物の組織培養方法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP5854394A JPH07264944A (ja) | 1994-03-29 | 1994-03-29 | 多肉植物の組織培養方法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH07264944A true JPH07264944A (ja) | 1995-10-17 |
Family
ID=13087367
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP5854394A Pending JPH07264944A (ja) | 1994-03-29 | 1994-03-29 | 多肉植物の組織培養方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH07264944A (ja) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103141387A (zh) * | 2013-03-08 | 2013-06-12 | 浙江省农业科学院 | 一种万象组织培养的方法 |
| CN109804884A (zh) * | 2018-09-19 | 2019-05-28 | 漳州市农业科学研究所 | 一种试管微扦插繁殖玉扇锦的方法 |
-
1994
- 1994-03-29 JP JP5854394A patent/JPH07264944A/ja active Pending
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN103141387A (zh) * | 2013-03-08 | 2013-06-12 | 浙江省农业科学院 | 一种万象组织培养的方法 |
| CN109804884A (zh) * | 2018-09-19 | 2019-05-28 | 漳州市农业科学研究所 | 一种试管微扦插繁殖玉扇锦的方法 |
| CN109804884B (zh) * | 2018-09-19 | 2021-10-26 | 漳州市农业科学研究所 | 一种试管微扦插繁殖玉扇锦的方法 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP5612605B2 (ja) | クローン苗の生産方法 | |
| US4353184A (en) | Method for asexual reproduction of coniferous trees | |
| JP2011135797A (ja) | 果実又は野菜の養液栽培方法 | |
| JP4661178B2 (ja) | 植物体の生産方法 | |
| HU183978B (en) | Process for preparing the propagative material of plants in tissue culture | |
| JP5337838B2 (ja) | 不定根形成促進剤、該不定根形成促進剤を含有する発根用培地、および、該不定根形成促進剤を用いるクローン苗の生産方法 | |
| Dalal et al. | In vitro cloning of apple (Malus domestica Borkh) employing forced shoot tip cultures of M9 rootstock | |
| KR20180040256A (ko) | 항산화제 처리에 의한 백합나무 순화묘의 생존율 및 생장량을 증진시키는 방법 | |
| Seyring | In vitro cloning of Helleborus niger | |
| Gorter | Vegetative propagation of Asparagus officinalis by cuttings | |
| JP3330365B2 (ja) | アツモリソウ属植物用培養液 | |
| JPH07264944A (ja) | 多肉植物の組織培養方法 | |
| EP1307096B1 (en) | Methods for preserving cut flowers using thidiazuron | |
| Marchant et al. | Embryo rescue, for the production of F 1 hybrids, in english rose | |
| CN112913694B (zh) | 一种用于蓝莓茎段组织快繁的培养基及组织快繁方法 | |
| Leal et al. | Micropropagation of Juglans regia L | |
| JP2013021989A (ja) | クローン苗の生産方法 | |
| KR101944011B1 (ko) | 칠보치마의 조직배양 방법 | |
| Ponsonby et al. | In vitro establishment of Picea pungens f. glauca and P. sitchensis seedling rootstocks with an assessment of their suitabilities for micrografting with scions of various Picea species | |
| CN105010133B (zh) | 光皮桦植物组织培养方法及其培养基 | |
| JP4316221B2 (ja) | シクラメン塊茎の生産方法、この方法に使用する液体培地、およびシクラメン苗の生産方法 | |
| Batukaev et al. | In vitro microclonal propagation of strawberries and ex vitro adaptation | |
| CN108184671A (zh) | 一种番茄快速繁殖并提高炼苗成活率的方法 | |
| CN115281092B (zh) | 一种利用七子花种子胚的繁育方法 | |
| JPH03119931A (ja) | アーモンド樹の育成方法 |