JPH06511390A - 抗核抗体検査用マクロファージ系細胞株、マクロファージ系細胞株を利用した抗体検出方法およびスライドの調製 - Google Patents

抗核抗体検査用マクロファージ系細胞株、マクロファージ系細胞株を利用した抗体検出方法およびスライドの調製

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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 r!ctx抗体検査用マクロファージ系wtm株、マクロファージ系細胞株を利 用した抗体検出方法およびスライドの調製発明の分野 本発明はマクロファージ系細胞株IT−1,ならびにこれを利用して抗核抗体( anti−nuclear antibody+以下rANAJ と略称する) を検出する方法および抗核抗体検出用スライドを製作する方法に関する。
発明の背景 血清的自家抗体の存在を検査するANA検査は、自家免疫疾患である全身性エリ テマトーデスCsystemic 1upus erytbematosus、 以下rsLEJ と略称する)。
シェーグレン(Sjogren)症候群、硬皮症、混合性結合組織病、リウマチ 性関節炎、小児慢性多発性関節炎、その他の自己免疫性疾患などの全身性リウマ チ疾患に適用される。
ANA検査によって一次的に自己免疫疾患と判定された患者は、DNA、ヒスト ン、抽出性核抗原(extractable nuclear anti(an : ENA)たとえばSm(Smith)、 nRN P(nuclear r ibonucleoprotefn)、S S −A(Sjogren ass oci≠狽■■ antigen A )、5S−B、5cl−70,Jo−1,rRNPなとの 抗原に対する具体的な抗体検定試験を行なって、その病名を決定する。
抗体の特性と力価は、1982年にAF−CDC(ムrthritis Fou ndatfon−Centerg for Disease Control) の「抗核抗体に関する血清標準化会議」[Arthritis Rheu++、  25.1003.1982]で開発した標準血清によって標準化され、同時に 、免疫蛍光方法を利用する検査において蛍光の等級がきめられたスライドを利用 することによって、蛍光顕微鏡の不一致または買的差が改善された。 また、フ ルオレシン・イソチオシアネート(FITC)と結合した抗血清の濃度。
蛍光物質と蛋白質との混合比なども改善された〔^−,J、 Cl1n、 Pa thol、 82.57゜1984)。
自己免疫疾患の診断において不可欠なF A N A (Fluor@5cen t Antinuclearantibody)検査にとって最も重要なことは 、基質の選択である。 従来のANA検査において、実験動物の肝臓、腎臓など 臓器の冷凍組織切片(cryoitat tissuegeccioa)が基質 として眉いられたが、最近は培養された人間由来細胞が主に使用され、HEp− 251胞(ATCCCCL−23)がその代表である。 このようにして、種− 属の特異性や臓器の特異性を克服することができた。
培養された細胞は、冷凍組織の切片より通常核が大きく、#定のcX抗原の含有 量が多く多様であり、蛍光様相の判読がやさしいので、偽陰性判定の可能性を著 しく小さくする。 細胞株をスライドで培養すると分裂中の細胞が観察され、こ れによって拭動原体(anti−centromere)抗体、増殖細胞だけに 見られる抗PCNA (proliferatlng cell nuclea r antigen)抗体など、従来診断と鑑別がむずかしかった蛍光様相を、 より客観的かつ正確に判断できる。
しかしながら、HEp−2細胞は人体に由来する細胞であるが、喉頭癌から分離 した履artssであるため、単純スライドに培養する際に、その付着率が思わ しくない、11た、いわゆるANA陰性狼蒼(ANA negative lu pug)と呼ばれる患者群からは、ANAが検出されない欠点がある。
以上の欠点を改良するために本発明者は、新しい基質の開発に着手した結果。
正常な人の骨髄から誘導したマクロファージ株(以下rIT−IJと略称する。
KCCM−10038)が、上記した欠点がなく、ANA検査の基質として有用 であることを発見して本発明を完成するに至った。
ANA検査用基質としてマクロファージを研究することになった理論的背景は次 のようである。
第一に、マクロファージは免疫反応で抗原伝達細胞Cantigen pres enting cell)の作用をするので、自身(self)と非0(non −self )を区別するためにも自己免疫抗原を絢しくそして豊富に含有する 可能性が大なことである。
第二に、マクロファージはガラス付着率が高いので、基質用スライドの製作が簡 便で経済的なことである。
第三に、IT−1細胞が腫瘍に由来する細胞ではないので・ANA検査の偽陰性 の可能性が減少できることである。
従来は、マクロファージは培養によっては細胞株として株立されないというのが 通説であった。 しかし1本発明者は後述する実施例にもみるように、細胞株の 株立に成功し本発明を完成した。
発明の要約 従って、本発明の目的は、ANA検査で基質として用いられるマクロファージ系 Hi胞株を提供することである。
本発明のいまひとつの目的は、マクロファージ系細胞株を利用して抗核抗体を検 出する方法を提供することである。
本発明のなお別の目的は、マクロファージ系iitm株を固定したANA検査検 査ラスライド供することである。
本発明の他の目的および利点は、以下に詳細な記述が進むにつれて明らかになる であろう。
発明の詳細な説明 本発明において、マクロファージ系細胞株の株化に用いるマクロファージは。
正常な人の骨髄から無菌条件下、穿刺採取されたものである。
分離されたマクロファージは、5〜20%の牛脂児の血清を補充したRPMI− 1640培地で継代培養することによって細胞株を確立できる。 また。
Ham’s F、、Km地またはDulbecco’s Modified E azle’s培地においても培養が可能である。 とくにビタミンなどの添加剤 を要しないで、10%牛脂児の血清を加えたRPMI−1640でl X I  O’cells/mlの濃度を保ち0.1mlを接種すれば、5Baには9芽が 密生し、その増殖力も旺盛である。
上記の方法によってつくられた細胞株を、rlT−IJと命名した。
マクロファージ細胞株は、ANA検査に利用するとき、ガラススライドに固定す ることができる。11定化の方法は通常のN胞担体固定化方法で実施することが できる。 たとえば、培養されたIT−1細胞培養液を、牛脂児の血清を補った RPMI−1640培地で稀釈したのちスライドに接種し、30〜42℃の培養 器で18〜30時間はど培養し、有機極性溶媒たとえば、メタノール、エタノー ル、アセトンなどを使って固定化する。
マクロファージ細胞株IT−1を用いてANA検査用スライドを製作すれば、ガ ラスへの付着性がすぐれ、不瓜品が減じ、接種細胞株と培養液の量および培養時 間が節約されるなど、多くの利点がある。
IT−1を用いたANA検査は次のように実施することができる。すなわち。
IT−1と標準血清を接触させた後、FITC−ラベル化した人のガンマグロブ リンに対して兎の抗体を反応させ、蛍光顕微鏡で観察する。
以下、本発明により提供されるIT−1ll胞株の特性を記述する。
1、形態 原上皮細胞(epithslold)形態が主であり、マクロファージ形(ma crophage−11ke)および多核巨大細胞形態も時として見うけられる 。
2、サイズ HEp−2細胞にくらべ1.5倍の大きさである63、細胞化学検査(cyto chesistry; Co1or At1as or C11nical [ Iematology so。
Igaku−Shoin、 19861α−ナフチルアセテートエステラーゼ: 強い酸性定期的Ac1d−5chlff :陽性ナフトールASDクロロアセテ ートエステラーゼ:陰性ペルオキシダーゼ、陰性 スーダンブラックB、陰性 4、リゾソーム活性能(lysososal activity)アクリジンオ レンジ染色において、核の周辺に多数のオレンジレッド色のリゾソーム顆粒が観 察された(Atlas or Blood Ce1ls 195. Lea &  Febiger。
+988)。
5、Fc収容体および責食作用(phagocytosis)免疫グロブリンG (IgG)でおおわれているラテックス粒子(Behring社。
ドイツ)とともに培養したところ、IT−1細胞の周辺に多数のラテックス粒子 が結合されることと、寅食されることが観察された。
Zena Werbの分類法(Basical and Cl1nical l ssunology+ 98.^ppleton andLange、 198 7)によれば、IT−1はマクロファージ系列の細胞であることが明らかである 。
またラッキー社のガンマインターフェロン(LBD−001)が1000単位/ ml添加された際、IT−1の増殖が停止し、HLA−DRの出現が増加するこ とが観察された。Beckton−Dickinson社のAnti−MLA− DR−FITC5jlをRPMI培地で1:10の比で稀釈し、IT−1!I胞 浮蓄液50g1(IX I O’)に入れ、氷水浴の中で30分間反応させ、P BS (リン酸塩緩衝生理食塩水)で洗浄し、蛍光顕微鏡で観察。
上記のすべての記述により、IT−1は増殖能力のある反応性マクロファージ細 胞であることが確認される。
図面の簡単な説明 第1図は1本発明により提供されるIFスライドを実寸大で示す、 図において 、Aはガラス板をあられし、B(小円で示した)はスライド上に固定されたマク ロファージ系細胞をあられす。
以下実施例を示して本発明をより詳しく説明する。 ただし本発明はこれらの例 に限られるものではない。
実 施 例 LIL五上 マクロファージ細胞の分離および細胞株の株化正常な人の骨髄を無 −条件下に穿刺して骨髄細胞を採取し、シグマ社のヒストバク(Histopa que) 1077を入れである遠心分離チューブに注ぎ、20℃の温度と40 0Gの速度で30分間遠心分離し、単核細胞だけを得た。 この単核細胞を、1 0%の牛胎児血清を加えたRPMI−1840CGibco社製品)15slを 含有している75adの培養フラスコに接種し、5%の炭酸ガスを含むように調 整された37℃の培養器で3日間培養したのち、付着しないリンパ球などの細胞 を培養液で洗浄して取り除いた。 培養器に付着した細胞は、20%の牛胎児血 清を添加したRPMI−1640で継続的に増殖し、7日後トリプシンを用いて 処理した。 培養増殖は2個のフラスコで繰返えされ、5日目の終りごろ二度目 のトリプシン処理を行ない、4個の培養器に9株して培養した。 培養液を3日 ごとに換え、28日経通後は牛胎児の血清濃度を10%に減じた培養液で培養し た。 この方法でマクロファージ系細胞株IT−1を得る二とができた。
二の細胞株は1992年7月15日付で韓国種菌協会(Korean Fede ration ofCuUure Co11ection or Micro− organism)にKFCC−10772号で寄託された。 この寄託は、1 993年7月14日付でブタベスト条約にもとづく国際寄託に切換えられ、KC CM−10038の受託番号が与えられた。
寒凰更主 スライドの準備 培養されたIT−1細胞液を2 X 10’cell/mlになるように10% の牛胎児血清を加えたRPMI−1640培地で稀釈し、免疫蛍光法に用いるた めのスライド(以下「工Fスライド」と略称する)を滅菌し、孔ごとに糟釈液3 0#Iを接種した。 5%炭酸ガスに調整された37℃の培養器で24時間培養 した。 各スライドから培養液を除き、PBSで洗浄し、95%メタノール中に 10分間浸して細胞を固定した。 このように調製したスライドは、4℃で一年 はど保存することができた。
1111 HEp−211胞を利用したスライドの準備市販されているANA検 査用スライドがHEp−2細胞を用いているので、この細胞株を培養してスライ ドを調製する方法を比較例にとりあげた。
HEp−2細胞をl X I O’″cell/mlになるように仔牛の10% 血清が添加されたRPMI−1840培地で稀釈した後、IFスライドに30i 1を接種した。
細胞が沈んで付着した時、1201の培地な答礼に9株してスライドの表面が培 地でおおわれるようにし、5%炭酸ガスに調整された37℃培養器で48時間培 養した。 培地を取り除いた後、PBSで洗浄し、95%メタノールに10分間 浸して固定した。
mユ 細胞株を用いたANA検査 AF−CDC標準血清#1.#2.#3.#6を2倍ずつに稀釈して、120〜 l :1280の比の血清溶液とした。 それぞれ30jlをIT−1およびH Ep−2スライドに与え、高湿度下、30分間、室温で反応させた。 反応後、 PBSを満たしたコブラン瓶に入れ、シェーカーにより200 rpmで振とう し。
洗浄して乾燥した。 1:40に稀釈されたFITCラベル化のヒトガンマグロ ブリンに対する兎の抗体(Dako社製品)30slを各スライドに適用して、 高湿度下、室温で30分間反応させた。 PBSで10分間洗い、0.2エバン スブルー溶液(防腐剤を加えて4℃で保管する)でカウンター染色を施し、再び PBSで洗浄した。 残ったPBSを濾紙で吸い取り、グリセロール−PBS溶 液を用いて蛍光顕微鏡下で400倍で観察した。
顕微鏡で観察した蛍光様相は、標準血清#1においては休息細胞と分裂細胞が。
核全体または周囲だけを染められ、標準血清#2と#3は部分的に染められない ところのある斑点的形態であり、標準血清#6においては核小体(nucleo lar)型に着色されていた+ 標準血清#2.#3.#f3の上記結果は、休 息細胞において観察されたことである。 これらの結果は、AP−CDCで提示 した蛍光様相と一致する。
さらに、蛍光の強度をつぎのように区分して、稀釈倍率に伴う力価を比較した。
結果を表1に示す。
等級 蛍光の強度 4+ 強い 3+ 十分 2+ 識別可能 1+ かろうじて識別可能 表1によれば、HEp−2細胞の場合、標準血清#1と#2.#6は、1:32 0、#3はL : 640の稀釈比率において充分な蛍光を発し、IT−1の場 合も同じ様相を示した。 AF−CDCでは、標準血清#1.#3に対して1: 160〜l:640、#2と#6に対してはl:80〜l:320の患者血液稀 釈比を推めている。 HEp−211胞およびIT−1細胞の両細胞とも、AF −CDC推薦の範囲内に入った。
表I AF−CDC標準血清に対するタイターの比較AF−CDC標準血清 稀釈倍率 11 #2 #3 #6 ■と2 ITゴ 魅と2 ITユ 匹と2 1T−1町1ゴエ ■ユ1:20  4+ 4+ 4+ 4+ 4+ 4+ 4+ 4+1:40 4+ 4+ 4+  4+ 4+ 4+ 4+ 4十180 4+ 4+ 4・ト 4+ 4+ 4 + 4+ 4+1+160 4+ 4+ 4+ 4+ 4+ 4+ 3+ 4+ 1+320 4+ 3+ 3+ 3+ 4+ 3+ 3+ 3+に640 1+  2+ 1+ 2+ 3+ 3+ 2+ 2+1:+280 − 1+ 1+  −2+ 1+ 1+ 1+その他の標準血清(AF−CDC標準血清#4.#5 .#7.#8および#9)をIT−1スライドに適用し各血清に関しあられれた 蛍光パターンを、上記と同様にして観察した。 この試験においては、AF−C DC#4と#5は1:1280まで斑点形態、#7は1:320まで斑点形態、 #8は1:1280まで分散的斑点形態で分裂細胞にも陽性を示し、#9はl: 640まで斑点形態であった。
また、 I闘unoviiion社の標準血清中、抗Jo−1は1°320まで 、抗rRNPは1:640までみな1iIl!!買(cytoplas++ie )型が観察された。
顕微鏡で観察する時、スライドの12個の孔にすべて細胞が付着していれば判読 が容易であるが、はがれていった不良率は、IT−1細胞においては9/60o 、HEp−211胞において95/600であった。 これによって付着率が優 秀であることが知られる。 かつ、スライドの上に接種する細胞の数と培養液を 115に、また培養時間も半分に減らすことができた。
去息五土 臨床実験での応用結果 ANA検査において偽陰性を示す傾向のある、抗5S−A/Ro抗体だけをもっ ている患者67名(二重免疫拡散法で確1りの血清を採取して実験したところ。
IT−1においては100%、HEp−211胞においては88%のANA陽性 亭を示した。
患者群 SLE!PP@61名(グループA)、全身性硬化症患者20名(グル ープB)、混合性結合組織病18名(グループC)、を対象にして実験したとこ ろ、HEp−2においてそれぞれ95%、85%、100%の陽性、IT−1に おいてはそれぞれ100%、95%、100%の陽性を示し、本発明の細胞株を 用いた場合には正確なANA検査が可能であることを証明した。
本明細書に記載された実施例および実施態様は単に例示的なものであって、本発 明が属する技術分野で通常の知識を有する者であれば、これらの例を基礎にして 多くの変形と変更を加えることができようが、このような変形と変更は、本発明 の要旨および範囲と、添付の特許請求の範囲内に含まれるものである。
フロントページの続き (81)指定国 EP(AT、BE、CH,DE。
DK、ES、FR,GB、GR,IE、IT、LU、MC,NL、PT、SE) 、0A(BF、BJ、CF、CG、 CI、 CM、 GA、 GN、 ML、  MR,NE、 SN。
TD、 TG)、 AU、 BB、 BG、 BR,CA、 CZ。
F I、 HU、J P、 LK、 MG、 MN、 MW、 No、 NZ、  PL、 RO,RU、 SD、 SE、 SK、 UA、 US

Claims (7)

    【特許請求の範囲】
  1. 1.抗核抗体を検出するために使用するマクロファージ系細飽体。
  2. 2.マクロファージ系細飽株がIT−1(KCCM−10038)であることを 特徴とする請求の範囲第1項のマクロファージ系細飽株。
  3. 3.マクロファージ系細飽株を被験対象から採取した体液試料と接触させ、次い でフルオレシンイソチオシアネートと反応させることを特徴とする、体液中の抗 核抗体を検出する方法。
  4. 4.マクロファージ系細飽株がIT−1(KCCM−10038)であることを 特徴とする請求の範囲第3項の方法。
  5. 5.被験対象が自己免疫疾患を保有するものであることを特徴とする請求の範囲 第3項の方法。
  6. 6.孔(Well)に固定されたマクロファージ系細飽株を含むことを特徴とす る、抗核抗体検出用のスライド。
  7. 7.マクロファージ系細飽株がIT−1(KCCM−10038)であることを 特徴とする請求の範囲第6項のスライド。
JP50436094A 1992-07-21 1993-07-21 抗核抗体検査用マクロファージ系細胞株、マクロファージ系細胞株を利用した抗体検出方法およびスライドの調製 Expired - Lifetime JP3721581B2 (ja)

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