JPH06509542A - オリゴマーを合成するための改良法 - Google Patents
オリゴマーを合成するための改良法Info
- Publication number
- JPH06509542A JPH06509542A JP3518321A JP51832191A JPH06509542A JP H06509542 A JPH06509542 A JP H06509542A JP 3518321 A JP3518321 A JP 3518321A JP 51832191 A JP51832191 A JP 51832191A JP H06509542 A JPH06509542 A JP H06509542A
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- nucleoside
- water
- group
- equivalents
- oxygen
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Pending
Links
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C07—ORGANIC CHEMISTRY
- C07H—SUGARS; DERIVATIVES THEREOF; NUCLEOSIDES; NUCLEOTIDES; NUCLEIC ACIDS
- C07H21/00—Compounds containing two or more mononucleotide units having separate phosphate or polyphosphate groups linked by saccharide radicals of nucleoside groups, e.g. nucleic acids
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Saccharide Compounds (AREA)
- Heterocyclic Compounds That Contain Two Or More Ring Oxygen Atoms (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
オリゴマーを合成するための改良法
発明の背景
本発明はオリゴマーを合成するための改良法に関する。
オリゴマーの化学的合成法、特にデオキシヌクレオシドから構成されるオリゴマ
ーの合成法が開発されている。これらの方法としてはホスホトリエステル法及び
亜リン酸トリエステル法が挙げられる。これらの合成法は溶液中で行うことがで
き、それによりダイマーが得られ、次いでそのダイマーはクロマトグラフィーに
より精製する。精製ダイマーは互いに連結することによりテトラマーなどを合成
できる。好ましくは、固相支持体に結合させた5°−〇−保保護ヌクレオトド使
用する固相法を用いる。固相法では、5゛−〇−保保護ヌクレオトド固相支持体
に結合させ、交互の末端5゛−脱保護反応とカップリング反応を使用する鎖の組
み立てによってオリゴマーを合成していく。溶液法及び固相法ともに、反応を終
結させるために過剰量の試薬を加え、適当な溶媒を用いて支持体を洗浄すること
により未反応の成分を除去する。脱保護とカンブリングのサイクルは所望のオリ
ゴマー長が得られるまて続ける。次いで、得られたオリゴマーを支持体から切断
し、保護基を除去して得られた脱保護オリゴマーを精製する。これらの合成法に
適切な固相支持体にはシリカゲル、制御孔ガラスピーズ(CP G)及びポリス
チレンなどがある。[一般的には、Ga1t、 M、 SのOligonucl
eotide 5ynthesis A Practical Approac
h、 IRL Press (1985)を参照のことコオリゴマーの固相合成
のための装置は市販されている。装置の製造元から提供されている説明書には、
オリゴマー合成のための反応体と試薬との好ましい比率が記載されている。カッ
プリング工程では、大過剰のモノマーとモノマーのアクチヘーターとが推奨され
ている。酸化工程て推奨されている酸化試薬には、大量の水(約2%〜約25%
又はそれ以上)が含まれている。
発明の概要
本発明はオリゴマーを合成するための改良法に関する。
本発明は、水分の少ない酸化試薬を酸化工種で使用する改良合成法によれば、高
いカップリング効率(約95%又はそれ以上)をもってオリゴマーが比較的大量
に(約15μll1ol又はそれ以上)合成でき、カップリング工程ではヌクレ
オシドモノマー及びアクチベーターを有意に低い当量で使用すればよい、という
本発明者らの知見を基礎としている。
本発明は1つの態様として、第1のヌクレオシドの5゛−酸素と第2のヌクレオ
シド(又はモノマー、第1図参照)の3゛−酸素との間にヌクレオシド間結合を
形成させる方法であって、第1のヌクレオシドがその5°−酸素に結合したブロ
ッキング基を有し、かつその3゛−酸素を介して支持体と結合しているか、又は
5゛−ヌクレオシド間結合を介して別のヌクレオシドもしくはオリゴマーと結合
しており、第2のヌクレオシドがその5°−酸素に結合したブロッキング基を有
し、かつその3°酸素に結合する以下の式で示されるカップリング基が式:P
R。
[式中、X、はハロゲン又は置換アミノであり、R1はアルキル、アリール、置
換されていることあるアルコキシ又は置換されていることあるアリールオキシで
ある]を有していること、を特徴とする方法を目的とする。この方法は第1のヌ
クレオシドを脱ブロッキング条件下に処理し、5°−酸素からブロッキング基を
除去して遊離の5゛−ヒドロキシ基を生成させることを包含する。次いで、活性
化及びカップリング条件下に脱ブロックした第1のヌクレオシドと第2のヌクレ
オシドとをアクチベーターの存在下に接触させ、3価のリン基を有するヌクレオ
シド間結合によって第1のヌクレオシド及び第2のヌクレオシドをカップリング
させる。
ヌクレオシド間結合の3価のリンは、約2%又はそれよりも少ない水分であるが
第1のヌクレオシドの1当量に対して少なくとも約1〜約5当量の水分(好まし
くは約0. 1%〜約o、596の水分)を含有している低水分酸化試薬を包含
する酸化条件下、5価のリンに酸化する。この酸化試薬は適当な酸化剤を、好ま
しくは約100mMから200mM酸化剤で含有し、第1のヌクレオシドの1当
量当たり少なくとも約1〜約5当量の酸化剤を含有する。適当な酸化剤には、ヨ
ウ素(I2)などがある。酸化工程以下は、第1のヌクレオシドにおける反応し
なかった5°−ヒドロキシ基を非反応性の状態にするため、それらをキャップす
るキャッピング工程である。好ましい態様では、第2のヌクレオシド又はモノマ
ーをキャッピング工程にて第1のヌクレオシドの1当量当たり約1〜約5当量、
より好ましくは約1.2〜約3当量の比率で存在させる。第1のヌクレオシドの
1当量当たり第2のヌクレオシド約1.5〜約2当量の比率が特に好ましい。こ
の反応は、所望の鎖長のオリゴマーが得られるまで付加的なモノマーを伸長オリ
ゴマーに加えて繰り返す。同相の反応では、オリゴマーが合成されたなら、常法
によって固相支持体からオリゴマーを切断する。
通常推奨されている試薬比率と酸化試薬を使用してメチルホスホネート・オリゴ
マーを合成すれば、比較的低い全体的なカップリング効率しか得られず、従って
満足できない収量、特に約15μmol又はそれ以上の調製物しか得られない。
具体的には、本発明者らは、この改良法により、改善された収量でメチルホスホ
ネート・オリゴマーが大規模に製造でき、同時にモノマー及びアクチベーターが
顕著に少なくて済むことを、意外にも見いだした。少ない量のモノマーの使用は
、モノマーが高価であることから、オリゴマーをより経済的に合成できる点で特
記すべき利点といえる。
定 義
本明細書で使用している以下の用語は、特に明記しない限り次の意味を有してい
る。
「ヌクレオシド」なる用語はヌクレオノル部分又は単位を包含するものてあり、
それらと相互変換可能に使用される。
「ヌクレオチド」なる用語は、リン酸基、糖及び窒素含有塩基から構成される核
酸のサブユニットを意味する。RNAては、糖はりホースである。DNAでは2
−デオキシリポースである。この用語はこのようなサブユニットの同族体も包含
する。
「ヌクレオチドマルチマー」なる用語は、ヌクレオシド間リン酸結合によって連
結されたヌクレオチドの鎖、又はその同族体を意味する。
「オリゴヌクレオチド」は、一般に約3〜約100のヌクレオチドの長さを有す
るヌクレオチドマルチマーであるが、100以上の長さのヌクレオチドを意味す
る場合もある。これは通常、ヌクレオチドのモノマーから合成されると考えられ
る。
「デオキシリポオリゴヌクレオチド」は、デオキシリボヌクレオチドモノマーか
ら構成されるオリゴヌクレオチドである。
「ポリヌクレオチド」は、一般に約100又はそれ以上の長さのヌクレオチドの
ヌクレオチドマルチマーを意味する。これは普通、生物起源であり、又は酵素的
手段によって入手される。
「モノマー単位」は、本発明のヌクレオチド試剤又は非−ヌクレオチド試剤のい
ずれかの単位であって、その試剤がポリマー形成に役立つものをいう。
[非−ヌクレオチドモノマー単位」は、オリゴマーのハイブリダイゼーションに
は有意に関与しないモノマー単位を意味する。このようなモノマー単位は例えば
、ヌクレオチドとの有意な水素結合に関与してはならないものであり、要すれば
、架橋結合アルキル化、挿入剤及びキレート化剤などの、標的配列とオリゴマー
とのハイブリダイゼーション後に相互作用できるグループを包含することができ
る。
「オリゴヌクレオチド/非−ヌクレオチドマルチマー」は、一般に100ヌクレ
オチドよりも少ない合成起源のマルチマーであるが、200ヌクレオチドを過剰
に含有することもてき、かつまた1つ又はそれ以上の非−ヌクレオチドモノマー
単位を含有している。
「オリゴマー」なる用語は、オリゴヌクレオチド、非イオン性オリゴヌクレオシ
ド・アルキル−及びアリール−ホスホネート同族体、オリゴヌクレオチドのホス
ホロチオエート同族体、オリゴヌクレオチドのホスホアミデート同族体、中性の
リン酸エステルオリゴヌクレオチド同族体、例えばホスホトリエステル及び他の
オリゴヌクレオチド同族体及び修飾オリゴヌクレオチドを意味し、これにはさら
にヌクレオチド/非−ヌクレオチドポリマーも包含される。また、この用語には
、モノマー単位間にある1つ又はそれ以上のホスホン酸(phosphorou
s)基結合がホルムアセタール結合、スルファメート結合又はカルバメート結合
などの非−ホスホン酸結合によって置き換えられているヌクレオチド/非−ヌク
レオチドポリマーも包含される。
「アルキル−又はアリール−ホスホネートオリゴマー」なる用語は、少なくとも
1つのアルキル−又はアリール−ホスホネート(亜リン酸)結合がホスホジエス
テル結合と置き換わっているヌクレオシド間(又はモノマー間)リン(phos
phorus)基結合を有するヌクレオチド/非−ヌクレオチドポリマー)を意
味する。
「メチルホスホネートオリゴマー(又はMP−才リゴマ−)」なる用語は、少な
くとも1つのメチルホスホネートヌクレオノド間結合がホスホジエステルヌクレ
オノド間結合と置き換わっているヌクレオシド間(又はモノマー間)リン基結合
を有するヌクレオチドオリゴマー(又はヌクレオチド/非−ヌクレオチドポリマ
ー)を書味する。
本明細書に記載している種々のすリボマー配列の中、例えばApAなどにおける
「p」はリン酸ジエステル結合を表し、例えばCpGなどの「2」は、メチルホ
スホネート結合を表す。他の配列の中には、リンジエステル結合のタイプを示す
ためのp又はPのいずれも使用せずに記載しているものもある。この場合、AT
CなどのAはAの3°−炭素とTの5゛炭素との間のリン酸ジエステル結合を示
しており、ATC又はΔTlなどのΔは、Aの3“−炭素とT又は工の5゛−炭
素との間のメチルホスホネート結合を示している。
「非−有害条件」なる用語は、オリゴマーの骨格及びその糖、並びに塩基成分、
そして固相支持体にも実質的に悪影響を及ぼさない(反応又は合成の)条件を説
明するためのものである。当業者ならば、機能性、カップリング方法、脱ブロッ
キング及び脱保護操作、及びこれらの基準に適合する開裂条件を容易に確定でき
る。
「脱ブロッキング条件」なる用語は、リボース又はデオキシリポース基の5゛−
OH基からブロッキング(又は保護)基を除去するために使用する条件を説明す
るものである。
「脱保護条件」なる用語は、ヌクレオシド塩基から保護基を除去するために使用
する条件を説明するものである。
「キャップ」又は「キャッピング」なる用語は、反応サイクルにおいて第2のヌ
クレオシドの活性化カップリング基と縮合(即ち、反応)できなかった(個々の
反応サイクルにおける)第1のヌクレオノドの5′−ヒドロキシ基をブロックし
、以後の反応サイクルにて反応できなくさせる反応サイクル中の1工程を意味す
る。
「ローディング(loading)Jなる用語は、ポリマー試薬のポリマー部分
又は支持体に(結合部分によって)カップリング又は結合されるヌクレオシジル
部分(又はヌクレオシド)の量を意味し、これは通常、支持体1g当たりのμm
olヌクレオシドで表される。
「支持体」なる用語は、ヌクレオシドが結合してオリゴマーを合成することので
きる固体粒子物質を意味する。オリゴマーの合成に使用する支持体は普通、実質
的に不活性であり、オリゴマーの合成に使用する試薬とは反応しないものである
。
図面の簡単な説明
第1図は本発明の方法に従ってオリゴマーを固相合成するための一般的な反応式
を説明するものである。
本発明は、リン含有ヌクレオシド支持体によってカップリングされたヌクレオシ
ドモノマー単位からなるオリゴマーを合成するための改良法に関する。
一般的な反応経路
本発明は一般的な態様として、水分の少ない酸化試薬を酸化工程で使用する、第
1のヌクレオシドの5゛−酸素と第2のヌクレオシドの3゛−酸素との間にヌク
レオシド間結合を形成させる改良法を目的とする。第1のヌクレオシドは好まし
くは、ブロックされた5°−ヒドロキシ基を有し、かつ3′−炭素に保護された
ヒドロキシ基を有しているか、又は好ましくは3゛−酸素を介して固相支持体と
結合しているか、又はオリゴマーの一部となることのできる別のヌクレオシドの
5゛−酸素と結合しているリン含有基と3′−酸素を介して結合している。好ま
しくは、別のヌクレオシド又はオリゴマーを固相支持体に結合させる。第2のヌ
クレオシドはその5°−酸素に結合しているブロッキング基及びその3′−酸素
に結合しているカップリング基を有しており、そのカップリング基は好ましくは
式。
P
R。
[式中、xlはハロゲン又は置換アミノであり、R1はアルキル、アリール、置
換されていることあるアルコキシ又は置換されていることあるアリールオキシで
あるコで示される基である。
本発明のホスホン酸含有ヌクレオシド支持体を形成させる基本的な固相反応は第
1図に示している通りであり、それには以下の4つの工程が包含される:(a)
第1のヌクレオシドの5′−ヒドロキシを脱ブロッキングし、(b)カップリン
グ及び活性化条件下、アクチベーターの存在下に第1のヌクレオシドを含有する
反応混合物に、第2のヌクレオシド(又は第1図における「モノマー」)を加え
、第2のヌクレオノドが第1のヌクレオシドと「カップリング」又は「縮合」し
、3価のリン基を含有するヌクレオシド間結合を形成させ、(C) 低水分酸化
試薬を用いて、3価のリン基を5価のリン基に酸化し、そして(d) キャッピ
ングして第1のヌクレオシドの未反応(又は未カップリング)5′−ヒドロキシ
基をブロッこのように、本発明は1つの態様として、式(I):「
[式中、Tは1級ヒドロキシ基のためのブロッキング基であり、Bは塩基であり
、
Rはヒドロキシ、アルキル、アリール、置換されていることあるアルコキシ、又
は置換されていることあるアリールオキシであり、Spは支持体又は式(■):
(ここに、R及びSpは式(1)における定義と同意義である)て示されるヌク
レオシド5′−リンエステルである]て示されるデオキシリボヌクレオシドリン
酸又は亜リン酸エステルを製造するための方法であって、該第1のブロックされ
たヌクレオシドを脱ブロックし、式(■):
で示される第1のヌクレオシドを得、この化合物を式:(■)L式中、X、はハ
ロゲン又は置換アミノである]で示さ第1る化合物とアクチベーターの存在下に
反応させ、式(V):−P
て示される化合物を生成させ、次に約2%又はそれ以下の水分、又は第1のヌク
レオシド1当量当たり少なくとも約1〜約5当量の水分、好ましくは約0. 1
%〜約0.5%の水分を含有する低水分酸化剤の存在下、得られた化合物を式(
1)で示される化合物に酸化的に変換することを特徴とする方法を目的とするも
のである。
(a) 脱プロツキング工程
この工程は、第1のヌクレオシドを処理してブロッキング基を除去し、第2のヌ
クレオシドのカップリング基と反応できる5−ヒドロキシを生成させる工程であ
る。ブロッキング基としては、通常酸不安定であり、非−有害条件にて除去でき
るジー(p−アニソール)フェニルメチル[”ジメトキシトリチル”、”トリチ
ル”又は”DMT”]が好ましい。適当な脱トリチル化の試薬はジクロロメタン
中、ジクロロ酢酸である。
ジメトキシトリチル陽イオンを含有する酸性溶液は明るいオレンジ色であるので
、先行する反応順序のカップリング効率を得るために、脱トリチル化を行う毎に
流出溶液を採取し、測光分析学的に検定できる。
(b) カップリング工程
カップリング工程は水分に敏感である。従って、カップリング工程の前に第1の
ヌクレオシド支持体から水分を除去しなければならない。脱ブロッキングの後、
第1のヌクレオシドを減圧下に乾燥し、好ましくは第1の活性化ヌクレオシド(
モノマー)を導入する前にアルゴンを導入する。カップリング基のX1置換分は
ジアルキルアミノ基である。このようなカップリング基は活性化させて、第1の
ヌクレオシドの5°−ヒドロキシとの反応性を高めるのが好ましい。テトラゾー
ルは適当なアクチベーターであり、ジアルキルアミノ基の窒素原子のプロトン化
と、置換反応を介するヌクレオシド−3°−0−ホスホモノテトラゾリドの形成
とによって機能するものである。両者の化合物種は、第1のヌクレオシドの5°
−ヒドロキシ基による核置換反応を迅速に受け、ヌクレオシド間3価リン結合を
形成させる。
従って、1つの態様では、第2のヌクレオシド(モノマー)の試料とテトラゾー
ル溶液の試料とを乾燥アルゴン充填容器内で混合し、次いでモノマー−テトラゾ
ール混合物を、脱保護された第1のヌクレオシドを含有する容器内に迅速に注入
し、約3分反応させることにより、カップリング工程を行うことができる。固相
反応では、カンブリング混合物(活性化モノマー)を濾過して除去する。 次い
で、以後の酸化工程の前にアセトニトリルにより支持体を洗浄する。
高いカンブリング効率を得るために通常は、第1のヌクレオシドに対して大過剰
のモノマーが、またモノマーに対してアクチベーターが使用されてきた。Mil
ligen[パイオサ−刊などのDNA合成装置の製造元は、第1のヌクレオシ
ド1当量当たり約448〜約73当量のモノマーの使用を推奨し、またモノマー
1当量当たり約10〜約15当量のアクチベーターの使用を推奨している(効率
的には、第1のヌクレオシド1当量当たり約48〜約110当量のアクチベータ
ーの使用である)。従来は、特にメチルホスホネート・オリゴマーの合成では、
これらの反応条件を使用しても貧弱なカップリング効率しか得られなかった(約
88又はそれ以下)。
本発明の方法によれば、第1のヌクレオシドに対してモノマーを、またモノマー
に対してアクチベーターを有意に低い比率で使用しても、95.5%又はそれ以
上のオーダーの高いカンブリング効率が得られることが見いだされた。この知見
は、約15μmol又はそれ以上のオーダーでオリゴマーを大量に合成する際に
特に有益である。約120μmol又はそれ以上のオリゴマーの調製物において
、高いカップリング効率は維持される。このような大規模な製造では、大過剰の
モノマーを使用することは経済的に不都合であるばかりでなく、製造元から教示
された試薬及び比率を使用し、大過剰のモノマー及びアクチベーターを使用した
としても、上記のように貧弱なカップリング効率(約83%オーダー)しか得ら
れない。十分に高いカンブリング効率を得ることは、鎖の長さを増大させるオリ
ゴマー合成に特に重要である。18merを平均カップリング効率的83%で合
成する場合、その収率はたったの・1.2%にしかならない。しかし、平均力・
ツブリング効率が約955%てあれば、18merの合成の場合、約46%の収
率が得られる。従って、合成しようとするオリゴマーの鎖の長さが増大するに連
れて、カップリング効率の小さな相違が全体の収率に及ぼす影響が倍加され、従
って1反応サイクルにおける小さなカップリング効率の増大はオリゴマー収率の
有意な改善を導くことができることになる。特に実施例5及び第4表を参照のこ
と。
本発明者らは、本発明の方法を行えば、第1ヌクレオシドの1当量当たり約1〜
約5、好ましくは約1.5〜約3、より好ましくは約2.5〜約3当量のモノマ
ーを使用し、モノマーの1当1当たり約2〜約5、好ましくは約2,2〜約3当
量のアクチベーターを使用すれば、高いカップリング効率を得ることができるこ
とを見いだした(効率的には、第1ヌクレオシド1当量当たり、約2〜約25、
好ましくは約3.3〜約15、より好ましくは約4.4〜約8.4当量のアクチ
ベーターを使用する)。
(c) 酸化工程
ヌクレオシド間結合における比較的不安定な3価リンを、酸化試薬での処理によ
り安定な5価のリン結合に変換する。この試薬は通常、ヨウ素、テトラヒドロフ
ラン、2.6−ルチジン、及び少な(とも約2%〜約25%又はそれ以上の水を
含有している。
比較的大量の水を含有する酸化試薬がオリゴマーの合成に使用されており、Mi
lligenなどのD N Agousei装置の製造元から推奨されている。
例えば、バイオサーチDNA合成装置の製造元であるMilligenは、ヌク
レオシド間結合1当量(即ち、第1のヌクレオシド1当量)当たり2.3当量の
ヨウ素(I2)及び716当量の水、又は約9%の水を含有する酸化試薬を推奨
している。市販されている酸化試薬は少なくとも2%の水を、約25%まで又は
それ以上含有している。
本発明者らは、本発明の方法に従って低い水分の酸化試薬を使用すれば、カップ
リング工程において高いカップリング効率が得られ、また高い全体カップリング
効率を維持しつつ3価リンから5価リンへの酸化を高いレベルで得ることのでき
ることを意外にも見いだした。これらの低水分酸化試薬は、従来使用されていた
酸化試薬よりも1〜2桁の程度少ない、極く少量の水しか含有していない。即ち
、本発明者らは、約0.25%〜約0.18%の範囲の水(又は第1のヌクレオ
シド1当量当たり約2.2当量の水)又はそれ以下で水を含有する試薬などの約
0.1%〜約05%オーダーで水を含有する酸化試薬は良好な酸化収率をもって
効率的に機能し、全体の高いカップリング効率が得られることを、驚くべきこと
に見いだした。従って、本発明では、約2%以下の水を含有し、第1のヌクレオ
シド1当量当たり少なくとも約1〜約5当量の水を含有している低水分酸化試薬
を使用し、ヌクレオシド間結合の3価リンをヌクレオシド間結合の51i[1i
のリンに酸化させる。好ましくは、酸化試薬は約100mM〜約200mM酸化
剤を含有し、第1のヌクレオシド1当量当たり少なくとも約2〜約5当量の酸化
剤を含有している。適当な酸化剤には、ヨウ素(I2)がある。
カンブリング工程は特に水に敏感であることから、有意に低い量の水を含有する
上記の低水分酸化試薬を使用することはさらに有益であり、これらの低水分酸化
試薬を酸化工程で使用すると、伸長オリゴマーが次の反応サイクルのカップリン
グ工程にさらされる前には、除去されるべき水分は非常に少な(なる。従って、
同相反応において低水分酸化試薬を使用すると、伸長オリゴマー鎖を担持する支
持体を乾燥させることが必要である洗浄工程が短縮でき、従って支持体の乾燥に
要する溶媒又は乾燥剤の全体の量を減少させることができる。
酸化工程は、上記の低水分酸化試薬(ヨウ素、水分、テトラヒドロフラン及び2
.6−ルチジンを含有する試薬)を使用すると、1分よりも短い時間で一般に完
了する。固相反応では、酸化した後に、第1のヌクレオシドを担持する支持体を
アセトニトリルによって、それと流体物(洗浄液)が無色になるまで十分に洗浄
し、次いでキャッピング試薬を加える。
(d) キャッピング工程
キャンピング工程は、第2のヌクレオシドの活性化カップリング基と反応しなか
った第1のヌクレオシドの残った遊離ヒドロキシ基を非反応性にするためのもの
である。このキャッピング工程により、所望のヌクレオシド配列の鎖を増やす方
向性のみて、以後の添加反応を進行させることができる。通常のキャッピング工
程では、第1のヌクレオシドの未縮合の5°−ヒドロキシ基(その反応サイクル
内の)を、それらをさらなる鎖伸長に対して不活性(又は非反応性)にする無水
酢酸によってアセチル化する。4−ジメチルアミノピリジン(DMAP)を使用
し、このアセチル化反応を触媒する。
これらを加える場合、得られる混合物は迅速に暗色化し劣化しかねないので、各
サイクルにおいて使用する直前に無水酢酸及びDMAP溶液の試料を混合するの
が好ましい。あるいは、無水酢酸及びDMAP溶液は同時に加えることができる
。キャッピングは約2分又はそれ以下の時間で一般に完了する。過剰のキャッピ
ング試薬は濾過して除去する: 支持体はアセトニトリルで洗浄し、次いでジク
ロロメタンで洗浄し、そして次の反応又は合成サイクルを開始させる。
前に縮合されなかった5゛−ヒドロキシを伸長させないためのキャッピング工程
を使用することは、脱プロソキング工程において放出されるDMT量を反応サイ
クルのカップリング効率と正比例させることを意味し、従って脱ブロッキング(
又は脱トリチル化)工程にて放出されるDMT量を測定すれば、カップリング効
率をモニターできることになる。さらに、過剰のカンブリング試薬は、固相支持
体に残った酸化試薬由来の残余の水分を捕獲するのに役立つ。
本発明をより理解し易(するため、一連の実験結果を説明する実施例を以下に記
載する。本発明に関連するこれらの実施例は当然ながら、本発明を特別に限定す
るものではな(、現在知られており又は後に開発される、当業者の知識の範囲内
にある本発明の改変は以下に記載する請求の範囲内に包含されるものと考えられ
るべきである。
5°−0−DMT−保護ヌクレオシド(得られるオリゴマーの3゛−末端になる
)から誘導した、150μmolヌクレオノドヌクレオシド分な固相支持体を、
バイオサーチ8800 DNA合成装置の反応容器内に入れた。この支持体を、
ジクコロメタン中の25%ジクロロ酢酸5X14.6厘l容量で処理した。後に
分光測定分析を行ってカップ1ルグ効率を測定するため、明るいオレンジ色した
溶液を採取した。次いて、支持体を乾燥アセトニトリル7X17.5mNで洗浄
した。この支持体にホスホンアミダイト・七ツマ−(400μmol又は2.7
当量、又は加えるモノマーがTならば、若干少な(約2.5当量を使用できる)
の100mM溶液4mlを加えた。得られた混合物を撹拌し、テトラゾール(1
,98,7’。
894μmol、450mM又はモノマーに対して224当量)を加えた。この
混合物を約3分間撹拌し、濾過し、次いでアセトニトリル2 X 2. 8mf
で洗浄した。支持体に酸化剤(25g/L I2.0.18%水、25%2.
5−ルチ’)ン、7482%テトラヒドロフラン)4.06肩l(支持体ローデ
ィングに対して2゜7当量)を加える。この混合物を約1分間撹拌し、次いで濾
過し、乾燥アセトニトリル4 x l 8mlで洗浄した。次いで、支持体上の
物質(ジヌクレオチド)を、CAP A溶液(40%無水酢酸、60%テトラヒ
ドロフラン)1o1及びCAPB溶液(無水ピリジン中、0.625%4−ジメ
チルアミノピリジン)10m+1’の同時添加によって処理した。得られた混合
物を約1分間撹拌し、次いで濾過した。支持体をアセトニトリル6×18INで
洗浄した。
伸長しているオリゴマー鎖にさらにヌクレオシドモノマー単位を加えるために、
適当なヌクレオシドモノマーを使用して上記の操作を繰り返し、所望の長さと配
列を有するオリゴマーを合成する。
以下の第1表は、従来使用されていた試薬比率と本発明の好ましい方法にて使用
する試薬比率とを比較したものである。
第2表は、本発明の一般的手法を用いて2つのメチルホスホネート・オリゴマー
を合成する際に得られるカップリング効率を列挙したものである。
注 第2表に記載している合成に使用したCモノマーのロットは、約25%トリ
エチルアミンを有していることが見いだされた。(トリエチルアミンはモノマー
を精製するために溶出液中に使用しており、アセトニトリルとの連続した3回の
同時蒸留によって普通は除去される) テトラゾールのアクチベーターは弱酸で
あり、モノマーを活性化し、モノマーの支持体(又はオリゴマー鎖)へのカップ
リングを高めるなどのように機能する。残余のトリエチルアミン(塩基)はテト
ラゾ−ルアクチベーターを中相し、従ってカップリングを減少させると考えられ
る。この場合、トリエチルアミンを通常除去する操作では、残余のトリエチルア
水 716 2.2
que 6・768−775(1988)]。
低水分酸化試薬を使用する150μmolスケールでのオクタデカマーの合成5
’−0−DMT−N−イソブチリル3′−〇−スクシニルデオキシシチジン(6
1,5μmol/g)を、バイオサーチ8800 DNA合成装置の反応容器内
に入れた。この固相支持体を、ジクロロメタン中の2.5%ジクロロ酢酸5X
14゜6ml容量で処理した。後に分光測定分析を行ってカップリング効率を測
定するため、明るいオレンジ色した溶液を採取した。次いで、支持体を乾燥アセ
トニトリル7X17.5wlで洗浄した。この支持体にN−イソブチリル−5°
−0−DMT−2’−0−デオキシグアノシンメチルホスホンアミダイト・モノ
マーの濃度1100Il1の溶液4if(400μmol、2.7当量)を加え
た。撹拌した後、テトラゾール(1,981/、8944o1.4501M濃度
、モノマーに対して2゜24当量)を加えた。この混合物を約3分間撹拌し、次
いで濾過し、アセトニトリル2 X 2. F3yslで洗浄した。酸化剤(4
,06,1、支持体ローディングに対して2.7当量、酸化剤=25g/I−1
2,0,18%水、25%2.6−ルチジン、7482%テトラヒドロフラン)
を加えた。この混合物を1分間撹拌し、次いで濾過し、乾燥アセトニトリル4X
1g++fで洗浄した。次ぎに、支持体上の物質を、CAP A溶液(40%無
水酢酸、60%テトラヒドロフラン)10mf及びCAP B溶液(無水ピリジ
ン中、0.625%4−ジメチルアミノピリジンH□++fの同時添加によって
処理した。得られた混合物を約1分間撹拌した。
次いて濾過し、支持体をアセトニトリル5x18mi’で洗浄した。支持体に既
に結合されているデオキシシチンンに加えられたばかりのデオキシグアノシンヌ
クレオシドにおけるDMT基は、ジクロロメタン中、2.5%ジクロロ酢酸溶液
によってこの時点で離脱され始め、サイクルは繰り返されていた。この際、5゛
−ヒドロキシは、5’−0−DMT−チミジンである次のモノマーと反応するた
め、遊離状聾てあった。上記の反応を適当なモノマーを用いて15回繰り返し、
配列5’−GTC−TTC−CTG−CCC−CAT−TGC−3°を得た。
実施例4
Milligen 8800 DNA合成装置を用いてメチルホスホネートオリ
ゴマーを合成する改良合成法の使用
すべてがメチルホスホネートオリゴヌクレオチドの以下のオクタデカマーは、改
良合成プロトコールを用いてMilligen 8800 DNA合成装置によ
り合成した:
5’−CCA−CGA−AAG−GCA−TGA−CCG−3”合成サイクルは
以下の2つのプログラムから構成される:l 脱ブロッキング・ ジクロロ酢酸
を用いて5゛−0−ジメトキシトリチルを取り外す。乾燥アセトニトリルにより
オリゴマーを洗浄し、カップリングの準備をした。
2、カップリング: オリゴマー1当量当たり約3当量のモノマーとモノマー1
当量当たり4,5当量のテトラゾールとを使用し、所望のオリゴヌクレオシドを
伸長オリゴマー鎖にカップリングする。
3、酸化 領 1MI2を、テトラヒドロフラン/2,6−ルチジン中0゜1M
水と共に含有する酸化試薬を用いて酸化する。
4、キャッピング: 未反応の5°−ヒドロキシ基をジメチルアミノピリジン/
無水酢酸によってキャッピングする。
5、 次の七ツマ−の付加のためにサイクルの最初の1稈に戻る。
合成装置で用いたプログラムはMTHL 06(主要)及びCPLAWII(カ
ップリング)と命名し、製造元から入手した。
使用した試薬混合物は以下のものである:1、アクチベータ−: アセトニトリ
ル中、0.45Mテトラゾール2、CapA: アセトニトリル中、40%無水
酢酸3、CapB: ピリジン中、0625%ジメチルアミノピリジン4、脱ブ
ロック: ジクロロメタン中、2.5%ジクロロ酢酸5、酸化剤: テトラヒド
ロフラン/2.6−ルチジン/水(74,82/25/ 0. 18 : v/
v/v)中、O,LM 126 洗液A: <30ppm水を含有するアセトニ
トリル7、洗液B・ < 30 ppm水を含有するアセトニトリル8、モノマ
ー すべてのモノマーをアセトニトリル中、0.1Mに希釈する。
9、支持体: デオキシグアノンンによって誘導した制御孔ガラスピースを含有
する支持体を用い、オリゴマーを合成した。
平均カップリング効率は504nffiで観察するトリチル吸光度に基づくと、
標準偏差2.02で1サイクル当たり96.7%であった。オリゴマー(18m
er)の全体収率は56.5%であった。モノマーのカップリング効率は97,
6%(Sd−1,35、n=6)であり、Cモノマーでは95.7%(sd−1
,85、n=5)であり、Gモ/7−で1i96.9%(sd−2,55、n=
4)であり、モしてTモノマーでは95.9%(n=1)であった。第3表は、
このオリゴマーを合成したときの各反応サイクルにて得られたカップリング効率
を列挙したものである。
第3表
C113,5%
C98,5%
A 98.9%
G 98.0%
T 95.9%
A 95.9%
C94,4%
G 99.1%
G 92.6%
A 95.7%
A 98.5%
A 99.0%
G 98.1%
C96,0%
A 97.9%
C93,1%
5°C96,6%
実施例5
種々の水分量を有する酸化試薬を使用したカップリング効率の比較25%〜0.
25%の範囲の水分含量を有する酸化試薬を使用し、また低いモノマー二支持体
(又は第1のヌクレオシド)比率を使用してカップリング効率(C。
E、)を比較し、その比較を第4表で説明している。
オリゴマーはバイオサーチ8750又は8800 DNA合成装置によって合成
した。反応サイクルは記載したモノマー比率と酸化試薬を用いて上述(例えば、
実施例3及び実施例4を参照のこと)のようにして行った。
第4表
バ4を雫−チ モノマー 平均カップ 酸化剤中 合成 規格化*装置 比率
リング効率 の水分% スケール 収率8750 −3.7:l Q6.2%
0.25% 15 llmol 47.9%8750 −3.7:1 95.6
% 2.5% 15 IImol 42.5%8750 −3.7:1 93.
5% 10% 15 amol 27.9%8750 〜3.7:1 93.8
% 25% 151111101 29.6%4875(132:L 95.4
% 10% 1 llmol 40.9%8800〜3:1 97.1% 0.
25% 129 pal 57.2%8800−3:I 96.0% 2.5%
135 amol 46.0%8800−3:1 94.7% 10% 13
5 umoL 35.5%本20−merへの規格化。即ち、計算上の平均C,
Eの19カツプリング(カップリング効率)。
÷ホスホジエステル合成のために使用される(試薬及び推奨容量を含む)、推奨
されている標f的なバイオサーチプログラム。
Figure 1゜
フロントページの続き
(72)発明者 ライリー、ティモジ−・エイアメリカ合衆国 93433 カ
リフォルニア、グローバー・シティ−、ナンバー・18、サウス・オーク・パー
ク・ブールバード
251番
Claims (28)
- 1.第1のヌクレオシドの5′−酸素と第2のヌクレオシドの3′−酸素との間 に5価のリンを有するヌクレオシド間結合を形成させるための方法において、該 第1のヌクレオシドがその5′−酸素に結合したブロッキング基を有し、かつそ の3′−酸素によって支持体と、又は5′−リン基によって別のヌクレオシド又 はオリゴマーと結合しており、そして該第2のヌクレオシドはその5′−酸素に 結合しているブロッキング基及びその3′−酸素に結合している式:▲数式、化 学式、表等があります▼ [式中、X1はハロゲン又は置換アミノであり、R1はアルキル、アリール、置 換されていることあるアルコキシ又は置換されていることあるアリールオキシで ある]で示されるカップリング基を有しているものであって、(a)該第1のヌ クレオシドを脱ブロッキング条件下で処理し、5′−ブロッキング基を取り外し て遊離の5′−ヒドロキシ基を生成させ、(b)活性化及びカップリング条件下 、アクチベーターの存在下に該第1のヌクレオシドと第2のヌクレオシドとを接 触させて、3価のリン基を有するヌクレオシド間結合によって第1のヌクレオシ ドと第2のヌクレオシドとをカップリングさせ、 (c)約2%以下の水分を含有するが、第1のヌクレオシドの1当量に対して少 なくとも約1〜約5当量の水は含有している低水分酸化試薬を包含する酸化条件 下、3価のリン基を5価のリン基に酸化することを特徴とする形成方法。
- 2.5価のリンを有するヌクレオシド間結合がメチルホスホネート結合を含有す る請求項1に記載の方法。
- 3.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項1に記載の方 法。
- 4.工程(d)として、未反応の5′−ヒドロキシ基をキャッピングし、それを 非反応性にする工程をさらに包含する請求項1に記載の方法。
- 5.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項4に記載の方 法。
- 6.工程(b)において、該第2のヌクレオシドと該第1のヌクレオシドとを、 第1のヌクレオシド1当量当たり約1〜約5当量の第2のヌクレオシドの比率で 接触させる請求項4に記載の方法。
- 7.5価のリンを有するヌクレオシド間結合がメチルホスホネート結合を含有し ている請求項6に記載の方法。
- 8.工程(b)において、該アクチベーターと該第2のヌクレオシドとを、第2 のヌクレオシド1当量当たり約2〜約5当量のアクチベーターの比率で接触させ る請求項6に記載の方法。
- 9.工程(e)として、所望の数のヌクレオシドを含有するオリゴマーを生成さ せるに十分な回数だけ工程(a)から工程(d)までを繰り返す工程をさらに包 含する請求項4に記載の方法。
- 10.工程(b)において、該第2のヌクレオシドと該第1のヌクレオシドとを 、第1のヌクレオシド1当量当たり約1〜約5当量の第2のヌクレオシドの比率 で接触させる請求項9に記載の方法。
- 11.工程(b)において、該アクチベーターと該第2のヌクレオシドとを、第 2のヌクレオシド1当量当たり約2〜約5当量のアクチベーターの比率で接触さ せる請求項10に記載の方法。
- 12.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項11に記載 の方法。
- 13.5価のリンを有するヌクレオシド間結合がメチルホスホネート結合を含有 している請求項12に記載の方法。
- 14.第1のヌクレオシドが5′−ヒドロキシ基を有し、3′−酸素によって固 相支持体又は別のヌクレオシドと結合しており、第2のヌクレオシドがその5′ −酸素に結合しているブロッキング基及びその3′−酸素に結合しているカップ リング基を有しているものである、当該第1のヌクレオシドの5′−酸素と当該 第2のヌクレオシドの3′−酸素との間に5価のリンを有するヌクレオシド間結 合を形成させる方法として、該第1のヌクレオシドと該第2のヌクレオシドとを アクチベーターの存在下にカップリング及び活性化条件下にて接触させてカップ リングし、3価のリン基を有するヌクレオシド間結合を形成させる方法において 、約2%以下の水であるが、第1のヌクレオシド1当量に対して少なくとも約1 〜約5当量の水と酸化剤とを含有する低水分酸化試薬の酸化容量を、該3価リン 基を5価リン基に酸化するに充分な酸化条件下で加えることを改良点とする方法 。
- 15.5価リンを有するヌクレオシド間結合がメチルホスホネート結合を含有し ている請求項14に記載の方法。
- 16.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項14に記載 の方法。
- 17.酸化試薬が、約100mM〜約200mMの酸化剤を含有し、かつ第1の ヌクレオシド1当量に対して少なくとも約2〜約5当量の酸化剤を含有している 請求項14に記載の方法。
- 18.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項17に記載 の方法。
- 19.式(I): ▲数式、化学式、表等があります▼(I)[式中、Tは1級ヒドロキシ基のため のブロッキング基であり、Bは塩基であり、 Rはヒドロキシ、アルキル、アリール、置換されていることあるアルコキシ、又 は置換されていることあるアリールオキシであり、Spは支持体又は式(II) : ▲数式、化学式、表等があります▼(II)で示されるヌクレオシド5′−リン エステルである]で示されるデオキシリボヌクレオシドリン酸又は亜リン酸エス テルを製造するための方法であって、式(III): ▲数式、化学式、表等があります▼(III)で示される第1のヌクレオシドを 式:(IV)▲数式、化学式、表等があります▼(IV)[式中、X1はハロゲ ン又は置換アミノである]で示される第2のヌクレオシドとアクチベーターの存 在下に反応させ、式(V):▲数式、化学式、表等があります▼(V)で示され る化合物を得、次いで約2%以下の水分であるが、式(V)の化合物1当量当た り少なくとも約1〜約5当量の水分、及び酸化剤を含有している低水分酸化試薬 の存在下、得られた化合物を式(I)で示される化合物に酸化的に変換すること を特徴とする方法。
- 20.Rがアルキルである請求項19に記載の方法。
- 21.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項19に記載 の方法。
- 22.Rがメチルである請求項21に記載の方法。
- 23.該第2のヌクレオシド及び該第1のヌクレオシドを、第1のヌクレオシド 1当量当たり約1〜約5当量の第2のヌクレオシドの比率で反応させる請求項1 9に記載の方法。
- 24.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項23に記載 の方法。
- 25.第2のヌクレオシド1当量当たり約2〜約5当量のアクチベーターの比率 でアクチベーターを存在させる請求項23に記載の方法。
- 26.酸化試薬が、100mM〜約200mMの酸化剤を含有し、かつ化合物( V)の1当量当たり約1〜約5当量の酸化剤を含有している請求項25に記載の 方法。
- 27.酸化試薬が約0.1%〜約0.5%の水を含有している請求項26に記載 の方法。
- 28.Rがメチルである請求項27に記載の方法。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US60579090A | 1990-10-26 | 1990-10-26 | |
US605,790 | 1990-10-26 | ||
PCT/US1991/007630 WO1992007864A1 (en) | 1990-10-26 | 1991-10-21 | Improved process for the synthesis of oligomers |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH06509542A true JPH06509542A (ja) | 1994-10-27 |
Family
ID=24425218
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP3518321A Pending JPH06509542A (ja) | 1990-10-26 | 1991-10-21 | オリゴマーを合成するための改良法 |
Country Status (14)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5726300A (ja) |
EP (1) | EP0592434B1 (ja) |
JP (1) | JPH06509542A (ja) |
AT (1) | ATE171947T1 (ja) |
AU (1) | AU669103B2 (ja) |
CA (1) | CA2094803A1 (ja) |
DE (1) | DE69130331T2 (ja) |
DK (1) | DK0592434T3 (ja) |
ES (1) | ES2124231T3 (ja) |
IE (1) | IE913761A1 (ja) |
IL (1) | IL99844A (ja) |
NZ (1) | NZ240325A (ja) |
TW (1) | TW216423B (ja) |
WO (1) | WO1992007864A1 (ja) |
Families Citing this family (27)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
AU3250093A (en) | 1991-12-12 | 1993-07-19 | Gilead Sciences, Inc. | Nuclease stable and binding competent oligomers and methods for their use |
WO1994001446A2 (en) * | 1992-07-09 | 1994-01-20 | Beckman Instruments, Inc. | Derivatized organic solid support for nucleic acid synthesis |
FR2707296B1 (fr) * | 1993-07-09 | 1995-09-29 | Genset Sa | Procédé de synthèse d'acides nucléiques sur support solide et composés utiles notamment comme support solide dans ledit procédé. |
AU688364B2 (en) * | 1993-07-19 | 1998-03-12 | Gen-Probe Incorporated | Oligonucleotides with activity against human immunodeficiency virus |
KR960704065A (ko) * | 1993-07-19 | 1996-08-31 | 다니엘 엘. 캐시앙 | 올리고뉴클레오티드 스크리닝 검정법(Oligonucleotide Screening Assay) |
US5739309A (en) * | 1993-07-19 | 1998-04-14 | Gen-Probe Incorporated | Enhancement of oligonucleotide inhibition of protein production, cell proliferation and / or multiplication of infectious disease pathogens |
US5733781A (en) | 1994-07-19 | 1998-03-31 | Gen-Probe Incorporated | Oligonucleotides and methods for inhibiting propagation of human immunodeficiency virus |
DE69609161T2 (de) * | 1995-01-19 | 2001-03-22 | Gen Probe Inc | Amplifikationsoligonukleotide und sonden für borrelia, die mit lyme kranheit assoziiert sind |
US5747470A (en) * | 1995-06-07 | 1998-05-05 | Gen-Probe Incorporated | Method for inhibiting cellular proliferation using antisense oligonucleotides to gp130 mRNA |
US5674995A (en) * | 1995-06-07 | 1997-10-07 | Gen-Probe Incorporated | Oligonucleotides specific for cytokine signal transducer gp130 mRNA |
US5716846A (en) * | 1995-06-07 | 1998-02-10 | Gen-Probe Incorporated | Method for inhibiting cellular proliferation using antisense oligonucleotides to interleukin-6 receptor mRNA |
US5747252A (en) | 1995-06-07 | 1998-05-05 | Gen-Probe Incorporated | Nucleic acid probes and amplification oligonucleotides for Neisseria species |
US5731148A (en) * | 1995-06-07 | 1998-03-24 | Gen-Probe Incorporated | Adduct protection assay |
US6025133A (en) * | 1996-12-30 | 2000-02-15 | Gen-Probe Incorporated | Promoter-sequestered oligonucleoside and method of use |
US6146833A (en) * | 1997-02-11 | 2000-11-14 | Beckman Coulter, Inc. | Polymeric reagents for immobilizing biopolymers |
US6932943B1 (en) | 2001-01-26 | 2005-08-23 | Third Wave Technologies | Nucleic acid synthesizers |
US20030072689A1 (en) * | 2001-08-15 | 2003-04-17 | Third Wave Technologies, Inc. | Polymer synthesizer |
US7435390B2 (en) * | 2001-01-26 | 2008-10-14 | Third Wave Technologies, Inc. | Nucleic acid synthesizers |
AU2007281143B2 (en) | 2006-08-01 | 2011-05-19 | Gen-Probe Incorporated | Methods of nonspecific target capture of nucleic acids |
EP2268608A4 (en) | 2008-04-01 | 2012-01-11 | Biosearch Technologies Inc | DARK NUCLEIC ACID STABILIZED FLUOROPHORE DEACTIVATOR PROBES |
US10913767B2 (en) * | 2010-04-22 | 2021-02-09 | Alnylam Pharmaceuticals, Inc. | Oligonucleotides comprising acyclic and abasic nucleosides and analogs |
US9403865B2 (en) | 2012-08-15 | 2016-08-02 | Ionis Pharmaceuticals, Inc. | Method of preparing oligomeric compounds using modified capping protocols |
ES2707062T3 (es) | 2014-05-09 | 2019-04-02 | Biosearch Tech Inc | Extintores cósmicos |
US10618926B2 (en) | 2015-04-02 | 2020-04-14 | Merck Sharp & Dohme | Process for making phosphoramidate protected nucleoside compounds |
CA2982600A1 (en) | 2015-04-15 | 2016-10-20 | Biosearch Technologies, Inc. | Dual quencher probes |
CN110612354A (zh) | 2017-05-11 | 2019-12-24 | 简·探针公司 | 用于分离靶核酸的组合物和方法 |
AU2020384888A1 (en) | 2019-11-14 | 2022-06-23 | Gen-Probe Incorporated | Compositions and methods for capturing target nucleic acids |
Family Cites Families (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4458066A (en) * | 1980-02-29 | 1984-07-03 | University Patents, Inc. | Process for preparing polynucleotides |
US4500707A (en) * | 1980-02-29 | 1985-02-19 | University Patents, Inc. | Nucleosides useful in the preparation of polynucleotides |
US4469863A (en) * | 1980-11-12 | 1984-09-04 | Ts O Paul O P | Nonionic nucleic acid alkyl and aryl phosphonates and processes for manufacture and use thereof |
US4668777A (en) * | 1981-03-27 | 1987-05-26 | University Patents, Inc. | Phosphoramidite nucleoside compounds |
US4415732A (en) * | 1981-03-27 | 1983-11-15 | University Patents, Inc. | Phosphoramidite compounds and processes |
DE3329892A1 (de) * | 1983-08-18 | 1985-03-07 | Köster, Hubert, Prof. Dr., 2000 Hamburg | Verfahren zur herstellung von oligonucleotiden |
US4923901A (en) * | 1987-09-04 | 1990-05-08 | Millipore Corporation | Membranes with bound oligonucleotides and peptides |
-
1991
- 1991-10-21 JP JP3518321A patent/JPH06509542A/ja active Pending
- 1991-10-21 WO PCT/US1991/007630 patent/WO1992007864A1/en active IP Right Grant
- 1991-10-21 DK DK91919675T patent/DK0592434T3/da active
- 1991-10-21 AU AU88753/91A patent/AU669103B2/en not_active Ceased
- 1991-10-21 ES ES91919675T patent/ES2124231T3/es not_active Expired - Lifetime
- 1991-10-21 EP EP91919675A patent/EP0592434B1/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-10-21 CA CA002094803A patent/CA2094803A1/en not_active Abandoned
- 1991-10-21 AT AT91919675T patent/ATE171947T1/de not_active IP Right Cessation
- 1991-10-21 DE DE69130331T patent/DE69130331T2/de not_active Expired - Fee Related
- 1991-10-23 NZ NZ240325A patent/NZ240325A/xx not_active IP Right Cessation
- 1991-10-24 IL IL9984491A patent/IL99844A/en not_active IP Right Cessation
- 1991-10-25 IE IE376191A patent/IE913761A1/en not_active Application Discontinuation
-
1992
- 1992-01-14 TW TW081100215A patent/TW216423B/zh active
-
1994
- 1994-06-15 US US08/260,392 patent/US5726300A/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
WO1992007864A1 (en) | 1992-05-14 |
DE69130331D1 (de) | 1998-11-12 |
US5726300A (en) | 1998-03-10 |
DK0592434T3 (da) | 1999-06-21 |
NZ240325A (en) | 1993-06-25 |
EP0592434B1 (en) | 1998-10-07 |
ES2124231T3 (es) | 1999-02-01 |
DE69130331T2 (de) | 1999-03-04 |
ATE171947T1 (de) | 1998-10-15 |
EP0592434A1 (en) | 1994-04-20 |
EP0592434A4 (en) | 1996-04-24 |
IE913761A1 (en) | 1992-05-22 |
IL99844A (en) | 1995-07-31 |
AU8875391A (en) | 1992-05-26 |
CA2094803A1 (en) | 1992-04-27 |
AU669103B2 (en) | 1996-05-30 |
TW216423B (ja) | 1993-11-21 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JPH06509542A (ja) | オリゴマーを合成するための改良法 | |
Gryaznov et al. | Synthesis and properties of oligonucleotides containing aminodeoxythymidine units | |
EP0593422B1 (en) | Method of synthesizing oligonucleotides adaptable to large scale syntheses | |
US5700919A (en) | Modified phosphoramidite process for the production of modified nucleic acids | |
US5646260A (en) | Oligonucleotides having modified internucleoside linkages | |
US5705629A (en) | Methods for H-phosphonate synthesis of mono- and oligonucleotides | |
Cook et al. | Synthesis and hybridization of a series of biotinylated oligonucleotides | |
Cosstick et al. | Synthesis of d (GC) and d (CG) octamers containing alternating phosphorothioate linkages: effect of the phosphorothioate group on the BZ transition | |
US6590093B1 (en) | Orthoester protecting groups | |
MXPA96004355A (en) | Oligonucleotides and used modified intermediaries in nucleic acids therapeuti | |
EP0753002A1 (en) | Modified oligonucleotides and intermediates useful in nucleic acid therapeutics | |
JPH067199A (ja) | 特定の核酸の検出方法 | |
US5723599A (en) | Organic polymer reagents for solid phase synthesis of oligonucleotides | |
CA2222440A1 (en) | Improved methods for oligonucleotide synthesis | |
EP1023310B2 (en) | Improved synthesis of sulfurized oligonucleotides | |
EP1538221B1 (en) | Oligonucleotides containing molecular rods | |
WO2005082923A1 (ja) | 塩基部無保護法による新規核酸合成法 | |
Yu et al. | Diethoxy N, N-diisopropyl phosphoramidite as an improved capping reagent in the synthesis of oligonucleotides using phosphoramidite chemistry | |
US5688940A (en) | Linker for immobilization, modification and subsequent release of oligomers with a terminal hydroxyl group | |
CN113993876A (zh) | 使用改进的氧化方案制备寡核苷酸的方法 | |
CA2205218C (en) | Improved methods for h-phosphonate synthesis of mono- and oligonucleotides | |
US20020103365A1 (en) | Process for the synthesis of nucleic acids on a solid support and compounds which are useful in particular as solid supports in the said process | |
Leuck | Pieken et al.(45) Date of Patent: Aug. 29, 2006 | |
WO1998017675A1 (en) | Improved methods for h-phosphonate synthesis of mono- and oligonucleotides |