JPH0536033B2 - - Google Patents
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Description
本発明は、或るキサントモナス種を発酵させる
ことにより、キサントモナスヘテロ多糖類を製造
する方法に関する。 炭水化物源を有機体キサントモナス・カムペス
トリス(Xanthomonas campestris)NRRL B
−1459による発酵に付すことにより、ヘテロ多糖
類が製造され得る、ということは米国特許第
3485719号から知られる。この特許明細書には、
キサントモナス・カムペストリスNRRL B−
1459から生産されたヘテロ多糖類が、副生油の回
収操作に用いられる場合の格別効果的な剤である
こと、並びに、食品、化粧品等の増粘剤として、
食用フイルム形成剤として、乳化剤(例えば、印
刷インキ用)として、及び捺染ペーストの増粘剤
としての利用性があること、がわかつたと述べら
れている。 今般、キサントモナス・カムペストリス種の新
規な継代菌株(substrain)を単離し、アバデイ
ーンにあるナシヨナル・コレクシヨン・オブ・イ
ンダストリアル・バクテリア、トリー・リサー
チ・ステーシヨン(National Collection of
Industrial Bacteria,Torry Research Station)
に、受け入れ番号(accession number)11854で
寄託(ブタペスト条約に基づく国際寄託(受託番
号NCIB11854))した。微生物キサントモナス・
カムペストリスNRRL B−1459と比べて、本微
生物NCIB11854は、規定培地においてはるかに
高い比生育速度、顕著に高い比ポリマー生成速度
を示すと認められ、また、ポリマー生成能の低下
を伴なうことなくかなり長期間、連続培養又は反
復される充填−取出し培養(fill−and−draw
culture)において維持され得る。 さらに、油の高回収操作に対して、
NCIB11854の微生物により生産されたヘテロ多
糖類の潜在的注入性(potential injectivity)(潜
在的注入性は、過試験により測定される。)は、
キサントモナス・カムペストリスNRRL B−
1459により生産されたヘテロ多糖類の潜在的注入
性と同じぐらいかあるいはそれより良好であり、
特に、高塩分ブライン中に溶かした場合そうであ
る。 本発明は、有機体キサントモナス・カムペスト
リスNCIB11854を水性栄養培地において、同化
可能な炭水化物及び窒素源の好気性発酵により生
育し、そしてヘテロ多糖類を回収する、ことを特
徴とするキサントモナスヘテロ多糖類の製造法を
提供する。本製造法は、適当には、連続法とし
て、充填及び取出しを伴なう又は伴なわない供給
回分法又は回分法として行なわれ得る。 生産性の観点から、連続法又は充填−取出し法
が好ましい。普通に入手できる多くのキサントモ
ナス株と異なり、キサントモナス・カムペストリ
スNCIB11854有機体は、液体培養において満足
な生育速度及びポリマー生成速度を達成するため
に、複雑な生育因子又はビタミンを必要とすると
は認められない。単純な窒素源例えばグルタミン
酸ナトリウム、あるいはアンモニウム塩又は硝酸
塩を含有するところの、単純な化学的に規定され
る培地において該有機体を生育する場合、非常に
良好な結果が得られ得る。それ故、かかる生育培
地を用いることが好ましい。グルタミン酸ナトリ
ウムが好ましい窒素源である。 さらに、化学的に規定される生育培地を用いる
ことにより、微生物生育条件の一層良好な制御が
可能になり、制御されたポリマー合成並びに品質
にばらつきのない生成物を生じる再現性のある製
造法がもたらされる。ヘテロ多糖類の生成及び品
質についてのこのタイプの制御は、例えば、キサ
ントモナス・カムペストリスNRRL B−1459を
用い、一層可変性で複雑な窒素源例えば酵母のエ
キス又は蒸留乾燥可溶物を含有する生育培地にお
いて生育する場合、一般に可能でない。本発明は
さらに、水性溶液中での粘度改質剤としての該ヘ
テロ多糖類の使用を提供する。 水及び0.06〜1.5重量%の上記ヘテロ多糖類か
らなる掘削泥水(drilling fluid)も、本発明に
より提供される。本発明はまた、水及び0.05〜
1.5重量%の上記ヘテロ多糖類からなる水性媒体
を井戸中に導入することからなる井戸の処理法、
並びに、上記ヘテロ多糖類を含む水性溶液を井戸
中に注入することにより、井戸及び/又は井戸と
連通している浸透性の地下層を通じて流体を排出
する方法も提供する。 本発明を下記の例によりさらに説明する。 例 キサントモナス・カムペストリス種
NCIB11854の培養によるヘテロ多糖類の製造、
並びにキサントモナス・カムペストリスNRRL
B−1459との性能比較 キサントモナス・カムペストリスNCIB11854
を、7リツトルの発酵槽(Chemap GF)中で、
3つの異なる化学的に規定される塩の培地(表1
に示す通りである。)にて、表2に要約した回分
条件下で生育した。 第1の実験では、微生物の生育のための唯一の
窒素源はアンモニウムイオン(24mM)であり、
細胞の指数的生育は最大濃度3g-1であつた。
第2及び第3の実験では、アンモニウムをそれぞ
れ硝酸塩(24mM)及びグルタミン酸塩
(24mM)で置き換えた。結果を第1〜3図に示
す。 これらの図の比較から明きらかなように、窒素
源としてグルタミン酸塩が好ましく、何故なら、
0.12h-1のμmax即ち最大の細胞生育速度、0.36
g.(g-1)h-1のqp値即ち比ポリマー生成速度及
び0.59g.g-1のYp即ち最終的ポリマー収率を
生じるからである。この高いμmaxと高いqpとの
組合わせにより、0.49g.(-1)h-1の最終的ポ
リマー生成率がもたらされ、しかしてこの最終的
ポリマー生成率は、キサントモナス・カムペスト
リスNRRL B−1459を用いるヘテロ多糖類発酵
の正常な生成率の2倍より大である。表3には、
上記に規定された塩の生育培地におけるキサント
モナス・カムペストリスNCIB11854について、
μmax,qp,qg即ち比グルコース資化速度、Yp
即ちグルコースに関するポリマーの収率及びP即
ちポリマー生成物の値がAにおいて、並びにキサ
ントモナス・カムペストリスNRRL B−1459に
ついてのそれぞれの値がBにおいて記載されてい
る。
ことにより、キサントモナスヘテロ多糖類を製造
する方法に関する。 炭水化物源を有機体キサントモナス・カムペス
トリス(Xanthomonas campestris)NRRL B
−1459による発酵に付すことにより、ヘテロ多糖
類が製造され得る、ということは米国特許第
3485719号から知られる。この特許明細書には、
キサントモナス・カムペストリスNRRL B−
1459から生産されたヘテロ多糖類が、副生油の回
収操作に用いられる場合の格別効果的な剤である
こと、並びに、食品、化粧品等の増粘剤として、
食用フイルム形成剤として、乳化剤(例えば、印
刷インキ用)として、及び捺染ペーストの増粘剤
としての利用性があること、がわかつたと述べら
れている。 今般、キサントモナス・カムペストリス種の新
規な継代菌株(substrain)を単離し、アバデイ
ーンにあるナシヨナル・コレクシヨン・オブ・イ
ンダストリアル・バクテリア、トリー・リサー
チ・ステーシヨン(National Collection of
Industrial Bacteria,Torry Research Station)
に、受け入れ番号(accession number)11854で
寄託(ブタペスト条約に基づく国際寄託(受託番
号NCIB11854))した。微生物キサントモナス・
カムペストリスNRRL B−1459と比べて、本微
生物NCIB11854は、規定培地においてはるかに
高い比生育速度、顕著に高い比ポリマー生成速度
を示すと認められ、また、ポリマー生成能の低下
を伴なうことなくかなり長期間、連続培養又は反
復される充填−取出し培養(fill−and−draw
culture)において維持され得る。 さらに、油の高回収操作に対して、
NCIB11854の微生物により生産されたヘテロ多
糖類の潜在的注入性(potential injectivity)(潜
在的注入性は、過試験により測定される。)は、
キサントモナス・カムペストリスNRRL B−
1459により生産されたヘテロ多糖類の潜在的注入
性と同じぐらいかあるいはそれより良好であり、
特に、高塩分ブライン中に溶かした場合そうであ
る。 本発明は、有機体キサントモナス・カムペスト
リスNCIB11854を水性栄養培地において、同化
可能な炭水化物及び窒素源の好気性発酵により生
育し、そしてヘテロ多糖類を回収する、ことを特
徴とするキサントモナスヘテロ多糖類の製造法を
提供する。本製造法は、適当には、連続法とし
て、充填及び取出しを伴なう又は伴なわない供給
回分法又は回分法として行なわれ得る。 生産性の観点から、連続法又は充填−取出し法
が好ましい。普通に入手できる多くのキサントモ
ナス株と異なり、キサントモナス・カムペストリ
スNCIB11854有機体は、液体培養において満足
な生育速度及びポリマー生成速度を達成するため
に、複雑な生育因子又はビタミンを必要とすると
は認められない。単純な窒素源例えばグルタミン
酸ナトリウム、あるいはアンモニウム塩又は硝酸
塩を含有するところの、単純な化学的に規定され
る培地において該有機体を生育する場合、非常に
良好な結果が得られ得る。それ故、かかる生育培
地を用いることが好ましい。グルタミン酸ナトリ
ウムが好ましい窒素源である。 さらに、化学的に規定される生育培地を用いる
ことにより、微生物生育条件の一層良好な制御が
可能になり、制御されたポリマー合成並びに品質
にばらつきのない生成物を生じる再現性のある製
造法がもたらされる。ヘテロ多糖類の生成及び品
質についてのこのタイプの制御は、例えば、キサ
ントモナス・カムペストリスNRRL B−1459を
用い、一層可変性で複雑な窒素源例えば酵母のエ
キス又は蒸留乾燥可溶物を含有する生育培地にお
いて生育する場合、一般に可能でない。本発明は
さらに、水性溶液中での粘度改質剤としての該ヘ
テロ多糖類の使用を提供する。 水及び0.06〜1.5重量%の上記ヘテロ多糖類か
らなる掘削泥水(drilling fluid)も、本発明に
より提供される。本発明はまた、水及び0.05〜
1.5重量%の上記ヘテロ多糖類からなる水性媒体
を井戸中に導入することからなる井戸の処理法、
並びに、上記ヘテロ多糖類を含む水性溶液を井戸
中に注入することにより、井戸及び/又は井戸と
連通している浸透性の地下層を通じて流体を排出
する方法も提供する。 本発明を下記の例によりさらに説明する。 例 キサントモナス・カムペストリス種
NCIB11854の培養によるヘテロ多糖類の製造、
並びにキサントモナス・カムペストリスNRRL
B−1459との性能比較 キサントモナス・カムペストリスNCIB11854
を、7リツトルの発酵槽(Chemap GF)中で、
3つの異なる化学的に規定される塩の培地(表1
に示す通りである。)にて、表2に要約した回分
条件下で生育した。 第1の実験では、微生物の生育のための唯一の
窒素源はアンモニウムイオン(24mM)であり、
細胞の指数的生育は最大濃度3g-1であつた。
第2及び第3の実験では、アンモニウムをそれぞ
れ硝酸塩(24mM)及びグルタミン酸塩
(24mM)で置き換えた。結果を第1〜3図に示
す。 これらの図の比較から明きらかなように、窒素
源としてグルタミン酸塩が好ましく、何故なら、
0.12h-1のμmax即ち最大の細胞生育速度、0.36
g.(g-1)h-1のqp値即ち比ポリマー生成速度及
び0.59g.g-1のYp即ち最終的ポリマー収率を
生じるからである。この高いμmaxと高いqpとの
組合わせにより、0.49g.(-1)h-1の最終的ポ
リマー生成率がもたらされ、しかしてこの最終的
ポリマー生成率は、キサントモナス・カムペスト
リスNRRL B−1459を用いるヘテロ多糖類発酵
の正常な生成率の2倍より大である。表3には、
上記に規定された塩の生育培地におけるキサント
モナス・カムペストリスNCIB11854について、
μmax,qp,qg即ち比グルコース資化速度、Yp
即ちグルコースに関するポリマーの収率及びP即
ちポリマー生成物の値がAにおいて、並びにキサ
ントモナス・カムペストリスNRRL B−1459に
ついてのそれぞれの値がBにおいて記載されてい
る。
【表】
【表】
【表】
【表】
この表は明きらかに、キサントモナス・カムペ
ストリスNCIB11854が、キサントモナス・カム
ペストリスNRRL B−1459よりも良好な性能を
有していることを示している。 表4には、希釈して種々の塩分の溶液中におけ
る一定の粘度にした場合の、キサントモナス・カ
ムペストリスNCIB11854の肉汁の過性とキサ
ントモナス・カムペストリスNRRL B−1459の
肉汁の過性とが比較されている。
ストリスNCIB11854が、キサントモナス・カム
ペストリスNRRL B−1459よりも良好な性能を
有していることを示している。 表4には、希釈して種々の塩分の溶液中におけ
る一定の粘度にした場合の、キサントモナス・カ
ムペストリスNCIB11854の肉汁の過性とキサ
ントモナス・カムペストリスNRRL B−1459の
肉汁の過性とが比較されている。
【表】
【表】
【表】
【表】
実際に過するのに、47mmの直径を有する、ミ
リポア(Millipore)フイルター((Milliporeは
商標)を用いた。これらのフイルターの孔の大き
さは、5μ及び1.2μである。 上記の表から明きらかなように、キサントモナ
ス・カムペストリスNCIB11854の肉汁の過性
は、キサントモナス・カムペストリスNRRL B
−1459の肉汁の過性よりも、酵素処理の前及び
後において顕著に良好である。 キサントモナス・カムペストリスNCIB11854
及びキサントモナス・カムペストリス
NCIB11803=NRRL B−1459(以下、それぞれ
「NCIB11854」及び「NCIB11803」と記載する。)
のナシヨナル・コレクシヨン・オブ・インダスト
リアル・バクテリア(National Collection of
Industrial Bacteria)による特徴決定。それら
の結果は、下記に述べることを除いて、
NCIB11803とNCIB11854について同様であつた。 細胞形態学 A 栄養肉汁(Oxoid CMI)に0.75%寒天
(Difco)を加えた寒天平板に、若い生育体
(young growth)を接種し、そして25℃で7
1/2時間培養した。生育体の約0.2mmの塊 (patches)の縁の細胞を調べ、カバーグラス下
にて、位相差によるその場での写真撮影を行な
つた。運動性及び他の特徴は、生育体の別の塊
上にばらまかれた0.1mmのガラスビーズの取り
囲む培養液(pool)中において求められた。生
育体の縁において細胞は単一で及び対になつて
発生し、細胞の大きさはNCIB11803について
は幅0.4〜0.5μm×長さ1.2〜2.5μmであり、
NCIB11854については0.5〜0.6μm×1.2〜
2.5μmであつた。培養液中の生育体の縁におい
ては、百ないし数千の細胞の集合体
(「symplasmata」,Graham & Hodgkiss,
1967参照)がNCIB11803について普通見られ
るが、しばしばNCIB11854についてははるか
に少なかつた。運動性は陽性であつた。 B 上記Aに記載の条件を用い、しかし培地に
0.5%グルコースを添加しかつ7時間培養とし
たところ、細胞が0.1μm大きく、集合体が
NCIB11854については見られなかつた以上、
同様な結果であつた。 コロニー形態学 A 栄養寒天(Oxoid CM3)平板上、30℃にお
ける48時間の生育後、生育体は良好であり、単
離されたコロニーは、黄色、環状、全縁
(entire)、粘液様(mucoid)、平滑、糸状
(string)、凸状であつた。コロニーの直径は
NCIB11803については1〜1.5mmであり、
NCIB11854については1.5mmであつた。 B 上記Aに記載の培地上でしかし1%グルコー
スを添加し、30℃にて72時間生育させた後、生
育体は良好であり、単離されたコロニーは、薄
いクリーム色、環状、全縁、非常に粘液様、平
滑、凸状であり、全面生育体は薄いクリーム色
ないし黄色であつた。コロニーの直径は
NCIB11803については2mmであり、
NCIB11854については2〜2.5mmであつた。 選択された形態学 無機物基材 パレロニ6ドウドロフ1972
改良品(Palleroni 6
Doudoroff1972Modified) (PD)(A.Rev.Phytophethol.10,73) Na2HPO4.12H2O 6.0g KH2PO4 2.4g NH4Cl 1.0g MgSO4.7H2O 0.5g FeCl36H2O 0.01g CaCl2.6H2O 0.01g 脱イオン水 1リツトル pttは6.8になろう。 PD無機物基材+0.1%の過滅菌済グルコース
(PDG) ゼラチン穿刺 栄養肉汁(OxoidNo.2) 2.5% ゼラチン(Difco) 12.0% ゼラチン平板 栄養寒天(Oxoid CM3) 2.8% ゼラチン 1.0% ミルク平板 個々に滅菌された、脱脂乳(Difco)
3% ペプトン(Difco) 0.1% 牛肉エキス(Lab−Lemco) 0.1% NaCl 0.5% 寒天 1.5% オートクレーブにかける前PH7.4 生化学的特徴:指摘がなければ30℃にて CM3平板上での生育 温度(℃) 5° 30° 37° 生育(非定量的) + + − CMI肉汁上での生育PH範囲(調整PH) PH 3 5 7.2 8 9 10 生育 − 3+ 3+ 3+ 3+ 3+ 塩の存在下での生育 NaClを2,3,4及び5%の濃度で含有する
基礎培地を、ヘイワード&ホジキス(Hayward
& Hodgkiss)(1961)の方法に従い調製し
た。培養は3日間行なつた。下記に示すように、
NCIB11854はNCIB11803よりも塩寛容性が小さ
い。 NaCl% 2 3 4 5 NCIB11803の生育 3+ 3+ 3+ − NCIB11854の生育 3+ 3+ + − ゼラチン及びカゼインの加水分解 培養は7日間行なつた。ゼラチン穿刺は20℃に
て行なつた。下記に示すように、NCIB11854は
NCIB11803よりもタンパク質加水分解活性が小
さい。 ゼラチン穿刺 ゼラチン平板 NCIB11803 + + NCIB11854 − + ミルク平板 NCIB11803 + NCIB11854 弱い+ 生育因子要求性試験 ガラス蒸留水を用いて作つたPDG培地におい
て、まつすぐな針金を用い、3回継代培養した。
約4日で満足な生育体が得られ、生育因子に絶対
的要求性はないことが示された。 メチオニン刺激試験 ガラス蒸留水を用いて作つたPDG培地におい
てかすかに濁つた若い生育培養物の各1滴を、16
mm管中で、10μg/mlのL−メチオニンを添加し
たPDG及び添加しなかつたPDG1mlに接種した。
L−メチオニンによる生育速度の刺激は起こらな
かつた。 炭素源の資化 表1に示した、0.1%の過滅菌済の唯一の炭
素源を添加したPD培地に接種し、そして14日間
培養した。外観上わずかな生育的差違が3点、菌
株間で認められた。 炭水化物からの酸の生成 ヘイワード&ホジキス(1961)の酸化発酵培地
に、表1に示した1%の過滅菌済の炭素源を添
加した。それらを入れた管に接種し、そして14日
間培養した。NCIB11854ではガラクトース及び
メリビオースから酸がつくられたが、
NCIB11803ではつくられなかつた。このことは
有意である、とすることは疑問であり、何故な
ら、特に、NCIB11854及びNCIB11803の両方と
も、両化合化物を唯一の炭素源として資化したか
らである。
リポア(Millipore)フイルター((Milliporeは
商標)を用いた。これらのフイルターの孔の大き
さは、5μ及び1.2μである。 上記の表から明きらかなように、キサントモナ
ス・カムペストリスNCIB11854の肉汁の過性
は、キサントモナス・カムペストリスNRRL B
−1459の肉汁の過性よりも、酵素処理の前及び
後において顕著に良好である。 キサントモナス・カムペストリスNCIB11854
及びキサントモナス・カムペストリス
NCIB11803=NRRL B−1459(以下、それぞれ
「NCIB11854」及び「NCIB11803」と記載する。)
のナシヨナル・コレクシヨン・オブ・インダスト
リアル・バクテリア(National Collection of
Industrial Bacteria)による特徴決定。それら
の結果は、下記に述べることを除いて、
NCIB11803とNCIB11854について同様であつた。 細胞形態学 A 栄養肉汁(Oxoid CMI)に0.75%寒天
(Difco)を加えた寒天平板に、若い生育体
(young growth)を接種し、そして25℃で7
1/2時間培養した。生育体の約0.2mmの塊 (patches)の縁の細胞を調べ、カバーグラス下
にて、位相差によるその場での写真撮影を行な
つた。運動性及び他の特徴は、生育体の別の塊
上にばらまかれた0.1mmのガラスビーズの取り
囲む培養液(pool)中において求められた。生
育体の縁において細胞は単一で及び対になつて
発生し、細胞の大きさはNCIB11803について
は幅0.4〜0.5μm×長さ1.2〜2.5μmであり、
NCIB11854については0.5〜0.6μm×1.2〜
2.5μmであつた。培養液中の生育体の縁におい
ては、百ないし数千の細胞の集合体
(「symplasmata」,Graham & Hodgkiss,
1967参照)がNCIB11803について普通見られ
るが、しばしばNCIB11854についてははるか
に少なかつた。運動性は陽性であつた。 B 上記Aに記載の条件を用い、しかし培地に
0.5%グルコースを添加しかつ7時間培養とし
たところ、細胞が0.1μm大きく、集合体が
NCIB11854については見られなかつた以上、
同様な結果であつた。 コロニー形態学 A 栄養寒天(Oxoid CM3)平板上、30℃にお
ける48時間の生育後、生育体は良好であり、単
離されたコロニーは、黄色、環状、全縁
(entire)、粘液様(mucoid)、平滑、糸状
(string)、凸状であつた。コロニーの直径は
NCIB11803については1〜1.5mmであり、
NCIB11854については1.5mmであつた。 B 上記Aに記載の培地上でしかし1%グルコー
スを添加し、30℃にて72時間生育させた後、生
育体は良好であり、単離されたコロニーは、薄
いクリーム色、環状、全縁、非常に粘液様、平
滑、凸状であり、全面生育体は薄いクリーム色
ないし黄色であつた。コロニーの直径は
NCIB11803については2mmであり、
NCIB11854については2〜2.5mmであつた。 選択された形態学 無機物基材 パレロニ6ドウドロフ1972
改良品(Palleroni 6
Doudoroff1972Modified) (PD)(A.Rev.Phytophethol.10,73) Na2HPO4.12H2O 6.0g KH2PO4 2.4g NH4Cl 1.0g MgSO4.7H2O 0.5g FeCl36H2O 0.01g CaCl2.6H2O 0.01g 脱イオン水 1リツトル pttは6.8になろう。 PD無機物基材+0.1%の過滅菌済グルコース
(PDG) ゼラチン穿刺 栄養肉汁(OxoidNo.2) 2.5% ゼラチン(Difco) 12.0% ゼラチン平板 栄養寒天(Oxoid CM3) 2.8% ゼラチン 1.0% ミルク平板 個々に滅菌された、脱脂乳(Difco)
3% ペプトン(Difco) 0.1% 牛肉エキス(Lab−Lemco) 0.1% NaCl 0.5% 寒天 1.5% オートクレーブにかける前PH7.4 生化学的特徴:指摘がなければ30℃にて CM3平板上での生育 温度(℃) 5° 30° 37° 生育(非定量的) + + − CMI肉汁上での生育PH範囲(調整PH) PH 3 5 7.2 8 9 10 生育 − 3+ 3+ 3+ 3+ 3+ 塩の存在下での生育 NaClを2,3,4及び5%の濃度で含有する
基礎培地を、ヘイワード&ホジキス(Hayward
& Hodgkiss)(1961)の方法に従い調製し
た。培養は3日間行なつた。下記に示すように、
NCIB11854はNCIB11803よりも塩寛容性が小さ
い。 NaCl% 2 3 4 5 NCIB11803の生育 3+ 3+ 3+ − NCIB11854の生育 3+ 3+ + − ゼラチン及びカゼインの加水分解 培養は7日間行なつた。ゼラチン穿刺は20℃に
て行なつた。下記に示すように、NCIB11854は
NCIB11803よりもタンパク質加水分解活性が小
さい。 ゼラチン穿刺 ゼラチン平板 NCIB11803 + + NCIB11854 − + ミルク平板 NCIB11803 + NCIB11854 弱い+ 生育因子要求性試験 ガラス蒸留水を用いて作つたPDG培地におい
て、まつすぐな針金を用い、3回継代培養した。
約4日で満足な生育体が得られ、生育因子に絶対
的要求性はないことが示された。 メチオニン刺激試験 ガラス蒸留水を用いて作つたPDG培地におい
てかすかに濁つた若い生育培養物の各1滴を、16
mm管中で、10μg/mlのL−メチオニンを添加し
たPDG及び添加しなかつたPDG1mlに接種した。
L−メチオニンによる生育速度の刺激は起こらな
かつた。 炭素源の資化 表1に示した、0.1%の過滅菌済の唯一の炭
素源を添加したPD培地に接種し、そして14日間
培養した。外観上わずかな生育的差違が3点、菌
株間で認められた。 炭水化物からの酸の生成 ヘイワード&ホジキス(1961)の酸化発酵培地
に、表1に示した1%の過滅菌済の炭素源を添
加した。それらを入れた管に接種し、そして14日
間培養した。NCIB11854ではガラクトース及び
メリビオースから酸がつくられたが、
NCIB11803ではつくられなかつた。このことは
有意である、とすることは疑問であり、何故な
ら、特に、NCIB11854及びNCIB11803の両方と
も、両化合化物を唯一の炭素源として資化したか
らである。
【表】
【表】
【表】
【表】
これらの試験は限られた差異を示すものであ
り、主な差異は次のことである。即ち、T.1188
は、規定培地においてポリマー生産の反応速度が
一層良好であり、無機窒素特にNH4 +で一層良好
に生育し、規定培地中での連続培養において安定
である。 参照文献 1 Bergey′s Manual of Determinative
Bacteri−ology,第8片(1974)(R.E.
Buchanan及びN.E.Gibbons 共編),
Baltimore:Williams & Wilkins」 2 「Cowan,S.T.及びSteel,K.J.(1974)
“Manual for the Identification of Medical
Bacteria”Cambridge University Press」
り、主な差異は次のことである。即ち、T.1188
は、規定培地においてポリマー生産の反応速度が
一層良好であり、無機窒素特にNH4 +で一層良好
に生育し、規定培地中での連続培養において安定
である。 参照文献 1 Bergey′s Manual of Determinative
Bacteri−ology,第8片(1974)(R.E.
Buchanan及びN.E.Gibbons 共編),
Baltimore:Williams & Wilkins」 2 「Cowan,S.T.及びSteel,K.J.(1974)
“Manual for the Identification of Medical
Bacteria”Cambridge University Press」
第1図は、窒素源がアンモニアである規定塩培
地(培地1)における、キサントモナス・カムペ
ストリスNCIB11854(実線)及びキサントモナ
ス・カムペストリスNRRL B−1459(点線:上
の点線はポリマー、下の点線は細胞)による生育
及びポリマーの生成を示し、第2図は、窒素源が
硝酸塩である規定塩培地(培地2)における、キ
サントモナス・カムペストリスNCIB11854によ
る生育及びポリマーの生成を示し、第3図は、窒
素源がグルタミン酸塩である規定塩培地(培地
3)における、キサントモナス・カムペストリス
NCIB11854(実線)及びキサントモナス・カムペ
ストリスNRRL B−1459(点線:上の点線はポ
リマー、下の点線は細胞)による生育及びポリマ
ーの生成を示す。
地(培地1)における、キサントモナス・カムペ
ストリスNCIB11854(実線)及びキサントモナ
ス・カムペストリスNRRL B−1459(点線:上
の点線はポリマー、下の点線は細胞)による生育
及びポリマーの生成を示し、第2図は、窒素源が
硝酸塩である規定塩培地(培地2)における、キ
サントモナス・カムペストリスNCIB11854によ
る生育及びポリマーの生成を示し、第3図は、窒
素源がグルタミン酸塩である規定塩培地(培地
3)における、キサントモナス・カムペストリス
NCIB11854(実線)及びキサントモナス・カムペ
ストリスNRRL B−1459(点線:上の点線はポ
リマー、下の点線は細胞)による生育及びポリマ
ーの生成を示す。
1 式()
【表】
(YはLysまたはArgを意味し、R1は水素、L
−アミノ酸残基またはシグナル配列として役立て
られるペプチド残基を意味する) を有するプレプロインシユリン類似体を、水と酢
酸からなる溶媒系中でインシユリンの等電点以下
のPHでトリプシンまたはトリプシン類似のエンド
ペプチターゼの存在下に、Ala−OtBu、Thr−
OMe、Thr−OtBuおよびThr(tBu)OtBuから
なる群から選択されたアミノ酸誘導体と反応さ
せ、そして次にエステル基および場合により存在
する他の保護基を除去することを特徴とする、前
記プレプロインシユリン類似体からのインシユリ
−アミノ酸残基またはシグナル配列として役立て
られるペプチド残基を意味する) を有するプレプロインシユリン類似体を、水と酢
酸からなる溶媒系中でインシユリンの等電点以下
のPHでトリプシンまたはトリプシン類似のエンド
ペプチターゼの存在下に、Ala−OtBu、Thr−
OMe、Thr−OtBuおよびThr(tBu)OtBuから
なる群から選択されたアミノ酸誘導体と反応さ
せ、そして次にエステル基および場合により存在
する他の保護基を除去することを特徴とする、前
記プレプロインシユリン類似体からのインシユリ
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