JPH05336954A - 微生物培養法及び微生物用培地 - Google Patents
微生物培養法及び微生物用培地Info
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- JPH05336954A JPH05336954A JP4169893A JP16989392A JPH05336954A JP H05336954 A JPH05336954 A JP H05336954A JP 4169893 A JP4169893 A JP 4169893A JP 16989392 A JP16989392 A JP 16989392A JP H05336954 A JPH05336954 A JP H05336954A
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Abstract
(57)【要約】
【目的】 低コストで大量に供給することができ、安定
な培養効果を示す微生物培養法及び微生物用培地を提供
することを目的としている。 【構成】 微生物の生育培地に使用する窒素源として卵
白の酵素分解物とコーンスティープリカーを培地へ添加
する微生物培養法及び微生物用培地を構成した。
な培養効果を示す微生物培養法及び微生物用培地を提供
することを目的としている。 【構成】 微生物の生育培地に使用する窒素源として卵
白の酵素分解物とコーンスティープリカーを培地へ添加
する微生物培養法及び微生物用培地を構成した。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は、微生物の生育培地の窒
素源として卵白の酵素分解物及びコーンスティープリカ
ーを使用する低コストの微生物培養法及び微生物用培地
に関するものである。
素源として卵白の酵素分解物及びコーンスティープリカ
ーを使用する低コストの微生物培養法及び微生物用培地
に関するものである。
【０００２】
【従来の技術】従来、微生物の生育培地の窒素源として
は、カゼイン−トリプシン消化ペプトンのトリプトン、
獣肉−パパイン消化ペプトンのプロテオースペプトン、
大豆ペプトンのソイトン等のペプトンが使用されてい
る。
は、カゼイン−トリプシン消化ペプトンのトリプトン、
獣肉−パパイン消化ペプトンのプロテオースペプトン、
大豆ペプトンのソイトン等のペプトンが使用されてい
る。
【０００３】また卵白を培地に使用したものとして、基
本培地に有精卵から胚を取り除いた液状物と血清を添加
してなることを特徴とする動物細胞用培地（「特開昭６
２−１６６８８３号」）、卵白アルブミンまたはそのペ
プタイドを脂肪酸またはリン脂質と混和した水溶液を凍
結乾燥することを特徴とする動物細胞用栄養剤の製造方
法（特開昭６３−７４４８３号」）、または植物細胞の
培養において、該植物細胞をアルブミンを添加した培地
で培養することを特徴とする植物細胞培養法（「特公昭
６３−２１４７３号」）が開示されている。
本培地に有精卵から胚を取り除いた液状物と血清を添加
してなることを特徴とする動物細胞用培地（「特開昭６
２−１６６８８３号」）、卵白アルブミンまたはそのペ
プタイドを脂肪酸またはリン脂質と混和した水溶液を凍
結乾燥することを特徴とする動物細胞用栄養剤の製造方
法（特開昭６３−７４４８３号」）、または植物細胞の
培養において、該植物細胞をアルブミンを添加した培地
で培養することを特徴とする植物細胞培養法（「特公昭
６３−２１４７３号」）が開示されている。
【０００４】
【従来技術の課題】ペプトンは高価なものであり、特に
工業的生産を行う場合には、コストが高くなり経済的で
ないことが問題となっていた。また上記の卵白を使用し
た例は、動物用培地または植物細胞を培養する場合に用
いたものであり、微生物の培地に卵白の酵素分解物のみ
使用したときには、実験に示すように、コリネバクテリ
ウム・アンモニアゲネス（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉ
ｕｍ ａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅｓ）及びスタフィロコッ
カス・エピデルミジス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ
ｅｐｉｄｅｒｍｉｓ）は生育自体は認められるもの
の、他のペプトンを使用したときと比較して生育の尺度
である液体培地の濁度（Ｏｐｔｉｃａｌ ｄｅｎｓｉｔ
ｙ（以下「Ｏ．Ｄ．」と称す）＝５８０ｎｍ値）が低
く、卵白酵素分解物のみでは微生物の培地として使用す
ることができなかった。本発明は、上記の現状に鑑みて
なされたものであり、その目的は、低コストで大量に供
給することができ、安定な培養効果を示す微生物培養法
及び微生物用培地を提供することを目的としている。
工業的生産を行う場合には、コストが高くなり経済的で
ないことが問題となっていた。また上記の卵白を使用し
た例は、動物用培地または植物細胞を培養する場合に用
いたものであり、微生物の培地に卵白の酵素分解物のみ
使用したときには、実験に示すように、コリネバクテリ
ウム・アンモニアゲネス（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉ
ｕｍ ａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅｓ）及びスタフィロコッ
カス・エピデルミジス（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ
ｅｐｉｄｅｒｍｉｓ）は生育自体は認められるもの
の、他のペプトンを使用したときと比較して生育の尺度
である液体培地の濁度（Ｏｐｔｉｃａｌ ｄｅｎｓｉｔ
ｙ（以下「Ｏ．Ｄ．」と称す）＝５８０ｎｍ値）が低
く、卵白酵素分解物のみでは微生物の培地として使用す
ることができなかった。本発明は、上記の現状に鑑みて
なされたものであり、その目的は、低コストで大量に供
給することができ、安定な培養効果を示す微生物培養法
及び微生物用培地を提供することを目的としている。
【０００５】
【発明が解決するための手段】本発明者らは長年の研究
の結果、微生物の生育培地に使用する窒素源として卵白
の酵素分解物とコーンスティープリカーを組み合わせた
ものを使用することにより、従来のペプトンを使用した
場合とほぼ同等の培養効果を示すことを見出し、本発明
を完成させた。
の結果、微生物の生育培地に使用する窒素源として卵白
の酵素分解物とコーンスティープリカーを組み合わせた
ものを使用することにより、従来のペプトンを使用した
場合とほぼ同等の培養効果を示すことを見出し、本発明
を完成させた。
【０００６】更に本発明に使用する卵白の酵素分解物の
濃度は、０．１mg／１０ml以上が必要であり、至適濃度
は１mg／１０ml前後であり、培養を有利に行うためには
１〜１０mg／１０mlの範囲で用いる。
濃度は、０．１mg／１０ml以上が必要であり、至適濃度
は１mg／１０ml前後であり、培養を有利に行うためには
１〜１０mg／１０mlの範囲で用いる。
【０００７】また、コーンスティープリカーの濃度は、
０．１mg／１０ml以上が必要であり、至適濃度は３mg／
１０ml前後であり、培養を有利に行うには、１〜５mg／
１０mlの範囲で用いる。すなわち、卵白の酵素分解物と
コーンスティープリカーの濃度の割合の範囲は、１：５
０〜１００：１となり、培養を有利に行う範囲は１：５
〜１０：１となる。
０．１mg／１０ml以上が必要であり、至適濃度は３mg／
１０ml前後であり、培養を有利に行うには、１〜５mg／
１０mlの範囲で用いる。すなわち、卵白の酵素分解物と
コーンスティープリカーの濃度の割合の範囲は、１：５
０〜１００：１となり、培養を有利に行う範囲は１：５
〜１０：１となる。
【０００８】本発明でいう卵白の酵素分解物とは、通常
の生卵白、卵白末、凍結卵白、卵白より等電点結晶法に
よりリゾチームを製造した際に生ずるいわゆる加塩卵白
あるいはこれを脱塩処理したもの、卵白をイオン交換樹
脂に接触させリゾチームを吸着して製造した際に生ずる
いわゆる副生卵白または、酵母、乳酸菌を用いて脱糖処
理を行い安定化させた卵白を更に消化酵素で処理した画
分等をいう。また、コーンスティープリカーは、とうも
ろこしの浸漬液を濃縮したものである。なお、卵白の酵
素分解物及びコーンスティープリカーは、固体に限られ
ることなく液体のものでもよい。
の生卵白、卵白末、凍結卵白、卵白より等電点結晶法に
よりリゾチームを製造した際に生ずるいわゆる加塩卵白
あるいはこれを脱塩処理したもの、卵白をイオン交換樹
脂に接触させリゾチームを吸着して製造した際に生ずる
いわゆる副生卵白または、酵母、乳酸菌を用いて脱糖処
理を行い安定化させた卵白を更に消化酵素で処理した画
分等をいう。また、コーンスティープリカーは、とうも
ろこしの浸漬液を濃縮したものである。なお、卵白の酵
素分解物及びコーンスティープリカーは、固体に限られ
ることなく液体のものでもよい。
【０００９】
【表１】
【００１０】
【表２】
【００１１】
【表３】
【００１２】
【実験例】以下の実験１によって、培地の窒素源として
卵白の酵素分解物末のみを添加した場合の生育効果を従
来のペプトンを比較して検討した。 １）実験方法 細菌の培養については、試供菌株（表１）の保存用スラ
ント（表２）から一白金耳量を、シード用スラント培地
（表２）へ植菌し、３０℃、２４時間、振盪培養（７２
往復／分）を行い、これを前培養とした。更に、前培養
０．０５mlを基礎培地（表３）へ植菌し、同様に３０
℃、２４時間、振盪培養（７２往復／分）を行い、これ
を本培養とした。細菌の生育測定は、植菌した時刻を０
ｈｒとして経時的に吸光度計（島津分光光度計）を用
い、波長５８０ｎｍで濁度（Ｏ．Ｄ．）を測定した。ブ
ランクは植菌していない各反応系の培地とした。 ２）結果を表４〜表１４に示す。各試供菌についてＯ．
Ｄ．５８０ｎｍ値を示した。
卵白の酵素分解物末のみを添加した場合の生育効果を従
来のペプトンを比較して検討した。 １）実験方法 細菌の培養については、試供菌株（表１）の保存用スラ
ント（表２）から一白金耳量を、シード用スラント培地
（表２）へ植菌し、３０℃、２４時間、振盪培養（７２
往復／分）を行い、これを前培養とした。更に、前培養
０．０５mlを基礎培地（表３）へ植菌し、同様に３０
℃、２４時間、振盪培養（７２往復／分）を行い、これ
を本培養とした。細菌の生育測定は、植菌した時刻を０
ｈｒとして経時的に吸光度計（島津分光光度計）を用
い、波長５８０ｎｍで濁度（Ｏ．Ｄ．）を測定した。ブ
ランクは植菌していない各反応系の培地とした。 ２）結果を表４〜表１４に示す。各試供菌についてＯ．
Ｄ．５８０ｎｍ値を示した。
【００１３】
【表４】
【００１４】
【表５】
【００１５】
【表６】
【００１６】
【表７】
【００１７】
【表８】
【００１８】
【表９】
【００１９】
【表１０】
【００２０】
【表１１】
【００２１】
【表１２】
【００２２】
【表１３】
【００２３】
【表１４】
【００２４】表４〜１４に示した結果から、窒素源とし
て卵白のみを添加した培地ではエシェリキア・コリ、バ
チルス・サブチルス、コリネバクテリウム・グルタミク
ム、ラクトバチルス・ブレビス、セラチア・マルセセン
スの各菌株については、良好な生育効果を示したが、コ
リネバクテリウム・アンモニアゲネス及びスタフィロコ
ッカス・エピデルミジスは、生育自体は認められるもの
のペプトンと比較してＯ．Ｄ．５８０ｎｍ値が低かっ
た。図１にコリネバクテリウム・グルタミクム、図２に
スタフィロコッカス・エピデルミジスの生育曲線を示
す。
て卵白のみを添加した培地ではエシェリキア・コリ、バ
チルス・サブチルス、コリネバクテリウム・グルタミク
ム、ラクトバチルス・ブレビス、セラチア・マルセセン
スの各菌株については、良好な生育効果を示したが、コ
リネバクテリウム・アンモニアゲネス及びスタフィロコ
ッカス・エピデルミジスは、生育自体は認められるもの
のペプトンと比較してＯ．Ｄ．５８０ｎｍ値が低かっ
た。図１にコリネバクテリウム・グルタミクム、図２に
スタフィロコッカス・エピデルミジスの生育曲線を示
す。
【００２５】
【実施例】次に実施例によって本発明を具体的に説明す
る。 実施例１ 下記の製造方法により得られた卵白の酵素分解物末１０
mg／１０mlとコーンスティープリカー末（スプレードラ
イ・コーンスティープ、製造元：ロケット社（米国）、
発売元：岸本産業（株））０．１mg／１０mlを下記の培
養方法より基本培地（表１５）に添加し、バチルス・サ
ブチルス（ＩＡＭ１２１１８）、プソイドモナス・エル
ギノサア（ＩＡＭ５１４）、コリネバクテリウム・アン
モニアゲネス（ＩＡＭ１６４１）、ラクトバチルス・ブ
レビス（ＩＡＭ１３１８）、セラチア・マルセセンス
（ＩＡＭ１２１４２）の各種菌株について生育効果を検
討した。なお、コーンスティープリカーの添加によって
沈殿物が生成するため、遠心操作（３０００ｒｐｍ、１
０ｍｉｎ）を行い、上澄液をオートクレイブ滅菌して使
用した。
る。 実施例１ 下記の製造方法により得られた卵白の酵素分解物末１０
mg／１０mlとコーンスティープリカー末（スプレードラ
イ・コーンスティープ、製造元：ロケット社（米国）、
発売元：岸本産業（株））０．１mg／１０mlを下記の培
養方法より基本培地（表１５）に添加し、バチルス・サ
ブチルス（ＩＡＭ１２１１８）、プソイドモナス・エル
ギノサア（ＩＡＭ５１４）、コリネバクテリウム・アン
モニアゲネス（ＩＡＭ１６４１）、ラクトバチルス・ブ
レビス（ＩＡＭ１３１８）、セラチア・マルセセンス
（ＩＡＭ１２１４２）の各種菌株について生育効果を検
討した。なお、コーンスティープリカーの添加によって
沈殿物が生成するため、遠心操作（３０００ｒｐｍ、１
０ｍｉｎ）を行い、上澄液をオートクレイブ滅菌して使
用した。
【００２６】（卵白の酵素分解物製造方法）先に本出願
人が特開昭６３−１４６８１号公報、発明の名称「卵白
酵素分解物の製造方法」で開示した方法によって製造し
た。すなわち、固形分含量６％の調整卵白をPH２．５に
調整し、酵素モルシンを卵白固形分当り１％加えたもの
について第１次の加水分解の温度４３℃、加水分解時間
７時間、ついで第２次の加水分解の温度５３℃、加水分
解時間２３時間、分解率１２．３％で加水分解したもの
を噴霧乾燥して卵白の酵素分解物末をとした。また噴霧
乾燥しないものを卵白の酵素分解液とした。
人が特開昭６３−１４６８１号公報、発明の名称「卵白
酵素分解物の製造方法」で開示した方法によって製造し
た。すなわち、固形分含量６％の調整卵白をPH２．５に
調整し、酵素モルシンを卵白固形分当り１％加えたもの
について第１次の加水分解の温度４３℃、加水分解時間
７時間、ついで第２次の加水分解の温度５３℃、加水分
解時間２３時間、分解率１２．３％で加水分解したもの
を噴霧乾燥して卵白の酵素分解物末をとした。また噴霧
乾燥しないものを卵白の酵素分解液とした。
【００２７】（細菌の培養方法）細菌の培養について
は、試供菌株（表１）の保存用スラント（表２）から一
白金耳量を、シード用スラント培地（表２）へ植菌し、
３０℃、２４時間、振盪培養（７２往復／分）を行い、
これを前培養とした。更に、前培養０．０５mlを基礎培
地（表３）へ植菌し、同様に３０℃、２４時間、振盪培
養（７２往復／分）を行い、これを本培養とした。
は、試供菌株（表１）の保存用スラント（表２）から一
白金耳量を、シード用スラント培地（表２）へ植菌し、
３０℃、２４時間、振盪培養（７２往復／分）を行い、
これを前培養とした。更に、前培養０．０５mlを基礎培
地（表３）へ植菌し、同様に３０℃、２４時間、振盪培
養（７２往復／分）を行い、これを本培養とした。
【００２８】
【細菌の生育測定方法】細菌の生育測定は、植菌した時
刻を０ｈｒとして経時的に吸光度計（島津分光光度計）
を用い、波長５８０ｎｍで濁度（Ｏ．Ｄ．）を測定し
た。ブランクは、植菌していない各反応系の培地とし
た。その結果、次の表１６〜１８に示すように各菌株に
ついて良好な生育効果がみられた。
刻を０ｈｒとして経時的に吸光度計（島津分光光度計）
を用い、波長５８０ｎｍで濁度（Ｏ．Ｄ．）を測定し
た。ブランクは、植菌していない各反応系の培地とし
た。その結果、次の表１６〜１８に示すように各菌株に
ついて良好な生育効果がみられた。
【００２９】
【表１６】
【００３０】
【表１７】
【００３１】
【表１８】
【００３２】実施例２ コーンスティープリカー末の培地への添加量を１mg／１
０mlとし、対象の菌株をエシェリキア・コリ（ＩＡＭ１
２６８）、バチルス・サブチルス（ＩＡＭ１２１１
８）、プソイドモナス・エルギノサア（ＩＡＭ１５１
４）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（ＩＡＭ
１６４１）、コリネバクテリウム・グルタミクム（ＩＡ
Ｍ１２４３５）、ラクトバチルス・ブレビス（ＩＡＭ１
３１８）、セラチア・マルセセンス（ＩＡＭ１２１４
２）、スタフィロコッカス・エピデルミジス（ＩＡＭ１
２０１３）とした他は、実施例１と同様の方法で行っ
た。その結果、表１９〜２１に示すように各菌株とも良
好な生育効果が認められた。
０mlとし、対象の菌株をエシェリキア・コリ（ＩＡＭ１
２６８）、バチルス・サブチルス（ＩＡＭ１２１１
８）、プソイドモナス・エルギノサア（ＩＡＭ１５１
４）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（ＩＡＭ
１６４１）、コリネバクテリウム・グルタミクム（ＩＡ
Ｍ１２４３５）、ラクトバチルス・ブレビス（ＩＡＭ１
３１８）、セラチア・マルセセンス（ＩＡＭ１２１４
２）、スタフィロコッカス・エピデルミジス（ＩＡＭ１
２０１３）とした他は、実施例１と同様の方法で行っ
た。その結果、表１９〜２１に示すように各菌株とも良
好な生育効果が認められた。
【００３３】
【表１９】
【００３４】
【表２０】
【００３５】
【表２１】
【００３６】実施例３ コーンスティープリカー末の培地への添加量を３mg／１
０mlとし、対象の菌株をエシェリキア・コリ（ＩＡＭ１
２６８）、バチルス・サブチルス（ＩＡＭ１２１１
８）、プソイドモナス・エルギノサア（ＩＡＭ１５１
４）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（ＩＡＭ
１６４１）、コリネバクテリウム・グルタミクム（ＩＡ
Ｍ１２４３５）、ラクトバチルス・ブレビス（ＩＡＭ１
３１８）、セラチア・マルセセンス（ＩＡＭ１２１４
２）、スタフィロコッカス・エピデルミジス（ＩＡＭ１
２０１３）とした他は、実施例１と同様の方法で行っ
た。その結果、表２２〜２４に示すように良好な生育効
果が認められた。
０mlとし、対象の菌株をエシェリキア・コリ（ＩＡＭ１
２６８）、バチルス・サブチルス（ＩＡＭ１２１１
８）、プソイドモナス・エルギノサア（ＩＡＭ１５１
４）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（ＩＡＭ
１６４１）、コリネバクテリウム・グルタミクム（ＩＡ
Ｍ１２４３５）、ラクトバチルス・ブレビス（ＩＡＭ１
３１８）、セラチア・マルセセンス（ＩＡＭ１２１４
２）、スタフィロコッカス・エピデルミジス（ＩＡＭ１
２０１３）とした他は、実施例１と同様の方法で行っ
た。その結果、表２２〜２４に示すように良好な生育効
果が認められた。
【００３７】
【表２２】
【００３８】
【表２３】
【００３９】
【表２４】
【００４０】実施例４ コーンスティープリカー末の培地への添加量を５mg／１
０mlとし、対象の菌株をエシェリキア・コリ（ＩＡＭ１
２６８）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Ｉ
ＡＭ１６４１）、スタフィロコッカス・エピデルミジス
（ＩＡＭ１２０１３）とした他は、実施例１と同様な方
法で行った。その結果、表２５〜２７に示すように良好
な生育効果が認められた。
０mlとし、対象の菌株をエシェリキア・コリ（ＩＡＭ１
２６８）、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Ｉ
ＡＭ１６４１）、スタフィロコッカス・エピデルミジス
（ＩＡＭ１２０１３）とした他は、実施例１と同様な方
法で行った。その結果、表２５〜２７に示すように良好
な生育効果が認められた。
【００４１】
【表２５】
【００４２】
【表２６】
【００４３】
【表２７】
【００４４】実施例５ 卵白の酵素分解物液１０mg／１０mlとコーンスティープ
リカー液０．３ml／１０mlとした他は、実施例３と同様
な方法で行った。その結果、実施例３と同様に良好な生
育効果が認められた。以上実施例１〜５に示したよう
に、エシェリキア・コリ、プソイドモナス・エルギノサ
ア、コリネバクテリウム・グルタミクム、ラクトバチル
ス・ブレビス、セラチア・マルセセンスの各細菌の他、
コリネバクテリウム・アンモニアゲネス及びスタフィロ
コッカス・エピデルミジスについても生育培地の窒素源
として、卵白の酵素分解物とコーンスティープリカーを
添加すると良好な生育効果を示した。生育培地に卵白末
の酵素分解物とコーンスティープリカー末を添加した場
合のコリネバクテリウム・アンモニアゲネスの生育曲線
を図３に、スタフィロコッカス・エピデルミジスの生育
曲線を図４に示す。
リカー液０．３ml／１０mlとした他は、実施例３と同様
な方法で行った。その結果、実施例３と同様に良好な生
育効果が認められた。以上実施例１〜５に示したよう
に、エシェリキア・コリ、プソイドモナス・エルギノサ
ア、コリネバクテリウム・グルタミクム、ラクトバチル
ス・ブレビス、セラチア・マルセセンスの各細菌の他、
コリネバクテリウム・アンモニアゲネス及びスタフィロ
コッカス・エピデルミジスについても生育培地の窒素源
として、卵白の酵素分解物とコーンスティープリカーを
添加すると良好な生育効果を示した。生育培地に卵白末
の酵素分解物とコーンスティープリカー末を添加した場
合のコリネバクテリウム・アンモニアゲネスの生育曲線
を図３に、スタフィロコッカス・エピデルミジスの生育
曲線を図４に示す。
【００４５】
【発明の効果】本発明の卵白の酵素分解物とコーンステ
ィープリカーを微生物の生育培地の窒素源とするもの
は、卵白とコーンスティープリカーは共に安価な物質で
あり、大量に供給することができるので、微生物の生育
培地の窒素源として、特に工業的生産を行う場合に優れ
ている。また、各種の菌株に対して安定な培養効果を示
すので、従来のペプトンに代わる優れた窒素源として微
生物の培地に使用することができる。
ィープリカーを微生物の生育培地の窒素源とするもの
は、卵白とコーンスティープリカーは共に安価な物質で
あり、大量に供給することができるので、微生物の生育
培地の窒素源として、特に工業的生産を行う場合に優れ
ている。また、各種の菌株に対して安定な培養効果を示
すので、従来のペプトンに代わる優れた窒素源として微
生物の培地に使用することができる。
【図１】コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Ｃｏ
ｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅ
ｓ）の生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物のみ
添加した場合）
ｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅ
ｓ）の生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物のみ
添加した場合）
【図２】スタフィロコッカス・エピデルミジス（Ｓｔａ
ｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）の
生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物のみ添加し
た場合）
ｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）の
生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物のみ添加し
た場合）
【図３】コリネバクテリウム・アンモニアゲネス（Ｃｏ
ｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅ
ｓ）の生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物及び
コーンスティープリカーを添加した場合）
ｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍａｍｍｏｎｉａｇｅｎｅ
ｓ）の生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物及び
コーンスティープリカーを添加した場合）
【図４】スタフィロコッカス・エピデルミジス（Ｓｔａ
ｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）の
生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物及びコーン
スティープリカーを添加した場合）
ｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ｅｐｉｄｅｒｍｉｄｉｓ）の
生育曲線を示すグラフ図（卵白の酵素分解物及びコーン
スティープリカーを添加した場合）
【表１５】
Claims (3)
- 【請求項１】 卵白の酵素分解物とコーンスティープリ
カーを培地へ添加することを特徴とする微生物培養法。 - 【請求項２】 卵白の酵素分解物とコーンスティープリ
カーの添加量の比率が卵白の酵素分解物とコーンスティ
ープリカー＝１：５０〜１００：１の範囲である請求項
１の微生物培養法。 - 【請求項３】 卵白の酵素分解物にコーンスティープリ
カーを添加することを特徴とする微生物用培地。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4169893A JPH05336954A (ja) | 1992-06-05 | 1992-06-05 | 微生物培養法及び微生物用培地 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP4169893A JPH05336954A (ja) | 1992-06-05 | 1992-06-05 | 微生物培養法及び微生物用培地 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH05336954A true JPH05336954A (ja) | 1993-12-21 |
Family
ID=15894920
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP4169893A Pending JPH05336954A (ja) | 1992-06-05 | 1992-06-05 | 微生物培養法及び微生物用培地 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH05336954A (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5962254A (en) * | 1997-01-10 | 1999-10-05 | Roquette Freres | Nitrogenous composition resulting from the hydrolysis of wheat gluten and process for its manufacture |
| JP2000093166A (ja) * | 1998-09-25 | 2000-04-04 | Kyodo Milk Industry Co Ltd | 卵白由来ビフィズス菌増殖促進物質と当該物質を含有する食品 |
| JP2007189914A (ja) * | 2006-01-17 | 2007-08-02 | Kitasato Gakuen | ビフィズス菌増殖促進ペプチド |
-
1992
- 1992-06-05 JP JP4169893A patent/JPH05336954A/ja active Pending
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US5962254A (en) * | 1997-01-10 | 1999-10-05 | Roquette Freres | Nitrogenous composition resulting from the hydrolysis of wheat gluten and process for its manufacture |
| JP2000093166A (ja) * | 1998-09-25 | 2000-04-04 | Kyodo Milk Industry Co Ltd | 卵白由来ビフィズス菌増殖促進物質と当該物質を含有する食品 |
| JP2007189914A (ja) * | 2006-01-17 | 2007-08-02 | Kitasato Gakuen | ビフィズス菌増殖促進ペプチド |
| JP4726129B2 (ja) * | 2006-01-17 | 2011-07-20 | 学校法人北里研究所 | ビフィズス菌増殖促進ペプチド |
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