JPH04237489A - 微細藻の培養法 - Google Patents
微細藻の培養法Info
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- JPH04237489A JPH04237489A JP404291A JP404291A JPH04237489A JP H04237489 A JPH04237489 A JP H04237489A JP 404291 A JP404291 A JP 404291A JP 404291 A JP404291 A JP 404291A JP H04237489 A JPH04237489 A JP H04237489A
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Landscapes
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【０００１】
【産業上の利用分野】本発明は微細藻の培養法に関し、
さらに詳しくは多糖類を高濃度に含む微細藻の培養法に
関する。
さらに詳しくは多糖類を高濃度に含む微細藻の培養法に
関する。
【０００２】
【従来の技術】従来、微細藻の培養は、硝酸塩およびリ
ン酸塩が添加された海水を適切なｐＨに調整し、これに
藻体細胞を植藻し、適切な温度と光の存在下で二酸化炭
素ガスを含む空気を通入して行われる（特開昭５８−２
０１９９３号公報）。しかしながら、上記方法で培養さ
れた微細藻の多糖濃度は、約４．５ｇ／ｌ程度であり、
培養日数を増やしてもこれ以上の多糖濃度にすることが
できなかった。
ン酸塩が添加された海水を適切なｐＨに調整し、これに
藻体細胞を植藻し、適切な温度と光の存在下で二酸化炭
素ガスを含む空気を通入して行われる（特開昭５８−２
０１９９３号公報）。しかしながら、上記方法で培養さ
れた微細藻の多糖濃度は、約４．５ｇ／ｌ程度であり、
培養日数を増やしてもこれ以上の多糖濃度にすることが
できなかった。
【０００３】
【発明が解決しようとする課題】本発明の目的は、前記
従来技術の問題を解決し、藻体固形分中に多糖類を多く
含み、かつ高い細胞濃度の微細藻を得ることができる微
細藻の培養法を提供することにある。
従来技術の問題を解決し、藻体固形分中に多糖類を多く
含み、かつ高い細胞濃度の微細藻を得ることができる微
細藻の培養法を提供することにある。
【０００４】
【課題を解決するための手段】本発明の第１は、窒素化
合物およびリン化合物を含む培地を用いて微細藻を培養
するに際し、微細藻体が４．５×１０７ 〜６×１０７
細胞／ｌに増殖した段階で、培養液から微細藻体を分
離し、得られた微細藻体を、上記培地の窒素化合物濃度
のみを１／１０に減らした新しい培地に植藻し、再培養
することを特徴とする微細藻の培養法に関する。
合物およびリン化合物を含む培地を用いて微細藻を培養
するに際し、微細藻体が４．５×１０７ 〜６×１０７
細胞／ｌに増殖した段階で、培養液から微細藻体を分
離し、得られた微細藻体を、上記培地の窒素化合物濃度
のみを１／１０に減らした新しい培地に植藻し、再培養
することを特徴とする微細藻の培養法に関する。
【０００５】本発明の第２は、窒素化合物およびリン化
合物を含む培地を用いて微細藻を培養するに際し、微細
藻体が４．５×１０７ 〜６×１０７ 細胞／ｌに増殖
した段階で、この培養液にＺｎＣｌ２ ：４．０ｍｇ／
１００ｍｌ、Ｈ３ ＢＯ３ ：６０．０ｍｇ／１００ｍ
ｌ、ＣｕＣｌ２ ・２Ｈ２ Ｏ：１．５ｍｇ／１００ｍ
ｌ、ＣｏＣｌ２ ・６Ｈ２ Ｏ：４．０ｍｇ／１００ｍ
ｌ、ＭｎＣｌ２ ・４Ｈ２ Ｏ：４０．０ｍｇ／１００
ｍｌ、（ＮＨ４）６ Ｍｏ７ Ｏ２４・４Ｈ２ Ｏ：３
７．０ｍｇ／１００ｍｌ、およびＦｅＣｌ３ ・６Ｈ２
Ｏ：２７６．０ｍｇ／１００ｍｌを含む微量栄養素水
溶液１ｍｌ／ｌと、硝酸塩：０．００１〜０．００４モ
ル、リン酸塩：０．０００５〜０．００２モル、ＭｇＳ
Ｏ４ ：０．０２〜０．０３モル、ＭｇＣｌ２ ：０．
０２〜０．０３モル、およびＣａＣｌ２ ：０．０１〜
０．０２モルからなる栄養素を添加することを特徴とす
る微細藻の培養法に関する。
合物を含む培地を用いて微細藻を培養するに際し、微細
藻体が４．５×１０７ 〜６×１０７ 細胞／ｌに増殖
した段階で、この培養液にＺｎＣｌ２ ：４．０ｍｇ／
１００ｍｌ、Ｈ３ ＢＯ３ ：６０．０ｍｇ／１００ｍ
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Ｏ：２７６．０ｍｇ／１００ｍｌを含む微量栄養素水
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ル、リン酸塩：０．０００５〜０．００２モル、ＭｇＳ
Ｏ４ ：０．０２〜０．０３モル、ＭｇＣｌ２ ：０．
０２〜０．０３モル、およびＣａＣｌ２ ：０．０１〜
０．０２モルからなる栄養素を添加することを特徴とす
る微細藻の培養法に関する。
【０００６】本発明の培養に用いられる藻体細胞には特
に制限はないが、紅藻類に属するポルフィリジウム・ク
ルエンツム（Ｐｏｒｐｈｙｒｉｄｉｕｍ ｃｒｕｅｎｔ
ｕｍ 海産性） などが多糖類を多く含むために好ま
しい。
に制限はないが、紅藻類に属するポルフィリジウム・ク
ルエンツム（Ｐｏｒｐｈｙｒｉｄｉｕｍ ｃｒｕｅｎｔ
ｕｍ 海産性） などが多糖類を多く含むために好ま
しい。
【０００７】本発明において、微細藻の培養は、例えば
次のようにして行う。まず、天然の海水を除菌フィルタ
ーを通して濾過し、この濾過海水に窒素源として硝酸ナ
トリウムなどの硝酸塩を０．０１〜０．０４Ｍおよびリ
ン源としてリン酸二水素カリウムなどのリン酸塩を０．
０００５〜０．００２Ｍとなるように加えて生育培地と
する。窒素源として硝酸塩の代わりに尿素などの有機窒
素化合物を用いてもよい。また上記培地に上記微量栄養
素水溶液を１ｍｌ／ｌ添加してもよい。
次のようにして行う。まず、天然の海水を除菌フィルタ
ーを通して濾過し、この濾過海水に窒素源として硝酸ナ
トリウムなどの硝酸塩を０．０１〜０．０４Ｍおよびリ
ン源としてリン酸二水素カリウムなどのリン酸塩を０．
０００５〜０．００２Ｍとなるように加えて生育培地と
する。窒素源として硝酸塩の代わりに尿素などの有機窒
素化合物を用いてもよい。また上記培地に上記微量栄養
素水溶液を１ｍｌ／ｌ添加してもよい。
【０００８】次に上記培地１ｍｌに１０５ 〜１０７
個、好ましくは１０６ 〜１０７ 個の藻体細胞を植藻
する。藻体細胞の濃度が上記範囲であれば培養を効率よ
く行うことができる。培養は、植藻した培地の単位体積
当たりの受光面積が例えば０．００５〜０．０３ｍ２
／ｌ程度に大きくなるような容器に入れて１８〜３０℃
、好ましくは２４〜２６℃の温度で行う。
個、好ましくは１０６ 〜１０７ 個の藻体細胞を植藻
する。藻体細胞の濃度が上記範囲であれば培養を効率よ
く行うことができる。培養は、植藻した培地の単位体積
当たりの受光面積が例えば０．００５〜０．０３ｍ２
／ｌ程度に大きくなるような容器に入れて１８〜３０℃
、好ましくは２４〜２６℃の温度で行う。
【０００９】培養中は天然光または人工光で充分な量の
光を供給する。光量は受光表面の照度が２０ｋｌｘ以上
となるようにするのが好ましい。藻体濃度が例えば５×
１０５ 細胞／ｍｌ以下の場合には、光による細胞の変
質を防ぐために５ｋｌｘ程度の低照度下で培養するのが
好ましい。光は天然光のように昼夜で明暗を生じさせて
もよいが、培養期間を短縮するためには連続照射が好ま
しい。また培養中は培養を促進するために３〜１０％（
Ｖ／Ｖ）の二酸化炭素を含む空気を連続的に通入するの
が好ましい。
光を供給する。光量は受光表面の照度が２０ｋｌｘ以上
となるようにするのが好ましい。藻体濃度が例えば５×
１０５ 細胞／ｍｌ以下の場合には、光による細胞の変
質を防ぐために５ｋｌｘ程度の低照度下で培養するのが
好ましい。光は天然光のように昼夜で明暗を生じさせて
もよいが、培養期間を短縮するためには連続照射が好ま
しい。また培養中は培養を促進するために３〜１０％（
Ｖ／Ｖ）の二酸化炭素を含む空気を連続的に通入するの
が好ましい。
【００１０】藻体細胞が４．５×１０７ 〜６×１０７
個／ｍｌ（多糖濃度３〜４ｇ／ｌ）に増殖した段階で
、（１）培養液を遠心分離等により固液分離し、得られ
た藻体固形分（湿藻体）を、上記培地の硝酸塩濃度を１
／１０（０．００１〜０．００４Ｍ）に減らした以外は
上記培地と同じ培地に再び植藻し、培養を継続する、ま
たは（２）培養液に前記した微量栄養素水溶液を１ｍｌ
／ｌおよび前記した栄養素を添加し、培養を継続する。 上記増殖段階で（１）または（２）の操作を行うことに
より、藻体固形分中に多糖類を多く含む、高い細胞濃度
の微細藻を培養することができる。
個／ｍｌ（多糖濃度３〜４ｇ／ｌ）に増殖した段階で
、（１）培養液を遠心分離等により固液分離し、得られ
た藻体固形分（湿藻体）を、上記培地の硝酸塩濃度を１
／１０（０．００１〜０．００４Ｍ）に減らした以外は
上記培地と同じ培地に再び植藻し、培養を継続する、ま
たは（２）培養液に前記した微量栄養素水溶液を１ｍｌ
／ｌおよび前記した栄養素を添加し、培養を継続する。 上記増殖段階で（１）または（２）の操作を行うことに
より、藻体固形分中に多糖類を多く含む、高い細胞濃度
の微細藻を培養することができる。
【００１１】培養は、多糖の生産速度が低下した時点で
終了するのが好ましい。多糖の生産速度が低下すると、
培養液中の溶出多糖が増加して藻体固形分中の多糖（細
胞内多糖および細胞壁多糖）濃度が低下するため、多糖
類の抽出を効率よく行うことができなくなる。またこれ
以上培養を続けても溶出多糖が増え、全多糖量の増加が
少なくなり、さらに培養液の粘性が著しく上昇し、培養
の継続および培養液の固液分離が困難となる。
終了するのが好ましい。多糖の生産速度が低下すると、
培養液中の溶出多糖が増加して藻体固形分中の多糖（細
胞内多糖および細胞壁多糖）濃度が低下するため、多糖
類の抽出を効率よく行うことができなくなる。またこれ
以上培養を続けても溶出多糖が増え、全多糖量の増加が
少なくなり、さらに培養液の粘性が著しく上昇し、培養
の継続および培養液の固液分離が困難となる。
【００１２】本発明においては、培養期間２０日程度で
多糖濃度が１２〜１４ｇ／ｌとなり、多糖の生産速度が
鈍くなる。この時点における溶出多糖濃度は１ｇ／ｌ以
下であり、培養液から固液分離した固形分のみを多糖抽
出処理しても多糖類の損失が少ない。また分離した藻体
固形分中の多糖濃度は７５〜９０重量％と高いため、多
糖類の抽出を効率よく行うことができる。
多糖濃度が１２〜１４ｇ／ｌとなり、多糖の生産速度が
鈍くなる。この時点における溶出多糖濃度は１ｇ／ｌ以
下であり、培養液から固液分離した固形分のみを多糖抽
出処理しても多糖類の損失が少ない。また分離した藻体
固形分中の多糖濃度は７５〜９０重量％と高いため、多
糖類の抽出を効率よく行うことができる。
【００１３】
【実施例】以下、本発明を実施例により詳しく説明する
。
。
【００１４】実施例１
天然の海水を０．４５μｍのフィルターに通して濾過し
、硝酸ナトリウムとリン酸二水素カリウムをそれぞれ０
．０３５Ｍ、０．０００５Ｍとなるように加え、次いで
この海水１リットルに表１に示す微量栄養素水溶液１ｍ
ｌを加えた。この海水培地のｐＨは７．６であった。
、硝酸ナトリウムとリン酸二水素カリウムをそれぞれ０
．０３５Ｍ、０．０００５Ｍとなるように加え、次いで
この海水１リットルに表１に示す微量栄養素水溶液１ｍ
ｌを加えた。この海水培地のｐＨは７．６であった。
【００１５】
【表１】
この培地に藻体細胞（ポルフィリジウム・クルエン
ツム）を５×１０６細胞／ｍｌとなるように植藻し、こ
の藻体懸濁培地１リットルを受光面積が約０．０３ｍ２
／ｌであるガラス製偏平フラスコに入れた。照明には
２１５Ｗハロゲンランプを用い、フラスコ表面で２０ｋ
ｌｘの照度となるように調節し、連続的に光を供給した
。また培養液中には５％（Ｖ／Ｖ）の二酸化炭素ガスを
含有する空気を約１００ｍｌ／ｍｉｎ で連続的に通入
し、これによって培養液の攪拌と炭素源の供給を行った
。培養温度は２５℃に保ち、ｐＨの調整は行わなかった
。
ツム）を５×１０６細胞／ｍｌとなるように植藻し、こ
の藻体懸濁培地１リットルを受光面積が約０．０３ｍ２
／ｌであるガラス製偏平フラスコに入れた。照明には
２１５Ｗハロゲンランプを用い、フラスコ表面で２０ｋ
ｌｘの照度となるように調節し、連続的に光を供給した
。また培養液中には５％（Ｖ／Ｖ）の二酸化炭素ガスを
含有する空気を約１００ｍｌ／ｍｉｎ で連続的に通入
し、これによって培養液の攪拌と炭素源の供給を行った
。培養温度は２５℃に保ち、ｐＨの調整は行わなかった
。
【００１６】培養中は適宜少量の試料を採取し、細胞濃
度および多糖濃度を測定した。細胞濃度は、顕微鏡およ
び血球計算盤を用いて試料の生細胞数を直接計測し、ま
た多糖濃度は、フェノール硫酸法による比色定量で絶対
量を求めた（Ｅ．Ｒｅｒｃｉｖａｌ ｅｔ．ａｌ． Ｃ
ａｒｂｈｙｄｒａｔｅ ｒｅｓａｒｃｈ ７２ １６５
−１７６、１９７９ 参照） 。
度および多糖濃度を測定した。細胞濃度は、顕微鏡およ
び血球計算盤を用いて試料の生細胞数を直接計測し、ま
た多糖濃度は、フェノール硫酸法による比色定量で絶対
量を求めた（Ｅ．Ｒｅｒｃｉｖａｌ ｅｔ．ａｌ． Ｃ
ａｒｂｈｙｄｒａｔｅ ｒｅｓａｒｃｈ ７２ １６５
−１７６、１９７９ 参照） 。
【００１７】培養開始後７日目で細胞濃度が６．２×１
０７ 個／ｍｌ（多糖濃度４ｇ／ｌ）に達した。この時
点で培養液を遠心分離し（５０００Ｇ、２０分間）、得
られた沈澱物を新しい培地（硝酸ナトリウム濃度０．０
０３５Ｍとした以外は上記培地と同じ）に植藻し、再び
培養を続けた。１０日後には８．０×１０７ 細胞／ｍ
ｌ（多糖濃度５．９ｇ／ｌ）、１４日後には１１．０×
１０７ 細胞／ｍｌ（多糖濃度９．２ｇ／ｌ）、２０日
後には１３．１×１０７ 細胞／ｍｌ（多糖濃度１２．
５ｇ／ｌ）であった。１８日頃より徐々に培養液の紅色
が退色し始め、２５日後に多糖濃度が１４．４ｇ／ｌに
達したが、液色がオレンジ色に退色し、培養液の粘度が
著しく上昇して培養が困難となり、培養を終了した。こ
のときの培養日数と細胞数および多糖濃度の関係を図１
に示した。
０７ 個／ｍｌ（多糖濃度４ｇ／ｌ）に達した。この時
点で培養液を遠心分離し（５０００Ｇ、２０分間）、得
られた沈澱物を新しい培地（硝酸ナトリウム濃度０．０
０３５Ｍとした以外は上記培地と同じ）に植藻し、再び
培養を続けた。１０日後には８．０×１０７ 細胞／ｍ
ｌ（多糖濃度５．９ｇ／ｌ）、１４日後には１１．０×
１０７ 細胞／ｍｌ（多糖濃度９．２ｇ／ｌ）、２０日
後には１３．１×１０７ 細胞／ｍｌ（多糖濃度１２．
５ｇ／ｌ）であった。１８日頃より徐々に培養液の紅色
が退色し始め、２５日後に多糖濃度が１４．４ｇ／ｌに
達したが、液色がオレンジ色に退色し、培養液の粘度が
著しく上昇して培養が困難となり、培養を終了した。こ
のときの培養日数と細胞数および多糖濃度の関係を図１
に示した。
【００１８】実施例２
実施例１と同様にして培養を開始し、培養開始７日後に
細胞濃度が６．０×１０７ 細胞／ｍｌに達した。この
培養液に上記した表１の微量栄養素水溶液１ｍｌ／ｌと
下記表２の栄養素を添加し、培養を継続した。
細胞濃度が６．０×１０７ 細胞／ｍｌに達した。この
培養液に上記した表１の微量栄養素水溶液１ｍｌ／ｌと
下記表２の栄養素を添加し、培養を継続した。
【００１９】
【表２】
培養液中の細胞数と多糖濃度を実施例１と同様にし
て測定したところ、それぞれ１０日後には７．４×１０
７ 細胞／ｍｌ、５．５ｇ／ｌ、１４日後には１０．５
×１０７ 細胞／ｍｌ、８．５ｇ／ｌ、２０日後には１
２．９×１０７ 細胞／ｍｌ、１２．０ｇ／ｌであった
。このときの培養日数と細胞数および多糖濃度の関係を
図２に示した。
て測定したところ、それぞれ１０日後には７．４×１０
７ 細胞／ｍｌ、５．５ｇ／ｌ、１４日後には１０．５
×１０７ 細胞／ｍｌ、８．５ｇ／ｌ、２０日後には１
２．９×１０７ 細胞／ｍｌ、１２．０ｇ／ｌであった
。このときの培養日数と細胞数および多糖濃度の関係を
図２に示した。
【００２０】比較例１
実施例１、２と同様にして培養を開始し、途中で培地の
入れ換えおよび栄養素の添加を行わずに１４日間培養を
続けた。培養開始後６日目には細胞密度５．０×１０７
細胞／ｍｌ、多糖濃度３．１ｇ／ｌ、１０日後には細
胞密度６．２×１０７ 細胞／ｍｌ、多糖濃度４．８ｇ
／ｌに達したが、その後は細胞密度、多糖濃度ともほと
んど増加せず、１４日後に細胞密度６．３×１０７ 細
胞／ｍｌ、多糖濃度５．０ｇ／ｌに達した時点で培養を
終了した。図３はこの培養の細胞密度および多糖濃度の
変化を示す図である。
入れ換えおよび栄養素の添加を行わずに１４日間培養を
続けた。培養開始後６日目には細胞密度５．０×１０７
細胞／ｍｌ、多糖濃度３．１ｇ／ｌ、１０日後には細
胞密度６．２×１０７ 細胞／ｍｌ、多糖濃度４．８ｇ
／ｌに達したが、その後は細胞密度、多糖濃度ともほと
んど増加せず、１４日後に細胞密度６．３×１０７ 細
胞／ｍｌ、多糖濃度５．０ｇ／ｌに達した時点で培養を
終了した。図３はこの培養の細胞密度および多糖濃度の
変化を示す図である。
【００２１】
【発明の効果】本発明の培養法によれば、藻体固形分中
に多糖類を多く含む、高い細胞濃度の微細藻を得ること
ができるため、この微細藻を用いて効率よく多糖類の抽
出を行うことができる。
に多糖類を多く含む、高い細胞濃度の微細藻を得ること
ができるため、この微細藻を用いて効率よく多糖類の抽
出を行うことができる。
【図１】実施例１における培養結果を示す図である。
【図２】実施例２における培養結果を示す図である。
【図３】比較例１における培養結果を示す図である。
Claims (2)
- 【請求項１】 窒素化合物およびリン化合物を含む培
地を用いて微細藻を培養するに際し、微細藻体が４．５
×１０７ 〜６×１０７ 細胞／ｌに増殖した段階で、
培養液から微細藻体を分離し、得られた微細藻体を、上
記培地の窒素化合物濃度のみを１／１０に減らした新し
い培地に植藻し、再培養することを特徴とする微細藻の
培養法。 - 【請求項２】 窒素化合物およびリン化合物を含む培
地を用いて微細藻を培養するに際し、微細藻体が４．５
×１０７ 〜６×１０７ 細胞／ｌに増殖した段階で、
この培養液に ＺｎＣｌ２
４．０ｍｇ／１００ｍｌ、 Ｈ３ ＢＯ３
６０．０ｍｇ／１００ｍｌ、 ＣｕＣｌ２ ・２Ｈ２ Ｏ
１．５ｍｇ／１００ｍｌ、 ＣｏＣｌ２ ・６Ｈ２ Ｏ
４．０ｍｇ／１００ｍｌ、 ＭｎＣｌ２ ・４Ｈ２ Ｏ
４０．０ｍｇ／１００ｍｌ、 （ＮＨ４）６ Ｍｏ７ Ｏ２４・４Ｈ２Ｏ
３７．０ｍｇ／１００ｍｌ、 および ＦｅＣｌ３ ・６Ｈ２ Ｏ ２
７６．０ｍｇ／１００ｍｌを含む微量栄養素水溶液１ｍ
ｌ／ｌと 硝酸塩 ０．００１〜０．００４モル、
リン酸塩 ０．０００５〜０．００２モル、Ｍｇ
ＳＯ４ ０．０２〜０．０３モル、ＭｇＣ
ｌ２ ０．０２〜０．０３モル、および ＣａＣｌ２ ０．０１〜０．０２モル、か
らなる栄養素を添加することを特徴とする微細藻の培養
法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP404291A JPH04237489A (ja) | 1991-01-17 | 1991-01-17 | 微細藻の培養法 |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP404291A JPH04237489A (ja) | 1991-01-17 | 1991-01-17 | 微細藻の培養法 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JPH04237489A true JPH04237489A (ja) | 1992-08-25 |
Family
ID=11573885
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP404291A Pending JPH04237489A (ja) | 1991-01-17 | 1991-01-17 | 微細藻の培養法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JPH04237489A (ja) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2014200211A (ja) * | 2013-04-08 | 2014-10-27 | 日本電信電話株式会社 | 微細藻類の培養方法および培養制御装置 |
| MD4303C1 (ro) * | 2013-07-05 | 2015-04-30 | Институт Химии Академии Наук Молдовы | Bis(dimetilglioximato)cloro(izonicotinoilhidrazonă-2-hidroxi-1-naftaldehidă)cobalt(III) şi procedeu de cultivare a microalgei Porphyridium cruentum cu utilizarea acestuia |
| WO2020203257A1 (ja) | 2019-04-03 | 2020-10-08 | 株式会社エアレックス | 連続除染装置 |
| WO2022064866A1 (ja) | 2020-09-24 | 2022-03-31 | 株式会社エアレックス | 連続除染装置 |
| WO2023157540A1 (ja) | 2022-02-16 | 2023-08-24 | 株式会社エアレックス | 連続除染・滅菌装置 |
-
1991
- 1991-01-17 JP JP404291A patent/JPH04237489A/ja active Pending
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2014200211A (ja) * | 2013-04-08 | 2014-10-27 | 日本電信電話株式会社 | 微細藻類の培養方法および培養制御装置 |
| MD4303C1 (ro) * | 2013-07-05 | 2015-04-30 | Институт Химии Академии Наук Молдовы | Bis(dimetilglioximato)cloro(izonicotinoilhidrazonă-2-hidroxi-1-naftaldehidă)cobalt(III) şi procedeu de cultivare a microalgei Porphyridium cruentum cu utilizarea acestuia |
| WO2020203257A1 (ja) | 2019-04-03 | 2020-10-08 | 株式会社エアレックス | 連続除染装置 |
| WO2022064866A1 (ja) | 2020-09-24 | 2022-03-31 | 株式会社エアレックス | 連続除染装置 |
| WO2023157540A1 (ja) | 2022-02-16 | 2023-08-24 | 株式会社エアレックス | 連続除染・滅菌装置 |
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|---|---|---|---|
| A02 | Decision of refusal |
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