JPH04228069A - クラスii−制限酵素、その作成法及び、相補的二本鎖dna−配列の認識及び切断法 - Google Patents
クラスii−制限酵素、その作成法及び、相補的二本鎖dna−配列の認識及び切断法Info
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- JPH04228069A JPH04228069A JP3101183A JP10118391A JPH04228069A JP H04228069 A JPH04228069 A JP H04228069A JP 3101183 A JP3101183 A JP 3101183A JP 10118391 A JP10118391 A JP 10118391A JP H04228069 A JPH04228069 A JP H04228069A
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-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【0001】
【産業上の利用分野】本発明は新規のクラスII−制限
酵素SwaI、その作成法及びその使用に関する。
酵素SwaI、その作成法及びその使用に関する。
【0002】
【従来の技術】クラスII−制限酵素は、特定のDNA
−配列を認識し、切断することのできるエンドデオキシ
リボヌクレアーゼである。この場合標的配列中の2つの
ホスホジエステル結合、すなわち各ポリヌクレオチド鎖
につき1つずつを加水分解する。従ってクラスII−制
限酵素はDNA−分子の解析にとって重要である。多く
のDNA−配列に対して特異的なクラスII−制限酵素
はすでに公知であるが、DNA−配列に対して特異的で
また公知の制限酵素のいずれからも従来認識し得ない別
のクラスII−制限酵素を作成することの必要性はなお
依然して存在する。
−配列を認識し、切断することのできるエンドデオキシ
リボヌクレアーゼである。この場合標的配列中の2つの
ホスホジエステル結合、すなわち各ポリヌクレオチド鎖
につき1つずつを加水分解する。従ってクラスII−制
限酵素はDNA−分子の解析にとって重要である。多く
のDNA−配列に対して特異的なクラスII−制限酵素
はすでに公知であるが、DNA−配列に対して特異的で
また公知の制限酵素のいずれからも従来認識し得ない別
のクラスII−制限酵素を作成することの必要性はなお
依然して存在する。
【0003】
【発明が解決しようとする課題】従って本発明は、従来
この種のいずれの酵素からも認識することのできなかっ
た配列を特異的に認識し、切断することのできる新規の
制限酵素を提供することを根本課題とする。
この種のいずれの酵素からも認識することのできなかっ
た配列を特異的に認識し、切断することのできる新規の
制限酵素を提供することを根本課題とする。
【0004】
【課題を解決するための手段】この課題は本発明によれ
ば、認識配列及び標識によって特定された切断位置:
ば、認識配列及び標識によって特定された切断位置:
【
0005】
0005】
【化4】
【0006】を有するクラスII−制限酵素によって解
決される。
決される。
【0007】本発明による新規制限酵素(以後SwaI
と記載する)は25℃の最適温度を有する。この酵素は
トリス/HCl−緩衝液(DTE(ジチオトレイトール
)1.0mモル/l、MgCl10mモル/l及びNa
Cl100mモル/lを有する)50mモル/l中でp
H7.0〜pH8.0間で良好な活性を有する。最適p
HはpH7.5である。
と記載する)は25℃の最適温度を有する。この酵素は
トリス/HCl−緩衝液(DTE(ジチオトレイトール
)1.0mモル/l、MgCl10mモル/l及びNa
Cl100mモル/lを有する)50mモル/l中でp
H7.0〜pH8.0間で良好な活性を有する。最適p
HはpH7.5である。
【0008】認識配列はウイルス:SV40及びアデノ
2、ファージ:ラムダ、T7及びファイX174、及び
ファージ誘導体:M13mp7並びにプラスミドpBR
322及びpBR328の各DNAを完全に消化するこ
とによって確認することができる。これらのDNA−分
子はSwaIで処理される。
2、ファージ:ラムダ、T7及びファイX174、及び
ファージ誘導体:M13mp7並びにプラスミドpBR
322及びpBR328の各DNAを完全に消化するこ
とによって確認することができる。これらのDNA−分
子はSwaIで処理される。
【0009】第I表は次の配列:5′−ATTTAAA
T−3′ を認識する酵素に関し、実験的に観察された切断位置特
異性を、コンピュータで決定された切断位置特異性と比
較して示すものである。
T−3′ を認識する酵素に関し、実験的に観察された切断位置特
異性を、コンピュータで決定された切断位置特異性と比
較して示すものである。
【0010】
【表1】
【0011】酵素の認識配列内の切断位置をM13−誘
導体で決定するが、この場合誘導体は普遍的な配列決定
プライマー[メッシング(J.Messing)その他
の論文(1981)、“Nucl.Acids Re
s.”9、309〜321]の結合位置に対して約30
〜200塩基の間隔でこの認識配列を有する。まずM1
3−誘導体の一本鎖DNAで普遍的な配列決定プライマ
ーを用いてチエインターミネーター法により配列反応を
行う(サンガー(F.Sanger)その他、(197
7)、“Pros.Natl.Acad.Sci.US
A”、74、560〜564、メッシング(J.Mes
sing)その他、(1981)、“Nucl.Aci
ds Res.”、9、309〜321)。
導体で決定するが、この場合誘導体は普遍的な配列決定
プライマー[メッシング(J.Messing)その他
の論文(1981)、“Nucl.Acids Re
s.”9、309〜321]の結合位置に対して約30
〜200塩基の間隔でこの認識配列を有する。まずM1
3−誘導体の一本鎖DNAで普遍的な配列決定プライマ
ーを用いてチエインターミネーター法により配列反応を
行う(サンガー(F.Sanger)その他、(197
7)、“Pros.Natl.Acad.Sci.US
A”、74、560〜564、メッシング(J.Mes
sing)その他、(1981)、“Nucl.Aci
ds Res.”、9、309〜321)。
【0012】これと並行して配列決定プライマーを、T
4−ポリヌクレオチド−キナーゼ及び[γ−32P]A
TPでその5′−末端を放射能で標識する。5′−末端
を標識した配列決定プライマーを一本鎖M13−DNA
に混成した後、DNAポリメラーゼI、(クレノウ酵素
)及び、dATP、dCTP、dGTP及びdTTPか
らなるデオキシヌクレオチド三リン酸混合物と取込反応
を実施することにより、部分的に二本鎖DNAを作成す
る。新たに合成された鎖が5′−末端を放射能で標識さ
れているこのDNAを、制限酵素SgrAIで切断する
。切断産物の半分を付加的に更にT4DNAポリメラー
ゼで4種のデオキシヌクレオチド三リン酸のすべてから
なる混合物の存在において処理することにより、平滑な
DNA−末端を得る。
4−ポリヌクレオチド−キナーゼ及び[γ−32P]A
TPでその5′−末端を放射能で標識する。5′−末端
を標識した配列決定プライマーを一本鎖M13−DNA
に混成した後、DNAポリメラーゼI、(クレノウ酵素
)及び、dATP、dCTP、dGTP及びdTTPか
らなるデオキシヌクレオチド三リン酸混合物と取込反応
を実施することにより、部分的に二本鎖DNAを作成す
る。新たに合成された鎖が5′−末端を放射能で標識さ
れているこのDNAを、制限酵素SgrAIで切断する
。切断産物の半分を付加的に更にT4DNAポリメラー
ゼで4種のデオキシヌクレオチド三リン酸のすべてから
なる混合物の存在において処理することにより、平滑な
DNA−末端を得る。
【0013】反応生成物の解析は配列決定ゲル(尿素8
モル/l、5%ポリアクリルアミド)での電気泳動及び
その後のオートラジオグラフィにより行う。その結果の
解説はブラウン(N.L.Brown)及びスミス(M
.Smith)(“Methods in Enz
ymology”、65(1980)、391〜401
)によって行われている。放射能で標識した断片の鎖長
を配列リーダと比較することによって切断位置を決定す
る。付加的にT4DNAポリメラーゼで処理したプロー
ブはSwaIで切断されたプローブと比較した際各バン
ドの同一鎖長を示す。これによりSwaIは平滑なDN
A−末端を生じることが明らかである。SwaIの切断
は従って次の特異性を有する標識配列内で行われる:
モル/l、5%ポリアクリルアミド)での電気泳動及び
その後のオートラジオグラフィにより行う。その結果の
解説はブラウン(N.L.Brown)及びスミス(M
.Smith)(“Methods in Enz
ymology”、65(1980)、391〜401
)によって行われている。放射能で標識した断片の鎖長
を配列リーダと比較することによって切断位置を決定す
る。付加的にT4DNAポリメラーゼで処理したプロー
ブはSwaIで切断されたプローブと比較した際各バン
ドの同一鎖長を示す。これによりSwaIは平滑なDN
A−末端を生じることが明らかである。SwaIの切断
は従って次の特異性を有する標識配列内で行われる:
【
0014】
0014】
【化5】
【0015】実験的に決定された切断位置の数は、配列
5′−ATTTAAAT−3′ に関し種々のDNAでコンピュータ解析することによっ
て得られた切断位置の数と一致する(第I表)。付加的
にこれらのデータを更に“Gene”、10(1980
)357〜370からの各表と比較した。
5′−ATTTAAAT−3′ に関し種々のDNAでコンピュータ解析することによっ
て得られた切断位置の数と一致する(第I表)。付加的
にこれらのデータを更に“Gene”、10(1980
)357〜370からの各表と比較した。
【0016】SwaIは有利には、ブドウ球菌(Sta
phylococcus)属、有利にはスタフィロコッ
カス・ワルネリ(StaphylococcusWar
neri)種の微生物を培養し、この酵素を細胞から得
ることによって、作成することができる。スタフィロコ
ッカス・ワルネリDSM5872を使用するのが特に有
利である。微生物スタフィロコッカス・ワルネリはドイ
ツ微生物寄託局(DSM)(Mascheroder
Weg16、3300Braunschweig、B
RD在)に寄託され、寄託番号DSM5872を有する
。
phylococcus)属、有利にはスタフィロコッ
カス・ワルネリ(StaphylococcusWar
neri)種の微生物を培養し、この酵素を細胞から得
ることによって、作成することができる。スタフィロコ
ッカス・ワルネリDSM5872を使用するのが特に有
利である。微生物スタフィロコッカス・ワルネリはドイ
ツ微生物寄託局(DSM)(Mascheroder
Weg16、3300Braunschweig、B
RD在)に寄託され、寄託番号DSM5872を有する
。
【0017】この作成には通常の生化学精製法を使用す
ることができ、この場合その都度得られた分画で酵素の
存在を、その認識配列の切断により容易に検出すること
ができる。基質としては例えばアデノ2−DNAが適し
ている。得られたDNA−断片はアガロースゲル内で断
片分離に常用の緩衝系において臭化エチジウムの存在で
電気泳動的に分離する。
ることができ、この場合その都度得られた分画で酵素の
存在を、その認識配列の切断により容易に検出すること
ができる。基質としては例えばアデノ2−DNAが適し
ている。得られたDNA−断片はアガロースゲル内で断
片分離に常用の緩衝系において臭化エチジウムの存在で
電気泳動的に分離する。
【0018】酵素を作成するために使用した微生物はD
ifco社製の脳−心臓−浸出培地中で好気的に成長さ
せる。最適の成長条件は37℃、pH6.5〜7.5で
ある。倍加時間は約3時間である。
ifco社製の脳−心臓−浸出培地中で好気的に成長さ
せる。最適の成長条件は37℃、pH6.5〜7.5で
ある。倍加時間は約3時間である。
【0019】酵素を分離し、通常の化学的及び機械的方
法により、例えば高圧分散、超音波又は酵素的破壊によ
って精製する。本発明による方法の1つの優れた実施態
様では細胞をフレンチプレスを介して破壊する。上澄み
の他の精製はアフィニティ−クロマトグラフィ及びイオ
ン交換クロマトグラフィを介して実施するのが有利であ
る。アフィニティクロマトグラフィ用の材料としては例
えばヘパリン−セファロースCL−6B(Pharma
cia社製)が適当である。適当な陽イオン交換体は例
えばホスホ−セルロース(Whatman社製)である
。陰イオン交換体としてはDEACファスト−フロー(
DEAC fast−flow)の商品名で市販され
ている生成物(Pharmacia社製)が適している
。しかし当業者に公知の他のクロマトグラフィ材料もま
た適している。
法により、例えば高圧分散、超音波又は酵素的破壊によ
って精製する。本発明による方法の1つの優れた実施態
様では細胞をフレンチプレスを介して破壊する。上澄み
の他の精製はアフィニティ−クロマトグラフィ及びイオ
ン交換クロマトグラフィを介して実施するのが有利であ
る。アフィニティクロマトグラフィ用の材料としては例
えばヘパリン−セファロースCL−6B(Pharma
cia社製)が適当である。適当な陽イオン交換体は例
えばホスホ−セルロース(Whatman社製)である
。陰イオン交換体としてはDEACファスト−フロー(
DEAC fast−flow)の商品名で市販され
ている生成物(Pharmacia社製)が適している
。しかし当業者に公知の他のクロマトグラフィ材料もま
た適している。
【0020】
【実施例】次の各実施例により本発明を更に詳述する。
【0021】例 1
スタフィロコッカス・ワルネリDSM5872を37℃
で12〜15時間培養し、対数期の終りに収集する。培
地としては脳−心臓培地(Brain Heart
Medium、Difco社製)を使用する。
で12〜15時間培養し、対数期の終りに収集する。培
地としては脳−心臓培地(Brain Heart
Medium、Difco社製)を使用する。
【0022】細胞パスタ(生重量30g)を、プロテア
ーゼインヒビターを含む緩衝液A(トリス−HCl40
mモル/l、pH8.0、EDTA0.1mモル/l、
2−メルカプトエタノール7mモル/l)2.4容量に
再度懸濁させる。引続き細胞をフレンチプレスの反復工
程によって23,000lb/in2で破壊し、沈殿を
分離する。上澄みにNH4Clを加える(最終濃度0.
1モル/l)。ポリミン−沈殿によって核酸を除去する
。引続き遠心分離した上澄みをヘパリン−セファロース
カラムで分画する。溶出するためNaCl0〜1モル/
lの勾配を使用する。SwaIはNaCl0.4〜0.
6モル/lの分画中に認められる。活性分画を緩衝液B
(トリス−HCl40mモル/l、pH8.0;EDT
A0.1mモル/l;2−メルカプトエタノール7mモ
ル/l;10%(w/v)グリセリン)に対して平衡化
し、DEAE−ファスト−フローカラムで分画する。溶
出するためNaCl0〜0.5モル/lの勾配を使用す
る。活性分画を緩衝液Bに対して透析する。
ーゼインヒビターを含む緩衝液A(トリス−HCl40
mモル/l、pH8.0、EDTA0.1mモル/l、
2−メルカプトエタノール7mモル/l)2.4容量に
再度懸濁させる。引続き細胞をフレンチプレスの反復工
程によって23,000lb/in2で破壊し、沈殿を
分離する。上澄みにNH4Clを加える(最終濃度0.
1モル/l)。ポリミン−沈殿によって核酸を除去する
。引続き遠心分離した上澄みをヘパリン−セファロース
カラムで分画する。溶出するためNaCl0〜1モル/
lの勾配を使用する。SwaIはNaCl0.4〜0.
6モル/lの分画中に認められる。活性分画を緩衝液B
(トリス−HCl40mモル/l、pH8.0;EDT
A0.1mモル/l;2−メルカプトエタノール7mモ
ル/l;10%(w/v)グリセリン)に対して平衡化
し、DEAE−ファスト−フローカラムで分画する。溶
出するためNaCl0〜0.5モル/lの勾配を使用す
る。活性分画を緩衝液Bに対して透析する。
【0023】引続きこれを、緩衝液Bで平衡化したホス
ホセルロース−カラムに装入する。溶出のため緩衝液B
でNaCl0〜1モル/lの勾配を使用する。SwaI
はNaCl0.3〜0.5モル/lの分画中に認められ
る。
ホセルロース−カラムに装入する。溶出のため緩衝液B
でNaCl0〜1モル/lの勾配を使用する。SwaI
はNaCl0.3〜0.5モル/lの分画中に認められ
る。
【0024】各活性分画を収集し、貯蔵緩衝液(トリス
−HCl20mモル/l、pH8.0;2−メルカプト
エタノール10mモル/l、NaCl100mモル/l
、EDTA0.1mモル/l及び50%(v/v)グリ
セリン)に対して透析する。 例 2 活性の測定 酵素単位の特定:SwaI1Uは、最終容量25μlで
アデノ2−DNA1μgを25℃で1時間以内に切断す
る。
−HCl20mモル/l、pH8.0;2−メルカプト
エタノール10mモル/l、NaCl100mモル/l
、EDTA0.1mモル/l及び50%(v/v)グリ
セリン)に対して透析する。 例 2 活性の測定 酵素単位の特定:SwaI1Uは、最終容量25μlで
アデノ2−DNA1μgを25℃で1時間以内に切断す
る。
【0025】インキュベーション緩衝液(トリス−HC
l500mモル/l、pH7.5、37℃、塩化マグネ
シウム100mモル/l、NaCl1モル/l及びDT
E10mモル/l)2.5μlの混合物に、水17.9
μl及びアデノ2−DNA(光学密度:5.6OD/m
l)3.6μl並びにSwaI−溶液(1U/μl)1
μlを加える。この溶液を25℃で1時間インキュベー
トし、氷上で冷却し、尿素7mモル/l、20%(w/
v)サッカロース、EDTA60mモル/l及び0.0
1%(w/v)ブロムフェノールブルーからなる停止−
試薬5μlを加える。引続き分離を電気泳動法により1
%アガロースゲル中で100Vで3〜4時間行う。得ら
れたバンドをDNA長さの基準と比較して同定する。
l500mモル/l、pH7.5、37℃、塩化マグネ
シウム100mモル/l、NaCl1モル/l及びDT
E10mモル/l)2.5μlの混合物に、水17.9
μl及びアデノ2−DNA(光学密度:5.6OD/m
l)3.6μl並びにSwaI−溶液(1U/μl)1
μlを加える。この溶液を25℃で1時間インキュベー
トし、氷上で冷却し、尿素7mモル/l、20%(w/
v)サッカロース、EDTA60mモル/l及び0.0
1%(w/v)ブロムフェノールブルーからなる停止−
試薬5μlを加える。引続き分離を電気泳動法により1
%アガロースゲル中で100Vで3〜4時間行う。得ら
れたバンドをDNA長さの基準と比較して同定する。
Claims (5)
- 【請求項1】 認識配列及び標識によって特定された
切断位置: 【化1】 を有するクラスII−制限酵素。 - 【請求項2】 スタフィロコッカス・ワルネリ(St
aphylococcusWarneri)DSM58
72から得ることのできる請求項1記載の制限酵素。 - 【請求項3】 認識配列及び標識によって特定された
切断位置: 【化2】 を有するクラスII−制限酵素を得るに当り、ブドウ球
菌属の微生物を培養し、酵素を細胞から得ることを特徴
とするクラスII−制限酵素の作成法。 - 【請求項4】 スタフィロコッカス・ワルネリDSM
5872を培養する請求項3記載の方法。 - 【請求項5】 認識配列及び標識によって特定された
切断位置: 【化3】 を有するクラスII−制限酵素を使用することを特徴と
する、相補的二本鎖DNA−配列:5′−ATTTAA
AT−3′の認識及び切断法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE4014524A DE4014524A1 (de) | 1990-05-07 | 1990-05-07 | Typ ii - restriktionsendonuklease swai |
DE4014524.7 | 1990-05-07 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH04228069A true JPH04228069A (ja) | 1992-08-18 |
JPH0667318B2 JPH0667318B2 (ja) | 1994-08-31 |
Family
ID=6405825
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP3101183A Expired - Fee Related JPH0667318B2 (ja) | 1990-05-07 | 1991-05-07 | クラスii−制限酵素、その作成法及び、相補的二本鎖dna−配列の認識及び切断法 |
Country Status (5)
Country | Link |
---|---|
US (1) | US5158878A (ja) |
EP (1) | EP0456086B1 (ja) |
JP (1) | JPH0667318B2 (ja) |
AT (1) | ATE125866T1 (ja) |
DE (2) | DE4014524A1 (ja) |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
WO2003064637A1 (en) * | 2001-11-06 | 2003-08-07 | Medtronic, Inc. | Method and system for myocardial infarction repair |
US6245545B1 (en) * | 1999-04-27 | 2001-06-12 | New England Biolabs, Inc. | Method for cloning and producing the SwaI restriction endonuclease |
WO2008129428A2 (en) | 2007-04-19 | 2008-10-30 | Molecular Detection Inc. | Methods, compositions and kits for detection and analysis of antibiotic-resistant bacteria |
TWI758267B (zh) | 2015-12-14 | 2022-03-21 | 美商宏觀基因股份有限公司 | 對於pd-1和ctla-4具有免疫反應性的雙特異性分子及其使用方法 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3823451C2 (de) * | 1988-07-11 | 1997-02-20 | Forschungszentrum Juelich Gmbh | Rekombinante DNA, damit transformierte Mikrooganismen und Verwendung dieser Mikroorganismen zur Herstellung von L-Lysin mit Hilfe dieser Mikroorganismen |
-
1990
- 1990-05-07 DE DE4014524A patent/DE4014524A1/de not_active Withdrawn
-
1991
- 1991-04-30 AT AT91106981T patent/ATE125866T1/de not_active IP Right Cessation
- 1991-04-30 DE DE59106111T patent/DE59106111D1/de not_active Expired - Fee Related
- 1991-04-30 EP EP91106981A patent/EP0456086B1/de not_active Expired - Lifetime
- 1991-05-06 US US07/695,936 patent/US5158878A/en not_active Expired - Lifetime
- 1991-05-07 JP JP3101183A patent/JPH0667318B2/ja not_active Expired - Fee Related
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
ATE125866T1 (de) | 1995-08-15 |
DE4014524A1 (de) | 1991-11-14 |
US5158878A (en) | 1992-10-27 |
DE59106111D1 (de) | 1995-09-07 |
EP0456086A1 (de) | 1991-11-13 |
JPH0667318B2 (ja) | 1994-08-31 |
EP0456086B1 (de) | 1995-08-02 |
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