JPH0395118A - プロスタグランジン含有脂肪小体製剤 - Google Patents
プロスタグランジン含有脂肪小体製剤Info
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、プロスタグランジン(以下PCともいう)の
遊離抑制を目的としたPCを含有してなる脂肪小体製剤
に関する。
遊離抑制を目的としたPCを含有してなる脂肪小体製剤
に関する。
PCは、血管拡張、末梢循環改善、降圧、抗脂肪分解、
ナトリウム利尿など種々多彩な生理作用を有することか
ら、医薬品への適用がなされている。この有用なPGR
を医薬品として適用する際には、生体内で容易に不活性
物質へ代謝されることと、病巣選択性が問題となる。
ナトリウム利尿など種々多彩な生理作用を有することか
ら、医薬品への適用がなされている。この有用なPGR
を医薬品として適用する際には、生体内で容易に不活性
物質へ代謝されることと、病巣選択性が問題となる。
そのため、一般にPG[製剤は瀕回投与が必要となり、
患者の苦痛を増すばかりでなく目的以外のM織に対する
作用が副作用となる恐れがあり、これら問題点の解決の
手段としてPGIIを脂肪小体に含有させた製剤が作ら
れている。
患者の苦痛を増すばかりでなく目的以外のM織に対する
作用が副作用となる恐れがあり、これら問題点の解決の
手段としてPGIIを脂肪小体に含有させた製剤が作ら
れている。
〔発明が解決しようとする課題]
しかし、脂肪小体含有製剤においても、製剤としての安
定性が悪く、一旦、脂肪小体に含有させたPGIIがT
!離してくるという問題点がある。
定性が悪く、一旦、脂肪小体に含有させたPGIIがT
!離してくるという問題点がある。
本発明の目的は、PC類を脂肪小体に含有させた製剤に
おいて、PGIiの遊離が抑制された脂肪小体製剤を提
供することにある。
おいて、PGIiの遊離が抑制された脂肪小体製剤を提
供することにある。
〔諜題を解決するための手段]
そこで、本発明者らは、PGfiを脂肪小体に含有させ
た製剤において、PCIIの脂肪小体からの遊離抑制に
ついて種々検討した結果、膜脂質に正電荷脂質を組み込
むことにより、問題点が解決することを見い出し、本発
明を完戒した。
た製剤において、PCIIの脂肪小体からの遊離抑制に
ついて種々検討した結果、膜脂質に正電荷脂質を組み込
むことにより、問題点が解決することを見い出し、本発
明を完戒した。
〔発明のI或]
即ち、本発明の製剤は、薄膜脂質に正電荷脂質が組み込
まれてなることを特徴とするプロスタグランジン含有脂
肪小体製剤である. 本発明において、脂肪小体(リポソーム)は、多重同心
二重層、単一層あるいは多重層の構造をなし、各種蛋白
質その他の生理活性物質をその間隙に取り込む能力を有
するものであり、例えばリン脂質またはある種の別の脂
質および正電荷脂質とから形威された薄膜とPCIII
を含有する溶液とを接触させ、P(4をこの脂肪小体の
間隙部に取り込ませることによって調製される。
まれてなることを特徴とするプロスタグランジン含有脂
肪小体製剤である. 本発明において、脂肪小体(リポソーム)は、多重同心
二重層、単一層あるいは多重層の構造をなし、各種蛋白
質その他の生理活性物質をその間隙に取り込む能力を有
するものであり、例えばリン脂質またはある種の別の脂
質および正電荷脂質とから形威された薄膜とPCIII
を含有する溶液とを接触させ、P(4をこの脂肪小体の
間隙部に取り込ませることによって調製される。
当該脂肪小体を形或するための脂質としては、リン脂質
、糖脂質、誘導脂質等が挙げられる。リン脂質としては
、生理的に許容され、そして代謝されうる無毒のリン脂
質であればいずれも本発明に用いられる。例えば、ホス
ファチジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチ
ジン酸、ホスファチジルグリセリン、ホスファチジルエ
タノールアミン、ホスファチジルイノシトール、スフィ
ンゴξエリン、ジセチルホスフェート、リゾホスファチ
ジルコリン(リゾレシチン)、あるいはこれらの混合物
である大豆リン脂質、卵黄リン脂質等が用いられる。
、糖脂質、誘導脂質等が挙げられる。リン脂質としては
、生理的に許容され、そして代謝されうる無毒のリン脂
質であればいずれも本発明に用いられる。例えば、ホス
ファチジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチ
ジン酸、ホスファチジルグリセリン、ホスファチジルエ
タノールアミン、ホスファチジルイノシトール、スフィ
ンゴξエリン、ジセチルホスフェート、リゾホスファチ
ジルコリン(リゾレシチン)、あるいはこれらの混合物
である大豆リン脂質、卵黄リン脂質等が用いられる。
糖脂質としてはセレブロシド、硫脂質(Sulfati
c!e) 、ガングリオシド等が例示される.誘導脂質
としてはコール酸、デオキシコール酸等が例示される。
c!e) 、ガングリオシド等が例示される.誘導脂質
としてはコール酸、デオキシコール酸等が例示される。
ぞの添加量は10〜240μmol程度である。
正電荷脂質としては、正電荷を有する脂質であれば特に
限定されない。例えば、炭素数l2〜22の飽和または
不飽和脂肪族アミン、塩基性アミノ酸に脂肪酸やコレス
テロール等を結合したもの等が挙げられ、具体的にはオ
レイルアミン、ステアリルアミン等が例示される.その
添加量は20〜180μno1程度である。正電荷脂質
はリン脂質と混合して用い、その比率(モル比)は、リ
ン脂質;正電荷脂質=9二2〜1:18 好ましくは8
:4程度である。
限定されない。例えば、炭素数l2〜22の飽和または
不飽和脂肪族アミン、塩基性アミノ酸に脂肪酸やコレス
テロール等を結合したもの等が挙げられ、具体的にはオ
レイルアミン、ステアリルアミン等が例示される.その
添加量は20〜180μno1程度である。正電荷脂質
はリン脂質と混合して用い、その比率(モル比)は、リ
ン脂質;正電荷脂質=9二2〜1:18 好ましくは8
:4程度である。
本発明で用いられるPGは、アラキドン酸代謝産物また
はそれらの構造類似化合物であればよい。
はそれらの構造類似化合物であればよい。
アラキドン酸代謝産物としては、例えばプロスタグラン
ジン、ブロスタサイクリン、トロンボキサン、ロイコト
リエン等が挙げられる.また、アラキドン酸代謝産物構
造類似化合物としては、例えばアラキドン酸代謝産物を
基本骨格とし構造修飾された6−ケトーPGE.誘導体
、カルバサイクリン誘導体、PGDz誘導体等が挙げら
れる。PGの添加量としては、10〜100μg程度が
例示される。
ジン、ブロスタサイクリン、トロンボキサン、ロイコト
リエン等が挙げられる.また、アラキドン酸代謝産物構
造類似化合物としては、例えばアラキドン酸代謝産物を
基本骨格とし構造修飾された6−ケトーPGE.誘導体
、カルバサイクリン誘導体、PGDz誘導体等が挙げら
れる。PGの添加量としては、10〜100μg程度が
例示される。
脂肪小体の製造の概略は、次の通りである。即ち、適当
な脂質および正電荷脂質を含有する溶液(脂質を変威し
ない溶媒、例えばクロロホルム等の溶液)から溶媒を留
去して脂質の薄膜を作り、この薄膜にPGを含有する溶
液を加えて激しく振とうし、好ましくは超音波処理を行
ない、脂質を均一分散させて脂質薄膜懸濁液を調製する
。ここで、PCを含有する溶液に使用される溶媒として
は、脂肪小体を変戒、分解せず、かつ生理的に許容され
るものであればよく、例えば水(好ましくはpH6〜8
の緩衝液、生理食塩水等)、エタノール等が挙げられる
。
な脂質および正電荷脂質を含有する溶液(脂質を変威し
ない溶媒、例えばクロロホルム等の溶液)から溶媒を留
去して脂質の薄膜を作り、この薄膜にPGを含有する溶
液を加えて激しく振とうし、好ましくは超音波処理を行
ない、脂質を均一分散させて脂質薄膜懸濁液を調製する
。ここで、PCを含有する溶液に使用される溶媒として
は、脂肪小体を変戒、分解せず、かつ生理的に許容され
るものであればよく、例えば水(好ましくはpH6〜8
の緩衝液、生理食塩水等)、エタノール等が挙げられる
。
なお、脂質薄膜の調製に際し、トコフエロール(ビタξ
ンE)、コレステロール、ホスファチジン酸、ジセチル
ホスフエート、パルミチン酸等の脂肪酸を安定化剤とし
て添加してもよい。
ンE)、コレステロール、ホスファチジン酸、ジセチル
ホスフエート、パルミチン酸等の脂肪酸を安定化剤とし
て添加してもよい。
また、本発明製剤はアルブミン、デキストラン、ビニル
重合体、非イオン性界面活性剤、ゼラチン、ヒドロキシ
エチル澱粉から選ばれた高分子物質を安定化剤として配
合してもよい。
重合体、非イオン性界面活性剤、ゼラチン、ヒドロキシ
エチル澱粉から選ばれた高分子物質を安定化剤として配
合してもよい。
当該高分子物質安定化剤は、薬物と共にリポソーム内の
空隙に取りこまれていてもよいし、また薬物を取りこん
だリポソーム製剤に添加配合(即ち、リポソーム外に添
加・配合)してもよい。もちろんリポソームの内外とも
に配合してもよいことはいうまでもない.当該安定化剤
の添加量は脂質1重量部に対して0.5〜10重量部、
好ましくは1〜5重量部である. 本発明においては、超音波処理を施すことが好ましく、
例えば粒子径を3μ以下に調整し、その超音波処理の条
件としては、O′C〜70゜C、好ましくは35℃〜4
5゜Cで、1〜60分間程度行えばよい。
空隙に取りこまれていてもよいし、また薬物を取りこん
だリポソーム製剤に添加配合(即ち、リポソーム外に添
加・配合)してもよい。もちろんリポソームの内外とも
に配合してもよいことはいうまでもない.当該安定化剤
の添加量は脂質1重量部に対して0.5〜10重量部、
好ましくは1〜5重量部である. 本発明においては、超音波処理を施すことが好ましく、
例えば粒子径を3μ以下に調整し、その超音波処理の条
件としては、O′C〜70゜C、好ましくは35℃〜4
5゜Cで、1〜60分間程度行えばよい。
上記の処理により直径が約0.02〜1μの範囲のPG
を含む粒子を提供でき、要すればさらに分子ふるい処理
および爽雑物または遊離物を除去するためのゲル濾過処
理を行なうこともできる。
を含む粒子を提供でき、要すればさらに分子ふるい処理
および爽雑物または遊離物を除去するためのゲル濾過処
理を行なうこともできる。
かくして得られたPG含有脂肪小体製剤は脂質1重量部
あたり0.1重量部以上のPCを含有しており、しかも
その粒子径は均一であり、極めて微少であることから医
療用製剤として好ましい。
あたり0.1重量部以上のPCを含有しており、しかも
その粒子径は均一であり、極めて微少であることから医
療用製剤として好ましい。
尚、PCの脂肪小体中への取り込み率は、調製されたリ
ポソームをエタノールで溶解し、液体クロマトグラフィ
−(ゲル透過クロマトグラフィー)分析を行なって得ら
れた値を示す。
ポソームをエタノールで溶解し、液体クロマトグラフィ
−(ゲル透過クロマトグラフィー)分析を行なって得ら
れた値を示す。
PCを取り込んだ脂肪小体、は沈澱物として回収するこ
とができる。例えば、脂肪小体を含有する媒体を超遠心
処理し、脂肪小体を沈澱として回収することができる。
とができる。例えば、脂肪小体を含有する媒体を超遠心
処理し、脂肪小体を沈澱として回収することができる。
このものは次いで要すれば生理的に許容される水溶液で
洗浄し、ペレット状、懸濁状製剤として調整する。製剤
化は医薬品の製法において広く公知の方法に準ずる。ま
た本製剤は、液状製剤を凍結させた後、減圧下で乾燥さ
せ、凍結乾燥製剤としても提供される。
洗浄し、ペレット状、懸濁状製剤として調整する。製剤
化は医薬品の製法において広く公知の方法に準ずる。ま
た本製剤は、液状製剤を凍結させた後、減圧下で乾燥さ
せ、凍結乾燥製剤としても提供される。
本則は、一般的に経口薬又は注射薬として使用され、そ
の投与量は戒人の場合、PGとして1〜50μg,0.
02 〜lng/lkg/1回の量において投与される
.使用時は、生理的に許容される水溶液によって溶解ま
たは希釈して用いられるのが一般的であるが、製剤上の
工夫によって錠剤化、カプセル化、腸液性カプセル化し
てもよい。
の投与量は戒人の場合、PGとして1〜50μg,0.
02 〜lng/lkg/1回の量において投与される
.使用時は、生理的に許容される水溶液によって溶解ま
たは希釈して用いられるのが一般的であるが、製剤上の
工夫によって錠剤化、カプセル化、腸液性カプセル化し
てもよい。
実施例l
市販卵黄由来フォスファチジルコリン(以下、EPCと
もいう)60■およびオレイルアミン11■を5mのク
ロロホルムに溶解し、これにプロスタグランジンE,3
0μgをエタノール100 μlに溶解したものを加え
、25一容の梨型フラスコに入れ、ロータリーエバボレ
ーターで溶媒を留去した.O.1Mリン酸を含む生理食
塩水(PBSともいう;pH5.0)lmを加え、振盪
、超音波照射、遠心分離後、上清を0.2μmのボリカ
ーボネートメンブレンフィルターで濾過した。
もいう)60■およびオレイルアミン11■を5mのク
ロロホルムに溶解し、これにプロスタグランジンE,3
0μgをエタノール100 μlに溶解したものを加え
、25一容の梨型フラスコに入れ、ロータリーエバボレ
ーターで溶媒を留去した.O.1Mリン酸を含む生理食
塩水(PBSともいう;pH5.0)lmを加え、振盪
、超音波照射、遠心分離後、上清を0.2μmのボリカ
ーボネートメンブレンフィルターで濾過した。
実施例2
市販卵黄由来フォスファチジルコリン75■およびオレ
イルアξン(OAmともいう)55■をlOtnlのク
ロロホルムに溶解し、これにプロスタグランジンTz
100ugを工9 / −ル200 /7 Nに溶解
したものを加え、25戚容の梨型フラスコに入れ、a一
タリーエバポレーターで溶媒を留去した。0.1Mリン
酸を含む生理食塩水(pH5. 0 )2 mlを加え
、振盪、超音波照射、遠心分離後、上清を0. 2μm
のポリヵーボネートメンブレンフィルターで濾過した。
イルアξン(OAmともいう)55■をlOtnlのク
ロロホルムに溶解し、これにプロスタグランジンTz
100ugを工9 / −ル200 /7 Nに溶解
したものを加え、25戚容の梨型フラスコに入れ、a一
タリーエバポレーターで溶媒を留去した。0.1Mリン
酸を含む生理食塩水(pH5. 0 )2 mlを加え
、振盪、超音波照射、遠心分離後、上清を0. 2μm
のポリヵーボネートメンブレンフィルターで濾過した。
実験例
下記の第1表に示す4種類のリポソームを調製し、それ
ぞれについて中性溶媒中での安定性を調べた。
ぞれについて中性溶媒中での安定性を調べた。
(以下余白)
第1表
リポソーム 脂質組成 電荷 型A U I
RPC二〇Am =10 : O 中性
SUVA U 2 EPC:OAm =10
: O 中性 MLV largeA U 3
EPC:OA+m =9 : 2 正電荷 S
UVA04 EPC:OAI1=8 : 4
正電荷 S[JV尚、S U V (small un
ilamellar vescicle)は小さな単ラ
メラ小胞を、M L V (nultilanella
r vescicle)は多重ラメラ小胞を、M L
V largeは粒径の大きな多重ラメラ小胞をそれぞ
れ表わす。
RPC二〇Am =10 : O 中性
SUVA U 2 EPC:OAm =10
: O 中性 MLV largeA U 3
EPC:OA+m =9 : 2 正電荷 S
UVA04 EPC:OAI1=8 : 4
正電荷 S[JV尚、S U V (small un
ilamellar vescicle)は小さな単ラ
メラ小胞を、M L V (nultilanella
r vescicle)は多重ラメラ小胞を、M L
V largeは粒径の大きな多重ラメラ小胞をそれぞ
れ表わす。
チウム PGE A ボソームのpcE+(約5
r#g)をエタノール0. 5 miに溶解し、これに
トリチウム標識PC;E, (25μCi/0.25
d 70%エタノーノレ水?容液)を〆昆合した。
r#g)をエタノール0. 5 miに溶解し、これに
トリチウム標識PC;E, (25μCi/0.25
d 70%エタノーノレ水?容液)を〆昆合した。
25d容の梨型フラスコにRPCのクロロホルム溶液お
よび上記のPGE,のエタノール溶液を量り取り(第2
表参照)、ロータリーエバボレーターで溶媒を除去して
脂質薄膜を調製した。
よび上記のPGE,のエタノール溶液を量り取り(第2
表参照)、ロータリーエバボレーターで溶媒を除去して
脂質薄膜を調製した。
第2表
リポソーム EPC
OAm PGE.
AUI 0.375affl−15μi(100
μmol) (100 μg)A
U 2 0.375戚
l5μl(100umol)
(100 .17 g)AU3 0.33
8jd 0.132d l5μl( 9
0μmol) (20μmol) (100
tt g)A U 4 0.300d
0.264 d l5μi( 80μmo
l) (40//1101) (100 t
l E)これに再度クロロホルムを加えて溶解し、ロー
タリーエバボレーターで溶媒を除去して脂質薄膜とした
。このクロロホルムによる溶解・薄膜化操作を3回繰り
返した。内壁に脂質薄膜を形威したフラスコをデシケー
ターに入れ真空ボンブで1時間吸引した.次にフラスコ
にp B’k (1)l{5. 0 )を0.6d入れ
、ボルテクス・ミキサーで撹拌して脂質懸濁液(MLV
)を調製した. AU2以外はソニケーションによってSUv化した。脂
質懸濁液(MLV)の入った梨型フラスコをソニケータ
ーにより20分間ソニケーションした. ソニケーションによって分散した液をPBS (pH5
.0)で2−に希釈し、15000 r p mで30
分間遠心して上清を採取した。これを0.22μフィル
ターで濾過した. AU2はPBS(p}15.0)で2−に希釈してその
まま用いた. ゛′ での 普 PBS (p}17.4) 、5%ISA (ヒト血清
アルブミン) /PBS(pH7. 4 ”)またはラ
ット血漿0.45一にリポソーム化PGE,0.05−
を加えよく混合した.チューブのキャップを閉めて、こ
れを37゜Cの恒温水槽に浸し、インキエベーションし
た。
μmol) (100 μg)A
U 2 0.375戚
l5μl(100umol)
(100 .17 g)AU3 0.33
8jd 0.132d l5μl( 9
0μmol) (20μmol) (100
tt g)A U 4 0.300d
0.264 d l5μi( 80μmo
l) (40//1101) (100 t
l E)これに再度クロロホルムを加えて溶解し、ロー
タリーエバボレーターで溶媒を除去して脂質薄膜とした
。このクロロホルムによる溶解・薄膜化操作を3回繰り
返した。内壁に脂質薄膜を形威したフラスコをデシケー
ターに入れ真空ボンブで1時間吸引した.次にフラスコ
にp B’k (1)l{5. 0 )を0.6d入れ
、ボルテクス・ミキサーで撹拌して脂質懸濁液(MLV
)を調製した. AU2以外はソニケーションによってSUv化した。脂
質懸濁液(MLV)の入った梨型フラスコをソニケータ
ーにより20分間ソニケーションした. ソニケーションによって分散した液をPBS (pH5
.0)で2−に希釈し、15000 r p mで30
分間遠心して上清を採取した。これを0.22μフィル
ターで濾過した. AU2はPBS(p}15.0)で2−に希釈してその
まま用いた. ゛′ での 普 PBS (p}17.4) 、5%ISA (ヒト血清
アルブミン) /PBS(pH7. 4 ”)またはラ
ット血漿0.45一にリポソーム化PGE,0.05−
を加えよく混合した.チューブのキャップを閉めて、こ
れを37゜Cの恒温水槽に浸し、インキエベーションし
た。
一定時間インキエベーションした後にセファクリルS〜
400を用いてゲル濾過し、放射活性、リン脂質濃度お
よび2BOn+wでの吸光度を測定した。
400を用いてゲル濾過し、放射活性、リン脂質濃度お
よび2BOn+wでの吸光度を測定した。
放氾五企曵皿定
サンプリングした液100μtに液体シンチレータ−1
0m1を加え、良く撹拌した後、放射活性を測定した。
0m1を加え、良く撹拌した後、放射活性を測定した。
1ン PC の
リン脂質測定用試薬(酵素剤)(デンカ生研社製)を用
いて測定した. 第3表 リポソーム PH 各リポソームの平均粒子径を第4表に示した。
いて測定した. 第3表 リポソーム PH 各リポソームの平均粒子径を第4表に示した。
第4表
リポソーム 平均粒子径(nm)
た。
(実験結果)
生ヱヱニ憲立性状
各リポソームのpHは第3表のとおりであった。
尚、オレイルアξンを含むリポソーム(AU4)のpH
が高かったので、INの塩酸を加えて調整した。
が高かったので、INの塩酸を加えて調整した。
(以下余白)
リポソーム50ullとPBS (pi{7.4} 9
50μlを混合し、37゜Cで10分間インキユベーシ
ョンした後、混合液500llfをPBS(pH5.0
)で平衡化したPD−10カラムでゲル濾過した。
50μlを混合し、37゜Cで10分間インキユベーシ
ョンした後、混合液500llfをPBS(pH5.0
)で平衡化したPD−10カラムでゲル濾過した。
対照として、リポソームをPBS(pi{5.0)でイ
ンキエベーションしたものを同様にゲル濾過した.各リ
ポソームについてのゲル濾過プロフィールを第1図に示
した。
ンキエベーションしたものを同様にゲル濾過した.各リ
ポソームについてのゲル濾過プロフィールを第1図に示
した。
ML■(AU2)はpl{5.0でもボイド画分にPG
已.の放射活性が現れなかったが、これは粒子径が大き
く、カラムに目詰まりしたためと考えられる。その他の
リポソームではpH5.0でインキユベーションした場
合、PGE,の放射活性は殆どボイド画分に現れており
、PGE, とリポソームの挙動が一敗していることを
示している。
已.の放射活性が現れなかったが、これは粒子径が大き
く、カラムに目詰まりしたためと考えられる。その他の
リポソームではpH5.0でインキユベーションした場
合、PGE,の放射活性は殆どボイド画分に現れており
、PGE, とリポソームの挙動が一敗していることを
示している。
一方、pH7.4でインキユベーションした場合には、
リポソームAUI、AU2でPGE,の放射活性の大半
がボイド百分から消失し、低分子画分に移動した。この
ことはP G E +がリポソームから遊離したことを
示している。リポソームAU3、AU4ではPGE,の
放射活性の約半分は低分子画分に移動したが、残りの放
射活性はボイド画分に止まっていた. 以上の結果から、pl17.4でのリポソームからのP
GE,の遊離を防ぐためには、リポソームの多重層化は
効果がなく、リポソームの膜脂質に正電荷脂質を加える
ことが有効であることが分かる。
リポソームAUI、AU2でPGE,の放射活性の大半
がボイド百分から消失し、低分子画分に移動した。この
ことはP G E +がリポソームから遊離したことを
示している。リポソームAU3、AU4ではPGE,の
放射活性の約半分は低分子画分に移動したが、残りの放
射活性はボイド画分に止まっていた. 以上の結果から、pl17.4でのリポソームからのP
GE,の遊離を防ぐためには、リポソームの多重層化は
効果がなく、リポソームの膜脂質に正電荷脂質を加える
ことが有効であることが分かる。
ヱ土工まヱ曵髪覧
次に、5%ISA存在下での挙動をリポソームAUIお
よびAU4について調べた。リポソーム0.05一を5
%HSAを含むP B S (pH5. 0および7.
4)0.95a+ffiと混合し、37゜Cで10分間
インキユベーションした後、PBS(pH5.0)で平
衡化したセフアクリルS−400カラムでゲル濾過した
。ゲル濾過プロフィールを第2図に示した。
よびAU4について調べた。リポソーム0.05一を5
%HSAを含むP B S (pH5. 0および7.
4)0.95a+ffiと混合し、37゜Cで10分間
インキユベーションした後、PBS(pH5.0)で平
衡化したセフアクリルS−400カラムでゲル濾過した
。ゲル濾過プロフィールを第2図に示した。
ρI{5.0でインキヱベーションしたリポソームAU
1の溶出パターンは、フラクシジン9と14にピークを
持つ二峰性を示した。フラクション9がHSAと吸着し
たPGE,,フラクションl4がフリーのPGE.と考
えられる。pH7.4でインキユベーシッンしたリポソ
ームAUIではフラクション14のピークがなかった。
1の溶出パターンは、フラクシジン9と14にピークを
持つ二峰性を示した。フラクション9がHSAと吸着し
たPGE,,フラクションl4がフリーのPGE.と考
えられる。pH7.4でインキユベーシッンしたリポソ
ームAUIではフラクション14のピークがなかった。
正電荷の脂質(オレイルアミン)を含むリポソームAU
4では、リポソームALI1のどでクと比べてフラクシ
ョン9での立ち上がり急峻ではなく、フラクシヲン9以
前にPGE,の一部が溶出されている.この現象はpH
5.0および7.4の両方で認められた。
4では、リポソームALI1のどでクと比べてフラクシ
ョン9での立ち上がり急峻ではなく、フラクシヲン9以
前にPGE,の一部が溶出されている.この現象はpH
5.0および7.4の両方で認められた。
以上の結果から、アルブミンが存在する場合でも、正電
荷脂質をリポソーム膜に組み込むことは、リポソームか
らのPGE.の遊離を防ぐための効果があると考えられ
る。
荷脂質をリポソーム膜に組み込むことは、リポソームか
らのPGE.の遊離を防ぐための効果があると考えられ
る。
(発明の効果〕
本発明によれば、脂肪小体からのPGの遊離を抑えるこ
とができる。特にpH中性付近で十分な効果がある。
とができる。特にpH中性付近で十分な効果がある。
従って、本発明によれば安定性に優れたPG含有脂肪小
体を製剤として提供することができる。
体を製剤として提供することができる。
第1図はリポソームAUI〜AU4におけるゲル濾過の
プロフィールで、pH7.4におけるPC;E,の遊離
を示す図であり、第2図はリポソームAU1およびAU
4におけるゲル濾過のプロフィールで、アルブミン存在
下でのPGE.の遊離を示す図である。 第2図 AU4
プロフィールで、pH7.4におけるPC;E,の遊離
を示す図であり、第2図はリポソームAU1およびAU
4におけるゲル濾過のプロフィールで、アルブミン存在
下でのPGE.の遊離を示す図である。 第2図 AU4
Claims (1)
- 薄膜脂質に正電荷脂質が組み込まれてなることを特徴と
するプロスタグランジン含有脂肪小体製剤。
Priority Applications (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP1232479A JPH0395118A (ja) | 1989-09-07 | 1989-09-07 | プロスタグランジン含有脂肪小体製剤 |
EP19900116948 EP0416527A3 (en) | 1989-09-07 | 1990-09-04 | Prostaglandin-containing liposome preparations |
CA002024804A CA2024804A1 (en) | 1989-09-07 | 1990-09-06 | Prostaglandin-containing liposome preparations |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
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