JPH0327282A - 硝酸レダクターゼ酵素系の生産方法 - Google Patents

硝酸レダクターゼ酵素系の生産方法

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JPH0327282A
JPH0327282A JP2071719A JP7171990A JPH0327282A JP H0327282 A JPH0327282 A JP H0327282A JP 2071719 A JP2071719 A JP 2071719A JP 7171990 A JP7171990 A JP 7171990A JP H0327282 A JPH0327282 A JP H0327282A
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nitrate
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enzyme system
nitrate reductase
thermostable
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Sigurdur Baldursson
シグルドウル バルドウルソン
Jakob K Kristjansson
ヤコブ ケイ.クリストヤンソン
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    • C12Q1/26Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving oxidoreductase
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 発明の背景 本発明は耐熱性蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系を生産
し得る新規好熱性微生物、微生物の単離および培養方法
および蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系の製造方法およ
び硝酸塩含有試料の硝酸塙の定最に対する分析および商
業的のその使用に関する。
蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系はいくつかの中温微生
物に既に見出されている(ロウおよびギ!) ルスビー、1.975)  。これらの酵素系は耐熱性
ではなく、室温で全く不安定である。これらは診断用に
限定きれ、十分な安定性に欠けるため商業的用途はなく
、酸素の存在により阻害され、硝酸塩の還元は分析目的
に対し通例時間中で定鼠的ではない。
水および廃水中の硝酸塩に対し急速かつ有利な分析を求
める嬰求があることは一般に既知である。
本発明者らはアイスランドの温泉からその環境の近くで
新規耐熱性蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系を生産し得
る新規微生物を単離した。
本発明の耐熱性蟻酸結合硝酸Iノダクターゼ酵素系は高
温で酸素の存在で反応でき、非常に短時間に硝酸から亜
硝酸への還元を完結できる。蟻酸結合硝酸レダクターゼ
酵素系は溶液で数週室温で安定であり、乾燥形で数ケ月
安定である。
硝酸の定量に対し今日入手し得る商品は硝酸を亜硝酸に
還元するためにカドミウムを使用し、0.010…のN
O3−Nまで硝酸を検出できる。本発明は0.  O0
5pllm NOs  Nまで硝酸を定置でき、カドミ
ウム還元方法よりはるかに容易に使用でき、カドミウム
廃棄により生ずるような公害問題を提起しない。
通性嫌気性菌である新種Thetou+s alIae
rebieas菌株のような好熱性微生物から耐熱性蟻
酸結合硝酸レダクターゼ酵素系の製造および使用、およ
び硝酸の定量分析および商業的用途に細胞全体又は部分
精製物の使用を供することが本発明の目的である。Th
ermus aquajicusのような他の種はこれ
らの酵素系を有さず、偏性好気菌である。
本発明は上記菌の単離および好熱微生物の代表としてア
イスランドの温泉から単離した例えば同じThermu
sの菌株を使用する耐熱性蟻酸結金硝酸レダクターゼ酵
素系の製造および上記酵素系による硝酸定置法の記載に
ついて以下に記載する。
発明の肇狛 好熱菌は安定で、しばしば室温では不活性であるが、6
0−100℃のような高温に加熱すると活性化する耐熱
性酵素を含有する。これらの酵素はその固有性から、こ
れらが長期の保存寿命を有し、貯蔵に対し低温で保存し
なくてもよいので触媒として有用になる。本発明により
単離したT. anaerobicnsの新規好熱菌株
は新規蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系を有し、これは
pH4.5で■00℃までの温度で活性を有し、短時間
かつ容易に硝酸を還元し、定量するのに有用である。
本発明は好熱性通性嫌気性菌から新規蟻酸結合硝酸!ノ
ダクターゼ酵素系の製造方法、特に水、廃水、この場合
野菜および他の食料品から水中に抽出できる、のような
硝酸含有試料の硝酸を定量するその分析および商業的使
用に関する。
耐熱性酵素系は基質強化基礎培地に好熱菌株の細菌細胞
を高温で接種し、細胞を集め、洗滌することにより製遺
する。蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系を含有する細胞
はホルメートおよび緩衝物質の存在で硝酸を亜硝酸に還
元するために使用する。
分析化学の範囲内では、硝酸の定量は化学診断で特に重
要な役割を演ずる。飲料水、廃水およびいくつかの食別
品、特に野菜中の硝酸濃度は重大な健康および公害問題
を提起する。
純粋な化学的定量法又は部分酵素定殴法又は分光定量法
(例えば、カドミウムを使用する特に頻繁に使用される
方法、デバーズー合金還元法、分光光度選別法(APH
A、1985))2)と比較して、本発明は一層特異的
で、使用が容易である。
上記化学的方法と比較して重要な利点は、腐禽性強酸又
は有毒薬剤を使用せず、熟練労働者のみでなく、非熟練
者に対しても手動で方法の実施に一般的有用性を有し、
および試料を、すなわち実験室から遠隔地の水源から集
めた後、形成色度を標準クロマトグラフイチャートと比
較することにより20分以内に測定結果を評価しうる可
能性を有することである。
これまで硝酸定量に対(7既知の酵素系は酸素により阻
害され、熱安定性に欠け、又は反応は異常な程進行が遅
く、従って反応時間は45℃で4〜5時間かかる。本発
明による硝酸の亜硝酸への還元は酸素が存在してさえ1
0分で実施しうろことは従って驚くべきことである。
高温方法は一層高い反応割合および基質が生成物に転換
する時間が短かい利点を有する。沸騰水中の高温方法は
特に重要である。何故なら加熱処理の温度調整が不要で
あるからである。別の重要な固有性は室温で好熱細胞お
よび酵素の低活性および高安定性であり、これは細胞お
よび酵素の回収中、および貯蔵中冷蔵の必要性を軽減し
、長期保存寿命を有する触媒活性が商業的に供される。
発明の詳細な記載 本発明の細胞菌株は次のThetvu特徴を有する二グ
ラム陰性、胞子を形戊せず、オキシダーゼ陽性、薄い桿
状体長さ数μm,液体培地で75℃で糸状体を形成二代
表的Ther+us種と区別する1つの特徴は電子受容
体として硝酸による嫌気発育である。
嫌気的に硝酸塩上に成育し、硝酸を亜硝酸に還元するr
bermus菌株は上記したが、これらは詳細に特徴化
されてはいない。これらは硝酸に対ずる還元剤としてホ
ルメートを使用できることを示さなかった。又、これら
のレダクターゼの特徴は全く測定されなかった(ハドソ
ンら、1989”;ムンスターら、1986”,シャー
プおよびウィリアムズ、19885))。耐熱性蟻酸結
合硝酸レダクターゼ酵素系はこれまで記載されていない
。従ってこれは新規レダクターゼ酵素系を有する新規微
生物である。これらの新しい特徴に基づいて単離物は新
種、Thermus auetobieusとして規定
される。
本発明で使用し、同一特徴を有する T. amaetobicuは:M−10 (DSM−
5225)およびM−41 (DSM−5226)  
(DeutscheSaws!Iag van Mik
rootganische++ andXellkil
lwven, DMBH, 1 9 8 9年2月24
日、プダベスト条約により寄託された)である。
75℃のアイスランドの温泉でその場所でKNO3溶液
を給与し栄養強化した3ケ月生育菌株を単離した。単離
方法は次の通りであった・その場所で栄養強化した試料
を採取し、75℃で2週間、完全に満たした瓶中で培養
し、次に新鮮培地を完全に満たした瓶中に接種して2週
間培養した。瓶からの試料は0.45μmフィルター上
で濾過し、フィルターは寒天培地上に置いた。65℃で
2日培養し、フィルター上のコ口ニーを採取し、純粋カ
ルチャーが定着するまで寒天培地上で画線培養した。
細胞の生育に対し次のものを使用した:細胞の生育に対
する醗酵は0.  5重量%酵母エキスおよび0.5i
1IFt%KN03を含有する完全培地で行なった。寒
天培地に対しては、3%寒天(30g/l)を使用した
。pHはオートクレープ処理前約中性に設定した(例1
参照)。
細胞は400mlの培地を含有する500mlフラスコ
で培養し、振機せずに65℃又は75℃で培養した。そ
の後上記と同じ100lの培地を含有する150lの醗
酵容器で細胞を生育させた。
細胞および酵素の製造では、細胞は遠心分離により採集
j7、硝酸塩および亜硝酸塩を含まなくなるまで0.8
5% NaC l溶液中で洗滌した(例2参照)。洗滌
後、細胞は凍結および解凍を反復し、標準アッセイ條件
下でアッセイ管当り10分で0.005〜0.75μg
No3−Nに0.03mlのこの酵素溶液(例3参照)
が定景的に減少するような濃度(湿潤重屋/ml)に稀
釈した。この方法から得た重要な改良はポルメートの使
用が可能なことである。これは安価な、非毒性還元剤源
であり、非耐熱性酵素を使用する上記系で必要であるよ
うに酵素をアッセイで回避する必要がない。硝酸含有試
料の硝酸定級に対l7この酵素標品の使用方法は例4に
記載する。
例1, Thetmus anietobicusの発
育T. xnaetobieusの培養に使用する基礎
塩培地は次の通りである: ニトリロトリ酢酸      45■/IFeC   
O4H  0    350μg/AP32 MnC   ・4H  O    175μg//22 CoC   @614  G    105μg/j?
22 ZnC  2          70.czg//C
uC   ・2H  0     1811g//22 NaMoO  ・2tl20   245μg/A’4 N a S e O  −5 14 2 0   2 
8 0 /’ g / !!3 H3B04         7μg/I!N I C
 1 2●6H20     7μg/j?K N O
 35 g / ’ 緩衝剤はpH7.  2の20mMリン酸塩緩衝剤であ
る。II!の培地に5gの酵母玉キス又は2.5gの酵
母エキスおよび2.5gのトリプトンを添加する。50
0mlのフラスコ中の発育に対しNaN31lllMを
オー1・クレープ処理前に添加する。
1. 5 0 7’醗酵容器で発育させる場合、始めの
細胞の好気発育後NaN31I!lMを添加する。
500mlフラスコは振盪せずに65℃で4日恒温器で
培養し、細胞を採集し、硝酸アッセイに使用する。
100l醗酵容器に2lの18時間生育した好気発育細
胞を接種した。2 5 O rpmの一定撹拌および6
5℃で連続通気(5l/分)を7時間維持し、次に65
℃で20時間培養基にN2 (17!/分)を連続的に
通気した。細胞を遠心分離により採集し、硝酸塩および
亜硝酸塩を含有しな《なるまで0.85%NaCl中で
洗滌した。
例2.細胞全体の懸濁液の製造 洗滌した全体の細胞を次の溶液=40%グリセロール、
0.85%NaClおよび0.17%安息香酸ナトリウ
ムに懸濁する。この酵素溶液の活性は直線的に0.  
005 〜0.75ppmN03Nに減少する(第1図
参照)。懸濁液の湿潤細胞の代表的濃度は0.  1.
 g/mlである。
例3,蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系の特性例1およ
び2で製造した酵素活性を有イる全体の細胞調製街は特
に記載しない場合5oIllMのホルメートおよび5 
0 pllm N 0 3N中で85℃およびpH4.
  5で定量分析する。最適活性はpH4.  5にお
いてである(第2図参照)。最高活性は85℃において
である(第3図参照)。硝酸塩に対する分析條件で水溶
液中の半減期(沸騰水)は少なくとも15分、90℃で
少なくとも90分、および80℃で少なくとも120分
である(第4図参照)。
例4.硝酸塩の定置方法 溶液A:蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系溶液。
酵素溶液は沸騰水中で1o分で1 ml試料溶液のNO
3−Nを0.005 〜0.75μgに減少する触媒活
性を示し、O−  1 g/ml (湿潤重:!It/
ml)の全体の細胞濃度で40%グリセロールおよび0
.85%NaCIおよび0.17%安息香酸ナトリウム
溶液として貯蔵した。この溶液は直接分析に使用し室温
で6週間保存できる。
溶液B:ホルメート溶液:クエン酸、リン酸塩緩衝液a
}14.  5中の1。OMホルメート。
溶液C : 0.  O 0 5”0.  7 5pp
m No3−Nを含有する試料溶液。
色素試薬: 溶液D:3M  HCI中の1−%スルファニル酸溶液
E:0.02% N〜(1〜ナフチル)一エチレンジア
ミンジハイドロクロリド。
実験方法。
試薬ブランクに対する測定。
2mlアッセイ管中にピペットする: 試料溶液(C) +l. Oml 溶液A             311IJl   
    3hl溶液850μ1       50pl
混合し、沸騰水中で10分インキユベートし次に添加:
溶液D             0. 2ml   
   O. 2m[硝酸塩水溶液。
10分後形或色度を標準化クロマトグラフィーチャート
と比較し、又は形成危度を540nmで測定し、試薬ブ
ランクを控除する。
例5.各稲試料中の硝酸塩の定量方法 溶液Cは食品抽出物から製造することを除いて方法は例
4と同じである。食品試料を秤量し、3分間ブレンダー
中の50ml蒸留水中に混合し、10分間沸騰水浴中の
半分満たしたメスフラスコに保持した。次に水を標線ま
で添加し、試料はワットマンkl濾紙を通して濾遍した
。結果は第1表に示す。
第1表。食品抽出物の硝酸塩の定鼠 ソーセージ 白キャベツ 0.145    Q、OfI   O.225   
 10(10.34Q    O.081)i+5  
  94100 442 引用文献 1) Love,R.HJ Gillespie.M.
C. 1975 .AvEscherichia co
li Sjrai+i lot tlse inNit
rate Anx!ysis、Journal of 
Agricultareand Food Chemi
stry 23, 783−785.2)^PHA, 
AWW^,W[’CF(1985).Standmtd
 methodsfor !he Examinati
on oi Valet andWms+ewater
. 161h ed. WRghiBlu+, D, 
C,3) }[Ildson, J. A. , Mo
rgin, H. W. & Daniel, R. 
M. 1989.Numerical Classif
ication o[ ThermusIsolate
s from GIoball7 Distribut
ed llofSprings,Systematic
 and^ppliedMicrobiology I
I,250−256.4) Munster. M. 
I, , Munster, A.P.Woodrow
, J.R, &Sharp,R.J.IH6.Iso
lation  and  PrelirBinary
Taxonomic Studies al Thet
mus StrainsIsolated from 
Yellowstone National Park
,USA.Journal of General M
ierobiolegy 132.1677−1683 5) Sharp,R.].& Williams,R
.^, 0. 1988Properties  of
  Thct+us  rubcr  Strains
Isolated IroffiIcelandic 
Hot Springs andDNA:DNA Ho
mology of Thermus  rober 
 andThermns mq+utieus.App
lied andEnrttonmenlal Mic
robiology 54.2049−2053.
【図面の簡単な説明】
第E図は試料中の硝酸塩濃度に対L,Aの依存関係を示
す。 第2図はpllが反応速度に如何に影響するがを示す。 第3図は温度が反応速度に如何に影饗するがを示す。 第4図は温度不活性化カーブを示す。

Claims (12)

    【特許請求の範囲】
  1. (1)実質的に純粋形のThermusanaerob
    icusを含むことを特徴とする、耐熱性蟻酸結合硝酸
    レダクターゼ酵素系を生産し得る新規好熱微生物。
  2. (2)実質的に純粋形のThermusanaerob
    icusM−10およびM−41を含む、請求項1記載
    の微生物。
  3. (3)実質的に純粋形のThermusanaerob
    icusM−10(DSM−5226)およびM−41
    (DSM−5225)を含む、請求項1又は2記載の微
    生物。
  4. (4)KNO_3溶液を給与した、Thermusan
    aerobicusを含有する試料を温泉から単離し、
    試料から細菌を適当な収量で生産する温度および生育條
    件で、完全に満たした瓶中で培養し、培養物からThe
    rmusanaerobicusを単離することを特徴
    とする、実質的に生物学的に純粋形のThermusa
    naerobicusを単離する方法。
  5. (5)60℃から沸点までの水の温度で基質としてホル
    メートを使用して硝酸塩を亜硝酸塩に還元し、酵素系は
    Thermusanaerobicusに由来すること
    を特徴とする、酵素的に活性形の耐熱性蟻酸結合硝酸レ
    ダクターゼ酵素系。
  6. (6)基質として硝酸塩およびホルメートを使用して測
    定して80℃で少なくとも120分、90℃で少なくと
    も90分、100℃で少なくとも15分の活性半減期を
    有し、酵素系はThermusanaerobicus
    に由来し、pH4.5および85℃の温度で最高活性を
    有することを特徴とする、請求項4の耐熱性蟻酸結合硝
    酸レダクターゼ酵素系の酵素的に活性の細胞全体の調製
    物。
  7. (7)次の工程: a)好熱性菌の菌株を培養基に接種し、 b)65〜85℃の温度で細菌を培養し、 c)酸素なしで細菌を培養し、 d)遠心分離により耐熱性蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵
    素系を含有する消費培地上澄から細菌を純化する工程を
    含むことを特徴とする、耐熱性酵素の生産方法。
  8. (8)硝酸塩含有試料を耐熱性蟻酸結合硝酸レダクター
    ゼ酵素系とホルメートの存在で反応させて亜硝酸塩を形
    成し、通例技術により試料中の硝酸塩の尺度として形成
    亜硝酸塩を測定することを特徴とする、硝酸塩の定量方
    法。
  9. (9)方法は熱水、好ましくは沸騰水中で、酸素の存在
    を回避するために何ら特別の予防策を講ぜずに行なう、
    請求項8記載の方法。
  10. (10)耐熱性蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系は硝酸
    塩およびホルメートを基質として使用して測定して80
    ℃で少なくとも120分、90℃で少なくとも90分、
    100℃で少なくとも15分の活性半減期を有し、Th
    ermus anaerobicusに由来し、かつp
    H4.5および85℃の温度で最高活性を有する、請求
    項8記載の方法。
  11. (11)酵素系はThermus anaerobic
    usM−10(DSM−5226)およびM−41(D
    SM−5225)からである、請求項10記載の方法。
  12. (12)耐熱性蟻酸結合硝酸レダクターゼ酵素系はTh
    ermus属の細菌からである、請求項8記載の方法。
JP2071719A 1989-03-20 1990-03-20 硝酸レダクターゼ酵素系の生産方法 Pending JPH0327282A (ja)

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