JPH03218466A - リムラステスト陽性植物糖脂質、それらを含む免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬、動物用免疫機能検査薬、医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飲料、飼料 - Google Patents
リムラステスト陽性植物糖脂質、それらを含む免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬、動物用免疫機能検査薬、医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飲料、飼料Info
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- JPH03218466A JPH03218466A JP2025192A JP2519290A JPH03218466A JP H03218466 A JPH03218466 A JP H03218466A JP 2025192 A JP2025192 A JP 2025192A JP 2519290 A JP2519290 A JP 2519290A JP H03218466 A JPH03218466 A JP H03218466A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
[産業上の利用分野]
本発明は、リムラステスト陽性植物糖脂質に間する.
より詳細には、本発明は、リムラステスト陽性植物糖脂
質及びその少なくともl種を含む免疫機能活性化剤、動
物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬、動物用免疫機
能検査薬、医M#外品、化粧品、食品、機能性食品、飲
料、飼料壽に関する.[従来の技術] 生物には、生体の内部環境が外来性及び内因性の異物に
よって攪乱されるのを防ぎ、生体の恒常性を維持するた
めの免疫機能が備わっている.従って、免疫機能の低下
は健康の悪化、各種疾病の発病、老化促進の原因となり
、その活性化は健康向上、各種疾病の発病阻止、治癒、
老化防止につながる. このため、免疫II能を活性化させる物質の提供が要請
ざれており、現在、PSK [別名クレスチン(呉羽化
学株式会社の登録商標〉]、レンチナン(味の素株式会
社の登録商標)、ベスタチン(日本化薬株式会社の登録
商標)、ソニフィラン(科研製薬株式会社の登録商標)
、OK−432[キャンサー ケモセラビー レポー
トウ バートウ1(CancerChemother−
apy Reports Partl)、vol.
58、No.l、10頁(1972)、別名ビシバニー
ル(中外製薬株式会Uの登録商標)]等が知られている
. 又、リムラステスト陽性(後って説明する)の糖脂質と
しては、大iI菌LPS (脂質多糖体)、百日咳菌L
. p s ,サルモネラiiiLPS等の薗界源糖脂
質の存在は知られており、各種実験で利用されているが
、毒性が高いために、用途は何ら実用化されていない.
リムラステスト陽性植物糖脂質についてはその存在すら
報告されていない.[発明が解決しようとする課題] 従来の免疫機能活性化剤のうちで、PSK、レンチナン
、ベスタチン、ソニフィランにはTNF産生能がないの
で、それらの免疫III能活性化能は低い. 一方、OK−432にはTNF産生能があるが、大量投
与が必要であることから、発熱、悪寒、血圧低下、血小
板減少等の副作用の発生が避けられず、従って化学療法
係数が小さい.更に、生産工程に、微生物培養と極めて
煩雑な分離、精製とが含まれるために生産コストが高い
という問題点もある.加えて、簡便な経口投与や経皮投
与では効果がないので、投与上の便宜に欠ける.ここて
rTNFJとは、マクロファージにより産生きれる腫瘍
障害因子(T uma rNecrosis Fac
tor)の総称[ザジャーナル オブ バイオロジカル
ケミストリ−(The Journal of
Bjol.Chem.,260,2345〜2354
頁(1985年)]であり、マクロファージの活性が高
まるにつれてその産生置は増していく.「マクロフ7−
ジ」は、免疫担当纏胞の一種であり、動物体内のほとん
ど全ての絹織に分布し、粒子状の異物や体内の老廃細胞
などを捕食して消化する大型のアメーバ状細胞の総称で
ある.『化学療法係数」は、薬剤に対する宿主の最大耐
量と、病原菌に対する薬剤の最小有効濃度の比をいい、
この値が大きい程すぐれた化学療法剤とされる.本発明
は、これら従来技術の欠点が解消された、高い免疫機能
活性化能を有す、化学療法係数が大きくかつ生産コスト
の低い、しかも、静注投与、経口投与、皮膚塗付が可能
なリムラステスト陽性植物糖脂質を提供するために創案
されたものである.ここで「リムラステスト」とは、1
968年にレヴイン(1,evin)により創案された
、カブトガニ血球抽出液と発色合成基質を用いたエンド
トキシン定置法である. 従って、本発明の目的は、高い免疫機能活性化能を持ち
、化学療法係数が大きくかつ生産コストの低い、しかも
、静注投与、経口投与、皮膚投与が可能な、リムラステ
スト陽性植物糖脂質を提供すること、及び、このリムラ
ステスト陽性植物糖脂質の少なくとも1種を含む免疫機
能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬
、動物用免疫機能検査薬、医薬部外品、化粧品、食品、
機能性食品、飲料、飼料等を提供することを目的とする
.ここで「少なくとも1種を含む」とは、本発明のリム
ラステスト陽性植物糖脂質は各別に使用できることはも
ちろん、その意図される用途が阻害されない限り、それ
らの2種以上を任意に繍み合わせて、又、更には他のい
ずれの物質とも朝み合わせて使用できることを意味する
。
質及びその少なくともl種を含む免疫機能活性化剤、動
物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬、動物用免疫機
能検査薬、医M#外品、化粧品、食品、機能性食品、飲
料、飼料壽に関する.[従来の技術] 生物には、生体の内部環境が外来性及び内因性の異物に
よって攪乱されるのを防ぎ、生体の恒常性を維持するた
めの免疫機能が備わっている.従って、免疫機能の低下
は健康の悪化、各種疾病の発病、老化促進の原因となり
、その活性化は健康向上、各種疾病の発病阻止、治癒、
老化防止につながる. このため、免疫II能を活性化させる物質の提供が要請
ざれており、現在、PSK [別名クレスチン(呉羽化
学株式会社の登録商標〉]、レンチナン(味の素株式会
社の登録商標)、ベスタチン(日本化薬株式会社の登録
商標)、ソニフィラン(科研製薬株式会社の登録商標)
、OK−432[キャンサー ケモセラビー レポー
トウ バートウ1(CancerChemother−
apy Reports Partl)、vol.
58、No.l、10頁(1972)、別名ビシバニー
ル(中外製薬株式会Uの登録商標)]等が知られている
. 又、リムラステスト陽性(後って説明する)の糖脂質と
しては、大iI菌LPS (脂質多糖体)、百日咳菌L
. p s ,サルモネラiiiLPS等の薗界源糖脂
質の存在は知られており、各種実験で利用されているが
、毒性が高いために、用途は何ら実用化されていない.
リムラステスト陽性植物糖脂質についてはその存在すら
報告されていない.[発明が解決しようとする課題] 従来の免疫機能活性化剤のうちで、PSK、レンチナン
、ベスタチン、ソニフィランにはTNF産生能がないの
で、それらの免疫III能活性化能は低い. 一方、OK−432にはTNF産生能があるが、大量投
与が必要であることから、発熱、悪寒、血圧低下、血小
板減少等の副作用の発生が避けられず、従って化学療法
係数が小さい.更に、生産工程に、微生物培養と極めて
煩雑な分離、精製とが含まれるために生産コストが高い
という問題点もある.加えて、簡便な経口投与や経皮投
与では効果がないので、投与上の便宜に欠ける.ここて
rTNFJとは、マクロファージにより産生きれる腫瘍
障害因子(T uma rNecrosis Fac
tor)の総称[ザジャーナル オブ バイオロジカル
ケミストリ−(The Journal of
Bjol.Chem.,260,2345〜2354
頁(1985年)]であり、マクロファージの活性が高
まるにつれてその産生置は増していく.「マクロフ7−
ジ」は、免疫担当纏胞の一種であり、動物体内のほとん
ど全ての絹織に分布し、粒子状の異物や体内の老廃細胞
などを捕食して消化する大型のアメーバ状細胞の総称で
ある.『化学療法係数」は、薬剤に対する宿主の最大耐
量と、病原菌に対する薬剤の最小有効濃度の比をいい、
この値が大きい程すぐれた化学療法剤とされる.本発明
は、これら従来技術の欠点が解消された、高い免疫機能
活性化能を有す、化学療法係数が大きくかつ生産コスト
の低い、しかも、静注投与、経口投与、皮膚塗付が可能
なリムラステスト陽性植物糖脂質を提供するために創案
されたものである.ここで「リムラステスト」とは、1
968年にレヴイン(1,evin)により創案された
、カブトガニ血球抽出液と発色合成基質を用いたエンド
トキシン定置法である. 従って、本発明の目的は、高い免疫機能活性化能を持ち
、化学療法係数が大きくかつ生産コストの低い、しかも
、静注投与、経口投与、皮膚投与が可能な、リムラステ
スト陽性植物糖脂質を提供すること、及び、このリムラ
ステスト陽性植物糖脂質の少なくとも1種を含む免疫機
能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬
、動物用免疫機能検査薬、医薬部外品、化粧品、食品、
機能性食品、飲料、飼料等を提供することを目的とする
.ここで「少なくとも1種を含む」とは、本発明のリム
ラステスト陽性植物糖脂質は各別に使用できることはも
ちろん、その意図される用途が阻害されない限り、それ
らの2種以上を任意に繍み合わせて、又、更には他のい
ずれの物質とも朝み合わせて使用できることを意味する
。
【課題を解決するための手段]
原料植物
本発明で使用できる原料植物は、リムラステストで陽性
を示す成分を含むものならばいずれでもよい.l*えば
、裸子植物、単子葉類、双子葉類、シダ植物、ソウ頚、
MRを個別に或は混合して使用できる. 裸子植物としては、例えば、マツ科植物を使用できる。 単子葉類としては、例えば、イネ科、アヤメ科、ショウ
ガ科、サトイモ科、ユリ科の植物を使用できる.イネ科
植物としては、例えば、イネ、麦を使用できる。麦は小
麦、大麦、裸麦、からす麦5えん麦その他いずれの種類
でもよく、又、それらの混合物でもよい. 双子葉類としては、例えば、アカネ科、アブラナ科、ウ
リ科、クスノキ科、クルミ科、コショウ科、セリ科、ツ
ヅラフジ科、ドクダミ科、ナス科、バラ科、マタタビ科
、マメ科、ミカン科、モクレン科、ニクズク科の植物を
個別に或は混合物して使用できる。 シダ植物としては、例えば、トクサ科、ゼンマイ科の植
物を個別に或は混合して使用できる.ソウ類としては、
例えば、カッソウ類、紅ソウ頌、緑ソウ類、ランソウ類
の植物を個別に或は混合物して使用できる.緑ソウ類と
しては、例えばクロレラを使用できる. !i類としては、例えば、担子Mu、子ノウmillの
植物を個別に或は混合して使用できる.リムラステスト
陽性植物糖脂質の検出、含量測定以上に述べた原料植物
中の本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の検出、含
量測定は、例えば、生化学工業株式会社からトキシカラ
ーシステムという名称で市販されている試薬セットを使
用して実施できる.即ち、原料植物を同システムのLS
−lセットと合わせて発色させ、その発色の強さを、同
じく同セットのEt−2セットを使用して作成した検量
線と対比させればよい. 又、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質は、以下に
述べる方法で分離、精製できる.リムラステスト陽性植
物糖脂質の分離、精製■原料植物を必要に応じて適宜細
切、乾燥、粉砕した後に蒸留水によく懸濁し、上清を回
収する。 例えば、原料植物が穀類の種子である場合は、種皮をつ
けたまま、或は、種皮を除いた後に簡単に砕くか、又は
、食用に供せられている程度の粉末になるまで粉砕し、
得られた粉末に水を加えて分散液とし、攪拌した後に沈
降物を静置又は遠心分離により除去するか、粉末に水を
加えて練って得られるトウをミキサー中でゆるやかに水
洗し、沈降物を除去すればよい. この抽出操作の際の種子の粒度、水の温度、液性、添加
量、攪拌の速度、時間、遠心分離の際の条件等は特に制
限する必要はない.しかし、便宜上、抽出水の温度は、
穀類種子に含まれる澱粉の糊化を招来しない50℃以下
とすることが好ましい。又、水の添加量は、穀類の種類
、粒度により異なるが、穀類種子の割合が70w/v%
以下、望ましくは20〜50w/v%程度とすると操作
上便宜である.更に、攪拌の速度は、起泡を引き起こさ
ない程度のものとすることが好ましい.なお、この段階
の操作迄で、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の
純度は、リムラステスト活性データから判断して、例え
ば小麦種子の場合には約30倍に上昇する. ■純度を更に上げるためには、この上清を常法に従って
限外濾過に付して分子量5,000以下の両分を除去す
ればよい. ■得られた乾燥品を、50mg/mlになるように蒸留
水に懸濁し、遠心分離操作に付して上溝を回収する. ■この上清を氷水で冷却し、酸を添加して酸性にすると
沈殿が生じる.この際使用する酸は特定のものである必
要はなく、例えば、トリクロ口酢酸(以下、TCAと称
す)、過塩素酸、トリフルオロ酢酸、酢酸、ジクロ口酢
酸を使用できる.■次いで、遠心分離操作に付して沈殿
を回収して蒸冒水で洗浄し、再度遠心分1m?1作に付
して沈殿を回収する. ■沈殿を蒸留水に懸濁し、沈殿が溶解するまでアルカリ
を加える.この際使用するアルカリも特定のものである
必要はなく、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム
、アンモニア、炭酸ナトリウム、酢酸ナトリウムを使用
できる.沈殿の溶解時に塩基性がpH11より大きくな
ると目的の糖脂質が失活するので注意が必要である.■
次いで酸を加えてpH8としてから37℃に加温し、更
に酸を加えて酸性にすると沈殿が生ずるのて、37℃に
保温した遠心分離器を使用して遠心分離操作に付す。な
お、この際使用する酸も特定のものである必要はない. ■上清を回収して氷冷し、4℃で再び遠心分離操作に付
す゛ ■E消を回収し、アルカリを添加して中和し、常法に従
って限外濾過で濃縮する.この際使用するアルカリも特
定のものである必要はない.[相]次いて常法に従って
ゲル鑵過に付して、リムラステスト陽性画分を回収して
併せる.ゲル濾過用の担体としては、例えばセファデツ
クス( S e p h a d e x ) G −
7 5、G−100、セフアクリル(Sephacr
yl)S−200、セブ7ロース(Sepharose
)6B [以上は米国ファルマシア社(Pharmac
iaInc.)It]、バイオゲル(Biogel)p
−ioo(バイオラツド(BioradInc.)社I
I],}−ヨーバールHW−50、HW−55 (東洋
曾違工業社製)を使用できる.緩衝液はpH3〜IOの
ものならいずれでもよい.例えば、トリスーHCIL又
はリン酸緩衝液を使用できる. ■次いでこの両分に蛋白分解酵素を加え、37℃で2時
間以上インキユベーションして残存蛋白質を分解し、得
られた酵素処理液を常法に従って限外濾過により濃縮す
る.なお、この際に使用する蛋白分解酵素も特定なもの
である必要はなく、例えは、■8プロテアーゼ、キモト
リブシン、トリブシン、サーモライシンを単独で、或は
任意に鞘み合わせて使用できる.市販品としては、例え
ば、ブロナーゼE(科研化学社)、プロティネースK(
メルク社)を使用できる. O次いでこの両分を常法に従って、例えば、ファルマシ
ア社製のFPLCシステムでファルマシア?土製のモノ
Q−セファロース( S e p b a r −os
e)、Q−セファロース(Sepharo−se)を使
用して陰イオン交換クロマトグラフィーに付してリムラ
ステスト陽性画分を得る.0次いで、常法に従って脱塩
のためにゲル濾過に付してリムラステスト陽性両分を回
収する.以」一の操作により、例えば小麦種子の場合に
は、当初活性の約20%が回収され、純度約95%の精
製標品が得られ、又、段階■終了時の純度に比へ約1
0 0 0 +1!の純度(小麦種子の場合)になる.
児(υテスト陽性植 の 性 追って実施例中で詳述する如く,本発明のリムラス陽性
植物糖脂質の96%純度標品の分子量はおよそo,oo
o±1,000 (SDS電気泳動法)、リン数は1以
上/分子、ヘキソサミン数は6±27分子、脂肪酸数は
6±27分子である.提供の形態 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質はそのまま、或
いはlf.tの程度に希釈した形で提供できる.又、保
存性を高めるために、凍結乾燥や噴霧乾燥なとの任意の
手段により乾燥粉末として提供することもてきる.これ
らはいずれも常法で生産できる. 免疫活性化能の測定 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の免疫活性化能
は、マクロファージ活性を通じての内因性TNF産生促
進能、内因性TNF産生能、カーボン除去能、骨杉成促
進能、産卵促進能、卵殻強度増強能により確認した. 内因性TNF産生促進能、.舞」1熊 動物体内にTNFを産生させるためには、産生前駆(ブ
ライミング)段階と産生間始(トリ力リング)段階とが
必要であることは、カーズウェル(Ca r swe
I l)らにより、プロシーディング オブ ナショナ
ル アカデミー サイエンス オブ ユーエスx−(P
roc.Natl.Acad.Sc j.USA.)7
2、3666〜3670頁(1975年)に報告されて
おり、その後、各段階で使用出来る薬剤の検討もすすめ
られている.ブライミング段#開始のために投与される
薬剤が「ブライマー」 (内因性TNF産生促進剤)で
あり、トリガリング段階開始のために投与される薬剤が
「トリガー』 (内因性TNF産生剤)である.本発明
のリムラステスト陽性植物糖脂質は、既にその有用性が
確立されているビシバニールと同程度にブライマーとし
て、又、トリガ一としても機能する。 T N I”活性は、L−929細胞[プロシーディン
グ オブ ナソヨナル アカデミー サイエンスオブ
ユーエスエ− 72、 3666〜3 6 7 (1頁
]に対する細胞毒性を基にして、次のよー)にして測定
する. L92941胞を、5%17−牛胎児血清を加えたイー
グルミニマムエッセンシャル培地(以下、MEM培地と
表す)で育成し、8Xl04個の纏胞が100μ艷の同
上境地に含まれる様にし、96大の平底プレートで育種
する.育種条件は37℃、2時間、5%CO2、湿度1
00%であり、通常の細胞培養に用いられる方法でよい
.その後、アクナノマイシンDを培地中に!?濃度1μ
g/mlとなるように加え、培I液の液量を150μ艷
とする.即座に、検体を過当にMEM培地で稀釈したも
のを5 0 1t a加える(この際罹釈率を適宜講頓
し、EDa@を求める事ができる).更に、最終液量2
00μ鼠となったL929纏胞を上記条件で18時間培
養する. 細胞隙害活性を測定するには、まず全培地を除去し、つ
いで0.1%クリスタルバイオレットを含む1%メチル
アルコール溶液を加えて固定染色する.クリスタルバイ
オレットは全有核細胞を染色するが、死IIlll!は
染色後にプレート底面より水洗で除去されるので、生存
細胞の結果から細胞障害活性を直接測定できる.この染
色度をOD591!n++での吸光度をrF!標として
測定し、対照群に対する染色度と比較する事で細胞障害
活性を測定する.活性の定義は次の様に行う。 L 9 2 9細胞が60%生存できる検体の稀釈率(
N)を求める. ffi4照としてウサキTNS[I!
壜llIIF血清( T u m o r N e
c r o s i sSerum)]を使用し、この
ウサギTNSの活性n(単+17/m宛)を2.4Xj
06単1α/ tn g /[nλのTNF−αを用い
て決定する。このウサギTNSのEDs@を与える稀釈
率(C)を求める。 N 横体活性(単位/ m a)は − × n で計算す
る。 C L:ノ租2」L表l コUイト状カーボンの血中からの除去がマクロフ7−シ
活性の指標となることは古くから知られている(日本細
菌学会教育委員会編、細菌学技術叢書5『マクロファー
ジの機能と機能測定法」、98頁、昭和60年(株)菜
根出版発行)。従って、キャンサー リサーチ(Can
cerResearch)+ 28+ 1968年8
月号の1531〜1532記載の方法に準拠し、静注さ
れたカーボンの除去率を指標に、皮#投与されたリムラ
ステスト陽性植物糖脂質の免疫機能活性化能を測定する
. 骨杉成促進能 破骨纏胞活性化試験で確認する。 破骨纏胞は、骨絹織中の古い骨をこわす骨吸収担当細胞
てある.破骨繕胞の活性化により代償的に骨芽細胞が活
性化され、骨形成が骨吸収よりも優位の状態になる結果
、骨形成が促進されると考えられる. 破骨纏胞活性化試験ては、鶏胚頭頂骨を実験試料としで
使用する.即ち、鶏旺頭頂骨を45Caて標識した後に
、薬物を含む培地(処理群)と薬物を含まないtg地(
対N群)で別々に培II後に、骨に残存する4 もCa
量と、培養中に培地中に流出した”Ca量とを測定し、
処理群、対照群における4’aCa流出率をそれぞれ次
式により計算する.”Ca流出量 薬物の効果は次のT/C比で表す。 理論的には、このT/C比が1より大きければ薬物効果
があることになる.なお、後記実験例においては、個体
間のばらつきによる影響を避けるために、同一鶏の旺頭
頂骨(2本存在する)の一方を対照群で、他方を処理群
で使用した。 産卵促進能、卵殻強度増強能 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を投与した鶏か
ら産まれた卵の数及びその殻の強度を測定することによ
り確認する. 鶏卵の取引は農林事務次官通達により規制されている。 現行の昭和54年12月25日付け改正54畜AF51
36号通達によれば、鶏卵はその重量、外観検査、透光
検査の結果に基づき等級付けされているが、輸送中、取
扱い中、使用中等における鶏卵の破損を防止する目安と
なる般強度についての記載はない。只、外箱について、
rJIS一種破裂度8.8以Lのもの」とのみ規定して
いる。しかし、外箱がいくら丈夫であっても、輸送中等
の賑勤、掴みによる鶏卵の破損を防止できないことは自
明である。このため、料亭やスーパー等の大口需要者と
生産者との閏には、一定以上の般強度を有する鶏卵のみ
を取引対象とする例も少なくなく、その際には、4kg
/cm2以−ヒであれば申し分ないとされている. なお、現在のところ、鶏卵般強度を高める効果を有する
薬剤、H料等の開発、販売は知られていない。 リムラステスト隔性植v!J糖脂質の用途本発明のリム
ラステスト陽性植物糖脂質は様々な用途に使用できる. その第1の理由は、原料が人間その他の動物により常食
ざれているものなので、人閏その他の動物への投与に当
り憂慮すべき問題点が皆無であることにある. 第2の理由は、そのまま、或いは任意の程度に希釈した
形で、又、乾燥粉末として提供することもてきるので、
提供できる形態が極めて多岐に渡っている点にある。 第3の理由は安価であることにある。 このような利点を持つ本発明のリムラステスト陽性植物
糖脂質の一つの用途は、その免疫機能活性化能をそのま
ま生かした免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤
である. 第2の用途は、その免疫機能活性能を指標にして人閏そ
の他の動物の免疫機能をチェックするための免疫機能検
査薬、動物用免疫機能検査薬である. 第3の用途は、その免疫m能活性化能の発現を朋持して
配合される医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飲
料、飼料等である.例えば、本発明のリムラステスト陽
性植物糖脂質を配合した化粧品は皮膚の老化防止、新陳
代謝促進に役立つので、常に、又、末長く皮膚を新鮮に
保つのに役立つ。 提供できる剤の製造方法 これら免疫機能活性化剤等のいずれもが常法で製造でき
る。例えば、免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化
剤は医薬或は動物薬製造の常法にiκって、経口薬とし
て、或いは静注薬、筋注薬として単独で、或いは他薬と
の配合物として処方できる.又、皮膚にはマクロファー
ジが多いので、皮膚塗布剤として投与するとより高い効
果が得られる. 以下、実施例、実験例により本発明を更に詳繍に説明す
る. 実施例! ■小型二−ダに、1.09%の灰分を含む硬質小麦粉(
アメリカ又はカナダ産のハードレットスブリング)(3
,120g)を入れ、2.0311の蒸留水を加えて1
0分間練ってトウとした。15分間の静置後に10艷の
水を加えてゆるやかに攪拌してデンブン乳液を洗い出し
、同時に可溶性成分を溶出させた.この溶出液を5℃の
冷蔵庫中で12時間静置したのちデンブン等の沈降部を
除去した.上澄み液をイ粟結乾燥して201.1gの粉
末を得た(粉末A). 更に、残留トウに5地の蒸留水を加えてゆるやかに攪拌
し,以下、上記と同様に処理して40.1gの粉末を得
た(粉末B). ■これら事a末A.Bをアミコン冫上製限外濾過機正{
F−Lablに供し、分子量画分5,000については
中空系カートリッジHF−LablPM5を、分子量画
分10,000については中空系カートリッジ}l F
− L a b I P M ] 0を取り付けて限
外濾過を行った[温度5〜10℃.人圧25ps i
(1.76kg/cm2),出圧15ps(1.06k
g/cm2)]−その結果に基づき、各部分を次のよう
に命名した. 粉末A:分子量5,000以下の部分をa1分子量5,
000以上の部分なa2 粉末F{;分子15.000以下の部分をb1分子量5
,000以上の部分をb2 粉末A:分子量10.000以下の部分を83分子量1
0,000以上の部分をa− 粉末B:分子量10,000以下の部分をb3分子量1
0.000以上の部分をb4 これら各両分を後記実験例lに詳述する方法に準拠して
リムラステストに付したら、分子量5,000以上の両
分には多置のリムラステスト陽性成分が存在するが、分
子t5,000以下の両分にはほとんど存在しないこと
が確認された.■上記粉末a2030gをla三角フラ
スコに入れ、6 0 0 m lの蒸留水を注いで、6
0分閏スターラーで攪拌した後、日立冷却高速遠心機S
CR−20B (ローターRPR 1 6を事前に4℃
に冷却しておいた)で4℃で遠心分離操作 (10 000gX10分)に付して上溝を回収した
. ■この上清を11三角フラスコに入れ、水冷下(液温約
2℃)、スターラーで攪拌しながら、事前に2℃に冷却
してあった100%TCA水溶液20.5mlを滴下し
、滴下終Y後氷水中に10分間放置した. ■次いで前記と同様にして4℃で遠心分lII操作(t
o.OOOgX10分)に付して沈殿を回収し、氷水中
で冷却下、300mlの蒸留水と共に500mlのビー
カーに入れて懸濁し、氷水中で冷却し、前記と同様にし
て4℃で遠心分Ia操作(10,OOOgXlO分)に
付して沈殿を回収した. ■この沈殿をIILビーカーに入れ、蒸留水500ml
で懸濁し、IN水酸化ナトリウム溶液約3.5mlを使
用して中$0(pH7)L.、ついで、氷水中で冷却し
ながら、IN水酸化ナトリウム溶液約2mlを添加して
0.02N水酸化ナトリウム溶液になるようにして沈殿
を溶解した.■IN塩酸約1.5mlを加えてpH8と
し、次いで100mlの蒸留水を加えた後にIt三角フ
ラスコに移して37℃のインキュベーター内で30分間
ゆっくりgut,た. ■100%T C A * m Ml 3 0 m Q
を加えて混合した後、37℃のインキュヘーター内で1
0分間ゆっくりル盪してから、約37℃に保温した遠心
分Ilt器トミーCDIOOR(}ミーII!器社製)
を使用して遠心分M操作(3,000gX 1 0分)
に付した. ■上溝を回収して水冷し、4℃で遠心分m揄作(10,
000gXIO分)に付した.[相]上浦を回収してI
ON水酸化ナトリウム溶液約3、6 m Lで中luシ
て9H7とし、限外濾過器(東洋濾紙LIMP− 1
50,’7−(L9− : UK−10.N2圧:4.
Okg/cm2)で濃縮した.0得られた瀦縮MI6
0 m lを、セ77o−ス(Sepharose)6
BカラムC米国ファルマシア社(Pharmacja
Inc.)製、カラムサイズ:5cm(内径)Xj0
0cm(2t)]を使い、ゲルIl過cm+液:】θm
MトリスーHCI/lOmMNac11(pH7.5)
、流速:60mlL/時]に付して、各20mlLの両
分を得た. @初めから43番目から56番目迄の両分2 8 0m
lkを併せ、ブロナーゼE(科研{ヒ学社)450μg
を加え、iiiiI下、37℃に2時間保温した後に、
限外濾過W(東洋繍紙UHP−62、フィルター:UK
10SN2圧:4.Okg/cm2)で1縮した.
次いで、ファルマシア社製FPLCシステム(カラム:
モノQHR 1 0/10)を使って陰イオン交換クロ
マトグラフィーに付した.即ち、10mM}リスーHC
lL(p}17.5)と10mMのNaCILを含む緩
衝液で試料をカラムに付した後、上記緩衝液に更に16
5mMのNaClを含む絹成をした液(200ml)で
力ラムを洗った.次いて、165mMからIMのNaC
t濃度勾配になるようにN a C til1度を増加
させながら全量400mlで目的糖脂質を溶出させ、各
2mlの両分を回収した.リムラステスト陽性が確認さ
れた、濃度勾配をかけてから5〜8番目の画分を併せて
゛、糖脂質純度約92%の8m T1 [糖脂7J :
3 . 9 :3 m g(リムラステストによる大
腸菌1... P S換算値てある。以下の糖脂質量も
全てこの喚′#罐である)、糖:0.23mg、蛋白:
0.(14rnglを回収した00次(ビCその8m9
を、セフ7デツクス( S e p h a d e
x ) G − 2 5 [カラム:2.0cm(内径
)X20.2 cm ((i6rnlk)]を使−>T
ケル繍過(緩1i漬:水)に付して各3mtの両分を回
収した.リムラステスト陽性の確認された第1)〜12
ti目の画分を1nせて、糖脂質純度約9 5 %の1
2ml(糖脂M:2.7mg、糖:0.1 8mg.蛋
白:0.03mg)を回収した。糖はフェノールー硫酸
法で、蛋白はローリー法で測定した。なお、この両分は
、陰イオン交換クロマトグラフィーにより酸性であるこ
とを確認した。 又,S DSゲル電気泳動法による分子量は6,000
〜I(1,000だった。 ・秒上記画分を−80℃で凍結後に恒量になるまで凍結
乾燥し、重電を測定したら0.75mgあった。(以下
、この凍結乾燥標品をC H Fと称す)二のC II
Fのリムラス活性を後記実験例1記載の方法で測定し
たら2.7mgに相当するので、その比活性は 2.7
÷0.75=3.6 になる。 また、以上のIII製で、夾雑物として存在し得る単独
の糖は実質上全て除去されたと考えられるので、検出さ
れた糖は全て、糖脂質であるCHFを構成している糖と
考えられる。従って、この段階でのC H Fの純度を
重量に基づいて計算すると、蛋白=0.03mg 糖
脂[=0.75−0.03=0、7 2 m g だ
から、 0.72÷0.75X 1 00=96 (%)である
.C II Fの物性 0分子量 C H Fを蒸留水に溶解してlmg/tnai盲液を
調製し、その・l/7 Rを1.5m兄のトレフチ7一
7に入れた。これに、別途、lロIMのEDTAに2.
5%SDS、5%メルカブトエタノール、]OmMトリ
ス塩酸(pH8.0)を加えてv4製したSDS処理f
11tiIkを加え、この混液を3分間沸騰水に浸した
。ファルマシア社製のファストノステム(Phas t
Sys lem)をfe nl L,、電極との間
にSDS−ハツファー ストリップ(1’3uffer
Strip)(ファルマシア社製)が介在せられた
暑μ艷の上記混液をゲル[ファルマシア1土製のフ7ス
ト ゲル クラディエン}(Pbast Get
Gradient 8−25)に塗付
し、最大電圧250v,最大t流1 1) tn Aに
セットして泳動を開始させた。泳a終了後、クマシー染
色と銀染色における挙動をat;<した。 クマシー染色では、染色液としてファルマシア製の0.
1%ファスト ゲル ブルー ( P b asL
Gel Blue) Rを、脱色液として、メタ
ノール二酢酸:蒸留水(容量比3:l:6)7n渣を使
用し7次の順序で染色・脱色を行った。 ■50℃で8分間染色 2150℃で5分問脱色 3》50℃で8分間染色 4》50℃でlO分間脱邑 5)50℃で5分間保謹(グリセロール、酢酸、蒸留水
の容量比5:10:85混液) 6》蛇燥 銀染色は、次の順序で行った。 ■50℃で2分間、洗hfi<エタノール、酢酸、蒸留
水の容量比5:1:4混液)で処理2》50℃で2分閏
、洗S液(エタノール、酢酸、蒸留水の容量比10:5
:85混液)で処理3】50℃で4分間、洗浄液(エタ
ノール、酢酸蒸留水の容量比10:5:85混液)で処
理4)50℃で6分閏、増感液(8.3%グルタルジア
ルデヒド)で処理 5)50℃で3分間、洗浄液(エタノール、酢酸蒸留水
の容量比10:5:85混液)で処理6)50℃で5分
閏、洗t9H<エタノール、酢酸蒸留水の容量比10:
5:85混液)で処理7)50℃で2分間、洗浄液(脱
イオン水)で処理 8】50℃で2分閘、洗浄液(脱イオン水)で処理 914 0℃で13分問、0.25w/v%硝#銀て処
理 1013 0℃−C 3 0秒間、洗浄液(睨イオン水
)で処理 11130’℃て30秒間、洗浄液(脱イオン水)で処
理 1213 0℃で30秒間、現像液(0.04v/v%
ホルムアルデヒト+2.5w/v%炭酸ナトリウム洗浄
液)で処理 13130℃で4分間、現像液(0.04v/v%ホル
ムアルデヒト+2.5w/v%炭酸ナトリウム洗浄液)
で処理 1415 0℃で2分間、反応停止液(5%v/v%#
酸)て処理 1515 0℃で3分間、保謹液(酢酸、グリセロール
、蒸留水の容量比1 0 : 8 : 8 5混液)で
処理 16》乾燥 糖脂質はII染色に染まるが、クマシー染色には梁まら
ない性質を利用して染色帯を観察したら,分子量8,0
00±1,000の位置にCHFの主要染色帯が検出さ
れた。同様にして大腸菌LPSの染色帯を観察したら、
階段状に連続する染色帯が観察され、染色強度がIk高
の染色帯の分子量は30,000±5,000であると
推論された百日咳菌LPSては、分子量6,000±1
,000と9,000±1,000の位置に染色強度が
最高の染色帯が観察された。 [相]レ含有一 チェンートリバラ(Chen−Tor ibara)法
[チlン等著、rアナリティ力ル ケミストリ(Ana
lyticalChemistry) 、vo l.2
B、1756 〜175B頁(1956年)に4拠して
次の通りに行った。 C H Fを蒸留水に溶解して、25μgのCHFを含
む20μ艷の溶液を調製し、小試験管に入れた.20μ
艷の50v/v%硫酸を添加し、160℃で2時間加熱
した.次いて、20μ追の10v/v%過塩素酸を添加
した後にガスバーナーで1分間加熱して灰化させた。そ
の後に0.5muの蒸留水、次いて0.5mlの反応試
薬(lm艷の6N硫酸、2 m aの蒸留水、2mKの
2.5v/W%モリブデン酸アンモニウム及び1mlL
の10v/w%のアスコルビン酸を混合して調製し、そ
の0.5mlを使用)を添加して室温で30分間放置し
た後に、820nmでの吸光度( O D s21−)
を測定した。なお、横IIH作製用の試料としては、リ
ン酸二水素カリウム(和光純薬社製)を蒸留水で希釈し
、リンNIlとしてそれぞれ2.5μg,lIig,0
.25μg.0μgを含む0 . 5 m ILの溶液
を調製して使用した.なお、リン1gはリン酸二水素カ
リウム4。39gに相当する。得られた結果を次表1に
示す.表 1 γ↑:CHFのデータは、無機リンの混人(例えば、リ
ン酸緩衝液に由来する)による誤差を避けるために、加
I?!!処理をしていない対照のデータを減じた値であ
る。 C II Fの分子量を8,000と仮定し、L表の結
果に基づいてC H Fの1分子当たりのリン数を次式
により計算すると1〜4になる. 分子量 l lン重量XIO−6XX− 25X10− 32 上記実験でリン数が1〜4と変動している原因の1つと
しては、精製段階でのモノフオスフ才エステラーゼの混
入により、リン酸が脱離したことも考えられる。 同様にして求められた大111菌LPs、百日咳菌LP
S (分子量はそれぞれ30,000と8,000に仮
定)の1分子当たりのリン数はそれぞれ約12個、5個
であった。 ■ヘキソサミン含有置 エルソンーモルガン(ElsoローM o r ga
n ) jp.(東京化学同人出版「生化学実験講座」
N0.4の377〜379頁)に準拠して次の通りに行
った. CHFを蒸留水に溶解してlmg/maの溶液を調製し
、その100μ交をスクリコーキセッブ付きスピッツ(
イワキガラス社製)に入れ、これに100μ免の8 N
H C fLlt添加して110℃で16時閏加熱し
た.4NNaOHを約2ooμm添加してpH7とした
。その100μ1を分取し、別のスクリューキャップ付
きスピッツに入れ、200μ化の下記試薬Aを加えた後
に、105℃で1.5時閘加幼し、次いて流水で冷却し
た。次いて、1 0 0 lt Qを分取し、670μ
艷の96%エタノールを加え、更に、6 7 B Q.
の下記試薬Bを加えた後に室温でl時間放置し、5 3
5 n mで吸光度を測定した。検量線作製用試料と
しては0.20〜200μg/mlLのN−ア七子ル
グルコサミン(tロ光純薬?上製)を使用した。 〈試薬A)7577.ILのアセチルアセトンと2.5
m Qの1.25N倹酸ナトリウムを混合してy4製(
試薬B)1.6gのp−ジメチルヘンズアルデヒドと3
0mQの1塩酸と3 0 m lの96%エタノール
を混合して調製 結果、CHFのへキソサミン数は6±27分子(仮定分
子量8,000)だった。同様にして測定さh タ大v
:JiL P S (仮定分子量3 0 , 0 0
0)、百日咳菌LPS (仮定分子量8,000)のへ
キソサミン数はそれぞれ45±6/分子、I6±2/分
子たった。 0脂肪酸含有量 90μ史のCHF蒸留水溶液(lrng/mlL)にl
θμ艷の内部標準(0.55mMのマルガリンM)を加
えた。1 . 0 m覧の0.5Mナトリウムメチラー
トを加えて脂肪酸エステルの加水分解とエステル化を行
った。室温で1時間飲置後に96 0 /l Qの0.
5NHClを加えて中和した。これに2mlのヘキサン
を加えて15分間激しく攪拌した。次いで、1,000
gで5分間遠心分離を行いヘキサン層を分取した。♀素
ガスでヘキサンを蒸発させて、約20μ灸になるまで濃
縮した。 このサンプルをガスクロマトグラフィー[本体:島津社
製のG C 8 A P F、キャビラリーカラl1:
スベノレコ(Spelco)冫土くカナダ)製FSCA
P Sp2330、キャリャーガス:窒素]に付して
脂肪酸量を測定した。脂肪酸量測定の基準としては、第
一化学薬品社製の合成リビドAてある大Ml薗型LA−
1 5−PP (分子12,000で、1分子中の脂
肪酸数は6てあることが知られている)を用いた。 結果、C H Fの脂肪酸数は6±2/分子(仮定分子
18 , 0 0 0)であると推定された.同様にし
て推定された大111菌LPS(仮定分子@30,00
0).百日咳菌LPS (仮定分子量8,000)の脂
肪酸数はそれぞれ】8/分子、5/分子たー〕た。 上記ガスクロマトグラフィーで観察されたチャートを添
付図面第1〜3図に示す。第11!IはCHFの、第2
図は大Ill菌LPSの、第3図は百日咳菌L P S
のチャートである。 第1〜13図において、図示されている主要ピーク番号
に対応する保持時間(分)は次の通りであった。 第1図: ビーク番号 侃持時蘭(分)1
2.450 2 2.758 第2図: ピーク番号 ?LU!L耶間(外Q■ー 2.417 2 2. 742 第3図: ピーク番号 堡持時間(分) l 2. 433 2 3. 028 第1〜3図の比較により、C H Fのチャートは大%
I菌L P Sのチャートに似ているが、百日咳菌LP
Sのものとは大きく異なることは明白である.実験例J
(リムラステスト陽性植物糖脂質の定量:各種植物に含
まれるリムラステスト陽性植物糖脂質の定量を、生化学
工業株式会社のトキシカラーシステムを使って行った. ■96穴の平底または丸底プレートに注剖用蒸留水を1
穴当たり180μ艷入れた.試料20μ化(試料が固体
の場合には注射用蒸留水に溶M L/て調製した)をプ
レートの穴の1つに加えた。プレートミキサーで攪拌し
ながらビペッティングを行って10倍希釈液を調製した
。(以後、順次希駅試料を20t19.ずつとり、同様
に処理することで100倍、1000倍、・・・と10
倍希釈系列液を調製できる。また、注利用蒸留水と試料
の量比を変えることにより希釈率は任意に設定できる。 )■内部標準として1.δ7lg / m鼠の大111
i1LPS溶液の100.00017!希釈液を調製し
、希釈やリムラステスト発色が正常であることを確認し
た. ■上記■の10倍希釈液35μ地を別のプレートの穴に
とり、生化学工業株式会社のトキシカラ一システムのL
S−1セット35μλを添加し、37℃て;10分間放
置した.ついて105μ艷のlM#$酸水を加えて攪拌
して反応を停止させた。 この試料液の波長415nmての吸光度を、96穴川吸
光度計プレートリーダーMTP−100(コロナ電気株
式会社!!)で測定した.パックグラントとしては蒸留
水を、検量線作成用としては42pg/mlの生化学工
業株式会社のトキシカラーシステムのET−1セットを
使用して検量線を作成し、この検量線を基準にして各試
料中のリムラステスト陽性糖脂質の定量を行った.(試
料が蒸留水である場合の吸光度を0とした.)なお、こ
の方法で前記LS− 1セウトを使用した場合には10
〜4 5 p g / m ILの範囲内で発色に定量
性があることが確認されたので、この範囲に入らないと
きは、希釈率を変えて再実験した。 希釈試料の定量値は、 (検量線から読み取った*) X (希釈率)で計算し
た。 得られた結果を、固体試料の場合にはロg/g単位で、
液体試料の場合にはn g/mu単位で次表2に示す。 なお、表中の試料の欄の会社名、地名等は、当該試料の
人手先、産地をさす.かかる記載がない品はスーパース
トアー忠実屋の神奈川県津久井郡中野町店で購入した品
で、製造者が不明なものを指す. 表 2 リムラステスト陽性 試料(固体) 糖脂質量 (n )譚子M物 松の実く興南貿易) l25単子
葉類 硬質系小麦橿子(千葉製粉) 2,250硬質系
小麦種子く千葉製粉) (分子量5000以上) 1,000,000硬質
系小麦粉(千葉製粉) 7,500小麦ふす
ま(千Mll扮) (分子量5000以上) 300小麦胚
芽(千葉製粉) 1,600小麦胚芽
(千葉製粉) (分子15 0 0 0以上) 玄米 米粉(日の本穀粉) (分子15000以上) 31, 米ぬか 米ぬか(分子量5000以上) コーンフラワー(大洋飼料) (分子量50001J上) コーングリッツ(大洋飼料) (分子量5000以上) コーン(和光食tI) クマ笹(閏本物産) アヤメ(種子) ニンニク<m茎〉 アスパラカス(芽) ミョウガ(花房) ヨクイニン(ウチダ和漢薬) ハンゲ(松浦藁業) バクモントウ(栃木天海堂) <10.000 1, 100 0 0 0 , O O O 2 9 , O 0 0 500, 000 く0. 3 1 5 , 3 , 120 2 0 0 0 0 0 3 0 0 7 0 5 0 0 0 0 0 3 0 0 5 0 0 0 0 0 ターメリック(エスビー食品) 195.000双
子葉類 大豆(三女食品) 15o大豆(
ほくれん)(分子量5000以上)400丹波黒大豆(
和光食檀)86 小豆(和光食糧) 45o小豆(
和光食糧) (分子量5000以上) 36,000,000ひたし
豆(和光食糧) 8oo大正金FM
I(和光食糧) 5 5 0大福豆
く和光食tI> 350そら豆
(生) 75oジャカイモ(
ほくれん) (分子量5000以上> <O. aビ
ワ(種子) 800アボ
ガド(種子) 950モモ(種子
) 4,500クルミ(種子)
1.900ソラ豆(橿子)
75oカボチャ(種子)
10,000トマト(生の実) カイワレダイコン(根を除く) マタタビ(丸久物産) アマチャズル(K.K.桜井) トクダミ(温a重量当たり) (帝京大学薬用植物園) 胡叡(白)(エスビー食品) トウカラシ(興南貿易) 八角(興南貿易) ナツメグ(ライオン) トウヒ(ウチダ和漢薬) カッコン(栃木天海堂) 甘草(ウチダ和漢薬) ニンジン(ウチダ和漢薬) ボウフウ(栃木天海室) カンボウイ(栃木天海堂) チョウトウコウ(ウチダ和?IrM) シダ植物 スギナ(湿潤重量当たり) (帝京大学薬用植物園) 10, 500 50, 000 40, 000 ?3, 000 l , 2 , 2 , 5 , 2 . 8 , 3 , 18, 4 5 , 50, 6 0 0 , 7 , 2 0 0 3 0 0 3 0 0 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 7 0 0 ゼンマイ(閏本物産) D1 わかめ(三陸天然品) わかめの芽株 ひしき(生) 芽ひじき(小善本店) コブ(ヤマトタカハシ) アサクサノリ(乾燥生ノリ) クロレラ (ヘルスタージャバンYS) (マンナンフーズYS) I 椎茸(下仁田産) えのき茸(長野県中野市) しめし(勢多郡宮城町) まいたけ(大利I!) あわび茸(羽生) マッシュルーム き〈らげ ナメコ 10, 000 11,000 200, 000 85, 000 105, 000 235, 000 130, 000 1, 900, 1, 000, 0 0 0 0 0 0 16. 000 20, 000 40, 000 205, 000 B. 000 20, 000 75, 000 21. 000 エヒオス 250. 000 冬虫夏草 240, 000 リムラステスト陽性 越エ科一(液体) 糖脂質量 (n g)ビ
ール キリン ファインとルスナー 1,150ラガー
ビール 1,250ハートラント
1,550ファイントラフト 1,40
0アサヒ スーパーイースト 600囚
工λ サントリー サントネージュ(白)13(赤)24 シ一ドル(アップル) 900 辻1顕遵 大間一級(大間酒造) 黄桜二級(黄桜酒造) 大寒吟醸二級(玉東堂酒造) p』 2 . 4 1 . 7 日々一献(大間酒造) 12薬味酒 陶陶酒デルカツブ(陶陶酒本舖)1.20 宝焼酎(宝酒造) <2. 0そ
の他 キョーレオビン(湧水製薬) 6ooニンニ
ク抽出液(湧永製薬) 35o実験例2 A,内因性TNF産生促進能の測定 (p各群3匹のマウス(7週齢のメスC3H/He平均
体重25g)の尾静脈に、ブライマーとしての各検体を
溶解した生理的食塩水0.2mλを静γ↑し、その3時
間後にトリガーとしてO K −432をIKE [ク
リニンシュ アインハイト(Kliniscbe E
inbeit)系単位であり、IKEは0.1mgの乾
燥細菌を含む製剤量にあたる]を溶解した生理的食塩水
0.2mλを同じく尾静脈より投与した。トリガー投与
02時間後に血清を採取し、L 9 2 9 II胞に
対する毒性に基ついてTNF活性を測定した。結果を、
各群3匹の平均として添付図面の第4図に示す.この図
から、本発明のリムラステス}FW性植物糖脂質がOK
−432と同程度の内因性TNF産生促進能を示すこと
は明瞭である.叉、本発明のリムラステスト陽性植物糖
脂質が内因性TNF産生促進能を発揮する量には最適量
があることも推測される。 ■別途、各群3匹のマウス(714齢のメス03H /
H e .平均体重25g)に、ブライマーとしての
各検体を経口投与(各検体を200μ鼠の蒸留水に溶解
して、経口針で宵内に直接に投与)し、その後は、上記
静注の場合と同様に処理した。 結果を、各群3匹の平均として添11図面の第5図にボ
す。 この図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質が
経口投与によっても内因性TNF産生促進能を示すこと
は明瞭である。 ■別途、各群3匹のマウス(12週齢のオスC3 H
/ H e ,平均体重29g.)の尾静脈に、ブライ
マーとしての実施例1て得られた粉末A−a2を様々な
量で含む生理的食塩水0.2ml1を注射し、その38
!間後にトリガーとしてのl.OKE又は3.OKEの
O K − 4 3 2を生理的食塩水に溶解して総量
を0.2maとし、同しく尾静脈より投与した。トリガ
ー投与の2時間後に血清を採取し、L929纏胞に対す
る毒性に基づいてTNF活性を測定した。結果を、各群
3匹の平均として添付図面の第6図に示す. 第6図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質が
内因性TNF産生促進能を発揮する量には最適量がある
ことが推測される。 ■別途、各群3匹のマウス(9週齢のオスC3H/He
.平均体重27g.)の尾静脈に、ブライマーとしての
実施例1て得られた粉末Aa2を11解した生理的食塩
水0.2ml[大111ILPS量に換算して1μgの
本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を含む)を注射
し、その3時間後にトリカーとしての1.OKE又は3
.OKEの0 t< − 4 3 2を生理的食塩水に
溶解して総量を0、2mlとしで、同しく尾静脈より投
与した。 トリガー投与の2時間後に血清を抹取し、L929纏胞
に対する毒性に基づいてTNF活性を瀾定した.結果を
、各群3匹の平均として添付図面の第7図に示す。第7
図において、横軸は、ブライマーとトリガーとの投与間
閘を示す. 第7図から、本発明のリムラステスト陽性植物1■が最
適の内因性TNF産生促進能を発揮するには、ブライマ
ーとトリガーとの投与r:′I隔を考慮すべきことが推
測される。 B.内囚性TNF産生能の測定 ■各群3匹のマウス(9遍齢のオスC3H/}{e.平
均体!27g.)の尾静脈に、ブライマーとしての実施
例1て得られた粉末Aa2を溶解した生理的食塩水0.
2mlL(大關菌LPS量に換算してlnHの本発明の
リムラステスト陽性植物糖脂質を含む)又は生理的食塩
水のみ0.2ml(対照群)を注射し、その3時閏後に
トリガーとしての0−10mgの粉末Aa2を生理的食
塩水に溶解して総量を0.2mlとして、同じく尾静脈
より投与した.トリガー投与の1時間後に血清、肝臓、
ひ臓、肺を採取し、L929II胞に対する毒性に基づ
いてTNF活性を測定した.結果を、各群3匹の平均と
して添付図面の第8図に示す.第8図において、左上は
血清の、右上は肝臓の、左下はひ臓の、右下は肺のデー
タを示す。 第8図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂貿が
トリガーとしても有用であることが明らかである。 ■別途、各群3匹のマウス(9週齢のオス03H/H
e.平均体重29g.)の尾静脈に、次表3に示す種々
のTNF (1,000単位)をブライマーとして含む
生理的食塩水0.2ml又は生理的食塩水のみO− 2
ml(対照群)を注射し、その3R閏後に卜リガーとし
てのlmgの実施例1で得られた本発明の粉末A −
a 2を生理的食塩水に溶解して総量を0.2ml1と
して、同じく尾静脈より投与した.トリガー投与の1時
間後に血清を採取し、L929纏胞に対する毒性に基づ
いてTNF活性を測定した。結果を、各群3匹の平均と
して添付図面の第9図に示す. 表 3 使用したブライマー r−TNF−S−AM2 (特開平1−95784号公
報の実施例lに記載) マウスTNF−α(前掲プロシーディング オブナショ
ナル アカデミー サイエンス オプ ユーエスエー
82、6060〜6064頁、1985年、に記載) サイモシンβa/TNF−San+ (B i o c
h e −misrty Internation
al,vol.1B、No.3、501 〜50B頁、
1989年、に記載) 第9図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の
内因性TNF産生能が、ブライマーとして各1!TNF
を使用することにより、およそ30倍になることが明ら
かである. ■別途、各03匹のマウス(9週齢のオスC3H /
H e *平均体重2 9 g m )のマクロファー
ジ腹腔常在纏胞200μa(2X105個)/穴を96
穴の平底プレートに入れ、ブライマーとしての組換えマ
ウスIFN−r (100単位/ m IL)を各穴に
10μ気を加え、その3時閏後にトリガーとしての、実
施例l記載の本発明の粉末A − 8 2( 2 m
g / m li)を10μ1/穴、又は大關菌LPS
( 1 11 g/ml)を10μ地/穴加えて2時
間培養し、ピペットで各穴から130μ気の上溝を回収
し、L929纏胞に対する毒性に基づいてTNF活性を
測定した.結果を、各群3匹の平均として添付図面の第
10図に示す.図中、Oは本発明のリムラステスト陽性
植物糖脂質である実施例lの粉末A−82の、●は大l
lI菌LPSのデータを示す。又、▲は粉末A − a
2及び大關鑓Lpsの、L929に対する直接毒性を
示す(共に値がOであった). 11!101!Iから、本発明のリムラステスト陽性植
物糖脂質の内因性TNF産生能が大関菌LPSと同程度
であることが明らかである。 第11図は、第lθ図に示された本発明のリムラステス
ト陽性植物糖脂質の内因性TNF産生能と、リムラステ
ストにより測定された本発明のリムラステスト陽性植物
糖脂質の含量とを対数正規確率紙に示した図である。 第11図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂貿
の含量と内因性TNF産生能との相関度が極めて高いこ
と、従って、又、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂
質が内因性TNF産生能を有することは明らかである. ■各群2匹のマウスく7週齢のオスC3H/He.平均
体重25g.)の尾静脈に、リムラス活性量で1又は3
μgのCHFを含む生理的食塩水0.2mlを注射し、
その1時間後に血清を採取し、L929細胞に対する毒
性に基づいてTNF活性を測定した.結果を、各群2匹
の平均として次表4に示す. 表 4 ■各群2匹のマウス(7週齢のオスBALB/c6平均
体125g.)の尾静脈に、ブライマーとしての、リン
数が1分子当たり311Nと推定されるCHFのIng
(リムラス活性ffi)を含む、又はそれを含まない生
理的食塩水0.2mlを注射し、その3時間後にトリガ
ーとしてのIKEのOK − 4 3 2を生理的食塩
水に溶解して総量を0.2mlとして、同じく尾静脈よ
り投与した.トリガー投与の2時間後に血清を採取し、
L929細胞に対する毒性に基づいてTNF活性を測定
した。 結果を、 各群2匹の平均として次表5に示す。 人一一旦 ■各群2匹のマウス(7週齢のオスBAL[l/C.平
均体重25g.)の尾静脈に、ブライマーとしての、リ
ン数が1分子当たり311と推定されるC H Fの]
ng(リムラス活性量)、又は大關菌1− P Sのl
ogを含む生理的食塩水0.2mlkを注射し、その3
時間後にトリガーとしての1μg(リムラス活性量)の
CHF又は1μgの大腸菌LPSを生理的食塩水に溶解
して総量を0.2mlLとして、同じく尾静脈より投与
した.トリガー投与の1時閏後に血清を採取し、L92
9細胞に対する毒性に基づいてTNF活性を測定した.
結果を、 各群2匹の平均として次表6に示す。 表 6 上記表4〜6に示された結果から、C If Fの分子
中にリンは最低1個あれば、TNF産生促進能、産生能
が低下することはないと推定される.実験例3(TNF
産生局所誘導作用の測定)上記実施例lて得られた粉末
A − a 2を生理的食塩水に斐濁し、得られた0.
2mlの懸濁液(20μgの本発明のリムラステスト陽
性植物糖脂質を含む)を各群3匹のマウス(繊維芽肉腫
メスA担癌7日齢のBALB/c雄マウス.平均体重2
4g.)の尾静脈に注射し、その後6時簡に渡って血清
、腫#Ii絹織、肝臓、肺、ひ臓におけるT N F産
生量の経時変化を、これら各朝織抽出液のL929纏胞
に対する毒性値を指標として測定した。 結果を、各群3匹の平均として添付図面の第12図に示
す。第12図において、●は血清の、▲は腫瘍組織の、
は肝臓の、口は肺の、■はひ臓のデータを示す。 第12図より、腫瘍絹織でのTNF産生が長時間に渡り
持続されることが明らかである.O)各群2匹の6週齢
のオスBALB/c nu/nuマウス(体重19〜
23g)にブライマーとしての生理的食塩水のみを2
0 0ml(A&ff)か、前記実施例lで得られた1
μgの粉末A−a2を2 0 0 m lの生理的食塩
水に懸濁したもの(B群)を尾静脈から静注するか、前
記実施例Iで得られた粉末Aa2をlmg/ma含む5
0%グリセリン水i液(C群)を腹部全体に20分間隔
て3回又は6回塗付した(1回塗付置は100μk).
■静注又は塗付完了の3時間後にトリガーとしてのIK
EのOK−432を尾静脈から静注し、その2時閏後に
血清を採取して、各20μ地のし929障害活性に基づ
いてTNF活性を測定した.結果な各群2匹の平均とし
て次表7に示す.青一一ヱ AI 2単位/mlL B群 270単位/m地 C群 8単位/ m 1 B.カーボン除去能 ■各群3匹の10週齢のオスのBALB/cマウス(平
均体重24〜29g)の腹部に一日一回、5日にわたっ
て各回50μ鼠の50%グリセリン水溶fl(A群)か
、前記実施例lで得られた粉末A − a 2をlmg
/mlL含む50%グリセリン水溶液(B群)か、大騙
菌LPSを2 u g/ma含む50%グリセリン水溶
ja(C群)を塗付し、D群には5日目のみに大11i
iLPsを1 5 u g/ma含む200μ鼠の生理
的食塩水を尾静脈より静注した. ■各検体のi後の塗付又は静注の2日後に、力−ボンと
してロットリングインク アート591017(西独口
ットリング社製)を生理的食塩水で6倍希釈液として各
マウスに体重の100分の1量を尾静脈から静注した. ■カーボン静注の5分後に採血し、各全血20μ良を2
mlのl%N82CO3て希釈し、カーボン1度をOD
aa@で光学的に測定した.結果を各群3匹の平均とし
て次表8に示す。 表中、E群は、カーボン静注直後に採血をした群であり
、カーボン除去率が「O」の場合に該当する.又、F群
は、正常マウスの血液20μ艷の光学的データである(
バックグランド).カーボン除去率は次式に従って、計
算した.E群の値一F群の値 表 8 群 ODaa@吸光度 カーボン、去率(%)A
0.547 24B
O.450 53C
O.480 4
4D O.320
93E O.625
0F O.296 実験例5(骨杉成促道能の測定) ■ふ卵後18日目の鶏胚の左右の頭頂骨(左右各1本存
在)を採取し、”C a (a5C a C 112と
して0.5μCi/m気)を含む1mlLの完全合成培
地BGJb−HW2(Il成は以下に示す)の入った別
々の試験官に入れ、水浴中で2時間培養して骨を4%C
Bで標識した. 成 分 量 (m
ハ)L−リジンHC鬼 2 4 0 L−ヒスチジンI{CIHzO 1 5 0 L−7ルギニンHCIL L−スレオニン L−バリン L一ロイシン L−イソロイシン L−メチオニン L−フエニルアラニン L−}リブトフ7ン L−チロシン L−システィンHC北◆H20 L−グルタミン グリシン L−セリン L−ブロリン ニコチン酸アミド チアミン}I C免 バントテン酸カルシ1クム Jボフラビン ビリドキサールリン酸 葉酸 7 5 7 5 6 5 5 0 3 0 5 0 5 0 4 0 4 0 9 0 200 1 5 0 105 115 2 0 4 0 . 0 . 0 . 0 , ビチオン 0.2p−アミ
ノ安息香rI!i2 α−リン酸トコフェロールNa 1塩化コリン
50m−イノシトール
0.2シアノコバラミン
0.04N a C 9.・乾燥物
8,000KCt1乾燥物 4
00CaClL2・一水 139.7
M g S O a 1真水 97
.7NazHPOa・2H20 60.
1同上乾燥物 47.9KH2
PO遮 160F ecax・6
1120 0.477トウ糖・乾
燥物 5,000(以上の成分を蒸留水に溶
解して全量をlaとした後に、以下の成分を添加する) 牛血清アルブミン lONaHCO3
1,40OL−アスコルビン酸Na
50ペニシリンG − 1<塩 1 0 ストレプトマイシン I O フェノールレッド 適量 ■この標識後、各頭頂骨をPBS(−)(ニッスイ社製
)で洗い、次いて、各1mlの非標識完全合成培地BG
Jb−HW2を含む培養管に入れて密栓し、回転培養器
を用い、30℃で一晩tf!養した。この壇!I朋閏中
に培地に放出さ九た46Caは物理化学的交換反応に因
るものであり、真の骨吸収活性を反映するものではない
と考え、tF!地は廃棄した。 ■左右の頭頂骨の一方を、Imlの非標識完全合成培地
BGJb−}IW2のみが入った培養管に入れ、他は、
各種1度の実施例1て得られた本発明のリムラステスト
陽性植物糖脂質である粉末Aを含む1ml1の非標識完
全合成培地BGJb−HW2が入った培養管に入れて密
栓し、回転iff I Wでざらに−・映培養を続けた
. ■培地(各2 5 0 B 11)を4.5mlLのA
CS 1Iシンチレーター(英国アマシャム社!!)に
加え、液体シンチレーションにて計数して、培地中への
”Catli出量を調べた. ■培lI後の各頭頂骨をPBS (−)で洗浄後、lm
lのINHCILの入った培養管に移し、密栓後に一晩
室温で放置した。培地(各250μ0を4.5mlのA
CSI1シンチレーターに加え、液体シンチレーション
にて計数して、骨に残存する45Ca量(45Ca残存
量)を調べた.結果を各群5試料の結果として次表9に
示す. 表 9 PTH=既知の骨吸収ホルモンである副甲状腺ホルモン
であり、その1単位は約lμgに相当する. 上記表から明らかな通り、粉末Aの効果は用量依存的に
高まり、10μgの使用で、PTH約lμgの効果を越
える,PTHの供給は極めて少なく、しかも高価である
ので、粉末A即ち本発明のノムラステスト陽性植物糖脂
質はPTHの極めて安価な、しかも大量に供給ざれる代
替品として使用できる。 実験例6(産卵促進能、卵殻強度増強能の測定)前記実
施例lで得られた粉末Aを水にといて一日当たり約3
5 0mlを16日閏鶏に与え、投与日を含めて30日
間に渡り毎日、各鶏の産んだ卯の数、その卵の般強度を
調べた.なお、実験に当たっては、粉末Aの投与量の相
違によって次の3群に分け、1群は各6羽とした. X群: 6 0 0 m g / m IY群:60m
g/ml Zn:水のみ(対照群) 結果を次表10に示す. 表 1 0 」二表lOより、次の3点が明白である。 ■本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質である粉末A
を投与したX群、Y群においては、それを投与しない2
群の場合よりも、産卵数が増加している。特に、X群の
場合は1.3倍(165÷129)に達している.従っ
て、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質には産卵促
進能があると判断される。 ■本発明のリムシステスト陽性植物糖脂質である粉末A
を投与したX群、Y群においては、それを投与しないZ
群の場合に比べ、総産卵数に占める、般強度が4 k
g / c m 2以上である卯の数の割合が2倍以上
になっており、本発明のリムラステス}f性植物t[r
iI質には、優れた卵殻強度増強能があると判断される
。 ■」一記産卵促進能、卵殻強度増強能は投与中止1壷も
観察されるので、本発明のリムラステスト曙性晴物糖脂
質の活性には優れた持続性があると判断される。 投与置、投与間隔、毒性値 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を免疫機能活性
化剤として、或いは、動物用免疫機能活性化剤として投
与するざいの置、投与間隔は、免疫機能活性化剤の本質
上、当然、担当医師或いは獣医師により、患者の年齢、
症状、産生TNFIから推定てきる投与効果を勘案して
個別に決定されるが、人間の成人(50kg)では、1
00%純度の精製標品の場合は0.1〜200μgが1
回投与量の一応の目安となる。 なお、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質は、純度
95%の標品の場合、6週齢のマウス3匹( B A
L B / c ,オス、体重19〜23g)に5 0
m g / k gを静注後48時間観察したが死亡
例はなく、又、人間の成人(50kg)1人当り15g
(活性成分量)を摂取しても特に急性毒性は観察されな
かった.なお、大腸菌LPSの上記と同種マウスにおけ
るLDs@は8.4mg/kgであるので、本発明のリ
ムラステスIll性植物糖脂質は安全性が極めて高いと
言える. [発明の効果] 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質は、従来の免疫
機能活性化剤とは異なり、原料が人間その他の動物が常
食しているものなので安全性の問題は少なく、従って、
化学療法係数が大きい。又静l1のみならず,経口投与
、皮膚塗布もてきるのて段4」二の便宜が大である.加
えて、安価である更に、以上に述べたような特長を持つ
ゆえに、特別の注意を払うことなく、常法により容易に
医薬、動物薬、検査薬、医薬部外品、化粧品、食品機能
性食品、飲料、飼料その他の主成分として或は一成分と
して配合することができる.
を示す成分を含むものならばいずれでもよい.l*えば
、裸子植物、単子葉類、双子葉類、シダ植物、ソウ頚、
MRを個別に或は混合して使用できる. 裸子植物としては、例えば、マツ科植物を使用できる。 単子葉類としては、例えば、イネ科、アヤメ科、ショウ
ガ科、サトイモ科、ユリ科の植物を使用できる.イネ科
植物としては、例えば、イネ、麦を使用できる。麦は小
麦、大麦、裸麦、からす麦5えん麦その他いずれの種類
でもよく、又、それらの混合物でもよい. 双子葉類としては、例えば、アカネ科、アブラナ科、ウ
リ科、クスノキ科、クルミ科、コショウ科、セリ科、ツ
ヅラフジ科、ドクダミ科、ナス科、バラ科、マタタビ科
、マメ科、ミカン科、モクレン科、ニクズク科の植物を
個別に或は混合物して使用できる。 シダ植物としては、例えば、トクサ科、ゼンマイ科の植
物を個別に或は混合して使用できる.ソウ類としては、
例えば、カッソウ類、紅ソウ頌、緑ソウ類、ランソウ類
の植物を個別に或は混合物して使用できる.緑ソウ類と
しては、例えばクロレラを使用できる. !i類としては、例えば、担子Mu、子ノウmillの
植物を個別に或は混合して使用できる.リムラステスト
陽性植物糖脂質の検出、含量測定以上に述べた原料植物
中の本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の検出、含
量測定は、例えば、生化学工業株式会社からトキシカラ
ーシステムという名称で市販されている試薬セットを使
用して実施できる.即ち、原料植物を同システムのLS
−lセットと合わせて発色させ、その発色の強さを、同
じく同セットのEt−2セットを使用して作成した検量
線と対比させればよい. 又、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質は、以下に
述べる方法で分離、精製できる.リムラステスト陽性植
物糖脂質の分離、精製■原料植物を必要に応じて適宜細
切、乾燥、粉砕した後に蒸留水によく懸濁し、上清を回
収する。 例えば、原料植物が穀類の種子である場合は、種皮をつ
けたまま、或は、種皮を除いた後に簡単に砕くか、又は
、食用に供せられている程度の粉末になるまで粉砕し、
得られた粉末に水を加えて分散液とし、攪拌した後に沈
降物を静置又は遠心分離により除去するか、粉末に水を
加えて練って得られるトウをミキサー中でゆるやかに水
洗し、沈降物を除去すればよい. この抽出操作の際の種子の粒度、水の温度、液性、添加
量、攪拌の速度、時間、遠心分離の際の条件等は特に制
限する必要はない.しかし、便宜上、抽出水の温度は、
穀類種子に含まれる澱粉の糊化を招来しない50℃以下
とすることが好ましい。又、水の添加量は、穀類の種類
、粒度により異なるが、穀類種子の割合が70w/v%
以下、望ましくは20〜50w/v%程度とすると操作
上便宜である.更に、攪拌の速度は、起泡を引き起こさ
ない程度のものとすることが好ましい.なお、この段階
の操作迄で、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の
純度は、リムラステスト活性データから判断して、例え
ば小麦種子の場合には約30倍に上昇する. ■純度を更に上げるためには、この上清を常法に従って
限外濾過に付して分子量5,000以下の両分を除去す
ればよい. ■得られた乾燥品を、50mg/mlになるように蒸留
水に懸濁し、遠心分離操作に付して上溝を回収する. ■この上清を氷水で冷却し、酸を添加して酸性にすると
沈殿が生じる.この際使用する酸は特定のものである必
要はなく、例えば、トリクロ口酢酸(以下、TCAと称
す)、過塩素酸、トリフルオロ酢酸、酢酸、ジクロ口酢
酸を使用できる.■次いで、遠心分離操作に付して沈殿
を回収して蒸冒水で洗浄し、再度遠心分1m?1作に付
して沈殿を回収する. ■沈殿を蒸留水に懸濁し、沈殿が溶解するまでアルカリ
を加える.この際使用するアルカリも特定のものである
必要はなく、例えば水酸化ナトリウム、水酸化カリウム
、アンモニア、炭酸ナトリウム、酢酸ナトリウムを使用
できる.沈殿の溶解時に塩基性がpH11より大きくな
ると目的の糖脂質が失活するので注意が必要である.■
次いで酸を加えてpH8としてから37℃に加温し、更
に酸を加えて酸性にすると沈殿が生ずるのて、37℃に
保温した遠心分離器を使用して遠心分離操作に付す。な
お、この際使用する酸も特定のものである必要はない. ■上清を回収して氷冷し、4℃で再び遠心分離操作に付
す゛ ■E消を回収し、アルカリを添加して中和し、常法に従
って限外濾過で濃縮する.この際使用するアルカリも特
定のものである必要はない.[相]次いて常法に従って
ゲル鑵過に付して、リムラステスト陽性画分を回収して
併せる.ゲル濾過用の担体としては、例えばセファデツ
クス( S e p h a d e x ) G −
7 5、G−100、セフアクリル(Sephacr
yl)S−200、セブ7ロース(Sepharose
)6B [以上は米国ファルマシア社(Pharmac
iaInc.)It]、バイオゲル(Biogel)p
−ioo(バイオラツド(BioradInc.)社I
I],}−ヨーバールHW−50、HW−55 (東洋
曾違工業社製)を使用できる.緩衝液はpH3〜IOの
ものならいずれでもよい.例えば、トリスーHCIL又
はリン酸緩衝液を使用できる. ■次いでこの両分に蛋白分解酵素を加え、37℃で2時
間以上インキユベーションして残存蛋白質を分解し、得
られた酵素処理液を常法に従って限外濾過により濃縮す
る.なお、この際に使用する蛋白分解酵素も特定なもの
である必要はなく、例えは、■8プロテアーゼ、キモト
リブシン、トリブシン、サーモライシンを単独で、或は
任意に鞘み合わせて使用できる.市販品としては、例え
ば、ブロナーゼE(科研化学社)、プロティネースK(
メルク社)を使用できる. O次いでこの両分を常法に従って、例えば、ファルマシ
ア社製のFPLCシステムでファルマシア?土製のモノ
Q−セファロース( S e p b a r −os
e)、Q−セファロース(Sepharo−se)を使
用して陰イオン交換クロマトグラフィーに付してリムラ
ステスト陽性画分を得る.0次いで、常法に従って脱塩
のためにゲル濾過に付してリムラステスト陽性両分を回
収する.以」一の操作により、例えば小麦種子の場合に
は、当初活性の約20%が回収され、純度約95%の精
製標品が得られ、又、段階■終了時の純度に比へ約1
0 0 0 +1!の純度(小麦種子の場合)になる.
児(υテスト陽性植 の 性 追って実施例中で詳述する如く,本発明のリムラス陽性
植物糖脂質の96%純度標品の分子量はおよそo,oo
o±1,000 (SDS電気泳動法)、リン数は1以
上/分子、ヘキソサミン数は6±27分子、脂肪酸数は
6±27分子である.提供の形態 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質はそのまま、或
いはlf.tの程度に希釈した形で提供できる.又、保
存性を高めるために、凍結乾燥や噴霧乾燥なとの任意の
手段により乾燥粉末として提供することもてきる.これ
らはいずれも常法で生産できる. 免疫活性化能の測定 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の免疫活性化能
は、マクロファージ活性を通じての内因性TNF産生促
進能、内因性TNF産生能、カーボン除去能、骨杉成促
進能、産卵促進能、卵殻強度増強能により確認した. 内因性TNF産生促進能、.舞」1熊 動物体内にTNFを産生させるためには、産生前駆(ブ
ライミング)段階と産生間始(トリ力リング)段階とが
必要であることは、カーズウェル(Ca r swe
I l)らにより、プロシーディング オブ ナショナ
ル アカデミー サイエンス オブ ユーエスx−(P
roc.Natl.Acad.Sc j.USA.)7
2、3666〜3670頁(1975年)に報告されて
おり、その後、各段階で使用出来る薬剤の検討もすすめ
られている.ブライミング段#開始のために投与される
薬剤が「ブライマー」 (内因性TNF産生促進剤)で
あり、トリガリング段階開始のために投与される薬剤が
「トリガー』 (内因性TNF産生剤)である.本発明
のリムラステスト陽性植物糖脂質は、既にその有用性が
確立されているビシバニールと同程度にブライマーとし
て、又、トリガ一としても機能する。 T N I”活性は、L−929細胞[プロシーディン
グ オブ ナソヨナル アカデミー サイエンスオブ
ユーエスエ− 72、 3666〜3 6 7 (1頁
]に対する細胞毒性を基にして、次のよー)にして測定
する. L92941胞を、5%17−牛胎児血清を加えたイー
グルミニマムエッセンシャル培地(以下、MEM培地と
表す)で育成し、8Xl04個の纏胞が100μ艷の同
上境地に含まれる様にし、96大の平底プレートで育種
する.育種条件は37℃、2時間、5%CO2、湿度1
00%であり、通常の細胞培養に用いられる方法でよい
.その後、アクナノマイシンDを培地中に!?濃度1μ
g/mlとなるように加え、培I液の液量を150μ艷
とする.即座に、検体を過当にMEM培地で稀釈したも
のを5 0 1t a加える(この際罹釈率を適宜講頓
し、EDa@を求める事ができる).更に、最終液量2
00μ鼠となったL929纏胞を上記条件で18時間培
養する. 細胞隙害活性を測定するには、まず全培地を除去し、つ
いで0.1%クリスタルバイオレットを含む1%メチル
アルコール溶液を加えて固定染色する.クリスタルバイ
オレットは全有核細胞を染色するが、死IIlll!は
染色後にプレート底面より水洗で除去されるので、生存
細胞の結果から細胞障害活性を直接測定できる.この染
色度をOD591!n++での吸光度をrF!標として
測定し、対照群に対する染色度と比較する事で細胞障害
活性を測定する.活性の定義は次の様に行う。 L 9 2 9細胞が60%生存できる検体の稀釈率(
N)を求める. ffi4照としてウサキTNS[I!
壜llIIF血清( T u m o r N e
c r o s i sSerum)]を使用し、この
ウサギTNSの活性n(単+17/m宛)を2.4Xj
06単1α/ tn g /[nλのTNF−αを用い
て決定する。このウサギTNSのEDs@を与える稀釈
率(C)を求める。 N 横体活性(単位/ m a)は − × n で計算す
る。 C L:ノ租2」L表l コUイト状カーボンの血中からの除去がマクロフ7−シ
活性の指標となることは古くから知られている(日本細
菌学会教育委員会編、細菌学技術叢書5『マクロファー
ジの機能と機能測定法」、98頁、昭和60年(株)菜
根出版発行)。従って、キャンサー リサーチ(Can
cerResearch)+ 28+ 1968年8
月号の1531〜1532記載の方法に準拠し、静注さ
れたカーボンの除去率を指標に、皮#投与されたリムラ
ステスト陽性植物糖脂質の免疫機能活性化能を測定する
. 骨杉成促進能 破骨纏胞活性化試験で確認する。 破骨纏胞は、骨絹織中の古い骨をこわす骨吸収担当細胞
てある.破骨繕胞の活性化により代償的に骨芽細胞が活
性化され、骨形成が骨吸収よりも優位の状態になる結果
、骨形成が促進されると考えられる. 破骨纏胞活性化試験ては、鶏胚頭頂骨を実験試料としで
使用する.即ち、鶏旺頭頂骨を45Caて標識した後に
、薬物を含む培地(処理群)と薬物を含まないtg地(
対N群)で別々に培II後に、骨に残存する4 もCa
量と、培養中に培地中に流出した”Ca量とを測定し、
処理群、対照群における4’aCa流出率をそれぞれ次
式により計算する.”Ca流出量 薬物の効果は次のT/C比で表す。 理論的には、このT/C比が1より大きければ薬物効果
があることになる.なお、後記実験例においては、個体
間のばらつきによる影響を避けるために、同一鶏の旺頭
頂骨(2本存在する)の一方を対照群で、他方を処理群
で使用した。 産卵促進能、卵殻強度増強能 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を投与した鶏か
ら産まれた卵の数及びその殻の強度を測定することによ
り確認する. 鶏卵の取引は農林事務次官通達により規制されている。 現行の昭和54年12月25日付け改正54畜AF51
36号通達によれば、鶏卵はその重量、外観検査、透光
検査の結果に基づき等級付けされているが、輸送中、取
扱い中、使用中等における鶏卵の破損を防止する目安と
なる般強度についての記載はない。只、外箱について、
rJIS一種破裂度8.8以Lのもの」とのみ規定して
いる。しかし、外箱がいくら丈夫であっても、輸送中等
の賑勤、掴みによる鶏卵の破損を防止できないことは自
明である。このため、料亭やスーパー等の大口需要者と
生産者との閏には、一定以上の般強度を有する鶏卵のみ
を取引対象とする例も少なくなく、その際には、4kg
/cm2以−ヒであれば申し分ないとされている. なお、現在のところ、鶏卵般強度を高める効果を有する
薬剤、H料等の開発、販売は知られていない。 リムラステスト隔性植v!J糖脂質の用途本発明のリム
ラステスト陽性植物糖脂質は様々な用途に使用できる. その第1の理由は、原料が人間その他の動物により常食
ざれているものなので、人閏その他の動物への投与に当
り憂慮すべき問題点が皆無であることにある. 第2の理由は、そのまま、或いは任意の程度に希釈した
形で、又、乾燥粉末として提供することもてきるので、
提供できる形態が極めて多岐に渡っている点にある。 第3の理由は安価であることにある。 このような利点を持つ本発明のリムラステスト陽性植物
糖脂質の一つの用途は、その免疫機能活性化能をそのま
ま生かした免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤
である. 第2の用途は、その免疫機能活性能を指標にして人閏そ
の他の動物の免疫機能をチェックするための免疫機能検
査薬、動物用免疫機能検査薬である. 第3の用途は、その免疫m能活性化能の発現を朋持して
配合される医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飲
料、飼料等である.例えば、本発明のリムラステスト陽
性植物糖脂質を配合した化粧品は皮膚の老化防止、新陳
代謝促進に役立つので、常に、又、末長く皮膚を新鮮に
保つのに役立つ。 提供できる剤の製造方法 これら免疫機能活性化剤等のいずれもが常法で製造でき
る。例えば、免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化
剤は医薬或は動物薬製造の常法にiκって、経口薬とし
て、或いは静注薬、筋注薬として単独で、或いは他薬と
の配合物として処方できる.又、皮膚にはマクロファー
ジが多いので、皮膚塗布剤として投与するとより高い効
果が得られる. 以下、実施例、実験例により本発明を更に詳繍に説明す
る. 実施例! ■小型二−ダに、1.09%の灰分を含む硬質小麦粉(
アメリカ又はカナダ産のハードレットスブリング)(3
,120g)を入れ、2.0311の蒸留水を加えて1
0分間練ってトウとした。15分間の静置後に10艷の
水を加えてゆるやかに攪拌してデンブン乳液を洗い出し
、同時に可溶性成分を溶出させた.この溶出液を5℃の
冷蔵庫中で12時間静置したのちデンブン等の沈降部を
除去した.上澄み液をイ粟結乾燥して201.1gの粉
末を得た(粉末A). 更に、残留トウに5地の蒸留水を加えてゆるやかに攪拌
し,以下、上記と同様に処理して40.1gの粉末を得
た(粉末B). ■これら事a末A.Bをアミコン冫上製限外濾過機正{
F−Lablに供し、分子量画分5,000については
中空系カートリッジHF−LablPM5を、分子量画
分10,000については中空系カートリッジ}l F
− L a b I P M ] 0を取り付けて限
外濾過を行った[温度5〜10℃.人圧25ps i
(1.76kg/cm2),出圧15ps(1.06k
g/cm2)]−その結果に基づき、各部分を次のよう
に命名した. 粉末A:分子量5,000以下の部分をa1分子量5,
000以上の部分なa2 粉末F{;分子15.000以下の部分をb1分子量5
,000以上の部分をb2 粉末A:分子量10.000以下の部分を83分子量1
0,000以上の部分をa− 粉末B:分子量10,000以下の部分をb3分子量1
0.000以上の部分をb4 これら各両分を後記実験例lに詳述する方法に準拠して
リムラステストに付したら、分子量5,000以上の両
分には多置のリムラステスト陽性成分が存在するが、分
子t5,000以下の両分にはほとんど存在しないこと
が確認された.■上記粉末a2030gをla三角フラ
スコに入れ、6 0 0 m lの蒸留水を注いで、6
0分閏スターラーで攪拌した後、日立冷却高速遠心機S
CR−20B (ローターRPR 1 6を事前に4℃
に冷却しておいた)で4℃で遠心分離操作 (10 000gX10分)に付して上溝を回収した
. ■この上清を11三角フラスコに入れ、水冷下(液温約
2℃)、スターラーで攪拌しながら、事前に2℃に冷却
してあった100%TCA水溶液20.5mlを滴下し
、滴下終Y後氷水中に10分間放置した. ■次いで前記と同様にして4℃で遠心分lII操作(t
o.OOOgX10分)に付して沈殿を回収し、氷水中
で冷却下、300mlの蒸留水と共に500mlのビー
カーに入れて懸濁し、氷水中で冷却し、前記と同様にし
て4℃で遠心分Ia操作(10,OOOgXlO分)に
付して沈殿を回収した. ■この沈殿をIILビーカーに入れ、蒸留水500ml
で懸濁し、IN水酸化ナトリウム溶液約3.5mlを使
用して中$0(pH7)L.、ついで、氷水中で冷却し
ながら、IN水酸化ナトリウム溶液約2mlを添加して
0.02N水酸化ナトリウム溶液になるようにして沈殿
を溶解した.■IN塩酸約1.5mlを加えてpH8と
し、次いで100mlの蒸留水を加えた後にIt三角フ
ラスコに移して37℃のインキュベーター内で30分間
ゆっくりgut,た. ■100%T C A * m Ml 3 0 m Q
を加えて混合した後、37℃のインキュヘーター内で1
0分間ゆっくりル盪してから、約37℃に保温した遠心
分Ilt器トミーCDIOOR(}ミーII!器社製)
を使用して遠心分M操作(3,000gX 1 0分)
に付した. ■上溝を回収して水冷し、4℃で遠心分m揄作(10,
000gXIO分)に付した.[相]上浦を回収してI
ON水酸化ナトリウム溶液約3、6 m Lで中luシ
て9H7とし、限外濾過器(東洋濾紙LIMP− 1
50,’7−(L9− : UK−10.N2圧:4.
Okg/cm2)で濃縮した.0得られた瀦縮MI6
0 m lを、セ77o−ス(Sepharose)6
BカラムC米国ファルマシア社(Pharmacja
Inc.)製、カラムサイズ:5cm(内径)Xj0
0cm(2t)]を使い、ゲルIl過cm+液:】θm
MトリスーHCI/lOmMNac11(pH7.5)
、流速:60mlL/時]に付して、各20mlLの両
分を得た. @初めから43番目から56番目迄の両分2 8 0m
lkを併せ、ブロナーゼE(科研{ヒ学社)450μg
を加え、iiiiI下、37℃に2時間保温した後に、
限外濾過W(東洋繍紙UHP−62、フィルター:UK
10SN2圧:4.Okg/cm2)で1縮した.
次いで、ファルマシア社製FPLCシステム(カラム:
モノQHR 1 0/10)を使って陰イオン交換クロ
マトグラフィーに付した.即ち、10mM}リスーHC
lL(p}17.5)と10mMのNaCILを含む緩
衝液で試料をカラムに付した後、上記緩衝液に更に16
5mMのNaClを含む絹成をした液(200ml)で
力ラムを洗った.次いて、165mMからIMのNaC
t濃度勾配になるようにN a C til1度を増加
させながら全量400mlで目的糖脂質を溶出させ、各
2mlの両分を回収した.リムラステスト陽性が確認さ
れた、濃度勾配をかけてから5〜8番目の画分を併せて
゛、糖脂質純度約92%の8m T1 [糖脂7J :
3 . 9 :3 m g(リムラステストによる大
腸菌1... P S換算値てある。以下の糖脂質量も
全てこの喚′#罐である)、糖:0.23mg、蛋白:
0.(14rnglを回収した00次(ビCその8m9
を、セフ7デツクス( S e p h a d e
x ) G − 2 5 [カラム:2.0cm(内径
)X20.2 cm ((i6rnlk)]を使−>T
ケル繍過(緩1i漬:水)に付して各3mtの両分を回
収した.リムラステスト陽性の確認された第1)〜12
ti目の画分を1nせて、糖脂質純度約9 5 %の1
2ml(糖脂M:2.7mg、糖:0.1 8mg.蛋
白:0.03mg)を回収した。糖はフェノールー硫酸
法で、蛋白はローリー法で測定した。なお、この両分は
、陰イオン交換クロマトグラフィーにより酸性であるこ
とを確認した。 又,S DSゲル電気泳動法による分子量は6,000
〜I(1,000だった。 ・秒上記画分を−80℃で凍結後に恒量になるまで凍結
乾燥し、重電を測定したら0.75mgあった。(以下
、この凍結乾燥標品をC H Fと称す)二のC II
Fのリムラス活性を後記実験例1記載の方法で測定し
たら2.7mgに相当するので、その比活性は 2.7
÷0.75=3.6 になる。 また、以上のIII製で、夾雑物として存在し得る単独
の糖は実質上全て除去されたと考えられるので、検出さ
れた糖は全て、糖脂質であるCHFを構成している糖と
考えられる。従って、この段階でのC H Fの純度を
重量に基づいて計算すると、蛋白=0.03mg 糖
脂[=0.75−0.03=0、7 2 m g だ
から、 0.72÷0.75X 1 00=96 (%)である
.C II Fの物性 0分子量 C H Fを蒸留水に溶解してlmg/tnai盲液を
調製し、その・l/7 Rを1.5m兄のトレフチ7一
7に入れた。これに、別途、lロIMのEDTAに2.
5%SDS、5%メルカブトエタノール、]OmMトリ
ス塩酸(pH8.0)を加えてv4製したSDS処理f
11tiIkを加え、この混液を3分間沸騰水に浸した
。ファルマシア社製のファストノステム(Phas t
Sys lem)をfe nl L,、電極との間
にSDS−ハツファー ストリップ(1’3uffer
Strip)(ファルマシア社製)が介在せられた
暑μ艷の上記混液をゲル[ファルマシア1土製のフ7ス
ト ゲル クラディエン}(Pbast Get
Gradient 8−25)に塗付
し、最大電圧250v,最大t流1 1) tn Aに
セットして泳動を開始させた。泳a終了後、クマシー染
色と銀染色における挙動をat;<した。 クマシー染色では、染色液としてファルマシア製の0.
1%ファスト ゲル ブルー ( P b asL
Gel Blue) Rを、脱色液として、メタ
ノール二酢酸:蒸留水(容量比3:l:6)7n渣を使
用し7次の順序で染色・脱色を行った。 ■50℃で8分間染色 2150℃で5分問脱色 3》50℃で8分間染色 4》50℃でlO分間脱邑 5)50℃で5分間保謹(グリセロール、酢酸、蒸留水
の容量比5:10:85混液) 6》蛇燥 銀染色は、次の順序で行った。 ■50℃で2分間、洗hfi<エタノール、酢酸、蒸留
水の容量比5:1:4混液)で処理2》50℃で2分閏
、洗S液(エタノール、酢酸、蒸留水の容量比10:5
:85混液)で処理3】50℃で4分間、洗浄液(エタ
ノール、酢酸蒸留水の容量比10:5:85混液)で処
理4)50℃で6分閏、増感液(8.3%グルタルジア
ルデヒド)で処理 5)50℃で3分間、洗浄液(エタノール、酢酸蒸留水
の容量比10:5:85混液)で処理6)50℃で5分
閏、洗t9H<エタノール、酢酸蒸留水の容量比10:
5:85混液)で処理7)50℃で2分間、洗浄液(脱
イオン水)で処理 8】50℃で2分閘、洗浄液(脱イオン水)で処理 914 0℃で13分問、0.25w/v%硝#銀て処
理 1013 0℃−C 3 0秒間、洗浄液(睨イオン水
)で処理 11130’℃て30秒間、洗浄液(脱イオン水)で処
理 1213 0℃で30秒間、現像液(0.04v/v%
ホルムアルデヒト+2.5w/v%炭酸ナトリウム洗浄
液)で処理 13130℃で4分間、現像液(0.04v/v%ホル
ムアルデヒト+2.5w/v%炭酸ナトリウム洗浄液)
で処理 1415 0℃で2分間、反応停止液(5%v/v%#
酸)て処理 1515 0℃で3分間、保謹液(酢酸、グリセロール
、蒸留水の容量比1 0 : 8 : 8 5混液)で
処理 16》乾燥 糖脂質はII染色に染まるが、クマシー染色には梁まら
ない性質を利用して染色帯を観察したら,分子量8,0
00±1,000の位置にCHFの主要染色帯が検出さ
れた。同様にして大腸菌LPSの染色帯を観察したら、
階段状に連続する染色帯が観察され、染色強度がIk高
の染色帯の分子量は30,000±5,000であると
推論された百日咳菌LPSては、分子量6,000±1
,000と9,000±1,000の位置に染色強度が
最高の染色帯が観察された。 [相]レ含有一 チェンートリバラ(Chen−Tor ibara)法
[チlン等著、rアナリティ力ル ケミストリ(Ana
lyticalChemistry) 、vo l.2
B、1756 〜175B頁(1956年)に4拠して
次の通りに行った。 C H Fを蒸留水に溶解して、25μgのCHFを含
む20μ艷の溶液を調製し、小試験管に入れた.20μ
艷の50v/v%硫酸を添加し、160℃で2時間加熱
した.次いて、20μ追の10v/v%過塩素酸を添加
した後にガスバーナーで1分間加熱して灰化させた。そ
の後に0.5muの蒸留水、次いて0.5mlの反応試
薬(lm艷の6N硫酸、2 m aの蒸留水、2mKの
2.5v/W%モリブデン酸アンモニウム及び1mlL
の10v/w%のアスコルビン酸を混合して調製し、そ
の0.5mlを使用)を添加して室温で30分間放置し
た後に、820nmでの吸光度( O D s21−)
を測定した。なお、横IIH作製用の試料としては、リ
ン酸二水素カリウム(和光純薬社製)を蒸留水で希釈し
、リンNIlとしてそれぞれ2.5μg,lIig,0
.25μg.0μgを含む0 . 5 m ILの溶液
を調製して使用した.なお、リン1gはリン酸二水素カ
リウム4。39gに相当する。得られた結果を次表1に
示す.表 1 γ↑:CHFのデータは、無機リンの混人(例えば、リ
ン酸緩衝液に由来する)による誤差を避けるために、加
I?!!処理をしていない対照のデータを減じた値であ
る。 C II Fの分子量を8,000と仮定し、L表の結
果に基づいてC H Fの1分子当たりのリン数を次式
により計算すると1〜4になる. 分子量 l lン重量XIO−6XX− 25X10− 32 上記実験でリン数が1〜4と変動している原因の1つと
しては、精製段階でのモノフオスフ才エステラーゼの混
入により、リン酸が脱離したことも考えられる。 同様にして求められた大111菌LPs、百日咳菌LP
S (分子量はそれぞれ30,000と8,000に仮
定)の1分子当たりのリン数はそれぞれ約12個、5個
であった。 ■ヘキソサミン含有置 エルソンーモルガン(ElsoローM o r ga
n ) jp.(東京化学同人出版「生化学実験講座」
N0.4の377〜379頁)に準拠して次の通りに行
った. CHFを蒸留水に溶解してlmg/maの溶液を調製し
、その100μ交をスクリコーキセッブ付きスピッツ(
イワキガラス社製)に入れ、これに100μ免の8 N
H C fLlt添加して110℃で16時閏加熱し
た.4NNaOHを約2ooμm添加してpH7とした
。その100μ1を分取し、別のスクリューキャップ付
きスピッツに入れ、200μ化の下記試薬Aを加えた後
に、105℃で1.5時閘加幼し、次いて流水で冷却し
た。次いて、1 0 0 lt Qを分取し、670μ
艷の96%エタノールを加え、更に、6 7 B Q.
の下記試薬Bを加えた後に室温でl時間放置し、5 3
5 n mで吸光度を測定した。検量線作製用試料と
しては0.20〜200μg/mlLのN−ア七子ル
グルコサミン(tロ光純薬?上製)を使用した。 〈試薬A)7577.ILのアセチルアセトンと2.5
m Qの1.25N倹酸ナトリウムを混合してy4製(
試薬B)1.6gのp−ジメチルヘンズアルデヒドと3
0mQの1塩酸と3 0 m lの96%エタノール
を混合して調製 結果、CHFのへキソサミン数は6±27分子(仮定分
子量8,000)だった。同様にして測定さh タ大v
:JiL P S (仮定分子量3 0 , 0 0
0)、百日咳菌LPS (仮定分子量8,000)のへ
キソサミン数はそれぞれ45±6/分子、I6±2/分
子たった。 0脂肪酸含有量 90μ史のCHF蒸留水溶液(lrng/mlL)にl
θμ艷の内部標準(0.55mMのマルガリンM)を加
えた。1 . 0 m覧の0.5Mナトリウムメチラー
トを加えて脂肪酸エステルの加水分解とエステル化を行
った。室温で1時間飲置後に96 0 /l Qの0.
5NHClを加えて中和した。これに2mlのヘキサン
を加えて15分間激しく攪拌した。次いで、1,000
gで5分間遠心分離を行いヘキサン層を分取した。♀素
ガスでヘキサンを蒸発させて、約20μ灸になるまで濃
縮した。 このサンプルをガスクロマトグラフィー[本体:島津社
製のG C 8 A P F、キャビラリーカラl1:
スベノレコ(Spelco)冫土くカナダ)製FSCA
P Sp2330、キャリャーガス:窒素]に付して
脂肪酸量を測定した。脂肪酸量測定の基準としては、第
一化学薬品社製の合成リビドAてある大Ml薗型LA−
1 5−PP (分子12,000で、1分子中の脂
肪酸数は6てあることが知られている)を用いた。 結果、C H Fの脂肪酸数は6±2/分子(仮定分子
18 , 0 0 0)であると推定された.同様にし
て推定された大111菌LPS(仮定分子@30,00
0).百日咳菌LPS (仮定分子量8,000)の脂
肪酸数はそれぞれ】8/分子、5/分子たー〕た。 上記ガスクロマトグラフィーで観察されたチャートを添
付図面第1〜3図に示す。第11!IはCHFの、第2
図は大Ill菌LPSの、第3図は百日咳菌L P S
のチャートである。 第1〜13図において、図示されている主要ピーク番号
に対応する保持時間(分)は次の通りであった。 第1図: ビーク番号 侃持時蘭(分)1
2.450 2 2.758 第2図: ピーク番号 ?LU!L耶間(外Q■ー 2.417 2 2. 742 第3図: ピーク番号 堡持時間(分) l 2. 433 2 3. 028 第1〜3図の比較により、C H Fのチャートは大%
I菌L P Sのチャートに似ているが、百日咳菌LP
Sのものとは大きく異なることは明白である.実験例J
(リムラステスト陽性植物糖脂質の定量:各種植物に含
まれるリムラステスト陽性植物糖脂質の定量を、生化学
工業株式会社のトキシカラーシステムを使って行った. ■96穴の平底または丸底プレートに注剖用蒸留水を1
穴当たり180μ艷入れた.試料20μ化(試料が固体
の場合には注射用蒸留水に溶M L/て調製した)をプ
レートの穴の1つに加えた。プレートミキサーで攪拌し
ながらビペッティングを行って10倍希釈液を調製した
。(以後、順次希駅試料を20t19.ずつとり、同様
に処理することで100倍、1000倍、・・・と10
倍希釈系列液を調製できる。また、注利用蒸留水と試料
の量比を変えることにより希釈率は任意に設定できる。 )■内部標準として1.δ7lg / m鼠の大111
i1LPS溶液の100.00017!希釈液を調製し
、希釈やリムラステスト発色が正常であることを確認し
た. ■上記■の10倍希釈液35μ地を別のプレートの穴に
とり、生化学工業株式会社のトキシカラ一システムのL
S−1セット35μλを添加し、37℃て;10分間放
置した.ついて105μ艷のlM#$酸水を加えて攪拌
して反応を停止させた。 この試料液の波長415nmての吸光度を、96穴川吸
光度計プレートリーダーMTP−100(コロナ電気株
式会社!!)で測定した.パックグラントとしては蒸留
水を、検量線作成用としては42pg/mlの生化学工
業株式会社のトキシカラーシステムのET−1セットを
使用して検量線を作成し、この検量線を基準にして各試
料中のリムラステスト陽性糖脂質の定量を行った.(試
料が蒸留水である場合の吸光度を0とした.)なお、こ
の方法で前記LS− 1セウトを使用した場合には10
〜4 5 p g / m ILの範囲内で発色に定量
性があることが確認されたので、この範囲に入らないと
きは、希釈率を変えて再実験した。 希釈試料の定量値は、 (検量線から読み取った*) X (希釈率)で計算し
た。 得られた結果を、固体試料の場合にはロg/g単位で、
液体試料の場合にはn g/mu単位で次表2に示す。 なお、表中の試料の欄の会社名、地名等は、当該試料の
人手先、産地をさす.かかる記載がない品はスーパース
トアー忠実屋の神奈川県津久井郡中野町店で購入した品
で、製造者が不明なものを指す. 表 2 リムラステスト陽性 試料(固体) 糖脂質量 (n )譚子M物 松の実く興南貿易) l25単子
葉類 硬質系小麦橿子(千葉製粉) 2,250硬質系
小麦種子く千葉製粉) (分子量5000以上) 1,000,000硬質
系小麦粉(千葉製粉) 7,500小麦ふす
ま(千Mll扮) (分子量5000以上) 300小麦胚
芽(千葉製粉) 1,600小麦胚芽
(千葉製粉) (分子15 0 0 0以上) 玄米 米粉(日の本穀粉) (分子15000以上) 31, 米ぬか 米ぬか(分子量5000以上) コーンフラワー(大洋飼料) (分子量50001J上) コーングリッツ(大洋飼料) (分子量5000以上) コーン(和光食tI) クマ笹(閏本物産) アヤメ(種子) ニンニク<m茎〉 アスパラカス(芽) ミョウガ(花房) ヨクイニン(ウチダ和漢薬) ハンゲ(松浦藁業) バクモントウ(栃木天海堂) <10.000 1, 100 0 0 0 , O O O 2 9 , O 0 0 500, 000 く0. 3 1 5 , 3 , 120 2 0 0 0 0 0 3 0 0 7 0 5 0 0 0 0 0 3 0 0 5 0 0 0 0 0 ターメリック(エスビー食品) 195.000双
子葉類 大豆(三女食品) 15o大豆(
ほくれん)(分子量5000以上)400丹波黒大豆(
和光食檀)86 小豆(和光食糧) 45o小豆(
和光食糧) (分子量5000以上) 36,000,000ひたし
豆(和光食糧) 8oo大正金FM
I(和光食糧) 5 5 0大福豆
く和光食tI> 350そら豆
(生) 75oジャカイモ(
ほくれん) (分子量5000以上> <O. aビ
ワ(種子) 800アボ
ガド(種子) 950モモ(種子
) 4,500クルミ(種子)
1.900ソラ豆(橿子)
75oカボチャ(種子)
10,000トマト(生の実) カイワレダイコン(根を除く) マタタビ(丸久物産) アマチャズル(K.K.桜井) トクダミ(温a重量当たり) (帝京大学薬用植物園) 胡叡(白)(エスビー食品) トウカラシ(興南貿易) 八角(興南貿易) ナツメグ(ライオン) トウヒ(ウチダ和漢薬) カッコン(栃木天海堂) 甘草(ウチダ和漢薬) ニンジン(ウチダ和漢薬) ボウフウ(栃木天海室) カンボウイ(栃木天海堂) チョウトウコウ(ウチダ和?IrM) シダ植物 スギナ(湿潤重量当たり) (帝京大学薬用植物園) 10, 500 50, 000 40, 000 ?3, 000 l , 2 , 2 , 5 , 2 . 8 , 3 , 18, 4 5 , 50, 6 0 0 , 7 , 2 0 0 3 0 0 3 0 0 5 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 0 7 0 0 ゼンマイ(閏本物産) D1 わかめ(三陸天然品) わかめの芽株 ひしき(生) 芽ひじき(小善本店) コブ(ヤマトタカハシ) アサクサノリ(乾燥生ノリ) クロレラ (ヘルスタージャバンYS) (マンナンフーズYS) I 椎茸(下仁田産) えのき茸(長野県中野市) しめし(勢多郡宮城町) まいたけ(大利I!) あわび茸(羽生) マッシュルーム き〈らげ ナメコ 10, 000 11,000 200, 000 85, 000 105, 000 235, 000 130, 000 1, 900, 1, 000, 0 0 0 0 0 0 16. 000 20, 000 40, 000 205, 000 B. 000 20, 000 75, 000 21. 000 エヒオス 250. 000 冬虫夏草 240, 000 リムラステスト陽性 越エ科一(液体) 糖脂質量 (n g)ビ
ール キリン ファインとルスナー 1,150ラガー
ビール 1,250ハートラント
1,550ファイントラフト 1,40
0アサヒ スーパーイースト 600囚
工λ サントリー サントネージュ(白)13(赤)24 シ一ドル(アップル) 900 辻1顕遵 大間一級(大間酒造) 黄桜二級(黄桜酒造) 大寒吟醸二級(玉東堂酒造) p』 2 . 4 1 . 7 日々一献(大間酒造) 12薬味酒 陶陶酒デルカツブ(陶陶酒本舖)1.20 宝焼酎(宝酒造) <2. 0そ
の他 キョーレオビン(湧水製薬) 6ooニンニ
ク抽出液(湧永製薬) 35o実験例2 A,内因性TNF産生促進能の測定 (p各群3匹のマウス(7週齢のメスC3H/He平均
体重25g)の尾静脈に、ブライマーとしての各検体を
溶解した生理的食塩水0.2mλを静γ↑し、その3時
間後にトリガーとしてO K −432をIKE [ク
リニンシュ アインハイト(Kliniscbe E
inbeit)系単位であり、IKEは0.1mgの乾
燥細菌を含む製剤量にあたる]を溶解した生理的食塩水
0.2mλを同じく尾静脈より投与した。トリガー投与
02時間後に血清を採取し、L 9 2 9 II胞に
対する毒性に基ついてTNF活性を測定した。結果を、
各群3匹の平均として添付図面の第4図に示す.この図
から、本発明のリムラステス}FW性植物糖脂質がOK
−432と同程度の内因性TNF産生促進能を示すこと
は明瞭である.叉、本発明のリムラステスト陽性植物糖
脂質が内因性TNF産生促進能を発揮する量には最適量
があることも推測される。 ■別途、各群3匹のマウス(714齢のメス03H /
H e .平均体重25g)に、ブライマーとしての
各検体を経口投与(各検体を200μ鼠の蒸留水に溶解
して、経口針で宵内に直接に投与)し、その後は、上記
静注の場合と同様に処理した。 結果を、各群3匹の平均として添11図面の第5図にボ
す。 この図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質が
経口投与によっても内因性TNF産生促進能を示すこと
は明瞭である。 ■別途、各群3匹のマウス(12週齢のオスC3 H
/ H e ,平均体重29g.)の尾静脈に、ブライ
マーとしての実施例1て得られた粉末A−a2を様々な
量で含む生理的食塩水0.2ml1を注射し、その38
!間後にトリガーとしてのl.OKE又は3.OKEの
O K − 4 3 2を生理的食塩水に溶解して総量
を0.2maとし、同しく尾静脈より投与した。トリガ
ー投与の2時間後に血清を採取し、L929纏胞に対す
る毒性に基づいてTNF活性を測定した。結果を、各群
3匹の平均として添付図面の第6図に示す. 第6図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質が
内因性TNF産生促進能を発揮する量には最適量がある
ことが推測される。 ■別途、各群3匹のマウス(9週齢のオスC3H/He
.平均体重27g.)の尾静脈に、ブライマーとしての
実施例1て得られた粉末Aa2を11解した生理的食塩
水0.2ml[大111ILPS量に換算して1μgの
本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を含む)を注射
し、その3時間後にトリカーとしての1.OKE又は3
.OKEの0 t< − 4 3 2を生理的食塩水に
溶解して総量を0、2mlとしで、同しく尾静脈より投
与した。 トリガー投与の2時間後に血清を抹取し、L929纏胞
に対する毒性に基づいてTNF活性を瀾定した.結果を
、各群3匹の平均として添付図面の第7図に示す。第7
図において、横軸は、ブライマーとトリガーとの投与間
閘を示す. 第7図から、本発明のリムラステスト陽性植物1■が最
適の内因性TNF産生促進能を発揮するには、ブライマ
ーとトリガーとの投与r:′I隔を考慮すべきことが推
測される。 B.内囚性TNF産生能の測定 ■各群3匹のマウス(9遍齢のオスC3H/}{e.平
均体!27g.)の尾静脈に、ブライマーとしての実施
例1て得られた粉末Aa2を溶解した生理的食塩水0.
2mlL(大關菌LPS量に換算してlnHの本発明の
リムラステスト陽性植物糖脂質を含む)又は生理的食塩
水のみ0.2ml(対照群)を注射し、その3時閏後に
トリガーとしての0−10mgの粉末Aa2を生理的食
塩水に溶解して総量を0.2mlとして、同じく尾静脈
より投与した.トリガー投与の1時間後に血清、肝臓、
ひ臓、肺を採取し、L929II胞に対する毒性に基づ
いてTNF活性を測定した.結果を、各群3匹の平均と
して添付図面の第8図に示す.第8図において、左上は
血清の、右上は肝臓の、左下はひ臓の、右下は肺のデー
タを示す。 第8図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂貿が
トリガーとしても有用であることが明らかである。 ■別途、各群3匹のマウス(9週齢のオス03H/H
e.平均体重29g.)の尾静脈に、次表3に示す種々
のTNF (1,000単位)をブライマーとして含む
生理的食塩水0.2ml又は生理的食塩水のみO− 2
ml(対照群)を注射し、その3R閏後に卜リガーとし
てのlmgの実施例1で得られた本発明の粉末A −
a 2を生理的食塩水に溶解して総量を0.2ml1と
して、同じく尾静脈より投与した.トリガー投与の1時
間後に血清を採取し、L929纏胞に対する毒性に基づ
いてTNF活性を測定した。結果を、各群3匹の平均と
して添付図面の第9図に示す. 表 3 使用したブライマー r−TNF−S−AM2 (特開平1−95784号公
報の実施例lに記載) マウスTNF−α(前掲プロシーディング オブナショ
ナル アカデミー サイエンス オプ ユーエスエー
82、6060〜6064頁、1985年、に記載) サイモシンβa/TNF−San+ (B i o c
h e −misrty Internation
al,vol.1B、No.3、501 〜50B頁、
1989年、に記載) 第9図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の
内因性TNF産生能が、ブライマーとして各1!TNF
を使用することにより、およそ30倍になることが明ら
かである. ■別途、各03匹のマウス(9週齢のオスC3H /
H e *平均体重2 9 g m )のマクロファー
ジ腹腔常在纏胞200μa(2X105個)/穴を96
穴の平底プレートに入れ、ブライマーとしての組換えマ
ウスIFN−r (100単位/ m IL)を各穴に
10μ気を加え、その3時閏後にトリガーとしての、実
施例l記載の本発明の粉末A − 8 2( 2 m
g / m li)を10μ1/穴、又は大關菌LPS
( 1 11 g/ml)を10μ地/穴加えて2時
間培養し、ピペットで各穴から130μ気の上溝を回収
し、L929纏胞に対する毒性に基づいてTNF活性を
測定した.結果を、各群3匹の平均として添付図面の第
10図に示す.図中、Oは本発明のリムラステスト陽性
植物糖脂質である実施例lの粉末A−82の、●は大l
lI菌LPSのデータを示す。又、▲は粉末A − a
2及び大關鑓Lpsの、L929に対する直接毒性を
示す(共に値がOであった). 11!101!Iから、本発明のリムラステスト陽性植
物糖脂質の内因性TNF産生能が大関菌LPSと同程度
であることが明らかである。 第11図は、第lθ図に示された本発明のリムラステス
ト陽性植物糖脂質の内因性TNF産生能と、リムラステ
ストにより測定された本発明のリムラステスト陽性植物
糖脂質の含量とを対数正規確率紙に示した図である。 第11図から、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂貿
の含量と内因性TNF産生能との相関度が極めて高いこ
と、従って、又、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂
質が内因性TNF産生能を有することは明らかである. ■各群2匹のマウスく7週齢のオスC3H/He.平均
体重25g.)の尾静脈に、リムラス活性量で1又は3
μgのCHFを含む生理的食塩水0.2mlを注射し、
その1時間後に血清を採取し、L929細胞に対する毒
性に基づいてTNF活性を測定した.結果を、各群2匹
の平均として次表4に示す. 表 4 ■各群2匹のマウス(7週齢のオスBALB/c6平均
体125g.)の尾静脈に、ブライマーとしての、リン
数が1分子当たり311Nと推定されるCHFのIng
(リムラス活性ffi)を含む、又はそれを含まない生
理的食塩水0.2mlを注射し、その3時間後にトリガ
ーとしてのIKEのOK − 4 3 2を生理的食塩
水に溶解して総量を0.2mlとして、同じく尾静脈よ
り投与した.トリガー投与の2時間後に血清を採取し、
L929細胞に対する毒性に基づいてTNF活性を測定
した。 結果を、 各群2匹の平均として次表5に示す。 人一一旦 ■各群2匹のマウス(7週齢のオスBAL[l/C.平
均体重25g.)の尾静脈に、ブライマーとしての、リ
ン数が1分子当たり311と推定されるC H Fの]
ng(リムラス活性量)、又は大關菌1− P Sのl
ogを含む生理的食塩水0.2mlkを注射し、その3
時間後にトリガーとしての1μg(リムラス活性量)の
CHF又は1μgの大腸菌LPSを生理的食塩水に溶解
して総量を0.2mlLとして、同じく尾静脈より投与
した.トリガー投与の1時閏後に血清を採取し、L92
9細胞に対する毒性に基づいてTNF活性を測定した.
結果を、 各群2匹の平均として次表6に示す。 表 6 上記表4〜6に示された結果から、C If Fの分子
中にリンは最低1個あれば、TNF産生促進能、産生能
が低下することはないと推定される.実験例3(TNF
産生局所誘導作用の測定)上記実施例lて得られた粉末
A − a 2を生理的食塩水に斐濁し、得られた0.
2mlの懸濁液(20μgの本発明のリムラステスト陽
性植物糖脂質を含む)を各群3匹のマウス(繊維芽肉腫
メスA担癌7日齢のBALB/c雄マウス.平均体重2
4g.)の尾静脈に注射し、その後6時簡に渡って血清
、腫#Ii絹織、肝臓、肺、ひ臓におけるT N F産
生量の経時変化を、これら各朝織抽出液のL929纏胞
に対する毒性値を指標として測定した。 結果を、各群3匹の平均として添付図面の第12図に示
す。第12図において、●は血清の、▲は腫瘍組織の、
は肝臓の、口は肺の、■はひ臓のデータを示す。 第12図より、腫瘍絹織でのTNF産生が長時間に渡り
持続されることが明らかである.O)各群2匹の6週齢
のオスBALB/c nu/nuマウス(体重19〜
23g)にブライマーとしての生理的食塩水のみを2
0 0ml(A&ff)か、前記実施例lで得られた1
μgの粉末A−a2を2 0 0 m lの生理的食塩
水に懸濁したもの(B群)を尾静脈から静注するか、前
記実施例Iで得られた粉末Aa2をlmg/ma含む5
0%グリセリン水i液(C群)を腹部全体に20分間隔
て3回又は6回塗付した(1回塗付置は100μk).
■静注又は塗付完了の3時間後にトリガーとしてのIK
EのOK−432を尾静脈から静注し、その2時閏後に
血清を採取して、各20μ地のし929障害活性に基づ
いてTNF活性を測定した.結果な各群2匹の平均とし
て次表7に示す.青一一ヱ AI 2単位/mlL B群 270単位/m地 C群 8単位/ m 1 B.カーボン除去能 ■各群3匹の10週齢のオスのBALB/cマウス(平
均体重24〜29g)の腹部に一日一回、5日にわたっ
て各回50μ鼠の50%グリセリン水溶fl(A群)か
、前記実施例lで得られた粉末A − a 2をlmg
/mlL含む50%グリセリン水溶液(B群)か、大騙
菌LPSを2 u g/ma含む50%グリセリン水溶
ja(C群)を塗付し、D群には5日目のみに大11i
iLPsを1 5 u g/ma含む200μ鼠の生理
的食塩水を尾静脈より静注した. ■各検体のi後の塗付又は静注の2日後に、力−ボンと
してロットリングインク アート591017(西独口
ットリング社製)を生理的食塩水で6倍希釈液として各
マウスに体重の100分の1量を尾静脈から静注した. ■カーボン静注の5分後に採血し、各全血20μ良を2
mlのl%N82CO3て希釈し、カーボン1度をOD
aa@で光学的に測定した.結果を各群3匹の平均とし
て次表8に示す。 表中、E群は、カーボン静注直後に採血をした群であり
、カーボン除去率が「O」の場合に該当する.又、F群
は、正常マウスの血液20μ艷の光学的データである(
バックグランド).カーボン除去率は次式に従って、計
算した.E群の値一F群の値 表 8 群 ODaa@吸光度 カーボン、去率(%)A
0.547 24B
O.450 53C
O.480 4
4D O.320
93E O.625
0F O.296 実験例5(骨杉成促道能の測定) ■ふ卵後18日目の鶏胚の左右の頭頂骨(左右各1本存
在)を採取し、”C a (a5C a C 112と
して0.5μCi/m気)を含む1mlLの完全合成培
地BGJb−HW2(Il成は以下に示す)の入った別
々の試験官に入れ、水浴中で2時間培養して骨を4%C
Bで標識した. 成 分 量 (m
ハ)L−リジンHC鬼 2 4 0 L−ヒスチジンI{CIHzO 1 5 0 L−7ルギニンHCIL L−スレオニン L−バリン L一ロイシン L−イソロイシン L−メチオニン L−フエニルアラニン L−}リブトフ7ン L−チロシン L−システィンHC北◆H20 L−グルタミン グリシン L−セリン L−ブロリン ニコチン酸アミド チアミン}I C免 バントテン酸カルシ1クム Jボフラビン ビリドキサールリン酸 葉酸 7 5 7 5 6 5 5 0 3 0 5 0 5 0 4 0 4 0 9 0 200 1 5 0 105 115 2 0 4 0 . 0 . 0 . 0 , ビチオン 0.2p−アミ
ノ安息香rI!i2 α−リン酸トコフェロールNa 1塩化コリン
50m−イノシトール
0.2シアノコバラミン
0.04N a C 9.・乾燥物
8,000KCt1乾燥物 4
00CaClL2・一水 139.7
M g S O a 1真水 97
.7NazHPOa・2H20 60.
1同上乾燥物 47.9KH2
PO遮 160F ecax・6
1120 0.477トウ糖・乾
燥物 5,000(以上の成分を蒸留水に溶
解して全量をlaとした後に、以下の成分を添加する) 牛血清アルブミン lONaHCO3
1,40OL−アスコルビン酸Na
50ペニシリンG − 1<塩 1 0 ストレプトマイシン I O フェノールレッド 適量 ■この標識後、各頭頂骨をPBS(−)(ニッスイ社製
)で洗い、次いて、各1mlの非標識完全合成培地BG
Jb−HW2を含む培養管に入れて密栓し、回転培養器
を用い、30℃で一晩tf!養した。この壇!I朋閏中
に培地に放出さ九た46Caは物理化学的交換反応に因
るものであり、真の骨吸収活性を反映するものではない
と考え、tF!地は廃棄した。 ■左右の頭頂骨の一方を、Imlの非標識完全合成培地
BGJb−}IW2のみが入った培養管に入れ、他は、
各種1度の実施例1て得られた本発明のリムラステスト
陽性植物糖脂質である粉末Aを含む1ml1の非標識完
全合成培地BGJb−HW2が入った培養管に入れて密
栓し、回転iff I Wでざらに−・映培養を続けた
. ■培地(各2 5 0 B 11)を4.5mlLのA
CS 1Iシンチレーター(英国アマシャム社!!)に
加え、液体シンチレーションにて計数して、培地中への
”Catli出量を調べた. ■培lI後の各頭頂骨をPBS (−)で洗浄後、lm
lのINHCILの入った培養管に移し、密栓後に一晩
室温で放置した。培地(各250μ0を4.5mlのA
CSI1シンチレーターに加え、液体シンチレーション
にて計数して、骨に残存する45Ca量(45Ca残存
量)を調べた.結果を各群5試料の結果として次表9に
示す. 表 9 PTH=既知の骨吸収ホルモンである副甲状腺ホルモン
であり、その1単位は約lμgに相当する. 上記表から明らかな通り、粉末Aの効果は用量依存的に
高まり、10μgの使用で、PTH約lμgの効果を越
える,PTHの供給は極めて少なく、しかも高価である
ので、粉末A即ち本発明のノムラステスト陽性植物糖脂
質はPTHの極めて安価な、しかも大量に供給ざれる代
替品として使用できる。 実験例6(産卵促進能、卵殻強度増強能の測定)前記実
施例lで得られた粉末Aを水にといて一日当たり約3
5 0mlを16日閏鶏に与え、投与日を含めて30日
間に渡り毎日、各鶏の産んだ卯の数、その卵の般強度を
調べた.なお、実験に当たっては、粉末Aの投与量の相
違によって次の3群に分け、1群は各6羽とした. X群: 6 0 0 m g / m IY群:60m
g/ml Zn:水のみ(対照群) 結果を次表10に示す. 表 1 0 」二表lOより、次の3点が明白である。 ■本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質である粉末A
を投与したX群、Y群においては、それを投与しない2
群の場合よりも、産卵数が増加している。特に、X群の
場合は1.3倍(165÷129)に達している.従っ
て、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質には産卵促
進能があると判断される。 ■本発明のリムシステスト陽性植物糖脂質である粉末A
を投与したX群、Y群においては、それを投与しないZ
群の場合に比べ、総産卵数に占める、般強度が4 k
g / c m 2以上である卯の数の割合が2倍以上
になっており、本発明のリムラステス}f性植物t[r
iI質には、優れた卵殻強度増強能があると判断される
。 ■」一記産卵促進能、卵殻強度増強能は投与中止1壷も
観察されるので、本発明のリムラステスト曙性晴物糖脂
質の活性には優れた持続性があると判断される。 投与置、投与間隔、毒性値 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を免疫機能活性
化剤として、或いは、動物用免疫機能活性化剤として投
与するざいの置、投与間隔は、免疫機能活性化剤の本質
上、当然、担当医師或いは獣医師により、患者の年齢、
症状、産生TNFIから推定てきる投与効果を勘案して
個別に決定されるが、人間の成人(50kg)では、1
00%純度の精製標品の場合は0.1〜200μgが1
回投与量の一応の目安となる。 なお、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質は、純度
95%の標品の場合、6週齢のマウス3匹( B A
L B / c ,オス、体重19〜23g)に5 0
m g / k gを静注後48時間観察したが死亡
例はなく、又、人間の成人(50kg)1人当り15g
(活性成分量)を摂取しても特に急性毒性は観察されな
かった.なお、大腸菌LPSの上記と同種マウスにおけ
るLDs@は8.4mg/kgであるので、本発明のリ
ムラステスIll性植物糖脂質は安全性が極めて高いと
言える. [発明の効果] 本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質は、従来の免疫
機能活性化剤とは異なり、原料が人間その他の動物が常
食しているものなので安全性の問題は少なく、従って、
化学療法係数が大きい。又静l1のみならず,経口投与
、皮膚塗布もてきるのて段4」二の便宜が大である.加
えて、安価である更に、以上に述べたような特長を持つ
ゆえに、特別の注意を払うことなく、常法により容易に
医薬、動物薬、検査薬、医薬部外品、化粧品、食品機能
性食品、飲料、飼料その他の主成分として或は一成分と
して配合することができる.
第1図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質をカ
スクロマトグラフィーにかけて得られる分子中における
脂肪酸の存在を示すピークを図示したチャートである。 第2図は、大腸iiftLPsをガスクロマトグラフィ
ーにかけて得られる、分子中における脂肪酸の存在を示
すピークを図示したチャートである.第3図は、百日咳
薗LPsをガスクロマトグラフィーにかけて得られる、
分子中における脂肪酸の存在を示すピークを図示したチ
ャートである.第4図は、静注した場合の、本発明のリ
ムラステスト陽性植物糖脂質の、内因性TNF産生促進
能を、対照及び従来の免疫機能活性化剤との対比で示す
グラフである. 第5図は、経口投与した場合の、本発明のリムラステス
ト陽性植物塘脂貢の、内因性TNF産生促進能を、対照
及び従来の免疫機能活性化剤との対比で示すグラフであ
る. 第6v4は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を
内因性TNF産生促進剤として使用する隙の産生促進作
用発現における用量依存性を示すグラフである. 第7図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を内
因性TNF産生促進剤として使用する隙の産生促進作用
発現における産生促進剤/産生剤投与閏隔依存性を示す
グラフである. 第8図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の内
因性TNF産生能を示すグラフである.第9図は、本発
明のリムラステスト陽性植物糖脂質の内因性TNF産生
能が、産生促進剤として各種TNFを使用すると飛躍的
に増大することを冫ドすグラフである. 第10図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖r′i
II(1)内因ffTNF産生能ヲ、大I1i1LPS
との比較で示すグラフである。 第11図は、第lO図に示された本発明のリムラステス
ト陽性植物糖脂質の内因性TNF産生能と、リムラステ
ストによる当該糖脂質の含量とを対数正規確率紙に示し
た図である. 第12図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖詣質の
、TNF産生局所誂導作用を示す図である. 第6図において、Oは内因性TNF産生剤(OK−43
2)の投与量がl.OKEの、●はそれが3.0KEの
場合のTNF活性を示す.18図において、○は内因性
TNF産生促進剤として生理的食塩水を、内因性TNF
産生剤として本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を
使った場合の、●は内因性TNF産生促進剤、内因性T
NF産生剤として本発明のリムラステスト陽性植物糖脂
質を使った場合の内因性TNF産生量を示す。左上のグ
ラフは血清の、右上のグラフは肝臓の、左下はひ臓の、
右下は肺のデータを示す.第10図において、Oは本発
明のリムラステスト陽性植物糖脂貿の、●は大腸菌LP
Sのデータを示す。▲は本発明のリムラステスト閘性植
物糖脂質及び大IIl菌LPSの、L929纏胞に対す
る直接毒性を示す(共に値は0である).第11図にお
いて、○はTNF活性を、●はリムラステスト陽性植物
糖NwLの含量を示す.第12図において、●は血清の
、▲は腫瘍繕織の、は肝臓の、ロは肺の、■はひ臓のデ
ータを示す.
スクロマトグラフィーにかけて得られる分子中における
脂肪酸の存在を示すピークを図示したチャートである。 第2図は、大腸iiftLPsをガスクロマトグラフィ
ーにかけて得られる、分子中における脂肪酸の存在を示
すピークを図示したチャートである.第3図は、百日咳
薗LPsをガスクロマトグラフィーにかけて得られる、
分子中における脂肪酸の存在を示すピークを図示したチ
ャートである.第4図は、静注した場合の、本発明のリ
ムラステスト陽性植物糖脂質の、内因性TNF産生促進
能を、対照及び従来の免疫機能活性化剤との対比で示す
グラフである. 第5図は、経口投与した場合の、本発明のリムラステス
ト陽性植物塘脂貢の、内因性TNF産生促進能を、対照
及び従来の免疫機能活性化剤との対比で示すグラフであ
る. 第6v4は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を
内因性TNF産生促進剤として使用する隙の産生促進作
用発現における用量依存性を示すグラフである. 第7図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を内
因性TNF産生促進剤として使用する隙の産生促進作用
発現における産生促進剤/産生剤投与閏隔依存性を示す
グラフである. 第8図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質の内
因性TNF産生能を示すグラフである.第9図は、本発
明のリムラステスト陽性植物糖脂質の内因性TNF産生
能が、産生促進剤として各種TNFを使用すると飛躍的
に増大することを冫ドすグラフである. 第10図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖r′i
II(1)内因ffTNF産生能ヲ、大I1i1LPS
との比較で示すグラフである。 第11図は、第lO図に示された本発明のリムラステス
ト陽性植物糖脂質の内因性TNF産生能と、リムラステ
ストによる当該糖脂質の含量とを対数正規確率紙に示し
た図である. 第12図は、本発明のリムラステスト陽性植物糖詣質の
、TNF産生局所誂導作用を示す図である. 第6図において、Oは内因性TNF産生剤(OK−43
2)の投与量がl.OKEの、●はそれが3.0KEの
場合のTNF活性を示す.18図において、○は内因性
TNF産生促進剤として生理的食塩水を、内因性TNF
産生剤として本発明のリムラステスト陽性植物糖脂質を
使った場合の、●は内因性TNF産生促進剤、内因性T
NF産生剤として本発明のリムラステスト陽性植物糖脂
質を使った場合の内因性TNF産生量を示す。左上のグ
ラフは血清の、右上のグラフは肝臓の、左下はひ臓の、
右下は肺のデータを示す.第10図において、Oは本発
明のリムラステスト陽性植物糖脂貿の、●は大腸菌LP
Sのデータを示す。▲は本発明のリムラステスト閘性植
物糖脂質及び大IIl菌LPSの、L929纏胞に対す
る直接毒性を示す(共に値は0である).第11図にお
いて、○はTNF活性を、●はリムラステスト陽性植物
糖NwLの含量を示す.第12図において、●は血清の
、▲は腫瘍繕織の、は肝臓の、ロは肺の、■はひ臓のデ
ータを示す.
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)次の物性を有するリムラステスト陽性植物糖脂質
。 分子量:8,000±1,000(SDS電気泳動法) リン数:1以上/分子 ヘキソサミン数:6±2/分子 脂肪酸数:6±2/分子 (2)植物が裸子植物、単子葉類、双子葉類、シダ植物
、ソウ類、菌類及びそれらの混合物からなる群から選択
されるものである、請求項1記載のリムラステスト陽性
植物糖脂質。 (3)単子葉類がイネ科植物である、請求項2記載のリ
ムラステスト陽性植物糖脂質。 (4)イネ科植物がイネである、請求項3記載のリムラ
ステスト陽性植物糖脂質。 (5)イネ科植物が麦である、請求項3記載のリムラス
テスト陽性植物糖脂質。 (6)麦が小麦、大麦、裸麦、からす麦、えん麦及びそ
れらの混合物からなる群から選択されるものである、請
求項5記載のリムラステスト陽性植物糖脂質。 (7)ソウ類がカッソウ類、紅ソウ類、緑ソウ類、ラン
ソウ類及びそれらの混合物からなる群から選択されるも
のである、請求項2記載のリムラステスト陽性植物糖脂
質。 (8)緑ソウ類がクロレラである、請求項7記載のリム
ラステスト陽性植物糖脂質。 (9)菌類が担子菌類、子ノウ菌類及びそれらの混合物
からなる群から選択されるものである、請求項2記載の
リムラステスト陽性植物糖脂質。 (10)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む免疫機能活性化剤。 (11)免疫機能が骨形成促進能である、請求項10記
載の免疫機能活性化剤。 (12)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む動物用免疫機能活性化剤。 (13)免疫機能が骨形成促進能である、請求項12記
載の動物用免疫機能活性化剤。 (14)免疫機能が産卵促進能である、請求項12記載
の動物用免疫機能活性化剤。 (15)免疫機能が卵殻強度増強能である、請求項12
記載の動物用免疫機能活性化剤。(16)請求項1記載
のリムラステスト陽性植物糖脂質の少なくとも1種を含
む免疫機能検査薬。 (17)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む動物用免疫機能検査薬。 (18)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む医薬部外品。 (19)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む化粧品。(20)請求項1記載
のリムラステスト陽性植物糖脂質の少なくとも1種を含
む食品。 (21)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む機能性食品。 (22)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む飲料。 (23)請求項1記載のリムラステスト陽性植物糖脂質
の少なくとも1種を含む飼料。
Applications Claiming Priority (3)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2573989 | 1989-02-06 | ||
JP1-25739 | 1989-02-06 | ||
JP1-255210 | 1989-10-02 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03218466A true JPH03218466A (ja) | 1991-09-26 |
Family
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Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2025192A Pending JPH03218466A (ja) | 1989-02-06 | 1990-02-06 | リムラステスト陽性植物糖脂質、それらを含む免疫機能活性化剤、動物用免疫機能活性化剤、免疫機能検査薬、動物用免疫機能検査薬、医薬部外品、化粧品、食品、機能性食品、飲料、飼料 |
Country Status (1)
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---|---|
JP (1) | JPH03218466A (ja) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JP2000026228A (ja) * | 1998-07-10 | 2000-01-25 | Nippon Flour Mills Co Ltd | コラゲナーゼ抑制剤、保湿剤並びにそれらを含む化粧料及び食品 |
WO2008018133A1 (fr) * | 2006-08-10 | 2008-02-14 | Noevir Co., Ltd. | Agent hydratant, agent d'activation cellulaire, agent décolorant pour la peau, agent suppresseur de l'accumulation de triglycérides, antioxydant et préparation externe pour la peau |
JP2009046420A (ja) * | 2007-08-20 | 2009-03-05 | Maruzen Pharmaceut Co Ltd | 免疫賦活剤及びそれを含有する飲食品 |
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US8075928B2 (en) | 2003-09-26 | 2011-12-13 | Gen-Ichiro Soma | Method for fermentation and cultivation, fermented plant extract, fermented plant extract powder, and composition containing the extract of fermented plant |
-
1990
- 1990-02-06 JP JP2025192A patent/JPH03218466A/ja active Pending
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