JPH03210197A - 蛍光標識dnaの調製方法及びキット - Google Patents
蛍光標識dnaの調製方法及びキットInfo
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- JPH03210197A JPH03210197A JP343790A JP343790A JPH03210197A JP H03210197 A JPH03210197 A JP H03210197A JP 343790 A JP343790 A JP 343790A JP 343790 A JP343790 A JP 343790A JP H03210197 A JPH03210197 A JP H03210197A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
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Description
【発明の詳細な説明】
〔産業上の利用分野〕
本発明は、蛍光標識されたDNAの調製方法及びそのキ
ットに関する。
ットに関する。
従来、目的とするDNA断片を多量に獲得するためには
、組換えDNAを取込ませた宿主細胞を増殖させること
によって、組換えDNAを多量に生成させる手法が用い
られていた。
、組換えDNAを取込ませた宿主細胞を増殖させること
によって、組換えDNAを多量に生成させる手法が用い
られていた。
ところが、近年、サイキ(Saiki)らが開発したP
CR(ポリメラーゼ チェーン リアクション)法によ
り、微量の細胞DNAから目的とするDNA領域だけを
2〜3時間の自動処理で約100万倍に増幅することが
可能となった〔サイエンス(Science)第239
巻、第487〜491頁(1988)]。
CR(ポリメラーゼ チェーン リアクション)法によ
り、微量の細胞DNAから目的とするDNA領域だけを
2〜3時間の自動処理で約100万倍に増幅することが
可能となった〔サイエンス(Science)第239
巻、第487〜491頁(1988)]。
PCR法は、増幅させるDNA領域を挟んでプラス鎮、
マイナス鎖に対するDNAブライマー(20〜30ヌク
レオチド)を合成し、熱変性による一重鎖DNAとのア
ニーリングの後、DNAポリメラーゼ(例えば耐熱性タ
ックポリメラーゼ)によるDNA相補相補台成を繰返し
行うことで、1サイクルごとにDNAは2倍に増幅され
、nサイクル後には2°倍に増幅される。
マイナス鎖に対するDNAブライマー(20〜30ヌク
レオチド)を合成し、熱変性による一重鎖DNAとのア
ニーリングの後、DNAポリメラーゼ(例えば耐熱性タ
ックポリメラーゼ)によるDNA相補相補台成を繰返し
行うことで、1サイクルごとにDNAは2倍に増幅され
、nサイクル後には2°倍に増幅される。
これを用いて増幅させたDNA領域内の塩基配列や塩基
変異は、次に、特異的な合成オリゴヌクレオチドを標識
し、これをプローブとじて用いて同定できる。なお、D
NAの標識法としては高感度を必要とするため放射性同
位元素を用いた標識法が一般的である。
変異は、次に、特異的な合成オリゴヌクレオチドを標識
し、これをプローブとじて用いて同定できる。なお、D
NAの標識法としては高感度を必要とするため放射性同
位元素を用いた標識法が一般的である。
このように、PCR法は、極微量の試料より特定のDN
Aを検出する方法として、近年、脚光を浴びている。
Aを検出する方法として、近年、脚光を浴びている。
プローブとして合成オリゴヌクレオチドを放射性同位元
素で標識した場合、高感度である反面、安全性、安定性
、設備をはじめ、使用後の廃棄処理の問題等に制約があ
るため、最近は放射性物質の代りに非放射性標識が注目
されるようになっている。
素で標識した場合、高感度である反面、安全性、安定性
、設備をはじめ、使用後の廃棄処理の問題等に制約があ
るため、最近は放射性物質の代りに非放射性標識が注目
されるようになっている。
そこで非放射性物質でプライマーを標識する方法も開発
されたが(特開平1−252300号) この場合用い
るプライマーごとに標識化されたものを合成する必要が
ある。また、基質として用いるヌクレオチドにアミノヘ
キシル基を使用し、そのヌクレオチドを増幅されたDN
Aに取込ませた後、アミノヘキシル基を標識してDNA
への標識化を達成する方法もあるが〔アナリティカル・
バイオケミストリー(Analyt−ical Bio
chemistry)、第157巻、第199〜207
頁(1986)]、この場場合幅されたDNAを標識化
するという操作が煩雑である。
されたが(特開平1−252300号) この場合用い
るプライマーごとに標識化されたものを合成する必要が
ある。また、基質として用いるヌクレオチドにアミノヘ
キシル基を使用し、そのヌクレオチドを増幅されたDN
Aに取込ませた後、アミノヘキシル基を標識してDNA
への標識化を達成する方法もあるが〔アナリティカル・
バイオケミストリー(Analyt−ical Bio
chemistry)、第157巻、第199〜207
頁(1986)]、この場場合幅されたDNAを標識化
するという操作が煩雑である。
本発明の目的は、上記のような問題点のないDNAの調
製方法及びそのキットを提供することにある。
製方法及びそのキットを提供することにある。
本発明を概説すれば、本発明の第1の発明は、増幅によ
るDNAの調製において、基質として用いるヌクレオチ
ドに蛍光標識されたヌクレオチドを含むことを特徴とす
る蛍光標識DNAの調製方法に関する。また、本発明の
第2の発明は、蛍光標識された基質ヌクレオチドとそれ
以外の基質ヌクレオチドを含有することを特徴とする蛍
光標識DNA調製用キットに関する。
るDNAの調製において、基質として用いるヌクレオチ
ドに蛍光標識されたヌクレオチドを含むことを特徴とす
る蛍光標識DNAの調製方法に関する。また、本発明の
第2の発明は、蛍光標識された基質ヌクレオチドとそれ
以外の基質ヌクレオチドを含有することを特徴とする蛍
光標識DNA調製用キットに関する。
本発明者らは、このため鋭意研究の結果、放射性同位元
素を必要としないDNAの標識方法を見出し、本発明を
完成させた。
素を必要としないDNAの標識方法を見出し、本発明を
完成させた。
DNAを増幅させる方法としては、PCR法が簡便であ
るので、以下、PCR法を例にとって本発明を説明する
が、本発明はPCR法に限定されるものではなく、DN
A増幅に用いられる方法であれば、何でも利用できる。
るので、以下、PCR法を例にとって本発明を説明する
が、本発明はPCR法に限定されるものではなく、DN
A増幅に用いられる方法であれば、何でも利用できる。
PCR法において、4種の基質ヌクレオチド、dATP
SdCTP、dGTPSTTPのうち、一種の基質につ
いて、蛍光標識されたヌクレオチド(好ましくは7〜7
5%)に置換し、他はタックポリメラーゼを含む遺伝子
増幅キット及び宝酒造■から市販されている自動遺伝子
増幅装置サーマル・サイクラ−を用い、特定のDNA領
域の増幅反応を行う。本発明では、PCR法でのプライ
マーから相補的なりNA鎮を合成する際に蛍光標識され
たヌクレオチドを取込ませることによって標識するので
、新規に5′末端蛍光標識されたプライマーを合成し、
使用することなく、蛍光標識DNAを調製できる。
SdCTP、dGTPSTTPのうち、一種の基質につ
いて、蛍光標識されたヌクレオチド(好ましくは7〜7
5%)に置換し、他はタックポリメラーゼを含む遺伝子
増幅キット及び宝酒造■から市販されている自動遺伝子
増幅装置サーマル・サイクラ−を用い、特定のDNA領
域の増幅反応を行う。本発明では、PCR法でのプライ
マーから相補的なりNA鎮を合成する際に蛍光標識され
たヌクレオチドを取込ませることによって標識するので
、新規に5′末端蛍光標識されたプライマーを合成し、
使用することなく、蛍光標識DNAを調製できる。
また、ビオチン−アビジン系での標識のように抗体を介
する検出方法ではなく、対象とするDNAを直接的に検
出し得るものである。
する検出方法ではなく、対象とするDNAを直接的に検
出し得るものである。
一般に増幅されたDNA断片の分析においては、電気泳
動法によるパターン解析又はサザンブロッティングある
いはドツトブロッティング法でフィルターやメンブレン
に固定して標識されたプローブでの検出を行うが、本発
明では増幅された断片が既に蛍光標識されていることか
ら、試料DNAを固定するのではなくプローブの側を何
らかの固相担体に固定してハイブリダイゼーションを行
い、洗浄後その蛍光を測定して対象とするDNAを直接
検出し得るものである。固相担体としては例えばEIA
用マルチプレート、各種ビーズ、フィルター、ガラスプ
レート、サンプルチューブ、バイアル等がある。
動法によるパターン解析又はサザンブロッティングある
いはドツトブロッティング法でフィルターやメンブレン
に固定して標識されたプローブでの検出を行うが、本発
明では増幅された断片が既に蛍光標識されていることか
ら、試料DNAを固定するのではなくプローブの側を何
らかの固相担体に固定してハイブリダイゼーションを行
い、洗浄後その蛍光を測定して対象とするDNAを直接
検出し得るものである。固相担体としては例えばEIA
用マルチプレート、各種ビーズ、フィルター、ガラスプ
レート、サンプルチューブ、バイアル等がある。
固定化は適当なスペーサーを介した共有結合によるほか
、5′末端ビオチン化プローブとアビジン化固相担体と
の結合によっても調製できる。
、5′末端ビオチン化プローブとアビジン化固相担体と
の結合によっても調製できる。
本発明方法によれば試料DNAの固定化を省略できるだ
けでなく、プローブを固定することで洗浄後の回収が容
易となり、検出の簡略化、多数試料の一斉処理が可能と
なる。
けでなく、プローブを固定することで洗浄後の回収が容
易となり、検出の簡略化、多数試料の一斉処理が可能と
なる。
以下、本発明を実施例をもって更に具体的に説明するが
、本発明はこれら実施例に限定されない。
、本発明はこれら実施例に限定されない。
実施例1 フルオレセイン標識dUTPの合成ヌクレイ
ツク・アシッズ・リサーチ(NucleicAcids
Re5earch)第15巻、第4857〜4876
頁(1987)を改変した方法に従い、5ヨードデオキ
シウリジン(IdU: [11)より5−(アミノプ
ロプ−1−イニル)−デオキシウリジンの保護誘導体〔
2〕を合成した。
ツク・アシッズ・リサーチ(NucleicAcids
Re5earch)第15巻、第4857〜4876
頁(1987)を改変した方法に従い、5ヨードデオキ
シウリジン(IdU: [11)より5−(アミノプ
ロプ−1−イニル)−デオキシウリジンの保護誘導体〔
2〕を合成した。
次に、3’ −,5’−水酸基保護基を脱保護し〔3〕
、オキシ塩化リンとの反応によりモノリン酸誘導体〔4
〕を合成後、これをN、N’−カルボニルジイミダゾー
ル(CDI)にて活性化し、ピロリン酸と反応させ、ト
リリン酸誘導体〔5〕を合成した。最後に、アミノ基保
護基の脱保護後、アミノ基と容易に反応する蛍光化合物
フルオレセインイソチオシアネート (FITC)を添
加し、フルオレセイン標識dUTP (FTC−AP−
dUTP : [6] )を得た。
、オキシ塩化リンとの反応によりモノリン酸誘導体〔4
〕を合成後、これをN、N’−カルボニルジイミダゾー
ル(CDI)にて活性化し、ピロリン酸と反応させ、ト
リリン酸誘導体〔5〕を合成した。最後に、アミノ基保
護基の脱保護後、アミノ基と容易に反応する蛍光化合物
フルオレセインイソチオシアネート (FITC)を添
加し、フルオレセイン標識dUTP (FTC−AP−
dUTP : [6] )を得た。
上記の反応工程の一例を第1図に工程図として示す。第
1図において、Tolはトルオイル基、Tfa基はトリ
フルオロアセチル基を示す。
1図において、Tolはトルオイル基、Tfa基はトリ
フルオロアセチル基を示す。
実施例2
PCR法による蛍光標識DNAの調製
(2−1) 蛍光標識ヌクレオチド存在下におけるP
CR増幅 1100nのヒト胎盤由来DNA (クローンチック社
)を0.5−用チューブ(バイオビック社)に採り、9
5℃で10分間加熱処理した後、シーンアンプTMキッ
ト (Gene Amp TM Kit) [宝酒造■
]中の10μlの10倍濃度増幅用バッファー[100
mM)リス−HCl 、pH8,3,500mM KC
I、15mM MgCl2.0.1% (w/v)ゼラ
チン〕、16μlの第1表記載の蛍光標識ヌクレオチド
入りdNTP混合液、1μlの100μMc −Ki−
ras / 61フオワード プライマー1μAの10
0 μM c −Ki−ras / 61リバースブラ
イマー(共に宝酒造)、0.5μlの2.5ユニツト/
μlタツクポリメラーゼを加え、更に滅菌水を加えて、
100μlの溶液にした。
CR増幅 1100nのヒト胎盤由来DNA (クローンチック社
)を0.5−用チューブ(バイオビック社)に採り、9
5℃で10分間加熱処理した後、シーンアンプTMキッ
ト (Gene Amp TM Kit) [宝酒造■
]中の10μlの10倍濃度増幅用バッファー[100
mM)リス−HCl 、pH8,3,500mM KC
I、15mM MgCl2.0.1% (w/v)ゼラ
チン〕、16μlの第1表記載の蛍光標識ヌクレオチド
入りdNTP混合液、1μlの100μMc −Ki−
ras / 61フオワード プライマー1μAの10
0 μM c −Ki−ras / 61リバースブラ
イマー(共に宝酒造)、0.5μlの2.5ユニツト/
μlタツクポリメラーゼを加え、更に滅菌水を加えて、
100μlの溶液にした。
この反応液に100μlのミネラルオイル(シグマ社)
を重層した後、自動遺伝子増幅装置サーマル・サイクラ
−〔宝酒造■〕により増幅反応を行った。反応条件は、
94℃で1分間(変性)→55℃で2分間(プライマー
のアニーリング)→72℃で1分間(合成反応)のサイ
クルを、40サイクル行った。
を重層した後、自動遺伝子増幅装置サーマル・サイクラ
−〔宝酒造■〕により増幅反応を行った。反応条件は、
94℃で1分間(変性)→55℃で2分間(プライマー
のアニーリング)→72℃で1分間(合成反応)のサイ
クルを、40サイクル行った。
反応後、上層のミネラルオイルを除去した後、反応液の
10μlを採り、3%ヌッシーブ(Nu−ssieve
) G T Gアガロース・1%シーケム(SeaKe
m)アガロース(FMC社)ゲル電気泳動を行い、エチ
ジウム ブロマイドでDNAを染色し、増幅されたDN
Aを解析した。その結果、128bpの単一バンドを確
認した。
10μlを採り、3%ヌッシーブ(Nu−ssieve
) G T Gアガロース・1%シーケム(SeaKe
m)アガロース(FMC社)ゲル電気泳動を行い、エチ
ジウム ブロマイドでDNAを染色し、増幅されたDN
Aを解析した。その結果、128bpの単一バンドを確
認した。
第1表
蛍光標識ヌクレオチド入りdNT
P混合液の組成
1.25mM d A T Pl、25m
M d G T Pl、25mM
d CT Po、625mM T
T P(2−2) 増幅DNAの蛍光強度検出TTP
について、20〜40%をFTC−AP−dUTPに置
換して反応を行った。各反応液90μlに、9μlの3
M酢酸ナトリウム、pH5,2を加え、更に、200μ
lの冷エタノール、−20℃を加えて混和した後、1時
間以上−20℃で静置する。4℃で12゜000g、5
分間遠心し、沈殿を乾燥させた後、滅菌水50μlに溶
解し、試料溶液とする。
M d G T Pl、25mM
d CT Po、625mM T
T P(2−2) 増幅DNAの蛍光強度検出TTP
について、20〜40%をFTC−AP−dUTPに置
換して反応を行った。各反応液90μlに、9μlの3
M酢酸ナトリウム、pH5,2を加え、更に、200μ
lの冷エタノール、−20℃を加えて混和した後、1時
間以上−20℃で静置する。4℃で12゜000g、5
分間遠心し、沈殿を乾燥させた後、滅菌水50μlに溶
解し、試料溶液とする。
1μlの試料溶液を自動塩基配列決定装置(日立電子工
業社・)により解析した。泳動度として128bpに相
当する位置に蛍光強度の存在を示すピークを確認した(
第2図)。なお、フルオレセイン標識dUTPを含まな
い場合では全く蛍光強度は認められなかった。
業社・)により解析した。泳動度として128bpに相
当する位置に蛍光強度の存在を示すピークを確認した(
第2図)。なお、フルオレセイン標識dUTPを含まな
い場合では全く蛍光強度は認められなかった。
第2図において、レーン1は分子量マーカーとして用い
たM13mp18の塩基配列ピークを示し、レーン2は
、FTC−AP−dUTP標識増幅DNAを示す。そし
て横軸は泳動時間を示し、縦軸は蛍光の相対強度を示す
。
たM13mp18の塩基配列ピークを示し、レーン2は
、FTC−AP−dUTP標識増幅DNAを示す。そし
て横軸は泳動時間を示し、縦軸は蛍光の相対強度を示す
。
実施例3 固定化プローブによる増幅DNA領域内の塩
基変異の検出 (3’=1) 蛍光用96穴マルチプレートのアミノ
プロピル化 46μlの3−アミノプロピルトリエトキシシランを5
m1l!の無水エタノールに溶解し、各ウェルに200
μβずつ分注、シールして室温で一晩緩やかに振とうし
た。溶媒をピペッティングで除去した後、水洗3回メタ
ノール洗浄1回を行い、50℃以下で乾燥させた。
基変異の検出 (3’=1) 蛍光用96穴マルチプレートのアミノ
プロピル化 46μlの3−アミノプロピルトリエトキシシランを5
m1l!の無水エタノールに溶解し、各ウェルに200
μβずつ分注、シールして室温で一晩緩やかに振とうし
た。溶媒をピペッティングで除去した後、水洗3回メタ
ノール洗浄1回を行い、50℃以下で乾燥させた。
(3−2) アミノプロピル化プレートへのプローブ
固定 0.1 M NaHCO,,2mM E D T
A溶液400μlにジスクシンイミジルスベレー) 2
1 mgのジメチルホルムアミド溶液1−を混和し、各
ウェルに100μβずつ分注後遮光し室温で10分間静
置した。溶液をピペッティングで除去し、水洗を3回行
った後、5′末端にアミノスペーサーを付加したプロー
ブ〔宝酒造■製、点突然変異ras遺伝子検出用オンコ
ジーン プローブ(Oncogene Probe)
c −Ki■ras/61G1ySSer、Valの3
タイプ〕各25μgを0.1 M NaH[’0..
2mMEDTA溶液300μlに溶解し、ウェル当り5
0μlを分注、シールして室温で一晩緩やかに振とうし
た。溶液をピペッティングで除去した後水洗を3回行い
風乾した。
固定 0.1 M NaHCO,,2mM E D T
A溶液400μlにジスクシンイミジルスベレー) 2
1 mgのジメチルホルムアミド溶液1−を混和し、各
ウェルに100μβずつ分注後遮光し室温で10分間静
置した。溶液をピペッティングで除去し、水洗を3回行
った後、5′末端にアミノスペーサーを付加したプロー
ブ〔宝酒造■製、点突然変異ras遺伝子検出用オンコ
ジーン プローブ(Oncogene Probe)
c −Ki■ras/61G1ySSer、Valの3
タイプ〕各25μgを0.1 M NaH[’0..
2mMEDTA溶液300μlに溶解し、ウェル当り5
0μlを分注、シールして室温で一晩緩やかに振とうし
た。溶液をピペッティングで除去した後水洗を3回行い
風乾した。
(3−3) 試料DNAのハイブリダイゼーション及
び検出 ウェル当り10 mM pH7,4のリン酸バッファー
(PBS)に5%SDSを加えたもの300μlを添加
し、37℃で3時間緩やかに振とう (プレハイブリダ
イゼーション)、溶液を除去した後、(2−2)と同様
にエタノール沈殿、乾燥させたPCR反応物をプレハイ
ブリダイゼーション溶液300μlに溶解し、95℃で
10分間熱変性したものをそのまま各プローブを固定し
たウェル中に100μβずつ分注した。
び検出 ウェル当り10 mM pH7,4のリン酸バッファー
(PBS)に5%SDSを加えたもの300μlを添加
し、37℃で3時間緩やかに振とう (プレハイブリダ
イゼーション)、溶液を除去した後、(2−2)と同様
にエタノール沈殿、乾燥させたPCR反応物をプレハイ
ブリダイゼーション溶液300μlに溶解し、95℃で
10分間熱変性したものをそのまま各プローブを固定し
たウェル中に100μβずつ分注した。
37℃で一晩緩やかに振とうした後溶液を除去し、0.
5%SDSを加えたPBSで洗浄(37℃ 15分間
5回)、次いでPBS洗浄を行い、最後にウェル当りP
BS 100μlを添加してフルオロスキャン■(タイ
ターチック社製)で蛍光強度を測定した(励起485n
m、測定538 nm)。
5%SDSを加えたPBSで洗浄(37℃ 15分間
5回)、次いでPBS洗浄を行い、最後にウェル当りP
BS 100μlを添加してフルオロスキャン■(タイ
ターチック社製)で蛍光強度を測定した(励起485n
m、測定538 nm)。
予想されるに61 c1yタイプの位置にSer、V
alタイプとは明らかに有意差のある蛍光強度が確認さ
れた。
alタイプとは明らかに有意差のある蛍光強度が確認さ
れた。
以上詳細に説明したように、本発明により増幅方法、特
にPCR法において、蛍光基質を用いることにより直接
蛍光標識でき、更に、試料DNAの方を蛍光標識するこ
とにより、試料のDNAフィルターの作製をせずにハイ
ブリダイゼーションを行うことができ、検出の簡略化を
提供することができた。
にPCR法において、蛍光基質を用いることにより直接
蛍光標識でき、更に、試料DNAの方を蛍光標識するこ
とにより、試料のDNAフィルターの作製をせずにハイ
ブリダイゼーションを行うことができ、検出の簡略化を
提供することができた。
第1図は、フルオレセイン標識dUTPの合成の一例を
示す工程図、第2図は、FTCAP−dUTPi識り、
た増幅DNA(7)蛍光強度検出を示す図である。
示す工程図、第2図は、FTCAP−dUTPi識り、
た増幅DNA(7)蛍光強度検出を示す図である。
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 1、増幅によるDNAの調製において、基質として用い
るヌクレオチドに蛍光標識さたヌクレオチドを含むこと
を特徴とする蛍光標識DNAの調製方法。 2、少なくとも下記a及びbを含有することを特徴とす
る蛍光標識DNA調製用キット。a、蛍光標識された基
質ヌクレオチド b、上記a以外の基質ヌクレオチド
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2003437A JP3001919B2 (ja) | 1990-01-12 | 1990-01-12 | 蛍光標識dnaの調製方法及びキット |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP2003437A JP3001919B2 (ja) | 1990-01-12 | 1990-01-12 | 蛍光標識dnaの調製方法及びキット |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH03210197A true JPH03210197A (ja) | 1991-09-13 |
JP3001919B2 JP3001919B2 (ja) | 2000-01-24 |
Family
ID=11557336
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP2003437A Expired - Fee Related JP3001919B2 (ja) | 1990-01-12 | 1990-01-12 | 蛍光標識dnaの調製方法及びキット |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JP3001919B2 (ja) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH05192199A (ja) * | 1991-09-23 | 1993-08-03 | Pfizer Inc | 細胞中の特異的mRNAおよびDNAの検出法 |
WO2000014102A1 (fr) * | 1998-09-09 | 2000-03-16 | Japan Science And Technology Corporation | Phosphoramidites et nucleosides photosensibles |
EP1548132A1 (en) * | 2003-12-25 | 2005-06-29 | Canon Kabushiki Kaisha | Nucleic acid labeling method by PCR |
-
1990
- 1990-01-12 JP JP2003437A patent/JP3001919B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPH05192199A (ja) * | 1991-09-23 | 1993-08-03 | Pfizer Inc | 細胞中の特異的mRNAおよびDNAの検出法 |
WO2000014102A1 (fr) * | 1998-09-09 | 2000-03-16 | Japan Science And Technology Corporation | Phosphoramidites et nucleosides photosensibles |
EP1548132A1 (en) * | 2003-12-25 | 2005-06-29 | Canon Kabushiki Kaisha | Nucleic acid labeling method by PCR |
JP2005185183A (ja) * | 2003-12-25 | 2005-07-14 | Canon Inc | 核酸標識方法及び液組成物 |
US7534566B2 (en) | 2003-12-25 | 2009-05-19 | Canon Kabushiki Kaisha | Nucleic acid labeling method and liquid composition |
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---|---|
JP3001919B2 (ja) | 2000-01-24 |
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