JPH02504224A - M‐13フアージーdnaを精製する方法および装置 - Google Patents

M‐13フアージーdnaを精製する方法および装置

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JPH02504224A JP50619488A JP50619488A JPH02504224A JP H02504224 A JPH02504224 A JP H02504224A JP 50619488 A JP50619488 A JP 50619488A JP 50619488 A JP50619488 A JP 50619488A JP H02504224 A JPH02504224 A JP H02504224A
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クリステンセン,トム
フオス,ハルトムート
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シユヴアガー,クリスチアン
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オイロペイシエス ラボラトリウム フユア モレクラールビオロギー (エー エム ベー エル)
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    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor
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Abstract

(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるため要約のデータは記録されません。

Description

【発明の詳細な説明】 M−137フージーDNAを精製する方法および装置サンガー(Sanger)  C″’Proc、 Natl、 Acad、 Sci、” 米国、第74巻、 第54頁〜第63頁(1977年)ンによる配列決定の場合には、DNA中に出 現する4つのるDNAストランド中に実際に組込まれるが、それに続くデオキシ ヌクレオチドリン酸によシホスホジエステル架橋を形成する力がないので鎖はも はや成長しない。
配列決定のため分析すべきDNAストランドを、分析すべきストランドの一端に 相補的でちる標識したDNAの短かいフラグメント(プライマー)、ジデオキシ ヌクレオチド玉リン酸および6つの他の正電三リン酸塩と、DNAポリメラーゼ の存在で反応させると、プライマーから出発して測定すべきDNAに対する相補 的ストランドが合成され、その鎖はジデオキシ化合物が組込まれる個所で切れる 。こうして4つのジデオキシヌクレオチド三す/酸のそれぞれ1つを有する4つ の付加物で一連の標識されたストランドが得られ、該ストランドは大きさによシ rルクロマトグラフイーによって分離し、その標識によシ可視的にされる。次に 、こうして得られた型から容易にDNAの配列が測定される。
2゜方法の重大な欠点は、プライマーを構成しうるようにするために、差歯シ分 析すべきDNAストランドの末端72グメ/トの配列を決定しなければならない ことである。もう1つの欠点は、配列決定すべきDNAの十分な量を利用するこ とが通常非常に困難であることである。
この難点は、M137アージ鋳型法(J、 ”MethodsEnzymo1″ 、第101巻、第20頁〜第78頁(1983年〕)を用いると大体において避 けられる。この方法では、M13ファージの2重鎖プラスミドが配列決定すべ@  DNAのクローニングのためのベクターとして使用され、シラスミドが特定個 所で相応する制限エンドヌクレアーゼによシ切断され、切断部に公知方法で配列 決定すべきDNAが挿入され、こうして得られたベクターが%B・コリ(E、  Co11)にクローン化される。その際形成するE、コリM13ファージが直接 に培地中へ分離され、DNAとして、配列決定すべきDNAが存在する1本鎖の 組換えられた環状M 13 DNA (M 13−5sDNA )を含有する。
このDNAが挿入されて存在する切断個所に隣接するファージDNAの配列は公 知でちるので、プライマーとして常にこの公知配列に相補的な配列を使用するこ とができ、どの配列決定すべきDNAがプラスミド中へ挿入されたかは重要では ない。従って、唯1つのプライマー配列を用いて大多数のDNAストランドを配 列決定することができる。
しかしこれの前提条件は、E+コリから分離されたファージから、それに含まれ ているDNAがそれを取シ囲むタンパク質不含で得られることである。従来この 精製は、ポリエチレングリコールで沈殿させ、次いでフェノールおよびクロロホ ルムで抽出することによって除タンパクし、最後にフェノール沈殿によってDN Aを濃縮することによって行なわれた(M 13 C1口pine/ Diae o:cy  Sequencing  rnstru2tion  uanua l +v。
Betheda Re5earch Laboratories 1986年) 0この精製法は、該方法が極めて緩慢に進行し、オートメーション化できないと いう欠点を有する。
従って、本発明の課題は、この精製法を改善して、これらの欠点が除去され、方 法が著しく促進され、簡略化されるだけでなく、オートメーション化できるよう にすることである。
この!!題は本発明によシ最初に記載した種類の方法において、E、コリ細胞を 成長培地から酢酸でM13ファージを沈殿させ、こうして得られた懸濁液をガラ ス繊維フィルターを通して濾過し、ガラス繊維フィルターをカオトロピツクイオ ンの溶液で処理することによって解決される。
本発明方法を実施するためには、E、コリ細菌を成長培地から遠心分離し、得ら れる上澄みに酢酸を加える。
使用される酢酸量は広い範囲で変えることができ、1%〜iosの最終濃度が精 製DNAの実際に同じ収率を生じた。ポリエチレングリコールの代シに酢酸を用 いる沈殿の特別な利点は、DNAが高い収率で実際に遅滞なしに、つtシ酢酸の 添加後直ちに懸濁液を濾過することによって得られることである。従って、約0 .5〜30分の作用時間を使用することができ、その際作用時間の増加につれて 収率は僅かに増加する。常温で一般に1〜5分、とくに約2分の短かい、作用時 間後、ガラス繊維フィルターを通して濾過する、有利には液体を吸引濾過するこ とができる。
次の工程で、DNAをガラス繊維フィルター中のガラスに結合させる。原則とし てこの工程には、7アーゾDNAから7フージタンパク質の解離を惹起しうる強 カオトロピンクイオンが適当でおる。最良の結果はNaCjO4溶液を用いて得 られ、その際とくに3〜i o y/i 、殊に望ましくは4〜8 M/l!の 濃度が使用される。良好表結果は、カオトロピック剤として塩酸グアニジニウム を使用しても得られる。
カオトロぎツクイオンの溶液での処理は、簡単にフィルター上に滴加し、吸引濾 過することによって行なうことができる。
望ましい実施形では、ガラス繊維フィルターを過塩素酸塩溶液(fJ(6,5〜 8.5、殊にpH7〜8〕で処理する。これは有利には滴加し、吸引濾過するこ とによって行なわれる。殊に望ましくは、このために、4〜8M/lのNaCf 04.5〜20 dlのトリスニ(−7〜8)および0.5〜2−lのEDTA を含有する溶液が使用される。
カオトロピック溶液、殊に過塩素酸ナトリウム溶液を除去した後、とくに含水エ タノール、有利には60〜80%のエタノールで後洗浄される。次いで、フィル ターを乾燥した後、溶離を常法で、たとえば”Anal。
Biochem、”、第101巻、第369頁〜第341頁(1980年)に記 載されているように、合意塩水溶液を用いて行なう。望ましい溶離剤は、0.0 5〜0.2mM1lのEDTA (以下TEと呼称ンを含有する、0.5〜22 :IルqのトリスHC2(…7〜8)である。7.6〜7.6のβ値がとくに望 ましい。
他の適当な溶離剤はたとえば0.1%のSDSのような希洗剤溶液であるが、こ れよシ少量も望ましい。
本発明のもう1つの対象は、濾過および溶離ユニットの形の、本発明方法をオー トマチックに実施する装置に関する。該装置は、下方の板2および上方の板3で 覆われ、その間にガラス繊維フィルター4が存在する真空室1を特依とする。板 2および3は、ガラス繊維フィルター4によって分けられる、互いに整列する多 数の孔を有する。板2>よび3はそれぞれ、それ自体が2つの絶縁プラスチック 板(2ay  2b;3at3b)の間に導電性金属板(2c、3c)が配置さ れているサンドイッチ構造からなる。金属板(2c、 3c)は、とくに不銹鋼 からなる。合板2および3中の2つの金属板(2c、3c)は、双方の板の間に 電気泳動を実施するのに適当な電圧を印加することのできる電圧源と結合するた めの手段を有する。真空室1と複合室蓋板との間に、たとえばデムまたはグリー スからなるパツキンが配置されていてもよい。
溶離は微量滴定遠心分離機を用いて行なうこともでき、この場合板2および3と フィルター4からなる全複合体を遠心機中へ入れることができる。この場合、金 属板2c、3cを電圧源と結合する手段は不要である。
本発明方法は、とくにDNA配列決定の範囲内で使用される。しかし、部位特異 的変異誘発(KramerによるDNAの目的とする突然変異誘発、” NuC j、Ac1ds Res、、”第12巻、第9441頁(1984年))におい て必要とされるような、迅速かつ確実な、M 135sDNAの製造方法として 使用することもできる。
次側において、本発明を添付図百につき詳述する。
図面において、 第1図は、1aがDNA収率と酢酸濃度(容量%)との関係を示し、1bがDN A収率と、酢酸添加と21!過の間の時間との関係を示し、1CがDNA収率と 使用した過塩素酸ナトリクム濃度との関係を示す曲線図を表わす。
菓2図は、真空ポンプ(図示せず)への接続部を有し、下方のプラスチック/金 R/プラスチックサンドインチ板2および上方のプラスチック/金属/プラスチ ックサンドインチ板(その間にガラス線維フィルター4が挿入されている)で覆 われている真空室1を有する、本発明による濾過および溶離ユニットの斜視図を 示す。上方および下方のサンドイツチ板は、互いに整列され、上方の板3におい ては漏斗状に構成され、下方の板2においては円筒形に構成されている1連の孔 を有する。
第3図はこれら板構造体の断面図を示す。
第4図は、上方および下方のサンドインチ板および挿入されたガラス繊維フリー スの断面図を、部分的拡大図として示す。絶縁プラスチック板2aおよび2bな いしは3aおよび3bの間には、それぞれ相応する導電性金属板2cなりしは3 cが配置されておシ、これらは板2Cが陽極として働き、板3Cが陰極として働 くように電気的に接続することができる。
図示の実施形は96個の孔を有し、従って96個の種々のM13鋳型を同時に精 製できる。
例  1 800個の塩基長のプロティンキナーゼcDNAインサートを含有する、” P rot、 Natl、 Acad、 Sci、”米国、第83巻、第1300頁 〜第1304頁(1986年)に記載されるM 13mp i 8組換え7アー ゾを使用した。この組換えファージは、pUC8ベクターからのインサートを2 本鎖複製形のM13mp18ファージ中へ挿入し、それとともに適格なTM10 3E、コリ細胞をトランス化(Transfizieren)することによって 得られる。澄明なプラークを取出し、2mlの成長培地中で6時間成長させた。
次いで、細菌を遠心分離した。
こうして得られたファージ懸濁液11nlを1.5ゴの遠心分離小管に入れ、氷 酢酸10μtを加え、小管を密閉し、1回回転させた。室温で2分後に懸濁液を 、7nの直径を有する板2および3の孔を通して、本発明による96個の孔を有 する濾過および溶離ユニットに、第2図〜第4図に示したように接している直径 7xxのガラス繊維フィルター(英国のWhatman Int、 Ltd、社 のOF/C)上へ注いだ。
懸濁液の装入は、0 、i mlの分割量で行なった。各分割量は、先行分量が 吸引濾過された後にはじめて装入した。幾つかの試料が同時に処理された場合に は、各試料のそのフィルターへの添加は、次の試料が次のフィルターに装入され る以前に行なわれた。
引き続き、各フィルターを、4M/lのNaClO2,10mM/lのトリスH C2(pH7,5) 、1 コlのEDTA合計1tnlで処理し、その際同様 にo、i agの分割量をフィルター上に滴下し、吸引濾過した。
引き続き、同様に70%の含水アルコール1dで洗浄した。次いで、濾過ユニッ トを5分間空気で乾燥し、引き続きTE緩衝液(pH7,5)を用い、電気溶離 のための電圧を印加して溶離したが、その際溶離用の真空室1は、その個々の凹 みが再びサンドイツチ板2および3の孔と整列している96個の孔を有する微量 滴定板によって代えた。
こうして得ら′れたDNA I!ll製物を、プライマーの放射性標識化ならび に螢光標識化を用いる配列決定用鋳型として使用した。酵素として、E、コリD NAポリメラーゼ1またはT 7 DNAポリメラーゼのフレノウフラグメント を使用した。この場合、放射性標識化を用いると、1チの酢酸濃度および4 M /lのNaCjO4を使用する場合に最良の結果が生じ、螢光標識化を用いると 、1〜5チ酢酸および4〜6MのNaCJO4の範囲内で最良の結果が得られた 。
国際調査報告

Claims (11)

    【特許請求の範囲】
  1. 1.二E・コリ宿主菌株から培地中へ遠心分離された組換えられたM13ファー ジを沈殿させ、成長培地から分離し、皮腹タンパク質を抽出することによつて組 換えられたM13ssDNAを精製する方法において、成長培地からM13フア ージを酢酸を用いて沈殿させ、得られる懸濁液をガラス繊維フィルターを通して 濾過し、ガラスフィルターをカオトロピツクイオンの溶液で処理することを特徴 とするM13ファージDNAの精製方法。
  2. 2.カオトロピツク溶液として過塩素酸塩溶液を使用する請求項1記載の方法。
  3. 3.4〜8M/lの過塩素酸塩溶液(PH6.5〜8.5)を使用する請求項2 記載の方法。
  4. 4.沈殿のため培地を、酢酸1%〜10%の最終濃度にもたらす請求項1から3 までのいずれか1項記載の方法。
  5. 5.ガラス繊維フィルターを、カオトロピツクイオンの溶液で処理した後、含水 エタノールで洗浄する請求項1から4までのいずれか1項記載の方法。
  6. 6.精製されたDNAを、ガラスフィルターから、希塊水溶液を用いて溶離する 請求項1から5までのいずれか1項記載の方法。
  7. 7.溶離を、0.05〜0.2mM/lのEDTAを含有する0.5〜2mM/ l(PH7〜8)のトリスHClを用いて実施する請求項1から6までのいずれ か1項記載の方法。
  8. 8.板2で覆われ、その上方に板3が配置されている真空室1および板2と3の 間のガラス繊維フィルターを有し、板2かよび3は互いに整列する多数の孔を有 し、かつ2つの絶縁性プラスチック板(2a,2b;3a,3b)の間に導電性 金属板(2c,3c)が配置されていることを特徴とする請求項1から7までの 方法を実施する装置。
  9. 9.金属板2c,3cが電圧源と結合するための手段を有する請求項8記載の装 置。
  10. 10.孔は上方の板では漏斗状に構成され、下方の板2中では円筒状に構成され ている請求項8または9記載の装置。
  11. 11.サンガーの鎖切断法によるDNA配列決定のため、請求項1から7までの 方法によつて製造されたM13ssDNAの使用。
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