JPH01113321A - ネコ感染性腹膜炎に対しネコを保護するワクチン - Google Patents
ネコ感染性腹膜炎に対しネコを保護するワクチンInfo
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- JPH01113321A JPH01113321A JP63248942A JP24894288A JPH01113321A JP H01113321 A JPH01113321 A JP H01113321A JP 63248942 A JP63248942 A JP 63248942A JP 24894288 A JP24894288 A JP 24894288A JP H01113321 A JPH01113321 A JP H01113321A
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Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
発明の分野
本発明はネコ感染性腹膜炎(felin 1nfect
iousperitonitis) (F I P)ウ
ィルスに対しネコを免疫化するのに有用なワクチンの製
法に関する。さらに詳しくは、本発明はネコを効果的に
FIPから保護する弱毒化された温度感受性ワクチンに
関する。
iousperitonitis) (F I P)ウ
ィルスに対しネコを免疫化するのに有用なワクチンの製
法に関する。さらに詳しくは、本発明はネコを効果的に
FIPから保護する弱毒化された温度感受性ワクチンに
関する。
発明の背景
ネコ感染性腹膜炎(F I P)は飼っているネコおよ
び野生のネコ双方の疾患である。該ウィルスは動物の多
くの内部器官を侵し、はとんど常に死に至らしめる。該
ウィルスはかなりの伝染性であり、子ネコならびに成長
したネコを侵す。
び野生のネコ双方の疾患である。該ウィルスは動物の多
くの内部器官を侵し、はとんど常に死に至らしめる。該
ウィルスはかなりの伝染性であり、子ネコならびに成長
したネコを侵す。
該FIPウィルスはホルジ不ツクおよびオステルハウス
(Horzinek and 0sterhausa)
、アーカイブス・オブ・パイロロジー(Arch、 V
1ro1)、59:1(1979)によってコロナウ
ィルス属と同定された。FIPウィルスはブタの伝染性
胃腸炎ウィルス(TGEV)、イヌの腸コロナウィルス
およびヒトの呼吸器系コロナウィルスの類縁である。ま
t;、主として腸で複製し、軽い下痢症を引き起こすだ
けのネコ腸コロナウィルス(FECV)かある。ルック
ら(Lutz、 et al、)、ジャーナル・オブー
スモール・アニマル・プラクティス(J、 Small
Animal Practice)、27:10
8(1986)。
(Horzinek and 0sterhausa)
、アーカイブス・オブ・パイロロジー(Arch、 V
1ro1)、59:1(1979)によってコロナウ
ィルス属と同定された。FIPウィルスはブタの伝染性
胃腸炎ウィルス(TGEV)、イヌの腸コロナウィルス
およびヒトの呼吸器系コロナウィルスの類縁である。ま
t;、主として腸で複製し、軽い下痢症を引き起こすだ
けのネコ腸コロナウィルス(FECV)かある。ルック
ら(Lutz、 et al、)、ジャーナル・オブー
スモール・アニマル・プラクティス(J、 Small
Animal Practice)、27:10
8(1986)。
FIPはコロナウィルスによって引き起こされることは
公知であるか、いかにして感染がネコの間で伝わるのか
およびその病因はまだよく理解されていない。該疾患゛
の病因は非常に複雑で、研究によると、宿主、ウィルス
および環境の因子か該疾患の形態および進行で役割を演
じていると示される。ペブルセンら(Pedersen
、et al、)、小動物のウィルス病(Viral
Diseases of SmallAnimals)
、第34回年次ンンポジウム、7:1001 (198
5)。
公知であるか、いかにして感染がネコの間で伝わるのか
およびその病因はまだよく理解されていない。該疾患゛
の病因は非常に複雑で、研究によると、宿主、ウィルス
および環境の因子か該疾患の形態および進行で役割を演
じていると示される。ペブルセンら(Pedersen
、et al、)、小動物のウィルス病(Viral
Diseases of SmallAnimals)
、第34回年次ンンポジウム、7:1001 (198
5)。
FIPは異なる2つの形態二線雄性腹腔浸出によって特
徴つけられる湿潤および浸出形ならびに浸出かほとんど
ないかもしくは全くない器官の肉芽性炎によって特徴づ
けられる乾燥または柔軟形で起こり得る。ルックら(L
utz、et al、)、前掲。
徴つけられる湿潤および浸出形ならびに浸出かほとんど
ないかもしくは全くない器官の肉芽性炎によって特徴づ
けられる乾燥または柔軟形で起こり得る。ルックら(L
utz、et al、)、前掲。
ネコの他のコロナウィルス感染、例えば抗原的にFIP
ウィルスに類縁のFECVがあるから、FIPの病因は
特徴づけるのが困難であった。その結果、該疾患の診断
についての血清学テストは特異性を欠き、初期の研究の
解釈は混乱していた。
ウィルスに類縁のFECVがあるから、FIPの病因は
特徴づけるのが困難であった。その結果、該疾患の診断
についての血清学テストは特異性を欠き、初期の研究の
解釈は混乱していた。
ペブルセンら(Pedersen、 et at、)、
フェリン・プラクティス(Feline Practi
ce) 13 : l 3 (1983)。
フェリン・プラクティス(Feline Practi
ce) 13 : l 3 (1983)。
最近に至るまで、FIPに対する保護活性免疫化は不可
能であった。対照的に、ワクチン接種したネコは病気に
より罹りやすかった。ペブルセンら(Pedersen
、 at al、)。アメリカン・ジャーナル・オブ・
ベテリナリ・リサーチズ(Am、J、Vet、。
能であった。対照的に、ワクチン接種したネコは病気に
より罹りやすかった。ペブルセンら(Pedersen
、 at al、)。アメリカン・ジャーナル・オブ・
ベテリナリ・リサーチズ(Am、J、Vet、。
Res、)±4 :229 (1983);ウニイスら
(Weiss、et al、)、コンブ・イムノ・ミク
ロバイオル骨インフェクト(Comp、 Immun、
Microbiol。
(Weiss、et al、)、コンブ・イムノ・ミク
ロバイオル骨インフェクト(Comp、 Immun、
Microbiol。
Infect、)4 :175 (1981) ;ウニ
イスら(Weiss、 et al、)、41 :
663 (1980)。
イスら(Weiss、 et al、)、41 :
663 (1980)。
ネコは目鼻経路によって感染する。FIPウイルスは上
気道管および腸の上皮細胞で増殖する。
気道管および腸の上皮細胞で増殖する。
臨床的には、はっきりとしたFIPは粘膜障壁を通過し
、免疫介在病を引き起こした後に起こる。
、免疫介在病を引き起こした後に起こる。
ルッツら(Lutz、 et al、)、前掲、ウニイ
スら(Weiss、 et al、)、アメリカン・ジ
ャーナル・オブ・ベテリナリ・リサーチズ(Am、 J
、 Vet、 Res、)、42:382 (1981
)。
スら(Weiss、 et al、)、アメリカン・ジ
ャーナル・オブ・ベテリナリ・リサーチズ(Am、 J
、 Vet、 Res、)、42:382 (1981
)。
鼻粘膜免疫応答の刺激はワクチンの鼻孔内投与によって
最もよくなされる。ビー不ンストックら(Bienen
stock、 et al、)、イミュノロジ−(1m
munology)41 : 249 (1980)
;ムレイ(Murraい、ザ・ベテリナリ・レコード
(TheVeterinary Record)、11
月10日:500(1973)。また、抗−FIPウィ
ルスIgA抗体を分泌するよう刺激された粘膜B−リン
パ球は腸粘膜に移動し、局所的腸免疫を与える。ムレイ
(Murray)、前掲。
最もよくなされる。ビー不ンストックら(Bienen
stock、 et al、)、イミュノロジ−(1m
munology)41 : 249 (1980)
;ムレイ(Murraい、ザ・ベテリナリ・レコード
(TheVeterinary Record)、11
月10日:500(1973)。また、抗−FIPウィ
ルスIgA抗体を分泌するよう刺激された粘膜B−リン
パ球は腸粘膜に移動し、局所的腸免疫を与える。ムレイ
(Murray)、前掲。
発明の開示
本発明のlの具体例はひどい副作用なくしてネコにおい
てFIPウィルスによる感染に対する免疫を誘導できる
経口または鼻孔内投与用FIPワクチンである。かかる
ワクチンは温度感受性(ts)FIPウィルスの有効量
よりなる。
てFIPウィルスによる感染に対する免疫を誘導できる
経口または鼻孔内投与用FIPワクチンである。かかる
ワクチンは温度感受性(ts)FIPウィルスの有効量
よりなる。
本発明のもう1つの具体例において、罹患細胞内での高
継代によってFIPウィルスを弱毒化し;弱毒化された
FIPウィルスを突然変異誘発剤に暴露し:該突然変異
誘発剤への暴露の後金や温度感受性となった弱毒化FI
Pウィルスを培養し;弱毒化FIPウィルスを収集する
ことを特徴とするFIPウィルに対するスワクチンの製
法が提供される。
継代によってFIPウィルスを弱毒化し;弱毒化された
FIPウィルスを突然変異誘発剤に暴露し:該突然変異
誘発剤への暴露の後金や温度感受性となった弱毒化FI
Pウィルスを培養し;弱毒化FIPウィルスを収集する
ことを特徴とするFIPウィルに対するスワクチンの製
法が提供される。
本発明のさらにもう1つの具体例において、弱毒化され
た温度感受性FIPウィルスを経口または鼻孔内経路に
より投与することを特徴とするネコをFIPウィルスに
対して免疫化する方法が提供される。
た温度感受性FIPウィルスを経口または鼻孔内経路に
より投与することを特徴とするネコをFIPウィルスに
対して免疫化する方法が提供される。
本発明のもう1つの具体例において、ワクチンの生産で
有用なFIPウィルスが提供される。かかるFIPウィ
ルスは弱毒化されておりかつ温度感受性である。
有用なFIPウィルスが提供される。かかるFIPウィ
ルスは弱毒化されておりかつ温度感受性である。
本発明のもう1つの具体例において、温度感受性FIP
ウィルスの102ないしio’Tc’ID、。
ウィルスの102ないしio’Tc’ID、。
を含有し、ネコへの鼻孔内または経口投与に適した0
5ないし1.5m(2の液体よりなることを特徴とする
FIPウィルスによる感染に対し免疫を誘導するワクチ
ン投与単位か提供される。
5ないし1.5m(2の液体よりなることを特徴とする
FIPウィルスによる感染に対し免疫を誘導するワクチ
ン投与単位か提供される。
本発明のなおさらにもう1つの具体例において、ts−
FIPウィルスの有効量およびもう1つの病原生物もし
くはウィルスによる感染に対し保護するlもしくはそれ
以上の他の抗原の有効量よるなることを特徴とするひど
い副作用なくしてFIPウィルスおよびlもしくはそれ
以上の他の病原生物もしくはウィルスによる感染に対し
ネコにおいて免疫を誘導することができる経口または鼻
孔内投与用混合ワクチンが提供される。
FIPウィルスの有効量およびもう1つの病原生物もし
くはウィルスによる感染に対し保護するlもしくはそれ
以上の他の抗原の有効量よるなることを特徴とするひど
い副作用なくしてFIPウィルスおよびlもしくはそれ
以上の他の病原生物もしくはウィルスによる感染に対し
ネコにおいて免疫を誘導することができる経口または鼻
孔内投与用混合ワクチンが提供される。
有効なFIPワクチンは、感染が粘膜障壁を越えるのを
防ぐための強力な免疫応答および感染が該粘膜を越えた
場合にウィルスか広がるのを直ちに阻止する細胞性免疫
(CMT)応答を刺激すべきである。本発明の温度感受
性FIPウィルス(ts−FIPウィルス)は鼻孔内投
与または経口投与できる。本発明の好ましい具体例にお
いて、ts−FIPウィルスは鼻孔内投与される。ts
−FIPウィルスを鼻孔内投与された場合、鼻咽頭領域
内における温度で増殖するその能力のため、ts−FI
Pウィルスは容易に増殖し、CMI応答および局所免疫
応答を刺激する。加えて、ts−FIPウィルスは、全
身ワクチン接種したネコまたはビルレントFIPウィル
スに感染したネコにおいて検知されない抗原投与により
FOPウィルスに対するCMI応答を刺激する。
防ぐための強力な免疫応答および感染が該粘膜を越えた
場合にウィルスか広がるのを直ちに阻止する細胞性免疫
(CMT)応答を刺激すべきである。本発明の温度感受
性FIPウィルス(ts−FIPウィルス)は鼻孔内投
与または経口投与できる。本発明の好ましい具体例にお
いて、ts−FIPウィルスは鼻孔内投与される。ts
−FIPウィルスを鼻孔内投与された場合、鼻咽頭領域
内における温度で増殖するその能力のため、ts−FI
Pウィルスは容易に増殖し、CMI応答および局所免疫
応答を刺激する。加えて、ts−FIPウィルスは、全
身ワクチン接種したネコまたはビルレントFIPウィル
スに感染したネコにおいて検知されない抗原投与により
FOPウィルスに対するCMI応答を刺激する。
本発明のワクチンを製造するのに用いるFIPウィルス
は該ウィルスに感染した動物の器官または組織、好まし
くは肝臓から単離する。器官または組織をすりつぶし、
実験動物、好ましくは特異的病原のない(SPF)ネコ
に経口投与する。
は該ウィルスに感染した動物の器官または組織、好まし
くは肝臓から単離する。器官または組織をすりつぶし、
実験動物、好ましくは特異的病原のない(SPF)ネコ
に経口投与する。
感染器官の数回のin vivo継代、好ましくは感染
牌臓または肝臓の5回の継代の後、FIPウィルスを単
離する。当該分野で公知の漂準法を用いてFIPウィル
スを感染器官から単離し、不コ細胞と一緒に共培養する
。FIPウィルスは、いずれの源、例えばデイヒス(D
avis)、米国特許第4303644号およびフィシ
ュマンら(Fishman、 et al、)、米国特
許第4571386号によって教示されるごとき牌臓、
腸間膜リンパ節、内皮細胞または胚細胞培養物からのネ
コ細胞と一緒でも容易に増殖する。本発明の好ましい具
体例において、FIPウィルスを疾患組織から単離し、
ネコ腎臓細胞と一緒に共培養する。
牌臓または肝臓の5回の継代の後、FIPウィルスを単
離する。当該分野で公知の漂準法を用いてFIPウィル
スを感染器官から単離し、不コ細胞と一緒に共培養する
。FIPウィルスは、いずれの源、例えばデイヒス(D
avis)、米国特許第4303644号およびフィシ
ュマンら(Fishman、 et al、)、米国特
許第4571386号によって教示されるごとき牌臓、
腸間膜リンパ節、内皮細胞または胚細胞培養物からのネ
コ細胞と一緒でも容易に増殖する。本発明の好ましい具
体例において、FIPウィルスを疾患組織から単離し、
ネコ腎臓細胞と一緒に共培養する。
ウィルスをin vitro増殖に適合させるために、
疾患組織から抽出したウィルスをネコ細胞と一緒に共培
養する。in vitro増殖は多核細胞と共にコロナ
ウィルスに典型的な他の公知の細胞変性効果(c p
e)の形成によって証明される。ウィルスを弱毒化され
るまで継代し、次いで温度感受性とするために突然変異
させる。当該分野においては、弱毒化はウィルスがもは
や病気を引き起こさないように修飾されたことを意味す
る。最後に、弱毒化された温度感受性ウィルスを経口ま
たは鼻孔内経路いずれかを通じてネコに投与する。
疾患組織から抽出したウィルスをネコ細胞と一緒に共培
養する。in vitro増殖は多核細胞と共にコロナ
ウィルスに典型的な他の公知の細胞変性効果(c p
e)の形成によって証明される。ウィルスを弱毒化され
るまで継代し、次いで温度感受性とするために突然変異
させる。当該分野においては、弱毒化はウィルスがもは
や病気を引き起こさないように修飾されたことを意味す
る。最後に、弱毒化された温度感受性ウィルスを経口ま
たは鼻孔内経路いずれかを通じてネコに投与する。
好ましい具体例においては、FIPウィルスをネコ腎臓
細胞内で高継代、例えば少なくとも60回の継代、好ま
しくは95〜100回の継代によって弱毒化する。温度
感受性FIPウィルスを得るには、高継代数の培養物流
動体を、約3VCにおける増殖によるウィルス力価が3
9℃におけるよりも大であって少なくとも1Xlo”T
cID、。、好ましくは約I X I O’TCI D
5.になるまで突然変異誘発剤、例えば化学的なものま
たは照射;好ましくは紫外線照射に暴露する(T CI
D 50はウィルスに暴露された培養細胞の50%に
おいて細胞変性効果を生じる組織培養感染用量である)
。
細胞内で高継代、例えば少なくとも60回の継代、好ま
しくは95〜100回の継代によって弱毒化する。温度
感受性FIPウィルスを得るには、高継代数の培養物流
動体を、約3VCにおける増殖によるウィルス力価が3
9℃におけるよりも大であって少なくとも1Xlo”T
cID、。、好ましくは約I X I O’TCI D
5.になるまで突然変異誘発剤、例えば化学的なものま
たは照射;好ましくは紫外線照射に暴露する(T CI
D 50はウィルスに暴露された培養細胞の50%に
おいて細胞変性効果を生じる組織培養感染用量である)
。
最適なウィルス活性を得るためには、ウィルス流動体を
5分毎に採集し、−7℃で貯蔵する。各5分試料のIO
倍系列希釈物(10°ないし10−’)を密集性ネコ腎
臓細胞単層上でウィルス活性についてテストする。最適
試料、好ましくは5分試料を選択し、3ピCにて種々の
希釈にて増殖させる。
5分毎に採集し、−7℃で貯蔵する。各5分試料のIO
倍系列希釈物(10°ないし10−’)を密集性ネコ腎
臓細胞単層上でウィルス活性についてテストする。最適
試料、好ましくは5分試料を選択し、3ピCにて種々の
希釈にて増殖させる。
単一プラークを含有するウェルからのウィルス流動体を
収集する。
収集する。
第1表は31℃におけるFIPウィルス(DF2−FI
Pウィルス)のビルレント株の紫外線照射の効果を示す
。FIPウィルスは10分間の紫外線への暴露の後完全
に不活化された。
Pウィルス)のビルレント株の紫外線照射の効果を示す
。FIPウィルスは10分間の紫外線への暴露の後完全
に不活化された。
5分間の紫外線照射に暴露したl:16希釈におけるF
IPウィルス流動体はウィルスプラークを含有していた
。単一のプラークを多数のウェルで増殖させる。
IPウィルス流動体はウィルスプラークを含有していた
。単一のプラークを多数のウェルで増殖させる。
個々の単一プラークを31”(!、37℃および39℃
にて24ウエルプレートでの10倍希釈物(10−3な
いし10−”)で力価を測定した(第2表)。
にて24ウエルプレートでの10倍希釈物(10−3な
いし10−”)で力価を測定した(第2表)。
ウィルスを増殖させる最適条件は許容温度において増殖
するその能力に基づく。39℃においてTCI D、。
するその能力に基づく。39℃においてTCI D、。
は31℃における”rcrp50よりも少tくとも約l
Xl×102ユニット小さく、好ましくま少なくともl
’Xlo’ユニット小さい。
Xl×102ユニット小さく、好ましくま少なくともl
’Xlo’ユニット小さい。
本発明の弱毒化された温度感受性FIPウィルスはネコ
をFIPウィルスから保護するために該動物に投与でき
る。安全であって、すなわちひどい副作用を引き起こさ
ず、かつ効果的、すなわち投与により保護の細胞免疫お
よび局所免疫応答を誘導する用量を選択する。
をFIPウィルスから保護するために該動物に投与でき
る。安全であって、すなわちひどい副作用を引き起こさ
ず、かつ効果的、すなわち投与により保護の細胞免疫お
よび局所免疫応答を誘導する用量を選択する。
FIPワクチンは鼻孔内または経口投与できる。
投与の好ましい態様は、典型的な用量が0.5ないし1
.5m12容量中102ないし107のTCII)50
である鼻孔内投与である。
.5m12容量中102ないし107のTCII)50
である鼻孔内投与である。
該用量は単一用量としてまたは時間をかけてのいくつか
の希釈用量として投与できる。0.5mf2の半分(0
,25mQ)を例えばスプレーまたは絞り出し容器によ
って、あるいは滴びんによって動物の各鼻孔に投与する
、担体0.SmQ中の1055T CI o 50ウィ
ルスの単一用量が好ましい。実験の結果、効果的なワク
チンを単一用量として投与でき、2回の用量が好ましい
ことが示されlこ。
の希釈用量として投与できる。0.5mf2の半分(0
,25mQ)を例えばスプレーまたは絞り出し容器によ
って、あるいは滴びんによって動物の各鼻孔に投与する
、担体0.SmQ中の1055T CI o 50ウィ
ルスの単一用量が好ましい。実験の結果、効果的なワク
チンを単一用量として投与でき、2回の用量が好ましい
ことが示されlこ。
FIPワクチンは直接投与できる。すなわち、ウィルス
を細胞培養流動体中で増殖させ、次いで該培養流動体を
投与用担体として用いることができる。該培養流動体は
標準法によって希釈または濃縮して所望の濃度の弱毒化
ts−FIPウィルスを得ることができる。別法として
、例えばスクロース密度勾配遠心法によって細胞培養物
から弱毒化した温度感受性ウィルスを抽出し、適当な担
体、例えば水、サーライン、コレラトキンド、または卵
アルブミンと、あるいはアジュバント、例えばフィール
(Qui1)A、アルデヒドゲルまたは油性エマルジョ
ンと混合することによって、Ls−FIPウィルスの医
薬上許容される製剤を得ることができる。
を細胞培養流動体中で増殖させ、次いで該培養流動体を
投与用担体として用いることができる。該培養流動体は
標準法によって希釈または濃縮して所望の濃度の弱毒化
ts−FIPウィルスを得ることができる。別法として
、例えばスクロース密度勾配遠心法によって細胞培養物
から弱毒化した温度感受性ウィルスを抽出し、適当な担
体、例えば水、サーライン、コレラトキンド、または卵
アルブミンと、あるいはアジュバント、例えばフィール
(Qui1)A、アルデヒドゲルまたは油性エマルジョ
ンと混合することによって、Ls−FIPウィルスの医
薬上許容される製剤を得ることができる。
好ましい具体例において、ウィルスを培養物流動体中に
て投与し、単一用量の一部を調製する。
て投与し、単一用量の一部を調製する。
無毒性のts−FIPウィルスは単一用量の量で凍結乾
燥し、使用まで貯蔵することができる。凍結乾燥粉とし
て貯蔵する場合、投与に先立ち、ネコにおける直接鼻孔
内投与に適した水、サーライン、培養物流動体または他
の適当な担体でワクチンを復元できる。
燥し、使用まで貯蔵することができる。凍結乾燥粉とし
て貯蔵する場合、投与に先立ち、ネコにおける直接鼻孔
内投与に適した水、サーライン、培養物流動体または他
の適当な担体でワクチンを復元できる。
抗体応答の測定は、酵素免疫法(ELISA)および血
清ウィルス中和(VN)試験のごとき標準法を用いて行
い、かつ個々の動物からの血液試料で行うことができる
。測定はワクチン接種および抗原投与により試料につい
て最適に行うことができる。ペブルセンら(Peder
sen、et at、)、ザ・コンペンジウム・オン・
コンティニーイング・エデュケイション(The Co
moendium on ContinuingEdu
cation)、7 : too l (1985)に
記載されているリンパ球幼若化法を用いてワクチン接種
および抗原投与による細胞媒介(リンパ球)応答を示す
。
清ウィルス中和(VN)試験のごとき標準法を用いて行
い、かつ個々の動物からの血液試料で行うことができる
。測定はワクチン接種および抗原投与により試料につい
て最適に行うことができる。ペブルセンら(Peder
sen、et at、)、ザ・コンペンジウム・オン・
コンティニーイング・エデュケイション(The Co
moendium on ContinuingEdu
cation)、7 : too l (1985)に
記載されているリンパ球幼若化法を用いてワクチン接種
および抗原投与による細胞媒介(リンパ球)応答を示す
。
本発明のさらなる態様はts−FIPウィルスおよびl
もしくはそれ以上の公知ネコウィルスのワクチン量より
なる混合ワクチンの製法および使用である。例えば、混
合ワクチンは、ts−FIPウィルス成分および呼吸器
系感染の原因であるとして公知の1もしくはそれ以上の
ネコウィルス、例えばカルチウィルス、ネコヘルペス(
鼻気管炎)ウィルスよりなる経口または鼻孔内投与用と
して調製できる。
もしくはそれ以上の公知ネコウィルスのワクチン量より
なる混合ワクチンの製法および使用である。例えば、混
合ワクチンは、ts−FIPウィルス成分および呼吸器
系感染の原因であるとして公知の1もしくはそれ以上の
ネコウィルス、例えばカルチウィルス、ネコヘルペス(
鼻気管炎)ウィルスよりなる経口または鼻孔内投与用と
して調製できる。
FIPウィルスおよびlもしくはそれ以上の他の病原生
物もしくはウィルスによる感染に対しネコにおいて免疫
を誘導できる他の混合ワクチンはts−FIPウィルス
成分および他の非呼吸器系類縁ウィルス成分もしくは病
原生物、例えばネジジステンパー(パンロイコベニア( panleukopenia))、クラミジア、ネコ白
血病を用いて調製できる。 サブユニットワクチンも調
製できる。ts−FIPウィルスは、非経口または鼻孔
内投与用に、殺したもしくは弱毒化した病原、例えばネ
コジステンパーウィルス、カルチウィルス、ネコヘルペ
スウィルス等のサブユニット成分と組み合わすことがで
きる。ts−FIPウィルスは、また、非経口投与用に
、ネコ白血病ウィルスワクチンと組み合わすこともでき
る。
物もしくはウィルスによる感染に対しネコにおいて免疫
を誘導できる他の混合ワクチンはts−FIPウィルス
成分および他の非呼吸器系類縁ウィルス成分もしくは病
原生物、例えばネジジステンパー(パンロイコベニア( panleukopenia))、クラミジア、ネコ白
血病を用いて調製できる。 サブユニットワクチンも調
製できる。ts−FIPウィルスは、非経口または鼻孔
内投与用に、殺したもしくは弱毒化した病原、例えばネ
コジステンパーウィルス、カルチウィルス、ネコヘルペ
スウィルス等のサブユニット成分と組み合わすことがで
きる。ts−FIPウィルスは、また、非経口投与用に
、ネコ白血病ウィルスワクチンと組み合わすこともでき
る。
以下に実施例を挙げて本発明をさらに詳しく説明するか
本発明はそれらに限定されるものではない。
本発明はそれらに限定されるものではない。
衷鼻匿
実施例1:効能試験1
リバティイ・ラブダ(Liberty Labs) (
リバティイ(Liberty)、ニューシャーシー州)
からの14匹のSPF雄ネコ(26月令)を第1のワク
チン接種−抗原投与試験で用いた。ワクチン接種したネ
コを1の隔離室中に、非ワクチン接種ネコをもう1つの
隔離室中に保持した。
リバティイ(Liberty)、ニューシャーシー州)
からの14匹のSPF雄ネコ(26月令)を第1のワク
チン接種−抗原投与試験で用いた。ワクチン接種したネ
コを1の隔離室中に、非ワクチン接種ネコをもう1つの
隔離室中に保持した。
3週間離して、3回、10匹のネコをts−FIPウィ
ルスで鼻孔内(IN)ワクチン接種した。
ルスで鼻孔内(IN)ワクチン接種した。
5匹のネコには31℃におけるウィルス力価が10 ”
TCI D50/mQのts−FIPウィルスをワク
チン接種し、5匹には31’C!におけるウィルス力価
が103″TCID50/mQのウィルスをワクチン接
種した。2週間後、10匹のワクチン接種体および4匹
の対照に対し、ビルレントFIPウィルスのl : 6
00希釈物(FIPウィルス−DF26)継代10回、
抗原投与力価=IQ”8TCID50/m(り1m(
2を経口抗原投与した。
TCI D50/mQのts−FIPウィルスをワク
チン接種し、5匹には31’C!におけるウィルス力価
が103″TCID50/mQのウィルスをワクチン接
種した。2週間後、10匹のワクチン接種体および4匹
の対照に対し、ビルレントFIPウィルスのl : 6
00希釈物(FIPウィルス−DF26)継代10回、
抗原投与力価=IQ”8TCID50/m(り1m(
2を経口抗原投与した。
ELISA法によって、オステルハウスら(Oster
hause、et at、)、ベテルナリ・クアテルリ
イ(Veterinary Quaterly)、I
: 59 (1979)、FIPウィルスに対するIg
G血清学的応答を測定した。VN力価(ペブルセンら(
Pedersen、 etal、) 、アメリカン・ジ
ャーナル・オン・ベテリナリ・リサーチ(Am、J 、
Vet、Res、)、t±=229(1983))、も
測定した。
hause、et at、)、ベテルナリ・クアテルリ
イ(Veterinary Quaterly)、I
: 59 (1979)、FIPウィルスに対するIg
G血清学的応答を測定した。VN力価(ペブルセンら(
Pedersen、 etal、) 、アメリカン・ジ
ャーナル・オン・ベテリナリ・リサーチ(Am、J 、
Vet、Res、)、t±=229(1983))、も
測定した。
ts−FIPウィルスワクチン接種体のIgGELIS
A法力価を第4表に示す。ワクチン接種ネコのプレワク
チン接種力価はそれらを隔離ケージから取り出した日に
ついてのものであった。
A法力価を第4表に示す。ワクチン接種ネコのプレワク
チン接種力価はそれらを隔離ケージから取り出した日に
ついてのものであった。
対照ネコは隔離ケージから取り出した15日後、プレワ
クチン接種ELISA法力価15を有していた。対照ネ
コのFIPウィルスに対するIgG応答は、実験で用い
たSPFネココロニーに固有のネコ腸コロナウィルス(
F E CV)への交差反応活性の抗体によるものであ
る。その結果、ワクチン接種ネコのIgG応答はFEC
Vならびにワクチンウィルスによるものである。
クチン接種ELISA法力価15を有していた。対照ネ
コのFIPウィルスに対するIgG応答は、実験で用い
たSPFネココロニーに固有のネコ腸コロナウィルス(
F E CV)への交差反応活性の抗体によるものであ
る。その結果、ワクチン接種ネコのIgG応答はFEC
Vならびにワクチンウィルスによるものである。
IgG ELISA法力価とは対照的に、ワクチン接
種前に陰性であった(第5表)ウィルス中和力価は、各
ワクチン接種の後増加した。抗原投与後、抗体力価創意
用に血清を収集しなかった。
種前に陰性であった(第5表)ウィルス中和力価は、各
ワクチン接種の後増加した。抗原投与後、抗体力価創意
用に血清を収集しなかった。
ワクチン接種ネコおよび対照ネコはFIPウィルスに対
する交差反応性抗体応答を生じたので、両群のFECV
でのプレ暴露は、もしあったとしても、抗原投与に対し
て少ししか効果がない。4匹のうち3匹の非ワクチン接
種対照ネコはFIPに罹り、死亡した。第4番目のネコ
、LK2は9匹の保護されたワクチン接種体のいずれよ
りも3倍大きい13の臨床スコア(数がより大きいと症
状がよりひどく、死亡のスコアは50である)を有して
いた。
する交差反応性抗体応答を生じたので、両群のFECV
でのプレ暴露は、もしあったとしても、抗原投与に対し
て少ししか効果がない。4匹のうち3匹の非ワクチン接
種対照ネコはFIPに罹り、死亡した。第4番目のネコ
、LK2は9匹の保護されたワクチン接種体のいずれよ
りも3倍大きい13の臨床スコア(数がより大きいと症
状がよりひどく、死亡のスコアは50である)を有して
いた。
実施例2:効能試験2
リバティイ・ラブダ(Liberty Labs)から
の12匹のコロナウィルス陰性SPF雄ネコ(12月令
)を第2のワクチン接種−抗原投与試験で用いた。すべ
てのネコを隔離ケージに入れた(ケージ当たりネコ3匹
)。
の12匹のコロナウィルス陰性SPF雄ネコ(12月令
)を第2のワクチン接種−抗原投与試験で用いた。すべ
てのネコを隔離ケージに入れた(ケージ当たりネコ3匹
)。
6匹のネコを、3週間離して3回、ts−FIPウィル
スでINワクチン接種した。3匹のネコをts−FIP
ウィルスで2回INワクチン接種し、1回は経口で行っ
た。ts−FIPウイルス力価は102TCID50/
mQであった。3匹の非ワクチン接種対照はワクチン接
種体とは別のケージ中で保持した。
スでINワクチン接種した。3匹のネコをts−FIP
ウィルスで2回INワクチン接種し、1回は経口で行っ
た。ts−FIPウイルス力価は102TCID50/
mQであった。3匹の非ワクチン接種対照はワクチン接
種体とは別のケージ中で保持した。
ビルレントFIPウィルスのi:aoo希釈物(F I
Pウィルスを−DF26)継代10回、抗原投与力価
−1025TCI D50/mQ)1mQを9匹のワク
チン接種体および3匹の対照に経口抗原投与した。
Pウィルスを−DF26)継代10回、抗原投与力価
−1025TCI D50/mQ)1mQを9匹のワク
チン接種体および3匹の対照に経口抗原投与した。
ts−FIPウィルスワクチン接種体および非ワクチン
接種体の血清1gG抗−FIPウィルス抗体応答を第6
表に示す。第1および第2のワクチン接種によりIgG
抗体力価の最大増加が見られた。3回目のINワクチン
接種ネコにおいて力価の増加は生じず、保護を誘起する
のに1またはせいぜい2の用量で十分であることが確認
された。
接種体の血清1gG抗−FIPウィルス抗体応答を第6
表に示す。第1および第2のワクチン接種によりIgG
抗体力価の最大増加が見られた。3回目のINワクチン
接種ネコにおいて力価の増加は生じず、保護を誘起する
のに1またはせいぜい2の用量で十分であることが確認
された。
IgG抗体力価は抗原投与により急激に増加した。
ウィルス中和抗体力価は各3回のワクチン接種および抗
原投与により増加した(第7表)。
原投与により増加した(第7表)。
3匹の非ワクチン接種対照のうち2匹はFIPに罹り、
死亡した。すべてのワクチン接種ネコは生存した。2匹
のワクチン接種ネコ、SNIおよびSYIでは一時的な
血液疾患、初期的デフル体(Doehle Bodie
s) 、低充填細胞容量および体温の上昇があった。し
かしながら、それらはまさに起こりつつある死の適切な
表示たる買置のいずれの徴候も示さなかった。
死亡した。すべてのワクチン接種ネコは生存した。2匹
のワクチン接種ネコ、SNIおよびSYIでは一時的な
血液疾患、初期的デフル体(Doehle Bodie
s) 、低充填細胞容量および体温の上昇があった。し
かしながら、それらはまさに起こりつつある死の適切な
表示たる買置のいずれの徴候も示さなかった。
実施例3:効能試験3
リバティイ・ラブダからの18匹のコロナウィルス陰性
SPF雄ネコ(12月令)を用いた。すべてのネコを隔
離ケージ(ケージ当たりネコ2匹)に入れた。6匹のネ
コを3週間離して2回ts−FIPウィルスでIN接種
した。6匹のネコを1回INワクチン接種した。ts−
FIPウイルス力価はI O”TCID50/mQであ
った。さらに6匹のネコをコンカナバリンA(ConA
)アジュバントのts−FIPウィルスで皮下(S C
)ワクチン接種し、INワクチン接種体とは別のケージ
中で保持した。6匹の非ワクチン接種対照ネコはワクチ
ン接種体とは別のケージ中にて保持しtこ。
SPF雄ネコ(12月令)を用いた。すべてのネコを隔
離ケージ(ケージ当たりネコ2匹)に入れた。6匹のネ
コを3週間離して2回ts−FIPウィルスでIN接種
した。6匹のネコを1回INワクチン接種した。ts−
FIPウイルス力価はI O”TCID50/mQであ
った。さらに6匹のネコをコンカナバリンA(ConA
)アジュバントのts−FIPウィルスで皮下(S C
)ワクチン接種し、INワクチン接種体とは別のケージ
中で保持した。6匹の非ワクチン接種対照ネコはワクチ
ン接種体とは別のケージ中にて保持しtこ。
3週間後、12匹のワクチン接種体および6匹の対照に
、ビルレントFIPウィルスのに600希釈物(FIP
ウィルス−DF26)継代10回、抗原投与力価=10
26墓TCI D50/m(2)1mQ。
、ビルレントFIPウィルスのに600希釈物(FIP
ウィルス−DF26)継代10回、抗原投与力価=10
26墓TCI D50/m(2)1mQ。
を経口にて抗原投与した。
第8表はts−FIPウィルスのINおよび皮下ワクチ
ン接種ネコおよび非ワクチン接種ネコのELISA
rgc力価を示す。2回INワクチン接種したネコ、お
よび1回ワクチン接種したネコさえ抗原投与時のSCワ
クチン接種したネコよりも高い平均力価を有していた。
ン接種ネコおよび非ワクチン接種ネコのELISA
rgc力価を示す。2回INワクチン接種したネコ、お
よび1回ワクチン接種したネコさえ抗原投与時のSCワ
クチン接種したネコよりも高い平均力価を有していた。
また、ts−FIPウィルスワクチンのIN2用量を摂
取したネコは抗原投与に先立ち単一のIN用量を摂取し
たネコよりも高いVN力価を有していた(第9表)。
取したネコは抗原投与に先立ち単一のIN用量を摂取し
たネコよりも高いVN力価を有していた(第9表)。
IN投与のts−FIPウィルスの1用量さえ、SC投
与の2用量よりも高いVN力価を刺激した。
与の2用量よりも高いVN力価を刺激した。
2回INワクチン接種した6匹のネコのうち5匹からの
抹消血液リンパ球は抗原投与に先立つリンパ球幼若化試
験においてFIPウィルスに対して応答した。rN1回
ワクチン接種の3匹のネコ、および皮下2回ワクチン接
種のただ1匹のネコは同様の応答を示した。
抹消血液リンパ球は抗原投与に先立つリンパ球幼若化試
験においてFIPウィルスに対して応答した。rN1回
ワクチン接種の3匹のネコ、および皮下2回ワクチン接
種のただ1匹のネコは同様の応答を示した。
5匹のうちの2匹の、抗原投与に先立ちリンパ球幼若化
応答を示した2用MINワクチン接種体と、応答しなか
った2用量INワクチン接種体は抗原投与後に強い幼若
化応答を示した。IN1回ワクチン接種の1匹のネコか
らのリンパ球のみが抗原投与によるFIPウィルスに応
答し、SC2回ワクチン接種のネコからのリンパ球は応
答しなかった。
応答を示した2用MINワクチン接種体と、応答しなか
った2用量INワクチン接種体は抗原投与後に強い幼若
化応答を示した。IN1回ワクチン接種の1匹のネコか
らのリンパ球のみが抗原投与によるFIPウィルスに応
答し、SC2回ワクチン接種のネコからのリンパ球は応
答しなかった。
IN2回ワクチン接種のすべての6匹のネコはFIPウ
ィルス抗原投与からしっかりと保護されていた。IN1
回ワクチン接種の6匹のネコ(UX6)のうち1匹はF
IPを指示する血液疾患を示したものの、生き残った。
ィルス抗原投与からしっかりと保護されていた。IN1
回ワクチン接種の6匹のネコ(UX6)のうち1匹はF
IPを指示する血液疾患を示したものの、生き残った。
対照的に、非ワクチン接種ネコ4匹のうちの2匹および
皮下ツクチン接種ネコ6匹のうちの5匹はFIPに罹り
、死亡した。生き残った対照ネコ(HI2)2匹のうち
1匹はFIPを示唆する血液疾患を示した。はとんどの
皮下ワクチン接種ネコは非ワクチン接種ネコよりも早<
FIPに罹った。
皮下ツクチン接種ネコ6匹のうちの5匹はFIPに罹り
、死亡した。生き残った対照ネコ(HI2)2匹のうち
1匹はFIPを示唆する血液疾患を示した。はとんどの
皮下ワクチン接種ネコは非ワクチン接種ネコよりも早<
FIPに罹った。
実施例4:混合ワクチンの調製
カリチウイルスおよびネコヘルペス(鼻器官炎)ウィル
スと組み合わたts−FIPウィルスよりなる鼻孔内投
与用混合ワクチンを製造することができる。該混合ワク
チンは、以下の: ネコヘルペスウィルス(T CI D 50= l O
72)0.5mf2 カリチウイルス(T CI Dsa= 10 ” ’)
0.50mQ ts−FIPウィルス(TCI D50= l O55
)0.5mQ 安定剤(NZ−アミン、ゼラチンまたはスクロース)0
.8mO。
スと組み合わたts−FIPウィルスよりなる鼻孔内投
与用混合ワクチンを製造することができる。該混合ワク
チンは、以下の: ネコヘルペスウィルス(T CI D 50= l O
72)0.5mf2 カリチウイルス(T CI Dsa= 10 ” ’)
0.50mQ ts−FIPウィルス(TCI D50= l O55
)0.5mQ 安定剤(NZ−アミン、ゼラチンまたはスクロース)0
.8mO。
を組み合わせることができる。
混合ワクチンは出荷および貯蔵のために凍結乾燥するこ
とができる。使用に先立ち、例えば水、サーラインまた
は他の経口もしくは鼻孔内投与に適した賦形剤中1.0
mQまで水分補給できる。
とができる。使用に先立ち、例えば水、サーラインまた
は他の経口もしくは鼻孔内投与に適した賦形剤中1.0
mQまで水分補給できる。
実施例5:サブユニノトワクチンの調製ts−FIPウ
ィルスの免疫原性サブユニットは、ウィルスそのままあ
るいはネコジステンパーウィルス、カリチウイルス、ネ
コヘルペスウィルスあ゛よびクラミジアワクチンのサブ
ツユニット成分と組み合わせ、非経口投与または鼻孔内
投与できる。このタイプの混合サブユニントワクチンは
以下の: ts−FIPウィルス(TCID5.= l O”)0
.2mQ ネコヘルペスウィルス(TCID50= l O”)0
.5m12 ネコジステンパーウィルス(TCID50−102)0
.25mQ。
ィルスの免疫原性サブユニットは、ウィルスそのままあ
るいはネコジステンパーウィルス、カリチウイルス、ネ
コヘルペスウィルスあ゛よびクラミジアワクチンのサブ
ツユニット成分と組み合わせ、非経口投与または鼻孔内
投与できる。このタイプの混合サブユニントワクチンは
以下の: ts−FIPウィルス(TCID5.= l O”)0
.2mQ ネコヘルペスウィルス(TCID50= l O”)0
.5m12 ネコジステンパーウィルス(TCID50−102)0
.25mQ。
カリチウイルス(TCID50−102’)0.25r
nσ ネコ白血病ウィルス(g p 70蛋白の500−30
00μg)0.5mQ。
nσ ネコ白血病ウィルス(g p 70蛋白の500−30
00μg)0.5mQ。
クラミジア(TCID50=IO”)0.25mQを組
み合わせることができる。
み合わせることができる。
各種ネコウィルスの濃度は効果的な免疫応答を生じると
して公知の量である。成分を投与に適した小容量とする
ために、好ましくは前記推奨容量で濃縮ウィルスを調製
する。
して公知の量である。成分を投与に適した小容量とする
ために、好ましくは前記推奨容量で濃縮ウィルスを調製
する。
実施例6;2成分サブユニットワクチン非経口投与用2
成分サブユニットワクチンは免疫原性ネコ白血病ウィル
スワクチンと組み合わせて、ts−FIPウィルスの免
疫原性サブユニントを用いて調製できる。該混合サブユ
ニットワクチンは以下の: ts−FIPウィルス(Tc r D50= l o
55)0.4mQ ネコ白血病ウィルスサブユニット(25−1000μg
)0.4m4 アジュバント(水酸化アルミニウム、サポニン)0.2
mf2 を組み合わせることができる。
成分サブユニットワクチンは免疫原性ネコ白血病ウィル
スワクチンと組み合わせて、ts−FIPウィルスの免
疫原性サブユニントを用いて調製できる。該混合サブユ
ニットワクチンは以下の: ts−FIPウィルス(Tc r D50= l o
55)0.4mQ ネコ白血病ウィルスサブユニット(25−1000μg
)0.4m4 アジュバント(水酸化アルミニウム、サポニン)0.2
mf2 を組み合わせることができる。
実施例7:ワクチンの2部位投与
ts−FIPウィルスワクチンはカリチウイルス、ネコ
ヘルペスウィルス、ネコジステンパーウィルス、ネコ白
血病ウィルスおよびクラミジア(ネコ肺炎)混合ワクチ
ンの非経口投与の時に鼻孔内投与することができる(鼻
孔光たり0.5m(i)。
ヘルペスウィルス、ネコジステンパーウィルス、ネコ白
血病ウィルスおよびクラミジア(ネコ肺炎)混合ワクチ
ンの非経口投与の時に鼻孔内投与することができる(鼻
孔光たり0.5m(i)。
各種成分の濃度は実施例4に記載の通りであるが、ts
−FIPは他のウィルス成分とは別に鼻孔内投与するこ
とができる。
−FIPは他のウィルス成分とは別に鼻孔内投与するこ
とができる。
Claims (28)
- (1)温度感受性(ts)ネコ感染性腹膜炎(FIP)
ウィルスの有効量よりなることを特徴とするひどい副作
用なくしてネコにおいてFIPウィルスによる感染に対
し免疫を誘導できる経口または鼻孔内投与用ネコ感染性
FIPワクチン。 - (2)該FIPウィルスが、罹患細胞中で該ウィルスを
継代することによって感染ネコの組織または器官から単
離したビルレントFIPウィルスの一連の継代によつて
弱毒化されたものであり、該継代数が少なくとも約60
であることを特徴とする特許請求の範囲第1項記載のワ
クチン。 - (3)該温度感受性FIPウィルスが30℃および35
℃の間で少なくとも60回のネコ腎臓細胞中での継代に
よって弱毒化されたことを特徴とする特許請求の範囲第
2項記載のワクチン。 - (4)該弱毒化FIPウィルスが、該FIPウィルスを
突然変異誘発剤に暴露することによって温度感受性とさ
れたことを特徴とする特許請求の範囲第2項記載のワク
チン。 - (5)該弱毒化FIPウィルスが、該FIPウィルスを
突然変異誘発剤に暴露することによって温度感受性とさ
れたことを特徴とする特許請求の範囲第3項記載のワク
チン。 - (6)該突然変異誘発剤が紫外線であることを特徴とす
る特許請求の範囲第4項記載のワクチン。 - (7)該突然変異誘発剤が紫外線であることを特徴とす
る特許請求の範囲第5項記載のワクチン。 - (8)該突然変異誘発が該FIPウィルスを紫外線に3
ないし5分間暴露することによって行われたことを特徴
とする特許請求の範囲第6項記載のウィルス。 - (9)該突然変異誘発が該FIPウィルスを紫外線に3
ないし5分間暴露することによって行われたことを特徴
とする特許請求の範囲第7項記載のウィルス。 - (10)該弱毒化温度感受性FIPウィルスが31℃お
よび39℃間で約1×10^2TCID_5_0の増殖
における差を示すことを特徴とする特許請求の範囲第4
項記載のワクチン。 - (11)該弱毒化温度感受性FIPウィルスが31℃お
よび39℃間で約1×10^2TCID_5_0の増殖
における差を示すことを特徴とする特許請求の範囲第5
項記載のワクチン。 - (12)1ml当たり温度感受性FIPウィルスの10
^2ないし10^7TCId_5_0を含有することを
特徴とする特許請求の範囲第5項記載のワクチン。 - (13)31℃で増殖させた場合、1mlあたりts−
FIPウィルスの10^5^.^5TCID_5_0を
含有することを特徴とする特許請求の範囲第12項記載
のワクチン。 - (14)1)罹患細胞中での高継代によってFIPを弱
毒化し; 2)該弱毒化されたFIPウィルスを突然変異誘発剤に
暴露し; 3)温度感受性である工程(2)からの弱毒化されたF
IPウィルスを培養し;次いで 4)該弱毒化されたts−FIPウィルスを収集するこ
とを特徴とするFIPウイルスに対するワクチンの製法
。 - (15)該FIPウィルスが弱毒化前にビルレントFI
Pに感染したネコの組織または器官から単離されたこと
を特徴とする特許請求の範囲第14項記載の製法。 - (16)該FIPウィルスがネコ腎臓細胞中で少なくと
も60回の継代によって弱毒化されたことを特徴とする
特許請求の範囲第14項記載の製法。 - (17)該FIPウィルスが高継代FIPウィルスを突
然変異誘発剤に暴露することによって温度感受性とされ
たことを特徴とする特許請求の範囲第14項記載の製法
。 - (18)該FIPウィルスが高継代ウィルスを紫外線に
3ないし5分間暴露することによって温度感受性とされ
たことを特徴とする特許請求の範囲第14項記載の製法
。 - (19)弱毒化された温度感受性FIPウィルスを経口
もしくは鼻孔内経路で投与することを特徴とするネコを
FIPに対して免疫化する方法。 - (20)弱毒化されたものであって温度感受性であるワ
クチン製造に有用なFIPウィルス。 - (21)31℃における増殖よりも低い約1×10^2
TCID_5_0である39℃での増殖を示すことを特
徴とする特許請求の範囲第20項記載のFIPウィルス
。 - (22)該FIPウィルスがネコ腎臓細胞での培養にお
ける複数回継代によって弱毒化されたことを特徴とする
特許請求の範囲第20項記載のFIPウィルス。 - (23)該FIPウィルスが突然変異誘発剤への暴露に
よって温度感受性とされたことを特徴とする特許請求の
範囲第20項記載のFIPウィルス。 - (24)該FIPウィルスが10^2ないし10^7T
CID_5_0の用量にてFIPによる感染に対しネコ
において免疫を誘導するのに有効であることを特徴とす
る特許請求の範囲第20項記載のFIPウィルス。 - (25)温度感受性FIPウィルスの10^2ないし1
0^7TCID_5_0を含有し、ネコに対し鼻孔内ま
たは経口投与するのに適した0.5ないし1.5mlの
液体よりなることを特徴とするFIPウィルスによる感
染に対し免疫を誘導するワクチン投与単位。 - (26)特許請求の範囲第1項記載のワクチンを経口ま
たは鼻孔内投与することを特徴とするネコの免疫化方法
。 - (27)ts−FIPウィルスの有効量およびもう1つ
の病原生物もしくはウィルスによる感染に対し保護する
1もしくはそれ以上の抗原の有効量よりなることを特徴
とするひどい副作用なくしてネコにおいてFIPウィル
スおよび1もしくはそれ以上の病原生物もしくはウィル
スによる感染に対し免疫を誘導できる経口もしくは鼻孔
内投与用混合ワクチン。 - (28)特許請求の範囲第27項記載の混合ワクチンを
経口または鼻孔内投与することを特徴とするネコの免疫
化方法。
Applications Claiming Priority (2)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
US10314487A | 1987-10-01 | 1987-10-01 | |
US103144 | 1987-10-01 |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPH01113321A true JPH01113321A (ja) | 1989-05-02 |
JP2608935B2 JP2608935B2 (ja) | 1997-05-14 |
Family
ID=22293621
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP63248942A Expired - Lifetime JP2608935B2 (ja) | 1987-10-01 | 1988-09-30 | ネコ感染性腹膜炎に対しネコを保護するワクチン |
Country Status (16)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0310362B1 (ja) |
JP (1) | JP2608935B2 (ja) |
KR (1) | KR890006255A (ja) |
AT (1) | ATE103496T1 (ja) |
AU (1) | AU620819B2 (ja) |
CA (1) | CA1337116C (ja) |
DE (1) | DE3888775T2 (ja) |
DK (1) | DK175715B1 (ja) |
ES (1) | ES2063048T3 (ja) |
FI (1) | FI94488C (ja) |
HU (1) | HU205264B (ja) |
IL (1) | IL87911A0 (ja) |
NO (1) | NO177555C (ja) |
NZ (1) | NZ226353A (ja) |
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NZ240558A (en) | 1990-11-14 | 1994-11-25 | Smithkline Beecham Corp | Recombinant feline coronavirus s proteins useful in diagnosis and vaccination against feline peritonitis virus disease |
JPH07504897A (ja) * | 1992-02-18 | 1995-06-01 | パーヘリオン コーポレーション | ネコ感染性腹膜炎ワクチンおよび調製方法 |
US5670156A (en) * | 1993-02-18 | 1997-09-23 | Parhelion Corporation | Feline infectious peritonitis vaccine and method of preparation |
TW377373B (en) * | 1993-09-22 | 1999-12-21 | Wyeth Corp | Recombinant raccoon pox viruses and their use as an effective vaccine against feline infectious peritonitis virus disease |
WO1998027433A1 (en) * | 1996-12-18 | 1998-06-25 | Engene Biotechnologies, Inc | A specific diagnostic for antibodies to feline infectious peritonitis virus |
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Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US4195130A (en) * | 1978-04-20 | 1980-03-25 | Cornell Research Foundation, Inc. | Propagation of feline infectious peritonitis virus in tissue cultures |
ES486442A0 (es) * | 1978-11-30 | 1980-12-16 | Wellcome Found | Un metodo de preparar una vacuna que contiene una cepa ate- nuada de virus de peritonitis infecciosa felina. |
US4303644A (en) * | 1979-10-16 | 1981-12-01 | Norden Laboratories, Inc. | Feline infectious peritonitis virus vaccines |
CA1303500C (en) * | 1986-02-06 | 1992-06-16 | Charles A. Baldwin | Feline infectious peritonitis vaccine |
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- 1988-09-28 DK DK198805406A patent/DK175715B1/da not_active IP Right Cessation
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- 1988-09-29 DE DE3888775T patent/DE3888775T2/de not_active Expired - Lifetime
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