JP7843666B2 - 硬質表面処理剤 - Google Patents
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Description
1)配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチドを有効成分とする、硬質表面処理剤。
2)配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、もしくは配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチド、又はこれを含有する酵素組成物を硬質表面と接触させる工程を含む、硬質表面処理方法。
3)配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、もしくは配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチド、又はこれを含有する酵素組成物を硬質表面と接触させる工程を含む、硬質表面への防菌性付与方法。
BLPは、配列番号1の595~1134位のヌクレオチド配列にコードされる、配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチドである。BLPは、ペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有する。
また、BLPと同等の機能を有するポリペプチドとしては、配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合分解活性を有するポリペプチドが挙げられる。BLPと同等の機能を有するポリペプチドの好ましい例としては、配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列であって、好ましくは配列番号2のアミノ酸配列の22位、121位及び123位に相当する位置にHis、36位に相当する位置にAspを有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合分解活性を有するポリペプチドが挙げられる。
尚、グリシン-グリシン結合分解活性の有無は、例えばオリゴグリシンペプチドやFret-GGGGG基質などの分解性を試験することで判定できる。ただしこの方法に限定されるものではない。
したがって、本発明のポリペプチドは、硬質表面に防菌性を付与するための硬質表面処理用酵素として有用であり、硬質表面処理剤、好ましくは防菌性を付与するための硬質表面処理剤となり得る。あるいは、本発明のポリペプチドは、硬質表面処理剤、好ましくは防菌性を付与するための硬質表面処理剤を製造するために使用することができる。
また、本発明のポリペプチドは、硬質表面処理のため、好ましくは防菌性を付与するための硬質表面処理のために使用することができる。例えば、対象の硬質表面に本発明のポリペプチドを接触させることにより、該硬質表面に防菌性を付与することができる。
防菌活性は、当該技術分野において周知の方法を用いて評価され得る。例えば、硬質表面を有するテストピースを目的のポリペプチドを含む溶液に所定時間浸漬して該ポリペプチドと接触させ、該テストピースを試験菌を含む試験液に所定時間浸漬して該試験菌と接触させ、次いで、該テストピースより該試験菌を抽出し、適当な固形培地にて培養し、生じたコロニー数を測定して該テストピースに付着した生菌数を算出することによって評価できる。
好適には、硬質表面処理剤は、細菌が存在している、細菌が存在している可能性がある、又は細菌が付着する可能性がある無生物対象物の硬質表面の防菌化等の処理に使用される製品や製剤となり、或いは当該製品や製剤に防菌化のための素材として使用される。
また、硬質表面としては、定期的若しくは不定期に水に接触する環境にある硬質表面、又は定期的若しくは不定期に乾燥する環境にある硬質表面が好ましい。本発明の硬質表面処理剤による硬質表面に対する防菌作用は、斯かる環境下であっても維持される。ここで、「環境」は、硬質表面をとりまく外部条件を指し、自然発生的な環境だけでなく、意図的な行為により生じる環境をも包含する。よって、「水に接触する環境にある硬質表面」とは、自然の存在状態において水に接触することがある硬質表面、又は使用者の意図により水に接触することがある硬質表面であり得、「乾燥する環境にある硬質表面」とは、自然の存在状態において乾燥することがある硬質表面、又は使用者の意図により乾燥することがある硬質表面であり得る。
本発明のポリペプチドと硬質表面の接触の態様は、硬質表面の形状や素材の種類によって適宜選択すればよく、処理時間、酵素の使用量も処理の態様に応じて任意に設定することができる。例えば、硬質表面に、本発明のポリペプチドを含む溶液を塗布、噴霧又は散布し、一定時間(例えば10秒以上3時間以下)放置すること、或いは当該溶液に硬質表面を浸漬し、一定時間(例えば10秒以上3時間以下)放置することが挙げられる。接触後の硬質表面は、水などの媒体により洗浄又はすすぎをしてもよく、さらに、乾燥させてもよい。洗浄回数は、特に制限されないが、例えば、少なくとも1回であり、好ましくは4回以下、より好ましくは2回以下である。乾燥の態様としては、特に制限されず、自然乾燥であっても、加熱乾燥であってもよい。
<1>配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチドを有効成分とする、硬質表面処理剤。
<2>防菌性を付与するための硬質表面処理剤である、<1>記載の硬質表面処理剤。
<3>前記硬質表面が好ましくはプラスチック表面、金属表面又はこれらの組み合わせであり、より好ましくはプラスチック表面、ステンレス表面又はこれらの組み合わせである、<1>又は<2>記載の硬質表面処理剤。
<4>前記防菌性がグラム陽性菌に対する防菌性である、<1>~<3>のいずれか1項記載の硬質表面処理剤。
<5>前記硬質表面が定期的又は不定期に水に接触する環境にある硬質表面である、<1>~<4>のいずれか1項記載の硬質表面処理剤。
<6>前記硬質表面が定期的又は不定期に乾燥する環境にある硬質表面である、<1>~<4>のいずれか1項記載の硬質表面処理剤。
<7>配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、もしくは配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチド、又はこれを含有する酵素組成物を硬質表面と接触させる工程を含む、硬質表面処理方法。
<8>配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、もしくは配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチド、又はこれを含有する酵素組成物を硬質表面と接触させる工程を含む、硬質表面への防菌性付与方法。
<9>前記硬質表面が好ましくはプラスチック表面、金属表面又はこれらの組み合わせであり、より好ましくはプラスチック表面、ステンレス表面又はこれらの組み合わせである、<7>又は<8>記載の方法。
<10>前記ポリペプチド又はこれを含有する酵素組成物を前記硬質表面と好ましくは10秒以上、より好ましくは1分以上、さらに好ましくは5分以上、さらにより好ましくは10分以上接触させる工程を含む、<7>~<9>のいずれか1項記載の方法。
<11>前記ポリペプチド又はこれを含有する酵素組成物を前記硬質表面と、該ポリペプチドとして好ましくは1ppm以上、より好ましくは5ppm以上、さらに好ましくは10ppm以上の濃度で接触させる工程を含む、<7>~<10>のいずれか1項記載の方法。
<12>前記ポリペプチド又はこれを含有する酵素組成物を含む溶液を前記硬質表面に塗布、噴霧又は散布する工程を含む、<7>~<11>のいずれか1項記載の方法。
<13>前記ポリペプチド又はこれを含有する酵素組成物を含む溶液に前記硬質表面を浸漬する工程を含む、<7>~<11>のいずれか1項記載の方法。
<14>前記防菌性がグラム陽性菌に対する防菌性である、<8>~<13>のいずれか1項記載の方法。
<15>前記硬質表面が定期的又は不定期に水に接触する環境にある硬質表面である、<7>~<14>のいずれか1項記載の方法。
<16>前記硬質表面が定期的又は不定期に乾燥する環境にある硬質表面である、<7>~<14>のいずれか1項記載の方法。
<17>硬質表面処理剤を製造するための、好ましくは防菌性を付与するための硬質表面処理剤を製造するための、配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチドの使用。
<18>硬質表面処理のための、好ましくは硬質表面に防菌性を付与するための、配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも80%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチドの使用。
<19>前記硬質表面が定期的又は不定期に水に接触する環境にある硬質表面である、<17>又は<18>記載の使用。
<20>前記硬質表面が定期的又は不定期に乾燥する環境にある硬質表面である、<17>又は<18>記載の使用。
(1)酵素調製
配列番号2のアミノ酸配列から成るBLPを特願2020-182945の実施例1に記載の方法で培養及び精製をして調製した。リゾチーム(富士フイルム和光純薬、129-06723)、リゾスタフィン(富士フイルム和光純薬、120-06611)は20mM Tris-HCl(pH7.5)に溶解した。酵素溶液の濃度測定にはDCプロテインアッセイキット(Bio-Rad)を用いた。タンパク質量算出のための標準液にはBSA Standard Solution(富士フイルム和光純薬)を用いた。
試験菌としてStaphylococcus aureus NCTC8325を用いた。SCD液体培地はSCD培地「ダイゴ」,一般細菌検査用(富士フイルム和光純薬)を、SCD寒天培地はSCD寒天培地「ダイゴ」,一般細菌検査用(富士フイルム和光純薬)を、LP希釈液はLP希釈液「ダイゴ」(富士フイルム和光純薬)を、バッファーは20mM Tris-HCl(pH7.5)を用いた。終濃度1ppmの各酵素(BLP、リゾスタフィン)を含むバッファーを試験液として用いた。SCD液体培地中で37℃、一晩振盪培養した試験菌を回収してバッファーで洗浄・再懸濁し、108-9CFU/mLに調製した。各試験液500μLに対して菌液を5μL添加し、30℃で30分間インキュベートした。試験液をLP希釈液で段階希釈し、100μLずつSCD寒天培地に塗布した。37℃、24時間インキュベートした後、コロニーを数えることで試験液1mL中に含まれる生菌数(CFU/mL)を算出した。
BLPとリゾスタフィンはバッファー中において同程度の黄色ブドウ球菌殺菌活性を示した(図1)。
試験菌としてMicrococcus luteusを用いた。バッファーは20mM Tris-HCl(pH7.5)を用いた。ポリスチレン製12穴プレート(CORNING、351143)の各ウェルにバッファーで10ppmに希釈したBLP溶液を1mLずつ分注した。1×15×15mmのSUS430テストピース(エンジニアリングテストサービス)を各ウェルに1枚ずつ入れて室温で10分間浸漬した。テストピースの水分を切ってバッファーを2mLずつ分注した新しい12穴プレートに移し、2分間軽く振盪した。再度、テストピースの水分を切ってバッファーを2mLずつ分注した新しい12穴プレートに移し、2分間軽く振盪した後、テストピースを回収した。SCD寒天培地上で37℃、一晩振盪培養した試験菌を回収してバッファーで洗浄・再懸濁し、およそ108CFU/mLに調製した。新しい12穴プレートに上記の菌液を1.5mLずつ分注し、酵素浸漬処理済みのテストピースを1枚ずつ入れた。室温で15分間静置した後、テストピースの水分を切ってバッファーを2mLずつ分注した新しい12穴プレートに移し、1分間軽く振盪した。再度、テストピースの水分を切ってバッファーを2mLずつ分注した新しい12穴プレートに移し、1分間軽く振盪した。7mLのLP希釈液を入れた50mLチューブにテストピースを1枚ずついれて30分間の超音波処理により菌を抽出した。抽出液をLP希釈液で段階希釈し、100μLずつSCD寒天培地に塗布した。37℃、24時間インキュベートした後、コロニーを数えることでテストピース1枚に付着した生菌数(CFU/piece)を算出した。
あらかじめBLPに浸漬したテストピースは、バッファーのみに浸漬したテストピースと比較して付着生菌数が大幅に減少した(図2)。
テストピースの酵素溶液への浸漬時間を1、5、10、30分間に変更した以外は(3)と同様にして細菌付着抑制試験を行った。
BLPは1分間の浸漬でもバッファーのみに浸漬した場合と比較して付着生菌数をおよそ90%減少させた(図3)。
浸漬酵素濃度を20ppmに変更し、酵素浸漬後のテストピースとして以下の4条件で処理したものを用いた以外は(3)と同様にして細菌付着抑制試験を行った。
条件1:すすぎ2回((3)と同条件)
条件2:すすぎ4回
条件3:すすぎ2回後にテストピースを室温で3時間乾燥
条件4:すすぎ2回後にテストピースを室温で21時間乾燥
BLPに浸漬したテストピースは、4回のすすぎや21時間の乾燥後にも付着生菌数減少効果を維持していた(図4)。
試験菌をStaphylococcus aureus NCTC8325に、浸漬酵素濃度を20ppmに変更した以外は(3)と同様にして細菌付着抑制試験を行った。
BLPに浸漬したテストピースは、黄色ブドウ球菌に対しても付着生菌数減少効果を示した(図5)。
バッファーを、市販衣料洗剤(アタックZERO、花王)を水道水で3000倍に希釈した液に変更した以外は(3)と同様にして細菌付着抑制試験を行った。
BLPの付着生菌数減少効果は、界面活性剤を含む水溶液中でも維持された(図6)。
試験菌をStaphylococcus aureus NCTC8325に、浸漬酵素濃度を20ppmに変更し、酵素としてBLP、リゾスタフィン又はリゾチームを用いた以外は(3)と同様にして細菌付着抑制試験を行った。
BLPは最も大きい付着生菌数減少効果を示した(図7)。
試験菌としてStaphylococcus aureus NCTC8325を用いた。バッファーは20mM Tris-HCl(pH7.5)を用いた。ポリスチレン製12穴プレート(CORNING、351143)の各ウェルにバッファーで10ppmに希釈した酵素溶液を1mLずつ分注し、室温で10分間浸漬した。ピペットでウェルの溶液をすべて除去し、バッファーを2mLずつ分注して2分間軽く振盪した。再度、ピペットでウェルの溶液をすべて除去し、バッファーを2mLずつ分注して2分間軽く振盪した後、ピペットでウェルの溶液をすべて除去した。SCD寒天培地上で37℃、一晩振盪培養した試験菌を回収してバッファーで洗浄・再懸濁し、およそ108CFU/mLに調製した。酵素処理済みの12穴プレートに上記の菌液を1.5mLずつ分注した。室温で15分間静置した後、ピペットでウェルの溶液をすべて除去し、バッファーを2mLずつ分注して2分間軽く振盪した。再度、ピペットでウェルの溶液をすべて除去し、バッファーを2mLずつ分注して2分間軽く振盪した。ピペットでウェルの溶液をすべて除去し、LP希釈液を2mLずつ分注してシールで密閉し、30分間の超音波処理により菌を抽出した。抽出液をLP希釈液で段階希釈し、100μLずつSCD寒天培地に塗布した。37℃、24時間インキュベートした後、コロニーを数えることで各ウェルに付着した生菌数(CFU/well)を算出した。
BLPはポリスチレンに対しても付着生菌数減少効果を示し、その効果は非特許文献2に示されるリゾスタフィンの効果よりも大きかった(図8)。
Claims (4)
- 配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも90%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチドを有効成分とする、硬質表面におけるグラム陽性細菌の付着抑制剤。
- 配列番号2のアミノ酸配列からなるポリペプチド、もしくは配列番号2のアミノ酸配列と少なくとも90%の同一性を有するアミノ酸配列からなり、かつペプチド配列中のグリシン-グリシン結合の分解活性を有するポリペプチド、又はこれを含有する酵素組成物を硬質表面と接触させる工程を含む、硬質表面へのグラム陽性細菌の付着抑制方法。
- 前記硬質表面が定期的又は不定期に水に接触する環境にある硬質表面である、請求項2記載の方法。
- 前記硬質表面が定期的又は不定期に乾燥する環境にある硬質表面である、請求項2記載の方法。
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