JP7553993B1 - 発光タンパク質 - Google Patents
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Abstract
【課題】複数の波長域で高光度に発光する、発光タンパク質を提供する。【解決手段】バクテリアルシフェラーゼと蛍光タンパク質との複合体を含み、前記バクテリアルシフェラーゼはＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットを有し、前記蛍光タンパク質はＬｕｘＡサブユニットを介してバクテリアルシフェラーゼと融合している、発光タンパク質。【選択図】なし
Description
本発明は、発光バクテリア由来のルシフェラーゼを含む発光タンパク質に関する。
ルシフェラーゼと呼ばれる触媒酵素により発光基質が酸化される発光現象のうち、生物内にて起こるものは生物発光と分類される。生物発光を示す生物は数千種類知られており、その中には、ルシフェラーゼ及び発光基質が同定されており、これらは、例えば、遺伝子工学にて光を指標として細胞中のタンパク質等を定量する目的で使用されている。
真正細菌（細菌、バクテリア）には、発光を生じる種（発光バクテリア）が複数存在する。発光バクテリアにおける光生成は、バクテリア由来のルシフェラーゼによって触媒される、基質の酵素反応によって生じる（非特許文献１及び２）。バクテリア由来のルシフェラーゼは、具体的には、還元フラビンモノヌクレオチド（ＦＭＮＨ２）及び長鎖脂肪アルデヒド（ＲＣＨＯ）を酸化して、フラビンモノヌクレオチド（ＦＭＮ）及び対応する長鎖脂肪酸（ＲＣＯＯＨ）を生成するが、この反応時に、４９０ｎｍ付近に極大波長を有する光が発生する。
発光バクテリアの発光に必要な基本的な酵素は、ｌｕｘＣＤＡＢＥという単一のオペロン（ｌｕｘオペロン）によってコードされており、このオペロンは、発光バクテリアのすべての種に見られる（非特許文献１及び２）。ｌｕｘＡ及びｌｕｘＢは、それぞれ、バクテリアルシフェラーゼのヘテロ二量体タンパク質のα（ＬｕｘＡ）サブユニット及びβ（ＬｕｘＢ）サブユニットをコードする。ｌｕｘＣ、ｌｕｘＤ及びｌｕｘＥは、ルシフェラーゼの基質である脂肪アルデヒドを合成し、再循環させるための複合体をコードする遺伝子である。発光バクテリア以外の細菌又は酵母細胞で、上記の５つのｌｕｘ遺伝子を共発現することにより、外部からの基質の供給を要することなく、自発的な発光現象（自発光）を示すことが観察された（非特許文献３及び４）。哺乳動物細胞又は植物細胞においては、上記の５つのｌｕｘ遺伝子に加えて、ＦＭＮオキシドレダクターゼ（ＬｕｘＧ）を共発現させることで、十分な量のＦＭＮＨ２を生成することができ、これにより、安定な生物発光が可能となる（非特許文献５－８）。
生物発光イメージングは、蛍光タンパク質によるイメージングとは異なり、外部からの励起光を必要としないため、光毒性、光退色、試料由来の蛍光バックグラウンド等の問題が活性し難い、という利点を有する。特に、バクテリアルシフェラーゼに基づくレポーターは、シグナル対ノイズ比（Ｓ／Ｎ比）が高く、かつ取り扱いが容易である、という利点も有する。また、励起光のスペクトル分析への干渉が生じないため、蛍光タンパク質よりも広いスペクトル範囲の解析が可能である。一方で、バクテリア由来の生物発光イメージングは、低輝度である、露光時間が長い、といった課題があり、その利用が制限されてきた（非特許文献９及び１０）。
非特許文献１１には、バクテリア由来のＬｕｘＢと円順列変異を導入した黄色蛍光タンパク質Ｖｅｎｕｓとを融合することにより、細胞内で生物発光共鳴エネルギー移動（ｂｉｏｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｃｅ ｒｅｓｏｎａｎｃｅ ｅｎｅｒｇｙ ｔｒａｎｓｆｅｒ（ＢＲＥＴ））を生じさせ、Ｌｕｘ単独と比較して、短時間で１０倍もの発光強度を達成できたことが記載されている。さらに、これを植物細胞及び動物細胞に導入することで、これらの細胞においても高光度化を達成したことも明らかにされた。
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上記の通り、バクテリア由来のｌｕｘオペロンを利用し、さらに蛍光タンパク質ＶｅｎｕｓをｌｕｘＢと融合させることで、細胞内において高光度で自発光可能な発光タンパク質を構築できることが示された。この系で発生する光は、黄緑色（極大波長５２８ｎｍ）であるが、複数種のレポーターを要する細胞実験等に使用するには、異なる波長の光を発する複数種の発光タンパク質の存在が望まれる。
本発明は、複数の波長域で高光度に発光する、発光タンパク質を提供することを目的とする。また、本発明は、複数の波長域で高光度に発光する発光タンパク質について、これをコードする核酸、該核酸を組み込んだベクター、及び該核酸を組み込んだ細胞を提供することを目的とする。
本発明は、以下を提供する。
［１］バクテリアルシフェラーゼと蛍光タンパク質との複合体を含み、前記バクテリアルシフェラーゼはＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットを有し、前記蛍光タンパク質はＬｕｘＡサブユニットと融合している、発光タンパク質。
［２］前記ＬｕｘＡサブユニットが、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドである、［１］に記載の発光タンパク質。
［３］前記ＬｕｘＢサブユニットが、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドである、［１］又は［２］に記載の発光タンパク質。
［４］前記蛍光タンパク質が、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択される、［１］～［３］のいずれかに記載の発光タンパク質。
［５］前記シアン蛍光タンパク質が、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；前記緑色蛍光タンパク質が、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；前記黄色蛍光タンパク質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号５で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５２０～５５０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；前記橙色蛍光タンパク質が、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号６で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５５０～５８０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；又は、前記赤色蛍光タンパク質が、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である、［４］に記載の発光タンパク質。
［６］バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を含む、核酸。
［７］さらに、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＢをコードする塩基配列を含む、［６］に記載の核酸。
［８］［６］又は［７］に記載の核酸が組み込まれた、発現用ベクター。
［９］バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸が導入された、細胞。
［１０］細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞である、［９］に記載の細胞。
［１１］バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸を発現させることを含む、発光タンパク質の製造方法。
［１］バクテリアルシフェラーゼと蛍光タンパク質との複合体を含み、前記バクテリアルシフェラーゼはＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットを有し、前記蛍光タンパク質はＬｕｘＡサブユニットと融合している、発光タンパク質。
［２］前記ＬｕｘＡサブユニットが、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドである、［１］に記載の発光タンパク質。
［３］前記ＬｕｘＢサブユニットが、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と５０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドである、［１］又は［２］に記載の発光タンパク質。
［４］前記蛍光タンパク質が、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択される、［１］～［３］のいずれかに記載の発光タンパク質。
［５］前記シアン蛍光タンパク質が、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；前記緑色蛍光タンパク質が、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；前記黄色蛍光タンパク質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号５で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５２０～５５０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；前記橙色蛍光タンパク質が、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号６で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５５０～５８０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である；又は、前記赤色蛍光タンパク質が、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と６０％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である、［４］に記載の発光タンパク質。
［６］バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を含む、核酸。
［７］さらに、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＢをコードする塩基配列を含む、［６］に記載の核酸。
［８］［６］又は［７］に記載の核酸が組み込まれた、発現用ベクター。
［９］バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸が導入された、細胞。
［１０］細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞である、［９］に記載の細胞。
［１１］バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸を発現させることを含む、発光タンパク質の製造方法。
本発明によれば、複数の波長域で高光度に発光する、複数種の発光タンパク質を提供することが可能である。また、本発明によれば、複数の波長域で高光度に発光する発光タンパク質について、これをコードする核酸、該核酸を組み込んだベクター、及び該核酸を組み込んだ細胞を提供することが可能である。
１．定義・構成
本明細書において「発光タンパク質」とは、酵素反応により特定の基質に発光を伴う反応を生じさせるタンパク質を指し、「化学発光タンパク質」とも称されるものをいう。本明細書において、「シアン発光タンパク質（Ｃｙａｎ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＣＮＬＸ））」とは、極大波長が４５０～５００ｎｍ（４５０ｎｍ以上５００ｎｍ未満、以下同様）にある光を発するタンパク質を指す。本明細書において、「緑色発光タンパク質（Ｇｒｅｅｎ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＧＮＬＸ））」とは、極大波長が５００～５２０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。本明細書において、「黄色発光タンパク質（Ｙｅｌｌｏｗ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＹＮＬＸ））」とは、極大波長が５２０～５５０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。本明細書において、「橙色発光タンパク質（Ｏｒａｎｇｅ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＯＮＬＸ））」とは、極大波長が５５０～５８０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。本明細書において、「赤色発光タンパク質（Ｒｅｄ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＲＮＬＸ））」とは、極大波長が５８０～６２０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。
本明細書において「発光タンパク質」とは、酵素反応により特定の基質に発光を伴う反応を生じさせるタンパク質を指し、「化学発光タンパク質」とも称されるものをいう。本明細書において、「シアン発光タンパク質（Ｃｙａｎ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＣＮＬＸ））」とは、極大波長が４５０～５００ｎｍ（４５０ｎｍ以上５００ｎｍ未満、以下同様）にある光を発するタンパク質を指す。本明細書において、「緑色発光タンパク質（Ｇｒｅｅｎ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＧＮＬＸ））」とは、極大波長が５００～５２０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。本明細書において、「黄色発光タンパク質（Ｙｅｌｌｏｗ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＹＮＬＸ））」とは、極大波長が５２０～５５０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。本明細書において、「橙色発光タンパク質（Ｏｒａｎｇｅ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＯＮＬＸ））」とは、極大波長が５５０～５８０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。本明細書において、「赤色発光タンパク質（Ｒｅｄ Ｎａｎｏ－Ｌａｎｔｅｒｎ ｂａｓｅｄ ｏｎ Ｌｕｘ（ＲＮＬＸ））」とは、極大波長が５８０～６２０ｎｍにある光を発光するタンパク質を指す。
本明細書において、「蛍光タンパク質」とは、特定の波長を有する励起光の照射により蛍光を発する蛍光タンパク質を指す。本明細書の蛍光タンパク質は、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択される。本明細書において、「シアン蛍光タンパク質」とは、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光タンパク質を指す。シアン蛍光タンパク質は、この範囲の蛍光を発する蛍光タンパク質であれば、特に限定されないが、例えば、ｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２（励起波長４３４ｎｍ、極大蛍光波長４７４ｎｍ）等を使用することができる。本明細書において、「緑色蛍光タンパク質」とは、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光タンパク質を指す。この範囲の蛍光を発する蛍光タンパク質であれば特に限定されないが、例えば、ｓｆＧＦＰ（極大蛍光波長５１０ｎｍ）、Ｇａｍｉｌｌｕｘ（励起波長５０４ｎｍ、極大蛍光波長５１９ｎｍ）等を使用することができる。本明細書において、「黄色蛍光タンパク質」とは、極大蛍光波長が５２０～５５０ｎｍにある蛍光タンパク質を指す。黄色蛍光タンパク質は、この範囲の蛍光を発する蛍光タンパク質であれば、特に限定されないが、例えば、Ｖｅｎｕｓ（励起波長５１５ｎｍ、極大蛍光波長５２８ｎｍ）等を使用することができる。本明細書において、「橙色蛍光タンパク質」とは、極大蛍光波長が５５０～５８０ｎｍにある蛍光タンパク質を指す。橙色蛍光タンパク質は、この範囲の蛍光を発する蛍光タンパク質であれば、特に限定されないが、例えば、ｍＫＯκ（励起波長５５１ｎｍ、極大蛍光波長５６３ｎｍ）等を使用することができる。本明細書において、「赤色蛍光タンパク質」とは、蛍光の極大波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光タンパク質を指す。赤色蛍光タンパク質は、この範囲の蛍光を発する蛍光タンパク質であれば、特に限定されないが、例えば、ｍＳｃａｒｌｅｔ－Ｉ（励起波長５６９ｎｍ、極大蛍光波長５９４ｎｍ）等を使用することができる。
本明細書において、「バクテリアルシフェラーゼ」とは、発光バクテリアの発現するルシフェラーゼを指す。より具体的には、「バクテリアルシフェラーゼ」は、ＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットの２つのサブユニットの複合体を含む酵素を指す。ここでいう「発光バクテリア」は、化学発光する性質を有する細菌を指し、より具体的には、ゲノム中にｌｕｘオペロンを有する細菌を指す。発光バクテリアとしては、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓ、Ｐｈｏｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｉｏｇｎａｔｈｉ、Ｐｈｏｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｐｈｏｓｐｈｏｒｅｕｍ、Ｖｉｂｒｉｏ ｆｉｓｃｈｅｒｉ等が知られているが、いずれも本明細書の「発光バクテリア」に包含される。
本明細書において、「核酸」とは、デオキシリボ核酸（ＤＮＡ）又はリボ核酸（ＲＮＡ）を指すが、本明細書においては、特に記載のない限り、ＤＮＡを指すものとする。
本明細書において、「ｌｕｘオペロン」とは、発光バクテリアの自発光に関連する遺伝子群であって、具体的には、ｌｕｘＣ－ｌｕｘＤ－ｌｕｘＡ－ｌｕｘＢ－ｌｕｘＥの構造を有するオペロンを指す。さらに、ｌｕｘＥの後ろにｌｕｘＧが連結される場合もある。図１に、発光バクテリアのｌｕｘオペロンと、自発光のメカニズムとの関係を示す。ｌｕｘＤは、細胞内の脂肪アシル－アシルキャリアタンパク質（ＡＣＰ）を還元して脂肪酸を生じさせる酵素をコードする。ｌｕｘＥは、脂肪酸からアシル酵素中間体を生成する酵素をコードする。ｌｕｘＣは、アシル酵素中間体からルシフェラーゼの基質となる脂肪アルデヒドを合成する酵素をコードする。ｌｕｘＡ及びｌｕｘＢは、それぞれルシフェラーゼの２つのサブユニット、ＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットをコードする。ルシフェラーゼは、脂肪アルデヒド、還元フラビンモノヌクレオチド（ＦＭＮＨ２）を酸化して、脂肪酸とＦＭＮとを生成するが、その際に光を発する。ｌｕｘＧは、ＦＭＮを還元する酵素をコードする。上記の通り、ｌｕｘオペロンは、発光基質の酸化と再循環を行い、これにより細胞内での自発光を可能とする。
本明細書において、「配列同一性」とは、２つのアミノ酸配列または塩基配列にギャップを導入して、又はギャップを導入しないで整列させた場合の、最適なアラインメントにおいて、オーバーラップする全アミノ酸配列（翻訳開始点となるアミノ酸を含む）又は塩基配列（開始コドンを含む）に対する同一アミノ酸又は塩基の割合（パーセンテージ）を意味し、式（１）によって算出する。配列同一性は、この分野で汎用されているアルゴリズムであるＢＬＡＳＴ（Ｂａｓｉｃ Ｌｏｃａｌ Ａｌｉｇｎｍｅｎｔ Ｓｅａｒｃｈ Ｔｏｏｌ）を用いて容易に調べることができる。例えばＢＬＡＳＴは、ＮＣＢＩ（Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｒｍａｔｉｏｎ）やＫＥＧＧ（Ｋｙｏｔｏ Ｅｎｃｙｃｌｏｐｅｄｉａ ｏｆ Ｇｅｎｅｓ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅｓ）などのウェブサイトから誰でも利用可能であり、デフォルトのパラメーターを用いて容易に配列同一性を調べることができる。
配列同一性（％）＝一致数（ギャップ同士は無視する）／短いほうの配列長（ギャップを含まない長さ）×１００・・・式（１）
配列同一性（％）＝一致数（ギャップ同士は無視する）／短いほうの配列長（ギャップを含まない長さ）×１００・・・式（１）
２．発光タンパク質
本発明の第１の実施形態は、発光タンパク質である。本実施形態の発光タンパク質は、バクテリアルシフェラーゼと蛍光タンパク質との複合体を含み、前記バクテリアルシフェラーゼはＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットを有し、前記蛍光タンパク質はＬｕｘＡサブユニットと融合している、ことを特徴とする。
本発明の第１の実施形態は、発光タンパク質である。本実施形態の発光タンパク質は、バクテリアルシフェラーゼと蛍光タンパク質との複合体を含み、前記バクテリアルシフェラーゼはＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットを有し、前記蛍光タンパク質はＬｕｘＡサブユニットと融合している、ことを特徴とする。
図２に、本発明の発光タンパク質の一例の立体構造図を示す。本実施形態の発光タンパク質は、蛍光タンパク質と融合したＬｕｘＡサブユニットと、ＬｕｘＢサブユニットとの複合体を含む。ＬｕｘＡサブユニットとＬｕｘＢサブユニットの複合体は、バクテリアルシフェラーゼとしての機能、すなわち、基質（ルシフェリン）を酸化し、その際に発光を生じる機能を有する。バクテリアルシフェラーゼのみであっても発光を生じるが、本発明者らは、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡサブユニットに蛍光タンパク質を融合させると、さらに強い発光を生じる機能を有することを見出した。これは、ルシフェラーゼの働きにより生じた光を受けて、蛍光タンパク質においてＢＲＥＴが生じたためと考えられる。さらに、本発明者らは、ＬｕｘＡサブユニットと融合させる蛍光タンパク質を他の蛍光波長領域の蛍光タンパク質に変更しても、同様にＢＲＥＴが生じることを見出した。すなわち、本実施形態の発光タンパク質は、広い波長領域の光を生成することが可能である。
本実施形態において、ＬｕｘＡサブユニットは、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と５０％以上、特に、６０％以上、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであることが好ましい。配列番号１で表されるアミノ酸配列は、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのＬｕｘＡサブユニットのアミノ酸配列と同一である。配列番号１で表されるアミノ酸配列と５０％以上（特に、６０％以上、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上）の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドは、ＬｕｘＡサブユニットとして機能する、つまり、ＬｕｘＢサブユニットと複合体を形成することで、ルシフェラーゼとして機能するポリペプチドであることが好ましい。
図３に、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのＬｕｘＡサブユニット（配列番号１）と、Ｐｈｏｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｉｏｇｎａｔｈｉのＬｕｘＡサブユニット（配列番号９）のアミノ酸配列のアラインメントを示す。両配列の配列相同性は、６２．７％である。
本実施形態において、ＬｕｘＢサブユニットは、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と５０％以上、特に、６０％以上、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであることが好ましい。配列番号２で表されるアミノ酸配列は、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのＬｕｘＢサブユニットのアミノ酸配列と同一である。配列番号２で表されるアミノ酸配列と５０％以上（特に、６０％以上、７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上）の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドは、ＬｕｘＢサブユニットとして機能する、つまり、ＬｕｘＡサブユニットと複合体を形成することで、ルシフェラーゼとして機能するポリペプチドであることが好ましい。
図４に、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのＬｕｘＢサブユニット（配列番号２）と、Ｐｈｏｔｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｌｅｉｏｇｎａｔｈｉのＬｕｘＢサブユニット（配列番号１０）のアミノ酸配列のアラインメントを示す。両配列の配列相同性は、５１．７％である。
本実施形態において、ＬｕｘＡと融合させる蛍光タンパク質は、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択される、いずれかの蛍光タンパク質であることが好ましい。シアン蛍光タンパク質は、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発するタンパク質であれば特に限定されないが、例えば、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド（ｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２ΔＣ１０）、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と６０％以上、特に７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体とすることができる。緑色蛍光タンパク質は、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発するタンパク質であれば特に限定されないが、例えば、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド（ｓｆＧＦＰΔＣ１０）、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と６０％以上、特に７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体とすることができる。黄色蛍光タンパク質は、極大蛍光波長が５２０～５５０ｎｍにある蛍光を発するタンパク質であれば特に限定されないが、例えば、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド（ＶｅｎｕｓΔＣ１０）、若しくは配列番号５で表されるアミノ酸配列と６０％以上、特に７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５２０～５５０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体とすることができる。橙色蛍光タンパク質は、極大蛍光波長が５５０～５８０ｎｍにある蛍光を発するタンパク質であれば特に限定されないが、例えば、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド（ｍＫＯκ）、若しくは配列番号６で表されるアミノ酸配列と６０％以上、特に７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５５０～５８０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体とすることができる。赤色蛍光タンパク質は、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発するタンパク質であれば特に限定されないが、例えば、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド（ｍＳｃａｒｌｅｔ－ＩΔＣ１０）、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と６０％以上、特に７０％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上又は９９％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体とすることができる。なお、本明細書において「ΔＣ１０」は、既知のアミノ酸配列より、Ｃ末端側の１０アミノ酸を欠失していることを指す。
ＬｕｘＡとシアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質又は赤色蛍光タンパク質との融合体とＬｕｘＢとが複合体を形成することで、それぞれ、シアン発光タンパク質（ＣＮＬＸ）、緑色発光タンパク質（ＧＮＬＸ）、黄色発光タンパク質（ＹＮＬＸ）、橙色発光タンパク質（ＯＮＬＸ）又は赤色発光タンパク質（ＲＮＬＸ）を形成する。
３．核酸
本発明の第２の実施形態は、発光タンパク質を発現するための核酸である。本実施形態の核酸は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を含む、ことを特徴とする。本実施形態の核酸は、同一核酸分子内に、又は別の核酸分子として、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＢサブユニットをコードする塩基配列を含むことが好ましい。本実施形態の核酸は、ＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体と、ＬｕｘＢサブユニットとを一細胞内で共発現するために使用され、これにより、細胞内での第１の実施形態に記載の発光タンパク質の発現を可能とする。
本発明の第２の実施形態は、発光タンパク質を発現するための核酸である。本実施形態の核酸は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を含む、ことを特徴とする。本実施形態の核酸は、同一核酸分子内に、又は別の核酸分子として、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＢサブユニットをコードする塩基配列を含むことが好ましい。本実施形態の核酸は、ＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体と、ＬｕｘＢサブユニットとを一細胞内で共発現するために使用され、これにより、細胞内での第１の実施形態に記載の発光タンパク質の発現を可能とする。
ＬｕｘＡをコードする遺伝子の塩基配列は、組み込まれる宿主に合わせて最適化してもよい。例えば、大腸菌に組み込まれる場合、配列番号１で表されるアミノ酸配列を有するＬｕｘＡをコードする遺伝子（ｌｕｘＡ）は、配列番号１１で表される塩基配列を有してもよい。また、配列番号９で表されるアミノ酸配列を有するＬｕｘＡをコードする遺伝子（ｌｕｘＡ）は、配列番号１９で表される塩基配列を有してもよい。この場合、配列番号１９の塩基配列を有する遺伝子は、配列番号１１の塩基配列を有する遺伝子のオーソログに相当する。すなわち、本発明の方法において、ＬｕｘＡは、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのＬｕｘＡサブユニットをコードする遺伝子のオーソログがコードするタンパク質であってもよい。
ＬｕｘＢをコードする遺伝子の塩基配列は、組み込まれる宿主に合わせて最適化してもよい。例えば、大腸菌に組み込まれる場合、配列番号２で表されるアミノ酸配列を有するＬｕｘＢをコードする遺伝子（ｌｕｘＢ）は、配列番号１２で表される塩基配列を有してもよい。また、配列番号１０で表されるアミノ酸配列を有するＬｕｘＢをコードする遺伝子（ｌｕｘＢ）は、配列番号２０で表される塩基配列を有してもよい。この場合、配列番号２０の塩基配列を有する遺伝子は、配列番号１２の塩基配列を有する遺伝子のオーソログに相当する。すなわち、本発明の方法において、ＬｕｘＢは、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのＬｕｘＢサブユニットをコードする遺伝子のオーソログがコードするタンパク質であってもよい。
蛍光タンパク質をコードする遺伝子（蛍光タンパク質遺伝子）の塩基配列は、組み込まれる宿主に合わせて最適化してもよい。例えば、大腸菌に組み込まれる場合、配列番号３で表されるアミノ酸配列を有するシアン蛍光タンパク質をコードする遺伝子は、配列番号１３で表される塩基配列を有していてもよい。配列番号４で表されるアミノ酸配列を有する緑色蛍光タンパク質をコードする遺伝子は、配列番号１４で表される塩基配列を有していてもよい。配列番号５で表されるアミノ酸配列を有する黄色蛍光タンパク質をコードする遺伝子は、配列番号１５で表される塩基配列を有していてもよい。配列番号６で表されるアミノ酸配列を有する橙色蛍光タンパク質をコードする遺伝子は、配列番号１６で表される塩基配列を有していてもよい。配列番号７で表されるアミノ酸配列を有する赤色蛍光タンパク質をコードする遺伝子は、配列番号１７で表される塩基配列を有していてもよい。
蛍光タンパク質遺伝子及びｌｕｘＡは、融合体として発現されれば、遺伝子の連結形態は特に限定されないが、５’末端側（上流側）から蛍光タンパク質遺伝子－ｌｕｘＡの順に連結されることが好ましい。融合体としての発現を妨げない限り、両遺伝子の連結部位にリンカー等をコードする配列が配されていてもよい。ｌｕｘＡの３’末端側（下流側）に、さらにｌｕｘＢを連結させてもよい。この場合、ｌｕｘＡとｌｕｘＢにそれぞれサブユニットを発現させるため、ｌｕｘＡとｌｕｘＢの間にリボソーム結合配列（例えば、ＣＴＡＡＧＧＡＧＡＡＡＧＡＡ（配列番号８））が配されることが好ましい。
さらに、必要に応じて、同一核酸分子内、又は別の核酸分子として、ｌｕｘＣ、ｌｕｘＤ、ｌｕｘＥ及び／又はｌｕｘＧが含まれていてもよい。
４．発現用ベクター
本発明の第３の実施形態は、発光タンパク質を発現させるためのベクターである。本実施形態の発現用ベクターは、第２の実施形態の核酸が組み込まれていることを特徴とする。
本発明の第３の実施形態は、発光タンパク質を発現させるためのベクターである。本実施形態の発現用ベクターは、第２の実施形態の核酸が組み込まれていることを特徴とする。
発現ベクターの種類は、組み込まれる宿主細胞に適したものであれば特に限定されず、適宜選択することが可能である。例えば、プラスミド、ファージ等を使用することができる。発現ベクターは、特に、細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞への導入に適したものとすることができる。発現ベクターとしては、市販のものを適否使用することが出来る。例えば、大腸菌を宿主とする場合、ｐＲＳＥＴＢ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）、ｐＢＡＤ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）、ｐＣｏｌｄ（タカラバイオ社）等を好適に使用できる。
発現用ベクターには、少なくとも、ＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列が含まれる。また、ＬｕｘＢサブユニットをコードする塩基配列がさらに含まれていてもよい。さらに、必要に応じて、ｌｕｘＣ、ｌｕｘＤ、ｌｕｘＥ及び／又はｌｕｘＧが含まれていてもよい。あるいは、これらの遺伝子は２以上の発現ベクターに別々に組み込まれ、同一細胞内に同時に導入されてもよい。
５．細胞
本発明の第４の実施形態は、発光タンパク質を発現させるための遺伝子を組み込んだ細胞である。本実施形態の細胞は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸が導入された、ことを特徴とする。細胞の種類は特に限定されないが、時に、細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞とすることが好ましい。本発明の発光タンパク質は、例えば、細胞の挙動をモニタリングするためのマーカーとして使用することが可能であることから、遺伝子を組み込む宿主細胞は、その目的に応じて適宜選択することが好ましい。
本発明の第４の実施形態は、発光タンパク質を発現させるための遺伝子を組み込んだ細胞である。本実施形態の細胞は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸が導入された、ことを特徴とする。細胞の種類は特に限定されないが、時に、細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞とすることが好ましい。本発明の発光タンパク質は、例えば、細胞の挙動をモニタリングするためのマーカーとして使用することが可能であることから、遺伝子を組み込む宿主細胞は、その目的に応じて適宜選択することが好ましい。
本実施形態の細胞は、例えば第３の実施形態の発現用ベクターを目的の細胞に導入することによって調製される。発現用ベクターは、蛍光タンパク質遺伝子、ｌｕｘＡを少なくとも含むが、必要に応じて、同一ベクター内にｌｕｘＢが含まれていてもよい。あるいは、ｌｕｘＢは別のベクターに含まれていてもよく、前記ｌｕｘＡを含むベクターと共に同一細胞内に導入されてもよい。さらに、必要に応じて、ｌｕｘＣ、ｌｕｘＤ、ｌｕｘＥ及び／又はｌｕｘＧが、それぞれ上記ベクター内に、又は別のベクターに含まれていてもよく、少なくとも蛍光タンパク質、ｌｕｘＡ及びｌｕｘＢと共に、同一細胞内に導入されてもよい。
本実施形態の細胞は、蛍光タンパク質遺伝子、ｌｕｘＡ及びｌｕｘＢを少なくとも含み、必要に応じてｌｕｘＣ、ｌｕｘＤ、ｌｕｘＥ及び／又はｌｕｘＧが含まれる。本実施形態の細胞は、上記の遺伝子が導入されることで、基質の添加によって発光するか、自発光することが可能である。
６．発光タンパク質の製造方法
本発明の第６の実施形態は、発光タンパク質の製造方法である。本実施形態の方法は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸を発現させることを含む、ことを特徴とする。
本発明の第６の実施形態は、発光タンパク質の製造方法である。本実施形態の方法は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸を発現させることを含む、ことを特徴とする。
本実施形態の方法は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸及びＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸を含む発現用ベクターを調製する工程を含んでもよい。あるいは、本実施形態の方法は、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸を含む発現用ベクターと、ＬｕｘＢをコードする塩基配列を有する核酸を含む発現用ベクターとを別々に調製する工程を含んでもよい。また、本実施形態の方法は、ｌｕｘＣ、ｌｕｘＤ、ｌｕｘＥ及び／又はｌｕｘＧを含む１以上の発現用ベクターを調製する工程を含んでもよい。
本実施形態の方法は、上記で調製した発現用ベクターを細胞内に導入する工程を含んでもよい。ここで使用する細胞は、特に制限されないが、例えば、細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞とすることができる。さらに、本実施形態の方法は、発現用ベクターを導入した細胞を培養する工程を含んでもよい。当該工程によって、細胞内で発光タンパク質が製造され、細胞内への発光基質（ルシフェリン）の供給又は細胞内での発光基質生成により、細胞の発光が見られる。あるいは、培養した細胞から、集菌、細胞破砕、タンパク質精製を経ることで、発光基質の存在下で発光する発光タンパク質を得ることができる。
以下、本発明を詳細に説明するために実施例を提示するが、本発明を実施例の範囲に限定することを意図するものではない。
実施例１：自発光大腸菌の調製
（１）ｌｕｘＡＢ挿入ベクターの調製
Ｌｕｘ遺伝子は、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのｌｕｘＣＤＡＢＥを組み込んだプラスミドｐＡＫｌｕｘ１（プラスミド＃１４０７３、Ａｄｄｇｅｎｅ社）からクローニングした。ｐＡＫｌｕｘ１を鋳型として、ｌｕｘＡ－ｌｕｘＢ間にリボソーム結合配列ＣＴＡＡＧＧＡＧＡＡＡＧＡＡ（配列番号８）が挿入される形で、下記のプライマーセット(配列番号２１、２２）を用いて、ｌｕｘＡＢを増幅した。
フォワードプライマー（BamHI-G-luxA） CACCGGATCCGATGAAATTTGGAAACTTTTTG（配列番号２１）
リバースプライマー（EcoRI-LuxB） CACCGAATTCTTAGGTATATTCCATGTGGTAC (配列番号２２）
ｌｕｘＡＢオペロンが大腸菌内でバイシストロン性発現するように、ＰＣＲ増幅したｌｕｘＡＢ断片をＢａｍＨＩ及びＥｃｏＲＩで消化し、断片をｐＲＳＥＴＢ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）の対応する部位にインフレームで挿入し、ｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢを得た。
（１）ｌｕｘＡＢ挿入ベクターの調製
Ｌｕｘ遺伝子は、Ｐｈｏｔｏｒｈａｂｄｕｓ ｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｓのｌｕｘＣＤＡＢＥを組み込んだプラスミドｐＡＫｌｕｘ１（プラスミド＃１４０７３、Ａｄｄｇｅｎｅ社）からクローニングした。ｐＡＫｌｕｘ１を鋳型として、ｌｕｘＡ－ｌｕｘＢ間にリボソーム結合配列ＣＴＡＡＧＧＡＧＡＡＡＧＡＡ（配列番号８）が挿入される形で、下記のプライマーセット(配列番号２１、２２）を用いて、ｌｕｘＡＢを増幅した。
フォワードプライマー（BamHI-G-luxA） CACCGGATCCGATGAAATTTGGAAACTTTTTG（配列番号２１）
リバースプライマー（EcoRI-LuxB） CACCGAATTCTTAGGTATATTCCATGTGGTAC (配列番号２２）
ｌｕｘＡＢオペロンが大腸菌内でバイシストロン性発現するように、ＰＣＲ増幅したｌｕｘＡＢ断片をＢａｍＨＩ及びＥｃｏＲＩで消化し、断片をｐＲＳＥＴＢ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）の対応する部位にインフレームで挿入し、ｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢを得た。
（２）各種発光タンパク質発現ベクターの調製
発光タンパク質であるＣＮＬＸ、ＧＮＬＸ、ＹＮＬＸ、ＯＮＬＸ及びＲＮＬＸを生合成するために、蛍光タンパク質であるｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２、ｓｆＧＦＰ、Ｖｅｎｕｓ、ｍＫＯκ、ｍＳｃａｒｌｅｔ－Ｉの遺伝子を使用して発光タンパク質発現ベクターを調製した。ただし、ｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２、ｓｆＧＦＰ、Ｖｅｎｕｓ、ｍＳｃａｒｌｅｔ－Ｉは、既知のアミノ酸配列からＣ末端側１０アミノ酸を欠失したアミノ酸配列（ΔＣ１０）をコードする遺伝子とした。Ｔｕｒｑｕｏｉｓｅ２ΔＣ１０、ｓｆＧＦＰΔＣ１０、ＶｅｎｕｓΔＣ１０、ｍＫＯκ、ｍＳｃａｒｌｅｔ－ＩΔＣ１０のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号３、４、５、６及び７として示す。これらをコードするＤＮＡは、それぞれ、配列番号１３、１４、１５、１６及び１７として示す。各遺伝子について、遺伝子特異的なプライマー、及びＰＣＲ増幅試薬（ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏ、東洋紡社製）を用いて増幅した。増幅したＤＮＡは、ＴＥＤＡ法（Xia, Y., et al,. Nucleic Acids Research, 47(3), e15 (2019)を参照のこと）を用いてｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢのｌｕｘＡ上流に挿入した。大腸菌株ＸＬ１０－ＧＯＬＤにてクローニングを行い、遺伝子配列を確認して各種発光タンパク質発現ベクター（ｐＣＮＬＸ（ｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２ΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ）、ｐＧＮＬＸ（ｓｆＧＦＰΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ）、ｐＹＮＬＸ（ＶｅｎｕｓΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ、ｐＯＮＬＸ（ｍＫＯκ：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ）及びｐＲＮＬＸ（ｍＳｃａｒｌｅｔ－ＩΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ））を得た。
発光タンパク質であるＣＮＬＸ、ＧＮＬＸ、ＹＮＬＸ、ＯＮＬＸ及びＲＮＬＸを生合成するために、蛍光タンパク質であるｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２、ｓｆＧＦＰ、Ｖｅｎｕｓ、ｍＫＯκ、ｍＳｃａｒｌｅｔ－Ｉの遺伝子を使用して発光タンパク質発現ベクターを調製した。ただし、ｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２、ｓｆＧＦＰ、Ｖｅｎｕｓ、ｍＳｃａｒｌｅｔ－Ｉは、既知のアミノ酸配列からＣ末端側１０アミノ酸を欠失したアミノ酸配列（ΔＣ１０）をコードする遺伝子とした。Ｔｕｒｑｕｏｉｓｅ２ΔＣ１０、ｓｆＧＦＰΔＣ１０、ＶｅｎｕｓΔＣ１０、ｍＫＯκ、ｍＳｃａｒｌｅｔ－ＩΔＣ１０のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号３、４、５、６及び７として示す。これらをコードするＤＮＡは、それぞれ、配列番号１３、１４、１５、１６及び１７として示す。各遺伝子について、遺伝子特異的なプライマー、及びＰＣＲ増幅試薬（ＫＯＤ－Ｐｌｕｓ－Ｎｅｏ、東洋紡社製）を用いて増幅した。増幅したＤＮＡは、ＴＥＤＡ法（Xia, Y., et al,. Nucleic Acids Research, 47(3), e15 (2019)を参照のこと）を用いてｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢのｌｕｘＡ上流に挿入した。大腸菌株ＸＬ１０－ＧＯＬＤにてクローニングを行い、遺伝子配列を確認して各種発光タンパク質発現ベクター（ｐＣＮＬＸ（ｍＴｕｒｑｕｏｉｓｅ２ΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ）、ｐＧＮＬＸ（ｓｆＧＦＰΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ）、ｐＹＮＬＸ（ＶｅｎｕｓΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ、ｐＯＮＬＸ（ｍＫＯκ：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ）及びｐＲＮＬＸ（ｍＳｃａｒｌｅｔ－ＩΔＣ１０：ｌｕｘＡ＋ｌｕｘＢ））を得た。
図５に、各種発光タンパク質（ＣＮＬＸ、ＧＮＬＸ、ＹＮＬＸ、ＯＮＬＸ及びＲＮＬＸ）を構成する融合タンパク質の構造模式図を示す。ＣＮＬＸは、配列番号３の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬ（グルタミン酸－ロイシン）の２アミノ酸を挟んで連結した構造を有する。ＧＮＬＸは、配列番号４の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造を有する。ＹＮＬＸは、配列番号５の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造を有する。ＯＮＬＸは、配列番号６の１～２１８番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造を有する。ＲＮＬＸは、配列番号７の１～２２２番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造を有する。
（３）ｌｕｘＣＤＥベクターの調製
ＬｕｘＣ（アミノ酸配列 配列番号２３／塩基配列 配列番号２６）、ＬｕｘＤ（アミノ酸配列 配列番号２４／塩基配列 配列番号２７）、ＬｕｘＥ（アミノ酸配列 配列番号２５／塩基配列 配列番号２８）の遺伝子を、プラスミドｐＡＫｌｕｘ１よりクローニングした。ｌｕｘＣ－ｌｕｘＤ間、ｌｕｘＤ－ｌｕｘＥ間に、それぞれリボソーム結合配列TAGGTAAAAAGT（配列番号１８）およびAATCTATTGAGATATTCTATCACTCAAATAGCAATATAAGGACTCTCT（配列番号２９）が挿入される形で、下記のプライマーセット（配列番号３０、３１）を用いてｌｕｘＣＤＥをＰＣＲにより増幅した。
フォワードプライマー（Fwd-BamHI-luxC） TAGGATCCATGACTAAAAAAATTTCATTCATTATTAACG（配列番号３０）
リバースプライマー（Rev-EcoRI-luxE） CACCGAATTCAACTATCAAACGCTTCG（配列番号３１）
ＰＣＲ増幅したｌｕｘＣ－ｌｕｘＤ－ｌｕｘＥ断片をＢａｍＨＩおよびＥｃｏＲＩで消化し、断片をｐＲＳＥＴＢ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）の対応する部位にインフレームで挿入し、ｌｕｘＣＤＥベクターを得た。
ＬｕｘＣ（アミノ酸配列 配列番号２３／塩基配列 配列番号２６）、ＬｕｘＤ（アミノ酸配列 配列番号２４／塩基配列 配列番号２７）、ＬｕｘＥ（アミノ酸配列 配列番号２５／塩基配列 配列番号２８）の遺伝子を、プラスミドｐＡＫｌｕｘ１よりクローニングした。ｌｕｘＣ－ｌｕｘＤ間、ｌｕｘＤ－ｌｕｘＥ間に、それぞれリボソーム結合配列TAGGTAAAAAGT（配列番号１８）およびAATCTATTGAGATATTCTATCACTCAAATAGCAATATAAGGACTCTCT（配列番号２９）が挿入される形で、下記のプライマーセット（配列番号３０、３１）を用いてｌｕｘＣＤＥをＰＣＲにより増幅した。
フォワードプライマー（Fwd-BamHI-luxC） TAGGATCCATGACTAAAAAAATTTCATTCATTATTAACG（配列番号３０）
リバースプライマー（Rev-EcoRI-luxE） CACCGAATTCAACTATCAAACGCTTCG（配列番号３１）
ＰＣＲ増幅したｌｕｘＣ－ｌｕｘＤ－ｌｕｘＥ断片をＢａｍＨＩおよびＥｃｏＲＩで消化し、断片をｐＲＳＥＴＢ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社）の対応する部位にインフレームで挿入し、ｌｕｘＣＤＥベクターを得た。
（４）発光タンパク質発現大腸菌の調製と培養
（２）で調製した各発光タンパク質発現ベクターとｌｕｘＣＤＥベクターとを組み合わせて大腸菌株ＪＭ１０９（ＤＥ３）を形質転換し、発光タンパク質とＬｕｘＣＤＥの共発現系を構築した。対照として、蛍光タンパク質遺伝子を組み込んでいないｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢとｌｕｘＣＤＥベクターを組み合わせて、同様に大腸菌を形質転換した。形質転換した大腸菌は、１００μｇ／ｍＬカルベニシリンを含む２００ｍＬのＬＢ液体培地にて、２３℃、１３０ｒｐｍの条件下で６０時間振盪培養した。培養後の培養液各１５０μＬをＰＣＲ用ＰＰチューブに分取し、遮光条件下でデジタル一眼カメラ（Ｓｏｎｙ α７Ｓ）を用いて露光時間８秒で撮像した。図６に撮像した写真を示す。蛍光タンパク質－ＬｕｘＡ融合タンパク質について、いずれもＬｕｘのみ（対照）の発光よりも発光強度が高くなることが確認された。また、組み合わせる蛍光タンパク質の種類を変更することで、広い波長域で高い発光強度となることが示された。
（２）で調製した各発光タンパク質発現ベクターとｌｕｘＣＤＥベクターとを組み合わせて大腸菌株ＪＭ１０９（ＤＥ３）を形質転換し、発光タンパク質とＬｕｘＣＤＥの共発現系を構築した。対照として、蛍光タンパク質遺伝子を組み込んでいないｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢとｌｕｘＣＤＥベクターを組み合わせて、同様に大腸菌を形質転換した。形質転換した大腸菌は、１００μｇ／ｍＬカルベニシリンを含む２００ｍＬのＬＢ液体培地にて、２３℃、１３０ｒｐｍの条件下で６０時間振盪培養した。培養後の培養液各１５０μＬをＰＣＲ用ＰＰチューブに分取し、遮光条件下でデジタル一眼カメラ（Ｓｏｎｙ α７Ｓ）を用いて露光時間８秒で撮像した。図６に撮像した写真を示す。蛍光タンパク質－ＬｕｘＡ融合タンパク質について、いずれもＬｕｘのみ（対照）の発光よりも発光強度が高くなることが確認された。また、組み合わせる蛍光タンパク質の種類を変更することで、広い波長域で高い発光強度となることが示された。
実施例２：発光タンパク質の調製
（１）発光タンパク質の調製と抽出
実施例１の（２）で調製した各発光タンパク質発現ベクターを用いて大腸菌株ＪＭ１０９（ＤＥ３）を形質転換し、ＬＢ液体培地にて２３℃で６０時間振盪培養した。培養液から大腸菌を回収し、フレンチプレスにて細胞質タンパク質を抽出した。Ｎｉ－ＮＴＡアガロースカラム（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて、目的タンパク質を単離し、２０ｍＭ ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ７．４）に溶解し、各種発光タンパク質（ＣＮＬＸ、ＧＮＬＸ、ＹＮＬＸ、ＯＮＬＸ及びＲＮＬＸ）を得た。対照として、蛍光タンパク質遺伝子を挿入していないｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢで、同様に大腸菌株を形質転換し、培養、タンパク抽出を行い、発光タンパク質（ＬｕｘＡ＋ＬｕｘＢ）溶液を得た。
（１）発光タンパク質の調製と抽出
実施例１の（２）で調製した各発光タンパク質発現ベクターを用いて大腸菌株ＪＭ１０９（ＤＥ３）を形質転換し、ＬＢ液体培地にて２３℃で６０時間振盪培養した。培養液から大腸菌を回収し、フレンチプレスにて細胞質タンパク質を抽出した。Ｎｉ－ＮＴＡアガロースカラム（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いて、目的タンパク質を単離し、２０ｍＭ ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ７．４）に溶解し、各種発光タンパク質（ＣＮＬＸ、ＧＮＬＸ、ＹＮＬＸ、ＯＮＬＸ及びＲＮＬＸ）を得た。対照として、蛍光タンパク質遺伝子を挿入していないｐＲＳＥＴＢ－ｌｕｘＡＢで、同様に大腸菌株を形質転換し、培養、タンパク抽出を行い、発光タンパク質（ＬｕｘＡ＋ＬｕｘＢ）溶液を得た。
（２）細胞外発光試験
１０μＭ ＦＭＮ、４０μＭ デカナール、２００μＭ １－ベンジル－１，４－ジヒドロニコチンアミド（ＢＮＡＨ）を含む２０ｍＭ ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ７．４、３７℃）に、各発光タンパク質を終濃度が０．８μＭとなるように添加した。添加直後に、各発光タンパク質溶液の発光スペクトルを、ＰＭＡ－１２マルチチャンネル分光器（浜松ホトニクス社製）を用いて、露光時間３０秒で測定した。同時に、各溶液を、９６穴マイクロウェルプレートに１００μＬずつ分注し（ｎ＝３）、マイクロプレートリーダー（コロナマルチグレーティングマイクロプレートリーダー ＳＨ－９０００Ｌａｂ 日立ハイテク社製）で全波長の発光を測定した。図７に各発光タンパク質の発光スペクトルを示す、グラフの縦軸は、各発光タンパク質の極大波長における発光強度を１とした相対発光強度を示す。図８は、各発光タンパク質の発光強度を示す。図中のエラーバーは、標準誤差を示す。図７に示す通り、ＬｕｘＡと組み合わせる蛍光タンパク質の種類を変更することで、広い波長域での発光が可能になることが判明した。また、図８に示す通り、Ｌｕｘのみ（対照）の場合と比較して、ＬｕｘＡをいずれの蛍光タンパク質と融合させても、有意に高い発光強度を示すことが判明した。
１０μＭ ＦＭＮ、４０μＭ デカナール、２００μＭ １－ベンジル－１，４－ジヒドロニコチンアミド（ＢＮＡＨ）を含む２０ｍＭ ＨＥＰＥＳバッファー（ｐＨ７．４、３７℃）に、各発光タンパク質を終濃度が０．８μＭとなるように添加した。添加直後に、各発光タンパク質溶液の発光スペクトルを、ＰＭＡ－１２マルチチャンネル分光器（浜松ホトニクス社製）を用いて、露光時間３０秒で測定した。同時に、各溶液を、９６穴マイクロウェルプレートに１００μＬずつ分注し（ｎ＝３）、マイクロプレートリーダー（コロナマルチグレーティングマイクロプレートリーダー ＳＨ－９０００Ｌａｂ 日立ハイテク社製）で全波長の発光を測定した。図７に各発光タンパク質の発光スペクトルを示す、グラフの縦軸は、各発光タンパク質の極大波長における発光強度を１とした相対発光強度を示す。図８は、各発光タンパク質の発光強度を示す。図中のエラーバーは、標準誤差を示す。図７に示す通り、ＬｕｘＡと組み合わせる蛍光タンパク質の種類を変更することで、広い波長域での発光が可能になることが判明した。また、図８に示す通り、Ｌｕｘのみ（対照）の場合と比較して、ＬｕｘＡをいずれの蛍光タンパク質と融合させても、有意に高い発光強度を示すことが判明した。
Claims (7)
- バクテリアルシフェラーゼと蛍光タンパク質との複合体を含み、前記バクテリアルシフェラーゼはＬｕｘＡサブユニット及びＬｕｘＢサブユニットを有し、前記蛍光タンパク質はＬｕｘＡサブユニットと融合している、発光タンパク質であって；
前記ＬｕｘＡサブユニットが、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記ＬｕｘＢサブユニットが、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記蛍光タンパク質が、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択され、
前記シアン蛍光タンパク質が、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記緑色蛍光タンパク質が、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記黄色蛍光タンパク質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号５の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；
前記橙色蛍光タンパク質が、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号６の１～２１８番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；又は、
前記赤色蛍光タンパク質が、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である、
発光タンパク質。 - バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を含む、核酸であって；
前記ＬｕｘＡサブユニットが、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記蛍光タンパク質が、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択され、
前記シアン蛍光タンパク質が、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記緑色蛍光タンパク質が、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記黄色蛍光タンパク質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号５の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；
前記橙色蛍光タンパク質が、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号６の１～２１８番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；又は、
前記赤色蛍光タンパク質が、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である、
核酸。 - さらに、バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＢサブユニットをコードする塩基配列を含む、請求項２に記載の核酸であって；
前記ＬｕｘＢサブユニットが、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドである；
核酸。 - 請求項２に記載の核酸が組み込まれた、発現用ベクター。
- バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢサブユニットをコードする塩基配列を有する核酸が導入された、細胞であって；
前記ＬｕｘＡサブユニットが、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記ＬｕｘＢサブユニットが、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記蛍光タンパク質が、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択され、
前記シアン蛍光タンパク質が、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記緑色蛍光タンパク質が、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記黄色蛍光タンパク質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号５の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；
前記橙色蛍光タンパク質が、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号６の１～２１８番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；又は、
前記赤色蛍光タンパク質が、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である、
細胞。 - 細菌、真菌細胞、植物細胞又は動物細胞である、請求項５に記載の細胞。
- バクテリアルシフェラーゼのＬｕｘＡサブユニットと蛍光タンパク質との融合体をコードする塩基配列を有する核酸、及びＬｕｘＢサブユニットをコードする塩基配列を有する核酸を発現させることを含む、発光タンパク質の製造方法であって；
前記ＬｕｘＡサブユニットが、配列番号１で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号１で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記ＬｕｘＢサブユニットが、配列番号２で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド又は配列番号２で表されるアミノ酸配列と９０％以上の配列同一性を有するアミノ酸配列からなるポリペプチドであり；
前記蛍光タンパク質が、シアン蛍光タンパク質、緑色蛍光タンパク質、黄色蛍光タンパク質、橙色蛍光タンパク質及び赤色蛍光タンパク質から選択され、
前記シアン蛍光タンパク質が、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号３で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が４５０～５００ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記緑色蛍光タンパク質が、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号４で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５００～５２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体であり；
前記黄色蛍光タンパク質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号５の１～２２９番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；
前記橙色蛍光タンパク質が、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチドであって、ＬｕｘＡサブユニットとの融合において、配列番号６の１～２１８番目のアミノ酸配列と、配列番号１の２～３５９番目のアミノ酸配列とが、間にＥＬの２アミノ酸を挟んで連結した構造となり；又は、
前記赤色蛍光タンパク質が、配列番号７で表されるアミノ酸配列からなるポリペプチド、若しくは配列番号７で表されるアミノ酸配列と９７％以上の配列同一性を有し、かつ、極大蛍光波長が５８０～６２０ｎｍにある蛍光を発する機能を有するポリペプチド、又はこれらのいずれかのポリペプチドの循環置換体である、
発光タンパク質の製造方法。
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Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| KAKU, T et al.，Enhanced brightness of bacterial luciferase by bioluminescence resonance energy transfer，Scientific Reports，2021年，Vol. 11，Article Number: 14994 |
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