JP7488687B2 - 選択的trpチャネル活性化剤、およびその用途 - Google Patents
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Description
さらに本発明者等は、ヒノキチオールに、TRPチャネルの一種であるTRPM8を選択的に活性化する機能があることを見出した。
本発明は、これらの知見に基づいて、さらに研究を重ねて完成したものであり、下記の実施形態を包含するものである。
(I-1)ヒノキチオール及びその構造類似化合物よりなる群から選択される少なくとも1種を有効成分とする、選択的TRPチャネル活性化剤。
(I-2)活性化されるTRPチャネルが、TRPV1およびTRPM8よりなる群から選択される少なくとも1つである、(I-1)記載の選択的TRPチャネル活性化剤。
(I-3)ヒノキチオールの構造類似化合物が、γ-ツヤプリシンおよびトロポロンよりなる群から選択される少なくとも1つである、(I-1)または(I-2)記載の選択的TRPチャネル活性化剤。
(II-1)ヒノキチオールを有効成分とする温冷覚刺激剤。
(II-2)温感剤、冷感剤、または温感若しくは冷感による刺激剤である(III-1)に記載する温冷覚刺激剤。
(III-1)ヒノキチオール及びその構造類似化合物よりなる群から選択される少なくとも1種のヒノキチオール化合物を組成物に配合することにより、当該組成物に対して、TRPV1活性化作用、TRPM8活性化作用、および/またはこれらの少なくとも一方の作用に起因する機能を付与することを特徴とする、ヒノキチオール化合物の使用方法。
(III-2)前記TRPV1活性化作用に起因する機能が、温覚刺激機能である、(III-1)に記載する方法。
(III-3)前記TRPM8活性化作用に起因する機能が、冷覚刺激機能である、(III-1)に記載する方法。
(III-4)ヒノキチオールの構造類似化合物が、γ-ツヤプリシンおよびトロポロンよりなる群から選択される少なくとも1つである、(III-1)記載の方法。
本発明の選択TRPチャネル活性化剤(TRPV1活性化剤、TRPM8活性化剤)、及び温冷覚刺激剤は、いずれもヒノキチオールを有効成分(活性本体)とするものである。ヒノキチオールは、β-ツヤプリシンとも称される公知の化合物であり、商業的に入手することができる。ヒノキチオールとして、天然由来のものを使用しても、また化学合成されたものを使用してもよい。また、本発明においてヒノキチオールは、本発明の効果を損なわないかぎり、精製品であっても、粗精製品であってもよく、後者としては、例えばヒバやヒノキなどの樹木から得られるヒノキチオール含有精油を例示することができる。
ヒノキチオールの構造類似化合物としては、γ-ツヤプリシンおよびトロポロンを挙げることができる。当該構造類似化合物は、ヒノキチオールに代えて、またはヒノキチオールと組み合わせて、選択TRPチャネル活性化剤、特にTRPV1活性化剤として使用することができる。当該構造類似化合物も公知の化合物であり、商業的に入手することができる。
温度感受性Transient Receptor Potential(TRP)チャネルは、生体の温感センサーとして発見された受容体である。熱いものや冷たいものに触れたり、極端に暑いまたは寒い環境におかれたりすると、生体に備わっている温感センサーのTRPチャネルが活性化して、脳に危険性を伝える。このとき、TRPチャネルは、温度だけでなく多くの化学的・物理的刺激を感受するセンサーとして多様な生体機能に関わっている。化学物質への感受性は、有害化合物の暴露に対する生体防御システムとしての役割を担い、有害化合物によりもたらされる刺激は、生体侵害に対する警告信号となっている。一方、さまざまな風味を付与する香辛料やハーブ類は、口蓋や鼻腔における体性感覚神経を活性化することで独特の感覚を惹起し、その適度な刺激(辛み、温感、冷感)が好まれて積極的に摂取されている。TRPチャネル刺激物質(TRPチャネル活性化剤)によりもたらされる体性感覚の伝達は抹消から中枢へ至る求心性の一般知覚性神経によって担われる。
TRPV1は、辛味成分であるカプサイシンに対する受容体として単離されたTRPチャネルの一つであり、カプサイシン等の辛味成分のほか、43℃以上の熱、酸(プロトン)、ブラジキニン、PGE2、またはATP等によって活性化されることが知られている。TRPV1は活性化されると、カチオン、主としてカルシウムイオンの輸送を起こす。当該イオンは濃度勾配の低い方へ流れ、脱分極し、次いで神経末端から神経伝達物質の遊離を引き起こす。TRPV1は、脳、腎臓、気管支上皮細胞や歯肉上皮細胞等の上皮細胞、および表皮角質細胞などの、多くの組織に存在していることが報告されている。またTRPV1の活性化は、前記上皮細胞、表皮細胞、及び真皮線維芽細胞の増殖に関連することが知られている(非特許文献6、特許文献4及び5)。
TRPM8は、約8~28℃の低温で活性化する冷刺激受容体である。TRPM8を発現させた細胞での電気生理学的な解析から、TRPM8はCa2+透過性の高い非選択性陽イオンチャネルであり、TRPM8にリガンドが結合することで、TRPM8が活性化されて同チャネルを通過するCa2+の流入量が上昇して膜の脱分極が生じ、それにより冷感が感じられることが知られている。冷感物質として知られているメントールは、上記リガンド(TRPM8活性化剤)として機能することが知られている化合物である。使用中や使用後における冷感(清涼感を含む)を付与することを目的として、化粧品、口腔ケア製品、トイレタリー製品、ヘヤーケア製品(頭皮を対象とする製品を含む)、入浴剤、皮膚外用剤、医薬品等の各種製品には、TRPM8活性化剤(冷感物質)がしばしば配合されている(特許文献1)。また、TRPM8を活性化することで、慢性ニューロパシー痛が和らぐ(鎮痛作用)ことが知られている(特許文献2)。当該特許文献によると慢性ニューロパシー痛は、中枢神経系の変化に関連した症状であり、制限されないが、外傷誘発ニューロパシー痛、脱髄誘発痛、炎症痛状態、幻肢痛、癌に関連したニューロパシー痛、化学療法誘発ニューロパシー痛、背痛、ならびに骨痛及び癌誘発性骨痛が、含まれるとされている。
前述するように、ヒノキチオールまたはその構造類似化合物は、そのTRPV1活性化作用に基づいて、上皮細胞、表皮細胞または真皮線維芽細胞の増殖促進剤の有効成分(活性本体)として機能する。ここで上皮細胞には、歯肉上皮細胞、気管支上皮細胞、表皮角化細胞などが制限なく含まれる。好ましくは、歯肉上皮細胞である。
前述するように、ヒノキチオールは、TRPV1活性化作用またはTRPM8活性化作用に基づいて体性感覚、特に皮膚感覚を刺激する機能を有する。当該皮膚感覚には、温覚を刺激する機能(温覚刺激機能)、および冷覚を刺激する機能(冷覚刺激機能)が好適に含まれる。ヒトを含む温血動物においてTRPV1またはTRPM8が活性化されることよって温度感覚閾値温度が変わり、例えばTRPV1活性化により温覚が刺激されると、実際は温度上昇を伴っていないにも拘わらず、「温かい」または「熱い」と感じられ、またそれが過ぎると「痛み」として感じられる。一方、TRPM8活性化により冷覚が刺激されると、実際は温度低下を伴っていないにも拘わらず、「涼しい」または「冷たい」と感じられ、またそれが過ぎると「痛み」として感じられる。本発明において、温冷覚刺激機能とは、ヒトを含む温血動物においてTRPV1またはTRPM8 を活性化することによって生じる上記の機能を意味する。ヒノキチオールは、ヒトを含む温血動物に対して温冷覚刺激をもたらす温冷覚刺激剤の有効成分(活性本体)として有用である。また、ヒノキチオールは、ヒトを含む温血動物に適用される製品に前記の温冷覚刺激作用を付与するための温冷覚刺激剤の有効成分(活性本体)としても有用である。
本発明は、ヒノキチオール及びその構造類似化合物よりなる群から選択される少なくとも1種のヒノキチオール化合物の使用方法を提供する。
後述する実験は、下記の方法を用いて行った。
(1)細胞培養
ヒト胎児腎細胞由来株HEK293細胞を、10%ウシ胎児血清、30単位/ mlペニシリン、および30μg/ mlストレプトマイシンを含むダルベッコの改変イーグル培地(DMEM製)で、5容量%CO2下で培養した。
pCI-neoベクター(Promega Corp.製)を用いて、hTRPM8、hTRPV1、hTRPV3、hTRPV4およびhTRPA1のcDNAをそれぞれ有する組換えプラスミド(ヒトTRPM8発現ベクター、ヒトTRPV1発現ベクター、ヒトTRPV3発現ベクター、ヒトTRPV4発現ベクター、またはヒトTRPA1発現ベクター)を調製した。トランスフェクション試薬であるSuperFect Transfection Reagent(Qiagen製)を使用して、HEK293細胞に前記組換えプラスミドをトランスフェクトした。細胞内Ca2+濃度([Ca2+]i)の測定および電気生理学的測定のために、組換えプラスミドをpEGFP-Fでコトランスフェクトし、緑色蛍光を有するHEK293細胞を分析した。なお、トランスフェクトされた細胞は、18~36時間培養させた後に、下記の細胞内カルシウムイオン濃度測定([Ca2+]i測定)及び電気生理学測定に供した。
トランスフェクトされたHEK293細胞は、ポリ-L-リジンでコーティングされたガラスカバースリップの上に播種してから3~16時間後に[Ca2+]i測定に供した。2 mMのカルシウムを含有するHEPES緩衝生理食塩水(HBS)(107 mM NaCl、6 mM KCl、1.2 mM MgSO4、2 mM CaCl2、11.5 mMグルコース、および20 mM HEPESを含有。NaOHでpH7.4に調整)に、カルシウム感受性蛍光色素であるFura2-AM(1μM,Sigma社製)を添加して調製した水溶液を用いて、トランスフェクトされたHEK293細胞を、37℃のCO2インキュベーターにて30分間インキュベートした。斯くして当該HEK293細胞にFura2-AMを取り込ませた後、前記HEPES緩衝生理食塩水で洗浄し、[Ca2+]i測定に供した。測定は、室温で行い、細胞の蛍光画像を記録し、cellSensDemension(Olympas Corp.製)で分析した。具体的には、細胞を前記HEPES緩衝生理食塩水(2mMカルシウム水溶液)で還流した後、被験物質を約90秒間、還流適用し、細胞内Caイオン濃度の変化を、Caイメージングシステム(cellSenseDemension, オリンパス社製)にて測定し(励起波長:340nm及び380nm、測定波長:510nm)、340nmで励起したときの蛍光強度と380nmで励起したときの蛍光強度との比(340nm/380nmの蛍光比:Fura2-比)を求めた。
電気生理学的測定のために、トランスフェクトされたHEK293細胞を含むカバースリップを、溶液の入ったディッシュに入れた。細胞からの電流を、EPC-10(Heka Elektronik、Lambrecht / Pfalz製)パッチクランプアンプを使用したホールセルモードのパッチクランプ技術を使用して、室温で記録した。ホウケイ酸ガラス・キャピラリー管から調製したパッチ電極の抵抗は2~4メガオームであった。電流信号は、4-ポール・ベッセルフィルターを用いて、2.9 kHzでフィルター処理し、10 kHzでデジタル化した。コマンドパルス制御、データ収集、およびデータ分析には、Patchmaster(Heka Elektronik製)ソフトウェアを使用した。直列抵抗を補うことで(50~70%)、電圧誤差を最小化した。全ての実験には-80 mVの保持電位を採用した。外部溶液として、100mM NaCl、5mM KCl、2mM BaCl2、5mM MgCl2、25mM HEPES、および30mMグルコース(NaOHでpH7.3に調整し、D-マンニトールで浸透圧を320mosMに調整)を含む水溶液を使用した。ピペット溶液として、140mM CsCl、4mM MgCl2、10mM EGTA、10mM HEPES(CsOHでpH 7.3およびD-マンニトールで浸透圧300mosMに調整)を含む水溶液を使用した。
被験物質としてヒノキチオールを用いて、ヒトTRPM8を発現するHEK293細胞のヒノキチオールに対する応答を、[Ca2+]i測定及び電気生理学測定により評価した。
結果を、図1に示す。
図1Aは、[Ca2+]i測定において、ヒトTRPM8を発現するHEK293細胞(n=54)に500μMヒノキチオールを適用した際のFura-2比(340nm/380nmの蛍光比)の経時的変化を示す。図1Bは、ヒトTRPM8チャネルを発現するHEK293細胞に適用するヒノキチオールの濃度を変えてFura-2比を測定し(50μM(n=56)、200μM(n=66)、500μM(n=54))、ヒノキチオール非含有HEPES緩衝生理食塩水のFura-2比と、ヒノキチオール含有HEPES緩衝生理食塩水還流後のFura-2比の最大値との差(ΔFura-2比)を算出した結果を示す。図1Cは、500μMヒノキチオールによって誘導されたヒトTRPM8を介した細胞内電流をトレースしたものである。図1Dは、選択的TRPM8アンタゴニストとして知られているAMTB(N-(3-アミノプロピル)-2-[(3-メチルフェニル)メトキシ] -N-(2-チエニルメチル)ベンズアミド)塩酸塩(AMTB)1μMを含む(+)、または含まない(-)場合における、l-メントール(137μM)またはヒノキチオール(500μM)に対する応答のΔFura-2比を示したものである。アンタゴニストは各薬剤による処理の60秒前に還流し、その後、共還流した。
被験物質としてヒノキチオールを用いて、ヒトTRPV1を発現するHEK293細胞のヒノキチオールに対する応答を、[Ca2+]i測定及び電気生理学測定により評価した。
結果を、図2に示す。
図2Aは、[Ca2+]i測定において、ヒトTRPV1を発現するHEK293細胞(n=62)に500μMヒノキチオールを適用した際のFura-2比(340nm/380nmの蛍光比)の経時的変化を示す。図2Bは、ヒトTRPV1を発現するHEK293細胞に適用するヒノキチオールの濃度を変えてFura-2比を測定し(50μM(n=81)、200μM(n=77)、500μM(n=62))、ヒノキチオール非含有HEPES緩衝生理食塩水のFura-2比と、ヒノキチオール含有HEPES緩衝生理食塩水還流後のFura-2比の最大値との差(ΔFura-2比)を算出した結果を示す。図2Cは、500μMヒノキチオールによって誘導された全細胞(whole cell)のヒトTRPM8を介した細胞内電流をトレースしたものである。図2Dは、TRPV1アンタゴニストとして知られている1μM カプサゼピン(CZP)またはSB-366791(SB)を含む、または含まない(-)場合における、カプサイシノイド(350μM)またはヒノキチオール(500μM)に対する応答のΔFura-2比を示したものである。なお、カプサイシノイドとしてノナン酸バニリルアミドを使用した。アンタゴニストは各薬剤による処理の60秒前に還流し、その後、共還流した。
ヒノキチオール(β-ツヤプリシン)に代えて、実験例1及び2と同様にして、その構造類似体であるγ-ツヤプリシン(500μM)およびトロポロン(500μM)を用いて、ヒトTRPM8またはヒトTRPV1を発現するHEK293細胞のCa2+応答性を測定した。
結果を図3に示す。図3は、ヒトTRPM8を発現するHEK293細胞(a)、ヒトTRPV1チャネルを発現するHEK293細胞(b)、及び空のベクターでトランスフェクトされたHEK293細胞(c)に、各々γ-ツヤプリシン(500μM)およびトロポロン(500μM)を適用して、Fura-2比を測定し、各化合物非含有HEPES緩衝生理食塩水のFura-2比と、各化合物含有HEPES緩衝生理食塩水還流後のFura-2比の最大値との差(ΔFura-2比)を算出した結果を示す。
ヒトTRPA1、ヒトTRPV3、またはヒトTRPV4を発現するHEK293細胞を用いて、これらのTRPチャネルに対するヒノキチオール(500μM)と各アゴニストのCa2+応答性を測定した。
各種TRPチャネルのアゴニストとして下記の化合物を使用した。
TRPA1のアゴニスト:500μM アリルイソチオシアネート(AITC)
TRPV3のアゴニスト:200μM 2-アミノエトキシジフェニルボラン(2-APB)
TRPV4のアゴニスト:1μM GSK-1016790A(GSK)
結果を図4に示す。図4に示すように、ヒノキチオールは、[Ca2+] i測定において、TRPA1、TRPV3、またはTRPV4発現細胞に対して、わずかな変化を与えるか、または顕著な変化は与えなかった。このことから、ヒノキチオールは、実験例1~3で示すように、TRPTM8、及びTRPV1に対して選択的に作用するものと考えられる。
Claims (4)
- ヒノキチオールを有効成分とする、TRPV1チャネル及びTRPM8チャネルに対する選択的TRPチャネル活性化剤。
- γ-ツヤプリシン及びトロポロンよりなる群から選択される少なくとも1種を有効成分とする、選択的TRPV1チャネル活性化剤。
- ヒノキチオールを有効成分とする温冷覚刺激剤。
- ヒノキチオールを組成物に配合することにより、当該組成物に対して、TRPV1活性化作用及びTRPM8活性化作用、またはこれらの作用に起因する機能を付与することを特徴とする、ヒノキチオールの使用方法。
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