JP7482363B2 - Nkg2d、cd16及び腫瘍関連抗原に結合するタンパク質 - Google Patents
Nkg2d、cd16及び腫瘍関連抗原に結合するタンパク質 Download PDFInfo
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Description
本出願は、ASCIIフォーマットにおいて、電子的に提出され、参照によりその全体において本明細書に組み込まれた配列表を含む。2019年8月6日に作成された、前記ASCIIコピーは、「DFY-06lWO_ST25.txt」と名付けられており、342,008バイトのサイズである。
本発明は、NKG2D、CD16及び少なくとも1つの腫瘍関連抗原に結合する多特異性結合性タンパク質に関する。
本発明は、ナチュラルキラー細胞上のNKG2D受容体及びCD16受容体並びにKIT、F3、IGF1R、Lewis Y、MUC13、MUC4、MCAM、LRRC32、シアリルTn、gpA33、GD3、GM2、c-MET、EPHA3、TNFRSF10A、TNFSF11、CD74及びPMELから選択される腫瘍関連抗原に結合する多特異性結合性タンパク質を提供する。このようなタンパク質は、1種類を超えるNK活性化受容体にエンゲージメントすることが可能であり、天然リガンドの、NKG2Dへの結合を遮断しうる。ある特定の実施形態において、タンパク質は、ヒトにおけるNK細胞をアゴナイズしうる。一部の実施形態において、タンパク質は、ヒト並びに齧歯動物及びカニクイザルなど、他の種におけるNK細胞をアゴナイズしうる。本発明の、多様な態様及び実施形態について、下記において、さらに詳細に記載される。
本発明は、ナチュラルキラー細胞上のNKG2D受容体及びCD16受容体並びにKIT、F3、IGF1R、Lewis Y、MUC13、MUC4、MCAM、LRRC32、シアリルTn、gpA33、GD3、GM2、c-MET、EPHA3、TNFRSF10A、TNFSF11、CD74及びPMELから選択される腫瘍関連抗原に結合する多特異性結合性タンパク質を提供する。多特異性結合性タンパク質は、本明細書において記載された医薬組成物及び治療法において有用である。多特異性結合性タンパク質の、ナチュラルキラー細胞上のNKG2D受容体及びCD16受容体への結合は、ナチュラルキラー細胞の活性を、KIT、F3、IGF1R、Lewis Y、MUC13、MUC4、MCAM、LRRC32、シアリルTn、gpA33、GD3、GM2、c-MET、EPHA3、TNFRSF10A、TNFSF11、CD74及びPMELから選択される腫瘍関連抗原を発現する腫瘍細胞の破壊に向けて増強する。多特異性結合性タンパク質の、腫瘍関連抗原発現細胞への結合は、がん細胞を、ナチュラルキラー細胞と近接させることから、ナチュラルキラー細胞による、がん細胞の、直接的な破壊及び間接的な破壊を容易とする。一部の例示的な多特異性結合性タンパク質についてのさらなる記載は、下記において提示される。
本開示のTriNKETは、A49MI-デュオボディー-TriNKET-オナルツズマブである。A49MI-デュオボディー-TriNKET-オナルツズマブは、4つのポリペプチド鎖:(a)オナルツズマブHC:抗c-MET抗体である、オナルツズマブの重鎖部分(配列番号425);(b)オナルツズマブLC:抗c-MET抗体である、オナルツズマブの軽鎖部分(配列番号426);(c)A49MI-HC:抗NKG2D抗体である、A49MIの重鎖部分(配列番号423)及び(d)A49MI-LC:抗NKG2D抗体である、A49MIの軽鎖部分(配列番号424)を含む。配列番号425のFcドメインは、変異である、F405Lを含み、配列番号423のFcドメインは、変異である、K409Rを含み、これにより、Fcのヘテロ二量体化を容易とする。A49MI-デュオボディー-TriNKET-オナルツズマブの配列は、下記に提示される。これらの配列の、Chothiaによる番号付けの下におけるCDRは、下線を付される。
本明細書において記載された多特異性タンパク質は、NKG2D結合性部位、KIT、F3、IGF1R、Lewis Y、MUC13、MUC4、MCAM、LRRC32、シアリルTn、gpA33、GD3、GM2、c-MET、EPHA3、TNFRSF10A、TNFSF11、CD74及びPMELから選択される腫瘍関連抗原に結合する腫瘍関連抗原結合性部位、並びにCD16に結合するのに十分な、抗体のFcドメイン又はその部分、又はCD16に結合する抗原結合性部位を含む。一部の実施形態において、多特異性タンパク質は、F4-TriNKETフォーマットにおいて例示された、KIT、F3、IGF1R、Lewis Y、MUC13、MUC4、MCAM、LRRC32、シアリルTn、gpA33、GD3、GM2、c-MET、EPHA3、TNFRSF10A、TNFSF11、CD74及びPMELから選択される腫瘍関連抗原に結合する、追加の抗原結合性部位を含有する。
本発明は、本明細書において記載された多特異性結合性タンパク質及び/又は本明細書において記載された医薬組成物を使用して、がんを処置するための方法を提供する。方法は、KIT、F3、IGF1R、Lewis Y、MUC13、MUC4、MCAM、LRRC32、シアリルTn、gpA33、GD3、GM2、c-MET、EPHA3、TNFRSF10A、TNFSF11、CD74及びPMELから選択される腫瘍関連抗原を発現する様々ながんを処置するのに使用されうる。KITをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、結腸直腸がん、急性骨髄性白血病、消化管間質腫瘍、黒色腫、小細胞肺がん、非小細胞肺がん、腎がん、肝がん及び精巣がんでありうる。F3をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、膀胱がん、乳がん、子宮頸がん、膠芽腫、頭頸部がん、肺がん、膵がん、前立腺がん、肉腫及び結腸直腸がんでありうる。IGF1Rをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、乳がん、子宮頸がん、頭頸部がん、肺がん、黒色腫、中皮腫、卵巣がん、前立腺がん、肉腫、甲状腺がん、腎がん、結腸直腸がん、膵がん、膠芽腫及び肝がんでありうる。Lewis Yをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、卵巣がん、肺がん、結腸直腸がん、胃がん、乳がん、子宮頸がん、頭頸部がん、多発性骨髄腫及び急性骨髄性白血病でありうる。MUC13をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、卵巣がん、肝がん、肺がん、黒色腫、肝がん、胃がん、膵がん、腎がん、食道がん、乳がん、結腸直腸がん、子宮頸がん及び胆管癌でありうる。MUC4をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、乳がん、膵がん、卵巣がん、肺がん、急性リンパ芽球性白血病、膀胱がん、子宮頸がん、結腸直腸がん、頭頸部がん及び前立腺がんでありうる。MCAMをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、黒色腫、乳がん、小細胞肺がん、肉腫、結腸直腸がん、膵がん及び腎がんでありうる。LRRC32をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、腎がん、膵がん、肉腫、卵巣がん、肺がん、膠芽腫、頭頸部がん、前立腺がん、肝がん、乳がん及び子宮頸がんでありうる。シアリルTnをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、卵巣がん、膵がん、膀胱がん、胃がん、前立腺がん、結腸直腸がん及び乳がんでありうる。gpA33をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、結腸直腸がん、胃がん及び食道がんでありうる。GD3をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、肺がん、神経膠腫、乳がん、黒色腫、卵巣がん、膵がん及び神経芽細胞腫でありうる。GM2をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、胃がん、乳がん、卵巣がん、子宮がん、子宮頸がん、神経芽細胞腫、黒色腫、肺がん、中皮腫及び肝がんでありうる。c-METをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、腎がん、甲状腺がん、黒色腫、肺がん、黒色腫、肝がん、膵がん、結腸直腸がん及び頭頸部がんでありうる。EPHA3をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、子宮頸がん、頭頸部がん、胃がん、多発性骨髄腫、卵巣がん、結腸直腸がん、黒色腫、乳がん、前立腺がん、膵がん、肺がん及び肉腫でありうる。TNFRSF10Aをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、乳がん、結腸直腸がん、前立腺がん、膵がん、膀胱がん及び頭頸部がんでありうる。TNFSF11をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、乳がん、前立腺がん及び骨転移性がんでありうる。CD74をターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、びまん性大細胞型B細胞がん、B細胞悪性腫瘍、腎がん、肺がん、卵巣がん、黒色腫、肉腫、頭頸部がん、肝がん、膀胱がん、神経膠腫、乳がん及び白血病でありうる。PMELをターゲティングする、多特異性結合性タンパク質により処置される、例示的ながんは、黒色腫及び肉腫でありうる。
本発明の別の態様は、組合せ療法を提供する。本明細書において記載された多特異性結合性タンパク質は、追加の治療剤と組み合わせて、がんを処置するのに使用されうる。
本開示はまた、治療有効量の、本明細書において記載されたタンパク質を含有する医薬組成物も特色とする。組成物は、様々な薬物送達系における使用のために製剤化されうる。1つ以上の生理学的に許容される賦形剤又は担体もまた、適正な製剤化のために、組成物中に含まれうる。本開示における使用に適する製剤は、Remington’s Pharmaceutical Sciences、Mack Publishing Company、Philadelphia、Pa.、17版、1985において見出される。薬物送達のための方法の総説について、例えば、Langer(Science、249:1527~1533、1990)を参照されたい。
NKG2D結合性ドメインは、精製組換えNKG2Dに結合する
ヒトNKG2D細胞外ドメイン、マウスNKG2D細胞外ドメイン又はカニクイザルNKG2D細胞外ドメインの核酸配列を、ヒトIgG1 Fcドメインをコードする核酸配列と融合させ、哺乳動物細胞へと導入して発現させる。精製の後、NKG2D-Fc融合タンパク質を、マイクロプレートのウェルへと吸着させた。非特異的結合を防止するように、ウェルを、ウシ血清アルブミンでブロッキングした後、NKG2D結合性ドメインを滴定し、NKG2D-Fc融合タンパク質をあらかじめ吸着させたウェルへと添加した。一次抗体の結合は、西洋ワサビペルオキシダーゼへとコンジュゲートされ、ヒトカッパ軽鎖を特異的に認識して、Fc交差反応性を回避する二次抗体を使用して検出した。西洋ワサビペルオキシダーゼの基質である3,3’,5,5’-テトラメチルベンジジン(TMB)を、ウェルへと添加して、その吸光度を、450nmにおいて測定し、540nmにおいて補正した結合シグナルを視覚化した。NKG2D結合性ドメインクローン、アイソタイプ対照又は陽性対照(配列番号101~104から選択される重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメイン又はeBioscienceにおいて市販されている、抗マウスNKG2DクローンであるMI-6及びCX-5を含む)を、各ウェルへと添加した。
EL4マウスリンパ腫細胞系を、ヒト又はマウスのNKG2D-CD3ゼータシグナル伝達ドメインキメラ抗原受容体を発現するように操作した。NKG2D結合性クローン、アイソタイプ対照又は陽性対照を、100nMの濃度において使用して、EL4細胞上において発現された細胞外NKG2Dを染色した。抗体の結合は、フルオロフォアコンジュゲート抗ヒトIgG二次抗体を使用して検出した。細胞を、フローサイトメトリーにより解析し、NKG2D発現細胞の、親EL4細胞と比較した、平均値蛍光強度(MFI)を使用して、バックグラウンドに対する倍数(FOB)を計算した。
ULBP-6との競合
組換えヒトNKG2D-Fcタンパク質を、マイクロプレートのウェルへと吸着させ、ウェルを、ウシ血清アルブミンによりブロッキングして、非特異的結合を低減した。飽和濃度のULBP-6-His-ビオチンを、ウェルへと添加するのに続き、NKG2D結合性ドメインクローンを添加した。2時間にわたるインキュベーションの後、ウェルを洗浄し、NKG2D-Fcコーティングウェルへの結合を維持する、ULBP-6-His-ビオチンを、ストレプトアビジンをコンジュゲートさせた西洋ワサビペルオキシダーゼ及びTMB基質により検出した。吸光度は、450nmにおいて測定し、540nmにおいて補正した。バックグラウンドを差し引いた後、NKG2D結合性ドメインの、NKG2D-Fcタンパク質への特異的結合を、ウェル内において、NKG2D-Fcタンパク質への結合から遮断されたULBP-6-His-ビオチンの百分率から計算した。陽性対照抗体(配列番号101~104から選択される重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを含む)及び多様なNKG2D結合性ドメインが、ULBP-6の、NKG2Dへの結合を遮断したのに対し、アイソタイプ対照は、ULBP-6との競合を、ほとんど示さなかった(図8)。
組換えヒトMICA-Fcタンパク質を、マイクロプレートのウェルへと吸着させ、ウェルを、ウシ血清アルブミンによりブロッキングして、非特異的結合を低減した。NKG2D-Fc-ビオチンを、ウェルへと添加するのに続き、NKG2D結合性ドメインを添加した。インキュベーション及び洗浄の後、ストレプトアビジン-HRP及びTMB基質を使用して、MICA-Fcコーティングウェルへの結合を維持する、NKG2D-Fc-ビオチンを検出した。吸光度は、450nmにおいて測定し、540nmにおいて補正した。バックグラウンドを差し引いた後、NKG2D結合性ドメインの、NKG2D-Fcタンパク質への特異的結合を、MICA-Fcコーティングウェルへの結合から遮断されたNKG2D-Fc-ビオチンの百分率から計算した。陽性対照抗体(配列番号101~104から選択される重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメインを含む)及び多様なNKG2D結合性ドメインが、MICAの、NKG2Dへの結合を遮断したのに対し、アイソタイプ対照は、MICAとの競合を、ほとんど示さなかった(図9)。
組換えマウスRae-1デルタ-Fc(R&D Systemsから購入した)を、マイクロプレートのウェルへと吸着させ、ウェルを、ウシ血清アルブミンによりブロッキングして、非特異的結合を低減した。マウスNKG2D-Fc-ビオチンを、ウェルへと添加するのに続き、NKG2D結合性ドメインを添加した。インキュベーション及び洗浄の後、ストレプトアビジン-HRP及びTMB基質を使用して、Rae-1デルタ-Fcコーティングウェルへの結合を維持する、NKG2D-Fc-ビオチンを検出した。吸光度は、450nmにおいて測定し、540nmにおいて補正した。バックグラウンドを差し引いた後、NKG2D結合性ドメインの、NKG2D-Fcタンパク質への特異的結合を、Rae-1デルタ-Fcコーティングウェルへの結合から遮断されたNKG2D-Fc-ビオチンの百分率から計算した。陽性対照(配列番号101~104から選択される重鎖可変ドメイン及び軽鎖可変ドメイン又はeBioscienceにおいて市販されている抗マウスNKG2DクローンであるMI-6及びCX-5を含む)及び多様なNKG2D結合性ドメインクローンが、Rae-1デルタの、マウスNKG2Dへの結合を遮断したのに対し、アイソタイプ対照抗体は、Rae-1デルタとの競合を、ほとんど示さなかった(図10)。
ヒトNKG2D及びマウスNKG2Dの核酸配列を、CD3ゼータシグナル伝達ドメインをコードする核酸配列と融合させて、キメラ抗原受容体(CAR)構築物を得た。次いで、ギブソンアセンブリーを使用して、NKG2D-CAR構築物を、レトロウイルスベクターへとクローニングし、レトロウイルスの産生のための、expi293細胞へとトランスフェクトした。EL4細胞に、NKG2D-CARを、8μg/mLのポリブレンと併せて含有するウイルスを感染させた。感染の24時間後、EL4細胞内のNKG2D-CARの発現レベルを、フローサイトメトリーにより解析し、細胞表面上において、高レベルのNKG2D-CARを発現するクローンを選択した。
初代ヒトNK細胞
密度勾配遠心分離を使用して、末梢血単核細胞(PBMC)を、ヒト末梢血バフィーコートから単離した。磁気ビーズによる陰性選択を使用して、NK細胞(CD3-CD56+)を、PBMCから単離したところ、単離されたNK細胞の純度は、典型的に、>95%であった。次いで、単離されたNK細胞を、NKG2D結合性ドメインを吸着させた、マイクロプレートのウェルへと移す前に、100ng/mLのIL-2を含有する培地において、24~48分間にわたり培養し、フルオロフォアコンジュゲート抗CD107a抗体、ブレフェルディンA及びモネンシンを含有する培地中において培養した。培養の後、CD3、CD56及びIFN-γに対するフルオロフォアコンジュゲート抗体を使用するフローサイトメトリーにより、NK細胞についてアッセイした。CD107a及びIFN-γについての染色を、CD3-CD56+細胞内において解析して、NK細胞の活性化について評価した。CD107a/IFN-γ二重陽性細胞の増大は、1つの受容体ではなく、2つの活性化受容体のエンゲージメントを介して、より良好なNK細胞の活性化を示す。NKG2D結合性ドメイン及び陽性対照(例えば、配列番号101又は配列番号103により表される重鎖可変ドメイン及び配列番号102又は配列番号104により表される軽鎖可変ドメイン)は、アイソタイプ対照より高い、CD107a+/IFN-γ+となるNK細胞の百分率を示した(図13及び図14は、各々が、異なるドナーのPBMCを、NK細胞調製物のために使用する、2つの独立の実験からのデータを表す)。
脾臓を、C57B1/6マウスから得、70μmの細胞ストレーナーにより破砕して、単一の細胞懸濁液を得た。細胞をペレット化し、ACK溶解緩衝液(Thermo Fisher Scientific:#A1049201から購入した;155mMの塩化アンモニウム、10mMのカリウム重炭酸、0.01mMのEDTA)中に再懸濁させて、赤血球を除去した。残りの細胞を、採取する前に、100ng/mLのhIL-2と共に、72時間にわたり培養し、NK細胞を単離するために調製した。次いで、磁気ビーズによる陰性枯渇法を使用して、NK細胞(CD3-NK1.1+)を、脾臓細胞から単離したところ、典型的に、>90%の純度であった。精製されたNK細胞を、NKG2D結合性ドメインを吸着させた、マイクロプレートのウェルへと移す前に、100ng/mLのmIL-15を含有する培地において、48時間にわたり培養し、フルオロフォアコンジュゲート抗CD107a抗体、ブレフェルディンA及びモネンシンを含有する培地中において培養した。NKG2D結合性ドメインコーティングウェル内での培養後、CD3、NK1.1及びIFN-γに対するフルオロフォアコンジュゲート抗体を使用するフローサイトメトリーにより、NK細胞についてアッセイした。CD107a及びIFN-γについての染色を、CD3-NK1.1+細胞内において解析して、NK細胞の活性化について評価した。CD107a/IFN-γ二重陽性細胞の増大は、1つの受容体ではなく、2つの活性化受容体のエンゲージメントを介して、より良好なNK細胞の活性化を示す。NKG2D結合性ドメイン及び陽性対照(eBioscienceにおいて市販されている抗マウスNKG2DクローンであるMI-6及びCX-5から選択)は、アイソタイプ対照より高い、CD107a+/IFN-γ+となるNK細胞の百分率を示した(図15及び図16は、各々が、異なるマウスを、NK細胞調製物のために使用する、2つの独立の実験からのデータを表す)。
ヒト及びマウスの初代NK細胞活性化アッセイは、NKG2D結合性ドメインを伴うインキュベーションの後において、NK細胞上の細胞傷害作用マーカーの増大を裏付けた。これが、腫瘍細胞溶解の増大へと橋渡しされるのか否かについて取り組むために、各NKG2D結合性ドメインを、単一特異性抗体へと開発した、細胞ベースのアッセイを利用した。NK細胞を活性化するために、Fc領域が、1つのターゲティングアームとして使用される一方、Fab断片領域(NKG2D結合性ドメイン)は、別のターゲティングアームとして作用した。ヒト由来であり、高レベルのFc受容体を発現するTHP-1細胞を、腫瘍標的として使用し、Perkin Elmer DELFIA Cytotoxicity Kitを使用した。THP-1細胞を、BATDA試薬により標識し、培養培地中1mL当たり105個において再懸濁させた。次いで、標識付けされたTHP-1細胞を、マイクロ滴定プレートのウェル内、37℃において、3時間にわたり、NKG2D抗体及び単離マウスNK細胞と組み合わせた。インキュベーション後、20μLの培養物上清を除去し、200μLのユーロピウム溶液と混合し、暗所内において、振とうしながら、15分間にわたりインキュベートした。時間分解蛍光モジュールを装備した、PheraStarプレートリーダー(励起波長:337nm、発光波長:620nm)により、蛍光を、時間の経過とともに測定し、キットの指示書に従い、特異的溶解を計算した。
示差走査蛍光測定を使用して、NKG2D結合性ドメインの融点についてアッセイした。外挿された見かけの融点は、典型的なIgG1抗体と比べて高い(図18)。
初代ヒトNK細胞についての活性化アッセイ
密度勾配遠心分離を使用して、末梢血単核細胞(PBMC)を、ヒト末梢血バフィーコートから単離した。陰性磁気ビーズを使用して、NK細胞を、PBMCから精製した(StemCell:#17955)。NK細胞は、フローサイトメトリーにより決定された通り、>90%のCD3-CD56+であった。次いで、活性化アッセイにおける使用の前に、100ng/mLのhIL-2(Peprotech:#200-02)を含有する培地中において、細胞を、48時間にわたり拡大した。4℃において、一晩にわたり、100pLの滅菌PBS中に、2μg/mL(抗CD16、Biolegend:#302013)及び5μg/mL(抗NKG2D、R&D:#MAB139)の濃度で、96ウェル平底プレートに抗体をコーティングするのに続き、過剰量の抗体を除去するために、ウェルを、十分完全に洗浄した。脱顆粒を評価するために、IL-2活性化NK細胞を、100ng/mLのヒトIL-2(hIL2)及び1μg/mLのAPCコンジュゲート抗CD107a mAb(Biolegend:#328619)を補充した培養培地中、1mL当たりの細胞5×105個において再懸濁させた。次いで、ウェル1つ当たりの細胞1×105個を、抗体によりコーティングしたプレートへと添加した。タンパク質輸送阻害剤である、ブレフェルディンA(BFA、Biolegend:#420601)及びモネンシン(Biolegend:#420701)を、それぞれ、1:1000及び1:270の最終希釈率において添加した。播種された細胞は、5%のCO2中、37℃において、4時間にわたりインキュベートした。IFN-γについての細胞内染色のために、NK細胞を、抗CD3 mAb(Biolegend:#300452)及び抗CD56 mAb(Biolegend:#318328)により標識し、その後、固定し、透過処理し、抗IFN-γ mAb(Biolegend:#506507)により標識した。CD56+CD3-生細胞についてゲートをかけた後に、フローサイトメトリーにより、NK細胞を、CD107a及びIFN-γの発現について解析した。
HT29ヒト結腸がん細胞系及びHCT-116ヒト結腸がん細胞系を使用して、TriNKETの、細胞表面c-METへの結合について評価した。A49MI-デュオボディー-TriNKETを希釈し、HT29細胞及びHCT-116細胞と共にインキュベートした。フルオロフォアコンジュゲート抗ヒトIgG二次抗体を使用して、TriNKET及び親モノクローナル抗体の結合パターンを検出した。フローサイトメトリーにより細胞について解析し、二次抗体だけの対照に対するMFI倍数を報告した。図35及び図36は、抗c-METモノクローナル抗体、及び同じ抗c-METに結合性Fabが組み込まれている対応するTriNKETのそれぞれの、結腸がん細胞系であるHT29及びHCT-116への用量依存的結合を示す。TriNKETは、各細胞系に、対応するモノクローナル抗体と比較して、高度な最大結合レベルで、しかし最大半量結合濃度をわずかに増大させて(すなわち、親和性をわずかに低減して)結合したが、これらの差違は、HT29について、より顕著であった。
DELFIA細胞傷害作用アッセイを使用して、c-METターゲティングTriNKETが、初代NK細胞の、c-MET陽性がん細胞に対する細胞傷害作用を誘発する能力を評価した。略述すると、密度勾配遠心分離を使用して、PBMCを、ヒト末梢血バフィーコートから単離した。単離されたPBMCを洗浄し、磁気ビーズによる陰性選択技法を使用して、NK細胞を単離した。単離されたNK細胞の純度は、典型的に、>90%のCD3-CD56+であった。単離されたNK細胞は、サイトカインを伴わずに、一晩にわたり休眠させた。
本明細書で参照された、特許文献及び学術論文の各々の全開示は、全ての目的のために、参照により、組み込まれる。
本発明は、この精神又は本質的特徴から逸脱しない限りにおいて、他の特異的形態においても実施されうる。したがって、前出の実施形態は、全ての点において、本明細書において記載された本発明を限定するものではなく、例示的なものであると考えられるべきである。したがって、本発明の範囲は、前出の記載ではなく、付属の特許請求の範囲により示され、特許請求の範囲の意味の中及び均等性の範囲内に収まる、全ての変化は、この中に包含されることが意図される。
Claims (9)
- CD16に結合するFc領域および2つの抗原結合性部位を含む三特異性結合タンパク質であって、
前記2つの抗原結合性部位が、NKG2Dに結合する第1の抗原結合性部位およびcMETに結合する第2の抗原結合性部位からなり、前記タンパク質が、3つのポリペプチドを含み、
a)第1のポリペプチドが、
i)NKG2Dに結合するFabフラグメントの重鎖可変ドメイン、
ii)CH1ドメイン、
iii)第1のCH2ドメイン、および
iv)第1のCH3ドメインを含み、
b)第2のポリペプチドが、
i)NKG2Dに結合するFabフラグメントの軽鎖可変ドメイン、および
ii)CLドメインを含み、
c)第3のポリペプチドが、
i)cMETに結合するscFv、
ii)第2のCH2ドメイン、および
iii)第2のCH3ドメインを含み、
(1)NKG2Dに結合するFabの重鎖可変ドメインは、それぞれ配列番号387、配列番号88、および配列番号390のアミノ酸配列のCDR1、CDR2、およびCDR3を含み、NKG2Dに結合するFabの軽鎖可変ドメインは、それぞれ配列番号90、配列番号91、および配列番号92のアミノ酸配列のCDR1、CDR2、およびCDR3を含み、
(2)cMETに結合するscFvの重鎖可変ドメインは、それぞれ配列番号414、配列番号415、および配列番号416のアミノ酸配列のCDR1、CDR2、およびCDR3を含み、cMETに結合するscFvの軽鎖可変ドメインは、それぞれ配列番号418、配列番号419、および配列番号420のアミノ酸配列のCDR1、CDR2、およびCDR3を含み、
(3)CD16に結合するFc領域は、第1のCH2ドメイン、第1のCH3ドメイン、第2のCH2ドメイン、および第2のCH3ドメインを含む、三特異性結合タンパク質。 - NKG2Dに結合する第1の抗原結合性部位が、配列番号388のアミノ酸配列を含む重鎖可変ドメインおよび配列番号86のアミノ酸配列を含む軽鎖可変ドメインを含む、請求項1に記載のタンパク質。
- c-METに結合する第2の抗原結合性部位が、配列番号413のアミノ酸配列を含む重鎖可変ドメインおよび配列番号417のアミノ酸配列を含む軽鎖可変ドメインを含む、請求項2に記載のタンパク質。
- 前記scFv重鎖可変ドメインが、前記scFv軽鎖可変ドメインとジスルフィド架橋を形成する、請求項3に記載のタンパク質。
- 前記ジスルフィド架橋が、前記scFv重鎖可変ドメインに由来するC44と、前記scFv軽鎖可変ドメインに由来するC100との間において形成される、請求項4に記載のタンパク質。
- 前記scFv内で、前記重鎖可変ドメインが、可撓性リンカーを介して、前記軽鎖可変ドメインに連結されている、請求項5に記載のタンパク質。
- 前記可撓性リンカーが、(G 4 S) 4 を含む、請求項6に記載のタンパク質。
- 前記scFv内において、前記重鎖可変ドメインが、前記軽鎖可変ドメインのC末端に位置する、請求項7に記載のタンパク質。
- 前記Fc領域が、ヒトIgG1のFc領域のアミノ酸配列を含み、該ヒトIgG1配列に対して以下の変異:Q347R、Y349C、D399V、F405T、およびK409Wを含み、前記Fc領域の一方の鎖が、Q347R、Y349C、D399V、およびF405T変異を含み、前記Fc領域の他方の鎖が、S354C、K360E、およびK409W変異を含む、請求項3に記載のタンパク質。
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