JP7479078B2 - 光切断性タンパク質を含むエクソソーム及びその用途 - Google Patents

光切断性タンパク質を含むエクソソーム及びその用途 Download PDF

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Description

発明の詳細な説明
〔技術分野〕
本発明は、光切断性タンパク質（ｐｈｏｔｏｃｌｅａｖａｂｌｅ ｐｒｏｔｅｉｎ）を含むエクソソーム及びその用途に関し、より具体的には、標的タンパク質及び光切断性タンパク質であるｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソーム及びその用途に関する。
本出願は、２０２０年２月１０日付け出願の韓国特許出願第１０－２０２０－００１５６９６号及び２０２１年２月４日付け出願の韓国特許出願第１０－２０２１－００１５８３７号に基づく優先権を主張し、当該出願の明細書及び図面に開示された内容は、すべて本出願に組み込まれる。
〔背景技術〕
現在の殆どのタンパク質治療法は細胞膜タンパク質をターゲットにする。しかし、多くの疾病の病原因子は主に細胞の内部に存在し、このような病原因子をターゲットにするためには治療学的タンパク質を細胞内に伝達する技術が必要である。
そこで、近年、標的タンパク質を細胞内に直接流入させる方法が盛んに研究されている。そのうちの一つである脂質ナノ粒子を用いた治療学的タンパク質伝達技術は、脂質ナノ粒子が治療学的タンパク質から効果的に分離されないという問題があり、ウイルスの細胞内部浸透過程に主な役割をするタンパク質伝達体（ＰＴＤ：ｐｒｏｔｅｉｎ ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ ｄｏｍａｉｎ）を用いた伝達技術は、タンパク質伝達体が血液や腸液のような体液に露出する場合に分解されるという問題がある。
したがって、細胞内部に存在する特定疾病の病原因子をターゲットにするためには、治療学的タンパク質を効果的に細胞内部に伝達する技術が必要な実情である。
一方、エクソソーム（Ｅｘｏｓｏｍｅ）は、脂質二重層から構成された小胞（ｖｅｓｉｃｌｅ）であって、細胞が細胞外に分泌する物質の構成体である。エクソソームは、細胞間コミュニケーション（ｃｅｌｌ－ｃｅｌｌ ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎ）及び細胞性免疫を媒介する機能的な役割を果たすため、細胞内の生体分子であるタンパク質、生理活性脂質及びＲＮＡ（ｍｉＲＮＡ）を輸送（運搬）する役割を果たすと知られている。このようなエクソソームは、アルツハイマーなどの神経疾患のバイオマーカーとしても研究されており、脳脊髄液と血液とを分離する血液脳関門（ｂｌｏｏｄ－ｂｒａｉｎ ｂａｒｒｉｅｒ、ＢＢＢ）を透過するほど選択的透過性が高いため、特定薬物のナノ担体（ｎａｎｏｃａｒｒｉｅｒ）のような薬物伝達システムの開発にも活用されている。
治療学的タンパク質を伝達する技術に関連して、韓国特許公開第１０－２０１８－００３６１３４号公報には、光特異的結合タンパク質を用いてスーパーリプレッサーＩκタンパク質を含むエックソソムの製造方法、及び該製造方法によって製造されたエックソソムを有効成分として含む炎症性疾患の予防及び治療用薬学的組成物が開示されている。また、特表第２０１９－５２８６７４号公報には、カーゴタンパク質を含むエクソソームの大量生成方法、エクソソームを調製するためのベクター、該方法によって調製されたカーゴタンパク質を含むエクソソーム、それによって調製されたエクソソームを使用することによってカーゴタンパク質をサイトゾルにロードする方法が開示されている。
しかし、上記の文献は、エクソソーム内の融合タンパク質の構成として光特異的結合タンパク質を開示し、これはＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムとして光特異的結合タンパク質を二つ用いるため、細胞に発現時に二つのコンストラクトをコトランスフェクション（ｃｏ－ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）させねばならないため効率が低下し、エクソソームの生成中に４８８ｎｍの光を細胞に照射し続けなければならず細胞に影響を及ぼすおそれがあり、エクソソームに含まれる輸送タンパク質量の損失が生ずる。また、エクソソーム形成後に光を照射しない条件でＣＩＢＮとＣＲＹ２との結合が維持されれば、輸送タンパク質が自由に移動できず、エクソソーム特異的タンパク質に縛られていることがあり得る。また、輸送タンパク質に融合させるＣＲＹ２の大きさが６５ｋＤａと大きいため、輸送タンパク質固有の機能に影響を及ぼし得、細胞への発現を確認するためにはＥＧＦＰのような蛍光タンパク質を別途に融合して使用しなければならず、光を照射しなかったときのＣＲＹ２－ＣＩＢＮ結合の解除如何を確認する方法がないという短所がある。
そこで、本発明者らは、従来公知されたＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムを用いたタンパク質伝達技術の短所を解消し、安全且つ効率的にタンパク質を細胞内に伝達可能な方法を開発しようとした。
〔発明の概要〕
〔発明が解決しようとする課題〕
本発明者らは、光切断性タンパク質であるｍＭａｐｌｅ３が細胞内に伝達しようとする標的タンパク質に結合された融合タンパク質が含有されたエクソソームに光を照射する場合、前記ｍＭａｐｌｅ３が切断されて安全且つ効率的にエクソソーム内の標的タンパク質をターゲット細胞内に伝達できることを確認し、それに基づいて本発明を完成した。
本発明の目的は、標的タンパク質、光切断性タンパク質、及びエクソソーム特異的マーカータンパク質を含む融合タンパク質を含有するエクソソーム及びその用途を提供することである。
しかし、本発明が成そうとする技術的課題は、上述した課題に制限されず、その他の課題は下記の説明から本発明が属する技術分野で通常の知識を持つ者に明確に理解できるであろう。
〔課題を解決するための手段〕
上記の目的を達成するため、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームを提供する。
また、本発明は、前記エクソソームを有効成分として含む、標的タンパク質の細胞内伝達用組成物を提供する。
また、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームに光を照射する段階と、
前記光を照射したエクソソームをターゲット細胞に処理する段階と、を含む、試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）標的タンパク質の細胞内伝達方法を提供する。
また、本発明は、（ａ）タンパク質候補薬物及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質を含有するエクソソームに光を照射する段階と、
（ｂ）前記光を照射したエクソソームをターゲット細胞に処理する段階と、
（ｃ）前記ターゲット細胞内でｍＭａｐｌｅ３が蛍光を発する場合、タンパク質候補薬物が細胞内に伝達されたと確認する段階と、を含む、細胞内伝達用タンパク質候補薬物のスクリーニング方法を提供する。
本発明の一具現例において、前記融合タンパク質は、エクソソーム特異的マーカータンパク質をさらに含み得る。
また、本発明は、下記の段階を含む、前記融合タンパク質の製造方法を提供する。
（Ｓ１）標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡをそれぞれ増幅させる段階；
（Ｓ２）前記増幅された標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合し、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製造する段階；
（Ｓ３）前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをベクターに導入した後、細胞にトランスフェクションして融合タンパク質を発現させる段階。
また、本発明は、下記の段階を含む、前記エクソソームの製造方法を提供する。
（Ｓ１）標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡをそれぞれ増幅させる段階；
（Ｓ２）前記増幅された標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合し、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製造する段階；
（Ｓ３）前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをエクソソーム産生細胞にトランスフェクションし、細胞培養培地からエクソソームを分離及び精製する段階。
本発明の一具現例において、前記（Ｓ２）で増幅された標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合する前に、増幅されたｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡ及びエクソソーム特異的マーカータンパク質のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合する段階を含み得る。
本発明の他の具現例において、前記エクソソームの製造方法の（Ｓ３）におけるのエクソソームの分離は、ＴＦＦ（ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ－ｆｌｏｗ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）、超遠心分離（ｕｌｔｒａｃｅｎｔｒｉｆｕｇａｔｉｏｎ）、サイズ排除クロマトグラフィー（ｓｉｚｅ ｅｘｃｌｕｓｉｏｎ ｃｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙ）、及びエクソソーム単離キット（ｅｘｏｓｏｍｅ ｉｓｏｌａｔｉｏｎ ｋｉｔ）からなる群より選択された一つの方法を用い得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記ｍＭａｐｌｅ３は、配列番号１のアミノ酸配列を含み得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記ｍＭａｐｌｅ３は、配列番号２の塩基配列を含む遺伝子によってコーディングされ得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記標的タンパク質は、細胞内に伝達しようとするタンパク質であり得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記標的タンパク質は、疾患治療用タンパク質または疾患診断用タンパク質であり得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記エクソソーム特異的マーカータンパク質は、ＣＤ９、ＣＤ６３、及びＣＤ８１からなる群より選択された一つ以上であり得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記エクソソームに光を照射する段階を通じてエクソソーム内のｍＭａｐｌｅ３が切断され得る。
本発明のさらに他の具現例において、前記光は、４０１ｎｍ～４８０ｎｍの波長を有し得る。
また、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームを含む組成物を個体に投与する方法を含む、標的タンパク質の細胞内伝達方法を提供する。
また、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームを含む組成物の、標的タンパク質を細胞内に伝達するための用途を提供する。
また、本発明は、標的タンパク質の細胞内伝達用製剤を生産するための、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームの用途を提供する。
〔発明の効果〕
本発明によるエクソソームは、青色蛍光タンパク質（ＴａｇＢＦＰ）、光切断性タンパク質（ｍＭａｐｌｅ３）、及びエクソソーム特異的マーカータンパク質（ＣＤ９）を含む融合タンパク質が含有されており、前記エクソソームに４０５ｎｍの光を照射する場合、光切断性タンパク質であるｍＭａｐｌｅ３が切断されてエクソソーム内の青色蛍光タンパク質をターゲット細胞内に伝達することができる。また、Ｃｒｅ融合タンパク質（Ｃｒｅ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソームに４０５ｎｍの光を照射する場合、エクソソーム内のＣｒｅタンパク質を動物の臓器内に伝達することができる。したがって、本発明による光切断性タンパク質を含むエクソソームは、多様な治療学的タンパク質を細胞内で安全且つ効率的に伝達することで、タンパク質治療分野に有用に利用することができると期待される。
〔図面の簡単な説明〕
［図１］本発明の一具現例による標的タンパク質（青色蛍光タンパク質）と光切断性タンパク質とエクソソーム特異的マーカータンパク質とを結合させた融合タンパク質の構造及びその特徴を図式化した図である。
［図２］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の製造過程及び細胞における発現を確認した結果を示した図である。
［図３ａ］ＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムを簡単に図式化した図である。
［図３ｂ］本発明の一具現例によるｍＭａｐｌｅシステムを簡単に図式化した図である。
［図４ａ］本発明の一具現例によるＨＥＫ２９３Ｔ細胞内において、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果を共焦点顕微鏡で確認した結果である。
［図４ｂ］図４ａに示された蛍光の強度を測定して示したグラフである。
［図４ｃ］本発明の一具現例によるＨＥＫ２９３Ｔ細胞内において、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果をウェスタンブロットを通じて確認した結果である。
［図５］本発明の一具現例によるエクソソームの分離及び精製過程を図式化した図である。
［図６ａ］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームの粒子径をＮＴＡ（ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｔｒａｃｋｉｎｇ ａｓｓａｙ、ナノ粒子追跡解析）で測定した結果である。
［図６ｂ］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームの粒子径をＤＬＳ（ｄｙａｎｍｉｃ ｌｉｇｈｔ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、動的光散乱）で測定した結果である。
［図６ｃ］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームの濃度をｍｉｃｒｏＢＣＡ（ｍｉｃｒｏ－ｂｉｃｉｎｃｈｏｎｉｎｉｃ ａｃｉｄ、マイクロビシンコニン酸アッセイ）で測定した結果である。
［図６ｄ］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームのゼータ電位を測定した結果である。
［図６ｅ］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームを観察した低温電子顕微鏡（Ｃｒｙｏ－ＴＥＭ）のイメージである。
［図６ｆ］本発明の一具現例によるエクソソームにおいて、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果をウェスタンブロットを通じて確認した結果である。
［図６ｇ］本発明の一具現例によるエクソソームにおいて、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果、及びエクソソーム内の青色蛍光タンパク質含有如何を蛍光強度の測定を通じて確認した結果である。
［図７］本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームに対する、トリトンＸ－１００、タンパク質分解酵素（プロテイナーゼＫ）、及び光処理の有無による標的タンパク質の分解如何を確認した結果である。
［図８ａ］本発明の一具現例によるエクソソーム内の青色蛍光タンパク質の細胞内伝達効果を確認した結果である。
［図８ｂ］本発明の一具現例によるエクソソーム内の青色蛍光タンパク質の細胞内伝達効果を確認した結果である。
［図９］本発明の一具現例による融合タンパク質（Ｃｒｅ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームを動物に投与する場合、エクソソーム内のＣｒｅタンパク質の動物臓器内の伝達効果を確認した結果である。
〔発明を実施するための形態〕
本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームを提供する。
また、本発明は、前記エクソソームを有効成分として含む、標的タンパク質の細胞内伝達用組成物を提供する。
また、本発明は、下記の段階を含む、前記融合タンパク質の製造方法を提供する。
（Ｓ１）標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡをそれぞれ増幅させる段階；
（Ｓ２）前記増幅された標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合し、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製造する段階；
（Ｓ３）前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをベクターに導入した後、細胞にトランスフェクションして融合タンパク質を発現させる段階。
また、本発明は、下記の段階を含む、前記エクソソームの製造方法を提供する。
（Ｓ１）標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡをそれぞれ増幅させる段階；
（Ｓ２）前記増幅された標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合し、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製造する段階；
（Ｓ３）前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをエクソソーム産生細胞にトランスフェクションし、細胞培養培地からエクソソームを分離及び精製する段階。
本発明において、前記（Ｓ２）で増幅された標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合する前に、増幅されたｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡ及びエクソソーム特異的マーカータンパク質のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合する段階を含み得る。
本発明において、前記（Ｓ３）は、前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをエクソソーム産生細胞にトランスフェクションし、細胞培養培地をペニシリン／ストレプトマイシンを含むＦＢＳフリーＤＭＥＭ培地に交換した後、培地を回収し、回収した培地からエクソソームを分離及び精製する段階であり得る。
本発明において、前記（Ｓ３）におけるエクソソームの分離は、ＴＦＦ、超遠心分離、サイズ排除クロマトグラフィー、及びエクソソーム単離キットからなる群より選択された一つの方法を用い得るが、これらに制限されない。
本発明において、「融合タンパク質」は、二つ以上のタンパク質融合で生成されたタンパク質であって、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含み、エクソソーム特異的マーカータンパク質をさらに含み得る。前記融合タンパク質を構成する標的タンパク質、ｍＭａｐｌｅ３、及びエクソソーム特異的マーカータンパク質は、一つに結合された形態であり得、例えば標的タンパク質－ｍＭａｐｌｅ３－エクソソーム特異的マーカータンパク質の順であり得る。標的タンパク質のトラッキングが必要な場合は、エクソソーム特異的マーカータンパク質－ｍＭａｐｌｅ３－標的タンパク質の順であり得るが、これらの結合順序に制限はない。
本発明において、「標的タンパク質」は、光切断性タンパク質に結合された形態でエクソソーム内に存在するタンパク質であって、ターゲットにする細胞内または組織内に伝達しようとするタンパク質を意味する。前記標的タンパク質は、疾患治療用タンパク質または疾患診断用タンパク質であり得、その種類には制限がない。例えば、標的タンパク質として癌抑制タンパク質であるｐ５３を癌細胞に伝達して癌治療効果を奏し得る。また、パーキン（ｐａｒｋｉｎ）タンパク質に発生する突然変異によって正常に機能できずに発生するパーキンソン病において、正常なパーキンタンパク質をニューロンに伝達することで、パーキンソン病の治療効果を奏し得る。さらに、次世代幹細胞治療法の研究において最も重要な過程である患者の体細胞を幹細胞に脱分化させる過程で必要なタンパク質である山中因子（Ｙａｍａｎａｋａ ｆａｃｔｏｒｓ）としてＯｃｔ４、Ｓｏｘ２、ｃ－Ｍｙｃ、及びＫｌｆ４タンパク質を効果的に患者の体細胞で伝達することで、現在幹細胞の脱分化のために使用されているウイルスなしに幹細胞への脱分化が可能である。また、標的タンパク質としてミオゲニン（ｍｙｏｇｅｎｉｎ）及びＭｙｏＤのような筋分化誘導タンパク質の伝達を通じて、進行性筋力低下、萎縮、及び筋繊維の壊死を特徴とする筋ジストロフィー（ｍｕｓｃｕｌａｒ ｄｙｓｔｒｏｐｈｙ）などの退行性筋肉症に対する治療効果を奏し得る。また、神経退行性脳疾患のうちの一つである痴呆において、脳神経保護効果があると知られたＮＲＦ２及びＢＤＮＦタンパク質の伝達を通じて痴呆治療効果を奏し得、白色脂肪細胞を褐色脂肪細胞に分化させるＰＧＣ１α、ＰＰＡＲ－γのような褐色脂肪誘導因子の伝達を通じて代謝疾患の治療効果を奏し得る。本発明の一具現例では、青色蛍光タンパク質（ｂｌｕｅ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｐｒｏｔｅｉｎ）であるＴａｇＢＦＰを用いてその細胞内伝達如何を確認し、Ｃｒｅタンパク質を用いてその動物臓器内への伝達如何を確認した。
本発明において、「標的タンパク質の細胞内伝達」とは、エクソソーム内の光切断性タンパク質に結合された形態で存在する標的タンパク質をエクソソームからターゲットにする細胞の内部に移送することを意味する。
本発明において、「ｍＭａｐｌｅ３」は光切断性タンパク質であり、前記「光切断性タンパク質」とは、特定波長の光（ｌｉｇｈｔ）に露出したときに切断されるタンパク質を意味する。
本発明において、前記ｍＭａｐｌｅ３は、配列番号１のアミノ酸配列を含み得、配列番号２の塩基配列を含む遺伝子によってコーディングされ得る。
本発明において、「エクソソーム特異的マーカータンパク質」は、エクソソームの外膜に位置するタンパク質であって、例えばＣＤ９、ＣＤ６３、及びＣＤ８１からなる群より選択された一つ以上であり得、本発明の一具現例よれば、ＣＤ９であり得るが、これに制限されない。
本発明において、前記ＣＤ９は、配列番号３のアミノ酸配列を含み得、配列番号４の塩基配列を含む遺伝子によってコーディングされ得る。
本発明において、「エクソソーム（ｅｘｏｓｏｍｅ）」は、細胞間信号伝達のため、タンパク質、ＤＮＡ、ＲＮＡなどを捕集した状態で細胞外に分泌される脂質二重層から構成された膜構造の小胞（ｍｅｍｂｒａｎｅ ｖｅｓｉｃｌｅ）であって、ほぼ全体の真核生物の体液に存在する。エクソソームの粒子径は、１０ｎｍ～４００ｎｍ、１０ｎｍ～３５０ｎｍ、１０ｎｍ～３００ｎｍ、１０ｎｍ～２５０ｎｍ、１０ｎｍ～２００ｎｍ、１０ｎｍ～１５０ｎｍ、５０ｎｍ～３５０ｎｍ、５０ｎｍ～３００ｎｍ、５０ｎｍ～２５０ｎｍ、５０ｎｍ～２００ｎｍ、５０ｎｍ～１５０ｎｍ、１００ｎｍ～３００ｎｍ、１００ｎｍ～２００ｎｍ、または１００ｎｍ～１５０ｎｍであり得、多重小胞体が細胞膜と融合するとき、細胞から放出されるか又は細胞膜から直接放出される。
前記エクソソームは、当業界に知られたエクソソーム抽出方法を用いて製造し得、抽出方法に制限はない。
また、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームに光を照射する段階と、
前記光を照射したエクソソームをターゲット細胞に処理する段階と、を含む、試験管内（ｉｎ ｖｉｔｒｏ）標的タンパク質の細胞内伝達方法を提供する。
また、本発明は、（ａ）タンパク質候補薬物及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質を含有するエクソソームに光を照射する段階と、
（ｂ）前記光を照射したエクソソームをターゲット細胞に処理する段階と、
（ｃ）前記ターゲット細胞内でｍＭａｐｌｅ３が蛍光を発する場合、タンパク質候補薬物が細胞内に伝達されたと確認する段階と、を含む、細胞内伝達用タンパク質候補薬物のスクリーニング方法を提供する。
本発明において、前記エクソソームに光を照射する段階を通じてエクソソーム内のｍＭａｐｌｅ３が切断され、このときの前記光は４０１ｎｍ～４８０ｎｍ、４０１ｎｍ～４７０ｎｍ、４０１ｎｍ～４６０ｎｍ、４０１ｎｍ～４５０ｎｍ、４０１ｎｍ～４４０ｎｍ、４０１ｎｍ～４３０ｎｍ、４０１ｎｍ～４２０ｎｍ、または４０１ｎｍ～４１０ｎｍの波長を有し得る。４００ｎｍ以下の光は紫外線（ＵＶ）であって、細胞やエクソソームに処理するときダメージを与えるおそれがあり、４８０ｎｍを超過する波長の光も、細胞に処理するとき影響を与えるおそれがある。本発明において、前記光の波長は４０１ｎｍ～４８０ｎｍの範囲であれば制限されないが、本発明の一具現例によれば、望ましくは４０５ｎｍであり得る。
本発明において、前記（ｃ）段階でのｍＭａｐｌｅ３は、切断されていない場合は緑色蛍光を発し得、切断された場合、赤色蛍光を発し得る。
また、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームを含む組成物を個体に投与する方法を含む、標的タンパク質の細胞内伝達方法を提供する。
本発明において、「個体」とは、前記標的タンパク質を必要とする対象を意味し、より具体的には、ヒトまたは非ヒトである霊長類、マウス、イヌ、ネコ、ウマ、及びウシなどの哺乳類を意味する。
本発明において、「投与」とは、任意の適切な方法で個体に所定の本発明の組成物を提供することを意味する。
また、本発明は、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームを含む組成物の、標的タンパク質を細胞内に伝達するための用途を提供する。
また、本発明は、標的タンパク質の細胞内伝達用製剤を生産するための、標的タンパク質及びｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームの用途を提供する。
本発明の一実施例では、青色蛍光タンパク質（ＴａｇＢＦＰ）、光切断性タンパク質（ｍＭａｐｌｅ３）及びエクソソーム特異的マーカータンパク質（ＣＤ９）を結合させた融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を製造し、他の光切断性タンパク質の種類と比べて前記ｍＭａｐｌｅ３を使用したときに得られる長所、及びＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムと比べたときにｍＭａｐｌｅシステムが有する長所を確認した（実施例１参照）。
本発明の他の実施例では、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）をＨＥＫ２９３Ｔ細胞に過剰発現させた後、４０５ｎｍの光を照射したとき、４０５ｎｍの光によってｍＭａｐｌｅ３が切断されたことをＨＥＫ２９３Ｔ細胞内で確認した（実施例２参照）。
本発明のさらに他の実施例では、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を過剰発現させたＨＥＫ２９３Ｔ細胞の培地からエクソソームを分離及び精製し、４０５ｎｍの光を照射したとき、４０５ｎｍの光によってｍＭａｐｌｅ３が切断されたことをエクソソーム内で確認した（実施例３参照）。
本発明のさらに他の実施例では、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソームに対する、トリトンＸ－１００、タンパク質分解酵素（プロテイナーゼＫ）、及び４０５ｎｍの光処理の有無による標的タンパク質分解如何を確認した結果、トリトンＸ－１００を処理して人為的にエクソソームの脂質二重層を透過可能にしない限り、標的タンパク質がタンパク質分解酵素によって分解されることはなく、４０５ｎｍの光はエクソソームの脂質二重層に影響を与えないことを確認した（実施例４参照）。
本発明の一実験例では、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソームに４０５ｎｍの光を照射し、それをＨＥＫ２９３Ｔ細胞に処理したとき、エクソソーム内の青色蛍光タンパク質が細胞内に伝達されることを確認した（実験例１参照）。
本発明のさらに他の実験例では、Ｃｒｅ融合タンパク質（Ｃｒｅ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソームに４０５ｎｍの光を照射し、それをＣｒｅタンパク質が伝達されるとき赤色蛍光タンパク質（ｔｄＴｏｍａｔｏ）が発現される遺伝子組換えマウスに投与した場合、エクソソーム内のＣｒｅタンパク質がマウスの臓器内に伝達されることを確認した（実験例２参照）。
以下、本発明の理解を助けるために望ましい実施例及び実験例を提示する。しかし、下記の実施例及び実験例は、本発明をより容易に理解するために提供されるものであるだけで、下記の実施例及び実験例によって本発明の内容が限定されることはない。
実施例１．融合タンパク質の製造及び光切断性タンパク質の特徴比較
１－１．融合タンパク質の製造
青色蛍光タンパク質（ＴａｇＢＦＰ）、光切断性タンパク質（ｍＭａｐｌｅ３）及びエクソソーム特異的マーカータンパク質（ＣＤ９）を結合させた融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）をコーディングするｃＤＮＡを製造し、製造したｃＤＮＡから翻訳される融合タンパク質の構造及びその特徴を図１に図式化して示し、前記ＴａｇＢＦＰ、ｍＭａｐｌｅ３、及びＣＤ９のそれぞれのアミノ酸配列、並びにそれをコーディングする遺伝子配列を下記の表１に示した。
具体的には、まず、ＴａｇＢＦＰ、ｍＭａｐｌｅ３、ＣＤ９をコーディングするｃＤＮＡを製造し、それぞれＰＣＲを通じて増幅させ、増幅させたｍＭａｐｌｅ３及びＣＤ９のｃＤＮＡをＰＣＲを通じて一つのｃＤＮＡ（ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）に結合した。次いで、ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９のｃＤＮＡとＴａｇＢＦＰのｃＤＮＡとをＰＣＲを通じて一つのｃＤＮＡ（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）に結合することで、融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製作した。本発明で使用したプライマーは下記の表２に示した。
その後、哺乳類細胞で前記融合タンパク質が発現されるように、融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをｐＣＭＶ１４ベクターにＥｃｏＲ１とＸｂａ１制限酵素を用いてクローニングした。前記ｐＣＭＶ１４－ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９をＨＥＫ２９３Ｔ細胞にＰＥＩ（ポリエチレンイミン）を用いてトランスフェクションさせたとき、図２に示したように融合タンパク質の発現が確認された。
１－２．光切断性タンパク質の種類による特徴の比較
Ｄｅｎｄｒａ２、ｍＥｏｓ２、ｔｄＥｏｓ、ｍＫｉｋＧＲ、及びＫａｅｄｅなどの多様な種類の光切断性タンパク質（ＰＡＦＰ）及びｍＭａｐｌｅ３の特性を、従来文献（Ｓ．Ｗａｎｇ、ｅｔ ａｌ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．Ｕ．Ｓ．Ａ．１１１、８４５２－８４５７（２０１４））を参考して比較することで、上記の他の光切断性タンパク質と比べてｍＭａｐｌｅ３が有する長所を確認した。
その結果、下記の表３に示したように、オリゴマー化傾向及び凝集力において、多くの光切断性タンパク質は通常オリゴマーを形成しようとする傾向が強い一方、ｍＭａｐｌｅ３はモノマーを維持しようとする傾向が強く、凝集力が弱いことを確認した。
切断のための光の波長を示すＳｗｉｔｃｈλ結果に関連し、ＫｉｋＧＲ及びＫａｅｄｅは切断のために４００ｎｍ以下の光を必要とするが、４００ｎｍ以下はＵＶ（紫外線）であって、細胞やエクソソームに処理時にダメージを与えるおそれがある。一方、４００ｎｍ以上の光を照射する場合は、細胞に発現後に切断させるか又はエクソソームに含ませて切断させるときより安全であり、ｍＭａｐｌｅ３は４００ｎｍ以上の光で切断されることを確認した。
細胞内で発現される光切断性タンパク質の中には、蛍光を測定するまで完全にフォールディングされていない光切断性タンパク質が存在し得、完全にフォールディングされた光切断性タンパク質の中でも一部のみが光によって切断されて蛍光を発するが、ｍＭａｐｌｅ３の場合、細胞当り蛍光で感知されるＰＡＦＰ（ｐｈｏｔｏａｃｔｉｖａｔａｂｌｅ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｔ ｐｒｏｔｅｉｎ、光活性化可能な蛍光タンパク質）の数／実際ＰＡＦＰの発現量を示す細胞当り局所化数（Ｎｏ． ｏｆ ｌｏｃａｌｉｚａｔｉｏｎｓ）の値が高く、他の光切断性タンパク質に比べて切断されて蛍光を発する効率が著しく優れることを確認できた。
また、殆どの光切断性タンパク質が酸性敏感度を有する一方、ｍＭａｐｌｅ３の場合、報告された酸性敏感度がなかった。
１－３．ＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムとｍＭａｐｌｅシステムとの比較
図３ａに示したＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムは、二つの光特異的結合タンパク質を用いるため、常に二つのコンストラクトを使用しなければならず、この場合、細胞に発現時に二つのコンストラクトをコトランスフェクション（ｃｏ－ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ）させねばならないため効率が低下する。例えば、トランスフェクション効率が８０％である場合、二つのコンストラクトがすべて一細胞にトランスフェクションされる確率は６４％になる。一方、図３ｂに示したｍＭａｐｌｅシステムは、一つのコンストラクトを用いるため、より良い効率で細胞に発現させることが可能である。
そして、ＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムは、エクソソームの生成中に４８８ｎｍの光を細胞に照射し続けなければならず細胞に影響を及ぼすおそれがあり、光によるＣＩＢＮとＣＲＹ２との結合効率が１００％になることはないため、エクソソームに含まれる輸送タンパク質量の損失が生ずる短所があるが、ｍＭａｐｌｅシステムは、最初から輸送タンパク質が光切断性タンパク質とエクソソーム特異的マーカーに融合されているため、細胞がエクソソームを形成するときに損失される輸送タンパク質がなく、細胞に直接光を照射しなくても良いため安全である。
また、ＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムは、エクソソーム形成後に光を照射しない条件でＣＩＢＮとＣＲＹ２との結合が維持され得、このような場合には輸送タンパク質が自由に移動できず、エクソソーム特異的タンパク質に縛られていることがあり得る一方、ｍＭａｐｌｅシステムでは、エクソソームを形成した後にエクソソームに光照射することで光切断性タンパク質を切断するが、このとき切断効率が非常に高く、切断効率が高ければその分自由に移動可能な輸送タンパク質がエクソソームに多く発生するということを意味する。
さらに、ＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムは、輸送タンパク質に融合させるＣＲＹ２の大きさが６５ｋＤａと大きいため、輸送タンパク質固有の機能に影響を及ぼし得、細胞への発現を確認するためにはＥＧＦＰのような蛍光タンパク質を別途に融合して使用しなければならず、光を照射しなかったときのＣＲＹ２－ＣＩＢＮ結合の解除如何を確認する方法がないという短所がある。一方、ｍＭａｐｌｅシステムは、切断後に輸送タンパク質に付いている光切断性タンパク質破片の大きさがわずか１０ｋＤａに過ぎないため、輸送タンパク質固有の機能に影響を及ぼす可能性が非常に低く、光切断性タンパク質自体が蛍光タンパク質であるため、細胞への発現を緑色蛍光で確認可能であり、エクソソームに光を処理した後の光切断性タンパク質の切断如何も赤色蛍光で確認可能である。
上記のように、本発明による光切断性タンパク質ｍＭａｐｌｅ３が融合タンパク質に含まれる場合、他の種類の光切断性タンパク質及びＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムの光特異的結合タンパク質が含まれる場合に比べ、実施例１－２及び１－３で上述したような長所を示した。そこで、本発明の光切断性タンパク質ｍＭａｐｌｅ３を含む融合タンパク質を用いて細胞内へのタンパク質伝達効果を実験を通じて確認した。
実施例２．融合タンパク質の切断確認
ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を播種し、２４時間後に実施例１－１の方法でＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９のｃＤＮＡをＰＥＩを用いてトランスフェクションさせてＨＥＫ２９３Ｔ細胞に過剰発現させた後、４０５ｎｍの光を照射して光による切断効果を、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞内で共焦点顕微鏡及びウェスタンブロットで確認した。
共焦点顕微鏡の観察実験結果は、図４ａからトランスフェクション２４時間後に共焦点顕微鏡（ＬＳＭ７００）を用いて融合タンパク質の発現如何を青色蛍光（ＴａｇＢＦＰ）と緑色蛍光（ｍＭａｐｌｅ３）で確認し、４０５ｎｍの光を１分、５分、及び１０分間照射した後、融合タンパク質の切断如何を減少した緑色蛍光（切断前ｍＭａｐｌｅ３）の強度と増加した赤色蛍光（切断後ｍＭａｐｌｅ３）の強度で確認した。前記蛍光の強度を測定して図４ｂに示した。
その結果、図４ａ及び図４ｂに示したように、４０５ｎｍの光を照射する前にはｍＭａｐｌｅ３自体の緑色蛍光が現れ、４０５ｎｍの光照射後に赤色蛍光が現れることから、ｍＭａｐｌｅ３タンパク質が切断されたことを確認することができ、４０５ｎｍの光照射時間が長くなるほど、光切断性タンパク質（ｍＭａｐｌｅ３）が切断されて緑色蛍光が減少し、赤色蛍光が増加することを確認できた。
また、ウェスタンブロットを用いてトランスフェクション２４時間後に４０５ｎｍの光を細胞に５分間照射し、Ｔ－ｐｅｒバッファーを用いてタンパク質を抽出し、抽出したタンパク質を電気泳動で分離した後、融合タンパク質の発現及び４０５ｎｍの光による融合タンパク質の切断如何を確認した。その結果、図４ｃに示したように、４０５ｎｍの光照射時間が経過するほど、切断されていない融合タンパク質の量が減少する一方、切断された融合タンパク質切片の量は増加することが観察され、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞におけるｍＭａｐｌｅ３タンパク質の切断効果が確認できた。
実施例３．エクソソームの分離及び精製
実施例２で融合タンパク質を過剰発現させたＨＥＫ２９３Ｔ細胞の培地から接線流濾過（ｔａｎｇｅｎｔｉａｌ ｆｌｕｉｄ ｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）システムを通じてエクソソームを分離及び精製した。
具体的には、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を播種し、２４時間後にＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９のｃＤＮＡをＰＥＩを用いてトランスフェクションさせ、トランスフェクション２４時間後に細胞培養培地をＦＢＳフリーＤＭＥＭ（１％ＰＳ（ペニシリン／ストレプトマイシン））培地に交換した。培地交換の２４時間後、１次的に培地を回収し、ＦＢＳフリーＤＭＥＭ（１％ＰＳ）培地をさらに入れて後、２４時間後２次的に培地を回収した。１次、２次で回収した培地からエクソソームをＴＦＦ方法で分離及び精製した。エクソソームの分離及び精製過程は、図５に図式化して示した。
このような方法でエクソソームを分離及び精製した後、前記融合タンパク質を含有するエクソソームの濃度及び粒子径をＮＴＡ、ＤＬＳ及びｍｉｃｒｏＢＣＡで測定した。
ＮＴＡ測定の結果、図６ａに示したように、エクソソームの平均粒子径は１３２ｎｍであった。ＤＬＳ測定の結果、図６ｂに示したように、エクソソームの平均粒子径は１１７．７±１０．２８ｎｍであった。ｍｉｃｒｏＢＣＡ測定の結果、図６ｃに示したように、融合タンパク質含有エクソソームのタンパク質濃度は１４８７ｍｇ／ｍＬであり、エクソソーム１個当りの含有タンパク質量は３９．１３ｎｇであることが確認された。
また、エクソソームのゼータ電位を測定した結果、図６ｄに示したように、平均－１９．３±０．８ｍＶと確認され、エクソソームの低温電子顕微鏡（Ｃｒｙｏ－ＴＥＭ）のイメージ観察データを図６ｅに示した（スケールバー：１００ｎｍ）。
さらに、前記エクソソームにおける４０５ｎｍ光による融合タンパク質の切断効果をウェスタンブロットで確認した結果、図６ｆに示したように、４０５ｎｍの光を照射してから時間が経過につれて、切断されていない融合タンパク質の量は減少する一方、切断された融合タンパク質切片の量は増加することが観察され、エクソソームでのｍＭａｐｌｅ３タンパク質の切断効果を確認した。
４０５ｎｍ光による融合タンパク質の切断効果及びエクソソーム内の青色蛍光タンパク質含有如何をもう一度確認するため、エクソソームから青色蛍光、緑色蛍光、赤色蛍光の強度をＢｉｏＴｅｋ社製のマイクロプレートリーダーで測定した結果、図６ｇに示したように、青色蛍光の強度は４０５ｎｍ光の照射前と照射後とに差がないことを確認し、緑色蛍光の強度は４０５ｎｍ光の照射後に大幅に減少する一方、赤色蛍光の強度は増加することを観察することで、エクソソームにおける融合タンパク質の切断効果及びエクソソーム内の青色蛍光タンパク質含有如何を確認した。
実施例４．エクソソームにおける標的タンパク質の位置確認
実施例３で分離した、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソーム（＋ｍＭａｐｌｅ３エクソソーム）で標的タンパク質（ＴａｇＢＦＰ）の位置を確認するため、プロテアーゼ消化分析（ｐｒｏｔｅａｓｅ ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ ａｓｓａｙ）を行った。
具体的には、エクソソームの脂質二重層を透過可能にするトリトンＸ－１００及びタンパク質分解酵素（プロテイナーゼｋ）の処理有無による標的タンパク質の分解如何を確認した。
その結果、図７に示したように、トリトンＸ－１００を用いて人為的にエクソソームの脂質二重層を透過可能にしない限り、標的タンパク質（ＴａｇＢＦＰ）をはじめとするエクソソームの内部に存在するタンパク質（ＡＬＩＸ）がタンパク質分解酵素（プロテイナーゼｋ）によって分解されず、よく保護されていることが分かる。一方、エクソソームの外部にドメインを持っているタンパク質（ＬＡＭＰ２）は、トリトンＸ－１００の処理如何と関係なく、タンパク質分解酵素によって分解されることを確認した。また、４０５ｎｍの光はこのようなエクソソームの脂質二重層に影響を与えないことを確認した。
実験例１．エクソソーム内タンパク質の細胞への伝達確認
実施例３で分離した、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソーム（＋ｍＭａｐｌｅ３エクソソーム）、及び対照群として、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞培養液から分離及び精製した特定タンパク質を含有しないエクソソーム（＋ネガティブエクソソーム）に対し、４０５ｎｍの光を照射してＨＥＫ２９３Ｔ細胞に処理した。
具体的には、ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を播種し、２４時間後にＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９融合タンパク質含有エクソソームを５×１０９粒子／ｍＬの濃度で処理し、エクソソーム処理の２４時間後、前記ＨＥＫ２９３Ｔ細胞を４％パラホルムアルデヒドで固定させた後、ｃｙｔａｔｉｏｎ（登録商標）５細胞イメージング機械で青色蛍光タンパク質の伝達如何を確認した。
その結果、図８ａに示したように、ｍＭａｐｌｅ３を含むエクソソームを処理したとき、細胞内に青色蛍光（ＴａｇＢＦＰ）が現れることを観察し、エクソソームに光を照射することによって緑色蛍光（ＦＬｍＭａｐｌｅ３）が減少し赤色蛍光（ＣＬｍＭａｐｌｅ３）が増加したことを確認した。
また、前記エクソソームを同じ方法でＨｅＬａ細胞に処理した後、細胞内青色蛍光タンパク質の伝達如何を確認した結果、図８ｂに示したように、ＨｅＬａ細胞においても、青色蛍光が現れることを確認し、エクソソームに光を照射したとき、緑色蛍光が減少し赤色蛍光が増加したことを確認した。
このことから、ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９が含有されたエクソソームで４０５ｎｍの光処理によってｍＭａｐｌｅ３が切断され、青色蛍光タンパク質（ＴａｇＢＦＰ）が細胞内に伝達されたことを確認することができた。
実験例２．エクソソーム内タンパク質の動物臓器への伝達確認
実施例３のような方法で分離した、Ｃｒｅ融合タンパク質（Ｃｒｅ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）が含有されたエクソソームに４０５ｎｍの光を処理し、Ｃｒｅタンパク質が伝達されるときに赤色蛍光タンパク質（ｔｄＴｏｍａｔｏ）が発現される遺伝子組換えマウスに投与した。
具体的には、遺伝子組換えマウスにリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）または光を処理したエクソソーム（Ｃｒｅ：ＭＡＰＬＥＸ）５００μｇを尻尾血管に投与した後、１、６、２４時間後に赤色蛍光の強度をＩＶＩＳ小型動物イメージング機械で測定した。
その結果、図９に示したように、光を処理したエクソソームを投与したマウスの肝で赤色蛍光の強度が増加したことを確認した。このことから、Ｃｒｅ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９が含有されたエクソソームで４０５ｎｍの光処理によってｍＭａｐｌｅ３が切断され、Ｃｒｅタンパク質が臓器内に効果的に伝達されることを確認することができた。
上述した本発明の説明は、例示のためのものであり、本発明が属する技術分野で通常の知識を持つ者は本発明の技術的思想又は必須な特徴を変更することなく他の具体的な形態で容易に変形可能であることを理解できるであろう。したがって、上述した実施例はすべての面で例示的なものであって、限定的なものではないことを理解しなければならない。
〔産業上の利用可能性〕
本発明による光切断性タンパク質を含むエクソソームは、多様な治療学的タンパク質を細胞内に安全且つ効率的に伝達することで、タンパク質治療分野に有用に利用できると期待される。
本発明の一具現例による標的タンパク質（青色蛍光タンパク質）と光切断性タンパク質とエクソソーム特異的マーカータンパク質とを結合させた融合タンパク質の構造及びその特徴を図式化した図である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の製造過程及び細胞における発現を確認した結果を示した図である。 ＣＩＢＮ－ＣＲＹ２システムを簡単に図式化した図である。 本発明の一具現例によるｍＭａｐｌｅシステムを簡単に図式化した図である。 本発明の一具現例によるＨＥＫ２９３Ｔ細胞内において、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果を共焦点顕微鏡で確認した結果である。 図４ａに示された蛍光の強度を測定して示したグラフである。 本発明の一具現例によるＨＥＫ２９３Ｔ細胞内において、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果をウェスタンブロットを通じて確認した結果である。 本発明の一具現例によるエクソソームの分離及び精製過程を図式化した図である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームの粒子径をＮＴＡ（ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ ｔｒａｃｋｉｎｇ ａｓｓａｙ、ナノ粒子追跡解析）で測定した結果である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームの粒子径をＤＬＳ（ｄｙａｎｍｉｃ ｌｉｇｈｔ ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ、動的光散乱）で測定した結果である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームの濃度をｍｉｃｒｏＢＣＡ（ｍｉｃｒｏ－ｂｉｃｉｎｃｈｏｎｉｎｉｃ ａｃｉｄ、マイクロビシンコニン酸アッセイ）で測定した結果である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームのゼータ電位を測定した結果である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームを観察した低温電子顕微鏡（Ｃｒｙｏ－ＴＥＭ）のイメージである。 本発明の一具現例によるエクソソームにおいて、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果をウェスタンブロットを通じて確認した結果である。 本発明の一具現例によるエクソソームにおいて、融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）の光照射による切断効果、及びエクソソーム内の青色蛍光タンパク質含有如何を蛍光強度の測定を通じて確認した結果である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（ＴａｇＢＦＰ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームに対する、トリトンＸ－１００、タンパク質分解酵素（プロテイナーゼＫ）、及び光処理の有無による標的タンパク質の分解如何を確認した結果である。 本発明の一具現例によるエクソソーム内の青色蛍光タンパク質の細胞内伝達効果を確認した結果である。 本発明の一具現例によるエクソソーム内の青色蛍光タンパク質の細胞内伝達効果を確認した結果である。 本発明の一具現例による融合タンパク質（Ｃｒｅ－ｍＭａｐｌｅ３－ＣＤ９）を含有したエクソソームを動物に投与する場合、エクソソーム内のＣｒｅタンパク質の動物臓器内の伝達効果を確認した結果である。

Claims (19)

  1. エクソソーム特異的マーカータンパク質としてＣＤ９、光切断性タンパク質としてｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質を含む融合タンパク質が含有されたエクソソーム。
  2. 前記ｍＭａｐｌｅ３が、配列番号１のアミノ酸配列を含む、請求項１に記載のエクソソーム。
  3. 前記ｍＭａｐｌｅ３が、配列番号２の塩基配列を含む遺伝子によってコーディングされる、請求項１に記載のエクソソーム。
  4. 前記標的タンパク質が、細胞内に伝達しようとするタンパク質である、請求項１に記載のエクソソーム。
  5. 前記標的タンパク質が、疾患治療用タンパク質または疾患診断用タンパク質である、請求項４に記載のエクソソーム。
  6. 請求項１から５のいずれか一項に記載のエクソソームを有効成分として含む、標的タンパク質の細胞内伝達用組成物。
  7. 前記標的タンパク質が、細胞内に伝達しようとするタンパク質である、請求項６に記載の標的タンパク質の細胞内伝達用組成物。
  8. 前記標的タンパク質が、疾患治療用タンパク質または疾患診断用タンパク質である、請求項７に記載の標的タンパク質の細胞内伝達用組成物。
  9. 請求項１に記載の融合タンパク質の製造方法であって、
    （Ｓ１）ＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質のｃＤＮＡをそれぞれ増幅させる段階と、
    （Ｓ２）前記増幅されたＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合し、ＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質を含む融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製造する段階と、
    （Ｓ３）前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをベクターに導入した後、細胞にトランスフェクションして融合タンパク質を発現させる段階と、を含む、融合タンパク質の製造方法。
  10. 前記（Ｓ２）段階は、前記（Ｓ１）段階で増幅させたＣＤ９及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡ（ＣＤ９－ｍＭａｐｌｅ３）に結合させた後、前記ＣＤ９及びｍＭａｐｌｅ３が結合された一つのｃＤＮＡ（ＣＤ９－ｍＭａｐｌｅ３）及び標的タンパク質のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡ（ＣＤ９－ｍＭａｐｌｅ３－標的タンパク質）に結合させることによって行われる、請求項９に記載の融合タンパク質の製造方法。
  11. 請求項１に記載のエクソソームの製造方法であって、
    （Ｓ１）ＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質のｃＤＮＡをそれぞれ増幅させる段階と、
    （Ｓ２）前記増幅されたＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡに結合し、ＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質を含む融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡを製造する段階と、
    （Ｓ３）前記融合タンパク質をコーディングするｃＤＮＡをエクソソーム産生細胞にトランスフェクションし、細胞培養培地からエクソソームを分離及び精製する段階と、を含む、エクソソームの製造方法。
  12. 前記（Ｓ２）段階は、前記（Ｓ１）段階で増幅させたＣＤ９及びｍＭａｐｌｅ３のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡ（ＣＤ９－ｍＭａｐｌｅ３）に結合させた後、前記ＣＤ９及びｍＭａｐｌｅ３が結合された一つのｃＤＮＡ（ＣＤ９－ｍＭａｐｌｅ３）及び標的タンパク質のｃＤＮＡを一つのｃＤＮＡ（ＣＤ９－ｍＭａｐｌｅ３－標的タンパク質）に結合させることによって行われる、請求項１１に記載のエクソソームの製造方法。
  13. 前記（Ｓ３）段階でのエクソソームの分離は、ＴＦＦ、超遠心分離、サイズ排除クロマトグラフィー、及びエクソソーム単離キットからなる群より選択された一つの方法を用いる、請求項１１に記載のエクソソームの製造方法。
  14. ＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及び標的タンパク質を含む融合タンパク質が含有されたエクソソームに光を照射する段階と、
    前記光を照射したエクソソームをターゲット細胞に処理する段階と、を含む、試験管内標的タンパク質の細胞内伝達方法。
  15. 前記エクソソームに光を照射する段階を通じてエクソソーム内のｍＭａｐｌｅ３が切断される、請求項１４に記載の試験管内標的タンパク質の細胞内伝達方法。
  16. 前記光が、４０１ｎｍ～４８０ｎｍの波長を有する、請求項１４に記載の試験管内標的タンパク質の細胞内伝達方法。
  17. （ａ）ＣＤ９、ｍＭａｐｌｅ３、及びタンパク質候補薬物を含む融合タンパク質を含有するエクソソームに光を照射する段階と、
    （ｂ）前記光を照射したエクソソームを試験管内ターゲット細胞に処理する段階と、
    （ｃ）前記ターゲット細胞内でｍＭａｐｌｅ３が蛍光を発する場合、タンパク質候補薬物が細胞内に伝達されたと確認する段階と、を含む、細胞内伝達用タンパク質候補薬物の試験管内スクリーニング方法。
  18. 前記（ａ）段階で光を照射する場合、エクソソーム内のｍＭａｐｌｅ３が切断される、請求項１７に記載の細胞内伝達用タンパク質候補薬物のスクリーニング方法。
  19. 前記光が、４０１ｎｍ～４８０ｎｍの波長を有する、請求項１７に記載の細胞内伝達用タンパク質候補薬物のスクリーニング方法。
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