JP7469292B2 - 抗btla抗体 - Google Patents
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Description
A)、BTLAとHVEM(ヘルペスウイルスエントリーメディエータ)との結合をブロックすること
B)、カニクイザルBTLAと交差反応すること
C)、ヒトBTLAと結合されたKD≦0.28nM;又は
D)、ADCC効果を介しないこと。
別の実施形態では、本発明はまた、前記抗体又は抗原結合フラグメント、核酸、発現ベクター、宿主細胞、免疫抱合体又は医薬組成物の、疾患又は障害を治療又は予防する医薬品の製造における用途に関し、前記疾患又は障害は好ましくは、癌、感染症又は炎症疾患から選ばれ得るBTLA媒介性疾患である。
本発明をより容易に理解できるように、技術用語を以下のように定義する。本明細書の別の部分で明確に定義しない限り、使用されるすべての他の技術用語は、本発明の当業者が通常理解する定義を有する。
「Fv領域」は重鎖と軽鎖の両方からの可変領域を含むが、定常領域がない。
本発明は、要するに、BTLAと結合する単離抗体又はその抗原結合フラグメント、及びこのような抗体又はその抗原結合フラグメントの用途を提供する。より具体的には、本発明は、単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメント及びこれらの抗体又はその抗原結合フラグメントの、疾患の治療と予防における使用を提供する。抗BTLA抗体の例は、本明細書の前記ch7、ch12、ch17、ch22、ch27、hu17、hu18、及びhu19を含むが、これらに制限されない。
本発明は、また、本発明の抗体又はその抗原結合フラグメント(好ましくはヒト化抗体)を用いて、単離抗体又はその抗原結合フラグメントによる治療を必要とする受検者(ヒト受検者を含む)を治療又は予防する方法を提供する。該方法は、通常、治療又は予防有効量の本発明のいずれか1つの実施形態の前記抗体又はその抗原結合フラグメント、又は前記抗体又はその抗原結合フラグメントを含有する医薬組成物を、これを必要とする対象に、投与することを含む。実際の状況に応じて適切な投与方式を選択する。、この投与方式には、経口投与、静脈内投与、皮下投与、筋肉内投与、動脈内投与、関節内投与(たとえば関節炎に罹った関節において)、吸入、エアロゾル送達又は腫瘍内投与などが含まれるが、これらに制限されない。
本発明はまた、本発明の併用薬の成分を含む薬入れの形態の薬入れを提供する。本発明の薬入れは、1種又は複数種の成分を含み、このような成分には、本明細書の前記BTLAと特異的結合する抗体又は抗原結合フラグメント(たとえば抗体ch7、ch12、ch18、ch22、ch27、hu17、hu18及びhu19が挙げられるが、上記抗体に制限されない)と1種又は複数種の他の成分が含まれるが、これらに制限されなく、本明細書の前記薬学的に許容される担体及び/又は化学療法薬、が含まれるが、これらに制限されない。前記抗体又は抗原結合フラグメント及び/又は化学療法薬を単なる組成物にするか、又は医薬組成物において薬学的に許容される担体と組み合わせることができる。
本発明は、本明細書の前記いずれか1つの抗ヒトBTLA抗体又はその抗原結合フラグメントを含有する医薬組成物も含む。本明細書で使用される用語「医薬組成物」は、ある特定の目的を達成するために一緒に組み合わされる少なくとも1つの医薬品と、必要に応じて薬学的に使用可能な担体又は補助材料との組み合わせを意味する。いくつかの実施態様では、本発明の目的を達成するために協働し得る限り、前記医薬組成物は、時間的及び/又は空間的に分離された組み合わせを含む。たとえば、前記医薬組成物に含まれる成分は(たとえば、本発明の抗体、核酸分子、核酸分子の組み合わせる及び/又は抱合体に応じて)全体として対象に投薬するか、又は別々対象に投薬することができる。前記医薬組成物に含まれる成分が別々対象に投薬される場合、前記成分は同時に又は順次対象に投薬できる。好ましくは、前記薬学的に使用可能な担体は、水、緩衝水溶液、PBS(リン酸塩緩衝液)などの等張食塩溶液、グルコース、マニトール、デキストロース、乳糖、スターチ、ステアリン酸マグネシウム、セルロース、炭酸マグネシウム、0.3%グリセリン、ヒアルロン酸、エタノール又はポリアルキレングリコールたとえばポリプロピレングリコール、トリグリセリドなどである。使用される薬学的に使用可能な担体のタイプは、特に、本発明に係る組成物が経口投与、経鼻投与、皮内投与、皮下投与、筋内投与又は静脈投与用として調製されるかどうかにより決まる。本発明に係る組成物は、湿潤剤、乳化剤又は緩衝液物質を添加剤として含むことができる。本発明の免疫抱合体は、治療剤と結合する本明細書のいずれか1つの実施形態の前記抗体又はその抗原結合フラグメントを含有することができ、好ましくは前記治療剤は、本分野で周知しておる、免疫抱合体の製造によく使用される免疫毒素、放射性同位体、医薬品又は細胞傷害性剤である。
本発明は、本明細書のいずれか1つの実施形態の前記抗BTLA抗体及びその抗原結合フラグメントの、BTLA媒介性疾患の治療、予防及び診断における使用を提供する。いくつかの実施態様では、本発明は、BTLA媒介性疾患を治療、予防及び診断するための本明細書のいずれか1つの実施形態の前記抗BTLA抗体及びその抗原結合フラグメントを提供する。
Sino Biological Inc.からヒトBTLA遺伝子cDNA配列を含有するプラスミドHG11895ーGーNを購入し、フォワードプライマー5'-gtacGCTCTTCATGTaaagaatcatgtgatgtacagcttta-3'(SEQ ID NO:50)とリバースプライマー5'-gatcGCTCTTCTAGCatacaggagccagggtctgcttgcca-3'(SEQ ID NO:51)、PCRを用いてヒトBTLA細胞外フラグメント(ヌクレオチド配列はSEQ ID NO:49に示される)を増幅した。増幅フラグメントをBSPQIで酵素消化した後、自作した真核発現プラスミドシステム(HX1-FC)に挿入し、ヒトBTLA細胞外ドメインタンパク質(hBTLA-ECD-FC)の発現プラスミドを生成した。このプラスミドを用いてPEIにより293E細胞をトランスフェクションし、6日間後、培地上清を収集して、アフィニティークロマトグラフィーによりヒトBTLA細胞外ドメイン組換えタンパク質(hBTLA-ECD-FC)を精製した。
図1はヒトBTLA細胞外ドメインタンパク質のSDS-PAGE電気泳動図を示す。
ヒトHVEM(Gene Bank:NP_003811.2)を発現させた293F安定トランスフェクション細胞株の構築(hHVEM-293F)。hHVEM-293F細胞懸濁液とビオチン標識hBTLA(300ng/mL)とを混合し、室温で30分間インキュベートした。FACS緩衝液で細胞を3回洗浄した後、5μg/mlのNA-PEを加えて30分間インキュベートした。FACS緩衝液で細胞を3回洗浄した後、フローサイトメーター検出によりBTLA組換えタンパク質と293F細胞表面のHVEMとの結合を確認した。結果を図2に示す。
<3.1、動物免疫>
実施例1で得られた組換えタンパク質hBTLA-ECD-FCを抗原として等量の免疫アジュバント(フロイントアジュバント)と混合し、5匹の6週齢の雌Balb/eラットを皮下免疫した。最初免疫以降、2週間おきにブースト免疫を1回行い、合計6回免疫した。
<3.2、細胞融合>
最後のブースト免疫後、マウスの股間のリンパ節を取り、生理食塩水にてミーリングした後、リンパ球を豊富に含む懸濁液を、一般的なエレクトロトランスフェクション方法(BTX社のエレクトロトランスフェクション装置のハンドブックを参照)に従ってSP2/0細胞と融合した。融合細胞を、HATを含有するDEMM完全培地(Corning)にて8%CO2、37℃条件で培養した。
11500株の異なるポリクローナルハイブリドーマ細胞において、酵素(ELISA)反応により、560株の分泌した、抗体がヒトBTLAタンパク質に結合し得るクローンをスクリーニングした。この560株のクローンのうち、33株は293F細胞で発現させたBTLAに結合でき、この33株のクローンのうち、16株はビオチン標識ヒトBTLAと293F上HVEMとの結合を抑制する能力を有する。ここでこの16株のクローンのうちの前の4株(2D12、3B3、3E3、及び6A7)を重点として検討し、後続実験を行い、具体的なスクリーニングの実験方法を以下に示す。
<4.1、ELISAによるハイブリドーマ抗体とhBTLAとの結合の検出>
酵素反応(ELISA)により、分泌した抗体がhBTLAに結合するハイブリドーマ細胞株をスクリーニングした。384ウェルマイクロプレートを、1μg/mlのhBTLAで被覆し、4℃で一晩インキュベートした。次に、ウェル内の溶液を捨てて、洗浄緩衝液で回3洗浄し、1% BSAを含有するPBS溶液を加えて60分間ブロックした。洗浄緩衝液で3回洗浄した後、ハイブリドーマ培養上清を加え、室温で60分間インキュベート後、洗浄緩衝液で3回リンスした。その後、1:5000倍で希釈したHPR標識ヤギ抗マウスIgG二次抗体を加え、室温で30分間インキュベートした。洗浄緩衝液で3回リンスした後、30μl TMB基質溶液を加えて発色させ、室温で10分間反応させた後、30μlの塩酸溶液(2M)で反応を停止し、450nmで吸光度を読み出した。
<4.2、ELISAによるハイブリドーマ抗体結合hBTLAの種特異性の検出>
酵素反応(ELISA)によりハイブリドーマの分泌した抗体がカニクイザルBTLAに結合するハイブリドーマ細胞株をスクリーニングした。96ウェルマイクロプレートを、1μg/mlのカニクイザルBTLAで被覆し、室温で60分間インキュベートした。次に、ウェル内の溶液を捨てて、洗浄緩衝液で回3洗浄し、1% BSAを含有するPBS溶液を加えて60分間ブロックした。洗浄緩衝液で3回洗浄した後、ハイブリドーマ培養上清を加え、室温で60分間インキュベート後、洗浄緩衝液で3回リンスした。その後、1:5000倍で希釈したHPR標識ヤギ抗マウスIgG二次抗体を加え、室温で30分間インキュベートした。洗浄緩衝液で3回リンスした後、100μl TMB基質溶液を加えて発色させ、室温で10分間反応させた後、100μlの塩酸溶液(2M)で反応を停止して450nmで吸光度を読み出した。
<4.3、FACSによるハイブリドーマ抗体のBTLAとHVEM結合へのブロック作用の検出>
33株の抗体培養液の上清とビオチン標識ヒトBTLA(300ng/mL)とを混合し、室温で30分間インキュベートした。その後、混合物とhHVEMー293F安定トランスフェクション細胞株懸濁液とを室温で30分間インキュベートした。FACS緩衝液で細胞を3回洗浄した後、5μg/mlのNA-PEを加えて30分間インキュベートした。FACS緩衝液で細胞を3回洗浄した後、フローサイトメーター検出により、ハイブリドーマ細胞の分泌した抗体がヒトBTLAと293F細胞表面のHVEMとの結合をブロックする作用を有することを確認した。
縮重プライマーPCRに基づく方法により、候補ハイブリドーマで発現させたマウス抗体可変領域のDNA配列を測定した。簡単に言えば、ハイブリドーマ細胞株をそれぞれ拡大培養し、1000rpmで遠心分離して細胞を収集し、Trizolで全RNAを抽出した。これをテンプレートとして、第1の鎖cDNAを合成した後、第1の鎖cDNAを後続のテンプレートとしてPCRにより対応する可変領域配列を増幅し、使用されるPCRプライマーはIg-プライマー群に基づくものである。PCR産物を回収して精製し、増幅産物をシーケンシングしたところ、候補ハイブリドーマの重鎖可変領域と軽鎖可変領域配列が得られた。
標準的なPCR技術により候補マウス抗体の重鎖可変領域と軽鎖可変領域の遺伝子をそれぞれヒトIgG4のFC及びκ鎖定常領域のN末端に融合し、pcDNA3.1ベクターに挿入することにより、キメラ型重鎖又は軽鎖の発現プラスミドを構築した。後続のキメラ抗体はすべて上記重鎖と軽鎖の発現ベクタープラスミドを2つずつ組み合わせて発現細胞をトランスフェクションした後、精製して抽出することにより得られ、キメラ抗体ch7、ch12、ch17、ch22及びch27が得られた。ハイブリドーマ細胞がコードする軽鎖と重鎖の可変領域及びCDRのアミノ酸配列は以下に示される。
酵素反応(ELISA)によりキメラ抗体のhBTLAとの結合能力を検出した。0.5μg/mlのhBTLAで96ウェルマイクロプレートを被覆し、37℃の恒温で60分間インキュベートした。次に、ウェル内の溶液を捨てて、洗浄緩衝液で回3洗浄し、2% BSAを含有するPBS溶液を加えて60分間ブロックした。洗浄緩衝液で3回洗浄した後、勾配希釈した抗体を加え、37℃で60分間インキュベート後、洗浄緩衝液で3回リンスし、その後、1:10000倍で希釈したHRP標識マウス抗ヒトIgG4二次抗体を加え、37℃で1時間インキュベートして、洗浄緩衝液で3回リンスした後、100μl TMB基質溶液を加えて発色させ、室温で30分間反応後、100μl2Mの塩酸溶液で反応を停止し、450nmで吸光度を読み出した。
結果として、図3に示すように、キメラ抗体ch7、ch12、ch17、ch22及びch27はhBTLAと特異的結合し得る。そのEC50値を下表1に示す。
FACSにより、キメラ抗体の、hBTLAが293F細胞上のhHVEMに結合して発現することへのブロック能力を検出した。hHVEM-293Fを細胞に安定的に発現させて消化した後、遠心分離してFACS緩衝液に再懸濁させ、細胞量が2.5×104個の/50ulとなるように96ウェル丸底板のウェルに加え、予めビオチンで標識させたhBTLA(1ug/ml)タンパク質を加えて混合し、4°Cで15分間インキュベートし、次に、50ulの異なる濃度のキメラ抗体希釈液(開始は5ug/ml、3倍で滴定)を加えて均一に混合し、室温で30minインキュベートし、FACS緩衝液で細胞を2回洗浄した後、100ulヤギ抗ヒトIgGーPE抗体を加え、遮光下30minインキュベートし、FACS緩衝液で2回洗浄した後、FACS検出を行った。洗浄した細胞を、ヨウ化プロピジウム(PI)及びレシピエント生体の内在化を防止する0.02%アジ化ナトリウムを含有する4°C緩衝剤に再懸濁させた後、フローサイトメトリーにより分析した。FSC/SSCゲートからPI陽性細胞を排除し、生細胞についてゲート制御を行い、その幾何学的平均蛍光強度(MFI)を計測した。PrismTMソフトウェアのS形用量-応答モデルを用いてデータを分析した。
結果として、図4と下記表2に示すように、キメラ抗体ch12、ch17、ch22、及びch27は、ヒトBTLAと細胞表面のHVEMとの結合を効果的にブロックできる。
抗原提示細胞(APC)において主な組織適合性複合体I類又はクラスIIタンパク質を通じて提示した特異性ペプチドのT細胞受容体(TCR)を刺激により識別することにより、T細胞を活性化させた。活性化させたTCRはシグナリングイベントのカスケードを起動させ、これは、転写因子(たとえば活性化子-タンパク質-l(APーI)、活性化させたT細胞の核因子(NFAT)又は活性化させたB細胞の核因子κ軽鎖エンハンサー(NFκb))により駆動されるレポーター遺伝子を通じて監視できる。T細胞への構成又は誘導発現させた共同受容体の接合(engagement)によりT細胞応答を調整した。プログラム細胞死タンパク質(PD1)とBTLAはT細胞活性の負の調整物である。PDー1とBTLAはそれぞれAPC又は癌細胞を含む標的細胞で発現させたそのリガンド(PDーL1)及びHVEMと相互作用し、このような相互作用により、ホスファターゼをTCRシグナルサム(signalosome)に集めて抑制シグナルを送達することで、ポジティブシグナル伝達の抑制を発生させる。2個のエンジニアリングされた安定発現細胞系Jurkat細胞(Jurkat/NFATーLuc/hPD-1ーhBTLA)とCHO細胞(CHO/hPDーL1/hHVEM)を構築して、APCとT細胞の間の相互作用により誘導されたT細胞シグナル伝達を測定した。
結果として、図5と下記表3に示すように、キメラ抗体ch12、ch17、ch22、及びch27はBTLAとPDー1を介するT細胞活性抑制作用を効果的に抑制できる。
上記で得たハイブリドーマ細胞の分泌した抗体の可変領域配列に従って、ヒト化改変を行った。簡単に言えば、ヒト化改変の過程には、以下のステップを含む。
A、各ハイブリドーマ細胞の分泌した抗体の遺伝子配列とヒト胚性抗体の遺伝子配列とを比較し、相同性の高い配列を探す。
B、HLAーDR親和性を分析して調べて、親和力の低いヒト胚性フレームワーク配列を選択する。
C、コンピュータシミュレーション技術を利用して、分子ドッキングにより可変領域及びその周辺のフレームワークアミノ酸配列を分析し、その空間的な結合方式を調べる。静電力、ファンデルワールス力、親疎水性やエントロピー値を計算することにより、各ハイブリドーマ細胞の分泌した抗体の遺伝子配列のうちhBTLAと作用して空間フレームワークをメンテナンスし得る重要な単一のアミノ酸を分析し、それを、選択されたヒト胚性遺伝子フレームワークにグラフトし、これに基づいて、保留しなければならないフレームワーク領域のアミノ酸の部位をマークし、ヒト化抗体を合成した(Pini, A.ら, et al. (1998). design and use of a phage display library: human antibodies with 10 subnanomolar affinity against a marker of angiogenesis eluted from a two-dimensional gel.,Journal of Biological Chemistry, 273(34): 21769-21776)。これに基づいて以下の複数のヒト化抗体が得られた。それには、クローンとして、hu17、hu18及びhu19が含まれる。
重鎖アミノ酸配列SEQ ID NO:45;
軽鎖アミノ酸配列SEQ ID NO:46;
hu18:
重鎖アミノ酸配列SEQ ID NO:45;
軽鎖アミノ酸配列SEQ ID NO:47;
hu19:
重鎖アミノ酸配列SEQ ID NO:45;
軽鎖アミノ酸配列SEQ ID NO:48。
通常のELISA検出方法によりヒト化抗体とhBTLAとの結合特異性を検出した。0.5μg/mlのhBTLAで96ウェルマイクロプレートを被覆し、37℃の恒温で60分間インキュベートした。次に、ウェル内の溶液を捨てて、洗浄緩衝液で回3洗浄し、2% BSAを含有するPBS溶液を加えて60分間ブロックした。洗浄緩衝液で3回洗浄した後、勾配希釈した抗体を加え、37℃で60分間インキュベートした後、洗浄緩衝液で3回リンスし、その後、1:10000倍で希釈したHPR標識マウス抗ヒトIgG4二次抗体を加え、37℃で1時間インキュベートし、洗浄緩衝液で3回リンスした後、100μl TMB基質溶液を加えて発色させ、室温で30分間反応後、100μl 2Mの塩酸溶液で反応を停止して、450nmで吸光度を読み出した。
結果を図6に示し、ヒト化抗体hu17、hu18、及びhu19は、hBTLAと特異的に結合し得る。そのEC50値を下表4に示す。
細胞に基づくフローサイトメトリー(FACS)により、ヒト化抗BTLA抗体と細胞で発現させたhBTLAとの結合能力を測定した。hBTLAを発現させた293F細胞を消化した後、遠心分離してFACS緩衝液に再懸濁させ、細胞量が2.5×104、体積が50ulとなるように、96ウェル丸底板のウェルに加え、50ulの異なる濃度の抗体希釈液(開始濃度10ul/ml、3倍で滴定)を加えて均一に混合し、室温で30minインキュベートし、FACS緩衝液で細胞を2回洗浄した後、100ulのヤギ抗ヒトIgGーPE抗体を加え、遮光下30minインキュベートし、FACS bufferで2回洗浄した後、FACS検出を行った。洗浄した細胞を、ヨウ化プロピジウム(PI)及びレシピエント生体の内在化を防止するための0.02%アジ化ナトリウムを含有する4°C緩衝剤に再懸濁させた後、フローサイトメトリーにより分析した。FSC/SSCゲートからPI陽性細胞を排除し、生細胞に対してゲート制御を行い、その幾何学的平均蛍光強度を計測した。PrismTMソフトウェアのS形用量-応答モデルを用いてデータを分析した。
結果として、図7に示すように、ヒト化抗体hu17、hu18、hu19、及び293F細胞上のhBTLAは効果的に結合できる。各抗体のEC50値を下記表5に示す。
細胞に基づくフローサイトメトリー(FACS)により測定し、hBTLAが293F細胞上の hHVEMに結合されて発現することに対するヒト化抗体のブロック能力を検出した。hHVEMー293Fを安定的に発現させた細胞を消化した後、遠心分離してFACS緩衝液に再懸濁させ、細胞量が2.5×104個、体積が50ulとなるように、96ウェル丸底板のウェルに加え、予めビオチンで標識させたhBTLA(1ug/ml)タンパク質を加えて混合し、4°Cで15分間インキュベートし、次に、50ulの異なる濃度のヒト化抗体希釈液(開始5ug/ml、3倍で滴定)を加えて均一に混合し、室温で30minインキュベートし、FACS緩衝液で細胞を2回洗浄した後、100ulのヤギ抗ヒトIgG-PE抗体を加え、遮光下30minインキュベートし、FACS緩衝液で2回洗浄した後、FACS検出を行った。洗浄した細胞を、ヨウ化プロピジウム(PI)及びレシピエント生体の内在化を防止するための0.02%アジ化ナトリウムを含有する4°C緩衝剤に再懸濁させた後、フローサイトメトリーにより分析した。FSC/SSCゲートからPI陽性細胞を排除し、生細胞に対してゲート制御を行い、その幾何学的平均蛍光強度を計測した。PrismTMソフトウェアのS形用量-応答モデルを用いてデータを分析した。
結果として、図8に示すように、ヒト化抗体hu17、hu18、hu19は、BTLAと細胞表面のHVEMとの結合を効果的にブロックできる。各抗体のIC50値を下記表6に示す。
hPDーL1/hHVEMを安定的に発現させたCHO細胞を96ウェル板に接種し、各ウェルの細胞量を5×104とし、37℃、7%CO2で一晩培養し、細胞上清を除去し、ウェルごとに40ulのヒト化抗BTLA抗体希釈液(開始濃度60ug/ml、3倍の濃度で勾配希釈)を加え、hPDー1/hBTLA/NFAT-ルシフェラーゼのを持続的に発現できる40ulのJurkatレポーター細胞を加え全細胞数を1×105細胞とし、37℃、7%CO2で6時間培養し、ルシフェラーゼ試薬を加え、マイクロプレートリーダーにより発光値を検出した。
結果として、図9に示すように、ヒト化抗BTLA抗体hu17、hu18は、T細胞活性化を効果的に促進できる。各抗体のEC50値を下記表7に示す。
GEヘルスケアライフサイエンス社製のBiacore T200装置を用いて検出実験を行い、Series S CM5チップを装置にセットし、系の緩衝液としてHBS-EP+(10mM HEPES、pH 7.4、150mM NaCl、3mM EDTA、0.05%界面活性剤P20)を用いた。BTLAーFc抗原をチップの検出チャンネルにおいて結合し、400mM EDC与100mM NHSの混合液を10μL/minで420sかけて活性化チップの表面に注入し、BTLA-Fc抗原を、10mM酢酸ナトリウム/酢酸(pH 5.5)緩衝液に希釈して、最終濃度を20μg/mLとし、10μL/minで注入して結合し、1Mエタノールアミン-塩酸溶液(pH 8.5)を10μL/minで注入し420sかけてブロックした。
キメラ抗体とカニクイザル由来及びマウス由来のBTLAとの間の交差反応を検出するために、Fortebio検定が使用された。簡単に言えば、ヒトBTLA、カニクイザルBTLA又はマウスBTLAを活性化させたCM5生物学的センサチップに結合して、約100~200個の応答単位(RU)を得て、その後、IMエタノールアミンで未反応基をブロックした。30回/分間でSPR作動緩衝液に、0.12nMから90nMまで濃度が増加していくヒト化抗体サンプルを注射し、空白流動室からのRUを減算することにより異なる種源BTLAの場合の結合応答を算出した。
結果を図10に示す。hu17とさまざまな種BTLAとの結合の比較結果から明らかなように、hu17は、ヒトBTLAと高親和力を有するだけでなく、カニクイザル由来BTLAとは類似した親和力を有し、しかし、マウスBTLAとはほぼ結合しなかった。
MC38細胞(ATCC)にHxpーhHVEMプラスミドをエレクトロトランスフェクションして、MC38ーhHVEM細胞バンクを構築し、その後、限界希釈法により細胞サブクローンを行い、フローサイトメーターにより単一クローンをスクリーニングし、MC38ーhHVEM細胞を得て、次に、MC38-hHVEM細胞を1×106個の/0.1mL濃度でBーhBTLAヒト化雌マウスの右側の皮下に接種し、腫瘍が約118mm3まで成長すると、腫瘍の体積に応じてランダムに群分け、1群を8匹とし、合計5群に分け、それぞれ、G1 0.9%塩化ナトリウム注射液溶剤対照群、G2 KLH(10mg/kg)陰性対照群、G3 hu18(1mg/kg)群、G4 hu18(3mg/kg)群及びG5 hu18(10mg/kg)群とした。すべての群の投与経路は腹腔内注射とし、1週間ごとに2回投与し、連続的に7回投与し、最後回の投与4日間後、実験を終了した。毎週腫瘍の体積及び体重を2回測定し、マウスの体重と腫瘍の体積を記録した。実験終了時、動物を安楽死させ、腫瘍を取り重量を測り、写真を撮り、相対腫瘍抑制率(TGITW%)を算出した。
抗体が細胞表面の標的タンパク質に結合され、その後、エフェクター細胞で発現させたFcγ受容体(FcγR)に連結されると、ADCCを起動させた。ヒトIgG1はFcγRに対し、特にFcγR-I及びFcγR-IIIAに対して、IgG4よりも明らかに高い結合親和力を示すことが明確に記載されている。この親和力はADCCを活性化するIgG1の強度と関わっている。ADCCに関しては、抗体が細胞表面のターゲット及びC1qタンパク質と架橋し、次に、補体複合体形成及び標的細胞分解のカスケード反応時、CDCが活性化された。ADCC及びCDCの代理として、抗体のFcγR及びC1qへの結合の検出は、ADCC及びCDCCの基本指標として機能できる。したがって、本発明では、biacoreT200(GE)を用いて、モノクローナル抗体の主なFcγRへの結合の速度論的親和力を評定した。
Claims (9)
- 単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントであって、前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントのHCDR1、HCDR2及びHCDR3のアミノ酸配列とLCDR1、LCDR2及びLCDR3のアミノ酸配列は以下のII及びVIII~XII群のうちのいずれか1つの群に示される、
- 前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:37に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:34に示され、又は
前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:37に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:35に示され、又は
前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:37に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:40に示され、又は
前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:37に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:42に示され、又は
前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:37に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:43に示され、又は
前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:46に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:45に示され、又は
前記単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントの軽鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:47に示され、重鎖可変領域のアミノ酸配列はSEQ ID NO:45に示される、ことを特徴とする請求項1に記載の単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメント。 - 前記単離抗BTLA抗体はキメラ抗体又はヒト化抗体である、ことを特徴とする請求項1又は2に記載の単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメント。
- 単離核酸であって、
(1)請求項1~3のいずれか1項に記載の単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントをコードするポリヌクレオチド配列
から選ばれる核酸。 - 請求項4に記載の単離核酸を含有する、ことを特徴とする発現ベクター又は該発現ベクターを含む宿主細胞。
- 医薬組成物であって、請求項1~3のいずれか1項に記載の単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメント、請求項5に記載の発現ベクター又は宿主細胞、又はこれらの任意の組み合わせを含有する、ことを特徴とする医薬組成物。
- 請求項1~3のいずれか1項に記載の単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメント、請求項5に記載の発現ベクター又は宿主細胞の、BTLA媒介性疾患を治療又は予防するための医薬品の製造における使用。
- 治療剤に結合された請求項1~3のいずれか1項に記載の単離抗BTLA抗体又はその抗原結合フラグメントを含有する、ことを特徴とする免疫抱合体。
- 前記治療剤は毒素、放射性同位体、医薬品又は細胞傷害性剤である、ことを特徴とする請求項8に記載の免疫抱合体。
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