JP7454379B2 - 接着性幹細胞を含む細胞集団とその製造方法、及び医薬組成物 - Google Patents

Description

本発明は、間葉系幹細胞などの接着性幹細胞の細胞集団に関する。本発明は、上記細胞集団の製造方法、並びに上記細胞集団を含む医薬組成物に関する。さらに本発明は、細胞集団における特定のマーカーを発現する接着性幹細胞の比率を指標として利用する、接着性幹細胞の核型異常のモニタリング方法、ドナー及び／又はドナーから採取した生体試料の評価方法、並びに酵素処理条件の判断及び／又は予測方法にも関する。

間葉系間質細胞（Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ）ともよばれる間葉系幹細胞などの接着性幹細胞は、骨髄、脂肪組織、歯髄などに存在することが報告されている体性幹細胞であり、最近では、胎盤、臍帯、卵膜などの胎児付属物にも存在することが明らかになっている。また、前記接着性幹細胞は、免疫抑制能を有しており、急性移植片対宿主病（ＧＶＨＤ）及び炎症性腸疾患であるクローン病などに対する実用化が進んでいる。

さらに近年、細胞治療用途としての使用に耐え得る安全な接着性幹細胞を提供することが求められており、例えば、非特許文献１では、細胞治療に使用する間葉系幹細胞の核型解析の判断基準が示されている。また、非特許文献２では、複数ドナーの骨髄由来間葉系幹細胞における核型異常の発生頻度、及び継代数と核型異常発生頻度の相関性について記載されている。

Lisbeth Barkholt他、Risk of tumorigenicity in mesenchymal stromal cellebased therapies-Bridging scientific observations and regulatory viewpoints, Cytotherapy, 2013, 15, 753-759 Brian G. Stultz他、Chromosomal Stability of Mesenchymal Stromal Cells During In Vitro Culture, Cytotherapy, 2016, 18(3), 336-343

本発明者らは、細胞治療用途としての使用に耐え得る安全な接着性幹細胞を提供するための検討を行ったところ、接着性幹細胞の培養過程において核型異常が高頻度で発生し、さらに継代を重ねるにつれ核型異常が蓄積されるという問題を確認した。上記問題は、造腫瘍性リスクにつながるため、核型異常が確認された接着性幹細胞が少しでも含まれるような接着性幹細胞集団は全て廃棄するしかない。さらに、染色体の構造を１つずつ解析して核型異常の頻度を評価する核型解析の手法は、解析に多大な時間及び労力を必要とするため、迅速な品質保証が出来ない原因にもなる。従って、本発明者らは、上記問題を解決するために、核型異常のない細胞集団を調製しなければならないこと、並びに核型異常の発生を経時的にモニタリングしなければならないという課題を見出した。

本課題を解決するために、非特許文献１について検討した。非特許文献１には、細胞治療に使用する間葉系幹細胞について、染色体の構造異常の頻度に対する判断基準が記載されている。また、非特許文献１では、細胞の増殖速度及び倍加回数をできるだけ低く抑えるように培養条件を設定することが、核型異常を含まない細胞集団の取得につながることを示唆している。しかしながら、本発明者らは、増殖速度及び倍加回数を下げても、高頻度で核型異常が発生することを確認した。また、非特許文献１では、核型異常の有無をモニタリングする方法については記載がない。

非特許文献２には、複数ドナーの骨髄由来間葉系幹細胞における核型異常の発生頻度及び継代数と核型異常発生頻度の相関性について記載されている。非特許文献１とは異なり、継代の回数が増え、倍加回数が増えるにつれて、核型異常の頻度が低下する傾向が確認されている。このように、細胞の倍加回数と核型異常の関係は文献によって傾向が異なり、核型異常の発生機序についても十分に解明されていない。また、非特許文献２では、継代毎に取得した間葉系幹細胞の核型解析が、拡大培養時の間葉系幹細胞の染色体安定性をモニタリングするために有用であると言及している。しかしながら、核型解析の方法は、間葉系幹細胞を取得した後に、核型解析に供する１７個～１４４個の細胞から染色体を抽出し、染色体の構造を１つずつＳＫＹ（Ｓｐｅｃｔｒａｌ Ｋａｒｙｏｔｙｐｉｎｇ）法で観察している。上記解析には多大な時間と労力を必要としており、核型異常の発生を経時的にモニタリングすることが困難なうえ、核型異常の有無を迅速に評価することができない。また、核型異常を含まない細胞集団を調製する方法については記載がない。

以上の課題に鑑み、本発明は、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を取得し、かつ接着性幹細胞を含む細胞集団において、核型異常の発生を経時的にモニタリングし、核型異常の有無を迅速に評価する手段を提供することを目的とする。

本発明者らは上記課題を解決するために鋭意検討した結果、接着性幹細胞を含む細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が所定値以上に維持される条件下で培養すると、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を取得できることを見出した。さらに本発明者らは、接着性幹細胞を含む細胞集団においてＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が所定値以上であることを指標として利用することによって、接着性幹細胞の核型異常の有無をモニタリングできることを見出した。さらに、正常核型を維持している接着性幹細胞を効率的に取得するという観点から、ドナー及び／又はドナーから採取した生体試料の品質を迅速に評価でき、さらに、ドナーから採取した生体試料の最適な酵素処理条件を判断及び／又は予測できることを見出した。本発明は、これらの知見に基づいて完成したものである。

すなわち、本明細書によれば、以下の発明が提供される。
（１） 接着性幹細胞を含む細胞集団の製造方法であって、
前記細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上である細胞集団を取得することを含む、製造方法。
（２） 接着性幹細胞を含む細胞集団であって、
前記細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上である、細胞集団。
（３） 前記細胞集団が、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＫＣＮＡＢ１遺伝子の相対発現量が０．０５以上である、（２）に記載の細胞集団。
（４） 前記細胞集団が、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子の相対発現量が０．１以上である、（２）又は（３）に記載の細胞集団。
（５） 前記細胞集団が、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＭＮ１遺伝子の相対発現量が０．７以上である、（２）から（４）の何れか一に記載の細胞集団。
（６） 前記細胞集団が、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＲＡＲＲＥＳ２遺伝子の相対発現量が０．４以下である、（２）から（５）の何れか一に記載の細胞集団。
（７） 前記接着性幹細胞が、胎児付属物に由来するものである、（２）から（６）の何れか一に記載の細胞集団。

（８） （２）から（７）の何れか一に記載の細胞集団と、製薬上許容し得る媒体とを含む、医薬組成物。
（９） （２）から（７）の何れか一に記載の細胞集団と、投与可能な他の細胞とを含む、医薬組成物。
（１０） ヒトへの接着性幹細胞の１回の用量が１０^１２個／ｋｇ体重以下である、（８）又は（９）に記載の医薬組成物。
（１１） 前記医薬組成物が、注射用製剤である、（８）から（１０）の何れか一に記載の医薬組成物。
（１２） 前記医薬組成物が、移植用製剤である、（８）から（１０）の何れか一に記載の医薬組成物。
（１３） 前記移植用製剤が細胞塊又はシート状構造である、（１２）に記載の医薬組成物。
（１４） 免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患の治療剤である、（８）から（１３）の何れか一に記載の医薬組成物。

（１５） 接着性幹細胞を含む細胞集団において、
ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として接着性幹細胞の核型異常をモニタリングする方法。
（１６） ドナーから接着性幹細胞を含む細胞集団を採取し、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として評価する、ドナー及び／又はドナーから採取した生体試料の評価方法。
（１７） ドナーから採取した生体試料を酵素処理して得られた細胞集団に対して、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として評価する、前記生体試料の酵素処理条件を判断及び／又は予測する方法。

（２１） （２）から（７）の何れか一に記載の細胞集団を、治療を必要とする患者又は被験者に投与することを含む、疾患の治療方法。
（２２） ヒトへの接着性幹細胞の１回の用量が１×１０^１２個／ｋｇ体重以下である、（２１）に記載の方法。
（２３） 注射用製剤である、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２４） 移植用製剤である、（２１）又は（２２）に記載の方法。
（２５） 前記移植用製剤が細胞塊又はシート状構造である、（２４）に記載の医薬組成物。
（２６） 疾患が、免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患である、（２１）から（２５）の何れか一に記載の方法。

（３１） 医薬組成物の製造のための、（２）から（６）の何れか一に記載の細胞集団の使用。
（３２） 前記医薬組成物が、ヒトへの接着性幹細胞の１回の用量が１×１０^１２個／ｋｇ体重以下である医薬組成物である、（３１）に記載の使用。
（３３） 前記医薬組成物が、注射用製剤である、（３１）又は（３２）に記載の使用。
（３４） 前記医薬組成物が、移植用製剤である、（３１）又は（３２）に記載の使用。
（３５） 前記移植用製剤が細胞塊又はシート状構造である、（３４）に記載の医薬組成物。
（３６） 前記医薬組成物が、免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患の治療剤である、（３１）から（３５）の何れか一に記載の使用。

（４１） 疾患の治療において使用するための、（２）から（６）の何れか一に記載の細胞集団。
（４２） ヒトへの接着性幹細胞の１回の用量が１×１０^１２個／ｋｇ体重以下である、（４１）に記載の細胞集団。
（４３） 注射用製剤である、（４１）又は（４２）に記載の細胞集団。
（４４） 移植用製剤である、（４１）又は（４２）に記載の細胞集団。
（４５） 前記移植用製剤が細胞塊又はシート状構造である、（４４）に記載の医薬組成物。
（４６） 疾患が、免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患である、（４１）から（４５）の何れか一に細胞集団。

本発明によれば、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を取得できる。また、本発明によれば、接着性幹細胞を含む細胞集団において、核型異常の発生を経時的にモニタリングし、核型異常の有無を迅速に評価する手段を提供することができる。さらに、本発明によれば、正常核型を維持している安全な接着性幹細胞を含む細胞集団形成の指標として、所定の抗原の陽性率を使用することができる。さらに本発明によれば、染色体安定性が高く臨床使用に適した安全な細胞製剤（医薬組成物）を製造することができる。

図１は、５名の妊婦の胎児付属物から得られた羊膜接着性幹細胞について、フローサイトメーターを用いてＫＣＮＡＢ１に対して陽性となる細胞の比率を解析した結果を示す。

以下、本発明の実施形態について具体的に説明するが、下記の説明は本発明の理解を容易にするためのものであり、本発明の範囲は、下記の実施形態に限られるものではなく、下記の実施形態の構成を適宜置換した他の実施形態も本発明の範囲に含まれる。

［１］用語の説明
本明細書における「胎児付属物」は、卵膜、胎盤、臍帯及び羊水を指す。さらに「卵膜」は、胎児の羊水を含む胎嚢であり、内側から羊膜、絨毛膜及び脱落膜からなる。このうち、羊膜と絨毛膜は胎児を起源とする。「羊膜」は、卵膜の最内層にある血管に乏しい透明薄膜を指す。羊膜の内層（上皮細胞層ともよばれる）は分泌機能のある一層の上皮細胞で覆われ羊水を分泌し、羊膜の外層（細胞外基質層ともよばれ、間質に相当する）は接着性幹細胞を含む。

本明細書における「接着性幹細胞」は、下記の定義を満たす幹細胞を指し、「間葉系間質細胞(Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｒｏｍａｌ ｃｅｌｌｓ)」や「間葉系幹細胞（Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ）」も接着性幹細胞に含まれる。本明細書において、「間葉系幹細胞」は「ＭＳＣ」と記載されることがある。

「接着性幹細胞」としては、各種組織および器官から採取することができる体性幹細胞（組織幹細胞）のうち、下記の定義を満たす細胞を使用することができる。体性幹細胞（組織幹細胞）としては、骨髄由来間葉系幹細胞、造血幹細胞、臍帯血中の幹細胞、臍帯由来幹細胞、羊膜由来幹細胞、羊水幹細胞、胎盤絨毛細胞由来間葉系幹細胞、神経幹細胞、脂肪組織由来幹細胞、膵幹細胞、滑膜間葉幹細胞、歯髄幹細胞、脱落乳歯由来歯髄由来幹細胞、精子幹細胞（ＧＳ細胞）、精巣多能性幹細胞（ｍＧＳ細胞）、角膜上皮幹細胞、角膜実質幹細胞、色素幹細胞、臓器における組織幹細胞等を挙げることができるが、特に限定されない。

接着性幹細胞の定義
i)標準培地での培養条件で、プラスチックに接着性を示す。
ii)表面抗原ＣＤ７３、ＣＤ９０が陽性であり、ＣＤ３２６が陰性。

前記「接着性幹細胞」は上記のi）ii）の定義を満たしていればよく、骨、軟骨、脂肪等への分化能の有無については特に限定されない。本明細書における「接着性幹細胞」には、間葉系幹細胞のように、骨、軟骨、及び脂肪への分化能を有している細胞も含まれる。また、前記「接着性幹細胞」には、上記の定義を満たしているものの、骨、軟骨、脂肪への分化能を有していない細胞も含まれる。また、前記「接着性幹細胞」には、上記の定義を満たしているものの、骨、軟骨、脂肪のうちいずれか１つ、又は２つにのみ分化する細胞も含まれる。

本明細書における「羊膜由来接着性幹細胞」は、羊膜に由来する接着性幹細胞を指し、「羊膜間葉系間質細胞」や「羊膜間葉系幹細胞」もこれに含まれる。本明細書において、「羊膜間葉系幹細胞」は「羊膜ＭＳＣ」と記載されることがある。

本明細書における「接着性幹細胞集団」は、接着性幹細胞を含む細胞集団を意味し、その形態は特に限定されず、例えば、細胞ペレット、細胞シート、細胞凝集塊、細胞浮遊液又は細胞懸濁液などが挙げられる。

本明細書における「核型異常」とは、染色体の構造異常のことであり、染色体の数的異常や、部分的な構造異常を意味する。数的異常としては、通常２本で対をなしている染色体が１本しか存在しない「モノソミー」、或いは染色体が３本存在する「トリソミー」が挙げられる。部分的な構造異常としては、転座、逆位、欠失が挙げられる。
本明細書における「正常核型」とは、上述した核型異常が認められないか、又は正常に近い核型を意味する。

「正常核型」及び「核型異常」は、核型解析により評価することができる。具体的には、分染法により検出される染色体に特徴的なバンドパターンに基づいて、各染色体を同定し、数的異常および部分的な構造異常などを解析することにより、「正常核型」及び「核型異常」について評価することができる。核型解析の種類は特に限定されず、キナクリンマスタードやヘキスト等の蛍光色素により検出を行うＱ－ｂａｎｄ解析、トリプシン等のタンパク分解酵素処理とギムザ染色により検出を行うＧ－ｂａｎｄ解析、全染色体を別々の色に染色するマルチカラーＦＩＳＨ法による解析、ギムザ染色による簡易解析などが知られているが、本発明においては何れを用いてもよい。例えば、核型異常を判定するために、２０個の細胞から染色体を抽出して核型解析に供し、核型異常の有無を評価することができる。正常核型の判定基準として、解析に供した２０個の細胞のうち、核型異常を有する細胞の割合が１０％以下であることが好ましく、より好ましくは５％以下であり、さらに好ましくは４％以下であり、さらに好ましくは３％以下であり、さらに好ましくは２％以下であり、さらに好ましくは１％以下であり、さらに好ましくは０％である。

本明細書における「ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率」とは、後記する実施例に記載の通り、フローサイトメトリーによって解析した上記抗原について陽性である細胞の比率を示す。本明細書において、「抗原について陽性である細胞の比率」は「陽性率」と記載されることがある。

［２］接着性幹細胞を含む細胞集団
本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、前記細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを特徴とする。
また、本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団が、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であるという条件を満たすと、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を形成する。そのため、本発明においては、前記条件を、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団形成の指標とすることができる。また、前記指標を経時的に測定することで、接着性幹細胞の核型異常の変化を迅速かつ簡便に把握し、予測することができる。さらに本発明によれば、前記の指標を利用することによって、ドナー自体及び／又はドナーから採取した生体試料の品質を評価することができる。さらに本発明によれば、前記指標を使用することによって、ドナーから採取した生体試料を酵素処理する際の酵素処理方法が、最適かどうかを判断及び／又は予測することができる。また、前記指標に加え、ＫＣＮＡＢ１遺伝子、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子、ＭＮ１遺伝子、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子の相対発現量が特定の数値範囲を示すことも、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団形成の指標とすることができる。

前記細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率は、好ましくは８６％以上であり、さらに好ましくは８７％以上であり、さらに好ましくは８８％以上であり、さらに好ましくは８９％以上であり、さらに好ましくは９０％以上であり、さらに好ましくは９１％以上であり、さらに好ましくは９２％以上であり、さらに好ましくは９３％以上であり、さらに好ましくは９４％以上であり、さらに好ましくは９５％以上であり、さらに好ましくは９６％以上であり、さらに好ましくは９７％以上であり、さらに好ましくは９８％以上であり、さらに好ましくは９９％以上であり、さらに好ましくは１００％である。

本発明の一態様によれば、本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、ＣＤ１０５、ＣＤ７３、及び／又はＣＤ９０が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が９０％以上であることを満たしていてもよい。
ＣＤ１０５は、分化クラスター１０５を意味し、Ｅｎｄｏｇｌｉｎとしても知られているタンパク質である。
ＣＤ７３は、分化クラスター７３を意味し、５－Ｎｕｃｌｅｏｔｉｄａｓｅ、或いはＥｃｔｏ－５’－ｎｕｃｌｅｏｔｉｄａｓｅとしても知られているタンパク質である。
ＣＤ９０は、分化クラスター９０を意味し、Ｔｈｙ－１としても知られているタンパク質である。

細胞集団においてＣＤ１０５が陽性を呈する接着性幹細胞の比率は、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。
細胞集団においてＣＤ７３が陽性を呈する接着性幹細胞の比率は、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。
細胞集団においてＣＤ９０が陽性を呈する接着性幹細胞の比率は、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。

本発明の一態様によれば、本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、ＣＤ１６６が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が３０％以上であることを満たしていてもよい。
ＣＤ１６６は、分化クラスター１６６を意味し、Ａｃｔｉｖａｅｄ ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ ｃｅｌｌ ａｄｈｅｓｉｏｎ ｍｏｌｅｃｕｌｅ（ＡＬＣＡＭ）としても知られているタンパク質である。

細胞集団においてＣＤ１６６が陽性を呈する接着性幹細胞の比率は、３１％以上、３２％以上、３３％以上、３４％以上、３５％以上、３６％以上、３７％以上、３８％以上、３９％以上、４０％以上、４１％以上、４２％以上、４３％以上、４４％以上、４５％以上、５０％以上、５５％以上、６０％以上、６５％以上、７０％以上、７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９１％以上、９２％以上、９３％以上、９４％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。

本発明の一態様によれば、本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、ＣＤ４５、ＣＤ３４、及び／又はＣＤ３２６が陰性を呈する接着性幹細胞の比率が９５％以上であることを満たしていてもよい。
ＣＤ４５は、分化クラスター４５を意味し、ＰＴＰＲＣ（Ｐｒｏｔｅｉｎ ｔｙｒｏｓｉｎｅ ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ，ｒｅｃｅｐｔｏｒ ｔｙｐｅ，Ｃ）、或いはＬＣＡ（Ｌｅｕｋｏｃｙｔｅ ｃｏｍｍｏｎ ａｎｔｉｇｅｎ）としても知られているタンパク質である。
ＣＤ３４は、分化クラスター３４を意味し、Ｈｅｍａｔｏｐｏｉｅｔｉｃ ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ ｃｅｌｌ ａｎｔｉｇｅｎ ＣＤ３４としても知られているタンパク質である。
ＣＤ３２６は、分化クラスター３２６を意味し、ＥＰＣＡＭ遺伝子によってコードされるＥｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌ ａｄｈｅｓｉｏｎ ｍｏｌｅｃｕｌｅとしても知られているタンパク質である。

細胞集団においてＣＤ４５が陰性を呈する接着性幹細胞の比率は、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。
細胞集団においてＣＤ３４が陰性を呈する接着性幹細胞の比率は、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。
細胞集団においてＣＤ３２６が陰性を呈する接着性幹細胞の比率は、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％でもよい。

ＫＣＮＡＢ１、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１６６、ＣＤ３４、ＣＤ４５、ＣＤ３２６を含む各種抗原は、当該技術分野において公知の任意の検出方法により検出することができる。これらの抗原を検出する方法としては、例えばフローサイトメトリー又は細胞染色が挙げられるが、これらに限定されない。蛍光標識抗体を用いるフローサイトメトリーにおいて、ネガティブコントロール（アイソタイプコントロール）と比較してより強い蛍光を発する細胞が検出された場合、当該細胞は当該マーカーについて「陽性」と判定される。蛍光標識抗体は、当該技術分野において公知の任意の抗体を使用することができ、例えば、イソチオシアン酸フルオレセイン（ＦＩＴＣ）、フィコエリスリン（ＰＥ）、アロフィコシアニン（ＡＰＣ）等により標識された抗体が挙げられるが、これらに限定されない。細胞染色において、着色するか若しくは蛍光を発する細胞が顕微鏡下にて観察された場合、当該細胞は当該マーカーについて「陽性」と判定される。細胞染色は、抗体を使用する免疫細胞染色であってもよく、抗体を使用しない非免疫細胞染色であってもよい。

ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する細胞の比率（陽性率）は、具体的には、フローサイトメトリーのドットプロット展開解析を用いて、以下の手順（１）～（８）にて測定することができる。
（１）凍結保存した細胞集団を解凍し、遠心分離により回収する。回収した細胞集団をリン酸バッファー（ＰＢＳ）にて洗浄し、遠心分離により回収する。
（２）４％パラホルムアルデヒドに、終濃度０．１％となるようポリオキシエチレン（１０）オクチルフェニルエーテル（Ｔｒｉｔｏｎ－Ｘ）を加えた溶液を用いて細胞を固定・膜透過処理した後、リン酸バッファー（ＰＢＳ）にて細胞を洗浄し、０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳにて２．０×１０^６個／ｍＬとなるように細胞懸濁液を調製する。前記細胞懸濁液を１００μＬずつ分注する。
（３）分注した細胞懸濁液を遠心分離し、得られた細胞ペレットに０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳを１００μＬずつ添加する。次いで、各抗原マーカーに対応する抗体、又はそのアイソタイプコントロール用抗体を添加する。各反応液をＶｏｌｔｅｘした後、４℃にて２０分間静置する。
（４）０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳを添加し、遠心分離により細胞を洗浄した後、０．５％ＢＳＡ／ＰＢＳにて細胞を懸濁し、セルストレーナー（３５μｍナイロンメッシュフィルター）（コーニング社／品番：３５２２３５）にてフィルターろ過する。
（５）フィルターろ過により得られた細胞懸濁液を、ＢＤ Ａｃｃｕｒｉ^ＴＭ Ｃ６ Ｆｌｏｗ Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒ（ベクトン・ディッキンソン社）を用いて解析する（ＡＬＬ Ｅｖｅｎｔ １００００）。
（６）測定結果を、縦軸にＳＳＣ（側方散乱光）、横軸をＦＳＣ（前方散乱光）としたドットプロットで展開する。
（７）ドットプロット展開図において、アイソタイプコントロール用抗体で測定した総細胞のうち、より蛍光強度が強い細胞集団が０．５％以下となる全ての領域（ゲート）を選択する。
（８）抗原マーカーに対応する抗体で測定した総細胞のうち、（７）で選択したゲート内に含まれる細胞の割合を算出する。

なお、各表面抗原に対して陰性である細胞の比率（陰性率）は、以下の式により算出する。
陰性率（％）＝１００－陽性率

上記したＫＣＮＡＢ１を検出するタイミングは、特に限定されないが、例えば、生体試料から細胞を分離した直後、培養工程の途中、培養工程における純化後、ｎ回継代した直後（ｎは１以上の整数を示す）、維持培養の途中、凍結保存前、解凍後、又は医薬品組成物として製剤化する前などが挙げられる。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、好ましくは、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＫＣＮＡＢ１遺伝子の相対発現量が０．０５以上であることを満たす。
ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＫＣＮＡＢ１遺伝子の相対発現量は、０．７５以上、０．１以上、０．１５以上、０．２以上、０．２５以上、０．３以上、０．３５以上、０．４以上でもよい。ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＫＣＮＡＢ１遺伝子の相対発現量の上限は特に限定されないが、例えば、５以下、４以下、３以下、２以下、１以下、０．９以下、０．８以下、０．７以下、０．６以下でもよい。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、好ましくは、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子の相対発現量が０．１以上であることを満たす。
ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子の相対発現量は、０．１３以上、０．１５以上、０．２以上、０．３以上、０．４以上、０．５以上、又は０．６以上でもよい。ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子の相対発現量の上限は特に限定されないが、例えば、５以下、４以下、３以下、２以下、１以下、０．９以下、０．８以下、０．７以下、０．６以下、又は０．５以下でもよい。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、好ましくは、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＭＮ１遺伝子の相対発現量が０．７以上であることを満たす。
ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＭＮ１遺伝子の相対発現量は、０．８以上、０．９以上、１以上、１．１以上、１．２以上、１．３以上、１．４以上、１．５以上、１．６以上、又は１．７以上でもよい。ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＭＮ１遺伝子の相対発現量の上限は特に限定されないが、例えば、１０以下、９以下、８以下、７以下、６以下、５以下、４以下、３以下、２以下でもよい。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、好ましくは、ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＲＡＲＲＥＳ２遺伝子の相対発現量が０．４以下であることを満たす。
ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＲＡＲＲＥＳ２遺伝子の相対発現量は、０．３以下、０．２以下、０．１以下、０．０５以下、０．０４以下、０．０３以下、０．０２以下、０．０１以下、０．００９以下、０．００８以下、０．００７以下、０．００６以下、０．００５以下、０．００４以下、又は０．００３以下でもよい。ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対するＲＡＲＲＥＳ２遺伝子の相対発現量の下限は特に限定されないが、例えば、０．００１以上、又は０．００２以上でもよい。

各遺伝子の検出及び／又はその発現量の測定方法としては、当該技術分野において公知の方法であれば特に限定されないが、例えばマイクロアレイ、ＲＴ－ＰＣＲ、定量ＲＴ－ＰＣＲ、又はノーザンブロットハイブリダーゼーションを使用することができる。ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対する各遺伝子の相対発現量の測定方法としては、マイクロアレイを使用することができる。マイクロアレイは、具体的には、以下の手順（１）～（５）にて行なうことができる。なお、以下の手順（３）～（５）は、株式会社理研ジェネシスに委託して実施することができる。
（１）凍結保存した細胞集団を解凍し、遠心分離により回収する。回収した細胞集団をリン酸バッファー（ＰＢＳ）にて洗浄し、遠心分離により細胞を回収する。
（２）ＲＮＡ抽出キット（ＲＮｅａｓｙ Ｐｌｕｓ Ｍｉｎｉキット（ＱＩＡＧＥＮ社製））を用いてトータルＲＮＡを抽出、精製する。
（３）精製したトータルＲＮＡを鋳型として用いて逆転写反応によりｃＤＮＡを合成し、さらに合成されたｃＤＮＡからｉｎ ｖｉｔｒｏ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎによりｃＲＮＡに転写してビオチン標識を行う。
（４）ビオチン標識ｃＲＮＡをハイブリダイゼーションバッファーに加え、Ｈｕｍａｎ ＧｅｎｅＧｅｎｏｍｅ Ｕ１３３Ａ ２．０ Ａｒｒａｙ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）上で１６時間のハイブリダイゼーションを行う。ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｆｌｕｉｄｉｃｓ Ｓｔａｔｉｏｎ ４５０（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）にて洗浄し、フィコエリスリン染色後、ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｓｃａｎｎｅｒ ３０００ ７Ｇ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）にてスキャンを行い、ＡＧＣＣ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｃｏｍｍａｎｄ Ｃｏｎｓｏｌｅ Ｓｏｆｔｗａｒｅ）（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）にて画像解析し、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｃｏｎｓｏｌｅ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）を用いて数値化する。
（５）数値データファイルを、解析ソフトＧｅｎｅＳｐｒｉｎｇ ＧＸ（アジレント・テクノロジー社製）を用いて比較解析する。各細胞におけるＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対する各遺伝子の相対発現量を算出する。
ＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対する各遺伝子の相対発現量の測定方法としては、定量ＰＣＲを使用することができる。定量ＰＣＲは、具体的には、以下の手順（１）～（５）にて行なうことができる。
（１）凍結保存した細胞集団を解凍し、遠心分離により回収する。回収した細胞集団をリン酸バッファー（ＰＢＳ）にて洗浄し、遠心分離により細胞を回収する。
（２）ＲＮＡ抽出キット（ＲＮｅａｓｙ Ｐｌｕｓ Ｍｉｎｉキット（ＱＩＡＧＥＮ社製））を用いてトータルＲＮＡを抽出、精製する。
（３）精製したトータルＲＮＡを鋳型として用いて逆転写反応によりｃＤＮＡを合成し、さらに合成したｃＤＮＡとＴａｑｍａｎ Ｆａｓｔ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）とプライマー（Ｔａｑｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ａｓｓａｙ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ社製）を混合して９６穴プレートに注入し、定量ＰＣＲを行う。
（４）各サンプルのＳＤＨＡに対するΔＣｔ値をＳｔｅｐＯｎｅＰｌｕｓ Ｒｅａｌ－Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）にて解析し、各細胞におけるＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対する各遺伝子の相対発現量（２＾（－ΔＣｔ））を算出する。

ＳＤＨＡ（Ｓｕｃｃｉｎａｔｅ ｄｅｈｙｄｒｏｇｅｎａｓｅ ｃｏｍｐｌｅｘ，ｓｕｂｕｎｉｔ Ａ）は、ハウスキーピング遺伝子の一種であり、遺伝子の配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースにＩＤ：６３８９として登録されている。ＳＤＨＡは、配列番号１に示す塩基配列からなる遺伝子、或いは配列番号２に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である。

ＫＣＮＡＢ１（potassium channel, voltage gated subfamily A regulatory beta subunit 1）遺伝子の配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースにＩＤ：７８８１として登録されている。ＫＣＮＡＢ１は、配列番号３に示す塩基配列からなる遺伝子、或いは配列番号４に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である。
ＳＵＬＴ１Ｅ１（sulfotransferase family 1E member 1）遺伝子の配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースにＩＤ：６７８３として登録されている。ＳＵＬＴ１Ｅ１は、配列番号５に示す塩基配列からなる遺伝子、或いは配列番号６に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である。
ＭＮ１（meningioma (disrupted in balanced translocation) 1）遺伝子の配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースにＩＤ：４３３０として登録されている。ＭＮ１は、配列番号７に示す塩基配列からなる遺伝子、或いは配列番号８に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である。
ＲＡＲＲＥＳ２（retinoic acid receptor responder (tazarotene induced) 2）遺伝子の配列は、Ｎａｔｉｏｎａｌ Ｃｅｎｔｅｒ ｆｏｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｉｎｆｏｍａｔｉｏｎの遺伝子データベースにＩＤ：５９１９として登録されている。ＲＡＲＲＥＳ２は、配列番号９に示す塩基配列からなる遺伝子、或いは配列番号１０に示すアミノ酸配列からなるポリペプチドをコードする遺伝子である。

上記した遺伝子発現量を測定するタイミングは、特に限定されないが、例えば、生体試料から細胞を分離した直後、培養工程の途中、培養工程における純化後、ｎ回継代した直後（ｎは１以上の整数を示す）、維持培養の途中、凍結保存前、解凍後、又は医薬品組成物として製剤化する前などが挙げられる。

本発明の細胞集団においては、接着性幹細胞は、生体外での培養開始後、好ましくは２０日以降まで、さらに好ましくは２５日以降まで、３０日以降まで、３５日以降まで、４０日以降まで、４５日以降まで、５０日以降まで、５５日以降まで、６０日以降まで、６５日以降まで、７０日以降まで、７５日以降まで、８０日以降まで、８５日以降まで、９０日以降まで、９５日以降まで、１００日以降まで、１０５日以降まで、又は１１０日以降まで、正常核型を維持しながら増殖停止することなく培養することが可能である。

本発明の細胞集団における接着性幹細胞の継代可能回数は、１回以上、好ましくは２回以上、より好ましくは３回以上、さらに好ましくは４回以上、さらに好ましくは５回以上、さらに好ましくは６回以上、さらに好ましくは８回以上、さらに好ましくは１０回以上、さらに好ましくは１２回以上、さらに好ましくは１４回以上、さらに好ましくは１６回以上、さらに好ましくは１８回以上、さらに好ましくは２０回以上、さらに好ましくは２２回以上、さらに好ましくは２４回以上、さらに好ましくは２５回以上まで、正常核型を維持しながら培養することが可能である。また、継代可能回数の上限は、特に限定されないが、例えば、５０回以下、４５回以下、４０回以下、３５回以下、又は３０回以下である。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、好ましくは１０回以上、さらに好ましくは２０回以上、３０回以上、４０回以上、５０回以上、又は６０回以上、正常核型を維持しながら集団倍加することが可能である。また、本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団は、例えば、１００回以下、９０回以下、８０回以下、又は７０回以下、集団倍加することが可能であるが、これらに限定されない。集団倍加回数とは、ある一定の培養期間において細胞集団が分裂した回数であり、[ｌｏｇ_１０（培養終了時の細胞数）－ｌｏｇ_１０（培養開始時の細胞数）]／ｌｏｇ_１０（２）の計算式にて算出される。継代培養を行った場合は、継代毎の集団倍加回数を上記の式で計算した後、累積することによって、総集団倍加回数が算出される。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団の細胞生存率は、例えば、トリパンブルー染色、ＰＩ（Ｐｒｏｐｉｄｉｕｍ ｉｏｄｉｄｅ）染色、ＭＴＴ（３－（４，５－Ｄｉｍｅｔｈｙｌ－２－ｔｈｉａｚｏｌｙｌ）－２，５－ｄｉｐｈｅｎｙｌｔｅｔｒａｚｏｌｉｕｍ Ｂｒｏｍｉｄｅ）アッセイ等により測定することができるが、これらに限定されない。

本発明により提供される接着性幹細胞を含む細胞集団の細胞生存率は、好ましくは７０％以上、さらに好ましくは７５％以上、８０％以上、８５％以上、９０％以上、９５％以上、９６％以上、９７％以上、９８％以上、９９％以上、又は１００％である。

接着性幹細胞の由来は特に限定されないが、例えば、胎児付属物、骨髄、脂肪組織、又は歯髄に由来する接着性幹細胞を使用することができる。接着性幹細胞は、好ましくは、胎児付属物に由来する接着性幹細胞であり、より好ましくは、羊膜に由来する接着性幹細胞である。接着性幹細胞は、自己、同種異系又は異種の生体試料から単離された接着性幹細胞であり、好ましくは、同種異系の生体試料から単離された接着性幹細胞である。

接着性幹細胞は、遺伝子組み換えされた又は遺伝子組み換えされていない接着性幹細胞であり、好ましくは、遺伝子組み換えされていない接着性幹細胞である。

本発明の細胞集団は、任意の数の接着性幹細胞を含むことができる。本発明の細胞集団は、例えば、１．０×１０^１個、１．０×１０^２個、１．０×１０^３個、１．０×１０^４個、１．０×１０^５個、１．０×１０^６個、１．０×１０^７個、１．０×１０^８個、１．０×１０^９個、１．０×１０^１０個、１．０×１０^１１個、１．０×１０^１２個、１．０×１０^１３個以上又は以下の接着性幹細胞を含むことができるが、これらに限定されない。

本発明の細胞集団は、接着性幹細胞以外に、任意の成分を含んでもよい。上記の成分としては、例えば、塩類（例えば、生理食塩液、リンゲル液、ビカネイト輸液）、多糖類（例えば、ヒドロキシルエチルデンプン（ＨＥＳ）、デキストランなど）、タンパク質（例えば、アルブミンなど）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、アミノ酸、培地成分（例えば、ＲＰＭＩ１６４０培地に含まれる成分など）などを挙げることができるが、これらに限定されない。

本発明の細胞集団は、使用直前まで凍結状態にて保存することができる。上記の細胞集団は、接着性幹細胞以外に、凍結保存液を含んでもよい。上記の凍結保存液としては、市販の凍結保存液を用いてもよい。例えば、ＣＰ－１（登録商標）（極東製薬工業社製）、ＢＡＭＢＡＮＫＥＲ（リンフォテック社製）、ＳＴＥＭ－ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ（日本全薬工業社製）、ＲｅｐｒｏＣｒｙｏ ＲＭ（リプロセル社製）、ＣｒｙｏＮｏｖｏ（Ａｋｒｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）、ＭＳＣ Ｆｒｅｅｚｉｎｇ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社製）、ＣｒｙｏＳｔｏｒ（ＨｅｍａＣａｒｅ社製）などが挙げられるが、これらに限定されない。

本発明の細胞集団は、媒体と組み合わせた組成物として提供してもよい。媒体としては、好ましくは液体媒体（例えば、培地、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、凍結保存液、又は後記する製薬上許容し得る媒体など）を使用することができる。

本発明の細胞集団と媒体とを含む組成物は、任意の細胞濃度とすることができる。本発明の細胞集団と媒体とを含む組成物の細胞濃度は、例えば、１．０×１０^１個／ｍＬ、１．０×１０^２個／ｍＬ、１．０×１０^３個／ｍＬ、１．０×１０^４個／ｍＬ、１．０×１０^５個／ｍＬ、１．０×１０^６個／ｍＬ、１．０×１０^７個／ｍＬ、１．０×１０^８個／ｍＬ、１．０×１０^９個／ｍＬ、１．０×１０^１０個／ｍＬ以上又は以下の細胞濃度とすることができるが、これらに限定されない。

［３］接着性幹細胞を含む細胞集団の製造方法
本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の製造方法は、胎児付属物などの生体組織又は器官から採取した細胞を含む細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上である細胞集団を取得することを含む、製造方法である。また、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の製造方法は、胎児付属物などの生体組織又は器官から採取した細胞を含む細胞集団を、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上に維持する条件下において培養する工程を含む方法である。前記条件は、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団形成の指標であり、本発明の培養方法は、前記指標を満たせば特に制限されない。

本発明の製造方法は、例えば、羊膜などの胎児付属物を酵素処理することにより、接着性幹細胞を含む細胞集団を取得する細胞集団取得工程を含むものでもよい。上記の細胞集団取得工程は、羊膜を帝王切開により得る工程を含む工程でもよい。さらに、上記の細胞集団取得工程は、接着性幹細胞を含む生体試料を洗浄する工程を含むものでもよい。

羊膜は、上皮細胞層と細胞外基質層からなり、後者には羊膜接着性幹細胞が含まれている。羊膜上皮細胞は、他の上皮細胞同様、特徴として上皮接着因子（ＥｐＣＡＭ：ＣＤ３２６）を発現しているのに対し、羊膜接着性幹細胞はＣＤ３２６の上皮特異的表面抗原マーカーを発現しておらず、フローサイトメトリーで容易に区別可能である。上記の細胞集団取得工程は、羊膜を帝王切開により得る工程を含む工程でもよい。

本発明における接着性幹細胞を含む細胞集団は、好ましくは胎児付属物から採取した上皮細胞層と接着性幹細胞層とを含む生体試料を少なくともコラゲナーゼで処理して得た細胞集団である。

胎児付属物から採取した生体試料（好ましくは上皮細胞層と接着性幹細胞層とを含む生体試料）の酵素処理は、好ましくは、胎児付属物の細胞外基質層に含まれる接着性幹細胞を遊離することができ、かつ上皮細胞層を分解しない酵素（又はその組み合わせ）による処理である。かかる酵素としては、特に限定されないが、例えば、コラゲナーゼ及び／又は金属プロテイナーゼを挙げることができる。金属プロテイナーゼとしては、非極性アミノ酸のＮ末端側を切断する金属プロテイナーゼであるサーモリシン及び／又はディスパーゼを挙げることができるが、特に限定されない。

コラゲナーゼの活性濃度は、好ましくは５０ＰＵ／ｍｌ以上、より好ましくは１００ＰＵ／ｍｌ以上、さらに好ましくは２００ＰＵ／ｍｌ以上である。また、コラゲナーゼの活性濃度は、特に限定されないが、例えば、１０００ＰＵ／ｍｌ以下、９００ＰＵ／ｍｌ以下、８００ＰＵ／ｍｌ以下、７００ＰＵ／ｍｌ以下、６００ＰＵ／ｍｌ以下、５００ＰＵ／ｍｌ以下である。ここで、ＰＵ（Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｕｎｉｔ）とは、ｐＨ７．５、３０℃において、ＦＩＴＣ－ｃｏｌｌａｇｅｎ １ｕｇを１分間で分解する酵素量と定義する。

金属プロテイナーゼ（例えば、サーモリシン及び／又はディスパーゼ）の活性濃度は、好ましくは５０ＰＵ／ｍｌ以上、より好ましくは１００ＰＵ／ｍｌ以上、さらに好ましくは２００ＰＵ／ｍｌ以上である。また、金属プロテイナーゼの活性濃度は、好ましくは１０００ＰＵ／ｍｌ以下、より好ましくは９００ＰＵ／ｍｌ以下、さらに好ましくは８００ＰＵ／ｍｌ以下、さらに好ましくは７００ＰＵ／ｍｌ以下、さらに好ましくは６００ＰＵ／ｍｌ以下、さらに好ましくは５００ＰＵ／ｍｌ以下である。ここで、金属プロテイナーゼとしてディスパーゼを用いた態様において、ＰＵ（Ｐｒｏｔｅａｓｅ Ｕｎｉｔ）とは、ｐＨ７．５、３０℃において、乳酸カゼインから１分間に１ｕｇのチロシンに相当するアミノ酸を遊離する酵素量と定義される。上記の酵素濃度の範囲において、胎児付属物の上皮細胞層に含まれる上皮細胞の混入を防止しながら、細胞外基質層に含まれる接着性幹細胞を効率よく遊離させることができる。コラゲナーゼ及び／又は金属プロテイナーゼの好ましい濃度の組み合わせは、酵素処理後の胎児付属物の顕微鏡観察や、取得した細胞のフローサイトメトリーにより決定することができる。

生細胞を効率的に回収する観点から、コラゲナーゼ及び金属プロテイナーゼを組み合わせて胎児付属物を処理することが好ましい。さらに好ましくは、前記組み合わせによって胎児付属物を同時一括に処理する。この場合の金属プロテイナーゼとしては、サーモリシン及び／又はディスパーゼを使用することができるが、これらに限定されない。コラゲナーゼ及び金属プロテイナーゼを含有する酵素液を用いて胎児付属物を一回のみ処理することにより、接着性幹細胞を簡便に取得することができる。また、同時一括に処理することにより、細菌やウィルス等のコンタミネーションのリスクを低減することができる。

胎児付属物の酵素処理は、生理食塩水やハンクス平衡塩溶液等の洗浄液を用いて洗浄した羊膜を酵素液に浸漬し、撹拌手段によって撹拌しながら処理することが好ましい。かかる撹拌手段としては、胎児付属物の細胞外基質層に含まれる接着性幹細胞を効率よく遊離させる観点から、例えば、スターラー又はシェーカーを使用することができるが、これらに限定されない。撹拌速度は、特に限定されないが、スターラー又はシェーカーを用いた場合、例えば、１０ｒｐｍ以上、３０ｒｐｍ以上、又は５０ｒｐｍ以上である。また、撹拌速度は、特に限定されないが、スターラー又はシェーカーを用いた場合、例えば、１００ｒｐｍ以下、８０ｒｐｍ以下又は６０ｒｐｍ以下である。酵素処理時間は、特に限定されないが、例えば、１０分以上、３０分以上、５０分以上、７０分以上、又は９０分以上である。また、酵素処理時間は、特に限定されないが、例えば、６時間以下、４時間以下、２時間以下、１００分以下である。酵素処理温度は、特に限定されないが、例えば、１６℃以上、２０℃以上、２４℃以上、２８℃以上、３２℃以上、又は３６℃以上である。また、酵素処理温度は、特に限定されないが、例えば、４０℃以下、３９℃以下、又は３８℃以下である。

本発明の製造方法において、所望により、遊離した接着性幹細胞を含む酵素溶液からフィルター、遠心分離や中空糸分離膜、セルソーター等の公知の方法により遊離した接着性幹細胞を分離及び／又は回収することができる。好ましくは、フィルターによって遊離した接着性幹細胞を含む酵素溶液を濾過する。前記酵素溶液をフィルターによって濾過する態様においては、遊離した細胞のみがフィルターを通過し、分解されなかった上皮細胞層はフィルターを通過できずにフィルター上に残るため、遊離した接着性幹細胞を容易に分離及び／又は回収することができるだけでなく、細菌やウィルス等のコンタミネーションのリスクも低減することができる。フィルターとしては、特に限定されないが、例えば、メッシュフィルターを挙げることができる。メッシュフィルターのポアサイズ（メッシュの大きさ）は、特に限定されないが、例えば、４０μｍ以上、６０μｍ以上、８０μｍ以上、又は９０μｍ以上である。また、メッシュフィルターのポアサイズは、特に限定されないが、例えば、２００μｍ以下、１８０μｍ以下、１６０μｍ以下、１４０μｍ以下、１２０μｍ以下、又は１００μｍ以下である。濾過速度に関しては特に限定されないが、メッシュフィルターのポアサイズを上記の範囲とすることにより、接着性幹細胞を含む酵素溶液を自然落下により濾過することができ、これにより細胞生存率の低下を防止することができる。

メッシュフィルターの材質としては、ナイロンが好ましく用いられる。研究用として汎用されるＦａｌｃｏｎセルストレーナーなどの４０μｍ、７０μｍ、９５μｍ又は１００μｍのナイロンメッシュフィルターを含有するチューブが利用可能である。また、血液透析などで使用されている医療用メッシュクロス（ナイロン及びポリエステル）が利用できる。さらに、体外循環時に使用される動脈フィルター（ポリエステルメッシュフィルター、ポアサイズ：４０μｍ以上１２０μｍ以下）も利用可能である。他の材質、例えば、ステンレスメッシュフィルター等も用いることが可能である。

接着性幹細胞をフィルター通過させる場合、自然落下（自由落下）が好ましい。ポンプ等を用いた吸引など強制的なフィルター通過も可能であるが、細胞に損傷を与えることを避けるため、できるだけ弱い圧力とすることが望ましい。

フィルターを通した接着性幹細胞は、倍量又はそれ以上の培地又は平衡塩緩衝液で濾液を希釈した後、遠心分離により回収することができる。平衡塩緩衝液としては、生理食塩液、ダルベッコリン酸バッファー（ＤＰＢＳ）、アール平衡塩溶液（ＥＢＳＳ）、ハンクス平衡塩溶液（ＨＢＳＳ）、リン酸バッファー（ＰＢＳ）等を用いることができるが、これらに限定されない。

上記の細胞集団取得工程で得られた細胞集団は、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを維持する条件下で培養する。前記条件は、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を取得する際の指標として有用である。培養方法としては、前記指標を満たすものであれば、特に限定されない。そのような方法としては、例えば、セルソーターにて前記指標を満たす細胞集団を分取することや、前記指標を満たす条件下で細胞集団を培養する方法が挙げられる。

前記指標を満たす培養方法としては、例えば、例えば細胞集団を、コーティングしていないプラステチック製培養容器に１００～２０，０００細胞／ｃｍ^２の密度で播種し、培養することを複数回繰り返す工程を挙げることができる。細胞集団を播種する際の密度の下限は、さらに好ましくは２００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは４００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは６００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは８００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは１０００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは１２００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは１４００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは１６００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは１８００個／ｃｍ^２以上であり、さらに好ましくは２０００個／ｃｍ^２以上である。細胞集団を播種する際の密度の上限は、さらに好ましくは１８０００個／ｃｍ^２以下であり、さらに好ましくは１６０００個／ｃｍ^２以下であり、さらに好ましくは１４０００個／ｃｍ^２以下であり、さらに好ましくは１２０００個／ｃｍ^２以下であり、さらに好ましくは１００００個／ｃｍ^２以下であり、さらに好ましくは８０００個／ｃｍ^２以下である。

前記指標を満たす他の培養方法としては、例えば、細胞集団を、コーティング剤によりコーティングしたプラスチック製培養容器に１００～２０，０００個／ｃｍ^２の密度で播種し、培養することを複数回繰り返す工程を挙げることができる。細胞集団を播種する際の密度の好ましい条件は、上記した条件と同様である。

コーティング剤としては、例えば、細胞外基質、フィブロネクチン、ビトロネクチン、オステオポンチン、ラミニン、エンタクチン、コラーゲンＩ、コラーゲンＩＩ、コラーゲンＩＩＩ、コラーゲンＩＶ、コラーゲンＶ、コラーゲンＶＩ、ゼラチン、ポリ－Ｌ－オルニチン、ポリ－Ｄ－リジン、マトリゲル（登録商標）マトリックスを挙げることができるが、これらに限定されない。

上記の培養に用いる培地は、任意の動物細胞培養用液体培地を基礎培地とし、必要に応じて他の成分（アルブミン、血清、血清代替試薬、増殖因子、ヒト血小板溶解物など）を適宜添加することにより調製することができる。

基礎培地としては、ＢＭＥ培地、ＢＧＪｂ培地、ＣＭＲＬ１０６６培地、Ｇｌａｓｇｏｗ ＭＥＭ培地、Ｉｍｐｒｏｖｅｄ ＭＥＭ Ｚｉｎｃ Ｏｐｔｉｏｎ培地、ＩＭＤＭ培地（Ｉｓｃｏｖｅ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ）、Ｍｅｄｉｕｍ １９９培地、Ｅａｇｌｅ ＭＥＭ培地、αＭＥＭ（Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ）培地、ＤＭＥＭ培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ）、ハムＦ１０培地、ハムＦ１２培地、ＲＰＭＩ １６４０培地、Ｆｉｓｃｈｅｒ’ｓ培地、及びこれらの混合培地（例えば、ＤＭＥＭ／Ｆ１２培地（Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓ Ｍｏｄｉｆｉｅｄ Ｅａｇｌｅ’ｓ Ｍｅｄｉｕｍ／Ｎｕｔｒｉｅｎｔ Ｍｉｘｔｕｒｅ Ｆ－１２ Ｈａｍ））等の培地を使用することができるが、特に限定されない。

また、上記の培養に用いる培地は、市販の無血清培地を用いてもよい。例えば、ＳＴＫ１やＳＴＫ２（ＤＳファーマバイオメディカル社製）、ＥＸＰＲＥＰ ＭＳＣ Ｍｅｄｉｕｍ（バイオミメティクスシンパシーズ社製）、Ｃｏｒｎｉｎｇ ｓｔｅｍｇｒo ヒト接着性幹細胞培地（コーニング社製）などが挙げられるが、特に限定されない。

前記基礎培地に対して添加する他の成分としては、例えば、アルブミン、血清、血清代替試薬、増殖因子、又はヒト血小板溶解物などが挙げられる。前記基礎培地にアルブミンを添加する態様においては、アルブミンの濃度は０．０５％より多く５％以下が好ましい。また、前記基礎培地に血清を添加する態様においては、血清の濃度は５％以上が好ましい。増殖因子を添加する態様においては、増殖因子を培地中で安定化させるための試薬（ヘパリンなどのタンパク、ゲル、多糖類など）を、増殖因子に加えてさらに添加してもよいし、あらかじめ安定化させた増殖因子を前記基礎培地に対して添加してもよい。増殖因子は例えば、線維芽細胞増殖因子（ＦＧＦ）、上皮細胞増殖因子（ＥＧＦ）、トランスフォーミング増殖因子（ＴＧＦ）、血管内皮細胞増殖因子（ＶＥＧＦ）、血小板由来増殖因子（ＰＤＧＦ）、及びそれらのファミリーを使用することができるが、特に限定されない。

前記指標を満たすさらに他の培養方法としては、例えば、培養に用いる基礎培地に、ヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を添加して培養することが挙げられる。ヒト血小板溶解物は、細菌やウィルスの不活性化及び／又は滅菌処理がされていることが好ましい。上記のヒト血小板溶解物としては、市販のヒト血小板溶解物を用いてもよい。例えば、Ｓｔｅｍｕｌａｔｅ（Ｃｏｏｋ Ｒｅｇｅｎｔｅｃ社製）、ＰＬＴＭａｘ（Ｍｉｌｌ Ｃｒｅｅｋ Ｌｉｆｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ社製）、ＵｌｔｒａＧＲＯ（ＡｖｅｎｔａＣｅｌｌ ＢｉｏＭｅｄｉａｌ社製）、ＰＬＵＳ（Ｃｏｍｐａｓｓ Ｂｉｏｍｅｄｉｃａｌ社製）などが挙げられるが、これらに限定されない。

培地中におけるヒト血小板溶解物の終濃度は、好ましくは１％以上であり、さらに好ましくは２％以上であり、さらに好ましくは３％以上であり、さらに好ましくは４％以上であり、さらに好ましくは５％以上である。培地中における血小板溶解物の終濃度は、好ましくは２０％以下であり、さらに好ましくは１８％以下であり、さらに好ましくは１６％以下であり、さらに好ましくは１４％以下であり、さらに好ましくは１２％以下であり、さらに好ましくは１０％以下であり、さらに好ましくは９％以下であり、さらに好ましくは８％以下であり、さらに好ましくは７％以下であり、さらに好ましくは６％以下である。

ヒト血小板溶解物を添加するタイミングは、特に限定されないが、例えば、培養工程の最初、培養工程の途中、培養工程における純化後、ｎ回継代した直後（ｎは１以上の整数を示す）、維持培養の途中、凍結保存前、又は解凍後などが挙げられる。

接着性幹細胞の培養は、例えば、以下のような工程にて行うことができる。まず、細胞懸濁液を遠心分離し、上清を除去し、得られた細胞ペレットを培地にて懸濁する。次に、プラスチック製培養容器に細胞を播種し、３％以上５％以下のＣＯ_２濃度、３７℃環境にて、培地を用いてコンフルエント率９５％以下となるように培養する。上記の培地としては、例えば、αＭＥＭ、Ｍ１９９、或いはこれらを基礎とする培地を挙げることができるが、これらに限定されない。上記のような培養により取得した細胞は、１回培養した細胞である。

上記の１回の培養の培養期間としては、例えば２から１５日間を挙げることができ、より具体的には、２日間、３日間、４日間、５日間、６日間、８日間、１０日間、１２日間、１４日間、又は１５日間を挙げることができる。

上記の１回培養した細胞は、例えば、以下のようにさらに継代し、培養することができる。まず、１回培養した細胞を、細胞剥離手段にて処理してプラスチック製培養容器から剥離させる。次に、得られた細胞懸濁液を遠心分離し、上清を除去し、得られた細胞ペレットを培地にて懸濁する。最後に、プラスチック製培養容器に細胞を播種し、３％以上、５％以下のＣＯ_２濃度、３７℃環境にて、培地を用いてコンフルエント率９５％以下となるように培養する。上記の培地としては、例えば、αＭＥＭ、Ｍ１９９、或いはこれらを基礎とする培地を挙げることができるが、これらに限定されない。上記のような継代及び培養により取得した細胞は、１回継代した細胞である。同様の継代及び培養を行うことにより、ｎ回継代した細胞を取得することができる（ｎは１以上の整数を示す）。継代回数ｎの下限は、細胞を大量に製造する観点から、例えば、１回以上、好ましくは２回以上、より好ましくは４回以上、さらに好ましくは６回以上、さらに好ましくは８回以上、さらに好ましくは１０回以上、さらに好ましくは１２回以上、さらに好ましくは１４回以上、さらに好ましくは１６回以上、さらに好ましくは１８回以上、さらに好ましくは２０回以上、さらに好ましくは２５回以上である。また、継代回数ｎの上限は、細胞の老化を抑える観点から、例えば、５０回以下、４０回以下、３０回以下であることが好ましい。上記の細胞剥離手段として、例えば、細胞剥離剤を使用してもよい。細胞剥離剤としては、トリプシン、コラゲナーゼ、ディスパーゼ、エチレンジアミン四酢酸（ＥＤＴＡ）等を使用することができるが、特に限定されない。細胞剥離剤として、市販の細胞剥離剤を用いてもよい。例えば、トリプシン－ＥＤＴＡ溶液（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ社製）、Ａｃｃｕｔａｓｅ（Ｓｔｅｍｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）、Ａｃｃｕｍａｘ（Ｓｔｅｍｃｅｌｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ社製）などが挙げられるが、これらに限定されない。また、細胞剥離手段として、物理的な細胞剥離手段を使用してもよく、例えば、セルスクレーパー（コーニング社製）を使用することができるが、これに限定されない。細胞剥離手段は、単独で使用してもよく、複数を組み合わせて使用してもよい。

本発明の製造方法によれば、正常核型を維持している接着性幹細胞を得ることができ、これにより安全な細胞製剤（医薬組成物）を製造することができる。培養１バッチあたりの取得細胞数（単位表面積あたり、単位培養日数あたりの得られる細胞数）の下限は、播種細胞数、播種密度等によって異なるが、例えば、５．０×１０^３（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以上、６．０×１０^３（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以上、８．０×１０^３（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以上、１．０×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以上、１．１×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以上、又は１．２×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以上である。また、培養１バッチあたりの取得細胞数の上限は、特に限定されないが、例えば、１．０×１０^５（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以下、８．０×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以下、６．０×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以下、４．０×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以下、又は２．０×１０^４（個／ｃｍ^２／ｄａｙ）以下である。

本発明の製造方法によれば、正常核型を維持している接着性幹細胞を得ることができる。これにより、本発明の製造方法によって得られる接着性幹細胞は、生体外での培養開始後、好ましくは２０日以降まで、さらに好ましくは３０日以降まで、４０日以降まで、５０日以降まで、６０日以降まで、７０日以降まで、８０日以降まで、９０日以降まで、１００日以降まで、又は１１０日以降まで、正常核型を維持しながら増殖停止することなく培養することが可能である。

また、本発明の製造方法によって得られる接着性幹細胞は、生体外での培養開始後、倍加回数が好ましくは１０回以上、２０回以上、３０回以上、４０回以上、５０回以上、又は６０回以上になるまで正常核型を維持しながら増殖停止することなく培養することが可能である。

本発明の製造方法は、接着性幹細胞を含む細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む集団を識別する識別工程を含むものでもよい。

前記接着性幹細胞を含む細胞集団を識別するための手段は、好ましくは、フローサイトメトリー、マイクロアレイ、ＲＴ－ＰＣＲ、及び／又は定量ＲＴ－ＰＣＲである。

上記の識別を行うタイミングは、特に限定されないが、例えば、生体試料から細胞を分離した直後、培養工程の途中、培養工程における純化後、ｎ回継代した直後（ｎは１以上の整数を示す）、維持培養の途中、凍結保存前、解凍後、又は医薬品組成物として製剤化する前などが挙げられる。

また、本発明の製造方法は、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として前記接着性幹細胞を含む細胞集団を識別した後に、識別した細胞集団を選択的に分離する工程を含むことができる。前記識別した細胞集団を選択的に分離するための手段は、特に限定されないが、例えば、セルソーターによる細胞集団の分取、培養による細胞集団の純化などが挙げられる。

また、本発明の製造方法は、前記接着性幹細胞を含む細胞集団を凍結保存する工程を含むことができる。前記細胞集団を凍結保存する工程を含む態様においては、前記細胞集団を解凍後、必要に応じて前記細胞集団を分離、回収及び／又は培養してもよい。また、前記細胞集団を解凍後、そのまま使用してもよい。

前記接着性幹細胞を含む細胞集団を凍結保存するための手段は、特に限定されないが、例えば、プログラムフリーザー、ディープフリーザー、液体窒素への浸漬などが挙げられる。凍結する際の温度は、好ましくは－３０℃以下、－４０℃以下、－５０℃以下、－８０℃以下、－９０℃以下、－１００℃以下、－１５０℃以下、－１８０℃以下、又は－１９６℃（液体窒素温度）以下である。凍結する際の好ましい凍結速度は、例えば、－１℃／分、－２℃／分、－５℃／分、－９℃／分、－１０℃／分、－１１℃／分、又は－１５℃／分である。かかる凍結手段としてプログラムフリーザーを用いた場合、例えば、－２℃／分以上－１℃／分以下の凍結速度で－５０℃以上－３０℃以下の間の温度（例えば、－４０℃）まで温度を下げ、さらに－１１℃／分以上－９℃／分以下（例えば、－１０℃／分）の凍結速度で－１００℃以上－８０℃以下の温度（例えば、－９０℃）まで温度を下げることができる。また、上記の凍結手段として液体窒素への浸漬を用いた場合、例えば、－１９６℃まで急速に温度を下げて凍結させた後、液体窒素（気相）中で凍結保存することができる。

上記の凍結手段により凍結する際、上記の細胞集団は、任意の保存容器に入った状態で凍結されてよい。かかる保存容器としては、例えば、クライオチューブ、クライオバイアル、凍結用バッグ、輸注バッグなどが挙げられるが、これらに限定されない。

上記の凍結手段により凍結する際、上記の細胞集団は、任意の凍結保存液中で凍結されてもよい。上記の凍結保存液としては、市販の凍結保存液を用いてもよい。例えば、ＣＰ－１（登録商標）（極東製薬工業社製）、ＢＡＭＢＡＮＫＥＲ（リンフォテック社製）、ＳＴＥＭ－ＣＥＬＬＢＡＮＫＥＲ（日本全薬工業社製）、ＲｅｐｒｏＣｒｙｏ ＲＭ（リプロセル社製）、ＣｒｙｏＮｏｖｏ（Ａｋｒｏｎ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ社製）、ＭＳＣ Ｆｒｅｅｚｉｎｇ Ｓｏｌｕｔｉｏｎ（Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｉｎｄｕｓｔｒｉｅｓ社製）、ＣｒｙｏＳｔｏｒ（ＨｅｍａＣａｒｅ社製）などが挙げられるが、これらに限定されない。

上記の凍結保存液は、所定濃度の多糖類を含有することができる。多糖類の好ましい濃度は、例えば、１質量％以上、２質量％以上、４質量％以上、又は６質量％以上である。また、多糖類の好ましい濃度は、例えば、２０質量％以下、１８質量％以下、１６質量％以下、１４質量％以下、又は１３質量％以下である。多糖類としては、例えば、ヒドロキシルエチルデンプン（ＨＥＳ）又はデキストラン（Ｄｅｘｔｒａｎ４０など）などを挙げることができるが、これらに限定されない。

上記の凍結保存液は、所定濃度のジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）を含有することができる。ＤＭＳＯの好ましい濃度は、例えば、１質量％以上、２質量％以上、３質量％以上、４質量％以上、又は５質量％以上である。また、ＤＭＳＯの好ましい濃度は、例えば、２０質量％以下、１８質量％以下、１６質量％以下、１４質量％以下、１２質量％以下、又は１０質量％以下である。

上記の凍結保存液は、０質量％より多い所定濃度のアルブミンを含有するものでもよい。アルブミンの好ましい濃度は、例えば、１質量％以上、２質量％以上、３質量％以上、又は４質量％以上である。また、アルブミンの好ましい濃度は、例えば、３０質量％以下、２０質量％以下、１０質量％以下、又は９質量％以下である。アルブミンとしては、例えば、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、マウスアルブミン、ヒトアルブミン等を挙げることができるが、これらに限定されない。

本発明の製造方法は、前記接着性幹細胞を含む細胞集団を洗浄する工程を含むことができる。上記の接着性幹細胞を含む細胞集団を洗浄する工程において使用される洗浄液としては、例えば、生理食塩液、ダルベッコリン酸バッファー（ＤＰＢＳ）、アール平衡塩溶液（ＥＢＳＳ）、ハンクス平衡塩溶液（ＨＢＳＳ）、リン酸バッファー（ＰＢＳ）等を挙げることができるが、これらに限定されない。細胞集団を洗浄することにより、アレルゲン、エンドトキシン等を低減又は除去することができる。上記のアレルゲンとしては、例えば、ウシ血清アルブミン（ＢＳＡ）、ブタトリプシン、ブタヘパリンなどを挙げることができるが、これらに限定されない。

本発明の製造方法は、前記接着性幹細胞を含む細胞集団から、必要に応じて望まれない細胞凝集塊を除去する工程を含むことができる。上記の接着性幹細胞を含む細胞集団から望まれない細胞凝集塊を除去する工程は、接着性幹細胞を含む細胞集団（細胞懸濁液）をフィルター濾過する工程を含む工程でもよい。

本発明の製造方法は、前記接着性幹細胞を含む細胞集団を保存容器に充填する工程を含むことができる。上記の保存容器としては、例えば、クライオチューブ、クライオバイアル、凍結用バッグ、輸注バッグなどが挙げられるが、これらに限定されない。

［４］接着性幹細胞の核型異常をモニタリングする方法、ドナー及び／又はドナーから採取した生体試料の評価方法、並びに最適な酵素処理条件の判断及び／又は予測方法
本発明においては、接着性幹細胞を含む細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として測定することによって（好ましくは経時的に測定することによって）、接着性幹細胞の核型異常をモニタリングすることができる。前記モニタリングが必要な工程としては、例えば、培養する工程、凍結保存する工程及び／又は製剤化する工程である。

培養する工程においては、指標を経時的に測定することで、接着性幹細胞の核型異常の変化を迅速かつ簡便に把握且つ予測することができる。上記指標を満たす接着性幹細胞を含む細胞集団においては、接着性幹細胞が正常核型を維持していることが分かる。一方上記指標から値が逸脱した培養状態が継続している場合には、接着性幹細胞の核型異常が増加しつつあることが予測できる。核型異常が増加しつつあることを指標から読み取った場合には、培養条件（播種密度、培地、増殖因子、血清の変更など）を必要に応じて適切に変更することによって、接着性幹細胞の核型異常の発現を抑制することができる。また、上記指標を満たさない場合には、例えばセルソーティング技術を利用することによって、上記指標を満たす接着性幹細胞を含む細胞集団を分取することができる。前記細胞集団における接着性幹細胞を再度播種し、継代培養することによって、接着性幹細胞の核型異常の発現を抑制することができる。培養初期段階においては、その工程の最終段階において前記指標を満たすように培養条件（播種密度、培地、増殖因子、血清の変更など）を設計して、少なくとも最終段階においては、上記指標を満たすことができればよい。

本発明においては、ドナーから接着性幹細胞を含む細胞集団を取得し、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として評価することによって、ドナー自体及び／又はドナーから採取した生体試料の品質を評価することができる。上記指標を満たす接着性幹細胞を含む細胞集団が得られる場合（好ましくは容易に得られる場合）には、ドナー及び／又はドナーから採取した生体試料の品質が良好であることを確認できる。一方、前記接着性幹細胞を含む細胞集団における上記比率が、上記指標から逸脱している場合には、ドナーから採取した生体試料の品質が不良であるため、培養条件（播種密度、培地、増殖因子、血清の変更など）を適切に変更することによって、接着性幹細胞の核型異常の発生を抑制することができる。また、前記接着性幹細胞を含む細胞集団における上記比率が、上記指標から逸脱している場合には、例えばセルソーティング技術を利用することによって、上記指標を満たす接着性幹細胞を含む細胞集団を分取し、前記細胞集団における接着性幹細胞を播種して培養することによって、接着性幹細胞の核型異常を低下させることができる。あるいは、上記指標から逸脱した生体試料を、培養せずに廃棄することで、品質不良の接着性幹細胞を大量に取得するリスクを低減することができる。培養初期段階においては、その工程の最終段階において前記指標を満たすように培養条件（播種密度、培地、増殖因子、血清の変更など）を設計して、少なくとも最終段階においては、上記指標を満たすことができればよい。なお、ドナーから採取した生体試料の品質を確認する場合については、生体試料の調製及び処理方法、細胞集団の培養方法は特に限定されず、任意の方法を採用することができる。

本発明においては、ドナーから採取した生体試料を酵素処理して得られた細胞集団に対して、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として評価することで、前記生体試料の最適な酵素処理条件を判断及び／又は予測することができる。上記指標を満たす接着性幹細胞を含む細胞集団が得られる場合（好ましくは容易に得られる場合）には、ドナーから採取した生体試料の酵素処理方法が適切であることを判断及び／又は予測することができる。一方、上記指標から値が逸脱した培養状態が継続している場合には、ドナーから採取した生体試料の酵素処理方法が不適切であると判断及び／又は予測することができる。なお、最適な酵素処理方法を判断及び／又は予測する場合については、生体試料の調製及び処理方法、細胞集団の培養方法は特に限定されず、任意の方法を採用することができる。

上記の指標は必要なタイミングで測定すればよく、特に限定されないが、生体試料から細胞を分離した直後、培養工程の途中、培養工程における純化後、ｎ回継代した直後（ｎは１以上の整数を示す）、維持培養の途中、凍結保存前、解凍後、又は医薬品組成物として製剤化する前などが挙げられる。

［５］医薬組成物
本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団は、医薬組成物として使用することができる。即ち、本発明によれば、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団と、製薬上許容し得る媒体とを含む、医薬組成物が提供される。本発明によればさらに、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団と、投与可能な他の細胞とを含む、医薬組成物が提供される。

本発明の医薬組成物は、細胞治療剤、例えば、難治性疾患治療剤として使用することができる。
本発明の医薬組成物は、免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患の治療剤として使用することができる。本発明の医薬組成物を治療部位に効果が計測できる量投与することで、上記疾患を治療することができる。

本発明によれば、医薬組成物のために使用される、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団が提供される。
本発明によれば、細胞治療剤のために使用される、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団が提供される。

本発明によれば、免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患の治療のために使用される、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団が提供される。

本発明によれば、患者又は被験者に投与して、心筋の再生、心筋細胞の産生、血管新生、血管の修復、又は、免疫応答の抑制のために使用される、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団が提供される。

本発明によれば、患者又は被験者に、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の治療有効量を投与する工程を含む、患者又は被験者に細胞を移植する方法、並びに患者又は被験者の疾患の治療方法が提供される。

本発明によれば、医薬組成物の製造のための、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の使用が提供される。
本発明によれば、細胞治療剤の製造のための、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の使用が提供される。

本発明によれば、免疫関連疾患、虚血性疾患、下肢虚血、脳血管虚血、腎臓虚血、肺虚血、神経性疾患、移植片対宿主病、炎症性腸疾患、クローン病、潰瘍性大腸炎、放射線腸炎、全身性エリテマトーデス、紅斑性狼瘡、膠原病、脳卒中、脳梗塞、脳内血腫、脳血管麻痺、肝硬変、アトピー性皮膚炎、多発性硬化症、乾癬、表皮水疱症、糖尿病、菌状息肉腫、強皮症、軟骨等の結合組織の変性及び／又は炎症から起こる疾患、関節軟骨欠損、半月板損傷、離弾性骨軟骨症、無腐性骨壊死、変形性膝関節症、炎症性関節炎、関節リウマチ、眼疾患、血管新生関連疾患、虚血性心疾患、冠動脈性心疾患、心筋梗塞、狭心症、心不全、心筋症、弁膜症、創傷、上皮損傷、線維症、肺疾患、及び癌から選択される疾患の治療剤の製造のための、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の使用が提供される。

本発明によれば、患者又は被験者に投与して、心筋の再生、心筋細胞の産生、血管新生、血管の修復、又は、免疫応答の抑制に必要な治療剤の製造のための、本発明による接着性幹細胞を含む細胞集団の使用が提供される。

本発明の医薬組成物は、接着性幹細胞を含む細胞集団を、製薬上許容し得る媒体により希釈したものでもよい。上記の製薬上許容し得る媒体は、患者又は被験者に投与し得る溶液であれば特に限定されない。製薬上許容し得る媒体は、輸液製剤であってもよく、例えば、注射用水、生理食塩液、５％ブドウ糖液、リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、重炭酸リンゲル液、アミノ酸液、開始液（１号液）、脱水補給液（２号液）、維持輸液（３号液）、術後回復液（４号液）、Ｐｌａｓｍａ－Ｌｙｔｅ Ａ（登録商標）等を挙げることができるが、これらに限定されない。

本明細書における「患者又は被験者」とは、典型的にはヒトであるが、他の動物であってもよい。他の動物としては、例えば、イヌ、ネコ、ウシ、ウマ、ブタ、ヤギ、ヒツジ、サル（カニクイザル、アカゲザル、コモンマーモセット、ニホンザル）、フェレット、ウサギ、げっ歯類（マウス、ラット、スナネズミ、モルモット、ハムスター）等の哺乳動物、ニワトリ、ウズラ等の鳥類が挙げられるが、これらに限定されない。

本明細書における「治療」としては、例えば、患者又は被験者の生命予後、機能予後、生存率、体重減少、貧血、下痢、下血、腹痛、発熱、食欲低下、栄養失調、嘔吐、疲労、発疹、炎症、潰瘍、びらん、瘻孔、狭窄、腸閉塞、内出血、直腸出血、痙攣、疼痛、肝機能低下、心機能低下、肺機能低下、又は血液検査項目のうち、少なくとも１つを有意に改善することが挙げられるが、これらに限定されない。

本発明の医薬組成物は、患者又は被験者の治療の際に用いられる任意の成分を含んでもよい。上記の成分としては、例えば、塩類（例えば、生理食塩液、リンゲル液、ビカネイト輸液）、多糖類（例えば、ヒドロキシルエチルデンプン（ＨＥＳ）、デキストランなど）、タンパク質（例えば、アルブミンなど）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、アミノ酸、培地成分（例えば、ＲＰＭＩ１６４０培地に含まれる成分など）などを挙げることができるが、これらに限定されない。

本発明の医薬組成物は、保存安定性、等張性、吸収性及び／又は粘性を増加するための種々の添加剤、例えば、乳化剤、分散剤、緩衝剤、保存剤、湿潤剤、抗酸化剤、キレート剤、増粘剤、ゲル化剤、ｐＨ調整剤等を含んでもよい。前記増粘剤としては、例えば、ＨＥＳ、デキストラン、メチルセルロース、キサンタンガム、カルボキシメチルセルロース、ヒドロキシプロピルセルロース等が挙げられるが、これらに限定されない。増粘剤の濃度は、選択される増粘剤によるが、患者又は被験者に投与した場合に安全であり、かつ所望の粘性を達成する濃度の範囲で、任意に設定することができる。

本発明の医薬組成物は、接着性幹細胞以外に、１つ又は複数の他の医薬を含んでもよい。上記の他の医薬としては、例えば、抗生物質、アルブミン製剤、ビタミン製剤、抗炎症剤等が挙げることができるが、これらに限定されない。上記の抗炎症剤としては、５－アミノサリチル酸製剤、ステロイド製剤、免疫抑制剤、生物学的製剤等が挙げられるが、これらに限定されない。上記の５－アミノサリチル酸製剤としては、例えば、サラゾスルファピリジン、メサラジンなどを挙げることができるが、これらに限定されない。上記のステロイド製剤としては、例えば、コルチゾン、プレドニゾロン、メチルプレドニゾロンなどを挙げることができるが、これらに限定されない。上記の免疫抑制剤としては、例えば、タクロリムス、シクロスポリン、メトトレキサート、アザチプリン、６－メルカプトプリンなどを挙げることができるが、上記の生物学的製剤としては、例えば、インフリキシマブ、アダリムマブ、ウステキヌマブ、セクキヌマブ、イキセキズマブ、ブロダルマブ、トシリズマブ、ベドリズマブ、フィルゴチニブ、ゴリムマブ、セルトリズマブペゴル、アバタセプト、エタネルセプトなどを挙げることができるが、これらに限定されない。

また、上記の他の医薬は、投与可能な他の細胞であってもよい。投与可能な他の細胞としては、血液由来細胞（白血球、赤血球、単核球等）、血管内皮細胞、血管内皮前駆細胞、周皮細胞、血管壁細胞、線維芽細胞、骨格筋芽細胞、上皮細胞、間質細胞、成熟脂肪細胞等が挙げられるが、特に限定されない。

本発明の医薬組成物のｐＨは、中性付近のｐＨ、例えば、ｐＨ５．５以上、６．５以上又はｐＨ７．０以上とすることができ、またｐＨ１０．５以下、ｐＨ９．５以下、ｐＨ８．５以下又はｐＨ８．０以下とすることができるが、これらに限定されない。

本発明の医薬組成物の細胞濃度としては、患者又は被験者に投与した場合に、投与していない患者又は被験者と比較して疾患に対して治療効果を得ることができるような細胞の濃度である。具体的な細胞濃度は、投与形態、投与方法、使用目的、及び患者又は被験者の年齢、体重及び症状等によって適宜決定することができる。本発明の医薬組成物の細胞濃度の下限は、特に限定されないが、例えば、１．０×１０^５個／ｍＬ以上、１．０×１０^６個／ｍＬ以上、１．２×１０^６個／ｍＬ以上、１．４×１０^６個／ｍＬ以上、１．６×１０^６個／ｍＬ以上、１．８×１０^６個／ｍＬ以上、２．０×１０^６個／ｍＬ以上、３．０×１０^６個／ｍＬ以上、４．０×１０^６個／ｍＬ以上、５．０×１０^６個／ｍＬ以上、６．０×１０^６個／ｍＬ以上、７．０×１０^６個／ｍＬ以上、８．０×１０^６個／ｍＬ以上、９．０×１０^６個／ｍＬ以上、９．５×１０^６個／ｍＬ以上、又は１．０×１０^７個／ｍＬ以上である。本発明の医薬組成物の細胞濃度の上限は、特に限定されないが、例えば、１．０×１０^１０個／ｍＬ以下、１．０×１０^９個／ｍＬ以下、８．０×１０^８個／ｍＬ以下、６．０×１０^８個／ｍＬ以下、４．０×１０^８個／ｍＬ以下、２．０×１０^８個／ｍＬ以下、又は１．０×１０^８個／ｍＬ以下である。

本発明の医薬組成物は、好ましくは液剤であり、より好ましくは注射用液剤である。注射用液剤としては、例えば、国際公開ＷＯ２０１１／０４３１３６号公報、特開２０１３－２５６５１０号公報などにおいて、注射に適した液体調製物が知られている。本発明の医薬組成物も、上記文献に記載されている注射用液剤とすることができる。
また、上記液剤は細胞の懸濁液でもよく、細胞が液剤中に分散した液体調製物でもよい。さらに前記液剤に含まれる細胞の形態は特に限定されないが、例えばシングルセルでもよいし、細胞凝集塊でもよい。

本発明の医薬組成物が注射用液剤である場合、注射用液剤の細胞濃度の下限は、疾患に対する治療効果を高める観点から、１．０×１０^６個／ｍＬ以上、１．２×１０^６個／ｍＬ以上、１．４×１０^６個／ｍＬ以上、１．６×１０^６個／ｍＬ以上、１．８×１０^６個／ｍＬ以上、２．０×１０^６個／ｍＬ以上、３．０×１０^６個／ｍＬ以上、４．０×１０^６個／ｍＬ以上、５．０×１０^６個／ｍＬ以上、６．０×１０^６個／ｍＬ以上、７．０×１０^６個／ｍＬ以上、８．０×１０^６個／ｍＬ以上、９．０×１０^６個／ｍＬ以上、９．５×１０^６個／ｍＬ以上、又は１．０×１０^７個／ｍＬ以上であることが好ましい。また、注射用液剤の細胞濃度の上限は、注射用液剤の調製と投与を容易にする観点から、１．０×１０^９個／ｍＬ以下、８．０×１０^８個／ｍＬ以下、６．０×１０^８個／ｍＬ以下、４．０×１０^８個／ｍＬ以下、２．０×１０^８個／ｍＬ以下、又は１．０×１０^８個／ｍＬ以下であることが好ましい。

また、本発明の一態様によれば、本発明の医薬組成物は、移植用製剤であってもよい。移植用製剤は、固体状またはゲル状の製剤であり、例えば、固体状の移植用製剤としては、シート状構造またはペレット構造の移植用製剤が挙げられる。また、ゲル状構造の移植用製剤としては、例えば、国際公開ＷＯ２０１７／１２６５４９号公報において、分離された細胞を接着剤（例えば、フィブリノーゲン）により接着させることにより得られるゲルを含む移植用製剤が知られている。また、本発明の一態様によれば、本発明の医薬組成物は、細胞と任意のゲルを混合したゲル製剤であってもよい。ゲル製剤としては、例えば、特表２０１７－５２９３６２号公報において、接着性幹細胞－ヒドロゲル組成物より構成される細胞治療剤が知られている。本発明の医薬組成物も、例えば上記文献に記載されている方法を用いることにより、ゲル製剤とすることができる。
また、シート状構造の移植用製剤としては、例えば、国際公開ＷＯ２００６／０８０４３４号公報、特開２０１６－５２２７２号公報などにおいて、温度応答性培養皿（例えば、ＵｐＣｅｌｌ（登録商標）（セルシード社製））を用いて培養することにより得られる細胞シートや、シート状細胞培養物とフィブリンゲルとの積層体、細胞懸濁液をシート状の基材に塗布した細胞塗布シートなどが知られている。本発明の医薬組成物も、例えば上記文献に記載されている方法を用いることにより、各種のシート状構造の移植用製剤とすることができる。

本発明の医薬組成物の投与方法は、特に限定されないが、例えば、皮下注射、皮内注射、筋肉内注射、リンパ節内注射、静脈内注射、動脈内注射、腹腔内注射、胸腔内注射、局所への直接注射、直接貼付、又は局所に直接移植することなどが挙げられる。本発明の一態様によれば、注射用液剤を注射器に充填して、注射針やカテーテルを通じて静脈内、動脈内、心筋内、間節腔内、肝動脈内、筋肉内、硬膜外、歯肉、脳室内、皮下、皮内、腹腔内、門脈内に投与することができるが、これらに限定されない。医薬組成物の投与方法については、例えば、特開２０１５－６１５２０号公報、Ｏｎｋｅｎ ＪＥ，ｔ ａｌ．Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｃｏｌｌｅｇｅ ｏｆ Ｇａｓｔｒｏｅｎｔｅｒｏｌｏｇｙ Ｃｏｎｆｅｒｅｎｃｅ ２００６Ｌａｓ Ｖｅｇａｓ，ＮＶ， Ａｂｓｔｒａｃｔ １２１．、Ｇａｒｃｉａ－Ｏｌｍｏ Ｄ，ｅｔ ａｌ．Ｄｉｓ Ｃｏｌｏｎ Ｒｅｃｔｕｍ ２００５；４８：１４１６－２３．などにおいて、静脈内注射、点滴静脈注射、局所への直接注射、局所への直接移植などが知られている。本発明の医薬組成物も、上記文献に記載されている各種方法により投与することができる。

本発明の医薬組成物の用量としては、患者又は被験者に投与した場合に、投与していない患者又は被験者と比較して疾患に対して治療効果を得ることができるような細胞の量である。具体的な用量は、投与形態、投与方法、使用目的、及び患者又は被験者の年齢、体重及び症状等によって適宜決定することができる。ヒトへの接着性幹細胞の１回の用量は、特に限定されないが、例えば、１×１０^４個／ｋｇ体重以上、１×１０^５個／ｋｇ体重以上、５×１０^５個／ｋｇ体重以上、１×１０^６個／ｋｇ体重以上、２×１０^６個／ｋｇ体重以上、４×１０^６個／ｋｇ体重以上、６×１０^６個／ｋｇ体重以上、又は８×１０^６個／ｋｇ体重以上である。また、ヒトへの接着性幹細胞の１回の用量は、特に限定されないが、例えば、１×１０^１２個／ｋｇ体重以下、１×１０^１１個／ｋｇ体重以下、１×１０^１０個／ｋｇ体重以下、１×１０^９個／ｋｇ体重以下、５×１０^８個／ｋｇ体重以下、１×１０^８個／ｋｇ体重以下、８×１０^７個／ｋｇ体重以下、６×１０^７個／ｋｇ体重以下、４×１０^７個／ｋｇ体重以下、又は２×１０^７個／ｋｇ体重以下である。

本発明の医薬組成物が注射用液剤である場合、注射用液剤のヒトへの接着性幹細胞の１回の用量は、疾患に対する治療効果を高める観点から、１×１０^５個／ｋｇ体重以上、５×１０^５個／ｋｇ体重以上、１×１０^６個／ｋｇ体重以上、２×１０^６個／ｋｇ体重以上、４×１０^６個／ｋｇ体重以上、６×１０^６個／ｋｇ体重以上、又は８×１０^６個／ｋｇ体重以上であることが好ましい。また、注射用液剤のヒトへの接着性幹細胞の１回の用量は、注射用液剤の調製と投与を容易にする観点から、１×１０^９個／ｋｇ体重以下、５×１０^８個／ｋｇ体重以下、１×１０^８個／ｋｇ体重以下、８×１０^７個／ｋｇ体重以下、６×１０^７個／ｋｇ体重以下、４×１０^７個／ｋｇ体重以下、又は２×１０^７個／ｋｇ体重以下であることが好ましい。

本発明の医薬組成物の投与頻度は、患者又は被験者に投与した場合に、疾患に対して治療効果を得ることができるような頻度である。具体的な投与頻度は、投与形態、投与方法、使用目的、及び患者又は被験者の年齢、体重及び症状等によって適宜決定することができるが、例えば、４週間に１回、３週間に１回、２週間に１回、１週間に１回、１週間に２回、１週間に３回、１週間に４回、１週間に５回、１週間に６回、又は１週間に７回である。

本発明の医薬組成物の投与期間は、患者又は被験者に投与した場合に、疾患に対して治療効果を得ることができるような期間である。具体的な投与期間は、投与形態、投与方法、使用目的、及び患者又は被験者の年齢、体重及び症状等によって適宜決定することができるが、例えば、１週間、２週間、３週間、４週間、５週間、６週間、７週間、又は８週間である。

本発明の医薬組成物を患者又は被験者に投与するタイミングは、特に限定されないが、例えば、発症直後、発症からｎ日以内（ｎは１以上の整数を示す）、診断直後、診断からｎ日以内（ｎは１以上の整数を示す）、寛解の前、寛解の間、寛解の後、再燃の前、再燃の間、再燃の後などが挙げられる。

本発明の医薬組成物は、使用直前まで凍結状態にて保存することができる。凍結保存の温度は、好ましくは－３０℃以下、－４０℃以下、－５０℃以下、－８０℃以下、－９０℃以下、－１００℃以下、－１５０℃以下、－１８０℃以下、又は－１９６℃（液体窒素温度）以下である。本発明の医薬組成物を患者又は被験者に投与する際には、３７℃で急速に解凍して使用することができる。

患者又は被験者において接着性幹細胞を含む細胞集団を用いて治療することができる疾患等の他の例、前記疾患等の更なる具体例、及び、治療の具体的な手順は、Ｈａｒｅ ｅｔ ａｌ．， Ｊ． Ａｍ． Ｃｏｌｌ． Ｃａｒｄｉｏｌ．， ２００９ Ｄｅｃｅｍｂｅｒ ８； ５４（２４）： ２２７７－２２８６、Ｈｏｎｍｏｕ ｅｔ ａｌ．， Ｂｒａｉｎ ２０１１： １３４； １７９０－１８０７、Ｍａｋｈｏｕｌ ｅｔ ａｌ．， Ａｎｎ． Ｔｈｏｒａｃ． Ｓｕｒｇ． ２０１３； ９５： １８２７－１８３３、特許第５９０５７７号公報、特開２０１０－５１８０９６号公報、特表２０１２－５０９０８７号公報、特表２０１４－５０１２４９号公報、特開２０１３－２５６５１５号公報、特開２０１４－１８５１７３号公報、特表２０１０－５３５７１５号公報、特開２０１５－０３８０５９号公報、特開２０１５－１１０６５９号公報、特表２００６－５２１１２１号公報、特表２００９－５４２７２７号公報、特開２０１４－２２４１１７号公報、特開２０１５－０６１８６２号公報、特表２００２－５１１０９４号公報、特表２００４－５０７４５４号公報、特表２０１０－５０５７６４号公報、特表２０１１－５１４９０１号公報、特開２０１３－０６４００３号公報、特開２０１５－１３１７９５号公報等に記載された事項を参照することができる。

以下の実施例にて本発明を具体的に説明するが、本発明は実施例によって限定されるものではない。

＜比較例１＞
以下に示す比較例１及び実施例１では、核型安定性の高い接着性幹細胞を含む細胞集団を取得するための指標を検討した。
（工程１－１：羊膜の採取）
インフォームドコンセントを得た待機的帝王切開症例の妊婦から、胎児付属物である卵膜及び胎盤を無菌的に採取した。得られた卵膜及び胎盤を生理食塩水が入った滅菌バットに収容し、卵膜の断端から羊膜を用手的に剥離した。羊膜をハンクス平衡塩溶液（Ｃａ・Ｍｇ不含有）にて洗浄し、付着した血液及び血餅を除去した。

（工程１－２：羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収）
上皮細胞層と接着性幹細胞層とを含む羊膜を２４０ＰＵ／ｍＬコラゲナーゼ及び２００ＰＵ／ｍＬディスパーゼＩを含有するハンクス平衡塩溶液（Ｃａ・Ｍｇ含有）に浸し、３７℃にて９０分間、５０ｒｐｍの条件にて振盪攪拌することにより羊膜を酵素処理した。酵素処理後の溶液を目開き９５μｍのナイロンメッシュでろ過することにより羊膜の未消化物を取り除き、羊膜接着性幹細胞を含む細胞懸濁液を回収した。

（工程１－３：羊膜接着性幹細胞の培養）
上述の「羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収」で得られた、羊膜接着性幹細胞を含む細胞集団を６，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で培養容器のＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）（コーニング社製）に播種し、終濃度にして１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）及び１０ｎｇ／ｍＬの塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含むαＭＥＭ（Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ）にてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて０継代目の細胞を剥離し、１／５量の細胞を先の培養と同じスケールのＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種することにより、継代培養を行った。培地交換は２～４日に１回の頻度で実施した。サブコンフルエントに達した時点でＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて１継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が２×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるようＲＰＭＩ１６４０を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で１日凍結保存した。その後、解凍して約１５，０００～１８，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で２継代目の細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）及び１０ｎｇ／ｍＬの塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含むαＭＥＭ（Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ）にてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて２継代目の細胞を剥離し、１／５量の細胞を先の培養と同じスケールのＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種することにより、継代培養を行った。培地交換は２～４日に１回の頻度で実施した。サブコンフルエントに達した時点でＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて３継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が４×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるようＲＰＭＩ１６４０を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で１日凍結保存した。その後、解凍して約６，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で４継代目の細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）及び１０ｎｇ／ｍＬの塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含むαＭＥＭ（Ａｌｐｈａ Ｍｏｄｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｏｆ Ｍｉｎｉｍｕｍ Ｅｓｓｅｎｔｉａｌ Ｍｅｄｉｕｍ Ｅａｇｌｅ）にてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて４継代目の細胞を剥離し、１／５量の細胞を先の培養と同じスケールのＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種することにより、継代培養を行った。培地交換は２～４日に１回の頻度で実施した。サブコンフルエントに達した時点でＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて５継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が４×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるようＲＰＭＩ１６４０を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で凍結保存した。

（工程１－４：羊膜接着性幹細胞の抗原解析）
上記の培養方法で培養した５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、フローサイトメーターを用いて各種表面抗原（ＭＳＣマーカーとして知られているＣＤ７３の陽性率、ＣＤ９０の陽性率、ＣＤ１０５の陽性率、ＣＤ１６６の陽性率、ＣＤ４５の陰性率、ＣＤ３４の陰性率、ＣＤ３２６の陰性率）を解析した。その結果、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５の陽性率はいずれも９０％以上であった（具体的にはＣＤ７３：１００％、ＣＤ９０：９７％、ＣＤ１０５：１００％）、ＣＤ１６６の陽性率はいずれも３０％以上であった（具体的にはＣＤ１６６：９８％）。ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ３２６の陰性率はいずれも９５％以上であった（具体的にはＣＤ４５：１００％、ＣＤ３４：１００％、ＣＤ３２６：１００％）。以上の結果から、上記の培養方法で培養した細胞が接着性幹細胞であることが確認された。
また、上記の培養方法で培養した３、５継代目の羊膜接着性幹細胞に関して固定及び膜透過処理を行い、フローサイトメーターを用いてＫＣＮＡＢ１抗原に対して陽性となる細胞の比率を解析した。その結果、いずれの継代数においても８５％未満であった（３継代目：７８％、５継代目：８１％）。

なお、本測定では、アイソタイプコントロール用抗体として、ＦＩＴＣ Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ１, κ Ｉｓｏｔｙｐｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ（ＢＤ社／型番：５５０６１６）、ＰＥ Ｍｏｕｓｅ ＩｇＧ１, κ Ｉｓｏｔｙｐｅ Ｃｏｎｔｒｏｌ（ＢＤ社／型番：５５５７４９）を使用し、ＣＤ７３抗原に対する抗体としてＦＩＴＣ Ｍｏｕｓｅ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＣＤ７３（ＢＤ社／型番：５６１２５４）を、ＣＤ９０抗原に対する抗体としてＦＩＴＣ Ｍｏｕｓｅ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＣＤ９０（ＢＤ社／型番：５５５５９５）を、ＣＤ１０５抗原に対する抗体としてＡｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ＦＩＴＣ Ｃｏｎｊｕｇａｔｅ（ＢｉｏＬｅｇｅｎｄ社／型番：３２３２０３）を、ＣＤ１６６抗原に対する抗体としてＰＥ Ｍｏｕｓｅ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＣＤ１６６（ＢＤ社／型番：５５９２６３）を、ＣＤ４５抗原に対する抗体としてＦＩＴＣ Ｍｏｕｓｅ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＣＤ４５（ＢＤ社／型番：５５５４８２）を、ＣＤ３４抗原に対する抗体としてＰＥ Ｍｏｕｓｅ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＣＤ３４（ＢＤ社／型番：５５５８２２）を、ＣＤ３２６抗原に対する抗体としてＦＩＴＣ Ｍｏｕｓｅ Ａｎｔｉ－Ｈｕｍａｎ ＥｐＣＡＭ（ＢＤ社／型番：３４７１９７）を、ＫＣＮＡＢ１抗原に対する抗体として、Ｋｃｎａｂ１ ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ ａｎｔｉｂｏｄｙ（ＦＩＴＣ）（Ａｂｎｏｖａ社／型番：ＭＡＢ１１８６６）を使用した。表面抗原解析、及び抗原解析は、ベクトン・ディッキンソン（ＢＤ）社のＢＤ Ａｃｃｕｒｉ^ＴＭ Ｃ６ Ｆｌｏｗ Ｃｙｔｏｍｅｔｅｒを用い、測定条件は解析細胞数：５，０００ｃｅｌｌｓ、流速設定：Ｓｌｏｗ（１４μＬ／ｍｉｎ）とした。また、各抗原に対する陽性細胞の比率は、以下の手順で算出した。
（１）測定結果を、縦軸に側方散乱光（ＳＳＣ）、横軸をＦＳＣ（前方散乱光）としたドットプロットで展開した。
（２）ドットプロット展開図において、アイソタイプコントロール用抗体で測定した総細胞のうち、より蛍光強度が強い細胞集団が０．５％以下となる全ての領域（ゲート）を選択した。
（３）抗原マーカーに対応する抗体で測定した総細胞のうち、（２）で選択したゲート内に含まれる細胞の割合を算出した。

（工程１－５：羊膜接着性幹細胞の遺伝子発現解析）
上記の培養方法で培養した５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、マイクロアレイによる遺伝子（ＫＣＮＡＢ１遺伝子、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子、ＭＮ１遺伝子、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子）発現解析を株式会社理研ジェネシスに委託した。
以下の手順（１）～（４）によりマイクロアレイ解析を実施した。なお、以下の手順（２）～（４）は、株式会社理研ジェネシスが実施した。
（１）凍結保存した細胞集団を解凍し、遠心分離により回収した。回収した細胞集団をリン酸バッファー（ＰＢＳ）にて洗浄し、遠心分離により細胞を回収した。その後、ＲＮｅａｓｙ Ｐｌｕｓ Ｍｉｎｉキット（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いてトータルＲＮＡを抽出、精製した。
（２）１００ｎｇのトータルＲＮＡから逆転写反応によりｃＤＮＡを合成し、ｃＤＮＡからｉｎ ｖｉｔｒｏ ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎによりｃＲＮＡに転写してビオチン標識を行った（３’ＩＶＴ ＰＬＵＳ Ｒｅａｇｅｎｔ Ｋｉｔを使用）。
（３）１０．０μｇの標識ｃＲＮＡをハイブリダイゼーションバッファーに加え、Ｈｕｍａｎ ＧｅｎｅＧｅｎｏｍｅ Ｕ１３３Ａ ２．０ Ａｒｒａｙ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）上で１６時間のハイブリダイゼーションを行った。ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｆｌｕｉｄｉｃｓ Ｓｔａｔｉｏｎ ４５０（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）にて洗浄、フィコエリスリン染色後、ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｓｃａｎｎｅｒ ３０００ ７Ｇ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）にてスキャンを行い、ＡＧＣＣ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ ＧｅｎｅＣｈｉｐ Ｃｏｍｍａｎｄ Ｃｏｎｓｏｌｅ Ｓｏｆｔｗａｒｅ）（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）にて画像解析し、Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ｃｏｎｓｏｌｅ（Ａｆｆｙｍｅｔｒｉｘ社製）を用いて数値化した。
（４）数値データファイルを、解析ソフトＧｅｎｅＳｐｒｉｎｇ ＧＸ（アジレント・テクノロジー社製）を用いて解析した。
各遺伝子の発現レベルを、ＳＤＨＡ遺伝子の発現レベルに対する相対発現量として求めた。その結果、ＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．０３、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．０５、ＭＮ１遺伝子：０．６９、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．４１であった。

（工程１－６：羊膜接着性幹細胞の核型解析）
上記の培養方法で培養した３、５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、Ｇバンド法による核型解析を株式会社日本遺伝子研究所に委託した。３、５継代目に凍結した細胞を解凍し、約８，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度でＴ２５フラスコ各２枚に播種し、終濃度にして１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）及び１０ｎｇ／ｍＬの塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含むαＭＥＭを５ｍＬ添加し、２４時間培養した。その後、Ｔ２５フラスコを終濃度にして１０％のウシ胎児血清（ＦＢＳ）及び１０ｎｇ／ｍＬの塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含むαＭＥＭで満たし、室温で株式会社日本遺伝子研究所（宮城県仙台市）に輸送した。株式会社日本遺伝子研究所において任意の２０個の細胞を回収し、そこから染色体を取り出し、分染法で検出される染色体に特徴的なバンドパターンをもとに各染色体を同定し、異数性や転座などの核型異常の有無を解析した。その結果、３、５継代目のいずれの細胞においても核型異常が認められた。具体的には、３継代目においては、２０個中１個の細胞で核型異常が認められ、２番染色体長腕の同腕染色体が増加（＋ｉ（２）（ｑ１０））していた。５継代目においては、２０個中５個の細胞で核型異常が認められ、５個の全てにおいて２番染色体のトリソミーが認められた。

＜実施例１＞
（工程２－１：羊膜の採取）
比較例１と同じ手法にて羊膜を取得した。

（工程２－２：羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収）
比較例１と同じ手法にて羊膜接着性幹細胞を含む細胞集団を取得した。

（工程２－３：羊膜接着性幹細胞の培養）
上述の「羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収」で得られた、羊膜接着性幹細胞を含む細胞集団を６，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度でＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）及を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて０継代目の細胞を剥離し、１／５量の細胞を先の培養と同じスケールのＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種することにより、継代培養を行った。培地交換は２～４日に１回の頻度で実施した。サブコンフルエントに達した時点でＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて１継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が２×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるようＲＰＭＩ１６４０を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で１日凍結保存した。その後、解凍して約１５，０００～１８，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で２継代目の細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて２継代目の細胞を剥離し、１／５量の細胞を先の培養と同じスケールのＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種することにより、継代培養を行った。培地交換は２～４日に１回の頻度で実施した。サブコンフルエントに達した時点でＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて３継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が４×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるようＲＰＭＩ１６４０を添加した。これに等量のＣＰ－１溶液（登録商標）（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で１日凍結保存した。その後、解凍して約６，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で４継代目の細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて４継代目の細胞を剥離し、１／５量の細胞を先の培養と同じスケールのＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種することにより、継代培養を行った。培地交換は２～４日に１回の頻度で実施した。サブコンフルエントに達した時点でＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて５継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が４×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるようＲＰＭＩ１６４０を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で凍結保存した。６継代目以降は全て約６，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて剥離し、継代培養を９継代目まで繰り返した。

（工程２－４：羊膜接着性幹細胞の抗原解析）
上記の培養方法で培養した５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、フローサイトメーターを用いて各種表面抗原（ＣＤ７３の陽性率、ＣＤ９０の陽性率、ＣＤ１０５の陽性率、ＣＤ１６６の陽性率、ＣＤ４５の陰性率、ＣＤ３４の陰性率、ＣＤ３２６の陰性率）を解析した。その結果、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５の陽性率はいずれも５０％以上であった（具体的にはＣＤ７３：９９％、ＣＤ９０：１００％、ＣＤ１０５：１００％）。ＣＤ１６６の陽性率はいずれも３０％以上であった（具体的にはＣＤ１６６：１００％）。ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ３２６の陰性率はいずれも９５％以上であった（具体的にはＣＤ４５：１００％、ＣＤ３４：１００％、ＣＤ３２６：１００％）。以上の結果から、上記の培養方法で培養した細胞が接着性幹細胞であることが確認された。
また、上記の培養方法で培養した３、５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、フローサイトメーターを用いてＫＣＮＡＢ１抗原に対して陽性となる細胞の比率を解析した。その結果、いずれの継代数においても８５％以上であった（３継代目：９１％、５継代目：９０％）。よって、実施例１の５継代目の羊膜接着性幹細胞は、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上である、という条件を満たすことがわかった。
なお、本測定の方法、試薬は比較例１と同じである。

（工程２－５：羊膜接着性幹細胞の遺伝子発現解析）
上記の培養方法で培養した５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、マイクロアレイによる遺伝子（ＫＣＮＡＢ１遺伝子、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子、ＭＮ１遺伝子、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子）発現解析を株式会社理研ジェネシスに委託した。
比較例１と同様にしてマイクロアレイ解析を実施した。各遺伝子の発現レベルを、ＳＤＨＡ遺伝子の発現レベルに対する相対発現量として求めた。その結果、ＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．４４、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．６８、ＭＮ１遺伝子：１．７７、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００３であった。

（工程２－６：羊膜接着性幹細胞の核型解析）
上記の培養方法で培養した３、５継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、Ｇバンド法による核型解析を株式会社日本遺伝子研究所に委託した。３、５継代目に凍結した細胞を解凍し、約８，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度でＴ２５フラスコ各２枚に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭを５ｍＬ添加し、２４時間培養した。その後、Ｔ２５フラスコを終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭで満たし、室温で株式会社日本遺伝子研究所（宮城県仙台市）に輸送した。株式会社日本遺伝子研究所において任意の２０個の細胞を回収し、そこから染色体を取り出し、分染法で検出される染色体に特徴的なバンドパターンをもとに各染色体を同定し、異数性や転座などの核型異常の有無を解析した。その結果、３、５継代目の全ての細胞が正常核型を維持していた。

表１に比較例１及び実施例１におけるＫＣＮＡＢ１の陽性率と核型解析の結果についてまとめる。

以上の結果より、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上である細胞集団は、正常核型を維持していることが分かった。また、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を取得するための指標として、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であるという条件が有効であることが示唆された。つまり、本発明によれば、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であるという条件を指標とすることによって、正常核型を維持している接着性幹細胞を含む細胞集団を取得することができる。これにより、臨床使用に適した安全な細胞製剤を製造することができる。

また、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であるという条件を指標とすれば、通常１ヶ月程度の評価期間を要する核型解析を行わずして、生体試料の核型安定性を評価（判断及び／又は予測）することができる。
さらに本発明によれば、接着性幹細胞を含む細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であることを指標とすることで、生体試料の核型安定性（接着性幹細胞の核型異常の有無）の経時的モニタリングについても簡便かつ短時間で実施することができる。これにより、生体試料の品質評価に必要なコストの低下と品質評価に必要となる期間の短縮が可能となり、細胞製剤の製造コスト削減につなげることができる。

＜実施例２＞
比較例１及び実施例１におけるドナーとは異なるドナー２名（＃１、＃２）のインフォームドコンセントを得た待機的帝王切開症例の妊婦から、胎児付属物である卵膜及び胎盤を無菌的に採取し、それぞれの胎児付属物を「工程１－１：羊膜の採取」、「工程１－２：羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収」に沿って処理し、羊膜接着性幹細胞を取得した。
＃１、＃２のドナーから取得した羊膜接着性幹細胞を含む細胞集団を「実施例１：羊膜接着性幹細胞の培養」の方法で培養し、５継代目の細胞集団を取得した。

上記の培養方法で培養する羊膜接着性幹細胞に関しては、「工程１－４：羊膜接着性幹細胞の抗原解析」と同様にして、フローサイトメーターを用いてＫＣＮＡＢ１に対して陽性となる細胞の比率を解析することができる。ＫＣＮＡＢ１の陽性率は＃１が８５％以上（具体的には、＃１：９４％）、＃２が８５％未満であった（具体的には、４９％）。また、上記の培養方法で培養した羊膜接着性幹細胞に関して、「工程１－６：羊膜接着性幹細胞の核型解析」と同様にして核型を解析することができる。核型解析の結果、＃１は全ての細胞が正常核型を維持していたが、＃２は核型異常が認められた（具体的には、２０個中１個の細胞で核型異常が認められ、１３番染色体の構造異常（add(13)(p11.2)））であった。
表２に実施例２におけるＫＣＮＡＢ１の陽性率と核型解析の結果についてまとめる。

＜実施例３＞
以下に示す実施例３では、比較例１、実施例１、実施例２と比較してドナーや酵素処理条件、培養条件が異なる羊膜接着性幹細胞を取得した。
比較例１、実施例１、及び実施例２におけるドナーとは異なるドナー３名（＃３～＃５）のインフォームドコンセントを得た待機的帝王切開症例の妊婦から、胎児付属物である卵膜及び胎盤を無菌的に採取した。

（工程３－１：羊膜の採取）
比較例１と同じ手法にて羊膜を取得した。

（工程３－２：羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収）
上皮細胞層と接着性幹細胞層とを含む羊膜を４８０ＰＵ／ｍＬコラゲナーゼ及び４００ＰＵ／ｍＬディスパーゼＩを含有するハンクス平衡塩溶液（Ｃａ・Ｍｇ含有）に浸し、３７℃にて９０分間、５０ｒｐｍの条件にて振盪攪拌することにより羊膜を酵素処理した。酵素処理後の溶液を目開き９５μｍのナイロンメッシュでろ過することにより羊膜の未消化物を取り除き、羊膜接着性幹細胞を含む細胞懸濁液を回収した。

（工程３－３：羊膜接着性幹細胞の培養）
上述の「羊膜の酵素処理及び羊膜接着性幹細胞の回収」で得られた、羊膜接着性幹細胞を含む細胞集団を１，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度でＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）及を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで接着培養した。培地交換は３～５日に１回の頻度で実施した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて０継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が２×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるよう生理食塩液を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で１日凍結保存した。その後、解凍して約１，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で１継代目の細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで５日間接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて１継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が２×１０^７ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるよう生理食塩液を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で１日凍結保存した。その後、解凍して約１，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度で２継代目の細胞をＣｅｌｌＳＴＡＣＫ（登録商標）に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭにてサブコンフルエントになるまで５日間接着培養した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて２継代目の細胞を剥離し、細胞濃度が４×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるよう生理食塩液を添加した。これに等量のＣＰ－１溶液（登録商標）（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で凍結保存した。

（工程３－４：羊膜接着性幹細胞の抗原解析）
上記の培養方法で培養した２継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、フローサイトメーターを用いて各種表面抗原（ＣＤ７３の陽性率、ＣＤ９０の陽性率、ＣＤ１０５の陽性率、ＣＤ１６６の陽性率、ＣＤ４５の陰性率、ＣＤ３４の陰性率、ＣＤ３２６の陰性率）を解析した。その結果、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５の陽性率はいずれも５０％以上であった（具体的には＃３～＃５ともに全て１００％）。ＣＤ１６６の陽性率はいずれも３０％以上であった（具体的には＃３：９９％、＃４：１００％、＃５：９９％）。ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ３２６の陰性率はいずれも９５％以上であった（具体的には＃３：９９％、＃４：１００％、＃５：１００％）。以上の結果から、上記の培養方法で培養した細胞が接着性幹細胞であることを確認した。
また、上記の培養方法で培養した２継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、フローサイトメーターを用いてＫＣＮＡＢ１抗原に対して陽性となる細胞の比率を解析した。その結果、いずれのドナーにおいても８５％以上であった（＃３：９８．２％、＃４：９９．９％、＃５：９９．７％）。よって、実施例３の２継代目の羊膜接着性幹細胞は、＃３～＃５の全てのドナーについて、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上である、という条件を満たすことがわかった。なお、本測定の方法、試薬は比較例１と同じである。

（工程３－５：羊膜接着性幹細胞の遺伝子発現解析）
上記の培養方法で培養した２継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、マイクロアレイによる遺伝子（ＫＣＮＡＢ１遺伝子、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子、ＭＮ１遺伝子、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子）発現解析を株式会社理研ジェネシスに委託した。
比較例１と同様にしてマイクロアレイ解析を実施した。各遺伝子の発現レベルを、ＳＤＨＡ遺伝子の発現レベルに対する相対発現量として求めた。その結果、＃３はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．１５、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．３６、ＭＮ１遺伝子：０．８１、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．０１であった。＃４はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．０７、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．１６、ＭＮ１遺伝子：０．７５、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００１であった。＃５はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．１１、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．２７、ＭＮ１遺伝子：１．３８、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００１であった。

さらに、上記の培養方法で培養した２継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、定量ＰＣＲによる遺伝子（ＫＣＮＡＢ１遺伝子、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子、ＭＮ１遺伝子、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子）発現解析を行った。以下の手順（１）～（４）により定量ＰＣＲによる遺伝子発現解析を実施した。
（１）凍結保存した細胞集団を解凍し、遠心分離により回収した。回収した細胞集団をリン酸バッファー（ＰＢＳ）にて洗浄し、遠心分離により細胞を回収した。その後、ＲＮｅａｓｙ Ｐｌｕｓ Ｍｉｎｉキット（ＱＩＡＧＥＮ社製）を用いてトータルＲＮＡを抽出、精製した。
（２）精製したトータルＲＮＡにＲｅｖｅｒＴｒａ Ａｃｅ ｑＰＣＲ ＲＴ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（東洋紡社製）を添加し、トータルＲＮＡを鋳型として用いて逆転写反応によりｃＤＮＡを合成した。
（３）合成したｃＤＮＡとＴａｑｍａｎ Ｆａｓｔ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｍａｓｔｅｒ Ｍｉｘ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）、及びプライマー（Ｔａｑｍａｎ Ｇｅｎｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ Ａｓｓａｙ、Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ社製、ＳＤＨＡのプライマーのＡｓｓａｙ ＩＤ：Ｈｓ００１８８１６６＿ｍ１、ＫＣＮＡＢ１のプライマーのＡｓｓａｙ ＩＤ：Ｈｓ００１８５７６４＿ｍ１、ＳＵＬＴ１Ｅ１のプライマーのＡｓｓａｙ ＩＤ：Ｈｓ００９６０９３８＿ｍ１、ＭＮ１のプライマーのＡｓｓａｙ ＩＤ：Ｈｓ００１５９２０２＿ｍ１、ＲＡＲＲＥＳ２のプライマーのＡｓｓａｙ ＩＤ：Ｈｓ００４１４６１５＿ｍ１）を混合して９６穴プレートに注入し、定量ＰＣＲを行った。
（４）各サンプルのＳＤＨＡに対するΔＣｔ値をＳｔｅｐＯｎｅＰｌｕｓ Ｒｅａｌ－Ｔｉｍｅ ＰＣＲ Ｓｙｓｔｅｍ（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｂｉｏｓｙｓｔｅｍｓ社製）にて解析し、各細胞におけるＳＤＨＡ遺伝子の発現量に対する各遺伝子の相対発現量（２＾（－ΔＣｔ））を算出した。その結果、＃３はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．７７、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．３７、ＭＮ１遺伝子：１．１、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００２６であった。＃４はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．７２、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．１３、ＭＮ１遺伝子：１．８、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００２９であった。＃５はＫＣＮＡＢ１遺伝子：４．４、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：０．５０、ＭＮ１遺伝子：５．９、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００３３であった。

（工程３－６：羊膜接着性幹細胞の核型解析）
上記の培養方法で培養した２継代目の羊膜接着性幹細胞に関し、Ｇバンド法による核型解析を株式会社日本遺伝子研究所に委託した。２継代目に凍結した細胞を解凍し、約８，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度でＴ２５フラスコ各２枚に播種し、終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭを５ｍＬ添加し、２４時間培養した。その後、Ｔ２５フラスコを終濃度にして５％のヒト血小板溶解物（ｈＰＬ）を含むαＭＥＭで満たし、室温で株式会社日本遺伝子研究所（宮城県仙台市）に輸送した。株式会社日本遺伝子研究所において任意の２０個の細胞を回収し、そこから染色体を取り出し、分染法で検出される染色体に特徴的なバンドパターンをもとに各染色体を同定し、異数性や転座などの核型異常の有無を解析した。その結果、２継代目の全ての細胞が正常核型を維持していた。

以上の結果から、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上である細胞集団は、正常核型を維持していることがわかった。また、羊膜から異なる方法で羊膜接着性幹細胞を採取・培養しても、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であることを調べれば、ドナー自体及びドナーから採取した生体試料の品質を評価することができることが示唆された。つまり、本発明によれば、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であることを指標とすることによって、核型異常のない羊膜接着性幹細胞の含有量が高い生体試料を選定（ドナースクリーニング）することができる。さらに、ＫＣＮＡＢ１の陽性率が８５％以上であることを指標とすることによって、酵素処理条件、培養条件を最適化（酵素処理条件・培養条件の改良）することができる。これにより、品質評価の期間を短縮することができ、酵素処理条件や培養条件といった製造方法の改良に要する期間を削減することが可能となる。

＜実施例４＞
上記の実施例１で得られた羊膜接着性幹細胞の一部を医薬組成物の調製に供する。羊膜接着性幹細胞２．０×１０^８個、６．８ｍＬのＣＰ－１溶液（登録商標）、３．２ｍＬの２５％ヒト血清アルブミン溶液、及び１０ｍＬのＲＰＭＩ１６４０培地を含有する医薬組成物（細胞製剤）を調製する。当該医薬組成物を凍結用バッグに封入し、凍結状態で保存する。尚、使用時に医薬組成物を解凍し、患者に供することができる。

＜参考例＞
（工程４－１：骨髄由来間葉系幹細胞の培養）
ヒト骨髄由来間葉系幹細胞（ｈＭＳＣ間葉系幹細胞、Ｌｏｎｚａ社製）３ドナー分（＃６～＃８）を購入し、それぞれ解凍して６，０００ｃｅｌｌｓ/ｃｍ^２の密度でφ１５ｃｍのディッシュに播種し、Ｌｏｎｚａ社製の専用培地でサブコンフルエントになるまで接着培養した。培地交換は３～５日に１回の頻度で実施した。その後、ＴｒｙｐＬＥ Ｓｅｌｅｃｔを用いて細胞を剥離し、細胞濃度が２×１０^６ｃｅｌｌｓ／ｍＬになるよう生理食塩液を添加した。これに等量のＣＰ－１（登録商標）溶液（ＣＰ－１（登録商標）：２５％ヒト血清アルブミン＝３４：１６の比で混合した溶液）を加え、１ｍＬずつクライオバイアルに移して－８０℃まで緩慢凍結し、その後液体窒素下で凍結保存した。

（工程４－２：骨髄由来間葉系幹細胞の抗原解析）
上記の培養方法で培養した骨髄由来間葉系幹細胞に関し、フローサイトメーターを用いて各種表面抗原（ＣＤ７３の陽性率、ＣＤ９０の陽性率、ＣＤ１０５の陽性率、ＣＤ１６６の陽性率、ＣＤ４５の陰性率、ＣＤ３４の陰性率、ＣＤ３２６の陰性率）を解析した。その結果、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５の陽性率はいずれも５０％以上であった。ＣＤ１６６の陽性率はいずれも３０％以上であった。ＣＤ４５、ＣＤ３４、ＣＤ３２６はいずれも５％未満であった。
また、フローサイトメーターを用いてＫＣＮＡＢ１抗原に対して陽性となる細胞の比率を解析した。その結果、いずれのドナーにおいても８５％未満であった（＃６：６６％、＃７：７１％、＃８：５７％）。なお、本測定の方法、試薬は比較例１と同じである。

（工程４－３：骨髄由来間葉系幹細胞の遺伝子発現解析）
上記の培養方法で培養した骨髄由来間葉系幹細胞に関し、定量ＰＣＲによる遺伝子（ＫＣＮＡＢ１遺伝子、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子、ＭＮ１遺伝子、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子）発現解析を行った。その結果、＃６はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．００１５、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：発現量が低すぎるので検出不可、ＭＮ１遺伝子：０．５４、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００２６であった。＃７はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．００２０、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：発現量が低すぎるので検出不可、ＭＮ１遺伝子：０．９０、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００２９であった。＃８はＫＣＮＡＢ１遺伝子：０．００３３、ＳＵＬＴ１Ｅ１遺伝子：発現量が低すぎるので検出不可、ＭＮ１遺伝子：０．５２、ＲＡＲＲＥＳ２遺伝子：０．００３３であった。なお、本測定の方法、試薬は実施例３と同じである。
表３に実施例３及び参考例における定量ＰＣＲ遺伝子発現解析の結果についてまとめる。

Claims (5)

1. 羊膜由来幹細胞を含む細胞集団の製造方法であって、
   ａ）ドナーから採取した羊膜を酵素処理して、接着性幹細胞を含む細胞集団を取得すること；
   ｂ）前記細胞集団を培養すること；及び
   ｃ）前記細胞集団において、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上である細胞集団を取得することを含み、
   前記ｃ）が、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として、条件を満たす細胞集団を選抜することを含む、
   方法。
2. 前記ｂ）の培養が、ヒト血小板溶解物を含む培地を使用することを含む、請求項１に記載の方法。
3. 接着性幹細胞を含む細胞集団において、
   ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として接着性幹細胞の核型異常をモニタリングする方法。
4. ドナーから接着性幹細胞を含む細胞集団を採取し、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として評価する、ドナー及び／又はドナーから採取した生体試料の評価方法。
5. ドナーから採取した生体試料を酵素処理して得られた細胞集団に対して、ＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率を測定し、前記細胞集団におけるＫＣＮＡＢ１が陽性を呈する接着性幹細胞の比率が８５％以上であることを指標として評価する、前記生体試料の最適な酵素処理条件を判断及び／又は予測する方法。