JP7398840B2 - Ampk抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物 - Google Patents
Ampk抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物 Download PDFInfo
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Description
本願は、中小ベンチャー企業部の支援を受け、TIPSスタートアップ支援プラン事業(サブジェクト名:亜鉛の恒常性を制御することを標的とした化合物を用いる多発性硬化症のポスト新薬の開発に関する研究、サブジェクト番号:S3136303)として、韓国のSMEのための情報処理推進機構の管理下で、本出願人によって出願された。
発明の分野
本発明は多発性硬化症治療用の薬学的組成物に関し、より詳しくは、AMPK抑制機能と亜鉛恒常性調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物に関する。
本発明は前記のような問題点を含む様々な問題点を解決するためのものであって、副作用のない神経保護効果によって多発性硬化症を効果的に治療するAMPK抑制機能と、亜鉛恒常性の調節機能に基づく多発性硬化症治療用の薬学的組成物を提供することを目的とする。しかし、このような課題は例示的なものであって、これによって本発明の範囲は制限されない。
本発明の他の一観点によると、治療的に有効な量の下記化学式1の構造を有する化合物を多発性硬化症にかかった個体に投与するステップを含む前記個体の多発性硬化症の治療方法が提供される:
本文書で使用される「AMPK(AMP-activated protein kinase)」は、触媒αサブユニット(α1またはα2)、及び2つの調節サブユニット(β及びγ)からなる異形三量体タンパク質(heterologous trimer protein)である。AMPKは、細胞エネルギーレベルが低ければリン酸化されて活性化され、更に細胞代謝作用を調節して遺伝子発現を長期間にわたって調節してATPのレベルを回復する。AMP/ATP比の増加、細胞pH及び酸化還元状態の変化、及びクレアチン/ホスホクレアチン比の増加がAMPKを活性化すると公知されている。
本発明の一観点によると、下記化学式1の構造を有する化合物を有効成分として含有する、多発性硬化症または脳脊髄炎治療用の薬学的組成物が提供される:
公示の材料
本発明で使用した実験動物は、DBL Co., Ltd.から供給された8週齢のC57BL/6系統の雌マウスである。このようなマウスは温度と湿度が調節される環境で飼育されており、飼料と水は自由に供給した。
本発明で使用したマウス大脳皮質神経細胞は、マウス胚の脳から抽出培養して5%ウシ胎児血清(FBS)と5%ウマ血清(HS)を添加したDulbecco’s modified Eagle’s medium(DMEM,Gibco,Grand Island,NY,US)を利用し、95%湿度、5%CO2、及び37℃温度条件で培養した。前記細胞の活性化と分化のために24-wellの組織培養プレートで2×104細胞の密度で増殖しており、亜鉛及び化合物を処理する前にはFBSとHSのないMEM培地で培養した。
本発明者らは、C57BL/6雌マウスにMyelin oligodendrocyte glycoprotein 35-55(MOG35-55)ペプチド抗原を皮下注射して、多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎(experimental autoimmune encephalomyelitis,EAE)を誘導した(図1a)。そのために、まずMOG35-55(Ana spec,USA)とComplete freund’s adjuvant(CFA)を用意し、MOG35-55(2mg/ml)はPhosphate buffered saline(1×PBS,Sigma)を入れて溶かした後、前記CFAは25ml Incomplete freund’s adjuvant(IFA.Sigma)を50ml conical tubeに入れた。次に、フードでMycobacterium tuberculosis H37Ra(100mg;Difco,USA)アンプルを用心に割って加えた後、ボルテックスして冷蔵保管した。次に、マウスの両脇にMOG35-55及びMycobacterium tuberculosis H37Raを含有するCFAを同じ量で混合し注射した。そして、Pertussis toxin(4μg/ml,List Biological Laboratories,USA)を免疫当日と免疫後2日目に腹腔に注射した。前記免疫後、毎日マウスの体重と臨床症状を測定しており、EAEの進行程度は特定の臨床症状を基準に評価した。それに関する詳細な内容は以下に記載されている。
本発明で使用したEAEの臨床的症状評価は、先行研究(Jones et al. J Neuroimmunol.Aug 13;199(1-2):83-93.2008)に基づいて評価した。詳しくは、EAEの臨床的症状評価のために、マウスの動作は下記基準によって毎日評価された。score 0、症状なし;score 0.5、尻尾が部分的に麻痺する、または歩きが若干異常になる;score 1.0、尻尾が完全に麻痺する、または尻尾が部分的に麻痺する、並びに後足が若干弱くなる;score 1.5、尻尾が完全に麻痺する、並びに後足が若干弱くなる;score 2.0、尻尾が麻痺する、並びに後足が普通に弱くなる(ケージの上で歩くときに足がよくはまり込むことで証明する);score 2.5、後足に重さは感じられないが若干の動きがある;score 3.0、後足が完全に麻痺する;score 3.5、後足が麻痺する、並びに前足が若干弱くなる;score 4.0、四肢が完全に麻痺したが頭は動く;score 4.5、瀕死状態、score 5.0、死亡。
本発明らは、EAE誘導後21日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、4%パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、脊髄における単核細胞(mononuclear cell)の浸潤をクレシルバイオレット染色によって観察した。そのために、まず脊髄をクリオスタットで厚さ30umで薄切りして切片を得た後、ゼラチンでコーティングされたスライドに載せ、30分間室温で乾燥させた。100%、70%エタノール溶液に順番にそれぞれ3分間浸した後、0.1%クレシルバイオレット溶液に15分間染色した。次に、過度に染色された部分を除去するために流水に水洗し、50%、70%、80%、90%、100%エタノール溶液にそれぞれ3-5分間脱水過程、キシレンに15分間2回ずつ透明化過程を経た後、封入し光学顕微鏡で観察した。
本発明者らは、EAEを誘導後21日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、4%パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、脊髄内の免疫細胞の浸潤を観察するためにT細胞のマーカーとして使用されるCD4、CD8、及びB細胞のマーカーとして使用されるCD20の抗体を使用して免疫組織化学法を行った。凍結切片は、内因性ペルオキシダーゼを除去するために3%過酸化水素に15分間常温で反応させた後、1次抗体であるrat anti-CD4(1:50,BD Bioscience,CA,USA),CD8(1:50,BD Bioscience),goat anti-CD20(1:50,SantaCruz Biotechnology,USA)を4℃冷蔵で15時間反応させた。次に、biotinylated anti-rat IgGまたはanti-goat IgG(1:250,Vector Laboratories,USA)を室温で2時間反応させた。次に、avidin-biotin peroxidase conjugate(ABC regent,Vector Laboratories)で2時間室温で反応させており、免疫反応が終わった組織は3,3’-ジアミノベンジジン(DAB,Vector Laboratories)溶液で発色させた。また、EAEによって発生する血液脳関門の損傷を測定するために、血清内の免疫グロブリンG(IgG)の漏出を確認した。前記IgGは血漿に最も豊富な免疫グロブリンであって、それに確認することが容易なため脊髄内のIgGの存在は血液脳関門の損傷及びタンパク質の血管外漏出を監視するのに使用される(Ruth and Feinerman,Acta Neuropathol.76(4):380-7.1988)。次に、凍結切片は室温で2時間biotinylated horse anti-mouse IgG(1:250,Vector Laboratories,USA)を反応させた後、前記と同じ方法でABC regentに反応させてから、DAB溶液で発色させた。各ステップの間はPBSで十分に洗浄し、エタノールとキシレンの脱水及び透明化過程を経た後、封入し光学顕微鏡で観察したが、マウス1匹当たり3~5個以上の視野でImage Jプログラム(National Institute of Health(NIH),USA)を利用して分析した。
本発明者らは、EAEを誘導後21日目の日にマウスをウレタンで麻酔した後、4%パラホルムアルデヒドを心臓に灌流して脊髄を固定し、前記脊髄を摘出した後、組織の脱髄現象及び微細グリア細胞/マクロファージの活性を検査するために、myelin basic protein(MBP)及びF4/80(Microglia/Macrophage)抗体で免疫蛍光染色を実施した。また、損傷した脊髄の白質部分に強く活性化された微細グリア細胞/マクロファージの表現型(phenotype)を分析するために、微細グリア細胞/マクロファージのマーカーとして使用されるIba-1(Ionized calcium binding adaptor molecule-1)及びCD68(Cluster of Differentiation 68)抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行った。併せて、脊髄内に浸潤するT細胞において、AMP-activated protein kinase(AMPK)の活性がこのような細胞の生存にいかなる影響を及ぼすのかを調べるためにCD8とphospho-AMPK抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行っており、Matrix metallopeptidase 9(MMP-9)の活性を比較分析するためにMMP-9の抗体を利用して免疫蛍光染色を実施した。脊髄内アストロサイトの活性を検査するためにglial fibrillary acidic protein(GFAP)抗体を利用して免疫蛍光染色を行っており、tumor necrosis factor(TNF) alpha、Interferon(IFN) gammaなどのサイトカインの発現を比較分析するためにTNF-αとIFN gamma抗体を利用して二重免疫蛍光染色を行った。上述した免疫組織化学法と同じ方法で、凍結切片は内因性ペルオキシダーゼを除去するために3%過酸化水素に15分間常温で反応させた後、1次抗体であるrat anti-MBP(1:200,Abcam,UK),F4/80(1:100,eBioscience,USA),goat anti-Iba1(1:500,Abcam),CD68(1:100,Bio-Rad Laboratories,USA),CD8(1:50,BD Bioscience),pAMPK(1:100,Abcam),MMP-9(1:100,Abcam)を4℃冷蔵で15時間反応させた。次に、それぞれの1次抗体のホストに合うAlexa Fluor 488-,594-,647-conjugated secondary antibodies (1:250,Invitrogen,USA)を室温で2時間反応させた。各ステップの間はPBSで十分に洗浄し、キシレンの透明化過程を経た後、DPXで封入し共焦点レーザー走査型顕微鏡(Confocal Laser Scanning Microscope,Carl Zeiss LSM710, Germany)で観察したが、マウス1匹当たり3~5個以上の視野でImage Jプログラム(National Institute of Health(NIH),USA)を利用して分析した。
本発明者らは、EAE誘導マウスの臨床的症状評価が終わった後、脊髄組織を亜鉛染色法であるN-(6メトキシ8キノリル)パラトルエンスルホンアミド(TSQ)組織化学法によって検査した。正常の脊髄において、亜鉛は灰白質(gray matter)の神経軸索の末端に存在し、白質では極少量のみ観察される。EAE誘導後21日目の日にマウスを5%イソフルランで麻酔した後、灌流せずに脊髄を摘出して、ドライアイスで急速冷却した。固定されていない凍結組織は-15℃クライオスタットで厚さ20μmで薄切りして切片を得た。凍結切片を直ちにゼラチンでコーティングされたスライドに載せ、30分間室温で乾燥させた後、TSQ溶液に60秒間浸した後、0.9%生理食塩水で60秒間洗浄する。TSQ蛍光度は360nm/490nmの波長を有するOLYMPUS IX70蛍光顕微鏡を使用して監察しており、INFINITY3-1 CCD冷却カラーデジタルカメラ(Lumenera Co.,Canada)とINFINITY分析ソフトウエアを使用して評価した。
本発明者らは、本発明の一実施例による1H10((Z)-5-((1H-インドール-3-イル)メチレン)-2-((3-ヒドロキシフェニル)アミノ)チアゾール-4(5H)-オン)の処理による亜鉛キレート化の可能性を検証するために、自由亜鉛に結合したら蛍光を示す物質であるFluoZin-3を培養されたラットの神経細胞に処理し、亜鉛(300μM)に15分間露出させ、前記亜鉛を除去した後、60分間神経細胞内の亜鉛濃度を測定した。または、試験管に20μMの亜鉛(ZnCl2)及び亜鉛と結合したら蛍光を示すNewPort Green DCF蛍光物質を加えた後、本発明の1H10を濃度別に処理し、亜鉛キレートであるクリオキノール(clioquinol)とカルシウムイオノフォアであるイオノマイシンを対照群として使用した。
本発明の一実施例によって多発性硬化症の動物モデルである自己免疫性脳脊髄炎を誘導した結果、マウスに深刻な行動障害が発生したが、本発明の1H10を投与した実験群では前記行動障害が著しく抑制されると示された(図1b及び図1c)。また、EAEマウスの臨床的症状を評価した結果、1H10を投与した実験群では臨床的症状だけでなく発病率も抑制されることが観察された(図1c)。
前記結果は、本発明の1H10がミエリン乏突起膠細胞(oligodendrocyte)糖タンパク質35-55(MOG35-55)-誘導されたEAEの臨床的症候及び疾病の進行を改善することを示唆している(図1d)。
本発明者らは、脊髄組織の脱髄現象及び微細グリア細胞/マクロファージの活性を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、正常組織の場合、緑色に染色されているはずの脊髄の白質がEAEマウス組織では緑色の染色が低下しており、微細グリア細胞/マクロファージの活性を示す赤色が強く示されていることを確認した(図2a)。前記MBPの減少は、神経の軸索を覆っているミエリンが損傷したことを意味する(図2b)。しかし、1H10を持続的に投与した動物の脊髄では前記EAE-誘導脱髄及び微細グリア細胞/マクロファージの活性が著しく減少すると示された(図2c)。
本発明者らは、脊髄組織のアストロサイトの活性を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、EAEを誘導した実験群の脊髄白質(white matter)でアストロサイトの活性を示す緑色が強く分布されているのに対し、1H10を投与した実験群ではアストロサイトの活性が著しく抑制されていることを確認した(図17及び図18)。
本発明者らは、EAEマウス誘導後21日目の日に、前記マウスの脊髄における単核細胞の浸潤をクレシルバイオレット染色方法で観察した。
その結果、単核細胞がEAEを誘導した実験群の脊髄白質で単核細胞が多く分布されているのに対し、1H10を投与した実験群では単核細胞の浸潤が著しく抑制されていることを確認した(図3a及び図3b)。また、前記脊髄内に浸潤された単核細胞が免疫細胞であろうという仮説を確認するために、CD4、CD8、及びCD20抗体を使用して免疫組織化学法を行った結果、EAE誘導後、多くのCD4、CD8、及びCD20(+)細胞が脊髄白質の周辺に分布されているのに対し、1H10を投与した実験群では前記T、B細胞の浸潤が著しく抑制されていることを観察した(図3c及び図3e)。併せて、最近の報告によると、AMPK活性がT細胞の生存(survival)を増進すると知られており、AMPKの活性を観察した結果、EAE誘導後脊髄内に浸潤されたCD8(+)T細胞においてAMPKのリン酸化(phosphorylation)が増加されたが、1H10を投与した実験群では著しく減少されていることを確認した(図3f乃至図3h)。前記結果は、本発明の1H10によるAMPKの抑制が脊髄内に浸潤された自己反応性(autoreactive)T細胞の生存を減少させてEAEの症状を緩和するということを示唆している。
本発明者らは、EAEマウス誘導後21日目の日に前記マウスの脊髄におけるサイトカインのうちIFN gammaとTNF alphaの発現を免疫蛍光染色によって観察した。その結果、EAE誘導後1H10を投与した実験群はビークル群に比べ脊髄白質内にIFN gammaの発現は増加されたのに対し、TNF alphaの発現は減少されたことを観察した(図19及び20)。
本発明者らは、1H10の投与によるEAE-誘導脊髄白質内の亜鉛の異常な蓄積、血液脳関門(BBB)の損傷、及びMMP-9の活性を観察した。
その結果、正常組織の白質からはTSQ染色による信号が観察されなかったが、EAE-誘導後21日目の日にTSQ染色を行った結果、脊髄の白質部位で異常な「パッチ様」の蛍光が観察された。前記のような様相は正常動物やビークルを投与した動物の脊髄では観察されておらず、パッチのような模様のTSQ異常染色現象は1H10の投与によって著しく減少されることを確認した(図4a及び図4b)。また、EAE-誘導後MMP-9の活性が増加され、それによってBBBが損傷することでT細胞やB細胞、及びその他の免疫細胞が中枢神経系に浸透するようになるが、免疫細胞の浸透が中枢神経系の免疫系を撹乱することでミエリン鞘(myelin sheath)を破壊する恐れがあるという研究結果に基づいて、本発明者らはBBBの損傷を観察するために免疫グロブリンG(IgG)噴出の組織学的分析とMMP-9の活性度を測定した。その結果、ビークルを投与したマウスや1H10のみを投与したマウス(偽群)ではBBBBの損傷によるIgGの染色が白質や灰白質で発見されなかった。しかし、MOGを注入してから3週が過ぎたマウスではIgGの浸潤が白質や灰白質の両方で著しく増加しており、前記現象は1H10のとうよによって著しく減少すると示された(図4c乃至図4e)。併せて、MMP-9は亜鉛によって活性が増加するため、前記観察した白質内増加とMMP-9の活性増加が互いに密接な関係があると考えられてMMP-9の活性を比較した結果、EAE誘導後1H10を投与した実験群はビークル群に比べ脊髄白質内でMMP-9の活性が抑制されることを確認した(図4f及び図4g)。
自由亜鉛に結合したら蛍光を示す物質であるFluoZin-3を利用して1H10処理による亜鉛キレート化の可能性を検証した結果、1H10処理した実験群で細胞内亜鉛の増加が著しく減少することを確認した(図5a)。また、テストチューブで1μM亜鉛、5μM自由亜鉛蛍光標識薬物(FluoZin-3)と共に多様な濃度(0、0.5、1、2、5、10、20、40μM)の1H10またはクリオキノールを反応させた後、蛍光値を測定した結果、各薬物のIC50値は4.234μM、10.06μMと推定されたが、最終FluoZin-3の蛍光数値はクリオキノールの方が低かった。本発明の1H10はクリオキノールより更に低い濃度でも亜鉛と結合するが、高濃度では亜鉛結合強度がクリオキノールより低いと考えられる(図5b)前記結果は、本発明の1H10がAMPK抑制機能だけでなく、亜鉛に直接結合して神経細胞内の亜鉛の恒常性を調節し得ることを示唆している。
本発明者らは、マウスEAE誘導後1H10を全体期間中一日1回腹腔内投与し、最初免疫化後45日目にマウスを犠牲させて臨床的症状及び発病率を観察した結果(図6a)、1H10を投与した実験群で臨床的症状及び発病率が著しく減少することを観察した(図6b乃至図6d)。これは、1H10の投与が急性期(21日)だけでなく慢性期(45日)までの長期間にわたってEAEの症状を緩和するのに効果があることを証明している。
本発明の一実施例によって、本発明の1H10の構造類似性に基づいてこれと類似した構造を有する25個の類似化合物を化合物ライブラリー製造会社(InterBioScreen,Russia;Akos,Germany)から購入した。次に、前記培養されたラットの大脳皮質神経細胞に亜鉛毒性を誘発するためにZnCl2(400μM)を10分間処理し、12.5時間経過してから、前記選別された25個の化合物及び予め選別された薬物である1H10を処理(20μM)して、細胞生存アッセイ(cell viability assay,Cell Counting Kit-8,Dojindo)によって細胞死(cell death)の抑制可否を観察した。
本発明者らは、前記実施例の8つの薬物及び1H10を対象に亜鉛毒性の他、酸化ストレスの抑制効果を観察した。詳しくは、酸化ストレスは、H2O2(100μM)、FeCl2(100μM)をマウスの大脳皮質神経細胞にそれぞれ約4時間、20時間処理して神経毒性を誘発し、前記選別された8つの薬物及び1H10を処理(20μM)した。次に、LDH(Lactate Dehydrogenase)分析によって細胞毒性を観察した。
その結果、4C06、4C08を除く6つの薬物(4B01、4B04、4B08、4C01、4C03、4C04)はH2O2毒性を有意に抑制すると示された(図10)。また、更に4C06と4C08に対してH2O2以外にも鉄(iron)によって誘発される酸化ストレスを確認した結果、前記4C08が鉄による酸化ストレスを抑制すると示された(図11)。
本発明者らは、前記実施例の8つの薬物及び1H10を対象に興奮毒性の抑制効果を観察した。詳しくは、興奮毒性はNMDA(N-メチル-D-アスパラギン酸、50μM)をマウスの大脳皮質神経細胞に3時間処理して誘発し、前記選別された8つの薬物及び1H10を処理(20μM)してLDH細胞毒性を観察した結果、4B04、4C06を除く6つの薬物(4B01、4B08、4C01、4C03、4C04、4C08)はNMDAによる興奮毒性を有意に抑制すると示された(図12)。
本発明者らは、前記実施例の8つの薬物及び1H10を対象にアポトーシスの抑制効果を観察した。詳しくは、アポトーシスによる神経毒性はエトポシド(ETPS、10μM)をマウスの大脳皮質神経細胞に20時間処理して誘発した。次に、前記選別された8つの薬物及び1H10を処理(20μM)してLDH細胞毒性を観察した結果、4B04、4C03、4C04を除く5つの薬物(4B01、4B08、4C01、4C06、4C08)がETPS毒性を有意に抑制すると示された(図13)。
本発明者らは、前記実施例の25個の化合物及び1H10を対象に亜鉛結合分析を行った。詳しくは、テストチューブ上で1H10と25個の化合物(それぞれ20μM)と共に、亜鉛(20μM)及び亜鉛蛍光染色物質であるNewport green DCF(0.1μM、Kd(Zn)=1μM)を利用して自由結合可否を測定した。この際、亜鉛キレートであるクリオキノールとカルシウムイオノフォアであるイオノマイシンを対照群として使用した(それぞれ20μM)。その結果、イオノマイシンを除く全ての薬物が亜鉛と結合可能であることを確認した(図14)。
本発明者らは、1H10と25個の化合物(それぞれ10μM)と共に従来よく知られているAMPK抑制剤compound C(CC、10μM)の処理によるrecombinant AMPKα2酵素活性をKinaseProfilerTM Service(Eurofins,UK)によって測定した。その結果、4A06、4B02、4C04、4C05、4C06、4C08、4D01で1H10と類似したAMPK抑制効果が示された(図15)。
本発明者らは、全ての細胞毒性(亜鉛毒性、酸化ストレス、興奮毒性、アポトーシス)に対して共通に保護効果を示す4つの薬物(4B01、4B08、4C01、4C08)に対する自体毒性(self-toxicity)を1H10と比較した。詳しくは、マウスの大脳皮質神経細胞の培養体で前記薬物をそれぞれ40μM処理し、24時間または48時間後LDH細胞毒性を観察した。
結論的に、本発明の一実施例による化合物は、従来多発性硬化症に関連する興奮毒性、酸化ストレス、アポトーシス、亜鉛毒性などの多様な毒性機序に保護効果を示し、併せて亜鉛キレート化によってMMP-9の活性を減少させて免疫細胞の脊髄白質内透過及び蓄積を防止し自己免疫反応を減少させることで、多発性硬化症疾患の発生を抑制することを証明した。よって、本発明の1H10は、長期投与による副作用が深刻なステロイド製剤と免疫抑制剤を代替し、根本的な問題を制御する薬物の開発に活用されることができる。
Claims (4)
- 下記の化合物のいずれかを有効成分として含有する、多発性硬化症または脳脊髄炎の治療用の薬学的組成物:
(Z)-5-((1H-インドール-3-イル)メチレン)-2-((3-ヒドロキシフェニル)アミノ)チアゾール-4(5H)-オン、
(5Z)-2-[(3,4-ジメチルフェニル)アミノ]-5-(1H-インドール-3-イルメチレン)-1,3-チアゾール-4(5H)-オン、
(2Z,5E)-5-((1H-インドール-3-イル)メチレン)-2-((4-ブチルフェニル)イミノ)チアゾリジン-4-オン、
(Z)-5-((1H-インドール-3-イル)メチレン)-2-((4-ブチルフェニル)アミノ)チアゾール-4(5H)-オン、および
(Z)-5-((5-((1H-インドール-3-イル)メチレン)-4-オキソ-4,5-ジヒドロチアゾール-2-イル)アミノ)-2-ヒドロキシ安息香酸。 - 前記化合物は、脱髄(demyelination)防止、神経保護効果(neuroprotective effect)、組織損傷の減少、アポトーシス(apoptosis)防止、または炎症性浸潤(Inflammatory infiltration)の抑制効果を有する、請求項1に記載の薬学的組成物。
- 治療的に有効な量の請求項1に記載の薬学的組成物を、多発性硬化症に罹患した、ヒトを除く哺乳動物個体に投与することを含む、前記個体の多発性硬化症の治療方法。
- 治療的に有効な量の請求項1に記載の薬学的組成物を、脳脊髄炎に罹患した、ヒト以外の哺乳動物個体に投与することを含む、前記個体の脳脊髄炎の治療方法。
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